JP7159048B2 - 遺伝子修正自己ケラチノサイトを使用する劣性栄養障害型表皮水疱症のための遺伝子療法 - Google Patents
遺伝子修正自己ケラチノサイトを使用する劣性栄養障害型表皮水疱症のための遺伝子療法 Download PDFInfo
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- Materials For Medical Uses (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Description
本明細書中で使用される場合、「コラーゲン」という用語は、存在するタンパク質の少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%、少なくとも約90%、少なくとも約95%以上が、三重らせん立体配置のコラーゲンである組成物を指す。個々のα鎖の三重らせん立体配座へのフォールディングは、繰り返しのGly-X-Y三重項配列を含む特徴的な1次配列に基づく。コラーゲンは広く、脊椎動物種で見出され、多くの異なる種のために配列が決定されている。種間の、例えば、哺乳動物種間の、高度の配列類似性に起因して、異なる種由来のコラーゲンは、生物学的目的のために使用することができる。但し、ヒトタンパク質が好まれ得る。
新たに収集した初代ケラチノサイトは、皮膚パンチ生検から収集され、単離され、培養期間後に形質導入されて、ケラチノサイトを真皮細胞から単離し得る。インビトロで増殖した上皮ケラチノサイトは、シートを形成することができる。一部の実施形態では、形質導入された細胞は、細胞が形質導入された時点から約1~100日、1~50日、1~20日、1~10日、1~5日、1~3日、1~2日、または1日以内に患者に投与される。
劣性栄養障害型表皮水疱症(RDEB)の処置としての自己細胞の細胞リプログラミング
対象及び処置
スクリーニングされた38人の対象のうち、8人が本研究に同意し、4人の対象が登録され、移植片を受けた(図2)。対象は、短縮型C7(NC1ドメイン)の発現をもたらす種々の化合物であるヘテロ接合型COL7A1変異を有していた。これは、ウェスタンブロットによりケラチノサイト培地中で検出された(図3)が、IIFにより組織中では検出されなかった(図1F、図5B、図6B、図7B、図8B、図12)。全ての対象は、23(範囲:18~32)の平均年齢で、かつ4%~30%の全身面の病変に罹患している男性であった。それぞれは、貧血、食道狭窄、及び偽合指症の病歴を含む皮膚症状を伴う重篤な疾患を有していた(表1)。
全ての対象は、創傷治癒及び皮膚強度の改善、ならびに移植部位における痛み及び掻痒の減少を報告した。移植片はベースラインと比較して水疱形成の減少を示し、各対象からの代表的な写真が示される(図1E、図5A、図6A、図7A、図8A、図12)。対照的に、未処置創傷は、継続的な水疱形成を示した(図10)。
重大な有害事象は、報告されていなかった。移植部位の痒み(n=3)、続いて、移植部位の排液(n=2)の増加は、最も一般的な有害事象(グレード1または2)であり、悪性腫瘍の臨床徴候は認められなかった。RCR及び細胞傷害性T細胞アッセイは、全時点で陰性であった(表2)。
RDEBの遺伝子修正は、9kbを超えるCOL7A1 cDNAを包含する大きな導入遺伝子の効率的な送達を必要とするような実質的な課題を課す。ここで、本開示は、RDEBを有する4人の対象において、有望な有効性及び許容される安全性を有する、遺伝子修正自己表皮ケラチノサイト移植のインヒューマン研究を提供する。遺伝子修正表皮細胞は、移植の6ヶ月後に試験された移植部位の67%を超えて、機能性自己複製表皮を再生し、C7は、1対象に対し1年まで検出可能であった(図12)。これは、慢性創傷の2/9(22%)のみが18週で治癒した同種異系ケラチノサイト移植片よりも顕著な改善であった。LEAES移植片は、同種異系線維芽細胞注射と比較して、より良好な創傷治癒結果も生じた。これは、BM-MSCのプラセボまたは皮内もしくは静脈内注射と比較して、創傷治癒において一部の初期改善を示したが、長期間の差異を示さなかった。類似した方法論を使用する、接合部型表皮水疱症のための遺伝子療法の症例報告は、長期間の治療効果に優先する長くとも6年間の修正を示した。本発明者らがLEAES移植片に認める6ヶ月の継続したC7発現は、6つの表皮ターンオーバーサイクルの期間に及び、本発明者らは、遺伝子導入技術で幹細胞をうまく標的化していることを意味する。
