JP7270222B2 - 視神経保護用組成物 - Google Patents
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Description
日本人の40歳以上の5%が罹患し、失明原因の第一位である緑内障もまた最終的な病態として網膜神経節細胞の細胞死により視神経が障害され、視野障害をきたす疾患である。
そのため、網膜神経節細胞死を予防あるいは最小限に抑える治療を考えることが緑内障治療につながるという考え方が広まっている(非特許文献1)。
しかし、現在、緑内障に対する唯一エビデンスのある治療法は薬物、レーザー、観血手術による眼圧下降療法である。Collaborative Normal-Tension Glaucoma Studyで提唱された通り、視野保持のために眼圧を30%下降させることに重点を置いて治療がなされている。多くの眼圧下降薬の登場により眼圧下降作用による治療効果は向上し、質の高い治療が展開されている。しかし、日本の緑内障患者の多くの病型は、眼圧が正常範囲である正常眼圧緑内障であるため、30%の眼圧下降を得ることが難しい患者や眼圧が十分に低いにもかかわらず視野障害の進行を認める症例も少なくない。したがって、現在行われている眼圧下降のみで緑内障を治療するには限界があり、眼圧以外の危険因子に注目し、それに対応した治療が必要であるといわれている。(非特許文献2)
一方、緑内障の病気進行には、原因の一つとして全身及び網膜視神経における抗酸化システムの破綻が関与していると推定されており、抗酸化物質による緑内障視神経症に対する神経保護効果が示され、抗酸化薬の応用で抗酸化を介した新規神経保護薬の開発が期待されている(非特許文献3)が、現在のところ確立された有効な治療法はない。
さらに近年、緑内障における小胞体ストレスの関与が注目されており、様々な種類の細胞ストレスにより、網膜神経節細胞が細胞死に至る前に小胞体ストレスを誘導することが明らかとなった。また過剰な小胞体ストレスがアルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症及びパーキンソン病などの神経性疾患の発症及び進行との関連も示唆されている(非特許文献4)が、こちらについても現在のところ確立された有効な治療法はない。
すなわち、本発明により、以下の組成物を提供する:
[1]小麦を蒸して乾燥させたもの、脱脂小麦胚芽、脱脂米胚芽、脱脂大豆、発酵ぶどう、ヘスペリジン及び乳酸菌ラクトバチルス・サリバリウスからなる群より選ばれる少なくとも一種の有効成分を含有する視神経細胞保護用組成物。
[2]小麦を蒸して乾燥させたもの、脱脂小麦胚芽、脱脂米胚芽、脱脂大豆、発酵ぶどう、ヘスペリジン及び乳酸菌ラクトバチルス・サリバリウスからなる群より選ばれる少なくとも一種の有効成分を含有する緑内障の予防用又は治療用組成物。
[3]小麦を蒸して乾燥させたもの、脱脂小麦胚芽、脱脂米胚芽、脱脂大豆、発酵ぶどう、ヘスペリジン及び乳酸菌ラクトバチルス・サリバリウスからなる群より選ばれる少なくとも一種の有効成分を含有する、視神経細胞死を抑制するか、網膜神経節細胞死を抑制するか、又はヒトの視力喪失の進行を遅らせるための組成物。
[4]ノブドウ、インディアンデーツ、ハスカップ、ザクロ種子、カンゾウ末及びケイヒ末からなる群より選ばれる少なくとも一種の有効成分を含有する視神経細胞保護用組成物。
[5]ノブドウ、インディアンデーツ、ハスカップ、ザクロ種子、カンゾウ末及びケイヒ末からなる群より選ばれる少なくとも一種の有効成分を含有する緑内障の予防用又は治療用組成物。
[6]ノブドウ、インディアンデーツ、ハスカップ、ザクロ種子、カンゾウ末及びケイヒ末からなる群より選ばれる少なくとも一種の有効成分を含有する、視神経細胞死を抑制するか、網膜神経節細胞死を抑制するか、又はヒトの視力喪失の進行を遅らせるための組成物。
