JPH02249483A - 顆粒球系前駆体細胞のコロニー形成物質 - Google Patents
顆粒球系前駆体細胞のコロニー形成物質Info
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- JPH02249483A JPH02249483A JP63227504A JP22750488A JPH02249483A JP H02249483 A JPH02249483 A JP H02249483A JP 63227504 A JP63227504 A JP 63227504A JP 22750488 A JP22750488 A JP 22750488A JP H02249483 A JPH02249483 A JP H02249483A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Nitrogen Condensed Heterocyclic Rings (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[発明の目的]
本発明は、顆粒球系前駆細胞(Colony form
inguntts tn culture 、以下、C
FtJ−Cと略記する。)のコロニー形成物質に関する
ものである。
inguntts tn culture 、以下、C
FtJ−Cと略記する。)のコロニー形成物質に関する
ものである。
造血因子であるC3F(コロニー刺激因子)は、マウス
などのin vivoの系で、血液幹細胞を顆粒球・単
球系血液細胞へと分化・増殖・成熟させる生体由来の物
質として知られており、また、軟寒天あるいはメチルセ
ルロースなどを用いた1n−VitrO培養系でも、血
液幹細胞からCFLJ−Cの分化・増殖を刺激し、顆粒
球・単球系血液細胞のコロニーを形成させる作用のある
物質として知られている。そして、C3Fはその生物作
用の面がら、癌化学療法及び放射線治療等の副作用とし
て現われる顆粒球減少等の治療薬として、また、細菌・
ウィルス等積々の感染症の予防または治療薬として臨床
的に期待されている物質である。
などのin vivoの系で、血液幹細胞を顆粒球・単
球系血液細胞へと分化・増殖・成熟させる生体由来の物
質として知られており、また、軟寒天あるいはメチルセ
ルロースなどを用いた1n−VitrO培養系でも、血
液幹細胞からCFLJ−Cの分化・増殖を刺激し、顆粒
球・単球系血液細胞のコロニーを形成させる作用のある
物質として知られている。そして、C3Fはその生物作
用の面がら、癌化学療法及び放射線治療等の副作用とし
て現われる顆粒球減少等の治療薬として、また、細菌・
ウィルス等積々の感染症の予防または治療薬として臨床
的に期待されている物質である。
従来のC8Fの生産方法としては、生体からの分離精製
などが認められるが、本発明者らは単に通常の微生物培
養用培地で微生物を培養することによって、C3Fと同
様にCFU−Cのコロニー形成作用を有する物質を容易
で、かつ大量に得るために、微生物培養ろ液及び菌体中
にCFLJ−Cコロニー形成を指標としてCFu−cコ
ロニー形成物質を探索した結果、放線菌ストレプトベル
ティシリウム・プラストマイセティカム(strept
o−verticillium bfastmycet
icua+、IFO12747)の培養ろ液及び菌体中
にCFU−Cコロニー形成物質を認め、この物質を単離
・精製し、構造を決定した結果1、テレオシジンである
ことを認め、本発明を完成した。
などが認められるが、本発明者らは単に通常の微生物培
養用培地で微生物を培養することによって、C3Fと同
様にCFU−Cのコロニー形成作用を有する物質を容易
で、かつ大量に得るために、微生物培養ろ液及び菌体中
にCFLJ−Cコロニー形成を指標としてCFu−cコ
ロニー形成物質を探索した結果、放線菌ストレプトベル
ティシリウム・プラストマイセティカム(strept
o−verticillium bfastmycet
icua+、IFO12747)の培養ろ液及び菌体中
にCFU−Cコロニー形成物質を認め、この物質を単離
・精製し、構造を決定した結果1、テレオシジンである
ことを認め、本発明を完成した。
即ち、本発明は、テレオシジンを有効成分とするCFU
−Cコロニー形成物質に関するものである。従来、本物
質がCFLJ−Cコロニー形成活性を有するという報告
は知られていない。
−Cコロニー形成物質に関するものである。従来、本物
質がCFLJ−Cコロニー形成活性を有するという報告
は知られていない。
なお、本物質の理化学的性質は次に示すとおりである。
[1]化合物A
1)分子量:(高分解能マススペクトル)実験値m/z
: 437.3042理論値 : 437.3
042 (M、C2□H39N302 ) 2)分子m : 437(FAB−83m/z :
438(H+H) >3)分子式 ” C27H
39N3 C24)融点 : 77−82℃ 5)溶解性 : ジメチルスルホキシド、クロロホルム
、メタノールに易溶 6)定色反応: エーリツヒ反応が陽性7)紫外吸収ス
ペクトル: He’l+ λHax n111(ε) 301(8700)
、231(25600)8)赤外吸収スペクトルニ ジHaX KB’ cm’ 3440.2930.2B70,1650,1590゜
1550、1510.1450.1415.13B0゜
1300.1240,1040. 920. 8009
)旋光度 :[α]。−−113,0° (0,5,E
tOH)[2]化合物B 1)分子m : (高分解能マススペクトル)実験値m
/z : 451.3181理論値 : 451.
