JP7036805B2 - 肝疾患関連バイオマーカーおよびその使用方法 - Google Patents
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Description
本出願は、参照として本明細書に組み込まれる2016年5月29日に出願された米国仮特許出願第62/343,010号に対する優先権を主張するものである。
a.パネルの各バイオマーカーの測定されたレベルを対照レベル(例えば、肝疾患がないことを示す肝疾患状態を示すレベル)と比較すること、およびその比較に基づいて対象を評価すること;
b.モデル(例えば、アルゴリズム)からの出力に基づいて対象を評価すること(ここで、モデルはパネルの各バイオマーカーの測定されたレベルの入力に基づいて実行される)、または
c.対象から採取した生体試料の質量分析により生成されるスペクトルを提供し、スペクトルからデータを抽出し、かつデータを、例えば、パネルの各々のバイオマーカーに対応する一対のピークに対して調整された単変量解析および多変量解析を行うこと
が含まれる。
概要
本発明の一実施形態は、対象における肝疾患状態を評価することを含む診断方法を提供する。肝疾患状態は、任意に、対象から得られた試料において、本明細書で教示されるパネルの1つ以上のバイオマーカーのレベルを測定すること、および1つ以上のバイオマーカーのレベルの測定されたレベルを疾患状態と相関させることにより評価され得る。相関に基づいて、本発明は肝疾患状態を有する対象を同定することができる。例えば、肝疾患状態は、肝疾患(例えば、線維症)の存在、または肝疾患の重症度もしくは進行(例えば、線維症のステージまたは非肝硬変線維症と肝硬変を判別するようなステージまたはグレード)であり得る。本発明の方法を任意に使用して、肝疾患またはその進行もしくは重症度(例えば、肝線維症または肝硬変の進行)を診断するか、肝疾患の進行(例えば、肝線維症または肝硬変の進行)をモニターするか、または2種以上の肝疾患を識別することができる。
本発明の方法により、対象から得られた生体試料において1つ以上のバイオマーカーのレベルを測定することができる。対象は、任意の対象、例えばヒト対象であり得る。
本発明の方法により、対象から得られた生体試料(「試料」)において1つ以上のバイオマーカーのレベルを測定することができる。
本発明の方法は、任意に、測定される1つ以上の(例えば、それぞれの)バイオマーカーに対する内部標準の使用を含む。内部標準は、任意に、測定前の任意の時点で試料と混合され得る。
コール酸(CA)-d4(例えば、ヒオコール酸(HCA)用に使用される)
ウルソデオキシコール酸(UDCA)-d4(例えば、グリコヒオデオキシコール酸(GHDCA)、タウロケノデオキシコール酸(TCDCA)、タウロデオキシコール酸(TDCA)、グリコヒオコール酸(「GHCA」)および/またはタウロヒオコール酸(THCA)用に使用される)
リトコール酸(LCA)-d4(例えば、タウロリトコール酸(TLCA)用に使用される)
トリデカン酸-d25(例えば、モノ不飽和遊離脂肪酸用に使用される)
ノナデカン酸-d37(例えば、飽和遊離脂肪酸用に使用される)
バリン-d8(バリン用に使用される)
ロイシン-5,5,5-d3(ロイシン用に使用される)
イソロイシン-2-d1(イソロイシン用に使用される)
チロシン-3,3-d2(チロシン用に使用される)
フェニルアラニン-3,3-d2(フェニルアラニン用に使用される)
本明細書で測定されるバイオマーカーを、試料から任意に抽出することができる。例えば、その方法は、試料を抽出媒体と接触させる工程と、試料からバイオマーカーを抽出する工程と、抽出した脂質を測定(例えば、クロマトグラフィーによるバイオマーカーの分離後の質量分析により)する工程とを含み得る。
本発明は、生体試料中の1つ以上のバイオマーカーのレベルを測定することにより、生体試料中の1つ以上のバイオマーカーを検出する。測定の工程は、本明細書に教示されるバイオマーカーの測定に有用な任意の様式で実施され得る。例えば、生体試料(例えば、血液、血漿または血清)中のバイオマーカーを測定する任意のインビトロの方法を使用することができる。
本発明の方法を使用して、肝疾患状態を、例えば、パネルのバイオマーカーレベルを肝疾患状態に相関させることにより評価することができる。したがって、本発明の方法を任意に使用して、対象を、肝疾患状態を有すると同定することができる。
本発明の方法は、パネルの1つ以上のバイオマーカーの測定されたレベルと肝疾患状態を相関させることにより肝疾患状態を評価することを含むことができる。相関に基づいて、対象を、肝疾患状態を有すると同定し、例えば、肝疾患と診断し、分類し(例えば、肝疾患の病型、ステージ、進行または重症度)、または肝疾患状態(例えば、進行または重症度)の変化についてモニターすることができる。肝疾患、肝疾患分類または肝疾患状態の変化を有すると同定された対象は、選択されて肝疾患治療を受けることができる。
所与の個体についての肝疾患状態スコアを計算するために、バイオマーカー値を、個体から回収した1つ以上の試料から入手し、入力データとして、すなわち、選択された個体の集団から入手した実際の歴史的データにフィットさせたモデル(例えば、アルゴリズム)への入力として使用する。
本明細書で教示される実施例は本発明を実施するモデルの開発の詳細を提供するが、当業者は、本明細書で同定されるバイオマーカーおよび本明細書で教示される関連性を用いると、相関またはスコアを計算するのに用いられる数理モデルが、任意の様式で生成され得、本明細書で収集されかつ示されるデータに依存する必要がないことを理解するであろう。
本明細書に教示される実施例が本発明を実施するためのモデルを提供するが、当業者は、本明細書において同定されるバイオマーカーおよび本明細書に教示される関連性を使用すると、本明細書に教示されるバイオマーカーパネルを用いた任意の数理モデルを使用して、肝疾患状態を評価することができることを理解するであろう。
一実施形態では、本発明の方法は、肝疾患状態(例えば、脂肪性肝炎、肝線維症、肝硬変、またはそのステージもしくは重症度)を有すると同定された対象を治療することを含む。
任意に、治療は、教示される式Iの化合物に対する参照として本明細書に組み込まれる、Jiaに付与されたPCT出願PCT/US16/57538号明細書に教示される任意の式Iの化合物の投与を含む。