[7]ノブドウ、インディアンデーツ、ハスカップ、ザクロ種子、カンゾウ末、小麦を蒸して乾燥させたもの及びケイヒ末からなる群より選ばれる少なくとも一種の有効成分を含有する、小胞体ストレス抑制用組成物。
[8]経口投与用又は眼内投与用医薬である、請求項1~7のいずれか1項記載の組成物。
[9]食品の形態である請求項1~7のいずれか1項記載の組成物。
[10]抗酸化活性、小胞体ストレス抑制、視神経細胞死の抑制、網膜神経節細胞死抑制、ヒトの視野の進行抑制及びヒトの視力喪失の進行抑制からなる群から選ばれる少なくとも一種の機能を有する旨の表示を付した請求項9記載の組成物。
本発明は、有効成分として、小麦を蒸して乾燥させたもの、脱脂小麦胚芽、脱脂米胚芽、脱脂大豆、発酵ぶどう、ヘスペリジン、乳酸菌ラクトバチルス・サリバリウス、ノブドウ、インディアンデーツ、ハスカップ、ザクロ種子、カンゾウ末、ケイヒ末、これらの抽出液及びこれらの組合せからなる群から選ばれる少なくとも一種を含有する。
食品形態の場合、更に、糖質、脂質、タンパク質、アミノ酸、ビタミン類、その他のミネラル類、ローヤルゼリー、プロポリス、蜂蜜、食物繊維、アスタキサンチン、EPA、DHA、ラクトフェリン、アガリクス、キチン、キトサン、カプサイシン、ポリフェノール、カロテノイド、脂肪酸、ムコ多糖、補酵素、抗酸化物質などを配合することによりサプリメント等の健康食品又は栄養機能食品とすることもできる。
食品組成物の形態は特に限定されないが、タブレット、カプセル剤、水や牛乳等に溶かして飲むための粉末剤、飲料、菓子、冷菓等を例示することができる。
視神経保護が期待される成分として、各成分を配合した神経細胞用培地で、マウスの網膜単離細胞を培養し、各成分の抗酸化能の有無から、網膜単離細胞への効果を確認した。
<材料>
視神経保護が期待される成分として、以下の物質又はその抽出液を試験に供した。
小麦を蒸して乾燥させたもの(商品名「こうじむぎ(登録商標)ST」、フレッシュ・フード・サービス株式会社製(以下「小麦」と示す))、脱脂米胚芽(米胚芽を、n-ヘキサン等の有機溶媒を用いて脂溶性分画を分離(脱脂)することにより、目的物を得ることができる。有機溶媒は、加熱により蒸発させることで除去する。)、脱脂大豆(商品名「脱脂大豆ハイプロ」、株式会社J-オイルミルズ製)、発酵ぶどう(商品名「発酵ぶどう食品」、株式会社Vino Science Japan)ヘスペリジン(商品名「ヘスペリジン」、アルプス薬品工業株式会社)、酵素処理ヘスペリジン(商品名「αG-ヘスペリジンH」、商品名「αG-ヘスペリジンPA」、グリコ栄養食品株式会社)、乳酸菌ラクトバチルス・サリバリウスWB21株(以下「乳酸菌WB21」と略す。)(受託番号 FERM BP-7792)
試験培地 神経細胞用培地(組成:Neurobasal-A Medium (1×) , Liquid(Life Technologies)、B-27(登録商標)supplement Minus AO (50×), Liquid(Life Technologies) (以下「B-27 supplement(AO-)」と略す。) 2%、gentamicin 12μg/mL、L-glutamine 2mM、Insulin 1μg/mL)
細胞数調製用培地(組成:Neurobasal-A Medium (1×), Liquid(Life Technologies)、Gentamicin 0.25mg/mL、L-glutamin 0.5mM、insulin0.005mg/mL、B-27 supplement(AO-) 2%
1.マウス成体網膜単離細胞を用いた各候補健康食品成分の抗酸化能の確認
