JP3162217B2 - タキサン型ジテルペンの製造方法 - Google Patents
タキサン型ジテルペンの製造方法Info
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、卵巣癌、乳癌、肺癌等
の治療薬として期待されるタキソールを含むタキサン型
ジテルペンの製造方法に関する。
の治療薬として期待されるタキソールを含むタキサン型
ジテルペンの製造方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】卵巣癌、乳癌、肺癌等の治療薬として期
待されるタキソール(Taxol) は、イチイ科イチイ属植物
であるタイヘイヨウイチイ(Taxus brevifolia NUTT) よ
り単離同定されたタキサン型ジテルペンであり、活性と
関連する複雑なエステルグループを有している。タキソ
ールはタイヘイヨウイチイ植物体中のいたる部分にも存
在し、その含量は樹皮で最も高いことが報告されてい
る。現在、タキソールの製造は天然の又は栽培された植
物体中から採取することにより行われているが、イチイ
属植物は地上２０ｃｍの高さに成長するのに１０年以上
かかる生育の遅い植物であり、また樹皮を剥ぐと木が枯
れてしまうことから容易に大量のタキソールを得ること
は困難である。もし、タキソール又はタキソールの前駆
物質であるバッカチンIII(baccatin III )等のタキサン
型ジテルペンの合成が組織培養を利用して行うことがで
きれば、樹木を伐採することなく、大量のタキソールを
容易に得ることができるので有利である。
待されるタキソール(Taxol) は、イチイ科イチイ属植物
であるタイヘイヨウイチイ(Taxus brevifolia NUTT) よ
り単離同定されたタキサン型ジテルペンであり、活性と
関連する複雑なエステルグループを有している。タキソ
ールはタイヘイヨウイチイ植物体中のいたる部分にも存
在し、その含量は樹皮で最も高いことが報告されてい
る。現在、タキソールの製造は天然の又は栽培された植
物体中から採取することにより行われているが、イチイ
属植物は地上２０ｃｍの高さに成長するのに１０年以上
かかる生育の遅い植物であり、また樹皮を剥ぐと木が枯
れてしまうことから容易に大量のタキソールを得ること
は困難である。もし、タキソール又はタキソールの前駆
物質であるバッカチンIII(baccatin III )等のタキサン
型ジテルペンの合成が組織培養を利用して行うことがで
きれば、樹木を伐採することなく、大量のタキソールを
容易に得ることができるので有利である。
【０００３】これまでの植物の培養細胞を利用したタキ
ソールの生産法については、タイヘイヨウイチイ(Taxus
brevifolia NUTT) 培養細胞による生産法が特許（米国
特許第5019504 号）になっており、タキソール生産量は
1 〜3mg/l と記載されている。一方、タキソール生産法
の先行技術としては、タキソール生合成前駆体であるバ
ッカチンIII からの半合成法がHoltonらによって特許に
なっている（米国特許第5015744 号）。組織培養法は大
量の植物組織を必要としないことから、更にタキソール
生産に有利である。
ソールの生産法については、タイヘイヨウイチイ(Taxus
brevifolia NUTT) 培養細胞による生産法が特許（米国
特許第5019504 号）になっており、タキソール生産量は
1 〜3mg/l と記載されている。一方、タキソール生産法
の先行技術としては、タキソール生合成前駆体であるバ
ッカチンIII からの半合成法がHoltonらによって特許に
なっている（米国特許第5015744 号）。組織培養法は大
量の植物組織を必要としないことから、更にタキソール
生産に有利である。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、植物組織培
養によるタキサン型ジテルペンの簡便な製造方法を提供
することを目的とする。
養によるタキサン型ジテルペンの簡便な製造方法を提供
することを目的とする。
【０００５】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、鋭意研究
の結果、タキサン型ジテルペンを産生する植物の培養細
胞又は培養組織の組織培養培地中にココナツミルクを添
