JPH0213390A - タベルソニン誘導体の製造方法 - Google Patents
タベルソニン誘導体の製造方法Info
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- JPH0213390A JPH0213390A JP63160971A JP16097188A JPH0213390A JP H0213390 A JPH0213390 A JP H0213390A JP 63160971 A JP63160971 A JP 63160971A JP 16097188 A JP16097188 A JP 16097188A JP H0213390 A JPH0213390 A JP H0213390A
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Landscapes
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- Breeding Of Plants And Reproduction By Means Of Culturing (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
この発明は、急性白血病5M性リンパ腫及び小児腫瘍等
の治療薬として重要なビンクリスチンやビンブラスチン
の生合成中間体と考えられるタベルソニン(taber
sonine)誘導体の製造方法に関する。
の治療薬として重要なビンクリスチンやビンブラスチン
の生合成中間体と考えられるタベルソニン(taber
sonine)誘導体の製造方法に関する。
[従来の技術]
タベルソニンは、キョウチクトウ科チョウジソウ属の多
年生植物であるチョウジソウ(A■5oniaelli
ptica Roes、 eL、 5chulL)やア
メリカチョウジソウ(A、 tabernaemonL
ana Waft)の種子に多く含まれているアスピド
スペルマ型のインドールアルカロイドである。急性白血
病、悪性リンパ腫及び小児腫瘍等の治療薬として重要な
ビンクリスチン(vincristine)やビンブラ
スチン(vinblastine)はビンドリン(vi
ndoline)とカタランチン(catharanL
hine)を構成単位として成る二量体である。タベル
ソニンは、そのビンドリンの生合成中間体の−っである
と考えられている。
年生植物であるチョウジソウ(A■5oniaelli
ptica Roes、 eL、 5chulL)やア
メリカチョウジソウ(A、 tabernaemonL
ana Waft)の種子に多く含まれているアスピド
スペルマ型のインドールアルカロイドである。急性白血
病、悪性リンパ腫及び小児腫瘍等の治療薬として重要な
ビンクリスチン(vincristine)やビンブラ
スチン(vinblastine)はビンドリン(vi
ndoline)とカタランチン(catharanL
hine)を構成単位として成る二量体である。タベル
ソニンは、そのビンドリンの生合成中間体の−っである
と考えられている。
現在、ビンクリスチン又はビンクリスチンの製造は、ニ
チニチソウ植物体からの抽出によって行なわれており、
植物のカルス培養を利用した方法は知られていない。さ
らに、ニチニチソウのカルス培養によりビンドリンの生
成か認められた例もない、もし、タベルソニンからの上
記タベルソニン誘導体の合成が組織培養を利用して行な
うことかできれば、ビンクリスチン又はビンブラスチン
の化学合成の原料になるので有利である。
チニチソウ植物体からの抽出によって行なわれており、
植物のカルス培養を利用した方法は知られていない。さ
らに、ニチニチソウのカルス培養によりビンドリンの生
成か認められた例もない、もし、タベルソニンからの上
