JP7219256B2 - 薬剤の少なくとも１つのトリスルフィド結合を含むタンパク質中のチオール部分へのコンジュゲーション方法 - Google Patents

薬剤の少なくとも１つのトリスルフィド結合を含むタンパク質中のチオール部分へのコンジュゲーション方法 Download PDF

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Description

関連出願データ
本出願は、参照により本明細書に組み込まれる、２０１４年７月２４日出願の米国仮特
許出願第６２／０２８，６７９号に対する優先権の利益を主張するものである。本開示で
言及される出願及び特許の各々、ならびにそれらの出願及び特許の各々で引用される各文
献または参考文献（各発行された特許の遂行中を含む、「出願引用文献」）、ならびにこ
れらの出願及び特許のうちのいずれかに対応し、かつ／またはその優先権を特許請求する
ＰＣＴ及び外国出願または特許の各々、及びそれらの出願引用文献の各々で引用または参
照される文献の各々は、参照により明示的に本明細書に組み込まれ、本発明の実施におい
て用いられ得る。より一般的には、文献または参考文献は、特許請求の範囲の前の参考文
献一覧表または本文自体のいずれかにおいて本文で引用され、これらの文献または参考文
献（「本明細書引用文献」）の各々、ならびにこれらの本明細書引用文献の各々で引用さ
れる各文献または参考文献（任意の製造業者の説明書、指示等を含む）は、参照により明
示的に本明細書に組み込まれる。
組換えタンパク質は、様々な疾患の治療に用いられる治療的化合物の重要な部類になっ
ている。バイオテクノロジーの分野における近年の成功により、大量のかかるタンパク質
を産生する能力が改善されている。しかしながら、これらの産物の広範囲に及ぶ特徴付け
により、これらのタンパク質がかなりの不均一性を伴うことが実証されている。例えば、
分子の不均一性は、酸化、脱アミド化、及び糖化等の化学的に誘導された修飾、ならびに
タンパク質分解成熟、タンパク質折り畳み、グリコシル化、リン酸化、及びジスルフィド
結合形成等の翻訳後修飾に起因し得る。分子の不均一性は、治療薬が一連の洗練された分
析技法によって広範囲にわたって特徴付けられなければならず、かつ製品の品質及び一貫
性を確実にする許容基準を満たさなければならないため、望ましくない。
抗体（または免疫グロブリン）は、それらが巨大な多鎖分子であるという事実により、
かかる構造的不均一性を特に伴いやすい。例えば、ＩｇＧ抗体は、４つのポリペプチド鎖
：２つの軽鎖ポリペプチド（Ｌ）及び２つの重鎖ポリペプチド（Ｈ）から成る。これらの
４つの鎖は、典型的には、これらの重鎖及び軽鎖に存在するシステイン残基間に生じるジ
スルフィド結合によって連結されている。これらのジスルフィド連結が天然Ｈ２Ｌ２四量
体の全体構造を支配している。全体として、ＩｇＧ１抗体は、Ｈ鎖を連結する２つのヒン
ジ領域ジスルフィド、ならびに重鎖Ｈ鎖とＬ鎖との間の各々１つのジスルフィド結合を含
む４つの鎖間ジスルフィド結合を含む。
抗体－薬物コンジュゲート（ＡＤＣ）は、抗体の生物学的特異性を強力な特定の治療的
化合物と組み合わせる、強力な薬物分子に結合したモノクローナル抗体（ｍＡｂ）である
。リジンまたはシステイン指向性リンカー化学を使用して、薬物化合物を抗体に結合する
ことができる（Ｗｕ，Ａ．Ｍ．，Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２３：１１３７－４６
（２００５））。システイン指向性化学を使用して、薬物は、鎖間ジスルフィド結合の還
元によって得られた天然システインまたは特異的に操作されたシステインのいずれかに連
結し得る。化学量論的に、１つの還元されたジスルフィド結合が、薬物コンジュゲーショ
ンのために２つの遊離チオールを曝露すべきである。コンジュゲーションがＩｇＧ１分子
の鎖間システインに対する場合、結果として生じるコンジュゲートは、１抗体分子当たり
０、２、４、６、または８つの薬物を有する種を主に含有する混合物から成る。１抗体当
たりコンジュゲートされる薬物分子の平均数（薬物抗体比、「ＤＡＲ」）は、平均ＤＡＲ
が１用量当たり送達される薬物の量を反映するため、ＡＤＣ産物の重要な品質属性であり
、それ故に、ＡＤＣの安全性のみならず有効性にも影響を及ぼし得る。不完全なジスルフ
ィド結合形成、または酸化若しくはベータ排除による結合破損に続くジスルフィドスクラ
ンブリングはすべて、抗体の不均一性の発生源である可能性がある。さらに、ヒトＩｇＧ
２抗体の鎖間ヒンジ領域結合内でのトリスルフィド結合形成が報告されている（Ｐｒｉｓ
ｔａｔｓｋｙ ｅｔ ａｌ，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．８１：６１４８（２００９）、Ｇｕ
ｅｔ ａｌ，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．４００：８９－９８（２０１０））。トリスル
フィド結合は、余分な硫黄原子がその分子内に「トリスルフィド架橋」（－ＣＨ２－Ｓ－
Ｓ－Ｓ－ＣＨ２－）を形成したときに生じ、ＡＤＣ産生中にさらなる一貫性及び汚染問題
を引き起こし得る。
トリスルフィド連結は、スーパーオキシドジスムターゼ（Ｏｋａｄｏ－Ｍａｔｓｕｍｏ
ｔｏ ｅｔ ａｌ．，Ｆｒｅｅ Ｒａｄｉｃａｌ Ｂｉｏ．Ｍｅｄ．４１：１８３７（２
００６））、インターロイキン－６の切断形態（Ｂｒｅｔｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｃｈ
ｒｏｍａｔｏｇ．７０９：１３５（１９９５））、及び細菌で発現されたヒト成長ホルモ
ン（ｈＧＨ）（Ｃａｎｏｖａ－Ｄａｖｉｓ ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．６８：
４０４４（１９９６））で以前に検出されている。ジスルフィド結合を含む他のポリペプ
チド、例えば、インスリン、インターロイキン、及びある特定の凝固因子（第ＶＩＩ因子
等）も、トリスルフィド誘導体を形成する可能性があり得る。
ｈＧＨの場合、トリスルフィド形成が発酵プロセス中に放出されたＨ２Ｓによって促進
され（ＰＣＴ特許出願第ＷＯ９６／０２５７０号）、ｈＧＨのトリスルフィド含有量が溶
液中でのＨ２Ｓへの曝露によって増加した（米国特許第７，２３２，８９４号）ことが推
測された。ｈＧＨのトリスルフィド誘導体も、大腸菌での発現中に形成された組換えｈＧ
Ｈにおいて説明されている（Ａｎｄｅｒｓｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｐｅｐｔ
ｉｄｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｓ．４７：３１１－３２１（１９９６）、Ａ．Ｊｅｓｐｅ
ｒｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２１９：３６５－３７３（１９
９４））。
ＰＣＴ公開第ＷＯ９６／０２５７０号は、ｈＧＨトリスルフィド誘導体を、亜硫酸塩化
合物、例えば、亜硫酸ナトリウム、亜硫酸カリウム、若しくは亜硫酸アンモニウム、また
はアルカリ土類金属亜硫酸塩、例えば、亜硫酸マグネシウム若しくは亜硫酸カルシウムで
処理することによって、ｈＧＨトリスルフィド誘導体をｈＧＨの天然形態に戻し変換する
ための別の方法を記載している。
ＰＣＴ公開第ＷＯ００／０２９００号は、発酵ステップ中または発酵ステップ後の金属
塩（例えば、カリウム塩またはナトリウム塩）の添加を特徴とする、少量のトリスルフィ
ドを用いて組換えペプチドを産生するための方法を記載している。
ＰＣＴ公開第ＷＯ０４／３１２１３号は、遺伝子改変された宿主細胞における「成長ホ
ルモンアンタゴニストポリペプチド」の組換え産生において産生されたトリスルフィドア
イソフォーム不純物の量を減少させるための方法を開示しており、この不純物を、「メル
カプト化合物」（亜硫酸塩、グルタチオン、β－メルカプト－エタノール、ジチオスレイ
トール、システイン等）と接触させる。この出願は、形成されたトリスルフィドの量の低
減を達成するためにキレート剤または金属塩の使用も開示している。
残念ながら、溶液中での、または発酵プロセス中の、システイン、メルカプト化合物、
亜硫酸塩化合物、金属塩等への曝露によるトリスルフィド結合の除去は、特に大規模処理
においていくつかの不利点を有する。例えば、これらの化合物が大量に必要とされる。さ
らに、これらの化学物質の多くが既知の毒性を有するため、かかる方法は、トリスルフィ
ド結合が除去された後にタンパク質から化学物質を除去するさらなる処理ステップ（複数
可）も必要とし、別の潜在的不純物源及びプロセス変動性を導入する。加えて、溶液中で
のかかる化学物質への曝露によるトリスルフィド結合の除去は、望ましくないジスルフィ
ド連結の形成による凝集を促進し得る。
したがって、組換えタンパク質の製造（抗体及びＡＤＣの産生を含む）において使用さ
れる産生及び精製手順中にトリスルフィド結合の存在によって引き起こされる変動性及び
汚染に対処するために、かかる変動性及び／または不純物を低減または排除するための効
率的かつ改善された手段が、本明細書に開示される方法によって提供される。
全鎖間ジスルフィド結合の画分を還元することによって、鎖間システイン連結を伴う抗
体－薬物コンジュゲート（ＡＤＣ）が生成される。その後、新たに利用可能になった遊離
チオールが、薬物分子とコンジュゲートされる（この分子は、多くの場合、すでにより大
きいリンカー－薬物中間体の一部である）。部分的還元が非変性条件下で行われると、鎖
内ジスルフィド結合に関与するシステインへの連結は、典型的には観察されない。チオー
ル反応性部分（マレイミド等）を含有するリンカー－薬物が過剰に添加されて、すべての
利用可能な遊離チオールのコンジュゲーションを確実にする。トリス（２－カルボキシエ
チル）ホスフィン（ＴＣＥＰ）は、その好ましい反応速度、反応前の溶液安定性により、
及びそれが抗体チオールと混合ジスルフィドを形成することができないという理由により
、これらのプロセスにおいて好ましい還元剤である。ＴＣＥＰの１つの分子が１つのジス
ルフィド結合を還元すると予想されており、薬物コンジュゲーションのために２つの遊離
チオールを曝露する。１モル当量のＴＣＥＰ（１．０Ｘ ＴＣＥＰ：ｍＡｂ）での還元後
、予想される平均ＤＡＲ値は２．０である。同様に、目標とする平均ＤＡＲ値４．０を達
成するために、２モル当量（２．０Ｘ ＴＣＥＰ：ｍＡｂ）の予測ＴＣＥＰ添加が必要で
あろう。実際には、この還元ステップは、所定のＴＣＥＰ：抗体（ＴＣＥＰ：ｍＡｂ）モ
ル比を使用して行われる。
複数のシステイン指向性ＡＤＣ産物の開発中に、平均ＤＡＲ値の理論的予測からの偏差
が観察され、報告されている（Ｃｕｍｎｏｃｋ，ｅｔ ａｌ．Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ
Ｃｈｅｍ．２４：１１５４－６０（２０１３））。これらの場合、還元剤と抗体の必要
な比率は、所与のロットの抗体では再生可能であるが、抗体間、ならびに同じ抗体の異な
るロット間で異なった。いくつかの抗体ロットは理論的予測に非常に近い量のＴＣＥＰを
必要としたが、ほとんどのロットは、目標とする平均ＤＡＲ値を達成するために増大した
ＴＣＥＰ：ｍＡｂモル比を必要とした。トリスルフィド結合の存在が、ＡＤＣの製造中に
観察されたこの変動性の潜在的な源として特定された。トリスルフィドが、これらのＡＤ
Ｃの製造中に観察されたＴＣＥＰ：ｍＡｂ比変動性源である可能性があると特定された。
さらに、逆相ＨＰＬＣ分析により、コンジュゲートされたＡＤＣを含有するいくつかの
組成物中で予想外の不純物が特定された。ＡＤＣ及び不純物の調査により、それらの抗体
中に存在するトリスルフィド結合の還元の結果として抗体と薬物分子との間のコンジュゲ
ーション反応に存在する反応性スルフィド部分が、これらの組成物中の不純物であると判
明した遊離薬物二量体の形成に関与したことが示された。