一実施形態では、本発明の方法は、本明細書で教示されるパネルの1つ以上のバイオマーカーのレベルをモニタリングすることを含む。本発明によるモニタリングの方法は、第1の生体試料および第2の生体試料を提供することであって、第1の試料は、1回目に対象から得られ、第2の試料は、2回目に対象から得られ、2回目が1回目より後である、提供することと、第1の試料および第2の試料の各々において1つ以上のバイオマーカーのレベルを測定することと、第1の試料から測定されたレベルを第2の試料の測定されたレベルと比較して肝疾患状態の変化を判定すること、または各試料において測定されたレベルを肝疾患状態と相関させて、第1の試料から相関された(または同定された)肝疾患状態を第2の試料から相関された(または同定された)肝疾患状態と比較することのいずれかとを含む。
一実施形態では、本発明の方法は、本発明のパネルのバイオマーカーを検出するためのキットを提供する。キットに含まれるのは、本発明のパネルの1つ以上のバイオマーカーを検出するための1つ以上の内部標準である。一括して、1つ以上の内部標準は、本明細書で教示されるパネルの各バイオマーカーについての少なくとも1つの内部標準を提供する。
本発明の方法を、測定、相関、および報告のうちの1つ以上の工程を実施するように構成したコンピュータ、および任意に関連するハードウェアの使用を通じて実行できる。したがって、本発明の一実施形態は、測定(例えば、分析装置からの測定シグナルをバイオマーカーレベルに変換すること)、評価すること(例えば、バイオマーカーレベルを肝疾患状態と相関させること、またはバイオマーカーレベルを、スコアを算出する数理モデルに入力すること)、および/または評価の結果を報告することのために構成されるモジュール(例えば、プログラム)を含むコンピュータ可読非一過性の(例えば、不揮発性の)メモリを提供する。任意に、本発明は、マイクロプロセッサおよびメモリを備えるコンピュータを提供し、マイクロプロセッサがモジュールを実行するように構成される。
本発明は、本発明の方法、キットおよび他の態様に有用なバイオマーカーパネルを提供する。
肝線維症および肝硬変と診断された合計504名の年齢15歳~75歳の患者を、Shanghai University of Traditional Chinese Medicine付属Shuguang Hospital(Shanghai、China)、およびXiamen Hospital of Traditional Chinese Medicine(Xiamen、China)において2013年4月から2013年12月まで採用した。患者は、臨床的に肝線維症または肝硬変、および「Guideline on prevention and treatment of chronic hepatitis B in China(Chinese Society of Hepatology,Chinese Medical Association and Chinese Society of Infectious Diseases,Chinese Medical Association.Guideline on prevention and treatment of chronic hepatitis B in China(2005).Chin Med J(Engl)2007;120:2159-73)に従って、慢性B型肝炎を有する感染症であると診断された。全ての患者は、評価の際、臨床的に安定していた。除外基準としては、15歳未満または75超過、妊娠または母乳栄養中の女性、ヒト免疫不全ウイルス(HIV)、C型肝炎ウイルス(HCV)、D型肝炎ウイルス(HDV)、またはE型肝炎ウイルス(HEV)との同時感染;糖尿病の診断、他の肝疾患、肝移植、消化器疾患、膵臓炎、向精神薬の使用、6ヶ月以内のアルコール摂取、6週間以内の抗生物質および生菌/プレバイオティクスを含んだ(ajaj JS,Heuman DM,Hylemon PB,et al.Randomised clinical trial:Lactobacillus GG modulates gut microbiome,metabolome and endotoxemia in patients with cirrhosis.Aliment Pharmacol Ther 2014;39:1113-25)。加えて、本発明者らは、不明確な肝硬変の診断を有する患者を除外し、それらの患者は、空腹時血液を提供できず、研究を遂行できなかった。
非代償性肝硬変として診断された患者を除く肝疾患患者は、参加後1週間以内に超音波法により導かれる肝生検を受けた。生検標本を10%ホルマリンで固定し、型通りにパラフィン中に包埋し、組織切片をヘマトキシリンおよびエオシンならびにマッソン・トリクローム染色により処理した。診断には、最小長が少なくとも1.5cmの肝生検および少なくとも6つの門脈域が必要とされた。壊死性炎症の組織学的グレード分類(G0~G4)および肝線維症のステージ分類(S0~S4)は、Scheuer分類に従って実施される(Scheuer PJ,Standish RA,Dhillon AP.Scoring of chronic hepatitis.Clinics in liver disease 2002;6:335-47,v-vi.)。全ての切片を、Fudan University(Shanghai、China)の3名の病理学者により盲検的にかつ独立して評価し、観察された結果をKappa一致度テストによって処理した。
血液学的および一般的な生化学的試験は、LH750血球分析装置およびSynchron DXC800クリニカルシステム(Beckman Coulter、USA)を使用して、製造業者のプロトコルに従って測定した。血清ヒアルロン酸(HA)およびラミニン(LN)濃度を化学発光免疫測定装置(CLIA)システム(LUMO、Shinova Systems、Shanghai、China)で測定した。凝固機能を自動血液凝固測定装置(STAGO Compact、Diagnostica Stago、France)で測定した。血清HBV-DNAレベルをリアルタイムポリメラーゼ連鎖反応(PCR)システム(LightCycler 480、Roche、USA)で検出した。