記タベルソニン誘導体の合成が組織培養を利用して行な
うことかできれば、ビンクリスチン又はビンブラスチン
の化学合成の原料になるので有利である。
一方、ビンカ属植物であるニチニチソウの組織培養に関
する先行技術としては特開昭61−124:191号及
び特開昭62−44174号ニニチニチソウのカルス又
は腫瘍組織の培養培地中にハイドロキノンを添加するこ
とによりアルブチンを高収率で得る方法が記載されてい
る。また、特開昭51−274694にアクロバクテリ
ウム属に属する微生物をビンカ属植物に感染させ、その
形質転換された培養細胞よりビンカアルカロイドを採取
する方法が記載されている。さらに、特開昭51−25
4127号にニチニチソウのアルカロイド高生産能を持
つ器官培養株からビンカアルカロイドを回収する方法が
記載されている。これらの先行技術はいずれもニチニチ
ソウの組織培養を利用しているが、タベルソニン誘導体
の製造とは無関係である。
する先行技術としては特開昭61−124:191号及
び特開昭62−44174号ニニチニチソウのカルス又
は腫瘍組織の培養培地中にハイドロキノンを添加するこ
とによりアルブチンを高収率で得る方法が記載されてい
る。また、特開昭51−274694にアクロバクテリ
ウム属に属する微生物をビンカ属植物に感染させ、その
形質転換された培養細胞よりビンカアルカロイドを採取
する方法が記載されている。さらに、特開昭51−25
4127号にニチニチソウのアルカロイド高生産能を持
つ器官培養株からビンカアルカロイドを回収する方法が
記載されている。これらの先行技術はいずれもニチニチ
ソウの組織培養を利用しているが、タベルソニン誘導体
の製造とは無関係である。
[発明か解決しようとする問題点]
この発明の目的は、植物組織培養による、タベルソニン
からのタベルソニン誘導体の筒便な製造方法を提供する
ことである。
からのタベルソニン誘導体の筒便な製造方法を提供する
ことである。
[問題点を解決するための手段]
本願発明者らは、鋭意研究の結果、ビンカ屈に属する植
物のカルス又は茎葉器官培養株の組織培養培地中にタベ
ルソニンを添加して組織培養を行なうと、培養物中に多
量のタベルソニン変換物が蓄積されることを見出し、こ
の発明を完成した。
物のカルス又は茎葉器官培養株の組織培養培地中にタベ
ルソニンを添加して組織培養を行なうと、培養物中に多
量のタベルソニン変換物が蓄積されることを見出し、こ
の発明を完成した。
すなわち、この発明は、ビンカ属に属する植物のカルス
又は茎葉器官培養株の組織培養培地中にタベルソニンを
添加して組織培養を行ない、培養物よりタベルソニン誘
導体を回収することを含むタベルソニン誘導体の製造方
法を提供する。
又は茎葉器官培養株の組織培養培地中にタベルソニンを
添加して組織培養を行ない、培養物よりタベルソニン誘
導体を回収することを含むタベルソニン誘導体の製造方
法を提供する。
[発明の効果1
この発明により、タベルソニンからのタベルソニン誘導
体の合成か、植物組織培養により簡便に行なうことがで
きるようになった。タベルソニン誘導体は、上述のよう
に、医薬品として1要なビンクリスチンやビンブラスチ
ンの中間体であると考えられるのて、この発明により、
ビンクリスチンやビンブラスチンの化学合成のための原
料を容易に提供できるようになった。
体の合成か、植物組織培養により簡便に行なうことがで
きるようになった。タベルソニン誘導体は、上述のよう
に、医薬品として1要なビンクリスチンやビンブラスチ
ンの中間体であると考えられるのて、この発明により、
ビンクリスチンやビンブラスチンの化学合成のための原
料を容易に提供できるようになった。
[発明の詳細な説明]
この発明の方法に用いられるビンカ属に属する植物は、
ビンカ属に属するものであればいずれのものであっても
