JP6867347B2 - 免疫療法のためのエンゲージャー細胞 - Google Patents
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Description
本発明は、NCI/NIH助成金第P50 CA126752号による政府資金提供を受けて行われた。アメリカ合衆国政府は、本発明について一定の権利を有する。
(配列番号10)を含む。
特定の実施形態では、少なくとも抗原認識ドメインおよび活性化ドメインを含み、場合によってサイトカイン、共刺激性ドメイン、および/またはT細胞活性化の負の調節分子を抑制するためのドメインを含むエンゲージャー分子によって、細胞が遺伝的に改変されている(免疫細胞を含める)。エンゲージャー分子の抗原認識ドメインは、標的細胞内および/または標的細胞上に存在し、標的細胞によって分泌される1種または複数の分子に結合する。特定の態様では、標的細胞ががん細胞であり、これには、少なくとも固形腫瘍細胞が含まれる。エンゲージャー分子が標的分子に結合したら、それらは活性化ドメインによって認識される分子を発現する細胞を活性化することができる。エンゲージャー分子は、エンゲージャー分子で遺伝的に改変された細胞を活性化することも、無改変の細胞を活性化することもできる。所望の効果に応じて、活性化は、正または負のシグナルをもたらすことができる。正のシグナルの例としては、細胞増殖、サイトカイン分泌、または細胞溶解活性を誘導するシグナルが挙げられる。負のシグナルの例としては、T細胞増殖を抑制するシグナル、免疫抑制因子の分泌を抑制するシグナル、または細胞死を誘導するシグナルが挙げられる。
本開示のエンゲージャー組成物は、エンゲージャーを発現するT細胞および対応するエンゲージャー分子が、抗原を発現する、対象とする特定の細胞を標的にするか、分泌可能な抗原を標的にするのを可能にする抗原認識ドメインを含む。特定の態様では、いかなる細胞が抗原を含んでもよいが、特定の態様では、抗原が、固形腫瘍細胞を含めたがん細胞上に提示される。がん細胞抗原は、いかなる種類のものでもよいが、特定の態様では、がん細胞に特異的であり、かつ特定のタイプのがん細胞に特異的でありうる。例えば、EphA2が利用される実施形態では、がん細胞は、乳がん細胞でも、肺がん細胞でも、前立腺がん細胞でも、膠芽腫細胞でもよい。細胞は、細菌細胞などの病原性細胞でもよい。
本開示のエンゲージャー組成物は、エンゲージャー分子を発現する免疫細胞および/または他の免疫細胞が、エンゲージャーおよび標的細胞に結合するのを可能にする活性化ドメインを含む。活性化ドメインは、特定の態様では、抗体またはその抗原結合性断片である。活性化ドメインの説明に役立つ例としては、抗体もしくはその抗原結合性断片、リガンド、ペプチド、可溶性T細胞受容体、またはこれらの組合せが挙げられるが、これらに限定されない。
(NM3E2抗体など)またはNKG2D(ULBP2)もしくはNKp30(B7H6)に特異的なリガンドを認識する抗体を含みうる。特定の実施形態では、活性化ドメインがリガンド、受容体、ペプチドなどを含む。
特定の実施形態では、エンゲージャーは、エンゲージャーの活性を強化し、かつ/またはエンゲージャー分子を発現する免疫細胞の活性を強化する追加ドメインを含む。追加ドメインは、いかなる種類のものでもよいが、特定の実施形態では、追加ドメインは、1つもしくは複数の抗原認識ドメインまたは1つもしくは複数の活性化ドメインを含む。追加ドメインは、サイトカイン、共刺激ドメイン、またはT細胞活性化の負の調節分子を抑制する実体を含みうる。いくつかの実施形態では、エンゲージャー分子で用いられる追加ドメインが1つだけだが、他の実施形態では、同じタイプのもの複数および異なるタイプのもの複数を含めた、複数を用いることができる。
いくつかの実施形態では、抗原認識ドメインが抗体であることの代わりに、エンゲージャーが、抗体ではなく、がん細胞を認識することができる異なる種類のドメインを含む。一態様では、エンゲージャーがリガンド受容体結合対の1つのメンバーを含み、同族のメンバーががん細胞で発現される。ある特定の態様では、エンゲージャーが、抗体の代わりなどで、可溶性T細胞受容体(TCR)ドメインを含む。図2は、T細胞活性化ドメインが可溶性TCRと連結されている実施形態の例を示す。
以下に、エンゲージャー分子の特定の例を示す。一般に、scFvは、リンカーペプチドによって接続されたVHおよびVLドメインを含有している。例えば、配列番号1は、下記の式を含むCD19−CD3T細胞エンゲージャーである。