これらの抗体を産生するために使用される確立及び認定された組換え技法を修正するの
ではなく、本発明者らは、還元及び／またはコンジュゲーション反応中にこれらの組成物
から反応性スルフィド種を低減または排除することによって、トリスルフィド結合を含む
組換えタンパク質の還元において生じる遊離薬物二量体（及び他の不純物）の形成を低減
する方法を開発した。
したがって、一態様では、本発明は、単離されたタンパク質中の少なくとも１つのスル
フィド結合を還元して、反応性スルフィド及び少なくとも１つのチオール基を含有する還
元されたタンパク質を含む組成物を形成することと、結果として生じる組成物中の反応性
スルフィドの含有量を減少させることと、を含む、薬剤の、少なくとも１つのジスルフィ
ド結合及び少なくとも１つのトリスルフィド結合を含むタンパク質中のチオール部分への
コンジュゲーション方法を提供する。その後、薬剤が、還元されたタンパク質の少なくと
も１つのチオール基にコンジュゲートされて、タンパク質－薬剤コンジュゲートを形成す
る。
少なくとも１つのスルフィド結合を還元するステップは、単離されたタンパク質の還元
剤との接触による少なくとも１つのスルフィド結合の少なくとも部分的な還元を含み得る
。
単離されたタンパク質は、少なくとも４つのジスルフィド結合を含み得る。
単離されたタンパク質は、少なくとも２つのトリスルフィド結合も含み得る。
還元ステップ前に、単離されたタンパク質中のスルフィド結合の約１％～約２０％がト
リスルフィド結合である。還元ステップ前に、単離されたタンパク質中のスルフィド結合
の約５％～約７％がトリスルフィド結合であり得る。
この還元ステップは、非変性条件下で行われ得る。これらの反応において、還元剤は、
ジチオスレイトール（ＤＴＴ）、ベータ－メルカプトエタノール（βＭＥ）、トリス（２
－カルボキシエチル）ホスフィン（ＴＣＥＰ）、システイン、Ｌ－システイン、還元グル
タチオン（ＧＳＨ）、及びＬ－ＧＳＨのうちの少なくとも１つであり得る。この還元剤は
ＴＣＥＰであり得、ＴＣＥＰは、単離されたタンパク質に対するＴＣＥＰの所定のモル比
で単離されたタンパク質と混合され得る。単離されたタンパク質に対するＴＣＥＰの所定
のモル比は、ＴＣＥＰのモル過剰であり得る。
タンパク質中の少なくとも１つのスルフィド結合を還元するステップは、単離されたタ
ンパク質を、約０．１～約８ｍＭ、約０．１～約５ｍＭ、約０．１～約３ｍＭ、約０．１
～約１ｍＭ、約８ｍＭ、約５ｍＭ、約３ｍＭ、約１ｍＭ、及び約０．５ｍＭの濃度の化学
的還元剤と接触させることを含む。
タンパク質中の少なくとも１つのスルフィド結合を還元するステップは、約５．０～約
８．０、約５．５～約７．５、約５．５、または約６．５のｐＨで行われ得る。
還元ステップ前に、単離されたタンパク質のｐＨが約５．０～約８．０のｐＨに調整さ
れ得る。
好ましくは、タンパク質中のトリスルフィド結合の約１００％が還元される。
還元ステップ後に、単離されたタンパク質１モル還元につき約４～約８モルのチオール
部分が、薬剤とのコンジュゲーションに利用可能であり得る。
組成物中の反応性スルフィドを減少させるステップは、組成物のｐＨを約５．０～約６
．０のｐＨに調整することを含み得、これは、組成物のｐＨを約５．５のｐＨに低減する
ことを含み得る。
組成物中の反応性スルフィドを減少させるステップは、組成物から液体媒体を除去する
ことと、液体媒体を代替液体媒体と置き換えることとを含み得る。液体媒体は、緩衝液を
含み得る。
組成物中の反応性スルフィドを減少させるステップは、組成物の少なくとも９０％を、
反応性スルフィドを欠く代替溶液と置き換える前に、組成物中の還元されたタンパク質を
固体支持体と会合させることを含み得る。固体支持体は、濾過膜、選択性透過膜、及びク
ロマトグラフィー樹脂のうちの少なくとも１つを含み得る。
組成物中の反応性スルフィドを減少させるステップは、組成物中の反応性スルフィドの
含有量を低減するのに十分な速度で、還元ステップにおける組成物を混合することを含み
得る。この混合は、単離されたタンパク質中のスルフィド結合（複数可）の還元にとって
の最適混合速度を超える増大した速度で組成物を撹拌することを含み得る。増大した速度
でのこの混合は、還元ステップの全反応時間未満の期間にわたって、還元ステップにおけ
る混合速度を増大させることを含み得る。
組成物中の反応性スルフィドを減少させるステップは、溶液を窒素源と接触させること
を含み得る。窒素源は、組成物に通気し得る窒素ガスを含み得る。この接触は、組成物を
窒素ガス、空気、及びアルゴンガスのうちの少なくとも１つでスパージすることも含み得
る。この接触は、約１分間～約２４０分間の期間行われ得る。この接触は、約１０立法セ
ンチメートル／分～約６０立法センチメートル／分の速度で、組成物を窒素ガスでスパー
ジすることも含み得る。この接触は、還元ステップにとっての最適混合速度を少なくとも
２００％超える速度で、組成物を窒素ガスの存在下で混合することも含み得る。
接触ステップは、約５．０～約８．０のｐＨで行われ得る。この接触は、約４℃～約４
０℃の温度で行われ得る。この接触は、約１５℃～約４０℃の温度でも行われ得る。この
接触は、約２０℃の温度でも行われ得る。この接触は、約３０℃の温度でも行われ得る。
組成物の体積に対する表面積の比率は、約２であり得る。この接触は、組成物を含有する
反応容器の側面に対して窒素ガスをパイプ供給することを含み得る。この接触は、組成物
中にスパージストーンを浸すことを含み得、このスパージストーンは、約１ｃｍ～約１メ
ートルの直径を有する。
この接触は、還元ステップ中に、還元ステップを行う時間未満の時間にわたって窒素ガ
スを組成物に導入することを含み得る。この接触ステップは、閉鎖反応容器内で行われ得
る。この接触は、反応性スルフィド（複数可）が組成物から放出されるように、開放反応
容器内で行われ得る。
この接触は、ｔｗｅｅｎ及び消泡剤のうちの少なくとも一方の存在下で行われる。ｔｗ
ｅｅｎは、Ｔｗｅｅｎ２０及びＴｗｅｅｎ－８０のうちの少なくとも一方であり得る。消
泡剤は、Ａｎｔｉｆｏａｍ－Ａ、Ａｎｔｉｆｏａｍ－Ｃ、及びポリエチレンオキシド等の
ポロキサマーのうちの少なくとも１つであり得る。
単離されたタンパク質は、抗体または抗体断片であり得る。この抗体断片は、例えば、
Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ）２、Ｆｖ断片、ダイアボディ、一本鎖抗体、ｓｃＦｖ断片
、またはｓｃＦｖ－Ｆｃ等の抗原結合抗体断片であり得る。
この抗体または抗体断片は、ＩｇＧ抗体であり得る。この抗体または抗体断片は、ヒト
モノクローナル抗体でもあり得る。
この抗体または抗体断片は、ヒト免疫グロブリン定常領域を含み得る。この定常領域は
、ヒトＩｇＧ定常領域であり得る。特定の実施形態では、ＩｇＧ定常領域のアイソタイプ
は、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、またはＩｇＧ４である。
抗体または抗体断片中のスルフィド結合は、抗体重鎖と抗体軽鎖との間、または抗体重
鎖間、または抗体重鎖と抗体軽鎖との間及び抗体重鎖間の両方に存在する。この抗体また
は抗体断片は、軽鎖定常ドメインを含み得る。この軽鎖定常ドメインは、カッパ定常ドメ
インであり得る。この抗体は、重鎖を連結するヒンジ領域内に２つのスルフィド結合、な
らびに軽鎖と重鎖との間に各々１つのスルフィド結合を含む４つの鎖間スルフィド結合を
有するＩｇＧ１モノクローナル抗体でもあり得る。
単離されたタンパク質は、抗体であり得、還元ステップは、鎖間ジスルフィド結合のみ
の還元をもたらし得、鎖内結合の還元はもたらさない。
薬剤は、化学療法剤、核酸、サイトカイン、免疫抑制剤、放射性同位体、抗生物質、及
び治療抗体から選択される少なくとも１つの治療薬であり得る。薬剤は、オーリスタチン
、ビンカアルカロイド、ポドフィロトキシン、タキサン、バッカチン誘導体、クリプトフ
ィシン、メイタンシノイド、コンブレタスタチン、及びドラスタチンから選択される少な
くとも１つの抗チューブリン剤であり得る。ドラスタチンは、オーリスタチンであり得る
。オーリスタチンは、モノメチルオーリスタチンＥ（ＭＭＡＥ）またはモノメチルオーリ
スタチンＦ（ＭＭＡＦ）でもあり得る。
薬剤は、ＤＮＡ副溝結合剤、ＤＮＡ副溝アルキル化剤、エンジイン、レキシトロプシン
、デュオカルマイシン、タキサン、ピューロマイシン、ドラスタチン、メイタンシノイド
、及びビンカアルカロイドのうちの少なくとも１つであり得る。
薬剤は、還元されたタンパク質の少なくとも１つのチオール基をその薬剤に連結するよ
うに適合されたリンカー部分であり得る。このリンカー部分は、切断可能なリンカーまた
は切断不可能なリンカーであり得る。このリンカー部分は、細胞内条件下で切断されやす
いリンカーであり得る。このリンカー部分は、細胞内プロテアーゼによって切断可能なペ
プチドリンカーであり得る。このリンカー部分は、ジペプチドリンカーであり得る。ジペ
プチドリンカーは、バリン－シトルリン（ｖａｌ－ｃｉｔ）またはフェニルアラニン－リ
ジン（ｐｈｅ－ｌｙｓ）リンカーであり得る。ジペプチドリンカーは、遊離チオールと反
応して共有結合を形成するマレイミド官能基であり得る。
タンパク質－薬剤コンジュゲートは、ａＣＤ２２－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＣＤ
２２－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＬｙ６Ｅ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＬｙ６Ｅ
－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＣＤ７９ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＣＤ７９ｂ
－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＮａＰｉ２ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＮａＰｉ
２ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＭＵＣ１６－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＭＵＣ
１６－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＳＴＥＡＰ１、及びａＥＴＢＲのうちの１つであり
得る。
本発明の別の態様は、溶液中で、少なくとも１つのトリスルフィド結合を含む少なくと
も１つの単離された抗体を、約５．５～約７．５のｐＨのＴＣＥＰと接触させることと、
その溶液を窒素ガスと接触させることとを含む、単離された抗体中のトリスルフィド結合
のジスルフィド結合への変換方法を提供する。その後、単離された抗体はオーリスタチン
またはその誘導体にコンジュゲートされて、抗体－薬物コンジュゲート（ＡＤＣ）を形成
する。
本開示の方法及び組成物のさらなる実施形態は、少なくとも部分的に以下に続く記述に
記載されているか、その記述から理解され得るか、または本開示の方法及び組成物を実施
することによって習得され得る。前述の簡単な説明及び以下の発明を実施するための形態
は、例示及び説明するためのものであり、特許請求されるように本発明を限定するもので
はない。