よいか、好ましい例としてニチニチソウ(Vinca
rosea)、ヒメツルニチニチソウ(Vinca m
1nor)及びビンカ・シホルミス(Vinca di
fformis)を挙げることかでき、最も好ましくは
ニチニチソウである。
ビンカ属に属するものであればいずれのものであっても
よいか、好ましい例としてニチニチソウ(Vinca
rosea)、ヒメツルニチニチソウ(Vinca m
1nor)及びビンカ・シホルミス(Vinca di
fformis)を挙げることかでき、最も好ましくは
ニチニチソウである。
カルス又は茎葉器官培養株の出発原料はビンカ属植物の
いずれの組織に由来するものであってもよいが、カルス
の誘導においては茎、葉、葉柄部が好ましく、茎葉器官
培養株の誘導においては無菌化した種子より発芽させた
幼芽が好ましい。
いずれの組織に由来するものであってもよいが、カルス
の誘導においては茎、葉、葉柄部が好ましく、茎葉器官
培養株の誘導においては無菌化した種子より発芽させた
幼芽が好ましい。
これを常法に従い、オーキシン及びサイトカイニンを添
加した培地で培養すればカルス又は茎葉器官培養株が得
られる。すなわち、カルス誘導においては、組織片を例
えば70%エタノール水溶液及び5%次亜塩素酸ナトリ
ウム水溶液等を用いて無菌化し、オーキシンやサイトカ
イニン等の植物成長Jl箇物質とショ糖等の炭素源を含
んだ寒天栄養培地とに置床する。これを通常20°Cな
いし30°Cの温度下、好ましくは25°Cの暗所下に
て培養を行なうことによりカルスを誘導できる。
加した培地で培養すればカルス又は茎葉器官培養株が得
られる。すなわち、カルス誘導においては、組織片を例
えば70%エタノール水溶液及び5%次亜塩素酸ナトリ
ウム水溶液等を用いて無菌化し、オーキシンやサイトカ
イニン等の植物成長Jl箇物質とショ糖等の炭素源を含
んだ寒天栄養培地とに置床する。これを通常20°Cな
いし30°Cの温度下、好ましくは25°Cの暗所下に
て培養を行なうことによりカルスを誘導できる。
一方、茎葉器官培養株の誘導においては、種子をE記と
同様の方法で無菌化し、植物成長物質を含まない寒天栄
養培地上で発芽させ、この幼芽を植物成長物質物質を含
んだ寒天栄養培地上で通常20℃ないし30℃の温度下
、好ましくは25℃の明所下(約1000〜4000ル
クスの光照射下)において培養することにより多数の分
岐が認められる茎葉器官培養株(multiple 5
hoot culture)か誘導される。カルス誘導
並びに茎葉器官培養株の誘導の際に用いる寒天培養培地
は公知の植物組織培養に用いられるいかなるものでも使
用することかできる0例えばMurashige &
Skoog培地(Physiol、 Plant、 、
15.473 (1962))に必要に応じて植物成
長物質として2.4−シクロロブエノキシ酢酸(2,4
−D)等のオーキシン類や6−ベンジルアデニン(6−
BA)等のサイトカイニン類、さらに炭素源としてショ
糖等を添加した寒天培地を用いることができる。添加す
るオーキシン類及すイトカイニン類の濃度は通常10
mg/fj、以下か好ましく、ショ糖及び寒天の濃度は
それぞれ2〜3重量%及び0.6〜1.0重量%、好ま
しくは3重量%及び0.9重量%である。
同様の方法で無菌化し、植物成長物質を含まない寒天栄
養培地上で発芽させ、この幼芽を植物成長物質物質を含
んだ寒天栄養培地上で通常20℃ないし30℃の温度下
、好ましくは25℃の明所下(約1000〜4000ル
クスの光照射下)において培養することにより多数の分
岐が認められる茎葉器官培養株(multiple 5
hoot culture)か誘導される。カルス誘導
並びに茎葉器官培養株の誘導の際に用いる寒天培養培地
は公知の植物組織培養に用いられるいかなるものでも使
用することかできる0例えばMurashige &
