JPH0235362A - リポソーム上への生理活性物質の固定化方法 - Google Patents
リポソーム上への生理活性物質の固定化方法Info
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- JPH0235362A JPH0235362A JP6226488A JP6226488A JPH0235362A JP H0235362 A JPH0235362 A JP H0235362A JP 6226488 A JP6226488 A JP 6226488A JP 6226488 A JP6226488 A JP 6226488A JP H0235362 A JPH0235362 A JP H0235362A
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Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
[発明の目的コ
(産業上の利用分野)
本発明はリポソーム上への生理活性物質の固定化方法に
関する。
関する。
(従来の技術)
従来、酵素を不溶性担体上に固定化するために種々の方
法が研究されている。例えば、GNBrで担体中の糖の
水酸基を活性化し、酵素中のアミン基と反応させる方法
、カルボジイミド誘導体な用いて担体と酵素とを脱水縮
合させる方法等がある。また、ブロモアセチル基を担体
上に導入し酵素のアミ7基・水酸基・イミダゾール基等
と反応させる方法が知られている(講談社刊、“実験と
応用 アフィニティクロマトグラフィー 、千畑一部他
著、1976年、p、59)。この際、反応pHは6〜
9の範囲で行うという記載がある。
法が研究されている。例えば、GNBrで担体中の糖の
水酸基を活性化し、酵素中のアミン基と反応させる方法
、カルボジイミド誘導体な用いて担体と酵素とを脱水縮
合させる方法等がある。また、ブロモアセチル基を担体
上に導入し酵素のアミ7基・水酸基・イミダゾール基等
と反応させる方法が知られている(講談社刊、“実験と
応用 アフィニティクロマトグラフィー 、千畑一部他
著、1976年、p、59)。この際、反応pHは6〜
9の範囲で行うという記載がある。
また、従来、リポソームやLB膜のような脂質からなる
膜の表面に酵素や抗体等の生理活性物質を固定化する方
法としては以下のようなものが知られている。
膜の表面に酵素や抗体等の生理活性物質を固定化する方
法としては以下のようなものが知られている。
■N−ヒドロキシサクシンイミジル3〜(2−ピリジル
ジチオ)プロピオネート(SPDP)で修飾したホスフ
ァチジルエタノールアミン(DTP−DPPE)を用い
る方法(L、D、Leserman、J、Barnet
、F、Kourilski andJ、N、Weins
tein;Nature、 28B 、pp、BO2−
804(1980)。
ジチオ)プロピオネート(SPDP)で修飾したホスフ
ァチジルエタノールアミン(DTP−DPPE)を用い
る方法(L、D、Leserman、J、Barnet
、F、Kourilski andJ、N、Weins
tein;Nature、 28B 、pp、BO2−
804(1980)。
F、J、Martin、W、L、Hubbell an
d D、Papahadjopoulos; Bioc
hemistry、 20.pp、4229−4238
(1981)等)。
d D、Papahadjopoulos; Bioc
hemistry、 20.pp、4229−4238
(1981)等)。
■チオマレイミド基を導入した脂質を用いる方法(H,
llashimoto、M、Sugawara and
)1.Endoh; J。
llashimoto、M、Sugawara and
)1.Endoh; J。
Immunol、Methods、82.pp、155
−162(1983) ) 。
−162(1983) ) 。
■ジスルフィド基を導入した脂質を用いる方法(特公昭
81−45775号公報)。
81−45775号公報)。
これらの方法によれば、例えばリポソーム上に多量の抗
体を固定化することができる。
体を固定化することができる。
しかし、本発明者らの研究によれば、こうした従来の方
法で調製された抗体固定化リポソームは血液又は血清と
混合するだけで著しく崩壊してしまうことが判明した。
法で調製された抗体固定化リポソームは血液又は血清と
混合するだけで著しく崩壊してしまうことが判明した。
そこで、木発明者はハロゲン化アルキル基を導入した脂