マウス成体網膜単離細胞の培養は、B-27 supplement (AO-)を添加した神経細胞用培地で行い、細胞は短期間で死滅する条件を選択した。B-27 supplement(AO-)は、フリーラジカルによるニューロンへのダメージを研究する際に影響する5種類の抗酸化物質(vitamin E、 vitamin E acetate、 superoxide dismutase、 catalase、 およびglutathione)が除かれたB-27(登録商標)supplementである。生存細胞は、細胞生存を定量化できるアラマーブルー(AlamarBlue)(商標)アッセイにより解析した。アラマーブルー(Invitrogen、品番 DAL1100)は、生存細胞によって還元され、酸化型である紺青色から還元型である蛍光赤色に変化する。
実験は、各群のサンプル数は4とし、以下の手順で行った。
1)マウス(雄性C57BL/6系マウス、8-11週齢)を安楽死させ、眼球を摘出し、網膜組織をHBSS (-) with phenol red(和光純薬工業株式会社、コードNo. 084-08345)内に採取した。
2)gentleMACS Tube にNeural Tissue Dissociation Kit(P)のBuffer X 1.9ml及びEnzyme P 50μl並びに網膜4枚を入れた後、MACSmix Tube Rotator にセットし、37℃、CO25%のインキュベーター内において、一番遅いスピードで5分間撹拌した。
3)gentleMACS Octo Dissociator のプログラム”m_brain_01”を実施後、MACSmix(商標)にセットし、37℃、CO25%のインキュベーター内で、一番遅いスピードで3分間撹拌した。
4)gentleMACS のプログラム”m_brain_02”を実施後、Buffer Y 20μl及びEnzyme A 10μlの混合液を添加し、MACSmix にセットし、37℃、CO25%のインキュベーター内において、一番遅いスピードで5分間撹拌した。
5)gentleMACS Octo Dissociator のプログラム”m_brain_03”を実施後、MACSmix Tube Rotator にセットし、37℃、CO25%のインキュベーター内において、一番遅いスピードで5分間撹拌した。
6) 溶液をCell Strainer(φ40μm)で濾過し、遠心して、神経細胞用培地に懸濁した。
7) 細胞溶液の一部を分取して、血球計数盤により、トリパンブルー染色で染まらない生存細胞を計数した。
(2)マウス成体網膜単離細胞を、計数結果に基づき希釈し、生存細胞が1.8×105cell/50μL細胞数調整用培地/ウェルとなるように96穴プレートの各ウェルに播種し、CO25%のインキュベーター内において、37℃で15分間培養し、96穴プレートの各ウェル底面にはりつけた。
(3)実験群には表1の通り神経細胞用培地を用いて調製した各成分を、小麦、脱脂米胚芽、脱脂大豆、発酵ぶどう、αG-ヘスペリジンH、αG-ヘスペリジンPA-T、乳酸菌WB21の対照群には神経細胞用培地のみを、ヘスペリジンの対照群には終濃度としてジメチルスルホキシド(和光純薬工業株式会社)が0.1%となるよう神経細胞用培地で希釈したものを(2)の各ウェルに50μL加えて、37℃、CO25%のインキュベーター内で2時間培養を行った。
(5)発色反応後、蛍光強度(励起波長544-570nm、測定波長590nm)を測定することで、生存細胞数を評価した。
各成分について、げっ歯類の緑内障の病態モデルであるマウス視神経挫滅モデルを用いて、神経保護効果を確認した。
<材料>
成分
視神経保護が期待される成分として、以下の物質を試験に供した。