Skoog培地(Physiol、 Plant、 、
15.473 (1962))に必要に応じて植物成
長物質として2.4−シクロロブエノキシ酢酸(2,4
−D)等のオーキシン類や6−ベンジルアデニン(6−
BA)等のサイトカイニン類、さらに炭素源としてショ
糖等を添加した寒天培地を用いることができる。添加す
るオーキシン類及すイトカイニン類の濃度は通常10
mg/fj、以下か好ましく、ショ糖及び寒天の濃度は
それぞれ2〜3重量%及び0.6〜1.0重量%、好ま
しくは3重量%及び0.9重量%である。
このようにして誘導したカルス又は茎葉器官培養株を上
記の培地から寒天を除いた液体培地に移植し、培養する
。培養は振盪しながら行なうことか好ましい、振盪培養
は回転式、往復式のいずれでもよいか、カルスの場合は
往復式、茎葉器官培養株の場合は回転式が好ましい、す
なわち、カルスの懸濁培養においては振幅数50〜10
0 sps、好ましくは80spm、茎葉器官培養株の
液体培養においては回転数10 rpm以下、好ましく
は2〜4rp醜の回転振盪培養を行なうことか好ましい
。
記の培地から寒天を除いた液体培地に移植し、培養する
。培養は振盪しながら行なうことか好ましい、振盪培養
は回転式、往復式のいずれでもよいか、カルスの場合は
往復式、茎葉器官培養株の場合は回転式が好ましい、す
なわち、カルスの懸濁培養においては振幅数50〜10
0 sps、好ましくは80spm、茎葉器官培養株の
液体培養においては回転数10 rpm以下、好ましく
は2〜4rp醜の回転振盪培養を行なうことか好ましい
。
培養中は光を照射することが好ましいが、カルスの懸濁
培養の場合には暗所下での培養も行なうことができる。
培養の場合には暗所下での培養も行なうことができる。
培養温度は20℃ないし30℃が好ましく、25℃か最
も好ましい。
も好ましい。
この培養において、培地中にタベルソニンか添加される
。タベルソニンの添加はカルス又は茎葉器官ポ養株の移
植と同時か又は移植後約20日以内であればいつでもよ
いが、好ましくは7日目から144日目間に行なう、ま
た、タベルソニンの添加量は培地当たり約ZOOpp■
C34gM)以下であればいずれの濃度でもタベルソニ
ン誘導体は生産されるが、特に100 pp■(67#
M)程度が好ましい、タベルソニン添加後の培養日数は
好ましくは1〜14日、特に好ましくは1週間程度であ
り、その後、培養液と細胞とに分離して生成されたタベ
ルソニン誘導体を回収する。
。タベルソニンの添加はカルス又は茎葉器官ポ養株の移
植と同時か又は移植後約20日以内であればいつでもよ
いが、好ましくは7日目から144日目間に行なう、ま
た、タベルソニンの添加量は培地当たり約ZOOpp■
C34gM)以下であればいずれの濃度でもタベルソニ
ン誘導体は生産されるが、特に100 pp■(67#
M)程度が好ましい、タベルソニン添加後の培養日数は
好ましくは1〜14日、特に好ましくは1週間程度であ
り、その後、培養液と細胞とに分離して生成されたタベ
ルソニン誘導体を回収する。
タベルソニン誘導体は、細胞(又は茎葉器官培養株)内
及び培養液中の両方から回収することかできる。ホモジ
ナイズした細胞(又は茎葉器官培養株)又は培養液を例
えば酢酸エチルのような有機溶媒で抽出し、例えば逆相
高速液体クロマトグラフィーによって分取することによ
ってタベルソニン誘導体を得ることができる。
及び培養液中の両方から回収することかできる。ホモジ
ナイズした細胞(又は茎葉器官培養株)又は培養液を例
えば酢酸エチルのような有機溶媒で抽出し、例えば逆相
高速液体クロマトグラフィーによって分取することによ
ってタベルソニン誘導体を得ることができる。
この発明の方法によると、主としてロクネリシン及びロ
クネリニンを得ることかできる。
クネリニンを得ることかできる。