質を開発し、これを含むリポソームがヒト血清中で安定
であることを見出した。しかしながら、場合によっては
このリポソーム上に抗体等の生理活性物質を固定化する
ことが困難であることも判明した。
質を開発し、これを含むリポソームがヒト血清中で安定
であることを見出した。しかしながら、場合によっては
このリポソーム上に抗体等の生理活性物質を固定化する
ことが困難であることも判明した。
(発明が解決しようとする課題)
本発明は上記問題点を解決するためになされたものであ
り、リポソーム上に安定に生理活性物質を固定化する方
法を提供することを目的とする。
り、リポソーム上に安定に生理活性物質を固定化する方
法を提供することを目的とする。
[発明の構成コ
(課題を解決するための手段と作用)
本発明のリポソーム−にへの生理活性物質の固定化方法
は、ハロゲン化アルキル基を含有するリン脂質及び糖脂
質のうち少なくとも一方を組成の一部とするリポソーム
に、遊離のSH基を含有する生理活性物質を固定化する
際に、反応時のpHを7〜11の範囲に調整することを
特徴とするものである。
は、ハロゲン化アルキル基を含有するリン脂質及び糖脂
質のうち少なくとも一方を組成の一部とするリポソーム
に、遊離のSH基を含有する生理活性物質を固定化する
際に、反応時のpHを7〜11の範囲に調整することを
特徴とするものである。
以下、本発明方法をより詳細に説明する。
まず、ハロゲン化アルキル基を含有する脂質は例えば以
下のようにして合成することができる。
下のようにして合成することができる。
すなわち、ハロゲン化酢酸等をN−ヒドロキシサクシン
イミド、ジシクロへキシルカルボジイミド、I・リエチ
ルアミンの存在下で適当なアミン基含有脂質(例えばジ
パルミトイルホスファチジルエタノールアミン等)と反
応させることにより合成することができる。この脂質の
精製には分取用薄層クロマトグラフィーな用いると良い
。
イミド、ジシクロへキシルカルボジイミド、I・リエチ
ルアミンの存在下で適当なアミン基含有脂質(例えばジ
パルミトイルホスファチジルエタノールアミン等)と反
応させることにより合成することができる。この脂質の
精製には分取用薄層クロマトグラフィーな用いると良い
。
次に、こうして合成されたハロゲン化アルキル基を含有
するリン脂質や糖脂質を組成の一部とするリポソームは
例えば以下のようにして調製することができる。すなわ
ち、こうした脂質、及び必要に応じてコレステロールや
他の脂質の適当量をフラスコに入れ、溶媒を加えて溶解
・混合させた後、溶媒を吸引除去して乾燥させる。この
結果、フラスコ壁面に脂質薄膜が形成される。つづいて
、フラスコ内に標識物質を含有する水溶液を加え、密栓
して振とうすることによりリポソームの懸濁液を調製す
る。
するリン脂質や糖脂質を組成の一部とするリポソームは
例えば以下のようにして調製することができる。すなわ
ち、こうした脂質、及び必要に応じてコレステロールや
他の脂質の適当量をフラスコに入れ、溶媒を加えて溶解
・混合させた後、溶媒を吸引除去して乾燥させる。この
結果、フラスコ壁面に脂質薄膜が形成される。つづいて
、フラスコ内に標識物質を含有する水溶液を加え、密栓
して振とうすることによりリポソームの懸濁液を調製す
る。
一方、生理活性物質には、酵素(ペプシン等)処理や還
元処理を施して遊離のSH基を付与するか、2官能性試
薬(例えば5PDP)と反応させた後に還元してSH基
を導入する。生理活性物質としては、抗体(免疫グロブ
リン)、抗原、酵素、補酵素、ホルモン等が挙げられる
。
元処理を施して遊離のSH基を付与するか、2官能性試
薬(例えば5PDP)と反応させた後に還元してSH基
を導入する。生理活性物質としては、抗体(免疫グロブ
リン)、抗原、酵素、補酵素、ホルモン等が挙げられる
。
更に、リポソーム懸濁液と生理活性物質とをpH7〜1
1の条件で混合することにより、リポソームのハロゲン
化アルキル基と生理活性物質に導入されたS)I基とが
反応し、リポソーム」二にチオエーテル結合(−S−C
−)を介して安定に生理活性物質を固定化することがで
きる。
1の条件で混合することにより、リポソームのハロゲン
化アルキル基と生理活性物質に導入されたS)I基とが
反応し、リポソーム」二にチオエーテル結合(−S−C
−)を介して安定に生理活性物質を固定化することがで
きる。
この際、pHを7〜11の範囲に規定したのは、pHが
7未満ではリポソーム」−に固定化される生理活性物質
の量が少なく、一方p)Iが11を超えると生理活性物
質が固定化されたリポソームが血液や血清中で崩壊する
等不安定になるためである。