研究デザイン
これは、第I相非盲検臨床試験(NCT01263379)である。主な研究目的は、全長COL7A1コード配列を含有するレトロウイルスベクターで形質導入した遺伝子操作された自己ケラチノサイトを移植したRDEB対象における安全性及び有効性のデータを得ることであった(図1A)。2013年10月~2015年2月の間に、4人の成人RDEB対象にLEAESを移植した。全対象のデータを、少なくとも6ヶ月の経過観察で収集する。この研究は、Food and Drug Administration(IND#13708)及びStanford IRB(Protocol#14563)により承認された。
対象は、18歳以上であり、RDEBと臨床診断され、LEAES移植に適する100cm2 ~200cm2 の面積だけ開いた糜爛を有する。対象はまた、全身麻酔を受けることができ、スクリーニングプロトコールに基づいて選択された。これにおいて、RDEBが、遺伝子検査(GeneDx、メリーランド州ゲーサーズバーグ)により確認された。C7のNC1ドメインの存在を、培養ケラチノサイト(KC)上清のウェスタンブロット及び皮膚生検試料の間接免疫蛍光顕微鏡法(IIF)により評価した。生検試料中の全長C7及び成熟AFの不存在は、C7のカルボキシル末端NC2ドメインに特異的なLH24抗体を使用したIIF及び免疫電子顕微鏡法(IEM)により確認された(図9)。霊長類食道の血清及び対象の生検部分の直接免疫蛍光法(DIF)をそれぞれ使用したIIFにより、循環血中の及び組織に結合したIgG、IgA、IgM、及びC3を分析した。HIV、肝炎、全身感染、または心臓異常を含む重大な非RDEB合併症を有する対象は除外した。臨床的に重大な貧血を、移植前に処置した。
無傷の非瘢痕皮膚の領域からLEAES製造のために2つの8mmのパンチ生検材料を得た。CBC、完全生化学検査(CMP)、ならびに複製可能なトレトロウイルス(RCR)及びC7感受性細胞傷害性T細胞アッセイに対するベースライン血液試料を得た。自己ケラチノサイト由来の皮膚生検は、LZRSE-COL7A1で形質導入し、8つのLEAES移植片を生成するために使用した(図4)。SCCの臨床所見を欠く感染していない、糜爛した、かつ/または瘢痕化した創傷部位に、6つの移植片を適用した。6つの移植創傷部位(A、B、C、D、E、Z、表3)のうち、機械的摩擦(「部位Z」)により、手術時の各対象の1つの創傷を作成した。全身麻酔下で、保持された表皮幹細胞の可能性を最小限にするために、創傷床を焼灼した。LEAES移植片を、創傷床の調製後に溶解可能な縫合糸を介して創傷床に固定した。対象3及び4は、経過観察の移植片同定を補助するために、各移植片の角に小さなインド・インク・タトゥーを入れることに同意した。移植片を、標準的な創傷被覆材及び局所的なムピロシンで覆い、これを、移植の5~7日後に除去した。
移植の1、3、6、及び12ヶ月後に、対象を追跡した。各研究訪問で、IIF、C7感受性細胞傷害性T細胞アッセイに、CBC、及びCMPにより、循環血中の自己抗体について血清試料を評価した。血清中のRCRの存在を、3及び6ヶ月で評価した。各受診時に、代表的な移植片を生検して、DIFにより組織に結合した免疫グロブリン及び補体を、IIFによりC7発現を、ならびにIEMによりアンカリングフィブリルの存在を、評価した。創傷を、臨床的に評価し、デジタル写真及び/またはCanfield Vectraカメラを使用して、ベースラインと比較して、100%~75%が治癒し(重大な創傷治癒として定義される)、74%~50%が治癒し、49%~25%が治癒し、25%未満が治癒したと査定した。
LEAES製造中に使用された全ての材料及び試薬には、製造者により提供された分析の証明を基準にして、偶発性ウイルスを含めなかった。ウシ由来試薬を含む各ロット組織培地を、偶発性ウイルスを試験する市販の9CFR吸光試験(American BioResearch、ワシントン州プルマン)により試験し、陰性であることが判明した。