加して組織培養を行うと、培養物中のタキサン型ジテル
ペン生産性が向上することを見出し、本発明を完成する
に至った。
の結果、タキサン型ジテルペンを産生する植物の培養細
胞又は培養組織の組織培養培地中にココナツミルクを添
加して組織培養を行うと、培養物中のタキサン型ジテル
ペン生産性が向上することを見出し、本発明を完成する
に至った。
【０００６】即ち、本発明のタキサン型ジテルペンの製
造方法は、タキサン型ジテルペンを産生する植物の培養
細胞又は培養組織の組織培養培地中にココナツミルクを
添加して組織培養を行い、培養物よりタキサン型ジテル
ペンを採取することを特徴とするものである。本発明の
製造方法の対象となるタキサン型ジテルペンとしては、
タキサン骨格を有するジテルペンであれば特に制限はな
く、例えばタキソール、バッカチンIII 、セファロマニ
ン、１０−デアセチルバッカチンIII が挙げられる。
造方法は、タキサン型ジテルペンを産生する植物の培養
細胞又は培養組織の組織培養培地中にココナツミルクを
添加して組織培養を行い、培養物よりタキサン型ジテル
ペンを採取することを特徴とするものである。本発明の
製造方法の対象となるタキサン型ジテルペンとしては、
タキサン骨格を有するジテルペンであれば特に制限はな
く、例えばタキソール、バッカチンIII 、セファロマニ
ン、１０−デアセチルバッカチンIII が挙げられる。
【０００７】本発明の製造方法において組織培養に用い
られるタキサン型ジテルペンを産生する植物としては、
例えば、セイヨウイチイ(Taxus baccata LINN)、イチイ
(T.cuspidata SIEB.et ZUCC) 、キャラボク(T. cuspida
ta SIEB.et ZUCC var. nanaREHDER)、タイヘイヨウイチ
イ(T. brevifolia NUTT)、カナダイチイ( T. canadiens
is MARSH) 等のイチイ属植物が挙げられる。
られるタキサン型ジテルペンを産生する植物としては、
例えば、セイヨウイチイ(Taxus baccata LINN)、イチイ
(T.cuspidata SIEB.et ZUCC) 、キャラボク(T. cuspida
ta SIEB.et ZUCC var. nanaREHDER)、タイヘイヨウイチ
イ(T. brevifolia NUTT)、カナダイチイ( T. canadiens
is MARSH) 等のイチイ属植物が挙げられる。
【０００８】前記植物の組織培養は、本発明によりココ
ナツミルクを添加する以外は、従来普通の手段によって
行うことができる。ココナツミルクは、培地における濃
度が１〜５０％、好ましくは５〜２０％になる量で使用
される。従来、タキサン型ジテルペン産生植物の組織培
養において培地添加物としてココナツミルクを使用した
例は報告されておらず、ココナツミルクを使用する本発
明の組織培養方法によってタキサン型ジテルペンの産生
量が増大することは予想外のことであった。
ナツミルクを添加する以外は、従来普通の手段によって
行うことができる。ココナツミルクは、培地における濃
度が１〜５０％、好ましくは５〜２０％になる量で使用
される。従来、タキサン型ジテルペン産生植物の組織培
養において培地添加物としてココナツミルクを使用した
例は報告されておらず、ココナツミルクを使用する本発
明の組織培養方法によってタキサン型ジテルペンの産生
量が増大することは予想外のことであった。
【０００９】本発明で使用される培地は、前記ココナツ
ミルクの他に、普通の培地成分を含有する。このような
成分として一般に炭素源及び無機成分が用いられ、これ
に植物ホルモン類、ビタミン類を添加し、更に必要に応
じてアミノ酸類を添加することができる。炭素源として
は、シュクロース、マルトース、ラクトース等の二糖
類、グルコース、フルクトース、ガラクトース等の単糖
類、デンプンあるいはこれら糖源の２種類以上を適当な
比率で混合したものを使用できる。
ミルクの他に、普通の培地成分を含有する。このような
成分として一般に炭素源及び無機成分が用いられ、これ
に植物ホルモン類、ビタミン類を添加し、更に必要に応
じてアミノ酸類を添加することができる。炭素源として
は、シュクロース、マルトース、ラクトース等の二糖
類、グルコース、フルクトース、ガラクトース等の単糖