[実施例]
以下、この発明を実施例に基づいてより具体的に説明す
る。この発明は、下記実施例に限定されるものではない
。なお、下記実施例において、%は特に明示のない限り
f[量%を意味する。
る。この発明は、下記実施例に限定されるものではない
。なお、下記実施例において、%は特に明示のない限り
f[量%を意味する。
実施例1
(1)ニチニチソウカルスの誘導
マダガスカル産ニチニチソウ(Vinca rosea
L、)の植物体より新鮮な葉又は茎を摘出し、水で洗浄
後、70%エタノール水溶液に数秒間浸漬し、減菌水で
3回洗浄した0次に5%次亜塩素酸ナトリウム水溶液に
5〜15分間浸漬して再度滅菌水で3回洗浄した。この
ようにして無菌化した組織を51■角程度の大きさに切
断し、これを1.01g/交の2.4−Dと0.1亀g
/fLのカイネチンを含むMurashige & S
koog寒天培地(ショ糖3%、寒天0.9%)に置床
し、25°C1暗所下で3週間培養することにより組織
切片よりカルスが形成された。
L、)の植物体より新鮮な葉又は茎を摘出し、水で洗浄
後、70%エタノール水溶液に数秒間浸漬し、減菌水で
3回洗浄した0次に5%次亜塩素酸ナトリウム水溶液に
5〜15分間浸漬して再度滅菌水で3回洗浄した。この
ようにして無菌化した組織を51■角程度の大きさに切
断し、これを1.01g/交の2.4−Dと0.1亀g
/fLのカイネチンを含むMurashige & S
koog寒天培地(ショ糖3%、寒天0.9%)に置床
し、25°C1暗所下で3週間培養することにより組織
切片よりカルスが形成された。
(2)ニチニチソウカルスの継代培養
(1)で誘導されたカルスな表1に示した寒天栄養培地
(ショ糖3%、寒天0.9%)又は同組成の液体培地に
より3週間毎に継代培養を行なった。培養は25°C暗
所下又は明所下(3000ルクス、12時間光照射)に
おいて、静置培養又は往復振盪培養(805pa)を行
ない、増殖させた。
(ショ糖3%、寒天0.9%)又は同組成の液体培地に
より3週間毎に継代培養を行なった。培養は25°C暗
所下又は明所下(3000ルクス、12時間光照射)に
おいて、静置培養又は往復振盪培養(805pa)を行
ない、増殖させた。
表1
培地番号 植物成長調flJ物質(■g/見) 基本培
地l NAA 1.K O,1,(GA O,1
り RT2 2.4−DI、KO,l、(CA
O,l$) RT3 NAAI、KO,l
MS4 rAA O,2,6−B
A 2 M 5NAA :ナフタレン酢酸
、K:カイネチンCA:カザミノ酸、IAA:インドー
ル酢酸&−BA: 6−ベンジルアデニン、 RT : Revised Tobacco培地(3%
ショ糖含有)M S : Murashige & S
koog培地<3%ショ糖含有)(3)タベルソニンの
調製 添加するタベルソニンはニチニチソウと同じキョウチク
トウ科に届するチョウジソウ属植物の種子より調製した
。すなわち、アメリカチョウジソウ(A@5onia
tabernaeglontana Wait)の種子
、3.12 kg (生重量)より公知の方法[Ch
el。
地l NAA 1.K O,1,(GA O,1
り RT2 2.4−DI、KO,l、(CA
O,l$) RT3 NAAI、KO,l
MS4 rAA O,2,6−B
A 2 M 5NAA :ナフタレン酢酸
、K:カイネチンCA:カザミノ酸、IAA:インドー
ル酢酸&−BA: 6−ベンジルアデニン、 RT : Revised Tobacco培地(3%
ショ糖含有)M S : Murashige & S
koog培地<3%ショ糖含有)(3)タベルソニンの
調製 添加するタベルソニンはニチニチソウと同じキョウチク
トウ科に届するチョウジソウ属植物の種子より調製した
。すなわち、アメリカチョウジソウ(A@5onia