酵素処理ヘスペリジン(商品名「αG-ヘスペリジンPA-T」、グリコ栄養食品株式会社製)、発酵ぶどう(商品名「発酵ぶどう食品」、株式会社Vino Science Japan)、小麦を蒸して乾燥させたもの(商品名「こうじむぎ(登録商標)ST」、フレッシュ・フード・サービス株式会社製(以下「小麦」と示す))、脱脂小麦胚芽(商品名「脱脂小麦胚芽フラワーTYPE-R」、株式会社光洋商会製、脱脂米胚芽(米胚芽を、n-ヘキサンの有機溶媒を用いて脂溶性分画を分離(脱脂)することにより、目的物を得ることができる。有機溶媒は、加熱により蒸発させることで除去する。)、脱脂大豆(商品名「脱脂大豆ハイプロ」、株式会社J-オイルミルズ製)、乳酸菌ラクトバチルス・サリバリウスWB21株(以下「乳酸菌WB21」と略す。)(受託番号 FERM BP-7792))
試験動物 雄性C57BL/6系マウス,9-12週齢 約25g
実験は、各群のサンプル数は8とし、以下の方法で行った。
(1)網膜神経節細胞をラベルするため、視神経挫滅手術の1週間前に、麻酔下で1%フルオロゴールド(Fluorochrome, LLC)をマウスの脳の上丘に注入した。
(2)実験群のマウスには表2の通り調製した各成分を、表2の通りの投与量で、対照群のマウスには蒸留水又はリン酸緩衝生理食塩水(Ca, Mg 不含、pH7.4、以下「PBS(-)」と略す)100μLを、視神経挫滅処置1週間前より1日1回経口投与した。
(4)視神経挫滅処置翌日より、実験群のマウスには表2の各成分を、対照群のマウスには蒸留水又はPBS(-)100μLを、1日1回経口投与した。
(5)視神経挫滅処置後10日目にマウスの網膜を摘出し、網膜を4%パラホルムアルデヒド・りん酸緩衝液(和光純薬工業株式会社)で固定した後、蛍光用封入剤であるVECTASHIELD Mounting Medium(Vector Laboratories、商品コードH-1000)で封入した。
(6)1網膜上に500ピクセル平方の12か所を撮影した。
(7)フルオロゴールドでラベルされた細胞数を数えて12か所の平均数を求め、これを1平方ミリメートル当たりの生存網膜神経節細胞数とし、群毎にその平均を求めた。
視神経挫滅以外の緑内障モデルである、7N-メチル-D-アスパラギン酸(以下「NMDA」と称す。)投与により神経節細胞死を誘導するモデルにて、酵素処理ヘスペリジンの細胞保護作用を検討した。
<材料>
試験物質:酵素処理ヘスペリジン(商品名「αG-ヘスペリジンPA-T」、グリコ栄養食品株式会社)
使用動物:C57BL/6マウス 雄 8-12週齢 約25g
実験は、各群のサンプル数を5とし、以下の方法で行った。
<方法>
(1)マウス入荷後、1週間の馴化期間をおいた。その期間は水と餌は自由摂取とした。
(2)実験群のマウスには、20%(w/v)となるよう酵素処理ヘスペリジンを添加したりん酸緩衝生理食塩水 (KCl不含) (pH 7.2) (ナカライテスク、製品番号11480-35)(以下「PBS」と称す。)を200μL、対照群のマウスにはPBSを200μL、1日3回、7日間経口ゾンデを用いて経口投与した。
(3)マウスへ、7日間経口投与後、10%ネンブタールを0.3mL大腿部に筋中投与し、全身麻酔を行った。
(4)マウスの角膜輪部下方を30ゲージ針により穿孔した。
(5)15μMとなるようNMDA(Sigma-aldrich)を添加したPBSを2μL、ハミルトンシリンジと32ゲージ針を用いて、マウスの硝子体内に投与した。
(6)マウスの結膜を整復し、抗菌剤眼軟膏を点入した。片眼のみ処置を行い、僚眼は無処置とした。保温処置をし、覚醒を待った。
(7)翌日より、実験群のマウスには20%(w/v)となるよう酵素処理ヘスペリジンを添加したPBSを200μL、対照群のマウスにはPBSを200μL、1日3回、経口ゾンデを用いて経口投与した。
(8)NMDA硝子体内投与3日後に、網膜神経節細胞をラベルするため、麻酔下で1%フルオロゴールド(Fluorochrome, LLC)をマウスの脳の上丘に注入した。