類、デンプンあるいはこれら糖源の２種類以上を適当な
比率で混合したものを使用できる。
【００１０】無機成分としては、例えばリン、窒素、カ
リウム、カルシウム、マグネシウム、イオウ、鉄、マン
ガン、亜鉛、ホウ素、銅、モリブデン、塩素、ナトリウ
ム、ヨウ素、コバルト等が挙げられ、これらの成分は例
えば硝酸カリウム、硝酸ナトリウム、硝酸カルシウム、
塩化カリウム、リン酸一水素カリウム、リン酸二水素カ
リウム、塩化カルシウム、硫酸マグネシウム、硫酸ナト
リウム、硫酸第一鉄、硫酸第二鉄、硫酸マンガン、硫酸
亜鉛、ホウ酸、硫酸銅、モリブデン酸ナトリウム、三酸
化モリブデン、ヨウ化カリウム、塩化コバルト等の化合
物として添加できる。
リウム、カルシウム、マグネシウム、イオウ、鉄、マン
ガン、亜鉛、ホウ素、銅、モリブデン、塩素、ナトリウ
ム、ヨウ素、コバルト等が挙げられ、これらの成分は例
えば硝酸カリウム、硝酸ナトリウム、硝酸カルシウム、
塩化カリウム、リン酸一水素カリウム、リン酸二水素カ
リウム、塩化カルシウム、硫酸マグネシウム、硫酸ナト
リウム、硫酸第一鉄、硫酸第二鉄、硫酸マンガン、硫酸
亜鉛、ホウ酸、硫酸銅、モリブデン酸ナトリウム、三酸
化モリブデン、ヨウ化カリウム、塩化コバルト等の化合
物として添加できる。
【００１１】植物ホルモンとしては、例えばインドール
酢酸(IAA) 、ナフタレン酢酸(NAA)、２, ４−ジクロロ
フェノキシ酢酸(2,4-D) 等のオーキシン類、カイネチ
ン、ゼアチン、ジヒドロゼアチン等のサイトカイニン類
が用いられる。ビタミン類としては、例えばビオチン、
チアミン（ビタミンＢ1 ）、ピリドキシン（ビタミンＢ
6 ）、パントテン酸、イノシトール、ニコチン酸等が用
いられる。
酢酸(IAA) 、ナフタレン酢酸(NAA)、２, ４−ジクロロ
フェノキシ酢酸(2,4-D) 等のオーキシン類、カイネチ
ン、ゼアチン、ジヒドロゼアチン等のサイトカイニン類
が用いられる。ビタミン類としては、例えばビオチン、
チアミン（ビタミンＢ1 ）、ピリドキシン（ビタミンＢ
6 ）、パントテン酸、イノシトール、ニコチン酸等が用
いられる。
【００１２】アミノ酸類としては、例えばグリシン、フ
ェニルアラニン、ロイシン、グルタミン、システイン等
を添加できる。一般に前記の各成分は、炭素源が約1 〜
約30g/l 、無機成分が約0.1 μM ないし100mM 、植物ホ
ルモン類が約0.01〜約10μM 、ビタミン類及びアミノ酸
類がそれぞれ約0.1 〜約100mg/l の濃度で用いられる。
ェニルアラニン、ロイシン、グルタミン、システイン等
を添加できる。一般に前記の各成分は、炭素源が約1 〜
約30g/l 、無機成分が約0.1 μM ないし100mM 、植物ホ
ルモン類が約0.01〜約10μM 、ビタミン類及びアミノ酸
類がそれぞれ約0.1 〜約100mg/l の濃度で用いられる。
【００１３】本発明の組織培養に用いられる培地として
は、従来から知られている植物の組織培養に用いられる
培地、例えばムラシゲ・スクーグ(1962 年) 〔Murashig
e &Skoog 〕の培地、リンスマイヤー・スクーグ(1965
年) 〔Linsmaier Skoog 〕の培地、ウッディー・プラン
ト・メディウム(1981 年) 〔Woody Plant Medium〕の培
地、ガンボルグ〔Gamborg 〕のＢ−５培地、三井のＭ−
９培地等に前記の植物ホルモンを添加し、更に必要に応
じて前記した炭素源、ビタミン類、アミノ酸等を添加し
て調製される培地を例示できるが、この中でも特にウッ
ディー・プラント・メディウムの培地を用いて調製され
る培地が好ましい。
は、従来から知られている植物の組織培養に用いられる
培地、例えばムラシゲ・スクーグ(1962 年) 〔Murashig
e &Skoog 〕の培地、リンスマイヤー・スクーグ(1965
年) 〔Linsmaier Skoog 〕の培地、ウッディー・プラン
ト・メディウム(1981 年) 〔Woody Plant Medium〕の培
地、ガンボルグ〔Gamborg 〕のＢ−５培地、三井のＭ−
９培地等に前記の植物ホルモンを添加し、更に必要に応
じて前記した炭素源、ビタミン類、アミノ酸等を添加し
て調製される培地を例示できるが、この中でも特にウッ
ディー・プラント・メディウムの培地を用いて調製され
る培地が好ましい。
【００１４】本発明には液体培地及び寒天やゲランガム