7未満ではリポソーム」−に固定化される生理活性物質
の量が少なく、一方p)Iが11を超えると生理活性物
質が固定化されたリポソームが血液や血清中で崩壊する
等不安定になるためである。
本発明方法によれば、リポソーム上に生理活性物質を安
定に固定化することができ、しかも両者の化学結合は血
液や血清中でも不活性でリポソームが崩壊するようなこ
とはない。
定に固定化することができ、しかも両者の化学結合は血
液や血清中でも不活性でリポソームが崩壊するようなこ
とはない。
(実施例)
以下、本発明の詳細な説明する。
実施例1:リポソーム」−へのモノクローナル抗ヒトα
−ノエトプロテイン(oppc)の固足化本実施例で用
いた試薬のうち、ジパルミトイルホスファチジルコリン
(DPPC)、ジパルミトイルホスファチジルエタノー
ルアミン(DPPE) 、 コレステロールはシグマ社
製のものを用いた。また、セファデックスG−25はフ
ァルマシア社製のものを用いた。他の試薬は市販品(特
級)を精製せずに使用した。なお、水は全てイオン交検
水を用いた。
−ノエトプロテイン(oppc)の固足化本実施例で用
いた試薬のうち、ジパルミトイルホスファチジルコリン
(DPPC)、ジパルミトイルホスファチジルエタノー
ルアミン(DPPE) 、 コレステロールはシグマ社
製のものを用いた。また、セファデックスG−25はフ
ァルマシア社製のものを用いた。他の試薬は市販品(特
級)を精製せずに使用した。なお、水は全てイオン交検
水を用いた。
■ハロゲン化アルキル基含有リン脂質の合成1mモルの
ブロモ酢酸をクロロホルム30m1に溶解し、N−ヒド
ロキシサクシンイミド1.2mモル及びジシクロへキシ
ルカルボジイミド1.2mモルを添加し、室温で3時間
反応させた後、ロータリーエバポレーターで乾燥し、酢
酸エチル30m1を加えた。
ブロモ酢酸をクロロホルム30m1に溶解し、N−ヒド
ロキシサクシンイミド1.2mモル及びジシクロへキシ
ルカルボジイミド1.2mモルを添加し、室温で3時間
反応させた後、ロータリーエバポレーターで乾燥し、酢
酸エチル30m1を加えた。
生成した白色沈殿を日別した後、再び溶媒を除去し、ク
ロロホルム10m1に再溶解させた。次に、100、モ
ルのDPPEをクロロホルム301に懸濁させ、これに
上記溶液2ml及びトリエチルアミン50.1 を加え
、室温で1晩反応させた。更に、溶媒を濃縮した後、分
取用薄層クロマトグラフィーにより、展開溶媒としてク
ロロホルム/メタノール=70/ 30の混合溶媒を用
い、生成物を分離精製した。収率は約50%であった。
ロロホルム10m1に再溶解させた。次に、100、モ
ルのDPPEをクロロホルム301に懸濁させ、これに
上記溶液2ml及びトリエチルアミン50.1 を加え
、室温で1晩反応させた。更に、溶媒を濃縮した後、分
取用薄層クロマトグラフィーにより、展開溶媒としてク
ロロホルム/メタノール=70/ 30の混合溶媒を用
い、生成物を分離精製した。収率は約50%であった。
なお、最終生成物はクロロホルムで1 mM濃度に希釈
して一20°Cで保存した。
して一20°Cで保存した。
■リポソームの調製
使用した脂質は全てクロロホルム又はクロロホルム/メ
タノール(2/1) i合溶媒に溶解した。
タノール(2/1) i合溶媒に溶解した。
5 mMノDPPc 200角1 、 if)mMのコ
1/ステロール100g+及び1 m!b7) BrA
c−[]PPE (■で得られたハロゲン化アルキル基
含有リン脂質)50g+を10m1容量のナシ型フラス
コに入れ、更にクロロホルム2Il11を加えてよく混
合した。次に、約40℃の水浴中テロータリーエバポレ
ータにより溶媒を除去した。再びクロロホルム2mlを
加えて充分攪拌した後、再度ロータリーエバポレーター
により溶媒を除去した。この操作を数回繰り返すと、フ
ラスコ壁面に脂質薄膜が形成された。つづいて、フラス
コをデシケータ中に移し、真空ポンプで約1時間吸引し
て溶媒を完全に除去した。
1/ステロール100g+及び1 m!b7) BrA
c−[]PPE (■で得られたハロゲン化アルキル基
含有リン脂質)50g+を10m1容量のナシ型フラス
コに入れ、更にクロロホルム2Il11を加えてよく混
合した。次に、約40℃の水浴中テロータリーエバポレ
ータにより溶媒を除去した。再びクロロホルム2mlを
加えて充分攪拌した後、再度ロータリーエバポレーター
により溶媒を除去した。この操作を数回繰り返すと、フ
ラスコ壁面に脂質薄膜が形成された。つづいて、フラス
コをデシケータ中に移し、真空ポンプで約1時間吸引し