異なる割合のトリスルフィドを含有するｍＡｂ中間体を使用して部分的還元反応及びその後のコンジュゲーション反応を行った後のＲＰ－ＨＰＬＣによる遊離薬物二量体の測定結果を示す。図１Ａは、出発ｍＡｂ中間体中にトリスルフィドを含有しないａＣＤ７９ｂ－ｖｃＭＭＡＥ（対照）についてのインプロセスコンジュゲーションプールの遊離薬物分析を示し、図１Ｂは、出発ｍＡｂ中間体中に約５～６％の測定されたトリスルフィドを含有するａＣＤ２２－ｖｃＭＭＡＥについての同じ分析を示す。 薬物コンジュゲーション前の、異なる割合のトリスルフィドを含有する部分的に還元されたｍＡｂ中間体の緩衝液交換後のＲＰ－ＨＰＬＣによる遊離薬物二量体の測定結果を示す。図１Ａは、出発ｍＡｂ中間体中にトリスルフィドを含有しないａＣＤ７９ｂ－ｖｃＭＭＡＥ（対照）についてのインプロセスコンジュゲーションプールの遊離薬物分析を示し、図１Ｂは、出発ｍＡｂ中間体中に約５～６％の測定されたトリスルフィドを含有するａＣＤ２２－ｖｃＭＭＡＥについての同じ分析を示す。 異なる割合のトリスルフィドを含有するｍＡｂ中間体の部分的還元中の加速された混合の影響を示す。上の線は、還元中に７５ＲＰＭの混合速度を使用したａＭＵＣ１６－ｖｃＭＭＡＥのインプロセスコンジュゲーションプールの遊離薬物分析を示す（標的混合対照）。３つ目の線は、全還元反応を通して４００ＲＰＭの混合速度を使用したときの遊離薬物二量体の同じ分析を示す（拘束混合）。中間の線は、還元反応の８５分間にわたって７５ＲＰＭを使用し、かつ還元反応の最後の５分間にわたって４００ＲＰＭの混合速度を使用した混合速度プロトコルの遊離薬物分析を示す（５分間の高速混合、合計還元時間：９０分間）。バックグラウンド対照を、製剤緩衝液ブランクの遊離薬物分析である別個の一番下の線に示す。 異なる割合のトリスルフィドを含有するｍＡｂ中間体の部分的還元中のＮ２ガススパージの影響を示す。部分的還元反応中、窒素ガスを下流コンジュゲーション反応の直前に還元プールに通気させた。図４Ａは、部分的還元反応の最後の５分間のＮ２スパージを伴う（下の線）及び伴わない（上の線）ａＣＤ２２－ｖｃＭＭＡＥのインプロセスコンジュゲーションプールにおける遊離薬物を示す。図４Ｂは、ＴＣＥＰ部分的還元反応の最後の５分間のＮ２スパージを伴う（下の線）及び伴わない（上の線）ａＬｙ６Ｅ－ｖｃＭＭＡＥのコンジュゲーションプールの遊離薬物分析を示す。 図５Ａ及び図５Ｂは、遊離薬物二量体の存在、低減、又は排除についてＲＰ －ＨＰＬＣアッセイによる分析の結果を示す。図５Ａは、ＴＣＥＰによる還元反応の結果を示し、図５Ｂは、ＤＴＴによる還元反応の結果を示す。 図６は、コンジュゲートされた試料をＲＰ－ＨＰＬＣアッセイによって分析 して、形成された遊離薬物二量体の量を監視した結果を示し、スパージ時間が増加するにつれて遊離薬物二量体ピーク面積が減少することを示す。
本発明の代表的な実施形態についてこれから詳細に言及する。本発明が列挙される実施
形態とともに説明されているが、本発明がそれらの実施形態に限定されるようには意図さ
れていないことが理解されよう。それとは逆に、本発明は、特許請求の範囲によって定義
される本発明の範囲内に包含され得るすべての代替案、修正、及び等価物を網羅するよう
意図されている。
当業者であれば、本発明の実施に使用することができ、かつその範囲内である本明細書
に記載のものと同様または同等の多くの方法及び材料を認識するであろう。本発明は、記
載の方法及び材料に決して限定されない。
定義
別途定義されない限り、本明細書で使用される専門用語及び科学用語は、本発明が属す
る当業者が一般に理解する意味と同じ意味を有するものとする。本明細書に記載のものと
同様または同等のいずれの方法、デバイス、及び材料も本発明の実施または試験に使用す
ることができるが、好ましい方法、デバイス、及び材料についてこれから説明する。
添付の特許請求の範囲を含む本出願で使用される場合、単数形「ａ」、「ａｎ」、及び
「ｔｈｅ」は、別途文脈が明確に指示しない限り、複数参照を含み、「少なくとも１つ」
及び「１つ以上」と同義に使用される。したがって、「ポリヌクレオチド（ａ ｐｏｌｙ
ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）」という言及は、複数のポリヌクレオチドまたは遺伝子を含むと
いった具合である。
本明細書で使用される場合、「約」という用語は、数値が関連する品目の基本的な機能
が変化しないような数値のわずかな変更または変動を表す。
本明細書で使用される場合、「ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ」、「ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ」、「
ｉｎｃｌｕｄｅｓ」、「ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ」、「ｃｏｎｔａｉｎｓ」、「ｃｏｎｔａｉ
ｎｉｎｇ」、及びそれらの任意の変形は、ある要素または要素の一覧を備える、含む、ま
たは含有するプロセス、方法、プロセスによる産物、または組成物が、それらの要素のみ
ならず、明確に列記されていないか、またはかかるプロセス、方法、プロセスによる産物
、若しくは組成物に内在する他の要素も含み得るように、非排他的な包含を網羅するよう
意図されている。
本明細書における任意の数値範囲（例えば、投薬量範囲）への言及は、その範囲に包含
される各数値（分数及び整数を含む）を明確に含む。例えば、本明細書における「ｘ未満
」の範囲への言及（ここで、ｘは特定の数である）は、整数ｘ－１、ｘ－２、ｘ－３、ｘ
－４、ｘ－５、ｘ－６等、及び分数ｘ－０．１、ｘ－０．２、ｘ－０．３、ｘ－０．４、
ｘ－０．５、ｘ－０．６等を含む。さらに別の実例では、本明細書における「ｘ～ｙ」の
範囲への言及（ここで、ｘは特定の数であり、ｙは特定の数である）は、各整数ｘ、ｘ＋
１、ｘ＋２…～ｙ－２、ｙ－１、ｙ、ならびにｘ＋０．１、ｘ＋０．２、ｘ＋０．３…～
ｙ－０．２、ｙ－０．１等の各分数を含む。別の例では、「少なくとも９５％」という用
語は、例えば、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％、及び１００％等を含む、９５
％～１００％の各数値（分数及び整数を含む）を含む。
「治療」薬とは、個体における所望の治療応答をもたらすのに有効な化合物または組成
物を意味する。
本発明の方法における使用に好適なタンパク質には、天然または合成（すなわち、組換
え）起源のタンパク質が含まれ、本発明による方法は、任意の源、例えば、植物または動
物から抽出されたタンパク質に適用され得る。これらのタンパク質は、上で定義される治
療用タンパク質であり得、通常、１つ以上のジスルフィド結合及び１つ以上のトリスルフ
ィド結合を含む。例示のタンパク質は、スーパーオキシドジスムターゼ、インターロイキ
ン、成長ホルモン、及び抗体または抗体断片を含む。
反応性スルフィドは、硫化水素（Ｈ２Ｓ）ならびに／またはその脱プロトン化形態（す
なわち、ＨＳ－及び／若しくはＳ２ －）を含み得る。
「トリスルフィド結合」は、さらなる硫黄原子のジスルフィド結合への挿入によって生
成され、それにより３つの連続した硫黄原子の共有結合がもたらされる。トリスルフィド
結合は、タンパク質中のシステイン残基間に生じ得、分子内（すなわち、同じタンパク質
中の２つのシステイン間）または分子間（すなわち、別個のタンパク質中の２つのシステ
イン間）に生じ得る。ＩｇＧｌ抗体等の抗体の場合、２つの分子間ジスルフィド結合が重
鎖を一緒に連結し、１つの分子間ジスルフィド結合が重鎖及び軽鎖も各々連結する。同様
に、ＩｇＧ２分子は、重鎖を連結する３つの分子間ジスルフィド結合を含み、ＩｇＧ３分
子は、重鎖を連結する６～１６個の分子間ジスルフィド結合を含む。トリスルフィド修飾
は、これらのジスルフィド連結のいずれかで生じ得るが、重鎖－重鎖（ＨＨ）連結よりも
重鎖－軽鎖（ＨＬ）連結でより頻繁に生じる。
タンパク質中のトリスルフィド結合の化学的還元が反応性スルフィド種を放出し、これ
により薬物及びタンパク質二量体または他の望ましくない潜在的に危険な誘導体の形成が
誘導され得ると考えられている。多くの場合、トリスルフィド結合の形成を阻止すること
も、タンパク質中に存在するすべてのトリスルフィド結合を排除することも実現可能では
ないが、本発明者らは、コンジュゲーション反応におけるタンパク質還元中に薬物及び／
またはタンパク質不純物（すなわち、望ましくない化学反応生成物）の形成を低減または
排除することが可能であることを見出した。これらの望ましくない化学反応生成物を低減
または排除する方法は、化学反応の液体媒体からの反応性スルフィド種の除去を含む。
単離されたタンパク質の還元
本発明の方法に有用なジスルフィド結合及びトリスルフィド結合を含むタンパク質は、
天然源からの単離（天然に存在するタンパク質の場合）、ポリペプチドをコードする、以
前に調製されたＤＮＡの部位特異的（またはオリゴヌクレオチド媒介）変異生成及びカセ
ット変異生成を含み得る組換えタンパク質産生方法を含むが、これらに限定されない様々
な方法によって得ることができる。変異生成プロトコル、キット、及び試薬、例えば、Ｑ
ｕｉｋＣｈａｎｇｅ（商標）Ｍｕｌｔｉ Ｓｉｔｅ－Ｄｉｒｅｃｔ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓ
ｉｓ Ｋｉｔ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ，Ｌａ Ｊｏｌｌａ，Ｃａｌｉｆ．）は、市販のも
のである。
これらの単離されたタンパク質は、既知のオリゴペプチド合成方法を使用して化学的に
合成され得るか、または組換え技術を使用して調製及び精製され得る。適切なアミノ酸配
列またはその部分は、固相技法を使用する直接ペプチド合成によって産生され得る（Ｓｔ
ｅｗａｒｔ ｅｔ ａｌ．，Ｓｏｌｉｄ－Ｐｈａｓｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓ
ｉｓ，（１９６９）Ｗ．Ｈ．Ｆｒｅｅｍａｎ Ｃｏ．，Ｓａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ，Ｃ
ａｌｉｆ．、Ｍｅｒｒｉｆｉｅｌｄ，（１９６３）Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，８５
：２１４９－２１５４）。インビトロタンパク質合成は、手動技法を使用して、または自
動で行われ得る。自動固相合成は、例えば、ｔ－ＢＯＣまたはＦｍｏｃ保護アミノ酸を用
いて、かつ製造業者の指示を使用したＡｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ Ｐｅｐｔ
ｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｚｅｒ（Ｆｏｓｔｅｒ Ｃｉｔｙ，Ｃａｌｉｆ．）を使用して
達成され得る。単離されたタンパク質の様々な部分が別個に化学的に合成され、化学的ま
たは酵素的方法を使用して組み合わせられて、本発明の方法における使用のための所望の
単離されたタンパク質を産生することができる。
さらに、抗体断片を含むタンパク質断片が、本発明の方法において単離されたタンパク
質として使用され得る。従来、抗体断片は、インタクトな抗体のタンパク質分解消化によ
り得られていた（Ｍｏｒｉｍｏｔｏ ｅｔ ａｌ（１９９２）Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂ
ｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ ２４：１０
７－１１７、及びＢｒｅｎｎａｎ ｅｔ ａｌ（１９８５）Ｓｃｉｅｎｃｅ，２２９：８
１）か、または組換え宿主細胞によって直接産生されていた。Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａ
ｂ）２、Ｆｖ断片、ダイアボディ、一本鎖抗体、ｓｃＦｖ断片、またはｓｃＦｖ－Ｆｃ抗
体断片はすべて、大腸菌で発現し、それから分泌され、それ故に、大量のこれらの断片の
容易な産生を可能にし得る。抗体断片は、抗体ファージライブラリから単離され得る。あ
るいは、Ｆａｂ’－ＳＨ断片は、大腸菌から直接回収され、化学的に結合されて、Ｆ（ａ
ｂ’）２断片を形成することができる（Ｃａｒｔｅｒ ｅｔ ａｌ（１９９２）Ｂｉｏ／
Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ １０：１６３－１６７）か、または組換え宿主細胞培養から直接