量的変数を平均値±SEMとして表し;カテゴリー変数を数値として表す。単変量解析(ANOVA、スチューデントt検定、ノンパラメトリック検定)を実施して、肝線維症を有する患者と健常対照の間および異なるステージの肝線維症患者の間で有意差のあった変数を同定した。本発明者らは0.05未満のp値を有意とみなした。データセットをSIMCA-P+ 13.0ソフトウェア(Umetrics、Umea、Sweden)に導入した後に、まず、多変量解析である直交部分最小二乗法-判別分析(OPLS-DA)を行って、対照および肝線維症の胆汁酸プロファイルの概要を取得した。次に、発明者らは、OPLS-DAを実施して、異なるステージの肝線維症患者を鑑別した。予測モデルをステップワイズロジスティック回帰分析により再構成し、これにより、各エンドポイント(S1、S2、S3の線維症患者、およびCP A、CP BおよびCP Cの肝硬変患者)に関連する独立した因子を同定した。単一のマーカーおよびマーカーパネルの全体的な診断能を受信者動作特性(ROC)曲線分析により評価した。SPSS 22.0(IBM SPSS、USA)ソフトウェアを使用して統計分析を実施した。正準判別分析もまた、SPSSを使用して胆汁酸のデータに対して実施した。Graphpad Prism 6.0(GraphPad software、CA、USA)を使用して棒グラフを描いた。
血清試料調製
50μlのアリコートの血清を150μlのメタノール(内部標準として使用される0.10μMのCA-D4、UDCA-D4およびLCA-D4を含有する)と混合した。続いて、混合物を2分間ボルテックスし、10分間静置し、20000gにおいて4℃で10分間遠心分離した。160μLの上清のアリコートを清浄なチューブに移し、真空乾燥した。残渣を等量のアセトニトリル(0.1%ギ酸)および水(0.1%ギ酸)に再溶解して、最終体積を40μLとした。遠心分離の後、上清をUPLC-MS/MS分析に使用した。
標準原液の各アリコートを混合して、混合原液を得た。全ての胆汁酸標準を含有するキャリブレーション溶液を、活性炭を使用してBAを枯渇させたナイーブなプール血清中に0.610、1.221、2.441、4.883、9.766、19.531、39.063、78.125、156.250、312.5、625.0、1250.000、および2500.00ng/mLの一連の濃度で調製した。キャリブレーション曲線および対応する回帰係数を内部標準の調整によって得た。
いくつかの改変を伴う以前に報告された方法(Xie G,Zhong W,Li H,et al.Alteration of bile acid metabolism in the rat induced by chronic ethanol consumption.FASEB journal:official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology 2013;27:3583-93.Garcia-Canaveras JC,Donato MT,Castell JV,Lahoz A.Targeted profiling of circulating and hepatic bile acids in human,mouse,and rat using a UPLC-MRM-MS-validated method.Journal of lipid research 2012;53:2231-41)に従って、血清BAを測定した。バイナリソルベントデリバリーマネージャおよびサンプルマネージャを装備したWaters ACQUITY超高速LCシステム(Waters、Milford、MA)を研究の全体を通して使用した。質量分析計は、ESI源を備えるWaters XEVO TQ-S装置(Waters、Milford、MA)であった。LC-MSシステム全体をMassLynx4.1ソフトウェアによって制御した。全てのクトマトグラフィー分離をACQUITY BEH C18カラム(1.7μm、100mm×2.1mm内部寸法)(Waters、Milford、MA)を使用して実施した。
移動相は、0.3mL/分の流速で流れるLC-MSグレードの水中の0.1%ギ酸(移動相A)およびLC-MSグレードのアセトニトリル中の0.1%ギ酸(移動相B)からなった。流速は、0.45mL/分であり、次の移動相勾配:0~1分(5%B)、1~5分(5~25%B)、5~15.5分(25~40%B)、15.5~17.5分(40~95%B)、17.5~19分(95%B)、19~19.5分(95~5%B)、19.6~21分(5%B)を有した。カラムを45℃に維持し、全ての試料の注入体積は、5μlであった。
負モードで得たUPLC-MSの未加工のデータをTargetLynxアプリケーションマネージャ version 4.1(Waters Corp.、Milford、MA)を使用して解析して、キャリブレーション式および試料中の各BAの定量濃度を得た。スチューデントt検定を使用して、BA測定値におけるグループ間の相違を調査した。続いて、全ての代謝産物について得られたp値を調整して、複数の検査を偽発見率(FDR)法によって説明した26。本発明者らは、0.05未満のp値を有意とみなした。
前の手順に続いて、2つの内部標準(水中の10μL L-2-クロロフェニルアラニン、0.3mg/mL;メタノール中の10μL ヘプタデカン酸、1mg/mL)を添加した100μlの各血清試料を、300μLのメタノール:クロロホルム(3:1)とともに-20℃で10分間の代謝産物の抽出に使用した。12,000rpmで10分間の遠心分離後、300μLの上清のアリコートをさらなる分析のために使用した。試料を室温で真空乾燥した。残渣を、30℃で90分間の80μLのメトキシアミン(ピリジン中の15mg/mL)、および70℃で60分間の80μLのBSTFA(1%TMCS)による2段階の誘導体化手順にかけた。品質管理に使用される内部標準に加えて、複数の標準試料からなる別の品質管理試料を調製し、10個の各試料とともに処理した。このQC試料を真空乾燥し、試料とともに同じ手順により誘導体化した。
血清FFA抽出:
30μLの血清試料のアリコートに同位体標識された内部標準溶液(10μl C19:0-d37、5μg/mL)を添加した。混合溶液を500μLのイソプロパノール:ヘキサン:2Mのリン酸(40:10:1)で抽出し、2分間ボルテックスした。室温で20分間保存した後、試料に400μlのヘキサンおよび300μLの水を添加し、2分間ボルテックスし、続いて、12,000rpmで5分間遠心分離した。400μLの上清のアリコートをガラスのサンプリングバイアルに移した。残渣を別の400μlのヘキサンで抽出し、続いて2分間ボルテックスし、12,000rpmで5分間遠心分離した。400μLの上清のアリコートを同じガラスサンプリングバイアルに移して、室温で真空乾燥した。残渣を80μlのメタノールに溶解して、UPLC-QTOFMS分析を保留した。
上清の5μLのアリコートを、40℃で保持した100mm×2.1mm、1.7μmのBEH C18 カラム(Waters,USA)に、超高速液体クロマトグラフィーシステム(Waters,USA)を使用して注入した。2液勾配溶出システムは、水(A)および20% v/vイソプロパノールを有するアセトニトリル(B)からなり、分離は、次の勾配:70%Bの均一濃度(0~2分)、70~75%B(2~5分)、75~80%B(5~10.0分)、80~90%B(10.0~13.0分)、90~100%B(13.0~16.0分)の直線勾配;100%Bの均一濃度(16.0~21.0分);100%から70%B(21.0~22.5分)への直線勾配および70%Bの均一濃度(22.5~24.0分)を使用して達成された。流速は0.4mL/分であった。分析の間、全ての試料を4℃に維持した。試料を「対照-疾患-対照」の順で交互に処理して、体系的な分析の偏差を最小化した。プールFFA標準を品質管理として使用して、機器の性能およびデータの品質をモニターした。
グリコケノデオキシコール酸(GCDCA)、グリココール酸(GCA)、ケノデオキシコール酸(CDCA)、デオキシコール酸(DCA)、グリコデオキシコール酸(GDCA)、コール酸(CA)、ウルソデオキシコール酸(UDCA)、グリコウルソデオキシコール酸(GUDCA)、グリコヒオデオキシコール酸(GHDCA)、タウロケノデオキシコール酸(TCDCA)、タウロデオキシコール酸(TDCA)、タウロコール酸(TCA)、グリコλ-ムリコール酸(G λ-MCA)、λ-ムリコール酸(λ-MCA)、7-ケトリトコール酸(7-KLCA)、7-ケトデオキシコール酸(7-KDCA)、リトコール酸(LCA)、タウロウルソデオキシコール酸(TUDCA)、ヒオデオキシコール酸(HDCA)、3-ケトコール酸(3-KCA)、タウロλ-ムリコール酸(T λ-MCA)、タウロリトコール酸(TLCA)、およびグリコリトコール酸(GLCA)を含む合計23個の胆汁酸が、健常対照と比較して肝疾患患者において有意に増加した。発明者らが、肝線維症および肝硬変の患者の中で胆汁酸レベルを比較したとき、GCDCA、GCA、CDCA、CA、UDCA、GUDCA、GHDCA、TCDCA、TCA、7-KLCA、LCA、TUDCA、3-KCA、T λ-MCA、TLCA、およびGLCAにおいて顕著な相違があり、それらのレベルは、対照の対象においては非常に低く、線維症患者において有意に(p<0.01)増加し、肝硬変を有する患者において非常に大きく増加した(表6)。
合計50個の遊離脂肪酸を、異なる進行/重症度レベルの肝疾患患者および健常対照において同定した(表7)。データに基づいて、遊離脂肪酸レベルが肝疾患の存在および/または進行とともに変化する(表に示されるように、特定の脂肪酸に依存して上昇または低下する)ことが明らかである。データは、これらのマーカーを使用して、健常対照から肝疾患を判別できるか、または肝疾患状態を(例えば、進行または重症度によって)判別できることを実証している。
合計29個のアミノ酸を、異なる進行/重症度を有する肝疾患患者および健常対照において同定した(表8)。データに基づいて、アミノ酸レベルが肝疾患の存在および/または進行とともに変化する(表に示されるように、特定のアミノ酸に依存して上昇または低下する)ことが明らかである。データは、これらのマーカーを使用して、健常対照から肝疾患を判別できるか、または肝疾患状態を(例えば、進行または重症度によって)判別できることを実証している。
OPLS-DAにより、23個の胆汁酸(図1A、R2Xcum=0.719、R2Ycum=0.778、Q2Ycum=0.744)、遊離脂肪酸(図1B、R2Xcum=0.664、R2Ycum=0.829、Q2Ycum=0.806)、およびアミノ酸(図1C、R2Xcum=0.516、R2Ycum=0.793、Q2Ycum=0.785)を使用して、肝線維症患者と健常対照との間の境界線が明らかになった。
NASH患者と対照の対象との間の判別のための血清代謝産物の潜在的な有用性を評価するために、本発明者らは、胆汁酸、遊離脂肪酸、およびアミノ酸にそれぞれ基づくロジスティック回帰モデルを開発した。
NASH患者と線維症の対象との間の判別のための血清代謝産物の潜在的な有用性を評価するために、本発明者らは、胆汁酸、遊離脂肪酸、およびアミノ酸にそれぞれ基づくロジスティック回帰モデルを開発した。
線維症患者と肝硬変の対象との間の判別のための血清代謝産物の潜在的な有用性を評価するために、本発明者らは、胆汁酸、遊離脂肪酸、およびアミノ酸にそれぞれ基づくロジスティック回帰モデルを開発した。
肝疾患は、脂肪性肝炎(例えば、NASH)から線維症、そして肝硬変へと進行することが多い。GUDCA、TCDCAおよびチロシンのレベルは、肝疾患の進行とともに徐々に上昇した(図7、8および9)。線維症はまた、進行または重症度、例えば、ステージS1、S2およびS3(肝硬変なし)、ならびにS4(すなわち、肝硬変)によってステージ分類され得る。同様に、後期ステージS4の線維症、すなわち、肝硬変はさらに、進行または重症度、例えば、ステージCP A~Cによってステージ分類され得る。胆汁酸レベルを異なるステージの線維症および肝硬変の間で比較し、結果として、3つのステージの線維症患者および3つのステージの肝硬変患者中の血清において、GUDCAおよびチロシンが特異的に発現されていた(図10、11および13)。
データのさらなる分析により、他の意外な診断用胆汁酸マーカーが明らかになった。肝線維症および肝硬変の患者の間で胆汁酸(「BA」)レベルを比較したとき、GCDCA、GCA、CDCA、CA、UDCA、GUDCA、GHDCA、TCDCA、TCA、7-KLCA、LCA、TUDCA、3-KCA、THCA、TLCA、およびGLCAにおいてもまた顕著な相違があり、それらの各々のレベルは、対照の対象においては非常に低く、線維症患者において有意に上昇し、肝硬変を有する患者において非常に大きく上昇した。