3199 (M 、C28H41N302) 2)分子1 : 451(FAB−83m/z :
452(H+旧 )3)分子式 ” C213H4
1N3024)融点: 123−129℃ 5)溶解性 : ジメチルスルホキシド、クロロホルム
、メタノールに易溶 6)定色反応: エーリツヒ反応が陽性7)紫外吸収ス
ペクトル: eOH λHax nm(ε) 287(8140) 、
233(26800)8)赤外吸収スペクトルニ ジHaxKBrC[ll−1 3440、2940,2870,1650,1600゜
1550、1510.1450.1410.1370゜
1055、 920 9)旋光度 :[α] 、 = −164,5° (1
,0,EtOH)以上の性質により、化合物Aはテレオ
シジン八−1に、また化合物BはテレオシジンB−4に
それぞれ一致することが確認された。
: 437.3042理論値 : 437.3
042 (M、C2□H39N302 ) 2)分子m : 437(FAB−83m/z :
438(H+H) >3)分子式 ” C27H
39N3 C24)融点 : 77−82℃ 5)溶解性 : ジメチルスルホキシド、クロロホルム
、メタノールに易溶 6)定色反応: エーリツヒ反応が陽性7)紫外吸収ス
ペクトル: He’l+ λHax n111(ε) 301(8700)
、231(25600)8)赤外吸収スペクトルニ ジHaX KB’ cm’ 3440.2930.2B70,1650,1590゜
1550、1510.1450.1415.13B0゜
1300.1240,1040. 920. 8009
)旋光度 :[α]。−−113,0° (0,5,E
tOH)[2]化合物B 1)分子m : (高分解能マススペクトル)実験値m
/z : 451.3181理論値 : 451.
3199 (M 、C28H41N302) 2)分子1 : 451(FAB−83m/z :
452(H+旧 )3)分子式 ” C213H4
1N3024)融点: 123−129℃ 5)溶解性 : ジメチルスルホキシド、クロロホルム
、メタノールに易溶 6)定色反応: エーリツヒ反応が陽性7)紫外吸収ス
ペクトル: eOH λHax nm(ε) 287(8140) 、
233(26800)8)赤外吸収スペクトルニ ジHaxKBrC[ll−1 3440、2940,2870,1650,1600゜
1550、1510.1450.1410.1370゜
1055、 920 9)旋光度 :[α] 、 = −164,5° (1
,0,EtOH)以上の性質により、化合物Aはテレオ
シジン八−1に、また化合物BはテレオシジンB−4に
それぞれ一致することが確認された。
(参考文献、
[1] 5cience、204.193 (1979
)[It ] Chem、Pharm、Bu11.、3
2.4233 (1984)[発明の構成] 本発明のテレオシジンを有効成分とするCFU−Cコロ
ニー形成物質は、ストレプトミセス属菌、ストレプトベ
ルティシリウム属菌などの放線菌、例えば、ストレプト
ベルティシリウム・プラストマイセテイカム株(Str
eptoverticillium blast−my
ceticum、IFO12747。以下F−186株
と略称する。)、ストレプトベルティシリウム・オリボ
レテイキュリ(5treptovert ic i l
I ium of 1voret 1−culi)な
どを通常の放線菌培地で培養して、菌体中に産生させ、
通常の分離精製方法により得ることができる。
)[It ] Chem、Pharm、Bu11.、3
2.4233 (1984)[発明の構成] 本発明のテレオシジンを有効成分とするCFU−Cコロ
ニー形成物質は、ストレプトミセス属菌、ストレプトベ
ルティシリウム属菌などの放線菌、例えば、ストレプト
ベルティシリウム・プラストマイセテイカム株(Str
eptoverticillium blast−my
ceticum、IFO12747。以下F−186株
と略称する。)、ストレプトベルティシリウム・オリボ