(9)フルオロゴールドラベル7日後にマウスを頸椎脱臼し、眼球を摘出し、網膜を4%パラホルムアルデヒド・りん酸緩衝液(和光純薬工業株式会社)で2時間固定した後、DPBS(Gibco、製品番号14190-144)で洗浄し、蛍光用封入剤であるVECTASHIELD Mounting Medium(Vector Laboratories、商品コードH-1000)で封入した。
(10)蛍光顕微鏡で1網膜上に500ピクセル平方の12か所を撮影した。
(11)フルオロゴールドラベルされた細胞数を数えて12か所の平均数を求め、これを1平方ミリメートル当たりの生存網膜神経節細胞数とし、群毎にその平均を求めた。
NMDA投与により神経節細胞死誘導を行うモデルにて、酵素処理ヘスペリジンの細胞保護作用を検討した。
<材料>
試験物質:酵素処理ヘスペリジン(商品名「αG-ヘスペリジンPA-T」、グリコ栄養食品株式会社)
使用動物:C57BL/6マウス 雄 8-12週齢 約25g
実験は、各群のサンプル数を4-6とし、以下の方法で行った。
(1)マウスの大腿部に10%ネンブタール0.3mLを筋中投与し、全身麻酔を行った。
(2)マウスの角膜輪部下方を30ゲージ針により穿孔した。
(3)実験群のマウスには、15mMとなるようNMDA(Sigma-aldrich)を及び17%(w/v)となるよう酵素処理ヘスペリジンを添加したPBSを2μL、硝子体内に投与した。一方、対照群のマウスには、15mMとなるようNMDA(Sigma-aldrich)を添加したPBSを2μL、硝子体内に投与した。マウスは、片眼のみ処置を行い、僚眼は無処置とした。投与には、ハミルトンシリンジと32ゲージ針を用いた。
(4)マウスの結膜を整復し、抗菌剤眼軟膏を点入した。保温処置し、覚醒を待った。
(5)NMDA硝子体内投与3日後に、生存網膜神経節細胞をラベルするため、麻酔下で2%フルオロゴールド(Fluorochrome, LLC)を2μL、マウスの脳の上丘に注入した。
(6)フルオロゴールドによるラベル7日後にマウスを頸椎脱臼し、眼球を摘出し、網膜を4%パラホルムアルデヒド・りん酸緩衝液(和光純薬工業株式会社、販売元コード163-20145)で2時間固定した後、DPBS(Gibco、製品番号14190-144)で洗浄し、蛍光用封入剤であるVECTASHIELD Mounting Medium(Vector Laboratories、商品コードH-1000)で封入した。
(7)蛍光顕微鏡で1網膜上に500ピクセル平方の12か所を撮影した。
(8)フルオロゴールドでラベルされた細胞数を数えて12か所の平均数を求め、これを1平方ミリメートル当たりの生存網膜神経節細胞数とし、群毎にその平均を求めた。
生存網膜神経節細胞の写真を図5に示す。
試験物質について、NMDA投与により誘導される網膜神経節細胞死の抑制作用を確認した。RT-PCRにより、網膜神経節細胞特異的遺伝子Rbpms、Brn3b及びBrn3cの発現を検討した。
<材料>
試験物質:酵素処理ヘスペリジン(商品名「αG-ヘスペリジンPA-T」、グリコ栄養食品株式会社)
試験動物:C57BL/6マウス 雄 8-12週齢 約25g
実験は、各群のサンプル数は5-6とし、以下の方法で行った。
(1)実験群のマウスには、17%(w/v)となるよう酵素処理ヘスペリジンを及び15mMとなるようNMDA(Sigma-aldrich)を添加したPBSを2μL、ハミルトンシリンジと32ゲージ針を用いて、右眼硝子体内に投与した。対照群のマウスには、15mMとなるようNMDA(Sigma-aldrich)を添加したPBSを2μL、ハミルトンシリンジと32ゲージ針を用いて、右眼硝子体内に投与した。無処置群のマウスには、右眼硝子体内に何も投与しなかった。
(2)24時間後、マウスを頚椎脱臼し、眼球を摘出し、網膜を4%パラホルムアルデヒド・りん酸緩衝液(和光純薬工業株式会社)で固定した。