て溶媒を完全に除去した。
次いで、0.2Mのカルボキシフルオレセイン(イース
トマン・コダック社製、pH7,4:以下、CFと記す
)100ル1を添加し、フラスコ内部を窒素で置換した
後、密栓して約60°Cの水浴中に約1分間浸漬した。
トマン・コダック社製、pH7,4:以下、CFと記す
)100ル1を添加し、フラスコ内部を窒素で置換した
後、密栓して約60°Cの水浴中に約1分間浸漬した。
つづいて、Vorte+vミキサーを用い、フラスコ壁
面の脂質薄膜が完全に消失するまでフラスコを激しく振
とうした。この操作によりリポソーム懸濁液が調製され
た。更に、リポソーム懸濁液に0.01Hの1(EPE
S @衝液(0,85%NaCl含有、pH7,45:
以下、HBSと記す)を少量添加した後、全て遠心チュ
ーブに移し、4°Cにおいて15000 rpmで20
分間遠心する操作を数回繰り返した。最後に緩衝液を捨
て、リポソームのベレットを得た。
面の脂質薄膜が完全に消失するまでフラスコを激しく振
とうした。この操作によりリポソーム懸濁液が調製され
た。更に、リポソーム懸濁液に0.01Hの1(EPE
S @衝液(0,85%NaCl含有、pH7,45:
以下、HBSと記す)を少量添加した後、全て遠心チュ
ーブに移し、4°Cにおいて15000 rpmで20
分間遠心する操作を数回繰り返した。最後に緩衝液を捨
て、リポソームのベレットを得た。
■モノクローナル抗体の修飾
モノクローナル抗−ヒトAFP抗体10mgをp)14
.5の酢酸緩衝液に溶解し、ペプシン(シグマ社製)1
00ggを添加し、37°Cで1時間反応させた後、高
速液体クロマトグラフでF(ab’)2分画のみを分取
した。このF(ab’)2分画1mgをpH6,0,I
Mのリン酸緩衝液中に溶解し、これにメルカプトエチル
アミン・塩酸塩10mgを加え、37°Cで90分間反
応させた。その後、セファデックスG−25を用い、p
H6〜12までの緩衝液(1010ff1でゲル口過し
、遊離のSH基を含有したタンパク分画(Fab’)の
みを分取した。このF ab’b’のOD 280nm
は約1であった(各1m1)。
.5の酢酸緩衝液に溶解し、ペプシン(シグマ社製)1
00ggを添加し、37°Cで1時間反応させた後、高
速液体クロマトグラフでF(ab’)2分画のみを分取
した。このF(ab’)2分画1mgをpH6,0,I
Mのリン酸緩衝液中に溶解し、これにメルカプトエチル
アミン・塩酸塩10mgを加え、37°Cで90分間反
応させた。その後、セファデックスG−25を用い、p
H6〜12までの緩衝液(1010ff1でゲル口過し
、遊離のSH基を含有したタンパク分画(Fab’)の
みを分取した。このF ab’b’のOD 280nm
は約1であった(各1m1)。
■リポソームへのモノクローナル抗体の固定化■で調製
したリポソームペレットと■で得うれた各pHのF a
b’分画分画1七l混合し、20°Cで44時間攪拌・
反応させた。反応後、それぞれゼラチンベロナール緩衝
液(以下、GVB−と記す)で3回洗浄し、最後にGV
B 2mlに懸濁して4℃で保存した。
したリポソームペレットと■で得うれた各pHのF a
b’分画分画1七l混合し、20°Cで44時間攪拌・
反応させた。反応後、それぞれゼラチンベロナール緩衝
液(以下、GVB−と記す)で3回洗浄し、最後にGV
B 2mlに懸濁して4℃で保存した。
■モノクローナル抗体固定化リポソームによるヒトAF
Pの測定 ヒトAFPをGVB” (GVB−に0.5mM Mg
C:I 2及び0.5mM CaCl 2を添加したも
の)で予め0.1〜10’ng/mlの濃度範囲に希釈
した。一方、■において各pHで調製されたモノクロー
ナル抗体固定化リポソームをGVB+で10倍に希釈し
た。これらを10.1ずつ混合して37℃で10分間イ
ンキュベートした。
Pの測定 ヒトAFPをGVB” (GVB−に0.5mM Mg
C:I 2及び0.5mM CaCl 2を添加したも
の)で予め0.1〜10’ng/mlの濃度範囲に希釈
した。一方、■において各pHで調製されたモノクロー
ナル抗体固定化リポソームをGVB+で10倍に希釈し
た。これらを10.1ずつ混合して37℃で10分間イ
ンキュベートした。
次に、50倍希釈のウサギ抗−ヒ1−AFP抗体(Da
k。
k。
社製)溶液25ルl及び20倍希釈の補体(モルモット
血清)溶液25.1 を添加し、更に37°Cで30分
間反応させた。次いで、0.01にE[1TA−へロナ
ール緩衝液 100JL+で反応を停止させ、各濃度の
ヒトAFP溶液について遊出したCF量をMTP−32