レテイキュリ(5treptovert ic i l
I ium of 1voret 1−culi)な
どを通常の放線菌培地で培養して、菌体中に産生させ、
通常の分離精製方法により得ることができる。
即ち、本発明における前記の放線菌の培養は、例えば、
炭素源としてはグルコース、シュークロース、マルトー
ス、デキストリン、グリセリン、でんぷん等を、窒素源
としてはペプトン、肉エキス、酵母エキス、麦芽エキス
、カゼイン等を用い、更に無機塩としてはN a C1
、K2 HP 04、MQ304 、CuSO4等を用
いた中性液体培地で通気、攪拌することによって行うこ
とができる。
炭素源としてはグルコース、シュークロース、マルトー
ス、デキストリン、グリセリン、でんぷん等を、窒素源
としてはペプトン、肉エキス、酵母エキス、麦芽エキス
、カゼイン等を用い、更に無機塩としてはN a C1
、K2 HP 04、MQ304 、CuSO4等を用
いた中性液体培地で通気、攪拌することによって行うこ
とができる。
この時、培地のE)Hは、5〜8、好ましくは6〜7付
近がよい。また、培養温度は、通常20〜35℃、好ま
しくは30℃がよい。
近がよい。また、培養温度は、通常20〜35℃、好ま
しくは30℃がよい。
該菌体からのテレオシジンの採取は、アンバーライトX
AD−2を用いた吸・脱着、メタノール抽出、アセトン
抽出、酢酸エチル抽出等の操作、C−8逆相カラムクロ
マトグラフイー(炭素鎖8の直鎮をシリカゲルに結合さ
せた疎水性樹脂)、C−18逆相カラムクロマトグラフ
イー(炭素鎖18の直鎖をシリカゲルに結合させた疎水
性樹脂)、シリカゲルカラムクロマトグラフィー、高速
液体クロマトグラフィー(HPLC)等を用いた操作に
よって行うことができる。
AD−2を用いた吸・脱着、メタノール抽出、アセトン
抽出、酢酸エチル抽出等の操作、C−8逆相カラムクロ
マトグラフイー(炭素鎖8の直鎮をシリカゲルに結合さ
せた疎水性樹脂)、C−18逆相カラムクロマトグラフ
イー(炭素鎖18の直鎖をシリカゲルに結合させた疎水
性樹脂)、シリカゲルカラムクロマトグラフィー、高速
液体クロマトグラフィー(HPLC)等を用いた操作に
よって行うことができる。
本発明のテレオシジンを有効成分とするCFU−Cのコ
ロニー形成物質は、例えば、培養菌体にアセトンを加え
て4℃、16時間静置した後、菌体除去溶液を得、この
溶液を濃縮して水を加えた後、酢酸エチルで抽出を行う
と、本物質は酢酸エチル層に移行する。この抽出液を減
圧濃縮した後、トルエンに溶解し、トルエンで平衡化し
たシリカゲルカラムクロマトを行い、20%アセトン/
トルエンで溶出する。活性画分を濃縮した後C−8逆相
カラムクロマト(メルク社製のLiChrODrepR
P−8使用)にかけ、65%アセトニトリル/水で溶出
を行うと、それぞれ化合物A(テレオシジンA−1)及
び化合物B(テレオシジンB−4)が順次溶出される。
ロニー形成物質は、例えば、培養菌体にアセトンを加え
て4℃、16時間静置した後、菌体除去溶液を得、この
溶液を濃縮して水を加えた後、酢酸エチルで抽出を行う
と、本物質は酢酸エチル層に移行する。この抽出液を減
圧濃縮した後、トルエンに溶解し、トルエンで平衡化し
たシリカゲルカラムクロマトを行い、20%アセトン/
トルエンで溶出する。活性画分を濃縮した後C−8逆相
カラムクロマト(メルク社製のLiChrODrepR
P−8使用)にかけ、65%アセトニトリル/水で溶出
を行うと、それぞれ化合物A(テレオシジンA−1)及
び化合物B(テレオシジンB−4)が順次溶出される。
本物質を減圧乾固すると、白色の単一標品を得ることが
できる。
できる。
以下、本発明を参考例及び実施例によって具体的に示す
。なお、これらの実施例は、本発明を例示するためのも
のであ2て、本発明の範囲を限定するものではない。
。なお、これらの実施例は、本発明を例示するためのも
のであ2て、本発明の範囲を限定するものではない。
参考例1
グルコース1.5%、ペプトン0.5%、肉エキス0.