tabernaeglontana Wait)の種子
、3.12 kg (生重量)より公知の方法[Ch
el。
Pharm、 Bull、、 26.1182 (19
78)]でタベJレソニンを抽出し、約4.4gの結晶
を得た。
78)]でタベJレソニンを抽出し、約4.4gの結晶
を得た。
(4)タベルソニン誘導体の製造
1記(2)で誘導したニチニチソウカルスlO〜15g
を表1に示す培J′I11の液体培地(250ml培地
/1文フラスコ)に移植し、約3000ルクスの光照射
下(12時間照射)、25℃で往復振盪培養(80sp
m)を行なった。この前培養の行程は2週間で終了し、
さらに同組成の液体培地に移植した。に、記の条件で2
週間振盪培養後、少量の水に溶かしたタベルソニンを培
地当たりの最終濃度かtoo pp霞(67uM)とな
るように無菌的に添加した。さらに、タベルソニン添加
後1週間培養した後、培養液と細胞に分け、タベルソニ
ン誘導体を回収した。
を表1に示す培J′I11の液体培地(250ml培地
/1文フラスコ)に移植し、約3000ルクスの光照射
下(12時間照射)、25℃で往復振盪培養(80sp
m)を行なった。この前培養の行程は2週間で終了し、
さらに同組成の液体培地に移植した。に、記の条件で2
週間振盪培養後、少量の水に溶かしたタベルソニンを培
地当たりの最終濃度かtoo pp霞(67uM)とな
るように無菌的に添加した。さらに、タベルソニン添加
後1週間培養した後、培養液と細胞に分け、タベルソニ
ン誘導体を回収した。
(5)タベルソニン誘導体の回収
培a物をナイロンクロスでろ過し、細胞と培養液に分け
、細胞はホモジナイズ後メタノールにて抽出を行ない、
該抽出物をlNllClに溶かした後、酢酸エチルを用
い゛C溶媒分離を行なった。得られた水層分画はさらに
炭酸水素ナトリウムによりpHを8〜9にmfM後、再
び酢酸エチルにより溶媒分離し、該抽出物を得た。一方
、培養液はアンモニアアルカリ性とした後、酢酸エチル
で溶媒分離を行ない、同様に酢酸エチル抽出物を得た。
、細胞はホモジナイズ後メタノールにて抽出を行ない、
該抽出物をlNllClに溶かした後、酢酸エチルを用
い゛C溶媒分離を行なった。得られた水層分画はさらに
炭酸水素ナトリウムによりpHを8〜9にmfM後、再
び酢酸エチルにより溶媒分離し、該抽出物を得た。一方
、培養液はアンモニアアルカリ性とした後、酢酸エチル
で溶媒分離を行ない、同様に酢酸エチル抽出物を得た。
該抽出物に含まれるタベルソニン誘導体を逆相のカラム
を用いた高速液体クロマトグラフィーにより分取した。
を用いた高速液体クロマトグラフィーにより分取した。
この逆相高速液体クロマトグラフィーの具体的条件はカ
ラムにODSカラム(10x 300−謹)を使用し、
移動相としてアセトニトリル−酢酸アンモニウム(0,
0511)バッファー(50:42、pH4,0)を毎
分41の速度で流し、UV300n論で検出を行なった
0分取した分画を質量分析、赤外吸収、 ’II−NM
R及び1コC−NIIIRで分析した結果、主としてタ
ベルソニンがエポキシ化されたロクネリシン及びタベル
ソニンがメトキシ化されたロクネリンか回収されたこと
が判明し、その生産量はそれぞれ45.8.M及び5.
4井Mであった。なお、上記分析結果を下記に示す。
ラムにODSカラム(10x 300−謹)を使用し、
移動相としてアセトニトリル−酢酸アンモニウム(0,
0511)バッファー(50:42、pH4,0)を毎
分41の速度で流し、UV300n論で検出を行なった
0分取した分画を質量分析、赤外吸収、 ’II−NM
R及び1コC−NIIIRで分析した結果、主としてタ
ベルソニンがエポキシ化されたロクネリシン及びタベル
ソニンがメトキシ化されたロクネリンか回収されたこと
が判明し、その生産量はそれぞれ45.8.M及び5.