等を通常0.1 〜1 ％含有する固形培地のいずれも使用で
きるが、通常は液体培地が好ましい。本発明の組織培養
においては、上記植物の根、生長点、葉、茎、種子、花
粉、葯、がく等の組織片又は細胞、あるいはこれらを上
記培地あるいは他の従来の培地によって組織培養して得
られる培養細胞又は培養組織を使用することができる。
上記培養組織は組織又はカルスから分化して得られるシ
ュート(shoot) や不定根を含む。
等を通常0.1 〜1 ％含有する固形培地のいずれも使用で
きるが、通常は液体培地が好ましい。本発明の組織培養
においては、上記植物の根、生長点、葉、茎、種子、花
粉、葯、がく等の組織片又は細胞、あるいはこれらを上
記培地あるいは他の従来の培地によって組織培養して得
られる培養細胞又は培養組織を使用することができる。
上記培養組織は組織又はカルスから分化して得られるシ
ュート(shoot) や不定根を含む。
【００１５】これらの組織又は細胞を本発明によりココ
ナツミルクを添加した培地を用いて組織培養すると、無
添加と比較してタキサン型ジテルペンの高生産性培養組
織又は培養細胞が得られる。この培養組織又は培養細胞
から、メタノール等の有機溶媒による抽出によってタキ
サン型ジテルペンを分離することができる。本発明の組
織培養の好ましい一例としては、次の方法が挙げられ
る。
ナツミルクを添加した培地を用いて組織培養すると、無
添加と比較してタキサン型ジテルペンの高生産性培養組
織又は培養細胞が得られる。この培養組織又は培養細胞
から、メタノール等の有機溶媒による抽出によってタキ
サン型ジテルペンを分離することができる。本発明の組
織培養の好ましい一例としては、次の方法が挙げられ
る。
【００１６】先ず、イチイ属植物の植物体、例えば根、
生長点、葉、茎、種子等から採取される植物片を殺菌処
理後、ゲランガムで固めたウッディー・プラント・メデ
ィウムの固体培地上に置床し、10〜35℃で14〜60日程度
経過させて組織片の一部をカルス化させる。このように
して得られたカルスを継代培養すると生育速度が漸次高
まり安定化したカルスが得られる。ここで、安定化した
カルスとは、培養中にカルスの一部がシュートや根に分
化しないでカルスの状態を保持する性質をもち細胞の生
育速度が均質であるものをいう。なお、安定化したカル
スを得るまでの培養では、細胞の死滅を防止する観点か
ら、培地にココナツミルクを存在させない方が好まし
い。
生長点、葉、茎、種子等から採取される植物片を殺菌処
理後、ゲランガムで固めたウッディー・プラント・メデ
ィウムの固体培地上に置床し、10〜35℃で14〜60日程度
経過させて組織片の一部をカルス化させる。このように
して得られたカルスを継代培養すると生育速度が漸次高
まり安定化したカルスが得られる。ここで、安定化した
カルスとは、培養中にカルスの一部がシュートや根に分
化しないでカルスの状態を保持する性質をもち細胞の生
育速度が均質であるものをいう。なお、安定化したカル
スを得るまでの培養では、細胞の死滅を防止する観点か
ら、培地にココナツミルクを存在させない方が好まし
い。
【００１７】この安定化したカルスを増殖に適した液体
培地、例えばウッディー・プラント・メディウムの液体
培地に移して増殖させる。液体培地において更に生育速
度が高められる。本発明では、この安定化したカルス又
は該カルスを構成する細胞は、ココナツミルクを含有す
る固体培地又は液体培地で培養される。本発明の組織培
養における培養温度としては、通常は約10〜約35℃、特
に約23〜28℃が増殖速度が大きいので好適である。ま
た、培養期間としては、１４〜４２日間が好適である。
培地、例えばウッディー・プラント・メディウムの液体
培地に移して増殖させる。液体培地において更に生育速
度が高められる。本発明では、この安定化したカルス又
は該カルスを構成する細胞は、ココナツミルクを含有す
る固体培地又は液体培地で培養される。本発明の組織培
養における培養温度としては、通常は約10〜約35℃、特
に約23〜28℃が増殖速度が大きいので好適である。ま
た、培養期間としては、１４〜４２日間が好適である。
【００１８】本発明の製造方法において液体培地を用い
た場合には、培養終了後に培養組織又は培養細胞をデカ
ンテーション又は濾過等の方法によって培地から分離