「二重特異性一本鎖抗体コンストラクト」という用語は、2つの抗体由来結合ドメインを含むコンストラクトに関する。結合ドメインの1つは、標的抗原、例えば、EphA2またはCD19と特異的に結合するか、相互作用することができる抗体、抗体断片またはその誘導体の可変領域(またはその部分)を含みうる。第2の結合ドメインは、活性化分子、例えばヒトCD3抗原と特異的に結合するか、相互作用することができる抗体、抗体断片またはその誘導体の可変領域(またはその部分)を含みうる。特定の実施形態では、可変領域の一部が、少なくともCDR1、CDR2、またはCDR3領域など、少なくとも1つのCDR(「相補性決定領域」)を含む。一本鎖抗体コンストラクト内の2つのドメイン/領域は、好ましくは共有結合によって、一本鎖として相互に接続されている。
Laboratory Press、1999を参照)で評価することによって試験することができる。対象とする(ポリ)ペプチド/タンパク質と結合するが、他の(ポリ)ペプチドのいずれとも結合しない、または本質的に結合しない抗体のみが、対象とする(ポリ)ペプチド/タンパク質に特異的であるとされる。抗原相互作用部位の、特異抗原との特異的相互作用の例は、受容体に対するリガンドの特異性を含む。この定義は、特に、リガンドがその特異的な受容体に結合する際の、シグナルを誘導する相互作用を含む。対応するリガンドの例は、その特異的なサイトカイン受容体と相互作用/結合するサイトカインを含む。前記定義に特に含まれる、前記相互作用の別の例は、抗原決定基(エピトープ)の、抗体の抗原結合部位との相互作用である。
本開示は、上記に定義した二重特異性一本鎖抗体コンストラクトをコードする核酸配列を含む組成物および当該核酸配列を有する細胞も包含する。核酸分子は、特定の態様では組換え体核酸分子であり、合成でもよい。核酸分子は、DNA、RNA、およびPNA(ペプチド核酸)を含んでもよく、これらのハイブリッドでもよい。
本開示のエンゲージャー分子は、発現ベクターから発現させることができる。そのような発現ベクターを生成する組換え技法は、当業界で周知である。
「プロモーター」は、転写の開始および速度がそこで制御される核酸配列領域である制御配列である。「プロモーター」は、RNAポリメラーゼおよび他の転写因子など、調節タンパク質および調節分子が、核酸配列の特異的な転写を開始するために結合しうる遺伝エレメントを含有しうる。「動作可能に配置された」、「動作可能に連結された」、「制御下」、および「転写制御下」という句は、プロモーターが、核酸配列との関係において、その配列の転写開始および/または発現を制御するのに正しい機能的な位置および/または方向で存在することを意味する。
ある特定の実施形態では、プラスミドベクターが、宿主細胞を形質転換するための使用に企図されている。一般に、宿主細胞と適合性の種に由来するレプリコンおよび制御配列を含有するプラスミドベクターがこれらの宿主と共に使用される。通常、ベクターは、複製部位と、形質転換細胞における表現型選択を提供できるマーキング配列とを有する。非限定的な例では、E.coliは、しばしば、E.coli種由来のプラスミドであるpBR322の誘導体を用いて形質転換される。pBR322は、アンピシリンおよびテトラサイクリン耐性のための遺伝子を含有しており、したがって、形質転換細胞を同定するための簡単な手段を提供する。pBRプラスミドまたは他の微生物プラスミドもしくはファージは、例えば、微生物がそれ自体のタンパク質の発現に用いることができるプロモーターも含有しているか、含有するように改変されていなければならない。
ある種のウイルスは、細胞を感染させるか、受容体媒介のエンドサイトーシスを介して細胞に進入し、宿主細胞ゲノムに組み込まれ、ウイルス遺伝子を安定的かつ効率的に発現する能力を有するので、そのようなウイルスは、外来の核酸を細胞(例えば、哺乳動物細胞)内に導入する魅力的な候補となっている。本開示の構成要素は、開示の1つまたは複数のCARをコードするウイルスベクターでありうる。本開示の核酸を送達するのに使用できるウイルスベクターの非限定な例を以下に記載する。
核酸の送達のための特定の方法は、アデノウイルス発現ベクターを使用するものである。アデノウイルスベクターは、ゲノムDNAに組み込まれる能力が低いことが知られているが、この特徴は、これらのベクターによってもたらされる遺伝子移入の効率が高いことで相殺される。「アデノウイルス発現ベクター」には、(a)コンストラクトのパッケージングをサポートし、(b)最終的に、その中にクローニングされた組織または細胞特異的なコンストラクトを発現するのに十分なアデノウイルス配列を含有するコンストラクトが含まれると企図されている。アデノウイルス(36kbの直鎖状二本鎖DNAウイルス)の遺伝学的構成に関する知識により、アデノウイルスDNAの大きな領域を7kbまでの外来配列で置換することが可能である(GrunhausおよびHorwitz、1992)。