皮膚試料を、2つの8mmパンチ生検として得、30μg/mLのアミカシン(HIkma Pharmaceuticals、英国ロンドン)、20μg/mLのバンコマイシン(Sigma Aldrich、ミズーリ州セントルイス)、及び0.5μg/mLのアンフォテリシンB(USBiological、マサチューセッツ州サレム)と共に、35mLの生検収集培地50/50A(ヒトケラチノサイト成長サプリメントを含む50%のケラチノサイト培地154(Life Technologies、カリフォルニア州カールスバッド)、及びサプリメントを含む50%の規定されたケラチノサイト血清不含培地(Life Technologies、カリフォルニア州カールスバッド))に導入した。表皮を真皮から分離するために、25カゼイン分解ユニット/mLのディスパーゼを含有するディスパーゼ溶液(Life Technologies、カリフォルニア州カールスバッド)に、皮膚試料を5℃で16~20時間置いた。翌日、表皮を、真皮から慎重に剥がし、TrypLE Select 10X(Life Technologies、カリフォルニア州カールスバッド)溶液中に37℃で20~30分間置いた。この溶液を、1200rpmにスピンダウンして、ケラチノサイトペレットを得た。細胞を、リン酸緩衝生理食塩水(PBS、Life Technologies、カリフォルニア州カールスバッド)で1回洗浄し、ケラチノサイトを、50/50A培地で、PureCoat Collagen I Mimetic Cultureware(Corning Life Sciences、マサチューセッツ州テュークスベリー)にプレーティングした。ケラチノサイトが、60~70%コンフルエンスに達した後、細胞を、TrypLE Select 10Xで処理し、ウイルス形質導入のためにプレーティングした。形質導入プロセスを開始するためには、少なくとも4×106 個の細胞を必要とした。
MLVLTRの制御下の、全長COL7A1 cDNAを含有するcGMPグレードのGalV-偽型LZRSE-COL7A1ウイルスを、Siprashvili et al 2010に記載されるように、現在のGood Manufacturing Practicesを使用して、Indiana University Vector Production Facilityにより作成した。pLZRSE-COL7A1プラスミドのマップを、図13に示し、完全な配列を配列番号1に示す。各プレートに対し12mLのウイルス上清を重層すること、ならびに1250rpm及び32℃で1時間の細胞の遠心分離により、ウイルス形質導入を実施した。遠心分離後、修正ケラチノサイトの増殖のために使用して、PBS及び50/50V培地で洗浄することにより、ウイルス上清を除去した。修正KCが、50%を超えるウイルス形質導入効率(VTE)及び3以下のプロウイルスゲノムコピー数(PGCN)の放出前基準を満たし続けている限り、必要に応じて、形質導入を繰り返した。
VTE試験。抗VII型コラーゲンモノクローナル抗体NP32、NP185、または抗VII型コラーゲンポリクローナル抗体FNC1を用いるIF技術を使用して、VTE試験を実施した。細胞を、メタノール/アセトン混合物の溶液中で固定し、洗剤で透過処理し、抗C71次抗体と共に、室温で1時間インキュベートした。多数回洗浄後、Alexa Fluor555色素にコンジュゲートした2次抗体を加え、さらに1時間インキュベートした。細胞核を、Hoechst33342で10分間標識し、洗浄し、金退色防止試薬(Life Technologies、カリフォルニア州カールスバッド)でマウントした。青色核のC7陽性細胞との比率を計数することにより、VTEを決定した。放出前基準を満たすために、少なくとも50%の細胞は、C7発現について陽性であった。