(3)miRNeasy Mini Kit(Qiagen)を用いて、Total RNA抽出を行った。
(4)SuperScriptIII(Invitrogen)を用いて、cDNA合成を行った。リアルタイムPCRはTaqman probe法を用い、サーマルサイクラ―FAST7500(ABI)とMaster Mix(ABI)を使用した。プローブはいずれもABI社のプレデザインされたプローブを購入し使用した。下記に使用したプライマーを示す。Rbpms(Mm00803908_m1)、Brn3b (Mm00454754_S1)、Brn3c(Mm04213795_s1)、Gapdh(Mm99999915_g1)。
(5)それぞれの標的遺伝子発現量は、ΔΔCt法(比較Ct法)により、Gapdhを内在性コントロールとして補正し、相対定量した。各群において、遺伝子発現量の平均と標準偏差を求めた。
試験物質について、NMDA投与により誘導される網膜神経節細胞死の抑制作用を確認した。抗RBPMS抗体を用いて網膜神経節細胞数を評価した。RBPMSは網膜神経節細胞のマーカー蛋白質である。
<材料>
試験物質:酵素処理ヘスペリジン(商品名「αG-ヘスペリジンPA-T」、グリコ栄養食品株式会社)
試験動物:C57BL/6マウス 雄 8-12週齢 約25g
実験は、各群のサンプル数を5-6とし、以下の方法で行った。
(1)実験群のマウスの右眼硝子体内に、15mMとなるようNMDA(Sigma-aldrich)を及び17%(w/v)となるよう酵素処理ヘスペリジンを添加したPBSを2μL投与した。対照群のマウスの右眼硝子体内に、15mMとなるようNMDA(Sigma-aldrich)を添加したPBSを2μL投与した。無処置群のマウスの右眼硝子体内には、何も投与しなかった。投与には、ハミルトンシリンジと32G針を用いた。
(2)24時間後、マウスを頚椎脱臼し、右眼球を摘出し、網膜を4%パラホルムアルデヒド・りん酸緩衝液(和光純薬工業株式会社)で固定した。
(3)スクロース置換とOCT包埋により網膜の凍結切片を作製し、切片を、0.04%(v/v)となるようTween-20を添加したPBS(以下「Tw-PBS」と称す。)で5分間×3回洗った。
(4)切片を、0.5%(v/v)となるようポリオキシエチレン(10)オクチルフェニルエーテル(和光純薬工業株式会社、販売元コード168-11805)を添加したTw-PBS中で10分間反応させた後、Tw-PBSで5分間×3回洗った。
(5)Tw-PBSに10%(v/v)となるようDonkey Serum(biowest、#S2170-100)を添加し調製したブロッキング液を、1切片につき50μL添加し、室温で1時間静置した。
(6)切片を、前出のブロッキング液:Anti-RBPMS 抗体(Abcam ab194213)=1:200となるよう調製した溶液中で、室温で1時間静置した(一次抗体反応)後、Tw-PBSで5分間×3回洗った。
(7)切片を、前出のブロッキング液:Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor(登録商標)488 conjugate(Molecular Probe、#A21206)=1:500となるよう調製した溶液中で、室温で1時間静置した(二次抗体反応)後、Tw-PBSで5分間×3回洗った。
(8)切片をDAPI含有封入剤(Vector Laboratories、製品名:VECTASHIELD Mounting Medium with DAPI)で封入し、トップコートでカバーガラスの周囲を固定した。
(9)蛍光顕微鏡で撮影を行った。網膜全体のRBPMS発現細胞数を計測し、群毎にその平均を求め、これを1眼あたりの生存網膜神経節細胞数とした。
NMDA投与により網膜神経節細胞死を誘導するモデルにて、酵素処理ヘスペリジンの電気生理機能評価を検討した。