本発明の例となるキットは、パネルtのバイオマーカーに対応する既知量の同位体標識された(例えば、C13で標識された)内部標準を含んだ。キットは、評価される全ての内部標準の単一の混合物を含んでもよく、または各内部標準の別々の量を含んでもよい。評価される代謝産物プロファイルにおける各内部標準の量を測定することができ、かつ対象由来の試料中の対応するバイオマーカーの対応する量と比較するために使用することができる。各内部標準は、分配されたキットにおいて固体形態であっても液体形態であってもよい。内部標準が固体形態である場合、キットの使用前にそれらを溶液中に懸濁させるべきである。キットは、任意に、パネルの各代謝産物バイオマーカーの標識された変形体の少なくとも1つを含む。
キットを使用して、代謝産物プロファイルにおける代謝産物の定量化を可能にすることにより肝疾患状態の評価を提供するための本発明の方法を実施してもよい。例えば、本発明のキットを使用して、肝疾患状態を診断(例えば、その存在または不存在を判定)してもよい。加えて、本発明のキットを使用して、肝疾患を有する対象が肝疾患に対する治療に応答しているかどうかを判定してもよい。
実施例8に詳述される23個の胆汁酸マーカーのリストから、マーカーのサブセットを含むパネルを選択して、より小さなパネルの診断能を試験した。具体的には、GCA、GCDCA、TCA、TCDCA、GUDCA、TUDCAおよび7-KLCAが、対照と全ての肝疾患(NASH、線維症、肝硬変)患者の間で確立されたOPLS-DAモデルから導き出された、それらの個々の高い倍率変化(「FC」)、曲線下面積(「AUC」)、および射影における変数重要度(VIP)値に基づいて選択された(表20)。
実施例8で検査された肝疾患対象のいずれも含まなかった肝疾患対象の新規のセット(検証セット)において、選択されたBAパネルを測定した。検証セットは、テストセットと同じ502名の肝疾患を有しない非糖尿病対象、非アルコール依存症対象、健常対象を含んだ。対象のこのセットからのデータを表29に提供する。肝疾患状態の他のマーカーもまた、比較のためにこれらの対象において測定された(例えば、ALB、ALP、ALT、AST)。
本実施例は、調節不全の胆汁酸(BA)が肝疾患に密接に関連し、変化した腸内細菌叢に起因していることを詳述する。本実施例は、デオキシコール酸(DCA)、タウロコール酸(TCA)、タウロケノデオキシコール酸(TCDCA)およびタウロリトコール酸(TLCA)を含む疎水性BAの肝内うっ滞が、ストレプトゾトシンおよび高脂肪食(HFD)により誘発される非アルコール性脂肪性肝炎-肝細胞癌(NASH-HCC)マウスモデルにおいて実質的に増大したことを示す。加えて、長期にわたりHFDを与えたマウスは、肝BAレベルが有意に上昇して肝腫瘍を自然に発症した。2%コレスチラミンを与えることによってNASH-HCCモデルマウスにおける疎水性BAの腸管排泄を促進することによるBAレベルの治療的調節が、HCCの発症を有意に予防した。腸内細菌叢の変化は、肝臓および糞便におけるBAレベルの変化と密接に相関していた。HFDにより誘発される炎症は、重要なBA輸送体を阻害し、肝内BA濃度を持続的に上昇させた。この研究はまた、BA処理された正常ヒト肝細胞株における有意に上昇した細胞増殖、およびTCDCA処理したHepG2細胞株における腫瘍抑制遺伝子CEBPαの発現の下方制御を示し、複数の疎水性BAが共同して肝臓の発癌を促進し得ることを実証した。
マウスおよび食餌
実験1:HFDと組み合わせたSTZにより誘発されるNASH-HCC C57BL/6Jマウスモデルを発育させた。病原体を保有していない妊娠14日C57BL/6Jマウスを日本クレア(東京、日本)から購入し、新生仔雄マウスを2つの群:対照群およびモデル(STZ-HFD)群に分けた。対照群のマウスをいずれの処理もせずに飼育し、普通食(日本クレア株式会社のCE-2、12kcal%脂肪、29kcal%タンパク質、59kcal%炭水化物で構成される)を与えた。STZ-HFDのマウスは、生後2日目で200μgのSTZ(Sigma、MO、USA)の皮下注射を1回行い、HFD(日本クレア株式会社のHFD32、STZ-FHD群)を4週齢後16週間自由に与えられた(図23)。実験中、全ての動物の体重を週1回記録した。6、8、12、および20週目で、各群の6匹のマウスを安楽死させ、肝臓、血漿、および糞便の試料を回収した。
血清のアラニンアミノトランスフェラーゼ(ALT)およびアスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ(AST)のレベルをFUJI DRI-CHEM 7000(Fujifilm、東京、日本)により測定した。
肝組織を10%中性緩衝ホルマリン中で固定し、パラフィンブロックに包埋し、常用のヘマトキシリンおよびエオシン(H&E)染色により処理した。個々のNAFLD活性スコアを計算した。
血漿、肝臓、および糞便中のBAレベルを、超高速液体クロマトグラフィートリプル四重極質量分析(UPLC-TQMS)により定量的に測定した。全ての分離をACQUITY BEH C18カラム(1.7μm,100mm×2.1mm内部寸法)(Waters、Milford、MA)を使用して実施した。データ取得をMassLynx version 4.1を使用して実施し、BAの定量をTargetLynxアプリケーションマネージャversion 4.1(Waters Corp.、Milford、MA)を使用して実施した。詳細については、補足情報の方法を参照されたい。
細菌の多様性を、以前に報告されたようなバクテリアタグエンコードFLX 16S rDNAアンプリコンパイロシーケンス(bacterialtag-encoded FLX 16S rDNA amplicon pyrosequencing)(bTEFAP)法を使用して特徴付けた。