レトロウイルス形質導入後に、修正RDEB KCから単離されたゲノムDNAのqPCR分析を介して、PGCN試験を行った。Qiagen DNeasy Blood & Tissue Kit(Qiagen、ドイツ)を使用して、ゲノムDNAを、3×106 個の修正細胞から精製した。標準分光測光技術を使用して、DNAを定量化し、qPCR分析に使用した。プラスミドDNA対照の量からの、鋳型の閾値サイクル(Ct)及びCt依存度の標準曲線を使用して、プロウイルス用量を決定した。平均PGCNを、PGCN=(TPCN×6.16pg)/(Ctempl.×103pg)(式中、TPCN=総プロウイルスコピー数)から計算した。6.16pg=体細胞におけるゲノムDNAの量。Ctempl.=ナノグラム単位の、PCRで使用された鋳型量。放出前基準を満たすために、各ケラチノサイトゲノムに対し、3以下のプロウイルスゲノムコピー数が平均して存在した。
潜在的な偽陰性を、培地に存在する抗生物質から排除するように設計されたMillipore Steritestシステムを使用した膜濾過(Pacific BioLabs、カリフォルニア州ヘラクレス)により、培養上清の試料を、無菌状態について試験した。濾過及び洗浄後、試料を、ソイビーン・カゼイン・ダイジェスト培地及び液体チオグリコレート培地に入れ、14日間インキュベートした。毎日の微生物汚染の形跡について、試料を観察した。
培養上清の試料を、製造者の推奨に従って、Limulus Amebocyte Lysate(LAL)QCL-1000アッセイ(Lonza、スイス、バーゼル)により評価した。この試験の結果は、産物の放出要件を満たすために、1.0EU/mL未満であった。
製造者の要求に従って、MycoAlert Mycoplasma Detection Kit(Lonza、スイス、バーゼル)を使用して、細胞培養上清を、マイコプラズマについて試験した。この試験の結果は、産物の放出要件を満たすためには、0.9未満であった。
修正ケラチノサイトが、100%コンフルエンスに達すると、LEAES開始プロセスを開始し、成長培地を、50/50Vから表皮シート生成培地DFF31に変更した。これは、10%のウシ胎児血清(Lonza、スイス、バーゼル)、36ng/mLのヒドロコルチゾン(Spectrum、ニュージャージー州ニューブランズウィック)、25μg/mLのアデニン(Sigma Aldrich、ミズーリ州セントルイス)、5μg/mLの組み換えヒトインスリン(Sigma Aldrich、ミズーリ州セントルイス)、2ng/mLのリオチロニン(Spectrum、ニュージャージー州ニューブランズウィック)、5μg/mLのウシトランスフェリン(Millipore、マサチューセッツ州ビルリカ)、10ng/mLの組み換え上皮成長因子(R&D Systems、ミネソタ州ミネアポリス)及び30μg/mLのアミカシン(Hikma Pharmaceuticals、英国ロンドン)、ならびに20μg/mLのバンコマイシン(Sigma Aldrich、ミズーリ州セントルイス)を含有するダルベッコ改変イーグル培地(Life Technologies、カリフォルニア州カールスバッド)及びF12培地(Lonza、スイス、バーゼル)からなる。
LEAESアセンブリを、移植の日に開始した。ディスパーゼ(Life Technologies、カリフォルニア州カールスバッド)で酵素消化させることにより、表皮シートを、プレートの表面から37℃で20~30分間放出させた。培地及びディスパーゼの残留量を除去するために、表皮シートを、50/50VCで少なくとも5回洗浄した。それを、手術用ヘモクリップでサイズのマッチした石油ガーゼに固定し、基底面に無菌黒縫合糸でマークした。アセンブリされたLEAESを、50/50VCの輸送培地に浸漬し、ガス透過性滅菌膜で密閉した。次いで、LEAES表皮移植片を、移植のために手術室に輸送した。
グラム染色滅菌試験。LEAES放出の日に、培地の試料を、迅速なグラム染色試験のために、Stanford Hospital Clinical Laboratoryの臨床検査室に送った。試験の陰性結果を、LEAESロット放出基準として使用した。
LEAES試料を、Hoechst33342及びSYTOX Green染色を含有する核染料混合物と共に20分間インキュベートした生存性試験を実施した。SYTOX緑色染色のHoechst33342染色に対する比率を、70%以上で計算して、産物を放出させた。