核酸は、アデノウイルス支援のトランスフェクションを用いて細胞内に導入できる。アデノウイルスを組み合わせた系を用いた細胞系でトランスフェクション効率の増大が報告されている(KelleherおよびVos、1994;Cottenら、1992;Curiel、1994)。アデノ随伴ウイルス(AAV)は、組み込まれる頻度が高く、かつ非分裂性の細胞を感染させることができ、それにより遺伝子を哺乳動物細胞に、例えば組織培養中(Muzyczka、1992)またはin vivoで、送達するのに有用となっているので、本開示の細胞で使用するのに魅力的なベクター系である。AAVは、感染の宿主域が広い(Tratschinら、1984;Laughlinら、1986;Lebkowskiら、1988;McLaughlinら、1988)。rAAVベクターの生成および使用に関する詳細は、それぞれが参照により本明細書に組み込まれる米国特許第5,139,941号および第4,797,368号に記載されている。
レトロウイルスは、それらの遺伝子を宿主ゲノムに組み込み、多量の外来遺伝物質を輸送し、広い範囲の種および細胞型を感染させ、特別な細胞株でパッケージングされる能力を有するため、送達ベクターとして有用である(Miller、1992。)
他のウイルスベクターも、本開示におけるワクチンコンストラクトとして利用できる。ワクシニアウイルス(Ridgeway、1988;BaichwalおよびSugden、1986;Couparら、1988)、シンドビスウイルス、サイトメガロウィルス、および単純ヘルペスウイルスなどのウイルス由来のベクターを利用することができる。これらは、様々な哺乳動物細胞用に魅力的な特徴をいくつかもっている(Friedmann、1989;Ridgeway、1988;BaichwalおよびSugden、1986;Couparら、1988;Horwichら、1990)。
送達する核酸を、特異的な結合リガンドを発現するように遺伝子操作された感染性のウイルス中に収容することができる。したがって、ウイルス粒子は、標的細胞の同族受容体に特異的に結合し、内容物を細胞に送達することになる。ウイルスエンベロープにラクトース残基を化学的に付加することによるレトロウイルスの化学修飾に基づいて、レトロウイルスベクターの特異的なターゲティングを可能にするように設計された新規なアプローチが開発された。この修飾は、シアロ糖タンパク質受容体を介した肝細胞の特異的な感染を可能にすることができる。
細胞をトランスフェクトまたは形質転換するための核酸送達のための適した方法は、当業者に公知である。そのような方法には、DNAのex vivoでのトランスフェクションや注入などによる直接的送達が含まれるが、これらに限定されない。当業界で公知の技法の適用によって、細胞を安定的にまたは一過性に形質転換することができる。
ex vivoセッティングで生物から取り出された真核細胞および組織にトランスフェクトするための方法は、当業者に公知である。したがって、T細胞または組織を取り出し、本開示の核酸を用いてex vivoでトランスフェクトできることが企図されている。特定の態様では、移植細胞または組織が生物内に入れられる。好ましい様相では、核酸が移植細胞内で発現される。
本開示の医薬組成物が、本明細書中上記に定義されたベクターで形質転換またはトランスフェクトされた宿主細胞を含むことがさらに想定されている。宿主細胞は、上記のベクターの少なくとも1つまたは上記の核酸分子の少なくとも1つを宿主細胞内に導入することによって生成できる。少なくとも1つのベクターまたは少なくとも1つの核酸分子が宿主内に存在することが、上記の特異的な一本鎖抗体コンストラクトをコードする遺伝子の発現を媒介しうる。
本開示によると、「医薬組成物」という用語は、個体に投与するための組成物に関する。好ましい実施形態では、医薬組成物は、非経口、経皮、腔内、関節内、くも膜下腔内、もしくは静脈内投与用またはがんへの直接注入用の組成物を含む。前記医薬組成物は、注入または注射で個体に投与されることが特に想定されている。適した組成物の投与は、様々な方法によって、例えば、静脈内、皮下、腹腔内、筋肉内、局所、または皮内投与によって行うことができる。