DNAおよびRNAを、RLT Plus中のホモジナイズされた組織ライセートおよびAllPrep DNA/RNA Mini kit(Qiagen、Valencia、CA)を使用して、製造業者のプロトコルに従って同時に抽出した。RNAの完全性を、1μlのRNAを使用してRNA Nano 6000 chipsおよび2100 Agilent Bioanalyzer上で評価した。標的のmRNAの発現を、Applied Biosystems 7900 FAST Real Time PCR System(Applied Biosystems)上で比較サイクル閾値(comparative cycle threshold)法により3通り測定した。フォワードおよびリバースプライマーをIntegrated DNA Technologies(Coralville、IA)から購入した。標的の遺伝子発現をACTBレベルに正規化し、標的遺伝子の相対的な発現を比較Ct法としても知られる「dCT」を使用して計算した。
肝臓におけるトリグリセリド(TG)、インターロイキン-6(IL-6)、腫瘍壊死因子(TNF-α)のレベルを、BlueGene Biotech、Shanghai、ChinaのELISAキットを使用して測定した。
血漿、肝臓、および糞便中のリポ多糖(LPS)のレベルを、マウスLPS ELISAキット(BlueGene Biotech、Shanghai、China)を使用して、製造業者のプロトコルに従って決定した。
正常ヒト肝細胞株WRL-68およびTHLE-2をSigmaから購入した。BA処理のために、細胞を収集し、PBSで2回すすぎ、10%チャコール処理FBSを加えた無糖DMEM(Life Technologies)中で懸濁させ、5×104/ウェルの密度で6ウェルプレートに播種した。本発明者らは、27.5mMのグルコース(Glc、Sigma)および0.3mMのオレイン酸(OA、Sigma)を準備して、インビトロにおいて高いグルコースおよび脂肪条件を模倣した。5種類のBA、CA、TLCA、TCA、TCDCA、GCDCA、DCA、またはLCAのそれぞれを5μM、50μM、100μM、200μMの濃度で培地に添加した。14日間の処理後、正常培地(10%FBS含有DMEM-F12)を各ウェルに添加して、使用済みの培地を置換した。細胞増殖および足場非依存性増殖アッセイを正常培地中で実施した。加えて、ウエスタンブロットアッセイを実施して、腫瘍性タンパク質c-mycの発現の変化を分析した。
肝BAは、STZ-HFDにより誘発されるNASH-HCCマウスにおいて有意に増加した。脂肪症、NASH、線維症、およびHCCの病理学的表現型は、雄C57BL/6Jマウスにおいて順調に発症した。皮下にSTZを注射された新生仔マウスは、軽度の膵島炎症および膵島破壊を引き起こした。生後4週間のSTZ感作マウスはHFDを与えられ、脂肪肝から、NASH、線維症、およびHCCへの経時的な組織学的変化を起こした(図23A)。特に、HFDを与えた全てのマウスはHCCを発症した(図23B)。H&E染色(図23C)は6週目で炎症性病巣のない脂肪肝を示し、8週目で好中球、リンパ球および単球を含む中等度の炎症性浸潤ならびに肝細胞のバルーニング変性を有する脂肪肝を示し、12週目で慢性線維症を示し、NAFLD活性スコアが上昇した20週目でHCCを示した。
肝臓において有意に増加したBAがSTZ-HFD処理マウスにおいて観測されたことにより、HFDにより誘発される高濃度のBAおよびそれらの肝臓中のうっ滞が、腫瘍プロモーターとして機能し得るという仮説を導く。STZは、国際癌研究機関(International Agency for Research on Cancer)によって潜在的な発癌性物質として分類されたため、発明者らは、HFD単独で肝癌を発症させることになるかを調査したが、STZ単独で20週間処理された雄マウスにおいてHCCは観察されなかった。この長期間のHFDの介入研究では、肝腫瘍は、58週目において、HFDを与えたマウスの半数超で(11匹中6匹)観察された(図24Aおよび24B)。肝重量(図24C)および肝臓と体重の比(図24D)は、HFDを与えてHCCを誘発したマウスにおいて著しく増加した。血漿、肝臓および糞便中のLPSレベルは全て、HCCマウスにおいて有意に上昇した(図24E)。特に、肝臓および血漿のBA、TCA、GCA、およびTCDCAは、HFDを与えられた全てのマウスで増加したが、正常と比較して、HCCを発症したそれらのマウスにおいては統計的有意性を有していた(図24Fおよび24G)。
肝BAのHFDにより誘発される蓄積が肝腫瘍を促進することを示した。HCCの発症におけるBAの役割を確認するために、発明者らは、STZ-HFDマウスモデルを繰り返し、コレスチラミンの経口投与によりマウスのBAの量を減少させた(図25A)。発明者らは、STZ-HFDモデル群と比較して、コレスチラミンを与えることが、肝臓の悪性病変の発生およびサイズを有意に低下させることを観察した(図25B)。STZ-HFD由来の組織構造はコレスチラミン処理により正常化したが、このことは、血液および肝組織における反転した病理学的特徴により支持された(図25Cおよび25D)。コレスチラミン投与の後、IL-6、TNF-α、I型コラーゲン、および癌関連遺伝子グリピカン-3(Gpc3)の発現のレベルは正常化した(図25E)。変化したBA輸送体(図25E)ならびにBA、主として肝臓中(図25F)および血漿中のDCA、TCA、およびTCDCAは、コレスチラミン介入後に減じた。STZ-HFD介入に応答した腸内細菌叢の破壊ならびに血漿、肝臓および糞便中のLPSレベルもまた、コレスチラミン介入により回復した(図25Gおよび25H)。
本発明者らのメタゲノム解析データは、6週、8週、12週および20週でSTZ-HFD介入したマウスにおいて腸内細菌叢が有意に変化したことを示した(図26A~26D)。特定の微生物の存在量が肝疾患進行とともに変化した。門レベルで対照と比較した場合、糞便のファーミキューテス(Firmicutes)およびアンチノバクテリア(Antinobacteria)におけるOTU(%)の相対存在量は、モデル群において有意に増加したが、バクテロイデス(Bacteroides)およびプロテオバクテリア(Proteobacteria)は、有意に減少した(図26B)。クロストリジウム(Clostridium)、バクテロイデス(Bacteroides)、およびデサルフォビブリオ(Desulfovibrio)の属レベルは、モデル群において有意に増加した(図26C)。種レベルで対照群と比較したモデル群において、糞便のクロストリジウム属(Clostridium spp.)、バクテロイデス属(Bacteroides spp.)、アトポビウム属(Atopobium app.)、およびデサルフォビブリオ属(Desulfovibrio spp.)におけるOTU(%)の相対存在量は有意に増加したが、パラサテレラ属(Paasutterella spp.)およびアッカーマンシア属(Akkermansia spp)は有意に減少した(図26D)。これらの全ての細菌は、BA脱抱合、脱ヒドロキシ化、およびBAのCO2およびH2Oへの分解に関与すると報告された。