単離され得る。この抗体は、一本鎖Ｆｖ断片（ｓｃＦｖ）であり得る。この抗体断片は、
「直鎖抗体」でもあり得る（米国特許第５，６４１，８７０号）。かかる直鎖抗体断片は
、単一特異的または二重特異的であり得る。この抗体または抗体断片は、ＩｇＧ抗体であ
り得る。この抗体は、ヒトモノクローナル抗体であり得る。
単離された抗体は、指定され、設計された選択的部位で、抗体が抗体－薬物コンジュゲ
ート（ＡＤＣ）化合物等の化合物を薬物分子とコンジュゲートすることを可能にするシス
テイン操作抗体でもあり得る。抗体表面上の反応性システイン残基は、マレイミドまたは
ハロアセチル等のチオール反応基による薬物部分の特異的コンジュゲーションを可能にす
る。Ｃｙｓ残基のマレイミド基に対するチオール官能基の求核反応性は、リジン残基のア
ミノ基またはＮ末端アミノ基等のタンパク質中のいずれの他のアミノ酸官能基と比較して
、約１０００倍高い。ヨードアセチル及びマレイミド試薬中のチオール特異的官能基は、
アミン基と反応することができるが、典型的には、より高いｐＨ（９．０超）及びより長
い反応時間が必要である（Ｇａｒｍａｎ，１９９７，Ｎｏｎ－Ｒａｄｉｏａｃｔｉｖｅ
Ｌａｂｅｌｌｉｎｇ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ，Ａｃａｄｅｍｉｃ
Ｐｒｅｓｓ，Ｌｏｎｄｏｎ）。
ジスルフィド結合及びトリスルフィド結合を含む抗体が使用される実施形態では、抗体
は、薬物がコンジュゲートされ得る十分に反応性があるチオール基を形成するために還元
され得るスルフィド結合を１つのみまたはいくつか有し得る。このタンパク質は、重鎖を
連結するヒンジ領域内に２つ、ならびにＦａｂ領域付近の軽鎖と重鎖との間に各々１つの
合計４つの鎖間ジスルフィドを有するＩｇＧ１モノクローナル抗体であり得る。各還元さ
れた鎖間ジスルフィド結合は、２つの遊離チオールをもたらし、各々薬物とのコンジュゲ
ーションに利用可能である。非変性条件下でのかかる抗体中間体の還元は、典型的には、
鎖間ジスルフィド結合のみを還元し、鎖内結合は還元しない。したがって、鎖間ジスルフ
ィド結合の完全な還元により、ＩｇＧ１抗体中間体１モルにつき合計８モルの遊離チオー
ルがもたらされる。
この抗体は、ヒト免疫グロブリン定常領域を有し得る。この抗体または抗体断片は、ヒ
トＩｇＧ定常領域を含み得、ＩｇＧ定常領域のアイソタイプは、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、Ｉ
ｇＧ３、またはＩｇＧ４であり得る。特定の実施形態では、ＩｇＧ定常領域のアイソタイ
プは、ＩｇＧ１である。
この抗体または抗体断片中に存在するスルフィド結合は、抗体重鎖と抗体軽鎖との間、
または抗体重鎖間、または抗体重鎖と抗体軽鎖との間及び抗体重鎖間の両方に存在する。
この抗体または抗体断片は、軽鎖定常ドメインを含み得る。この軽鎖定常ドメインは、カ
ッパ定常ドメインであり得る。この抗体は、重鎖を連結するヒンジ領域内に２つのスルフ
ィド結合、ならびに軽鎖と重鎖との間に各々１つのスルフィド結合を含む４つの鎖間スル
フィド結合を有するＩｇＧ１モノクローナル抗体であり得る。
典型的には、タンパク質中のスルフィド結合のサブセットのみがトリスルフィド結合と
して存在する。単離されたタンパク質中のスルフィド結合の約１％～約２０％がトリスル
フィド結合であり得るか、あるいは、単離されたタンパク質中のスルフィド結合の約１％
～約１８％、約２％～約１６％、約３％～約１２％、約４％～約１０％、または約５％～
約７％がトリスルフィド結合である。単離されたタンパク質中のトリスルフィド結合の少
なくとも約８０％が還元ステップで還元され得るか、あるいは、単離されたタンパク質中
のトリスルフィド結合の少なくとも約８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％
、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％
、９７％、９８％、９９％、または１００％が還元ステップで還元される。
抗体を含む単離されたタンパク質は、部分的または完全還元条件下で還元されて、反応
性システインチオール基を生成する。還元剤としては、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）、
ベータ－メルカプトエタノール（βＭＥ）、トリス（２－カルボキシエチル）ホスフィン
（ＴＣＥＰ）、システイン、Ｌ－システイン、還元グルタチオン（ＧＳＨ）、及びＬ－Ｇ
ＳＨのうちの少なくとも１つが挙げられ得る。抗体がこれらの方法で使用される場合、還
元剤は、好ましくは、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）及びトリカルボニルエチルホスフィ
ン（ＴＣＥＰ）のうちの一方または両方であり、還元反応は、非変性条件下で実行される
。ＴＣＥＰは、典型的には、単離されたタンパク質に対するＴＣＥＰの所定のモル比で還
元反応において使用される。典型的には、ＴＣＥＰは、単離されたタンパク質に対してモ
ル過剰でこの反応に添加される。ＴＣＥＰは、約０．１～約８ｍＭ、約０．１～約５ｍＭ
、約０．１～約３ｍＭ、約０．１～約１ｍＭ、約８ｍＭ、約５ｍＭ、約３ｍＭ、約１ｍＭ
、または約０．５ｍＭの濃度で還元反応に添加される。単離された抗体の使用時、還元ス
テップ後に、典型的には、単離されたタンパク質１モル還元につき約４～約８モルのチオ
ール部分が、薬剤とのコンジュゲーションに利用可能である。
還元反応は、約ｐＨ５～約ｐＨ８、または約ｐＨ５．５～約ｐＨ７．５、または約ｐＨ
６～約ｐＨ７のｐＨ、または約ｐＨ５．５、または約ｐＨ６．５を含み得る、ｐＨ７未満
のｐＨで実行され得る。
還元反応は、少なくとも約５分間、約１０分間、約２０分間、約３０分間、約４０分間
、約５０分間、約６０分間、約９０分間、約２時間、約３時間、約４時間、または約５時
間の期間にわたって行われ得る。還元反応の期間は、約２４時間未満、約２０時間未満、
約１２時間未満、または約６時間未満であり得る。還元反応は、約１時間行われる場合も
ある。
還元反応は、薬剤が連結し得る少なくとも１つのチオール基を有する還元されたタンパ
ク質を含有する組成物の産生をもたらす。さらに、トリスルフィド結合が単離されたタン
パク質中に存在した場合、還元ステップ前に、結果として生じる組成物は、反応性スルフ
ィド（複数可）も含有する。
還元反応によって産生された組成物中の反応性スルフィドの含有量は、組成物のｐＨを
約５．０～約６．０のｐＨ若しくは約５．２～約５．８のｐＨに調整することによって、
または組成物のｐＨを約ｐＨ５．５のｐＨに調整することによって減少させることができ
る。還元反応を弱酸性ｐＨで行うことにより、還元反応の全体的有効性が低減し得るが、
これらの弱酸性反応条件は、組成物中の反応性スルフィドの含有量も低減する。あるいは
、組成物のｐＨは、還元反応が完了した後に、約７．０の中性ｐＨから約５．０～約６．
０の弱酸性ｐＨに調整され得る。
還元反応におけるｐＨの選択は、単離されたタンパク質の他の望ましくないその誘導体
（例えば、その二量体またはより高位のオリゴマー、その脱アミド化形態、そのスルホキ
シド化形態等）の形成に対する安定性、沈殿回避等の他の要因にも影響される一方で、組
成物中の反応性スルフィドの含有量の産生を最小限に抑えるよう努める。
還元反応によって産生された組成物中の反応性スルフィドの含有量は、組成物中の液体
のある特定の一部を、実質的に低減した反応性スルフィド含有量を有するか、または反応
性スルフィド含有量を有しない新鮮なまたは新たな液体と置き換え、それにより全組成物
中の反応性スルフィドの含有量を減らすことによっても減少し得る。これは、組成物中の
還元されたタンパク質を固体支持体と会合させ、その後、還元されたタンパク質を１つ以
上の洗浄ステップで洗浄することによって達成され得る。固体支持体と会合した組成物中
の還元されたタンパク質は、緩衝液、安定剤、ｐＨ調整剤、タンパク質変性剤等のうちの
１つ以上を含み得る水性媒体で洗浄され得る。例えば、還元されたタンパク質が固体支持
体と会合した後にＰＢＳ洗浄が適用され、それにより還元反応後に組成物中に存在する反
応性スルフィド種のいくらかまたはすべてを洗い流すことができる。この洗浄を使用して
、例えば、他の不純物を取り除くこともできる。例えば、還元されたタンパク質を含む組
成物が固体支持体と会合した後に、高塩濃度緩衝溶液での洗浄を使用して、不純物を取り
除くことを促進することもできる。各々異なる液体を含むいくつかの洗浄液を使用するこ
とも可能である。例えば、薬物を還元されたタンパク質にコンジュゲートするステップの
前に、高塩濃度洗浄を、組成物中に存在する緩衝液を置き換えるか、または組成物のｐＨ
を調整するように設計された洗浄と組み合わせることができる。さらにまたはあるいは、
還元されたタンパク質が固体支持体と会合した後に洗浄が適用されて、還元反応が完了し
たと見なされたときに、タンパク質から還元剤を除去することができる。さらにまたはあ
るいは、別の洗浄、例えば、低塩濃度洗浄を適用して、固体支持体からの還元されたタン
パク質の効率的な解離、例えば、溶出を促進することができる。還元されたタンパク質を
含有する組成物の少なくとも９０％が、反応性スルフィドを欠く代替溶液と置き換えられ
得る。
固体支持体は、濾過膜、選択性透過膜、及びクロマトグラフィー樹脂のうちの少なくと
も１つを含み得る。例示の濾過膜としては、交差流濾過（別名、接線流濾過、ＴＦＦ）膜
または全量濾過膜が挙げられ得る。例示の選択性透過膜としては、透析膜、脱塩膜、及び
緩衝液交換膜が挙げられ得る。
還元反応によって産生された組成物中の反応性スルフィドの含有量は、還元反応の成分
の混合速度を増大させることによって減少する。この増大した混合速度により、ガスが開
放反応器ポートを通して放出されるときに反応性スルフィド種が反応から逃げることが可
能になり得る。
これらの還元反応のために、最適混合速度が典型的には確立され、単離されたタンパク
質中に存在するトリスルフィド結合及びジスルフィド結合の完全または部分的還元が、薬
物分子へのその後のコンジュゲーションに利用可能なチオール部分の平均目標レベルまで
経済的かつ効率的に低減される。還元反応中に形成された組成物からの反応性スルフィド
種の排除を強化するために、混合速度が、還元反応時間のすべてまたは少なくとも一部に
わたって増大し得る。例えば、混合速度は、還元反応のために確立された最適混合速度を
少なくとも１０％、２０％、４０％、８０％、１００％、１５０％、２００％、２５０％
、３００％、３５０％、４００％、４５０％、５００％、または５５０％超えて増大し得
る。別の例として、混合速度は、還元反応のために確立された最適混合速度を２倍、３倍
、４倍、または５倍超えて増大し得る。混合速度は、還元反応が行われる全時間未満にわ
たって、還元反応のために確立された最適な混合速度を超えて増大し得る。混合速度は、
還元反応が行われる時間の後半部分中にのみ増大し得る。例えば、混合速度は、還元反応
が行われる時間の後半中にのみ増大し得る。あるいは、混合速度は、還元反応が行われる
時間の最後の４０％、３０％、２０％、１０％、または５％中にのみ増大し得る。特定の
例では、還元反応が９０分間行われ、混合速度は、還元反応の最後の５分間にわたって約
２００％～約５００％に増大する。混合速度は、還元反応が行われる最初の時間中にのみ
増大する場合もある。例えば、混合速度は、還元反応が行われる時間の前半中にのみ増大
し得る。例えば、混合速度は、還元反応が行われる時間の最初の４０％、３０％、２０％
、１０％、または５％中にのみ増大し得る。特定の例では、還元反応が９０分間行われ、
混合速度は、還元反応の最初の５分間にわたって約２００％～約５００％に増大する。
還元反応によって産生された組成物中の反応性スルフィドの含有量は、窒素源との還元
反応中に形成された組成物と接触させることによって減少し得る。
窒素源としては、窒素ガス、ならびに空気及び／またはアルゴンガスが挙げられ得る。