様々な実施形態において、本明細書に企図されている二重特異性一本鎖抗体コンストラクト、核酸配列、ベクター、宿主細胞、および/またはこれを含む医薬組成物は、腫瘍性疾患など、がん疾患の予防、処置、または改善に用いられる。特定の実施形態では、本開示の医薬組成物は、例えば固形腫瘍を有するがんを含めた、がんを予防、改善、および/または処置するのに特に有用でありうる。
ある特定の実施形態では、臨床態様のための本開示の方法が、抗がん剤など、過増殖疾患の処置に有効な他の薬剤と併用される。例えば、「抗がん」剤は、がん細胞を殺滅する、がん細胞のアポトーシスを誘導する、がん細胞の成長速度を低減させる、転移の発生率または数を低減させる、腫瘍の大きさを低減させる、腫瘍成長を抑制する、腫瘍もしくはがん細胞への血液供給を低減させる、がん細胞もしくは腫瘍に対する免疫応答を促進する、がんの進行を防止もしくは抑制する、またはがんを有する対象の寿命を延長することによって、対象体内のがんに負の影響を与えることができる。より一般的には、これらの他の組成物は、細胞を殺滅するか、その増殖を抑制するのに有効な総量で提供することになる。このプロセスは、がん細胞を、発現コンストラクトおよび薬剤または複数の因子と同時に接触させることを含みうる。これは、細胞を、両方の薬剤を含む1つの組成物または薬理学的製剤と接触させることによって、または細胞を、一方の組成物が発現コンストラクトを含み、他方が第2の薬剤を含む2つの異なる組成物もしくは製剤と同時に接触させることによって達成できる。
A/B/A/B A/B/B/A B/B/A/A
B/A/A/A A/B/A/A A/A/B/A
がん療法には、化学的処置および放射線照射ベースの処置の両方ならびに/または非免疫ベースの標的化療法との様々な併用療法も含まれる。併用化学療法には、アルキル化剤、代謝拮抗薬、植物アルカロイド、抗生物質、ホルモン剤、およびその他の抗がん剤を含めた全クラスの化学療法剤が含まれる。特定の薬剤には、例えば、アブラキサン、アルトレタミン、ドセタキセル、ハーセプチン、メトトレキサート、ノバントロン、ゾラデックス、シスプラチン(CDDP)、カルボプラチン、プロカルバジン、メクロレタミン、シクロホスファミド、カンプトテシン、イホスファミド、メルファラン、クロランブシル、ブスルファン、ニトロソウレア、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、ドキソルビシン、ブレオマイシン、プリカマイシン、マイトマイシン、エトポシド(VP16)、タモキシフェン、ラロキシフェン、エストロゲン受容体結合物質、タキソール、ゲムシタビン、フルダラビン、ナベルビン、ファルネシルタンパク質トランスフェラーゼ阻害剤、トランスプラチナ、5−フルオロウラシル、ビンクリスチン、およびビンブラスチン、または以上の任意の類似体もしくは派生変異体、ならびにこれらの組合せが含まれる。
DNA損傷を引き起こし、かつ広く利用されている他の因子には、ガンマ線、X線および/または腫瘍細胞への放射性同位元素の指向的送達として一般に知られているものが含まれる。マイクロ波およびUV照射などの他の形態のDNA損傷因子も企図されている。これらの因子すべてが、DNA、DNAの前駆体、DNAの複製および修復、ならびに染色体の集合および維持に広範な損傷をもたらす可能性がきわめて高い。X線の線量範囲は、長期間(3〜4週間)にわたる場合の50〜200レントゲンの1日線量から、2000〜6000レントゲンの単回線量までである。放射性同位元素の投与量範囲は、広範に様々であってもよく、同位元素の半減期、照射される放射線の強度およびタイプ、ならびに新生細胞による取り込みによって左右される。
がん療法には、免疫ベースではない標的化療法との様々な併用療法も含まれる。これらには、例えば、WNT、p53、および/または、RBシグナル伝達経路などのシグナル伝達経路を抑制する薬剤が含まれる。他の例としては、チロシンキナーゼ、BRAF、STAT3、もしくはc−metを抑制する薬剤、遺伝子発現を調節する薬剤、細胞死を誘導する薬剤、または血管形成を遮断する薬剤が含まれる。特定の薬剤の例としては、メシル酸イマチニブ、ダサチニブ、ニロチニブ、ボスチニブ、ラパチニブ、ゲフィニチブ、エルロチニブ、テムシロリムス、エベロリムス、ベムラフェニブ、クリゾチニブ、ボリノスタット、ロミデプシン、ベキサロテン、アリトリオニン、トレチノイン、ボルテゾミブ、カーフィルゾミブ、プララトレキサート、ソラフェニブ、スニチニブ、パゾパニブ、レゴラフェニブ、またはカボザンチニブが挙げられる。