5%、酵母エキス0.5%、NaC1)0.5%を含む
pH7,4の液体培地100dを500dの坂ロフラス
コに分注し、120℃、20分間滅菌した。この培地に
放線菌F−186株の斜面培地より一白菌耳量を接種し
、30℃、3日間往復振とう培養を行った。この培養液
と同組成の培地2ONを30j!容ジャーファーメンタ
−に仕込み、30℃、150回転/分、通気■毎分10
j!で48時間培養を行った。培養終了後、7000回
転/回転速続遠心分離を行うことによって菌体を採取し
、約800gの菌体を得た。
5%、酵母エキス0.5%、NaC1)0.5%を含む
pH7,4の液体培地100dを500dの坂ロフラス
コに分注し、120℃、20分間滅菌した。この培地に
放線菌F−186株の斜面培地より一白菌耳量を接種し
、30℃、3日間往復振とう培養を行った。この培養液
と同組成の培地2ONを30j!容ジャーファーメンタ
−に仕込み、30℃、150回転/分、通気■毎分10
j!で48時間培養を行った。培養終了後、7000回
転/回転速続遠心分離を行うことによって菌体を採取し
、約800gの菌体を得た。
このようにして得られた培養菌体(400g>にアセト
ン11を加えて4℃、16時間静置した俊、更に1J2
で2回抽出した。ろ紙で国体を除去した後、この濾液を
濃縮し、50%酢酸エチル/水混液11を加えて抽出す
る操作を反復することによって得られた酢酸エチル層の
液を濃縮した後、トルエン−アセトン(9:1)溶液に
溶解し、トルエンで平衡化したシリカゲルカラムクロマ
ト(1、8cmX 25crn’)を行い50%アセト
ン/トルエンで溶出した。活性画分を減圧濃縮後再びト
ルエンに溶解し、トルエンで平衡化したシリカゲルカラ
ムクロマト(4,6cm×30cm>を行い20%アセ
トン/トルエンで溶出した。活性画分を濃縮した後、C
−8逆相カラムクロマト(2,5c!!tx31cm>
にかけ、65%アセトニトリル/水で溶出を行うと、そ
れぞれ化合物A(テレオシジンA−1)及び化合物B(
テレオシジンB−4)が順次溶出された。本物質を減圧
乾固すると、それぞれ28Jffg(テレオシジンA−
1)及び33Irtg(テレオシジンB−4)の白色単
一標品を得ることができた。
ン11を加えて4℃、16時間静置した俊、更に1J2
で2回抽出した。ろ紙で国体を除去した後、この濾液を
濃縮し、50%酢酸エチル/水混液11を加えて抽出す
る操作を反復することによって得られた酢酸エチル層の
液を濃縮した後、トルエン−アセトン(9:1)溶液に
溶解し、トルエンで平衡化したシリカゲルカラムクロマ
ト(1、8cmX 25crn’)を行い50%アセト
ン/トルエンで溶出した。活性画分を減圧濃縮後再びト
ルエンに溶解し、トルエンで平衡化したシリカゲルカラ
ムクロマト(4,6cm×30cm>を行い20%アセ
トン/トルエンで溶出した。活性画分を濃縮した後、C
−8逆相カラムクロマト(2,5c!!tx31cm>
にかけ、65%アセトニトリル/水で溶出を行うと、そ
れぞれ化合物A(テレオシジンA−1)及び化合物B(
テレオシジンB−4)が順次溶出された。本物質を減圧
乾固すると、それぞれ28Jffg(テレオシジンA−
1)及び33Irtg(テレオシジンB−4)の白色単
一標品を得ることができた。
実施例1
本物質のCFU−Cコロニー形成活性の測定は、以下に
示す方法により行った。
示す方法により行った。
I6Rマウス骨゛髄細胞(1X 105cel Is/
dish)に牛胎児血清(30%)、ウシ血清アルブミ
ン(1%)、2−メルカプトエタノール(IXlo−’
H)及び被験化合物を添加し、0.8%メチルセルロー
ス中、5%CO2雰囲気下、37℃で7日間培養し、5
0個以上からなる細胞集団を1コロニー数として算定し
た。
dish)に牛胎児血清(30%)、ウシ血清アルブミ
ン(1%)、2−メルカプトエタノール(IXlo−’
H)及び被験化合物を添加し、0.8%メチルセルロー
ス中、5%CO2雰囲気下、37℃で7日間培養し、5
0個以上からなる細胞集団を1コロニー数として算定し
た。
表1に示す通り、被験化合物の濃度を種々変えて測定を
行なった結果、本物質は強いCFU−C;コロニー形成
活性を持つことが認められた。
行なった結果、本物質は強いCFU−C;コロニー形成
活性を持つことが認められた。
表 1
化合物 濃度(、M)CFU−(コ/dis