<材料>
試験物質:酵素処理ヘスペリジン(商品名「αG-ヘスペリジンPA-T」、グリコ栄養食品株式会社)
使用動物:C57BL/6マウス 雄 8-12週齢 約25g
実験は、各群のサンプル数を8-10とし、以下の方法で行った。
(1)マウスに、メデトミジン(株式会社 明治)を0.6mg/kgの用量で及びケタミン(第一三共株式会社)を36mg/kgの用量で腹腔内注射して、麻酔を行った。
(2)マウスの頭皮を切開して頭蓋を露出させた後、微小電極(stainless steel pan-head screws M0.6x3.0mm in length)を埋め込んだ。電極は、ブレグマを基準として2mm前方に陰電極を、3.6mm後方に正中から2.3mmの位置に左右それぞれに陽電極を1mmの深さで埋め込んだ。
(3)続いて、固定用のポリカーボネートねじを頭頂部に固定し、最後に歯科用セメント(GC dental products、製品名:GC Unifast III)で露出した頭蓋とねじの根元を覆い固定した。マウスは、手術中はヒートパッドの上で常に保温し、終了後はメデトミジン拮抗薬のアチパメゾール( Meiji Seika ファルマ株式会社)を0.35mg/kgの用量で腹腔内注射し、麻酔から回復させた。
(4)微小電極埋め込みの7日後に、マウスの右眼硝子体内に、対照群では15mMとなるようにNMDA(Sigma-aldrich)を添加したPBSを2μL投与し、実験群では15mMとなるようにNMDA(Sigma-aldrich)を及び17%(v/v)となるよう酵素処理ヘスペリジンを添加したPBSを2μL投与した。左眼は無処置とした。
(5)NMDA投与10日後に、マウスを、2.5%フェニレフリンと1.0%トロピカミドを点眼して散瞳させた後、固定装置に乗せ頭頂部のネジで固定し自由に動ける状態にした。
(6)陽電極をマウスの左右の視覚野に、陰電極をマウスの前頭部に、グランド電極(アース)をマウスの尾に取り付け、記録システム(有限会社メイヨー、製品名:誘発反応記録装置ピュレック)と接続した。
(7)マウスをGanzfeldドーム(有限会社メイヨー、製品名:ミニガンツ)の球面に両目が位置するように置き、LED刺激装置(有限会社メイヨー、製品名:LED発光装置 LS-100)により刺激光を与え、視覚誘発電位を記録した。最初に暗順応下で-7.0、-6.0、-5.0、-4.0、-3.0、-2.0、-1.0 log cd.s/m2 の強さの光刺激で測定したのち、明順応下(白色光30 cd/m2)で0、0.5、1.0、1.5、2.0 log cd-s/m2で測定した。シグナルは0.3Hzと50Hzのバンドパスフィルターを通した。
NMDA投与により網膜神経節細胞死を誘導するモデルにて、視力を検討した。
<材料>
試験物質:酵素処理ヘスペリジン(商品名「αG-ヘスペリジンPA-T」、グリコ栄養食品株式会社)
使用動物:C57BL/6マウス 雄 8-12週齢 約25g
実験は、各群のサンプル数を3-4とし、以下の方法で行った。
(1)マウスの右眼硝子体内に、実験群には15mMとなるようNMDA(Sigma-aldrich)を及び17%(w/v)となるよう酵素処理ヘスペリジンを添加したPBSを2μL投与し、対照群には15mMとなるようNMDA(Sigma-aldrich)を添加したPBSを2μL投与した。無処置群のマウスの右眼硝子体内には、何も投与しなかった。投与には、ハミルトンシリンジと32G針を用いた。
(2)(1)の操作の11日後、12日後及び13日後に、マウスの視力を1日1回、3日連続して測定し、各群の平均視力を求めた。視力はOptoMotry(CerebralMechanics Inc.)を用いて測定した。
ツニカマイシン刺激により小胞体ストレスを検知する遺伝子Trb3を導入した網膜細胞をツニカマイシンで刺激し、小胞体ストレスの抑制が期待できる成分を検討した。