4井Mであった。なお、上記分析結果を下記に示す。
ロクネリシン
性状:無色結晶
融点=193℃〜195℃
比旋光度: [a ]n= −505,9°(c−0,
10,EtOH)I R”’ cm−’ :コ375
(N)1)、2115[1−2750(ボールにヘメ マンハント)、1670(共役エステルC=0)、16
10 (共役C=C) 質量スペクトルm/z: 352(M”)、214,1
38’+1−NMRδ: 0.74(:IH,t、 J
−17,5Hz、 18−Hz)、179 (3H,s
、 (:OOMe)、 [i、8G−7,15(411
,m、 Arom。
10,EtOH)I R”’ cm−’ :コ375
(N)1)、2115[1−2750(ボールにヘメ マンハント)、1670(共役エステルC=0)、16
10 (共役C=C) 質量スペクトルm/z: 352(M”)、214,1
38’+1−NMRδ: 0.74(:IH,t、 J
−17,5Hz、 18−Hz)、179 (3H,s
、 (:OOMe)、 [i、8G−7,15(411
,m、 Arom。
H)、 8.9:l (111,br、 s、 N)I
)ロクネリニン 性状:無色結晶 融点:167℃〜169℃ 比旋光度: [a ] o = −86,4’(csO
,22,EtOII)I RKQ’ cm−’ : 3
375(NH)、2850−2750 (ボールマンハ
ンド)、1675(共役エステルC=0)。
)ロクネリニン 性状:無色結晶 融点:167℃〜169℃ 比旋光度: [a ] o = −86,4’(csO
,22,EtOII)I RKQ’ cm−’ : 3
375(NH)、2850−2750 (ボールマンハ
ンド)、1675(共役エステルC=0)。
1615 (共役C=C)
質量スペクトルmHz:コ82(M”)、244.13
8’II−NMRδ: [1,74(3H,t、 J−
7,5fiz、 18−H3)、3.79 (3H,s
、 COOMe)、 5.37 CIH,dd、 J=
8.2Hz、。
8’II−NMRδ: [1,74(3H,t、 J−
7,5fiz、 18−H3)、3.79 (3H,s
、 COOMe)、 5.37 CIH,dd、 J=
8.2Hz、。
1O−H)、 6.40 (Ill、 d、 J−Hl
z、 12−H)、 7.01 (Ill。
z、 12−H)、 7.01 (Ill。
d、 JJHz、 9−1f)、 8.89 (LH,
br、s、、 N11)一方、比較のため、上記(4)
においてタベルンニンを加えないことを除き、上記と同
様の操作を行なったところ、ロクネリシンもロクネリニ
ンも全く検出されなかった。
br、s、、 N11)一方、比較のため、上記(4)
においてタベルンニンを加えないことを除き、上記と同
様の操作を行なったところ、ロクネリシンもロクネリニ
ンも全く検出されなかった。
裏ム亘ユ
実施例1(4)における培養を、表1に示す培地3の液
体培地を用いることを除いて実施例1と同様の操作を行
なった。その結果、実施例1と同様ロクネリシン及びロ
クネリニンが得られ、その生産量はそれぞれ31.9.
li及び8.9μMであった。
体培地を用いることを除いて実施例1と同様の操作を行
なった。その結果、実施例1と同様ロクネリシン及びロ
クネリニンが得られ、その生産量はそれぞれ31.9.
li及び8.9μMであった。
Claims (2)
- (1)ビンカ属に属する植物のカルス又は茎葉器官培養
株の組織培養培地中にタベルソニンを添加して組織培養
を行ない、培養物よりタベルソニン誘導体を回収するこ
とを含むタベルソニン誘導体の製造方法。 - (2)前記ビンカ属に属する植物はニチニチソウである
請求項1記載の方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63160971A JPH0213390A (ja) | 1988-06-30 | 1988-06-30 | タベルソニン誘導体の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63160971A JPH0213390A (ja) | 1988-06-30 | 1988-06-30 | タベルソニン誘導体の製造方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0213390A true JPH0213390A (ja) | 1990-01-17 |
Family
ID=15726119
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63160971A Pending JPH0213390A (ja) | 1988-06-30 | 1988-06-30 | タベルソニン誘導体の製造方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0213390A (ja) |
-
1988
- 1988-06-30 JP JP63160971A patent/JPH0213390A/ja active Pending
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