窒素源としては、「希ガス」（ヘリウム（Ｈｅ）、ネオン（Ｎｅ）、アルゴン（Ａｒ）、
クリプトン（Ｋｒ）、及びキセノン（Ｘｅ）等）、とりわけ、ヘリウム及びアルゴンも挙
げられ得る。
還元反応で形成された組成物を窒素源と接触させる方法は、例えば、撹拌若しくは他の
混合手段を用いてまたは用いずに、窒素含有ガスを液体組成物に通す（例えば、ガス泡流
を媒体に送る）ことによって、または相間のガス拡散が生じ得る大きい液相／ガス相界面
を作り出す他の手段によって行われ得る。
組成物中の反応性スルフィド種を低減するために調整され得るパラメータは、窒素含有
ガスと液体組成物との間の接触期間、窒素含有ガスの液体組成物への導入／通過速度、組
成物と窒素含有ガスの混合速度、液体媒体のｐＨ、液体組成物及び／または窒素含有ガス
の温度、ガス相と液相との間の接触表面積、ならびに用いられる窒素含有ガスの体積を含
む。さらに、窒素含有ガスがスパージストーンを通して導入されて液体組成物と接触し、
この場合、スパージストーンの位置及び大きさも、組成物からの反応性窒素種の低減また
は排除において影響力のあるパラメータである。
窒素含有ガスと液体組成物との間の接触期間は、好ましくは、組成物中の反応性スルフ
ィド種の存在を低減または排除するのに十分な時間である。これは、例えば、約１分間～
約２４０分間であり得る。窒素含有ガスは、還元反応の全期間にわたって還元反応の組成
物と接触し得る。窒素含有ガスは、還元反応が行われる時間の一部のみにわたって還元反
応の組成物と接触する場合もある。窒素含有ガスは、還元反応が完了したと見なされたと
きに、または組成物中の還元剤を除去するための緩衝液交換等の他の手段によって停止さ
れたときに、または組成物に導入された薬剤でクエンチして還元反応を停止することによ
って、還元反応の組成物と接触する場合もある。窒素含有ガスは、還元反応が行われる時
間の最初の部分にわたって還元反応の組成物と接触する場合もある。例えば、窒素含有ガ
スは、還元反応が行われる時間の最初の４０％、３０％、２０％、１０％、または５％に
わたって還元反応の組成物と接触する場合もある。窒素含有ガスは、約３０分間、約６０
分間、または約９０分間の期間にわたって還元反応の組成物と接触し得る。
窒素含有ガスの液体組成物への導入または通過速度は、組成物中の反応性スルフィド種
の存在を実質的に低減または排除するのに十分な、窒素含有ガスの還元反応の組成物への
制御された導入速度を含み得る。窒素含有ガスは、約１０立法センチメートル／分～約６
０立法センチメートル／分の速度で、組成物に導入され得る。窒素含有ガスは、約５リッ
トル／時間～約３０リットル／時間、約１０Ｌ／時間～約２５Ｌ／時間、または約１５Ｌ
／時間～約２０Ｌ／時間の速度で、組成物に導入され得る。窒素含有ガスは、約０．２５
～約１（ガス体積／液体体積／分）の速度で、組成物に導入され得る。
組成物と窒素含有ガスの混合速度は、還元反応の組成物の実質的にすべてを窒素含有ガ
スと接触させ、それにより組成物中に存在する反応性スルフィド種を実質的に低減または
排除するのに十分な混合速度であり得る。組成物を窒素含有ガスと接触させるステップ中
の還元反応の混合速度は、還元反応にとっての最適混合速度を少なくとも１０％、２０％
、３０％、４０％、５０％、１００％、２００％、３００％、または４００％超え得る。
組成物を窒素含有ガスと接触させるステップ中の還元反応の混合速度は、還元反応にとっ
ての最適混合速度を約２００％超え得る。
窒素含有ガスが組成物と接触する期間中の還元反応のｐＨは、還元反応を単離されたタ
ンパク質中に存在するスルフィド結合のいくらかの部分またはすべてを還元する所望の終
点に至らせるのに最適なｐＨ範囲であり得る。このｐＨ範囲は、組成物の窒素含有ガスと
の接触とともに、良好な還元反応収率を維持しながら、組成物中に存在する活性自己種を
実質的に低減または排除するように調整され得る。還元反応のｐＨは、窒素含有ガスが還
元反応の組成物と接触する間、約ｐＨ４．０～約ｐＨ９．０のｐＨ範囲内に維持され得る
。還元反応のｐＨは、窒素含有ガスが組成物と接触する間、約ｐＨ５．０～約ｐＨ８．０
のｐＨ範囲内に維持される場合もある。還元反応のｐＨは、窒素含有ガスが組成物と接触
する間、約ｐＨ５．０～約ｐＨ６．０の弱酸性ｐＨ範囲内に維持され得る。
還元反応液体組成物及び窒素含有ガスの温度は、還元反応に最適な温度範囲内に維持さ
れ得る。この温度範囲は、窒素含有ガスの組成物への導入とともに、還元反応にとって良
好な収率を維持しながら、還元反応の組成物中の反応性スルフィド種を実質的に低減また
は排除するように修正され得る。還元反応の液体組成物の温度は、窒素含有ガスが組成物
と接触する時間中約４℃～約４０℃の温度で維持され得る。還元反応の液体組成物の温度
は、約１５℃～約４０℃の温度で維持される場合もある。還元反応の液体組成物の温度は
、約２０℃または約３０℃の温度で維持される場合もある。
窒素含有ガスが反応組成物と接触する時間中の還元反応の反応条件は、窒素含有ガス相
と液体反応相との間の接触表面積を、反応組成物中に存在する反応性スルフィド種を実質
的に低減または排除する範囲内に維持するように調整され得る。組成物の体積に対する窒
素含有ガスの表面積の比率は、約０．１～約３である。組成物の体積に対する窒素含有ガ
スの表面積の比率は、約２であり得る。還元反応の液体組成物に導入される窒素含有ガス
の体積は、最適な速度及び液体反応成分の体積に対する表面積の比率を維持して、還元反
応の組成物中の反応性スルフィド種を実質的に低減または排除するように制御される。
さらに、規定のサイズのガス泡を発生させるデバイスを通して窒素含有ガスが制御可能
に導入されて還元反応の液体組成物と接触し得る。例えば、窒素含有ガスは、空気若しく
は「スパージ」ストーンまたは穿孔濾過ディスクを通して導入され得る。不活性金属スパ
ージストーンは、繰り返し使用されても良く、酸／塩基洗浄によって取り除かれても良く
、オートクレーブによって滅菌されても良い。スパージストーンは、形成されたガス泡を
反応流体上に直接浮上させるような方法で、還元反応の流体組成物中に垂直に配向され得
る。スパージストーンは、約２ミクロンの穴を有するステンレス鋼スパージストーンであ
り得る。スパージストーンは、直径１ｍｍ未満の気泡を最大５Ｌ／分の流速で発生させる
細孔を有し得る。この流速は、スパージストーンの上流に設置された質量流量コントロー
ラによって制御され得る。
ある特定の流速及びある特定の混合条件下での窒素含有ガスの導入により、還元反応の
組成物中に泡が作り出される場合があり、これにより還元反応の効率及び／または程度が
低減され得る。したがって、窒素含有ガスが還元反応に導入される場合、この反応は、ｔ
ｗｅｅｎ及び／または消泡剤の存在下で行われ得る。還元反応は、Ｔｗｅｅｎ－２０及び
Ｔｗｅｅｎ－８０のうちの少なくとも一方であるｔｗｅｅｎの存在下で行われ得る。還元
反応は、Ａｎｔｉｆｏａｍ－Ａ、Ａｎｔｉｆｏａｍ－Ｃ、及びポリエチレンオキシド等の
ポロキサマーのうちの少なくとも１つである消泡剤の存在下でも行われ得る。
還元されたタンパク質のコンジュゲーション
タンパク質にコンジュゲートされるべき治療薬は、リンカーを介して、還元されたタン
パク質のアミノ酸側鎖、または活性化アミノ酸側鎖、またはタンパク質中の操作されたシ
ステイン等と間接的にコンジュゲートされ得る。例えば、部分的に還元された抗体は、ビ
オチンとコンジュゲートされ得、薬剤は、アビジンまたはストレプトアビジンとコンジュ
ゲートされ得るか、またはその逆も可能であり得る。ビオチンは、ストレプトアビジンに
選択的に結合し、それ故に、この薬剤は、この間接的方法で、抗体とコンジュゲートされ
得る。
薬物リンカー部分及びコンジュゲーション法は、参照により本明細書に組み込まれる、
ＰＣＴ公開第ＷＯ２００４／０１０９５７号、米国特許第７，６５９，２４１号、同第７
，８２９，５３１号、及び同第７，８５１，４３７号に開示されている。
本発明の方法によって産生された部分的に還元された抗体は、例えばポリマー等のそれ
らの循環半減期を延長させ得る薬剤への共有コンジュゲーションによって化学的に修飾さ
れる場合もある。例示のポリマー及びそれらをペプチドに結合させる方法は、参照により
本明細書に組み込まれる、米国特許第４，７６６，１０６号、同第４，１７９，３３７号
、同第４，４９５，２８５号、及び同第４，６０９，５４６号で例証されている。これら
のポリマーは、ポリオキシエチル化ポリオール及びポリエチレングリコール（ＰＥＧ）（
例えば、約２，０００～約２０，０００等の約１，０００～約４０，０００の分子量を有
するＰＥＧ）を含み得る。
薬剤は、化学療法剤、核酸、サイトカイン、免疫抑制剤、放射性同位体、抗生物質、及
び治療抗体から選択される治療薬であり得る。治療薬は、化学療法剤であり得る。化学療
法剤は、オーリスタチン、ビンカアルカロイド、ポドフィロトキシン、タキサン、バッカ
チン誘導体、クリプトフィシン、メイタンシノイド、コンブレタスタチン、及びドラスタ
チンから選択される少なくとも１つの抗チューブリン剤であり得る。化学療法剤は、オー
リスタチン、ＤＮＡ副溝結合剤、ＤＮＡ副溝アルキル化剤、エンジイン、レキシトロプシ
ン、デュオカルマイシン、タキサン、ピューロマイシン、ドラスタチン、メイタンシノイ
ド、及びビンカアルカロイドのうちの少なくとも１つであり得る。化学療法剤は、ドラス
タチン、具体的には、オーリスタチン、特定の例では、モノメチルオーリスタチンＥ（Ｍ
ＭＡＥ）またはモノメチルオーリスタチンＦ（ＭＭＡＦ）であり得る。
還元されたタンパク質の少なくとも１つのチオール基にコンジュゲートされる薬剤は、
抗体薬物コンジュゲート（ＡＤＣ）を形成し得、それ故に、抗体及び薬物の両方を含み、
これらはリンカーを介して互いにコンジュゲートされ得る。
本発明の方法によるＡＤＣの形成時の薬物の還元された抗体へのコンジュゲーションに
おける使用に好適なリンカーとしては、リンカーの切断により薬物単位が細胞内環境下で
抗体から放出されるように細胞内条件下で切断可能なリンカーが挙げられる。あるいは、
このリンカーは、切断不可能である場合があり、薬物は、例えば、抗体分解によって放出
される。あるいは、このリンカーは、細胞内環境下（例えば、リソソームまたはエンドソ
ーム内）に存在する切断剤によって切断可能である。したがって、このリンカーは、リソ
ソームまたはエンドソームプロテアーゼを含むが、これらに限定されない細胞内ペプチダ
ーゼまたはプロテアーゼ酵素によって切断されるペプチジルリンカーであり得る。ペプチ
ジルリンカーは、少なくとも２アミノ酸長または少なくとも３アミノ酸長であり得る。切
断剤は、カテプシンＢ及びＤならびにプラスミンを含み得、これらのすべてがジペプチド
薬物誘導体を加水分解して、標的細胞内での活性薬物の放出をもたらすことが知られてい
る（例えば、Ｄｕｂｏｗｃｈｉｋ ａｎｄ Ｗａｌｋｅｒ，１９９９，Ｐｈａｒｍ．Ｔｈ
ｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ ８３：６７－１２３を参照のこと）。細胞内プロテアーゼによっ
て切断可能なペプチジルリンカーは、Ｖａｌ－Ｃｉｔ（バリン－シトルリン）リンカーま
たはＰｈｅ－Ｌｙｓ（フェニルアラニン－リジン）リンカーであり得る（例えば、ドキソ
ルビシンと、Ｖａｌ－Ｃｉｔリンカー及びＰｈｅ－Ｌｙｓリンカーの異なる例の合成につ
いて説明する、米国特許第６，２１４，３４５号を参照のこと）。このリンカーは、遊離
チオールと反応して共有結合を形成するマレイミド官能基であり得る。
薬剤を還元されたタンパク質の少なくとも１つのチオール基にコンジュゲートするステ
ップを使用して、抗癌治療薬を抗体にコンジュゲートして、ａＣＤ２２－ｖａｌ－ｃｉｔ
－ＭＭＡＥ、ａＣＤ２２－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＬｙ６Ｅ－ｖａｌ－ｃｉｔ－Ｍ
ＭＡＥ、ａＬｙ６Ｅ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＣＤ７９ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭ
ＡＥ、ａＣＤ７９ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＮａＰｉ２ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－Ｍ
ＭＡＥ、ａＮａＰｉ２ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＭＵＣ１６－ｖａｌ－ｃｉｔ－
ＭＭＡＥ、ＭＵＣ１６－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ｓＳＴＥＡＰ１、及びａＥＴＢＲの
うちの少なくとも１つを形成することができる。
本発明の方法の例示の一実施形態は、溶液中で、少なくとも１つのトリスルフィド結合
及び少なくとも１つのジスルフィド結合を含む少なくとも１つの単離された抗体を、約ｐ
Ｈ５．５～約ｐＨ７．５のｐＨのＴＣＥＰと接触させることと、この溶液を窒素ガスと接
触させることと、オーリスタチンまたはその誘導体を還元された抗体にコンジュゲートし
て、抗体－薬物コンジュゲート（ＡＤＣ）を形成することとによる、単離された抗体中の
トリスルフィド結合のジスルフィド結合への変換方法を提供する。
以下の実施例は、例証目的のためのみに提供されており、本発明の範囲を限定するよう
には意図されていない。
実施例１
この実施例は、様々なトリスルフィド含有量を含む抗体（抗ＣＤ７９ｂまたは抗ＣＤ２
２）の還元、及びＶａｌ－Ｃｉｔ（バリン－シトルリン）リンカーを介した抗癌ドラスタ
チン（ＭＭＡＥ）へのそのコンジュゲーション中の薬物二量体の形成について説明する。
これらのデータは、薬物二量体形成がこのモデル系中のｍＡｂバルク中間体のトリスルフ
ィド含有量に関連していることを実証する。
ＴＣＥＰを使用して異なる割合のトリスルフィド結合を含むｍＡｂ中間体（抗ＣＤ７９
ｂまたは抗ＣＤ２２）を部分的に還元し、その後のコンジュゲーション反応を薬物－リン
カーｖｃＭＭＡＥで行った。
コンジュゲートされていないｍＡｂ（５ｇ／Ｌ超）をｐＨ５．５～７．５のｐＨに調整
した。タンパク質濃度の決定後、所定のＴＣＥＰ：ｍＡｂ比（水中ＴＣＥＰの１０ｍＭス
トック溶液から）を使用して、ｐＨ調整した試料を室温で９０分間の目標還元時間にわた
って還元した。過剰な所望のマレイミド含有リンカー－薬物を使用して、部分的に還元さ
れたｍＡｂを即座にコンジュゲートした。未反応リンカー－薬物を過剰なＮ－アセチルシ
ステイン（ＮＡＣ）：リンカー薬物比（水中ＮＡＣの１０ｍＭストック溶液から）でクエ
ンチし、ｐＨを製剤ｐＨ条件と一致するように調整した。必要に応じて、コンジュゲート
された試料を製剤緩衝液に緩衝液交換して、その後の試料分析を妨害する可能性のあり得
る残留溶媒及び遊離薬物種を除去した。還元及びコンジュゲートされた組成物中の遊離薬
物の含有量をＲＰ－ＨＰＬＣによって分析した。
図１Ａに示されるように、いかなる薬物二量体も、出発ｍＡｂ中にトリスルフィドを含
有しないバルクｍＡｂ供給原料から形成されたａＣＤ７９ｂ－ｖｃＭＭＡＥコンジュゲー
トについてのインプロセスコンジュゲーションプールのＲＰ－ＨＰＬＣ分析からは検出さ
れていない。図１Ｂに示されるように、出発ｍＡｂ中間体中に約５～６％の測定されたト
リスルフィドを含有するａＣＤ２２－ｖｃＭＭＡＥについてのインプロセスコンジュゲー
ションプールの分析中に薬物二量体（ｖｃＭＭＡＥ二量体）が検出されている。
実施例２
この実施例は、その後のコンジュゲーション反応における薬物二量体の形成を低減また
は排除する手段として部分的に還元されたタンパク質の還元後の緩衝液交換の分析につい
て説明する。これらのデータは、ｖｃＭＭＡＥコンジュゲーション前の部分的に還元され
たｍＡｂ中間体の緩衝液交換がこのモデル系における薬物二量体の形成を低減することを
実証する。
実施例１に記載のＴＣＥＰを使用した部分的還元後、遠心分離緩衝液交換デバイス（Ｃ
ＥＮＴＩＲＣＯＮ（商標））を使用して、還元されたタンパク質プールを緩衝液交換した
。Ｃｅｎｔｒｉｃｏｎを使用した緩衝液交換中、水（緩衝液）及び低分子量溶質の両方を
名目分子量カットオフ膜フィルターに通過させ、もう一方の側（濾液）に収集する。還元
されたタンパク質が膜の試料側（保持液）に残り、ここで、膜を横断して水を反対側に移
動させたときにそれをより小さい体積に濃縮する。１０～３０ｋＤａの名目分子量カット
オフを有するＣｅｎｔｒｉｃｏｎ遠心分離濾過デバイスを製造業者の指示に従って使用し
た。実施例１に記載のＴＣＥＰ（約１～３ｍＬ）で部分的に還元されたタンパク質を単一
のＣｅｎｔｒｉｃｏｎデバイスに添加し、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．５）で希釈して
、デバイス中１０ｍＬの最終体積にした。Ｃｅｎｔｒｉｃｏｎデバイスを４５００ｇで２
０分間遠心分離した。緩衝液交換されたタンパク質の回収前に、１０ｍＬの１０ｍＭ Ｔ
ｒｉｓ（ｐＨ７．５）にさらに２回通過させて、Ｃｅｎｔｒｉｃｏｎデバイスの保持液試
料をさらに緩衝液交換した。緩衝液交換された部分的に還元されたタンパク質をＣｅｎｔ
ｒｉｃｏｎデバイスから回収し、その後の下流コンジュゲーションで使用した。
緩衝液交換後、部分的に還元されたｍＡｂ中間体をｖｃＭＭＡＥとコンジュゲートし、
遊離薬物二量体の含有量を実施例１に記載されるようにＲＰ－ＨＰＬＣによって測定した
。図２Ａに示されるように、ａＣＤ７９ｂ－ｖｃＭＭＡＥ抗体－薬物コンジュゲート（Ａ
ＤＣ）についてのインプロセスコンジュゲーションプールのＲＰ－ＨＰＬＣ分析は、遊離
薬物二量体（ｖｃＭＭＡＥ二量体）の形成をもたらす。しかしながら、図２Ｂに示される
ように、部分的に還元されたｍＡｂタンパク質中間体の緩衝液交換後に、同じａＣＤ２２
－ｖｃＭＭＡＥ ＡＤＣについてのインプロセスコンジュゲーションプールのＲＰ－ＨＰ
ＬＣ分析中に遊離薬物二量体は検出されていない。
実施例３
この実施例は、その後のコンジュゲーション反応における薬物二量体の形成を低減また
は排除する手段としてタンパク質の部分的還元中の増大した反応混合速度の分析について
説明する。これらのデータは、ｖｃＭＭＡＥコンジュゲーション前にｍＡｂ中間体の還元
反応時間の少なくとも一部にわたって混合速度を増大させることにより、このモデル系に
おける薬物二量体の形成を低減することができることを実証する。
実施例１に記載のＴＣＥＰを使用したｍＡｂ中間体（抗ＭＵＣ１６）の部分的還元中、
オーバーヘッド撹拌装置の混合速度を、ａＭＵＣ１６タンパク質の部分的還元に最適にな
るように事前に決定された目標混合速度から増大させた。混合速度を、１００ｍＬの反応
器内で磁気撹拌棒によって、または１００ｍＬのＥＡＳＹＭＡＸ（商標）反応器内でモー
ター式ガラス撹拌器によって制御した。磁気撹拌棒の混合速度を磁気撹拌プレート上の設
定によって決定し、ｒｐｍを手動で調整して、還元中の混合速度を変化させた。ＥＡＳＹ
ＭＡＸのガラス撹拌器を器具ソフトウェアによって制御し、混合速度を添付のソフトウェ
ア上の実験処方における器具タッチパッドまたは所定の設定を用いて手動で変化させた。
目標混合パラメータを使用して実施例１に記載されるようにコンジュゲーション反応を
開始し、実施例１に記載されるようにＲＰ－ＨＰＬＣ分析を行った。図３を参照して、Ｒ
Ｐ－ＨＰＬＣ分析を、バックグラウンド対照（別個の下の線）として製剤緩衝液ブランク
上で行った。
９０分間の全ＴＣＥＰ還元反応（目標混合対照）を通して７５ＲＰＭの混合速度の場合
、ａＭＵＣ１６－ｖｃＭＭＡＥについてのインプロセスコンジュゲーションプールのＲＰ
－ＨＰＬＣ分析は、遊離薬物二量体の形成を示す。
９０分間の全ＴＣＥＰ還元反応を通して４００ＲＰＭの混合速度（高速混合）の場合、
ａＭＵＣ１６－ｖｃＭＭＡＥについてのインプロセスコンジュゲーションプールのＲＰ－
ＨＰＬＣ分析は、遊離薬物二量体が検出されていないことを示す。
７５ＲＰＭ還元での８５分間のＴＣＥＰ還元反応の混合、その後、還元反応の最後の５
分間にわたる混合速度の４００ＲＰＭへの増大を含む組み合わせられた混合速度の場合（
５分間の高速混合、合計還元時間：９０分間）、ａＭＵＣ１６－ｖｃＭＭＡＥについての
インプロセスコンジュゲーションプールのＲＰ－ＨＰＬＣ分析は、遊離薬物二量体の形成
の実質的な低減を示す。
実施例４
この実施例は、その後のコンジュゲーション反応における薬物二量体の形成を低減また
は排除する手段としてタンパク質の部分的還元反応を窒素ガスでスパージする分析につい
て説明する。これらのデータは、ｖｃＭＭＡＥコンジュゲーション前にｍＡｂ中間体の還
元反応時間の少なくとも一部にわたって反応をスパージすることにより、このモデル系に
おける薬物二量体の形成を低減または排除することができることを実証する。
実施例１に記載されるようにＴＣＥＰを使用した２つのモデル抗体（抗ＣＤ２２及び抗
Ｌｙ６Ｅ）の部分的還元を行い、（実施例１に記載されるようにｖｃＭＭＡＥ薬物を使用
して）窒素ガスを下流コンジュゲーション反応の直前に還元プールに通気させることをさ
らに含んだ。管類を介して窒素タップに取り付けられたポリプロピレン血清学的ピペット
を通して窒素ガスを反応混合物に通気した。反応混合物をスパージする前に、ガス流量計
を使用して流速を測定する。流速が判明すると、窒素ガスラインを反応に追加し、還元中
の指定された開始時間までラインをクランプする。所定の終了時間まで反応をスパージし
、それらのラインを再クランプし、ピペットを反応器から除去する。実施例１に記載され
るように、ＡＤＣの結果として生じる組成物におけるＲＰ－ＨＰＬＣ分析をＲＰ－ＨＰＬ
Ｃを使用して行った。
図４Ａに示されるように、ＴＣＥＰ部分的還元反応の最後の５分間（合計還元時間：９
０分間）のＮ２ガススパージを伴う（下の線）及び伴わない（上の線）ａＣＤ２２－ｖｃ
ＭＭＡＥ ＡＤＣについてのインプロセスコンジュゲーションプールのＲＰ－ＨＰＬＣ分
析は、窒素スパージにより遊離ｖｃＭＭＡＥ薬物二量体の形成が排除されたことを実証す
る。同様に、図４Ｂに示されるように、ＴＣＥＰ部分的還元反応の最後の５分間（合計還
元時間：９０分間）のＮ２ガススパージを伴う（下の線）及び伴わない（上の線）ａＬｙ
６Ｅ－ｖｃＭＭＡＥ ＡＤＣについてのインプロセスコンジュゲーションプールのＲＰ－
ＨＰＬＣ分析も、窒素スパージにより遊離ｖｃＭＭＡＥ薬物二量体の形成が排除されたこ
とを実証する。
実施例５
この実施例は、その後のコンジュゲーション反応における薬物二量体の形成を低減また
は排除する手段としてタンパク質の部分的還元反応を空気でスパージする分析について説
明する。
約８～１２％トリスルフィドを有し、かつｖｃＭＭＡＥとコンジュゲートされたバルク
中間体抗体（抗ＭＵＣ１６）の２つの２１ｍＬ低減還元（ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｒｅｄｕ
ｃｔｉｏｎ）を、還元剤ＴＣＥＰまたはＤＴＴで行った。還元後、各反応（ＴＣＥＰ及び
ＤＴＴ）を３つのプール、１）窒素ガスでの５分間のスパージを受けたプール、２）空気
での５分間のスパージを受けたプール、及び３）いずれのガスでのスパージも受けなかっ
た対照反応に分けた。具体的には、８５分間の抗体還元後、ＴＣＥＰ還元及びＤＴＴ還元
抗体プールを各々、２つの１０ｍＬ試料（試料１～２）及び１つの１ｍＬ試料（試料３）
に分けた。試料１を、下流コンジュゲーションのために薬物を添加する前に窒素で５分間
スパージした。試料２を、下流コンジュゲーションのために薬物を添加する前に空気で５
分間スパージした。試料３（対照）をスパージせず、下流コンジュゲーションのために薬
物を添加する前に５分間保持した。これらの還元反応後、還元されたタンパク質をｖｃＭ
ＭＡＥとコンジュゲートし、ｖｃＭＭＡＥ遊離薬物二量体の存在についてＲＰ－ＨＰＬＣ
によって分析した。
ＲＰ－ＨＰＬＣアッセイを使用して、試料１～３の各コンジュゲーションプールを、遊
離薬物二量体の存在、低減、または排除について分析した。図５Ａに示されるように、Ｔ
ＣＥＰで還元した反応の場合、ｖｃＭＭＡＥ遊離薬物二量体不純物は、いずれのガスでの