<材料>
試験物質:小麦を蒸して乾燥させたもの(商品名「こうじむぎ(登録商標)ST」、フレッシュ・フード・サービス株式会社製(以下「小麦」と示す))、ノブドウ(商品名「ノブドウ乾燥エキスF」、丸善製薬株式会社製)、ハスカップ(商品名「ハスカップパウダーS」、日本新薬株式会社製)、ザクロ種子(商品名「ザクロ種子乾燥エキス」、アスク薬品株式会社製)、カンゾウ末(商品名「食品原料用カンゾウ末」、日本粉末株式会社製)、インディアンデーツ(商品名「インディアンデーツエキスパウダーMF」、丸善製薬株式会社製)、ケイヒ末(商品名「食品原料用ケイヒ末」、日本粉末株式会社製)
試験細胞:RGC-Trb3 stable cells
試験培地:10%となるようウシ胎児血清を添加したDMEM(Gibco、製品番号11995-073)に、2μg/mLとなるようツニカマイシン(和光純薬工業株式会社)を添加し調製した。
(1)24ウェルプレートに、2.83×104cell/300μLとなるよう試験培地で調製したRGC-Trb3 stable cellsを、1つのウェルにつき300μL播種し、37℃、-CO2の条件下で一晩インキュベーションした。
(2)実験群は、試験物質5mgを500μLの試験培地に添加し1%に調製後、試験培地で終濃度0.25%まで希釈した溶液を、1つのウェルにつき75μL添加し、37℃、-CO2の条件下で24時間培養した。対照群は、DMEMに0.5%となるようにジメチルスルホキシドを添加した溶液を1つのウェルにつき75μL添加し、37℃、-CO2の条件下で24時間培養した。
(3)1つのウェルにつき、DPBS(Gibco、製品番号14190-144)500μLで洗った後に、DPBSを取り除き、QIAzol Lysis Reagent(QIAGEN)700μLを添加し、セルスクレーパーでウェル内の細胞をかきとりエッペンチューブに回収した。
(4)miRNeasy Mini Kit(QIAGEN)を用いてRNAを抽出後、SuperScriptIII(Invitrogen)を用いてcDNA合成を行った。
(5)SuperScriptIII First-Strand Synthesis SuperMix for qRT-PCR、TaqMan Fast Universal PCR Master Mix (2×), No AmpErase UNG、プライマーmouse Trb3(Life Technologies、Mm00454879_m1)、Gapdh用プライマー(Life Technologies、Mm99999915_g1)を用いてリアルタイムPCRを実施した。
(6)Trb3発現量は、ΔΔCt法(比較Ct法)により、Gapdhを内在性コントロールとして補正し、相対定量した(各群n=4)。対照群及び実験群7種において、Trb3発現量の平均をそれぞれ求めた。
Claims (4)
- インディアンデーツを有効成分として含有する、経口投与用医薬であるか、又は食品の形態である、視神経細胞保護用組成物。
- インディアンデーツを有効成分として含有する、経口投与用医薬であるか、又は食品の形態である、緑内障の予防用又は治療用組成物。
- インディアンデーツを有効成分として含有する、経口投与用医薬であるか、又は食品の形態である、視神経細胞死を抑制するか、網膜神経節細胞死を抑制するか、又はヒトの視力喪失の進行を遅らせるための組成物。
- 抗酸化活性、小胞体ストレス抑制、視神経細胞死の抑制、網膜神経節細胞死抑制、ヒトの視野障害の進行抑制及びヒトの視力喪失の進行抑制からなる群から選ばれる少なくとも一種の機能を有する旨の表示を付した請求項1~3のいずれか1項記載の組成物。
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