培地及びLEAES移植片の試料を、送出試験のために提出した。長い期間の試験プロセスに起因する移植片移植後に得られるべき試験結果を期待した。これらの「放出後」試験結果が、規格外であった場合に、安全性計画は実施されていた。放出後基準は、追加の無菌試験(放出前試験の無菌試験を参照のこと)、RCR試験(Indiana University Vector Production Facility)及びマイコプラズマ試験(Bionique Testing Laboratories、ニューヨーク州サラナクレイク)を含んでいた。
LEAES及びLEAES培養した上清の試料を、Indiana University Vector Production Facilityの拡張PG-4 S+L-細胞プラークアッセイにかけ、放出基準として使用される試験結果「RCRの形跡なし」であった。ベースライン、3ヶ月、及び6ヶ月で、血液試料を、Indiana University Vector Production Facilityで分析して、定量的ポリメラーゼ連鎖反応(Q-PCR)を使用して、存在するGALVエンベロープ(GALV-E)配列のレベルを決定した。血液試料の量の妥当性を、ヒトアポリポタンパク質B遺伝子配列のための第2のプローブ及びプライマーセットにより評価した。ゲノムDNA0.12μg当たり105、104、103、102、及び10コピーのGALV-E配列を含有するゲノム12/22/15 8DNAを使用した標準曲線を、陽性対照として使用した。陰性対照は、形質導入されていないヒトゲノムDNA及び水を含んでいた。
細胞傷害性T細胞アッセイについて、ベースライン、1ヶ月、3ヶ月、及び6ヶ月に、15mLの全血を採取した。Ficoll-Paque(GE Healthcare)密度勾配遠心分離を使用して、末梢血単核細胞を、軟膜または全血から単離した。次いで、接着性単球を、ペトリ皿中で2時間インキュベートした後に回収した。MACS磁気細胞選別キット(Miltenyi Biotech)を使用して、非接着細胞を、常磁性マイクロビーズに結合した抗CD4及び抗CD8抗体とインキュベートすることにより、CD4+及びCD8+Tリンパ球を一緒に精製した。96ウェルPVDFフィルタープレート(Millipore)を、IFN-γ(BD Pharmingen)またはIL-4(BD Pharmingen)に対するモノクローナル抗体でコーティングし、5%のヒトAB血清を含むRPMI培地を使用してブロックし、無血清RPMIで洗浄した。CD4+及びCD8+Tリンパ球(2×105 細胞/ウェル)及びγ照射単球(2.5×104 細胞/ウェル)を、空気インキュベーター中で加湿した、5%のCO2 の中で、20UI/mlのIL-2の存在下、37℃で、40時間、プレート上で同時インキュベートした。培地は、リンパ球を刺激するために、10μg/mlの組み換え型VII型コラーゲンまたは3μg/mlのコンカナバリンA(Sigma)のいずれかを含有していた。プレートを洗浄し、1μg/mlのビオチン化抗IFN-γまたは抗IL-4モノクローナル抗体(BD Pharmingen)、続いて、ストレプトアビジンコンジュゲートアルカリホスファターゼ(Roche)の1:1000希釈液で、各ウェルを連続的に反応させることにより、個々の細胞により分泌されたIFN-γまたは抗IL-4をその場で検出した。BCIP/NBT発色基質(Promega)を使用して、検出を実施した。水で洗浄することにより、反応を停止させ、CTL ELISPOTリーダーを使用して、スポットを計数した。抗原なしのT細胞を使用して、陰性対照を並行して実施し、対応するスコアを、未知数のものから差し引いた。
LH24 mAbを予め同定して、表皮基底膜2と反応させた。本発明者らの研究における、C7ヌルRDEB患者の皮膚の特異的な不存在は、それがC7上のエピトープを認識したことを示した。C7分子上のLH24反応性をさらに局在化させるために、NC1及びNC2ドメインを含有するC7の酵素消化物に対するLH24反応性を、ウェスタンブロットにより試験した。C7フラグメントを含有するNC1ドメインを、上述したように、高度に精製された細菌コラゲナーゼ(Worthington)を用いた精製C7の消化から生成された。C7フラグメントを含有する3つのNC2 12/22/15 9を、上述したように、精製C7のペプシン消化後に生成した。