し、このものから目的とするタキサン型ジテルペンを有
機溶媒による抽出等の方法によって分離することができ
る。
た場合には、培養終了後に培養組織又は培養細胞をデカ
ンテーション又は濾過等の方法によって培地から分離
し、このものから目的とするタキサン型ジテルペンを有
機溶媒による抽出等の方法によって分離することができ
る。
【００１９】
【実施例】以下、実施例及び比較例により本発明を更に
具体的に説明するが、本発明の範囲はこれらの実施例に
限定されるものではない。 （実施例１）ナフタレン酢酸を10-5M の濃度になるよう
に添加したウッディー・プラント・メディウムの固体培
地（ゲランガム0.25重量％）に、前もって2 ％アンチホ
ルミン溶液又は70％エタノール溶液等で滅菌処理したセ
イヨウイチイ(Taxus baccataLINN)の茎の一部を置床
し、25℃で暗所にて静置培養してセイヨウイチイカルス
を得た。次に、このカルス0.1g（新鮮重）を、上記成分
を同じ濃度で添加したウッディー・プラント・メディウ
ムの液体培地1ml 入りのφ18mmウェルに移し、ロータリ
ーシェーカー上で旋回培養（振幅25mm、120rpm）し、２
１日毎に植えつぎ、該カルスの生育速度を速めた。
具体的に説明するが、本発明の範囲はこれらの実施例に
限定されるものではない。 （実施例１）ナフタレン酢酸を10-5M の濃度になるよう
に添加したウッディー・プラント・メディウムの固体培
地（ゲランガム0.25重量％）に、前もって2 ％アンチホ
ルミン溶液又は70％エタノール溶液等で滅菌処理したセ
イヨウイチイ(Taxus baccataLINN)の茎の一部を置床
し、25℃で暗所にて静置培養してセイヨウイチイカルス
を得た。次に、このカルス0.1g（新鮮重）を、上記成分
を同じ濃度で添加したウッディー・プラント・メディウ
ムの液体培地1ml 入りのφ18mmウェルに移し、ロータリ
ーシェーカー上で旋回培養（振幅25mm、120rpm）し、２
１日毎に植えつぎ、該カルスの生育速度を速めた。
【００２０】このようにして得られた培養細胞0.1g（新
鮮重）を、上記成分を同じ濃度で添加し、更に終濃度
０．５％になるようにココナツミルク（Taiwan Horticu
lturalCo., Ltd.製、Mfd date 1.JUN.1991 ）を添加し
たウッディー・プラント・メディウムの液体培地１ml入
りのφ18mmウェルに移して25℃で１４日間振盪培養し
た。
鮮重）を、上記成分を同じ濃度で添加し、更に終濃度
０．５％になるようにココナツミルク（Taiwan Horticu
lturalCo., Ltd.製、Mfd date 1.JUN.1991 ）を添加し
たウッディー・プラント・メディウムの液体培地１ml入
りのφ18mmウェルに移して25℃で１４日間振盪培養し
た。
【００２１】培養終了後、セイヨウイチイ培養細胞を濾
過により採取し、凍結乾燥した後、その乾燥重量を測定
し、液体培地１Ｌ当たりの培養細胞の生育重量を求め
た。得られた乾燥カルスからメタノール等を用いてタキ
サン型ジテルペンを抽出し、高速液体クロマトグラフィ
ーを用いて標準品タキソール、セファロマニン、バッカ
チンIII と比較定量することによってタキサン型ジテル
ペン収量を測定した。その結果を表１に示す。
過により採取し、凍結乾燥した後、その乾燥重量を測定
し、液体培地１Ｌ当たりの培養細胞の生育重量を求め
た。得られた乾燥カルスからメタノール等を用いてタキ
サン型ジテルペンを抽出し、高速液体クロマトグラフィ
ーを用いて標準品タキソール、セファロマニン、バッカ
チンIII と比較定量することによってタキサン型ジテル
ペン収量を測定した。その結果を表１に示す。
【００２２】（比較例１）実施例１において、ココナツ
ミルクを添加しない培地を用いた以外は該実施例と同様
に操作した。その結果を表１に示す。 （実施例２）実施例１において、添加したココナツミル
クの終濃度が１％である以外は該実施例と同様に操作し
た。その結果を表１に示す。
ミルクを添加しない培地を用いた以外は該実施例と同様
に操作した。その結果を表１に示す。 （実施例２）実施例１において、添加したココナツミル
クの終濃度が１％である以外は該実施例と同様に操作し
た。その結果を表１に示す。
【００２３】（実施例３）実施例１において、添加した
ココナツミルクの終濃度が５％である以外は該実施例と