免疫療法薬は、一般に、免疫エフェクター細胞および分子の使用に依存して、がん細胞を標的にし、破壊する。免疫エフェクターは、例えば、腫瘍細胞の表面のなんらかのマーカーに特異的な抗体でありうる。抗体だけで、治療のエフェクターとして働いても、T細胞殺滅を実際に行うのに他の細胞を動員してもよい。抗体は、薬物または毒素(化学療法剤、放射性核種、リシンA鎖、コレラ毒素、百日咳毒素など)とコンジュゲートさせてもよく、ターゲティング剤として働く。代わりに、エフェクターは、直接的または間接的に腫瘍細胞標的と相互作用する表面分子を有するリンパ球でもよい。様々なエフェクター細胞には、細胞傷害性T細胞およびNK細胞が含まれる。
さらに別の実施形態では、第2の処置が、治療用ポリヌクレオチドが本開示の臨床実施形態の前もしくは後、またはそれと同時に投与される遺伝子療法である。細胞増殖の誘導因子、細胞増殖の抑制因子、またはプログラム細胞死の調節因子を含めた様々な発現産物が、本開示に包含される。
がんを有するヒトの60%が、予防、診断、病期分類、根治、および緩和のための手術を含めたなんらかのタイプの手術を行うことになる。根治手術は、本開示の処置、化学療法、放射線療法、ホルモン療法、遺伝子療法、免疫療法、および/または代替療法など、他の療法とともに施用されうるがん治療である。
処置の治療有効性を向上させるために、本開示と組み合わせて、他の薬剤を用いてもよいことが企図されている。これらの追加薬剤には、免疫調節剤、細胞表面受容体およびギャップ結合の上方制御に作用する薬剤、細胞分裂停止および分化薬剤、細胞接着の阻害剤、またはアポトーシス誘導因子に対する過増殖細胞の感受性を増強する薬剤が含まれる。免疫調節剤には、腫瘍壊死因子;インターフェロンアルファ、ベータ、およびガンマ;IL−2および他のサイトカイン;F42Kおよび他のサイトカイン類似体;MIP−1、MIP−1ベータ、MCP−1、RANTES、および他のケモカインが含まれる。Fas/Fasリガンド、DR4もしくはDR5/TRAILなど、細胞表面受容体またはそのリガンドの上方制御は、過増殖細胞に対するオートクリンまたはパラクリン作用を確立することによって、本開示のアポトーシス誘導能を強化するであろうことがさらに企図されている。ギャップ結合の数を増加させることにより細胞間シグナル伝達が増強されると、近傍の過増殖細胞集団に対する抗過増殖作用を増強するであろう。他の実施形態では、処置の抗過増殖有効性を向上させるために、本開示と組み合わせて、細胞分裂停止または分化薬剤を用いることができる。細胞接着の阻害剤は、本開示の有効性を向上させることが企図されている。細胞接着阻害剤の例は、接着斑キナーゼ(FAK)阻害剤およびロバスタチンである。処置の有効性を向上させるために、抗体c225など、アポトーシスに対する過増殖細胞の感受性を増強する他の薬剤を、本開示と組み合わせて使用できるであろうことがさらに企図されている。
本発明者らは、細胞(例えば、限定されるものではないが、T細胞、NK、またはNKT細胞)をエンゲージャーと名付けられた分泌可能な分子で遺伝的に改変することによって、新規のクラスの細胞を開発した。エンゲージャーは、抗原認識ドメインおよび活性化ドメインを含む。抗原認識ドメインおよび活性化ドメインは、1種または複数の分子と結合でき、例えば、1)scFv、2)ペプチド、および/または、3)天然リガンドを含む。抗原認識ドメインは、標的細胞内および/または標的細胞上に存在するか、または標的細胞によって分泌される分子と結合する。活性化ドメインは、細胞の細胞表面に発現された分子または細胞によって分泌された分子を認識する。活性化ドメインの例としては、CD3、CD16、CD28、CD40、CD134、またはCD137と結合するドメインが挙げられる。エンゲージャー細胞の作用様式の例が、図1および3にまとめられている。
特定の実施形態では、本発明者らは、2つのscFVを含む分泌可能な二重特異性T細胞エンゲージャーの、T細胞における発現を利用する、抗原に特異的なT細胞を与えるための代替戦略を提供する。一方のscFVは、CD3に特異的であり、他方のscFVは、選択された抗原に特異的である。本発明者らは、1)CD3および腫瘍抗原EphA2を認識する二重特異性T細胞エンゲージャー、2)CD3および腫瘍抗原CD19を認識する二重特異性T細胞エンゲージャー、3)CD3および腫瘍抗原CD123を認識する二重特異性T細胞エンゲージャー、4)CD3および腫瘍抗原LeYを認識する二重特異性T細胞エンゲージャー、5)CD3および腫瘍抗原B7H3を認識する二重特異性T細胞エンゲージャー、6)CD3および腫瘍抗原HER2を認識する二重特異性T細胞エンゲージャー、ならびに7)CD3および腫瘍抗原EGFRを認識する二重特異性T細胞エンゲージャーを構築した。