スパージも受けなかった対照反応に存在し、窒素ガスでスパージした反応及び空気でスパ
ージした反応の両方では不在であった。
同様に、ＤＴＴで還元した反応の場合、図５Ｂに示されるように、ｖｃＭＭＡＥ遊離薬
物二量体不純物は、いずれのガスでのスパージも受けなかった対照反応に存在し、窒素ガ
スでスパージした反応及び空気でスパージした反応の両方では不在であった。これらの反
応の曲線下面積データを表１に示す。下流コンジュゲーション前の５分間の窒素または空
気でのスパージが、スパージなしの対照試料に対して、遊離薬物二量体種の形成を排除し
た。
Figure 0007219256000001
このデータは、トリスルフィド含有抗体における遊離薬物二量体を産生するためのチオ
ール還元剤ＤＴＴ及びＴＣＥＰの使用を実証する。さらに、このデータは、窒素等の不活
性ガスを使用して得られた結果と同様に、還元反応を空気でスパージすることにより、コ
ンジュゲーション中の遊離薬物二量体の形成が阻止されることを実証する。
実施例６
この実施例は、その後のコンジュゲーション反応における遊離薬物二量体の形成の低減
または阻止についてのタンパク質の還元反応中のスパージのタイミングの分析について説
明する。
還元反応中の窒素ガススパージのタイミングの影響を試験するために、スパージ時間を
変化させ、遊離薬物二量体ピーク面積をＲＰ－ＨＰＬＣアッセイによって監視した。バル
ク中間体抗体（抗Ｌｙ６Ｅ抗体）で単一の９０ｍＬ還元を行った。開始還元反応へのＴＣ
ＥＰの添加後、このプールを全９０分間の還元反応にわたって窒素でスパージした。還元
反応生成物の試料をスパージ開始前ならびにスパージ中に採取し、次いで、各試料をスパ
ージ後にコンジュゲートした。各コンジュゲートされた試料をＲＰ－ＨＰＬＣアッセイに
よって分析して、形成された遊離薬物（ｖｃＭＭＡＥ）二量体の量を監視した。図６に示
され、かつ表２に示されるように、遊離薬物二量体ピーク面積は、スパージ時間が増加す
るにつれて減少する。
Figure 0007219256000002
これらのデータは、遊離薬物二量体がスパージの３０分後に排除されることを実証する
。これらのデータは、還元開始時のスパージが遊離薬物二量体の形成を有効に低減し、そ
れ故に、このスパージが、同様の結果で、還元反応の最初に、またはその終わり頃に生じ
得ることも実証する。
本発明の前述の実施例は、例証及び説明の目的のために提示されている。さらに、これ
らの実施例は、本発明を本明細書に開示される形態に限定するようには意図されていない
。その結果、変形及び修正は、本発明の説明の教示に相応するものであり、関連技術の技
能または知識は、本発明の範囲内である。本明細書に提供される実施例に記載の特定の実
施形態は、本発明を実施するために既知の最良の形態をさらに説明するよう、かつ他の当
業者が、かかるまたは他の実施形態において、本発明の特定の用途または使用に必要な様
々な修正を伴って、本発明を利用することを可能にするよう意図されている。添付の特許
請求の範囲が先行技術で認められている範囲内で代替の実施形態を包含するよう解釈され
ることが意図されている。

Claims (121)

  1. 薬剤の、少なくとも１つのジスルフィド結合及び少なくとも１つのトリスルフィド結合を含むタンパク質中のチオール部分へのコンジュゲーション方法であって、
    （ａ）単離されたタンパク質中の少なくとも１つのスルフィド結合を還元して、反応性スルフィド及び少なくとも１つのチオール基を含む還元されたタンパク質を含む組成物を形成するステップと、
    （ｂ）前記組成物中の前記反応性スルフィドの含有量を減少させるステップであって、
    （ｉ）ステップ（ａ）における前記組成物を、前記組成物中の前記反応性スルフィドの含有量を減少させるのに十分な速度で混合すること、又は
    （ｉｉ）前記組成物を、空気又は窒素ガスの少なくとも１つを含む窒素源と接触させること
    を含むステップと、
    （ｃ）薬剤を前記還元されたタンパク質の前記少なくとも１つのチオール基にコンジュゲートして、タンパク質－薬剤コンジュゲートを形成するステップと、
    を含む、前記方法。
  2. ステップ（ａ）が、前記単離されたタンパク質の還元剤との接触による前記少なくとも１つのスルフィド結合の少なくとも部分的な還元を含む、請求項１に記載の方法。
  3. 前記単離されたタンパク質が少なくとも４つのジスルフィド結合を含む、請求項１に記載の方法。
  4. 前記単離されたタンパク質が少なくとも２つのトリスルフィド結合を含む、請求項１に記載の方法。
  5. ステップ（ａ）前に、前記単離されたタンパク質中の前記スルフィド結合の１％～２０％がトリスルフィド結合である、請求項１に記載の方法。
  6. ステップ（ａ）前に、前記単離されたタンパク質中の前記スルフィド結合の５％～７％がトリスルフィド結合である、請求項５に記載の方法。
  7. ステップ（ａ）が非変性条件下で行われる、請求項１に記載の方法。
  8. ステップ（ａ）が前記単離されたタンパク質の還元剤との接触を含み、前記還元剤が、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）、ベータ－メルカプトエタノール（βＭＥ）、トリス（２－カルボキシエチル）ホスフィン（ＴＣＥＰ）、システイン、Ｌ－システイン、還元グルタチオン（ＧＳＨ）、及びＬ－ＧＳＨのうちの少なくとも１つを含む、請求項１に記載の方法。
  9. 前記還元剤がＴＣＥＰである、請求項８に記載の方法。
  10. 前記ＴＣＥＰが、前記単離されたタンパク質に対するＴＣＥＰの所定のモル比で前記単離されたタンパク質と混合される、請求項９に記載の方法。
  11. 前記単離されたタンパク質に対するＴＣＥＰの前記所定のモル比が、ＴＣＥＰのモル過剰を含む、請求項１０に記載の方法。
  12. ステップ（ａ）が、前記単離されたタンパク質を０．１～８ｍＭの濃度の化学的還元剤と接触させることを含む、請求項１に記載の方法。
  13. ステップ（ａ）が、ｐＨ７．０未満のｐＨで行われる、請求項１に記載の方法。
  14. ステップ（ａ）が、４．５～６．５のｐＨで行われる、請求項１３に記載の方法。
  15. ステップ（ａ）が、５．５のｐＨで行われる、請求項１４に記載の方法。
  16. ステップ（ａ）が、６．５のｐＨで行われる、請求項１４に記載の方法。
  17. ステップ（ａ）前に、前記単離されたタンパク質のｐＨが、ｐＨ５．０～ｐＨ８．０のｐＨに調整される、請求項１に記載の方法。
  18. 前記タンパク質中の前記トリスルフィド結合の１００％が還元される、請求項１に記載の方法。
  19. ステップ（ａ）後に、単離されたタンパク質１モル還元につき４～８モルのチオール部分が、前記薬剤とのコンジュゲーションに利用可能である、請求項１に記載の方法。
  20. 前記減少ステップが、前記組成物のｐＨを５．０～６．０のｐＨに調整することを含む、請求項１に記載の方法。
  21. 前記組成物のｐＨがｐＨ５．５に調整される、請求項２０に記載の方法。
  22. 前記減少ステップが、ステップ（ａ）における前記組成物を、前記組成物中の前記反応性スルフィドの含有量を減少させるのに十分な速度で混合することを含む、請求項１に記載の方法。
  23. 前記混合が、前記単離されたタンパク質中のスルフィド結合（複数可）の還元にとっての最適混合速度を超える増大した速度で前記組成物を撹拌することを含む、請求項２２に記載の方法。
  24. 増大した速度での前記混合が、ステップ（ａ）の全反応時間未満の期間にわたってステップ（ａ）における前記混合速度を増大させることを含む、請求項２３に記載の方法。
  25. 前記減少ステップが、前記組成物を、空気又は窒素ガスの少なくとも１つを含む窒素源と接触させることを含む、請求項１に記載の方法。
  26. 前記接触が、空気又は窒素ガスを前記組成物に通気させることを含む、請求項２５に記載の方法。
  27. 前記接触が、前記組成物を、空気又は窒素ガスでスパージすることを含む、請求項２５に記載の方法。
  28. 前記接触が、１分間～２４０分間の期間行われる、請求項２５に記載の方法。
  29. 前記接触が、１０立法センチメートル／分～６０立法センチメートル／分の速度で、前記組成物を空気又は窒素ガスでスパージすることを含む、請求項２５に記載の方法。
  30. 前記接触が、ステップ（ａ）にとっての前記最適混合速度を少なくとも２００％超える速度で、空気又は窒素ガスの存在下で前記組成物を混合することを含む、請求項２５に記載の方法。
  31. 前記接触が、５．０～８．０のｐＨで行われる、請求項２５に記載の方法。
  32. 前記接触が、４℃～４０℃の温度で行われる、請求項２５に記載の方法。
  33. 前記接触が、１５℃～４０℃の温度で行われる、請求項２５に記載の方法。
  34. 前記接触が、２０℃の温度で行われる、請求項２５に記載の方法。
  35. 前記接触が、３０℃の温度で行われる、請求項２５に記載の方法。
  36. 前記組成物の体積に対する表面積の比率が２である、請求項２５に記載の方法。
  37. 前記接触が、前記組成物を含有する反応容器の側面に対して空気又は窒素ガスをパイプ供給することを含む、請求項２５に記載の方法。
  38. 前記接触が、前記組成物中にスパージストーンを浸すことを含み、前記スパージストーンが、１ｃｍ～１メートルの直径を有する、請求項２５に記載の方法。
  39. 前記接触が、ステップ（ａ）中に、ステップ（ａ）を行う時間未満の時間にわたって空気又は窒素ガスを前記組成物に導入することを含む、請求項２５に記載の方法。
  40. 前記接触が閉鎖反応容器内で行われる、請求項２５に記載の方法。
  41. 前記接触が開放反応容器内で行われ、反応性スルフィドが前記組成物から放出される、請求項２５に記載の方法。
  42. 前記接触が、前記組成物を含有する容器を、空気又は窒素ガスでスパージすることを含む、請求項２５に記載の方法。
  43. 前記接触が、Ｔｗｅｅｎ（登録商標）及び消泡剤のうちの少なくとも１つの存在下で行われる、請求項２５に記載の方法。
  44. 前記Ｔｗｅｅｎ（登録商標）が、Ｔｗｅｅｎ（登録商標）－２０及びＴｗｅｅｎ（登録商標）－８０のうちの少なくとも１つである、請求項４３に記載の方法。
  45. 前記消泡剤が、Ａｎｔｉｆｏａｍ－Ａ、Ａｎｔｉｆｏａｍ－Ｃ、及びポロキサマーのうちの少なくとも１つである、請求項４３に記載の方法。
  46. 前記単離されたタンパク質が抗体又は抗体断片である、請求項１に記載の方法。
  47. 前記抗体断片が抗原結合抗体断片である、請求項４６に記載の方法。
  48. 前記抗体断片が、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ）２、Ｆｖ断片、ダイアボディ、一本鎖抗体、ｓｃＦｖ断片、又はｓｃＦｖ－Ｆｃである、請求項４６に記載の方法。
  49. 前記抗体又は前記抗体断片がＩｇＧ抗体である、請求項４６に記載の方法。
  50. 前記抗体又は前記抗体断片がヒトモノクローナル抗体である、請求項４６に記載の方法。
  51. 前記抗体又は前記抗体断片がヒト免疫グロブリン定常領域を含む、請求項４６に記載の方法。
  52. 前記抗体又は前記抗体断片がヒトＩｇＧ定常領域を含む、請求項４６に記載の方法。
  53. 前記ＩｇＧ定常領域のアイソタイプが、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、又はＩｇＧ４である、請求項５２に記載の方法。
  54. 前記ＩｇＧ定常領域のアイソタイプがＩｇＧ１である、請求項５３に記載の方法。
  55. 前記抗体又は前記抗体断片中のスルフィド結合が、抗体重鎖と抗体軽鎖との間、又は抗体重鎖間、又は抗体重鎖と抗体軽鎖との間及び抗体重鎖間の両方に存在する、請求項４６に記載の方法。
  56. 前記抗体又は前記抗体断片が軽鎖定常ドメインを含む、請求項４６に記載の方法。
  57. 前記軽鎖定常ドメインがカッパ定常ドメインである、請求項５６に記載の方法。