0.05%のタンニン酸を含有するダルベッコ無血清培地(SFM)中の1.5%のグルタルアルデヒド/1.5%のパラホルムアルデヒドに最低1時間浸漬させ、続いて、SFM中で多数回すすぎ、次いで、1%のOsO4 中で60分間、後固定することにより、3mmの皮膚パンチ生検を、電子顕微鏡検査法のために調製した。試料を、SFM中で洗浄し、次いで、100%までの段階的な一連のエタノールで脱水し、プロピレンオキシド中ですすぎ、Spurrエポキシに合計2時間にわたって浸透させ、マイクロ波エネルギーを介して加速させた。試料を、18時間かけて70℃で重合させた。
SFM中で多数回すすぎ、次いで、4℃で一晩、SFM中で1:5に希釈したコラーゲンVIIのNC2領域に特異的なマウスIgM LH24抗体に浸漬させ、SFM中で多数回すすぎ、次いで、SFM中で1:3に希釈したヤギ抗マウスIgM超小型コロイド金コンジュゲート(Aurion)中で、4℃で一晩インキュベートすることにより、免疫電子顕微鏡検査法のための3mmの皮膚パンチ生検試料を調製した。SFM中で多数回すすいだ後、試料を、金増感溶液(Nanoprobes)に15分間氷上で曝露し、次いで、25℃まで急速に温め、さらに5分インキュベートした。次いで、試料を、氷冷SFMですすぎ、次いで、上記のように固定及び包埋した。間接免疫蛍光法(IIF):ヒト血清をサル食道上に置き、ヒトIgA、IgM、IgG、及びC3に対する抗体で染色した。1:40以上の抗体希釈で検出されたシグナルは、バックグラウンドを超えると考えられる。
12/22/15 10組織を、5マイクロメートルに切断し、ヒトIgA、IgM、IgG、C3、及びフィブリノゲンのフルオロフォアコンジュゲート抗体で染色した。正常対照を、並行して実行した。C7発現及びAF分析:3mmの皮膚パンチ生検試料を、8マイクロメートルに切断し、(C7のNC1ドメインに対する)抗VII型コラーゲンポリクローナル抗体FNC1またはモノクローナル抗体LH24(C7のNC2ドメイン)を使用したIIFにより分析した。要約すると、切片を、メタノール/アセトン混合物の溶液中で固定し、洗剤で透過処理し、室温(25℃)で1時間、抗C71次抗体とインキュベートした。多数回洗浄後、Alexa Fluor 555または488色素にコンジュゲートされた2次抗体を加え、1時間インキュベートした。細胞核を、Hoechst33342で10分間標識し、洗浄し、金退色防止試薬(Life Technologies、カリフォルニア州カールスバッド)でマウントした。表皮マーカーの場合、Covance(カリフォルニア州エメリービル)から入手したケラチン1、ケラチン14、及びロリクリン抗体である。生検材料は、真皮-表皮接合部でのVII型コラーゲンの連続線状染色が検出された場合、C7発現について陽性とした。生検は、密度、厚み、湾曲、弓状部、及びループを含むAFの特性を有する超微細構造のNC2ドメイン特異的LH24抗体を表す金コンジュゲート粒子が検出された場合、アンカリングフィブリル(AF)について陽性とした。
対象2~4では、Canfield Vectra 3Dカメラを使用して、複数の角度から各移植部位の約5枚の画像を撮影した。次いで、これらの画像をつぎ合わせて、包括的な3D画像を作成した。Mirror Software(Canfield、ニュージャージー州フェアフィールド)を使用して、目印を選択し、各画像の対応する場所を識別するために番号を付け、次いで、単一の画像に融合した。移植片の縁を正確に追跡するために、経過観察受診の融合画像を、0日目の移植の輪郭の上に置いてベースライン画像と比較した。解剖学的目印(例えば、刺青の点)を再度確認して、輪郭を正しく配置した。デジタル写真(Canon Powershot)を用いて、必要に応じて、対象2~4に対する追加写真及び対象1の全ての画像を得た。
本開示が、上記実施形態に関連して説明されているが、上述の説明及び実施例が、例示するものであって、本開示の範囲を限定するものではないと理解すべきである。本開示の範囲内の他の態様、利点、及び修正は、本開示が属する当業者らには明らかであろう。