エンゲージャーT細胞は、例示の方法である、T細胞のウイルス形質導入によって生成した。エンゲージャー分子は容易に検出することができないので、EphA2特異的エンゲージャー分子は、6×His−mycタグを付けて生成した(EphA2−HM ENG;図5A)。標準的なEphA2−ENGおよびEphA2−HM ENGを発現するT細胞は、EphA2陽性標的細胞を殺滅した。これは、EphA2−HM ENGが機能することを実証している(図5B)。myc抗体および6×His抗体を用いて、EphA2−HM ENG分子が、T細胞の細胞表面に結合すること(図5C)および培地中に分泌される(図5D)ことを実証した。この実施形態の一部は、第3のドメインをエンゲージャー分子に付加して、その機能を強化することができることである。ここで、「認識タグ」が付加されている。これは、エンゲージャー分子をさらに改変することが可能であることを実証している。
T細胞の存在下では、いずれの標的によっても、IFNガンマ産生が観察されなかった。
EphA2−ENG−T細胞の上清は、形質導入されていないT細胞を、腫瘍細胞を認識するように「武装させる」(図14A)。EphA2−ENG−T細胞から培地を収集し、形質導入されていないT細胞および腫瘍細胞と混ぜた。形質導入されていないT細胞は、U373曝露後にIFNガンマを産生した。これはT細胞活性化を示す。対照的に、形質導入されていないT細胞から採取された培地と混ぜた場合、形質導入されていないT細胞はIFNガンマを産生しなかった。したがって、EphA2−ENG−T細胞は、T細胞エンゲージャーを分泌して、バイスタンダーT細胞を「武装させる」。4種の例示のドナーの結果を示す。
EphA2エンゲージャーは、形質導入T細胞およびバイスタンダーT細胞の拡張をin vivoで誘導する(図17)。EphA2−ENG T細胞がin vivoで拡張することを実証するために、ヒトA549肺がんSCID異種移植モデルを用いた。担がんマウス(n=5)または対照(n=5)マウスに、5×106個のeGFP.fflucを発現するEphA2−ENG T細胞と5×106個の無改変T細胞の混合物を静脈内(i.v.)注射し、1用量のIL2を腹腔内(i.p.)投与した。EphA2−ENG T細胞は、担がんマウス体内で拡張したが、腫瘍の非存在下では拡張が観察されなかった(図17B)。EphA2−ENG T細胞がバイスタンダーT細胞の拡張をin vivoで誘導することを実証するために、担がんマウスに、5×106個のEphA2−ENG T細胞と5×106個のeGFP.ffLucを発現するT細胞(n=5)または5×106個のCD19−ENG T細胞と5×106個のeGFP.ffLucを発現するT細胞(n=5)の混合物をi.v.注射した。生物発光イメージングによって判断すると、EphA2−ENG T細胞と同時注射された場合のみ、eGFP.ffLucを発現するT細胞が拡張した(図17B)。これらの結果は、EphA2エンゲージャーが、形質導入T細胞およびバイスタンダーT細胞の拡張をin vivoで抗原依存的に誘導したことを示す。
エンゲージャーT細胞のin vivo抗腫瘍活性を4種の動物モデルで評価した。実験のあらましが図18にまとめられている。
共刺激分子を共発現するCD19−ENG T細胞の生成(図22)。共刺激は、T細胞表面上に共刺激分子を発現することによって提供することができる。T細胞が活性化されたら、それらは対応するリガンドを発現し、持続的なT細胞活性化がもたらされる。IRESによって分離された41BBLおよびCD80をコードするレトロウイルスベクター(図22A)を生成した。エンゲージャー分子すなわちCD80と41BBLとをコードするレトロウイルスベクターでT細胞に「二重」形質導入すると、エンゲージャー分子をコードするレトロウイルスで形質導入されただけのT細胞とは対照的に、T細胞の細胞表面上にCD80および41BBLが発現される結果となる(図22B)。共刺激分子を発現しない標的細胞の存在下では、定常的なIL2産生があった(図22B)。これは、T細胞に追加の遺伝的改変を導入して、その機能を強化することが可能であることを強調する。
本明細書には、二重特異性T細胞エンゲージャーを分泌する新規のクラスのT細胞の開発および特性分析が記載されており、抗原特異的なエンゲージャーを分泌するT細胞が、抗原陽性細胞を効果的に標的にすることが示されている。これらのエンゲージャーT細胞は、免疫刺激性サイトカインを産生し、抗原特異的に増殖し、抗原陽性の標的と共培養されると、腫瘍細胞溶解を誘導し、バイスタンダーT細胞を抗原陽性腫瘍細胞にリダイレクトし、強力なin vivo抗腫瘍活性を有する。