遺伝子発現分析は、肝臓におけるBA輸送および合成に関与する遺伝子の下方制御を示した(図27A)。特に、マウス肝臓における肝FXRの発現は、NASHおよび線維症を有するマウスモデルにおいて有意に低下し、このことは、肝排出輸送体を下方制御する機構を示唆しているが、それにより、肝細胞およびBAに誘発される肝損傷におけるBA蓄積の増加をもたらした。6週、8週、12週および20週で有意に下方制御されるBSEPならびに6週で上方制御されるCYP7A1によって明示されるように、HCCの病理的な発症において肝BAのうっ滞の著しい増加がもたらされている。このことは、6週、8週、12週および20週のマウスモデルの肝臓における異常に高いBAレベルの観測と一貫性がある。これらの全ては、HFDにより誘発される脂肪肝が、肝FXRおよび肝BSEP発現の有意に阻害された肝臓における調節不全のBA合成および輸送をもたらしていることを示した。BAに対する取り込み輸送体、タウロコール酸ナトリウム共輸送ポリペプチド(NTCP)、頂端側ナトリウム依存性胆汁酸輸送体(ASBT)およびSHPの発現は、STZ-HFD処理により抑制された。
IL-6およびTNF-αなどの炎症促進性遺伝子の発現は、脂肪症および脂肪性肝炎の時期において増加し、線維症関連遺伝子、TIMPメタロペプチダーゼインヒビター1(TIMP-1)およびI型コラーゲンの発現は、コラーゲン沈着の組織学的徴候の前に増加し、癌関連遺伝子(マトリックスメタロペプチダーゼ9(MMP-9)およびGpc3の発現は、HCCステージで増加した(図27B)。これらの全ての結果は、STZ-HFDにより誘発される炎症および酸化ストレスが重要なBA輸送体を阻害し、いくつかの重要な炎症促進性、線維症、および癌マーカーを促進する肝内BA濃度(図23)の増加を引き起こすことを示唆している。
発明者らはさらに、高グルコースおよび高脂肪酸濃度で培養した正常ヒト肝細胞において、BA、特に、DCA、LCA、TLCA、TCDCA、TCA、CA、UDCAおよびGCDCAの腫瘍促進作用を調査することにより発明者らの仮説を試験した。発明者らは、高グルコース(27.5mM)および高オレイン酸(0.3mM)濃度におけるDCA、LCA、CAおよびTCDCA処理が、HepG2細胞(図28B)だけでなくWRL-68(図28A)およびTHLE-2の増殖を有意に促進することを見出した。しかし、TLCA、TCAおよびGCDCA処理による、WRL-68細胞の増殖に対する影響はごくわずかであった。これらの結果は、DCA、LCAまたはTCDCAが、高グルコースおよび高脂肪の微小環境において正常肝細胞の増殖速度を加速できることを示したが、このことは、肝細胞の悪性転換をもたらし得る。
腸内細菌叢に媒介される脂肪性肝疾患の発症およびそのHCCへの進行の根底にある明確な機構は、この調査の前には明らかでなかった。発明者らの研究は、腸内細菌叢と肥満に関連した肝臓の発癌との間の内在的な関連としての肝臓-BA-細菌叢の代謝系を指摘している。
最初に、潜在的なバイオマーカーを、単変量解析と多変量解析の両方を使用して評価および選択した。単変量解析は、正規分布変数に対するパラメトリック検定(例えば、スチューデントt検定およびANOVA)、および正規分布に従わなかった変数に対するノンパラメトリック検定(例えば、マン・ホイットニーのU検定およびクラスカル-ウォリス検定)を含む。肝線維症の異なるステージを判別するための代謝性バイオマーカーの性能をさらに、部分的最小二乗法(PLS)、ピアソン/スピアマン相関、クラスタリング、多重線形/ロジスティック回帰、およびランダムフォレストを使用して評価した。発見された潜在的なバイオマーカーを用いて、本発明における機械学習ツールを開発したが、これはランダムフォレスト(RF)に基づいており、バイオマーカーの驚くべき組み合わせを得た。タウロケノデオキシコール酸(TCDCA)、グリコケノデオキシコール酸(GCDCA)、グリココール酸(GCA)、グリコウルソデオキシコール酸(GUDCA)、タウロコール酸(TCA)、7-ケトコール酸(7-KLCA)、タウロウルソデオキシコール酸(TUDCA)、ミリストレイン酸(C14:1 n5)、パルミトレイン酸(C16:1 n7)、エライジン酸(C18:1 n9t)、エルカ酸(C22:1 n9)、ドコサテトラエン酸(C22:4 n-6)/アラキドン酸(C20:4 n6)比、リノール酸(C18:2 n6)/γ-リノレン酸(C18:3 n6)比、パルミチン酸(C16:0)、パルミチン酸(C16:0)/パルミトレイン酸(C16:1 n7)、チロシン、フルクトース、フルクトース/グルコース比を含むバイオマーカーのパネルを実演して、肝線維症に対する、例えば、線維症ステージおよび/または肝硬変を識別する最も強力な階層化能を得た。
Claims (25)
- 肝疾患症状の診断に用いられるバイオマーカーパネルであって、
前記バイオマーカーパネルのバイオマーカーは、パルミチン酸(C16:0)、パルミチン酸(C16:0)/パルミトレイン酸(C16:1 n7)、チロシン、フルクトース、フルクトース/グルコース、グリコケノデオキシコール酸(GCDCA)およびグリココール酸(GCA)を含み、
a.準備した生体試料におけるバイオマーカーパネルの各バイオマーカーのレベルを測定し、
b.測定された前記レベルを肝疾患状態と相関させ、
c.前記相関に基づいて、前記生体試料が前記肝疾患症状を有することを判定するために用いられるバイオマーカーパネル。 - 前記バイオパーカーパネルが、さらに、タウロケノデオキシコール酸(TCDCA)、グリコウルソデオキシコール酸(GUDCA)、グリココール酸(GCA)、グリコルスデオキシコール酸(GUDCA)、タウロコール酸(TCA)、7-ケトコール酸(7-KLCA)、タウロウルソデオキシコール酸(TUDCA)、ミリストレイン酸(C14:1 n5)、パルミトレイン酸(C16:1 n7)、エライジン酸(C18:1 n9t)、エルカ酸(C22:1 n9)、ドコサテトラエン酸(C22:4 n-6)/アラキドン酸(C20:4 n6)、リノール酸(C18:2 n6)/γ-リノレン酸(C18:3 n6)の各々を含む請求項1に記載のバイオマーカーパネル。