同様に操作した。その結果を表１に示す。 （実施例４）実施例１において、添加したココナツミル
クの終濃度が１０％である以外は該実施例と同様に操作
した。その結果を表１に示す。
ココナツミルクの終濃度が５％である以外は該実施例と
同様に操作した。その結果を表１に示す。 （実施例４）実施例１において、添加したココナツミル
クの終濃度が１０％である以外は該実施例と同様に操作
した。その結果を表１に示す。
【００２４】（実施例５）実施例１において、添加した
ココナツミルクの終濃度が２０％である以外は該実施例
と同様に操作した。その結果を表１に示す。 （実施例６）実施例１において、添加したココナツミル
クの終濃度が５０％である以外は該実施例と同様に操作
した。その結果を表１に示す。
ココナツミルクの終濃度が２０％である以外は該実施例
と同様に操作した。その結果を表１に示す。 （実施例６）実施例１において、添加したココナツミル
クの終濃度が５０％である以外は該実施例と同様に操作
した。その結果を表１に示す。
【００２５】（実施例７）実施例１において、添加した
ココナツミルクの終濃度が６０％である以外は該実施例
と同様に操作した。その結果を表１に示す。 （比較例２）比較例１において、培養期間を２８日間と
した以外は該比較例と同様に操作した。その結果を表１
に示す。
ココナツミルクの終濃度が６０％である以外は該実施例
と同様に操作した。その結果を表１に示す。 （比較例２）比較例１において、培養期間を２８日間と
した以外は該比較例と同様に操作した。その結果を表１
に示す。
【００２６】（実施例８）実施例４において、培養期間
を２８日間とした以外は該実施例と同様に操作した。そ
の結果を表１に示す。 （比較例３）比較例１において、培養期間を４２日間と
した以外は該比較例と同様に操作した。その結果を表１
に示す。
を２８日間とした以外は該実施例と同様に操作した。そ
の結果を表１に示す。 （比較例３）比較例１において、培養期間を４２日間と
した以外は該比較例と同様に操作した。その結果を表１
に示す。
【００２７】（実施例９）実施例４において、培養期間
を４２日間とした以外は該実施例と同様に操作した。そ
の結果を表１に示す。
を４２日間とした以外は該実施例と同様に操作した。そ
の結果を表１に示す。
【００２８】
【表１】
【００２９】
【発明の効果】本発明によれば、タキサン型ジテルペン
産生植物の組織培養によって、大量のタキソールを簡便
に得ることが可能になった。
産生植物の組織培養によって、大量のタキソールを簡便
に得ることが可能になった。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.7，ＤＢ名) C12P 7/62 - 17/02 C12N 5/04 ＢＩＯＳＩＳ（ＤＩＡＬＯＧ) ＣＡ（ＳＴＮ) ＪＩＣＳＴファイル（ＪＯＩＳ) ＲＥＧＩＳＴＲＹ（ＳＴＮ) ＷＰＩ（ＤＩＡＬＯＧ)
Claims (3)
- 【請求項１】 タキサン型ジテルペンを産生する植物の
培養細胞又は培養組織の組織培養培地中に５〜２０％の
濃度になるようにココナツミルクを添加して組織培養を
行い、培養物よりタキサン型ジテルペンを採取すること
を特徴とするタキサン型ジテルペンの製造方法。 - 【請求項２】 タキサン型ジテルペンを産生する植物が
イチイ属植物であることを特徴とする請求項１記載の方
法。 - 【請求項３】 タキサン型ジテルペンがタキソール、バ
ッカチンIII、セファロマニン又は10−デアセチルバッ
カチンIIIであることを特徴とする請求項１記載の方
法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP34367592A JP3162217B2 (ja) | 1992-12-24 | 1992-12-24 | タキサン型ジテルペンの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP34367592A JP3162217B2 (ja) | 1992-12-24 | 1992-12-24 | タキサン型ジテルペンの製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
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