  58. 前記抗体が、重鎖を連結するヒンジ領域内に２つのスルフィド結合、並びに軽鎖と重鎖との間に各々１つのスルフィド結合を含む４つの鎖間スルフィド結合を有するＩｇＧ１モノクローナル抗体である、請求項４６に記載の方法。
  59. 前記単離されたタンパク質が抗体であり、ステップ（ａ）が鎖間ジスルフィド結合のみの還元をもたらし、鎖内結合の還元はもたらさない、請求項１に記載の方法。
  60. 前記薬剤が、化学療法剤、核酸、サイトカイン、免疫抑制剤、放射性同位体、抗生物質、及び治療抗体から選択される少なくとも１つの治療薬である、請求項１に記載の方法。
  61. 前記治療薬が化学療法剤である、請求項６０に記載の方法。
  62. 前記化学療法剤が、オーリスタチン、ビンカアルカロイド、ポドフィロトキシン、タキサン、バッカチン誘導体、クリプトフィシン、メイタンシノイド、コンブレタスタチン、及びドラスタチンから選択される少なくとも１つの抗チューブリン剤である、請求項６１に記載の方法。
  63. 前記化学療法剤が、オーリスタチン、ＤＮＡ副溝結合剤、ＤＮＡ副溝アルキル化剤、エンジイン、レキシトロプシン、デュオカルマイシン、タキサン、ピューロマイシン、ドラスタチン、メイタンシノイド、及びビンカアルカロイドのうちの少なくとも１つである、請求項６１に記載の方法。
  64. 前記化学療法剤がドラスタチンである、請求項６１に記載の方法。
  65. 前記ドラスタチンがオーリスタチンである、請求項６４に記載の方法。
  66. 前記オーリスタチンがＭＭＡＥ又はＭＭＡＦである、請求項６５に記載の方法。
  67. 前記薬剤が、前記還元されたタンパク質の前記少なくとも１つのチオール基を前記薬剤に連結するように適合されたリンカー部分を含む、請求項１に記載の方法。
  68. 前記リンカー部分が、切断可能なリンカーである、請求項６７に記載の方法。
  69. 前記リンカー部分が、切断不可能なリンカーである、請求項６７に記載の方法。
  70. 前記リンカー部分が、細胞内条件下で切断可能なリンカーである、請求項６７に記載の方法。
  71. 前記リンカー部分が、細胞内プロテアーゼによって切断可能なペプチドリンカーである、請求項６７に記載の方法。
  72. 前記細胞内プロテアーゼが、リソソームプロテアーゼ又はエンドソームプロテアーゼである、請求項７１に記載の方法。
  73. 前記リンカー部分が、ジペプチドリンカーである、請求項６７に記載の方法。
  74. 前記ジペプチドリンカーが、バリン－シトルリン（ｖａｌ－ｃｉｔ）又はフェニルアラニン－リジン（ｐｈｅ－ｌｙｓ）リンカーである、請求項７３に記載の方法。
  75. 前記ジペプチドリンカーが、遊離チオールと反応して共有結合を形成するマレイミド官能基である、請求項７３に記載の方法。
  76. 前記タンパク質－薬剤コンジュゲートが、ａＣＤ２２－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＣＤ２２－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＬｙ６Ｅ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＬｙ６Ｅ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＣＤ７９ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＣＤ７９ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＮａＰｉ２ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＮａＰｉ２ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＭＵＣ１６－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＭＵＣ１６－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ｓＳＴＥＡＰ１、及びａＥＴＢＲのうちの１つである、請求項１に記載の方法。
  77. 単離された抗体中のトリスルフィド結合のジスルフィド結合への変換方法であって、
    （ａ）溶液中で、少なくとも１つのトリスルフィド結合を含む少なくとも１つの単離された抗体を、ｐＨ５．０～ｐＨ８のｐＨのＴＣＥＰで還元するステップであって、前記溶液中で反応性スルフィドが形成されるステップと、
    （ｂ）前記溶液を空気又は窒素ガスと接触させるステップであって、前記溶液中の反応性スルフィド含有量を減少させるステップと、
    （ｃ）オーリスタチン又はその誘導体を前記還元された抗体にコンジュゲートして、抗体－薬物コンジュゲート（ＡＤＣ）を形成するステップと、
    を含む、前記方法。
  78. ステップ（ａ）が、前記単離されたタンパク質を０．５～８ｍＭの濃度の化学的還元剤と接触させることを含む、請求項７７に記載の方法。
  79. 前記単離されたタンパク質に対するＴＣＥＰのモル比が３：１である、請求項７７に記載の方法。
  80. 前記接触が、空気又は窒素ガスを前記溶液に通気させることを含む、請求項７７に記載の方法。
  81. 前記接触が、少なくとも３０分間行われる、請求項７７に記載の方法。
  82. 前記接触が、５０立法センチメートル／分の速度で、前記溶液を空気又は窒素ガスでスパージすることを含む、請求項７７に記載の方法。
  83. 前記接触が、ステップ（ａ）にとっての前記最適混合速度を３００％超える速度で、前記溶液を空気又は窒素ガスの存在下で混合することを含む、請求項７７に記載の方法。
  84. 前記接触が、５．５～７．５のｐＨで行われる、請求項７７に記載の方法。
  85. 前記接触が、２０℃～３０℃の温度で行われる、請求項７７に記載の方法。
  86. 前記溶液の体積に対する表面積の比率が２である、請求項７７に記載の方法。
  87. 前記接触が、前記溶液を含有する反応容器の側面に対して空気又は窒素ガスをパイプ供給することを含む、請求項７７に記載の方法。
  88. 前記接触が、前記溶液中にスパージストーンを浸すことを含む、請求項７７に記載の方法。
  89. 前記接触が、空気又は窒素ガスを前記溶液に３０分間導入することを含む、請求項７７に記載の方法。
  90. 前記接触が閉鎖反応容器内で行われる、請求項７７に記載の方法。
  91. 前記接触が開放反応容器内で行われ、硫化水素が前記溶液から放出される、請求項７７に記載の方法。
  92. 前記接触が、前記溶液を含有する容器を空気又は窒素ガスでスパージすることを含む、請求項７７に記載の方法。
  93. 前記接触が、Ｔｗｅｅｎ（登録商標）及び消泡剤のうちの少なくとも１つの存在下で行われる、請求項７７に記載の方法。
  94. 前記Ｔｗｅｅｎ（登録商標）が、Ｔｗｅｅｎ（登録商標）－２０及びＴｗｅｅｎ（登録商標）－８０のうちの少なくとも１つである、請求項９３に記載の方法。
  95. 前記消泡剤が、Ａｎｔｉｆｏａｍ－Ａ、Ａｎｔｉｆｏａｍ－Ｃ、及びポロキサマーのうちの少なくとも１つである、請求項９３に記載の方法。
  96. 前記抗体が抗体断片である、請求項７７に記載の方法。
  97. 前記抗体断片が抗原結合抗体断片である、請求項９６に記載の方法。
  98. 前記抗体断片が、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ）２、Ｆｖ断片、ダイアボディ、一本鎖抗体、ｓｃＦｖ断片、又はｓｃＦｖ－Ｆｃである、請求項９６に記載の方法。
  99. 前記抗体がＩｇＧ抗体である、請求項７７に記載の方法。
  100. 前記抗体がヒトモノクローナル抗体である、請求項７７に記載の方法。
  101. 前記抗体がヒト免疫グロブリン定常領域を含む、請求項７７に記載の方法。
  102. 前記抗体がヒトＩｇＧ定常領域を含む、請求項７７に記載の方法。
  103. 前記ＩｇＧ定常領域のアイソタイプが、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、又はＩｇＧ４である、請求項１０２に記載の方法。
  104. 前記ＩｇＧ定常領域のアイソタイプがＩｇＧ１である、請求項１０２に記載の方法。
  105. 前記抗体中のスルフィド結合が、抗体重鎖と抗体軽鎖との間、又は抗体重鎖間、又は抗体重鎖と軽鎖抗体との間及び抗体重鎖間の両方に存在する、請求項７７に記載の方法。
  106. 前記抗体が軽鎖定常ドメインを含む、請求項７７に記載の方法。
  107. 前記軽鎖定常ドメインがカッパ定常ドメインである、請求項１０６に記載の方法。
  108. 前記抗体が、重鎖を連結するヒンジ領域内に２つのスルフィド結合、並びに軽鎖と重鎖との間に各々１つのスルフィド結合を含む４つの鎖間スルフィド結合を有するＩｇＧ１モノクローナル抗体である、請求項７７に記載の方法。
  109. ステップ（ａ）が鎖間ジスルフィド結合のみを還元し、鎖内結合は還元しない、請求項７７に記載の方法。
  110. 前記オーリスタチンがＭＭＡＥ又はＭＭＡＦである、請求項７７に記載の方法。
  111. 前記薬物が、前記抗体の前記少なくとも１つのチオール基を前記薬物に連結するように適合されたリンカー部分を含む、請求項７７に記載の方法。
  112. 前記リンカー部分が、切断可能なリンカーである、請求項１１１に記載の方法。
  113. 前記リンカー部分が、切断不可能なリンカーである、請求項１１１に記載の方法。
  114. 前記リンカー部分が、細胞内条件下で切断可能なリンカーである、請求項１１１に記載の方法。
  115. 前記リンカー部分が、細胞内プロテアーゼによって切断可能なペプチドリンカーである、請求項１１１に記載の方法。
  116. 前記細胞内プロテアーゼが、リソソームプロテアーゼ又はエンドソームプロテアーゼである、請求項１１５に記載の方法。
  117. 前記リンカー部分が、ジペプチドリンカーである、請求項１１１に記載の方法。
  118. 前記ジペプチドリンカーが、バリン－シトルリン（ｖａｌ－ｃｉｔ）又はフェニルアラニン－リジン（ｐｈｅ－ｌｙｓ）リンカーである、請求項１１７に記載の方法。
  119. 前記ジペプチドリンカーが、遊離チオールと反応して共有結合を形成するマレイミド官能基である、請求項１１７に記載の方法。
  120. 前記オーリスタチンの二量体又はその誘導体が、前記コンジュゲートステップで形成され、前記方法が、前記ＡＤＣを前記二量体から分離して、精製されたＡＤＣを形成することをさらに含む、請求項７７に記載の方法。
  121. 前記ＡＤＣが、ａＣＤ２２－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＣＤ２２－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＬｙ６Ｅ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＬｙ６Ｅ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＣＤ７９ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＣＤ７９ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＮａＰｉ２ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＮａＰｉ２ｂ－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ａＭＵＣ１６－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＥ、ａＭＵＣ１６－ｖａｌ－ｃｉｔ－ＭＭＡＦ、ｓＳＴＥＡＰ１、及びａＥＴＢＲのうちの１つである、請求項７７に記載の方法。
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