この実施例は、EphA2に関する特定的であるが例示の実施形態を記載する。当業者は、そのような実施例が他の実施形態へと外挿可能であり、当業者の通常の技術の範囲内であることを認識している。
肺がん細胞株A549、白血病細胞株K562、および膠芽腫株U373は、ATCC(アメリカ培養細胞系統保存機関)から購入した。白血病細胞株BV173は、ライプニッツ研究所(Leibniz Institute)DSMZ(ドイツ微生物細胞培養コレクション、Braunschweig、Germany)から購入した。ヒトEphA2を発現するK562細胞(K562−EphA2)と、ffLucを発現するU373、A549、およびBV173細胞の生成については前に記載されている。
免疫グロブリン重鎖リーダーペプチド、EphA2特異的scFv 4H5、短いセリン−グリシンリンカー、およびOKT3由来のCD3特異的なscFVを含有するEphA2特異的エンゲージャーの構築については、他の箇所に記載されている。EphA2特異的エンゲージャーをpSFG−IRES−mOrangeにサブクローニングした。免疫グロブリン重鎖リーダーペプチド、CD19特異的なscFv(FMC63)、短いセリン−グリシンリンカー、およびOKT3由来のCD3特異的なscFVを含有するCD19特異的エンゲージャーは、Invitrogen(Carlsbad、CA)によって合成され、これをpSFG−IRES−mOrangeにサブクローニングした。RD114シュードタイプ化されたレトロウイルス粒子を生成した。
ENG発現またはCAR発現T細胞については、前に記載されている通りに生成した。採血の前に、健常ドナーから、ベイラー医科大学(Baylor College of Medicine)施設内倫理委員会によって承認されたプロトコールに従ってインフォームドコンセントを得た。PBMCは、OKT3およびCD28抗体でコーティングされた非組織培養処理の24ウェルプレート上で刺激した。2日目にヒトIL2(Proleukin、Chiron)を培養物に添加し、3日目に、RetroNectin(Clontech)コーティングされたプレート上、IL2の存在下において、レトロウイルス粒子でT細胞に形質導入した。その後、IL2の存在下でT細胞を拡張させた。NT T細胞は、でOKT3/CD28で活性化し、IL2存在下で平行して拡張させた。
mOrangeの発現は、FACS分析によって検出した。T細胞上でのCARの表面発現は、CH2CH3 Cy5抗体(Jackson ImmunoResearch Laboratories)を用いて分析した。免疫表現型検査には、細胞を、CD3−PerCP、CD4−FITC、およびCD8−FITCモノクローナル抗体(BD Biosciences)で染色した。アイソタイプ対照は、免疫グロブリンG1−フルオレセインイソチオシアネート(IgG−FITC、BD Biosciences)、IgG1−ペリジニンクロロフィルタンパク質(IgG1−PerCP、BD Biosciences)、アイソタイプCy5(Jackson ImmunoResearch Laboratories)であった。各試料について、Cell Questソフトウェア(BD Biosciences)を用いて、FACSCalibur装置(BD Biosciences)によって20,000個の細胞を分析した。
EphA2−ENG、CD19−ENG、およびNT T細胞を腫瘍細胞と共に10:1の比率でプレーティングした。共培養の24時間後におけるIFNガンマおよびIL2の産生を、製造業者(R&D Systems)の指示に従ってELISAを用いて測定した。標準的なクロム(51Cr)放出アッセイを、前に記載されている通りに行った。
U373、U373.eGFP.ffLuc、またはBV173.ffLuc細胞を24ウェルプレートのボトムウェルにプレーティングした。24時間後にNT T細胞をボトムウェルに添加し、EphA2−ENGまたはCD19−ENG T細胞をトランスウェルインサートウェル(直径6.5mm、孔径0.4μm、ポリカーボネート、Corning Inc.)に添加した。48時間後に、U373用のクリスタルバイオレット染色またはU373.eGFP.ffLucもしくはBV173.ffLuc細胞用のルシフェラーゼアッセイによって生存腫瘍細胞を検出した。
U373細胞を1ウェルあたり1×104細胞の密度で96ウェルプレートにプレーティングした。24時間後に、T細胞をプレートに添加した。48時間の共培養の後に、付着していないT細胞を取り除き、3−(4,5−ジメチルチアゾール−2−イル)−5−