本願は、2016年1月4日に出願された米国特許出願第62/274,700号及び2016年10月28日に出願された米国特許出願第62/414,533号に対する米国特許法119(e)の優先権を主張し、それぞれの内容は、参照により本明細書に組み込まれる。
Claims (17)
- (a)自己皮膚細胞を含むケラチノサイトシート、または、(b)自己角膜細胞を含む角膜シートを含んでおり、
前記自己皮膚細胞または前記自己角膜細胞は、表皮水疱症(EB)または角膜糜爛をそれぞれ有する対象から得られたものであり、
前記自己皮膚細胞または前記自己角膜細胞は、機能性コラーゲンVII(COL7A1)タンパク質をコードする遺伝子構築物を含むウイルスでエクスビボにて形質導入されており、
前記自己皮膚細胞または前記自己角膜細胞は、前記ウイルスでの形質導入により修正されたものを含み、修正された自己皮膚細胞または自己角膜細胞は、50%を超えるウイルス形質導入効率(VTE)の放出前基準及び3以下のプロウイルスゲノムコピー数(PGCN)を満たす、
組成物。 - 前記ウイルスは、レトロウイルス、レンチウイルス、またはアデノ随伴ウイルス(AAV)である、請求項1に記載の組成物。
- 前記レトロウイルスは、GalV偽型ウイルスである、請求項2に記載の組成物。
- (a)前記自己皮膚細胞は、ケラチノサイトもしくは幹細胞を含むか、または、(b)前記自己角膜細胞は、角膜上皮細胞もしくは幹細胞を含む、請求項1~3のいずれか一項に記載の組成物。
- (a)前記機能性COL7A1タンパク質は、全長野生型ヒトCOL7A1タンパク質であるか、または、
(b)前記機能性COL7A1タンパク質は、全長野生型ヒトCOL7A1タンパク質からの遺伝子改変を含む、
請求項1~4のいずれか一項に記載の組成物。 - 前記遺伝子改変は、挿入、欠失、及び/または変異を含む、請求項5に記載の組成物。
- 前記遺伝子構築物は、配列番号1の位置2325~11157に対応するヌクレオチド配列を含む、請求項1~4のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記修正された皮膚細胞または角膜細胞のPGCNは、2、1.5、1、または0.5以下である、請求項1~7のいずれか一項に記載の組成物。
- 無細胞マトリックス、コラーゲンマトリックス、または生体適合性メッシュをさらに含む、請求項1~8のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記ケラチノサイトシートまたは角膜シートが、前記無細胞マトリックス、コラーゲンマトリックス、または生体適合性メッシュ上に配置される、請求項9に記載の組成物。
- (a)前記生体適合性メッシュが、熱可塑性樹脂、ポリエチレン、超高分子量のポリエチレン、高分子量のポリオレフィン、非コーティング単繊維ポリプロピレン、ポリエーテルエーテルケトン、ポリエチレンテレフタラート、ポリテトラフルオロエチレン、発泡ポリテトラフルオロエチレン、ナイロン、シリコン、またはそれらの任意の組み合わせで作製されるか、または、
(b)前記無細胞マトリックスは、ヒトの真皮または動物の真皮を含む、
請求項9または10に記載の組成物。 - (a)表皮水疱症(EB)または(b)角膜糜爛を処置するためのものである、請求項1~11のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記EBは、栄養障害型表皮水疱症(DEB)である、請求項12に記載の組成物。
- 前記DEBは、(a)劣性DEB、重度の全身性(RDEB-sev gen)、(b)劣性DEB、他の全身性(RDEB-O)、または、(c)優性DEB(DDEB)である、請求項13に記載の組成物。
- (a)表皮水疱症(EB)または(b)角膜糜爛を処置するための薬剤を製造するための請求項1~11のいずれか一項に記載の組成物の使用。
- 前記EBは、栄養障害型表皮水疱症(DEB)である、請求項15に記載の使用。
- 前記DEBは、(a)劣性DEB、重度の全身性(RDEB-sev gen)、(b)劣性DEB、他の全身性(RDEB-O)、または、(c)優性DEB(DDEB)である、請求項16に記載の使用。
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