蛍光分光光度計(コロナ電気製)により、励起波長48
0nm、蛍光波長520nmの条件で測定した。
血清)溶液25.1 を添加し、更に37°Cで30分
間反応させた。次いで、0.01にE[1TA−へロナ
ール緩衝液 100JL+で反応を停止させ、各濃度の
ヒトAFP溶液について遊出したCF量をMTP−32
蛍光分光光度計(コロナ電気製)により、励起波長48
0nm、蛍光波長520nmの条件で測定した。
この測定に基づいて次式によりリポソームの最大溶出率
を計算した。
を計算した。
第 1
表
ここで、Fe :実測した蛍光強度、Fo:抗原を添加
していない時(リポソームが全く破壊されていない時)
の蛍光強度、Fa:脱イオン水を添加してリポソームを
全て破壊した時の蛍光強度である。なお、標準値として
1O−7及び10−8MのCF溶液の蛍光強度を用いた
。
していない時(リポソームが全く破壊されていない時)
の蛍光強度、Fa:脱イオン水を添加してリポソームを
全て破壊した時の蛍光強度である。なお、標準値として
1O−7及び10−8MのCF溶液の蛍光強度を用いた
。
第1図にpH8で抗体を固定化したリポソームを用いた
場合の測定結果を示す。第1図から、1〜103ng/
ll1lの範囲でAFPを測定できることがわかる。
場合の測定結果を示す。第1図から、1〜103ng/
ll1lの範囲でAFPを測定できることがわかる。
同様に、各pHで抗体を固定化したリポソームを用いた
場合の測定濃度範囲及びリポソームの最大溶出率を第1
表に示す。
場合の測定濃度範囲及びリポソームの最大溶出率を第1
表に示す。
第1表から、リポソームの最大溶出率は、pH6〜8の
範囲ではpHの十Aに伴い増大し、pH8〜11の範囲
でほぼ一定である。そして、pH6ではリポソーム」−
に固定化される抗体量が少なくリポソームの最大溶出率
が低すぎるため測定精度か悪く、しかも測定濃度範囲も
狭い。なお、pH12ではリポソームが補体に対して不
安定であり、事実」二同−条件下でのAFPの測定がで
きなかった。このことから、pH7〜11で固定化反応
を行えばよいことがわかる。
範囲ではpHの十Aに伴い増大し、pH8〜11の範囲
でほぼ一定である。そして、pH6ではリポソーム」−
に固定化される抗体量が少なくリポソームの最大溶出率
が低すぎるため測定精度か悪く、しかも測定濃度範囲も
狭い。なお、pH12ではリポソームが補体に対して不
安定であり、事実」二同−条件下でのAFPの測定がで
きなかった。このことから、pH7〜11で固定化反応
を行えばよいことがわかる。
実施例2:pH8でモノクローナル抗−ヒ) AFP抗
体を固定化したリポソームとヒト血清との相互作用 実施例1と同様にして、リポソームとヒト血清との相互
作用を調べた。すなわち、50検体のヒト血清を GV
B+で10倍に希釈した。一方、pH8で調製されたモ
ノクローナル抗体固定化リポソームをGVB+で10倍
に希釈した。これらを10pLlずつ混合して37°C
で10分間インキュベートした。次に、GVB+ 25
ル1及び20倍希釈の補体溶液25ル1を楕加し、更に
37°Cで30分間反応させた。
体を固定化したリポソームとヒト血清との相互作用 実施例1と同様にして、リポソームとヒト血清との相互
作用を調べた。すなわち、50検体のヒト血清を GV
B+で10倍に希釈した。一方、pH8で調製されたモ
ノクローナル抗体固定化リポソームをGVB+で10倍
に希釈した。これらを10pLlずつ混合して37°C
で10分間インキュベートした。次に、GVB+ 25
ル1及び20倍希釈の補体溶液25ル1を楕加し、更に
37°Cで30分間反応させた。
また、50検体のヒト血清に58℃、30分の血清熱処
理を行った後、上記と同様に反応させた。
理を行った後、上記と同様に反応させた。
各場合について、実施例1と同様にして最大溶出率を測
定した結果を一括して第2図に示す。
定した結果を一括して第2図に示す。
これと比較するために、従来の方法により、ジスルフィ
ド結合を介してモノクローナル抗ヒトAFP抗体を固定
化したリポソームを用い、上記と同一の50検体のヒト
血清との相互作用を」1記と全く同様にして調べた。そ
の結果を第3図に示す。
ド結合を介してモノクローナル抗ヒトAFP抗体を固定
化したリポソームを用い、上記と同一の50検体のヒト
血清との相互作用を」1記と全く同様にして調べた。そ
の結果を第3図に示す。
第2図から、本発明方法により調製されたリポソームは
血清に対して非常に安定であることがわかる。なお、1
検体についてはリポソームの非特異溶解が認められるが