h)テレオシジンA−11XIO−532 ゛−6 1X10 3B 1X10 17 1X’l0−8 6 1X10’ 0 テレオシジンB−41X10” 401X10
36 ’1X10 20 1X10−8 1 1X10”9 5 実施例2 ICRマウス(6退会)骨髄より骨髄細胞(1x 10
5cclls/dish ) ヲ採取し、牛胎児血清(
30%)、ウシ血清アルブミン(1%)、2−メルカプ
トエタノール(1x10 M)、テレオシジンA−1
(1X10”6M> 、テレオシジンB−4(I X
10”6M) tタハcs F−CIIUGAI (中
外製薬製)の被験物質を添加し、0.8%メチルセルロ
ース中、5%CO2雰囲気下、37℃で7日間培養し、
コロニー数を算定した。その結果を表2に示す。
h)テレオシジンA−11XIO−532 ゛−6 1X10 3B 1X10 17 1X’l0−8 6 1X10’ 0 テレオシジンB−41X10” 401X10
36 ’1X10 20 1X10−8 1 1X10”9 5 実施例2 ICRマウス(6退会)骨髄より骨髄細胞(1x 10
5cclls/dish ) ヲ採取し、牛胎児血清(
30%)、ウシ血清アルブミン(1%)、2−メルカプ
トエタノール(1x10 M)、テレオシジンA−1
(1X10”6M> 、テレオシジンB−4(I X
10”6M) tタハcs F−CIIUGAI (中
外製薬製)の被験物質を添加し、0.8%メチルセルロ
ース中、5%CO2雰囲気下、37℃で7日間培養し、
コロニー数を算定した。その結果を表2に示す。
表 2
化合物 濃度(M)
CFtl−(+/dish)
テレオシジント4 1XIO’ 36[発明の
効果] 本発明のテレオシジンを有効成分とするコロニー形成物
質は、顆粒球減少等の治療薬、細菌・ウィルス等の感染
症の予防・治療薬としての利用を期待できるものである
。
効果] 本発明のテレオシジンを有効成分とするコロニー形成物
質は、顆粒球減少等の治療薬、細菌・ウィルス等の感染
症の予防・治療薬としての利用を期待できるものである
。
Claims (1)
- テレオシジンを有効成分とする顆粒球系前駆細胞のコロ
ニー形成物質
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63227504A JPH07100030B2 (ja) | 1988-09-13 | 1988-09-13 | 顆粒球系前駆体細胞のコロニー形成物質 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63227504A JPH07100030B2 (ja) | 1988-09-13 | 1988-09-13 | 顆粒球系前駆体細胞のコロニー形成物質 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02249483A true JPH02249483A (ja) | 1990-10-05 |
JPH07100030B2 JPH07100030B2 (ja) | 1995-11-01 |
Family
ID=16861931
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63227504A Expired - Lifetime JPH07100030B2 (ja) | 1988-09-13 | 1988-09-13 | 顆粒球系前駆体細胞のコロニー形成物質 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH07100030B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP3507395B2 (ja) | 2000-03-03 | 2004-03-15 | 株式会社日立製作所 | 回転電機及びそれを用いた電動車両 |
-
1988
- 1988-09-13 JP JP63227504A patent/JPH07100030B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH07100030B2 (ja) | 1995-11-01 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
EXPY | Cancellation because of completion of term |