- 前記相関させる工程が、前記各バイオマーカーの測定された前記レベルからスコアを計算する工程であって、前記スコアがモデルからの出力であって、前記モデルが前記パネルの各バイオマーカーの測定された前記レベルの入力に基づいて実行される工程を含む請求項1に記載のバイオマーカーパネル。
- 前記判定する工程が、計算された前記スコアを閾値スコアと比較する工程であって、前記生体試料が、前記スコアが前記閾値スコアを超える場合に前記肝疾患状態を有すると判定される工程を含む請求項3に記載のバイオマーカーパネル。
- 前記肝疾患状態が、肝疾患の存在、または肝疾患ステージまたは肝疾患重症度の存在である請求項4に記載のバイオマーカーパネル。
- 前記肝疾患状態が、肝炎、脂肪性肝炎、NASH、線維症および肝硬変から選択される請求項4に記載のバイオマーカーパネル。
- 前記判定する工程が、計算された前記スコアを1つ以上の閾値スコアと比較する工程であって、前記1つ以上の閾値スコアが、肝疾患のより高いステージまたは重症度から前記肝疾患のより低いステージまたは重症度を識別する閾値に対応する工程を含む請求項3に記載のバイオマーカーパネル。
- 前記肝疾患が線維症である請求項7に記載のバイオマーカーパネル。
- 複数の前記閾値の1つ以上が非肝硬変線維症のステージを識別する請求項8に記載のバイオマーカーパネル。
- 1つ以上の閾値スコアが肝硬変のステージを識別する請求項8に記載のバイオマーカーパネル。
- 前記1つ以上の閾値スコアが、肝硬変と非肝硬変線維症とを識別する第1の閾値を含み、かつ
非肝硬変線維症のステージを識別する第2の閾値を含む請求項8に記載のバイオマーカーパネル。 - 前記1つ以上の閾値スコアが、肝硬変のステージを識別する第2の閾値を含む請求項11に記載のバイオマーカーパネル。
- 前記相関させる工程が、前記各バイオマーカーの各々の測定された前記レベルを各々の対照レベルと比較する工程を含む請求項1に記載のバイオマーカーパネル。
- 前記判定する工程が、質量分析(MS)によって測定する工程のための前記試料を調製する工程を含み、
前記MSが、飛行時間MS、イオントラップMS、四重極MS、磁場セクターMS、イオンサイクロトロン共鳴MSおよび静電場セクター分析計MSの1つ以上を含む請求項1~13のいずれか一項に記載のバイオマーカーパネル。 - 前記方法が、前記各バイオマーカーを前記試料から抽出する工程を含み、
前記抽出する工程が、前記試料を濾過して濾液を得る工程、および前記濾液中の前記各バイオマーカーを測定する工程を含む請求項1~14のいずれか一項に記載のバイオマーカーパネル。 - 前記方法が、濾過の前にタンパク質沈殿の工程を含み、
前記各バイオマーカーを1つ以上の他のバイオマーカーから分離する工程を含み、かつ
前記分離する工程が、ガスクロマトグラフィー(GC)または液体クロマトグラフィー(LC)を含む請求項1~15のいずれか一項に記載のバイオマーカーパネル。 - 前記測定する工程が、超高速液体クロマトグラフィー-トリプル四重極質量分析(UPLC-TQMS)を含み、
前記UPLC-TQMSが負イオンモードで実施される請求項1~16のいずれか一項に記載のバイオマーカーパネル。 - 前記測定する工程が、酵素的分析、化学的分析、比色的分析または蛍光定量的分析を含む請求項1~17のいずれか一項に記載のバイオマーカーパネル。
- 肝疾患状態の診断に用いられるキットであって、
a.前記キットが内部標準を含み、
b.前記内部標準が、
i.天然に存在する血液、血漿、または血清ではなく、
ii.任意に同位体標識され、かつ
iii.パルミチン酸(C16:0)、パルミチン酸(C16:0)/パルミトレイン酸(C16:1 n7)、チロシン、フルクトース、フルクトース/グルコース、グリコケノデオキシコール酸(GCDCA)およびグリココール酸(GCA)を含むバイオマーカーに対応する、キット。 - 前記バイオマーカーパネルに対応する内部標準が、さらに、タウロケノデオキシコール酸(TCDCA)、グリコウルソデオキシコール酸(GUDCA)、グリココール酸(GCA)、グリコルスデオキシコール酸(GUDCA)、タウロコール酸(TCA)、7-ケトコール酸(7-KLCA)、タウロウルソデオキシコール酸(TUDCA)、ミリストレイン酸(C14:1 n5)、パルミトレイン酸(C16:1 n7)、エライジン酸(C18:1 n9t)、エルカ酸(C22:1 n9)、ドコサテトラエン酸(C22:4 n-6)/アラキドン酸(C20:4 n6)、リノール酸(C18:2 n6)/γ-リノレン酸(C18:3 n6)を含むバイオマーカーに対応する、請求項19に記載のキット。
- 前記複数の内部標準が、ステロイド酸、脂肪酸、アミノ酸、またはそれらの組み合わせを含み、任意に、前記ステロイド酸が、胆汁酸である請求項20に記載のキット。
- 前記ステロイド酸、前記脂肪酸、前記アミノ酸、またはそれらの前記組み合わせの各々が、前記パネルのそれぞれのバイオマーカーの安定同位体標識された変形体であり、任意に、前記キットが、前記パネルの各バイオマーカーの安定同位体標識された変形体を含む請求項21に記載のキット。
- フィルターをさらに備え、前記内部標準が、前記フィルターに含まれ、
容器をさらに備え、前記内部標準が、前記容器中に提供され、
前記内部標準が、混合物として提供される複数の内部標準であり、
前記内部標準が、フリーズドライされ、
前記内部標準が、GC-MSまたはLC-MS用に構成される請求項20~22のいずれか一項に記載のキット。 - 複数の容器を備え、各容器が、前記各内部標準の一部を含む請求項19~22のいずれか一項に記載のキット。
- a.請求項19~24のいずれか一項に記載のキットを準備する工程と、
b.請求項1~18のいずれか一項に記載の方法を行う工程であって、前記試料を、前記測定する工程の前に前記内部標準と混合する工程とを含むキットの使用方法。
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