(3−カルボキシメトキシフェニル)−2−(4−スルホフェニル)−2H−テトラゾリウム(MTS)アッセイ(CellTiter96 aqueous one solution cell proliferation assay、Promega)によって生存細胞を検出した。
RNAは、RNeasyミニキット(Qiagen)を用いてT細胞から抽出した。EphA2−ENG mRNA発現の相対定量は、SYBR Green試薬(Qiagen)を用いて行った。
すべての動物実験は、ベイラー医科大学の動物実験委員会(Institutional Animal Care and Use Committee)で承認されたプロトコールに従って行った。実験は、小さな修正を加えて、前に記載されている通りに行った。
SCID ICR;Taconic)。簡潔には、U373.eGFP.ffLuc細胞(2.0μl中に1×105個)を、右尾状核の中心に相当する、ブレグマから深さ3mmに、5分間にわたり注射した。腫瘍細胞注射の7日後に、同じ腫瘍座標への、同じドナーから得た2μl中2×106個のNTまたはENG T細胞による処置を動物に施した。ルシフェラーゼを発現する腫瘍細胞から放射された光子を、Living Imageソフトウェア(Caliper Life Sciences)を用いて定量した。一定の対象領域(ROI)を腫瘍領域の上方に設定し、シグナル強度を総光子/秒/cm2/ステラジアン(p/s/cm2/sr)として測定した。動物のイメージングを最初は2日毎に、その後は1週間に1回行った。2回にわたって腫瘍輝度が>1×109となったとき、またはマウスが、ベイラー医科大学比較医学センター(the Center for Comparative Medicine at Baylor College of Medicine)による安楽死判定規準(神経障害、体重減、苦悩の徴候)を満たしたときにマウスを安楽死させた。
統計分析には、GraphPad Prism 5ソフトウェア(GraphPad software, Inc.)を用いた。測定データは、平均±標準偏差(SD)で示した。2群間の比較には、両側t検定を用いた。3群以上の比較には、ボンフェローニの事後検定を用いた片道分散分析によって値を分析した。ENG、CAR T細胞、ならびに活性化および非活性化ENG T細胞の抗腫瘍活性の比較には、線形回帰分析を行った。有意水準には、p<0.05を用いた。マウス実験は、5匹のマウスを用いて、2という大きな効果量が検出されるように計画した。これにより、第一種過誤が5%である少なくとも80%の検出力が得られた。正式なランダム化は行わなかったが、5匹のマウスは、ケージから無作為に選ばれた。腫瘍細胞注射時間から決定した生存期間は、カプラン・マイヤー法およびログランク検定によって分析した。
Claims (10)
- 免疫細胞であって、
1種または複数の細胞表面分子に結合する活性化ドメインと、EphA2および/またはCD19に結合する抗原認識ドメインとを含む、二部分分子をコードするポリヌクレオチドベクターを含み、
前記二部分分子は前記細胞から分泌可能である、
がんの予防、処置、または改善のための細胞。 - 前記活性化ドメイン、抗原認識ドメイン、または両方のドメインが、一本鎖可変領域断片(scFV)抗体部分を含む、請求項1に記載の細胞。
- 前記活性化ドメインが、CD3、CD16、CD27、CD28、CD40、CD134、およびCD137からなる群から選択される分子を認識するscFVである、請求項1又は2に記載の細胞。
- 前記ベクターが、非ウイルスベクターまたはウイルスベクターである、請求項1〜3のいずれか一項に記載の細胞。
- 前記ウイルスベクターが、レンチウイルス、アデノウイルス、レトロウイルス、およびアデノ随伴ウイルスベクターからなる群から選択される、請求項4に記載の細胞。
- 前記ウイルスベクターが、腫瘍溶解ベクターである、請求項4に記載の細胞。
- 請求項1〜6のいずれか一項に記載の1種又は複数の細胞を含み、がんを有する個体に投与される、医薬組成物。
- 前記がんが、EphA2陽性またはCD19陽性である、請求項7に記載の医薬組成物。
- 前記個体に、追加のがん療法が提供される、請求項7又は8に記載の医薬組成物。
- 前記追加のがん療法が、外科手術、放射線照射、化学療法、ホルモン療法、免疫療法、またはこれらの組合せである、請求項9に記載の医薬組成物。
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