、血清熱処理を行えば非特異溶解が解消されることがわ
かる。これに対して、第3図から明らかなように、従来
のリポソームは血清皆対して非常に不安定である。
血清に対して非常に安定であることがわかる。なお、1
検体についてはリポソームの非特異溶解が認められるが
、血清熱処理を行えば非特異溶解が解消されることがわ
かる。これに対して、第3図から明らかなように、従来
のリポソームは血清皆対して非常に不安定である。
[発明の効果]
以上詳述したように本発明方法によれば、リポソーム」
二に生理活性物質を安定に固定化することができ、血液
や血清中でもリポソームが崩壊するようなことはない。
二に生理活性物質を安定に固定化することができ、血液
や血清中でもリポソームが崩壊するようなことはない。
第1図は本発明方法により調製されたリポソームを用い
てヒトAFPを測定した時のヒ) AFP濃度と最大溶
出率との関係を示す特性図、第2図は本発明方法により
調製されたリポソームとヒト血清及び補体とを混合した
時の最大溶出率を示す特性図、第3図は従来の方法によ
り調製されたリポソームとヒト血清及び補体とを混合し
た時の最大溶出率を示す特性図である。
てヒトAFPを測定した時のヒ) AFP濃度と最大溶
出率との関係を示す特性図、第2図は本発明方法により
調製されたリポソームとヒト血清及び補体とを混合した
時の最大溶出率を示す特性図、第3図は従来の方法によ
り調製されたリポソームとヒト血清及び補体とを混合し
た時の最大溶出率を示す特性図である。
Claims (1)
- ハロゲン化アルキル基を含有するリン脂質及び糖脂質の
うち少なくとも一方を組成の一部とするリポソームに、
遊離のSH基を含有する生理活性物質を固定化する際に
、反応時のpHを7〜11の範囲に調整することを特徴
とするリポソーム上への生理活性物質の固定化方法。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP6226488A JPH0235362A (ja) | 1988-03-16 | 1988-03-16 | リポソーム上への生理活性物質の固定化方法 |
US07/246,092 US5080833A (en) | 1987-09-21 | 1988-09-19 | Immobilization of bioactive substance on lipid composition containing modified lipid compound |
EP88308701A EP0312212B1 (en) | 1987-09-21 | 1988-09-20 | Immobilization of bioactive substance on lipid composition containing modified lipid compound |
DE8888308701T DE3872151T2 (de) | 1987-09-21 | 1988-09-20 | Immobilisierung einer bioaktiven substanz an einer lipidzusammensetzung, enthaltend eine modofizierte lipidverbindung. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP6226488A JPH0235362A (ja) | 1988-03-16 | 1988-03-16 | リポソーム上への生理活性物質の固定化方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0235362A true JPH0235362A (ja) | 1990-02-05 |
Family
ID=13195116
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP6226488A Pending JPH0235362A (ja) | 1987-09-21 | 1988-03-16 | リポソーム上への生理活性物質の固定化方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0235362A (ja) |
-
1988
- 1988-03-16 JP JP6226488A patent/JPH0235362A/ja active Pending
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