JP6349256B2 - ウイルス感染の治療のためのプリン誘導体 - Google Patents
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Description
(式中、
Yが、(C1〜4)アルキレンであり、
R1が、ヘテロアリール1であり、
R2が、アリール2またはヘテロシクリルである)
の化合物、またはその薬学的に許容できる塩、溶媒和物もしくは多形体が提供される。
最終的な化合物の調製における全体スキーム(方法1)
中間体A−1の調製
ジアミノマレオニトリル(6g、55mmol)およびオルトギ酸トリエチル(9.2mL、55mmol)を、1,4−ジオキサン(95mL)中で組み合わせて、65mLの1,4−ジオキサン/エタノールが収集されるまで蒸留条件下で加熱した。反応混合物を室温に冷まし、溶媒を減圧下で蒸発させた。石油エーテルから石油エーテル中25%の酢酸エチルの勾配を用いたカラムクロマトグラフィーによって残渣を精製したところ、5gのA−1が得られた。
ベンジルアミン(2.86mL、26.3mmol)を、10℃で撹拌しながら、エタノール(80mL)中のA−1(4.1g、25mmol)およびアニリン塩酸塩(50mg)の溶液に滴下して加えた。反応混合物を室温で18時間撹拌した。反応混合物を、10℃で撹拌しながら、1MのNaOH(50mL)に滴下して加え、得られた懸濁液を室温で18時間撹拌した。固体をろ過によって収集し、水で洗浄し、減圧下で乾燥させた。表題化合物が、オフホワイトの固体、B−1(4g)として得られた。
N−ブロモスクシンイミド(4g、22mmol)を、THF(50mL)中のB−1(4g、20mmol)の懸濁液に、何回かに分けて(portionwise)加え、反応混合物を室温で10分間撹拌した。溶媒を減圧下で蒸発させ、残渣を、酢酸エチル(300mL)とNaHCO3(50mL)の飽和水溶液から抽出し、Na2SO4上で乾燥させ、固体をろ過によって除去し、ろ液の溶媒を減圧下で除去した。ジクロロメタンからジクロロメタン中5%のメタノールの勾配を用いたカラムクロマトグラフィーによって、残渣を精製した。最良の画分を集め、溶媒を減圧下で除去したところ、ピンク色の固体、C−1(3g)が得られた。
トリクロロアセトニトリル(4.8g、17.3mmol)を、トルエン(50mL)中のC−1(4g、14.4mmol)およびCs2CO3(9.4g、29mmol)の懸濁液に加え、反応混合物を室温で48時間撹拌した。混合物を水(100mL)に注ぎ、酢酸エチル(3×50mL)で抽出し、Na2SO4上で乾燥させ、固体をろ過によって除去し、ろ液を減圧下で濃縮した。残渣をエタノール(20mL)に懸濁させ、室温で2時間撹拌した。得られた固体をろ過によって収集し、メタノールで洗浄したところ、オフホワイトの固体、D−1(2.7g)が得られた。
ナトリウムメトキシド(2.4g、0.06mol)を、メタノール(100mL)中のD−1(5g、12mmol)の懸濁液に加え、反応混合物を16時間にわたって還流状態で加熱した。混合物を氷水浴中で冷却し、水でクエンチした。メタノールを減圧下で蒸発させ、残渣を酢酸エチルで抽出した。有機層を乾燥させ、濃縮したところ、F−1(4.6g、粗生成物)が得られた。
中間体F−1(4.6g、15mmol)を、6NのHCl(水溶液)(75mL)に懸濁させ、反応混合物を室温で32時間撹拌した。混合物をアンモニアで中和し、得られた沈殿物をろ過によって収集し、水で洗浄したところ、G−1(3.2g)が得られた。
2NのNaOH(水溶液)を、メタノール(50mL)中のG−1(1g、3.34mmol)の溶液に加え、反応混合物を室温で2時間撹拌した。メタノールを減圧下で除去し、反応混合物を、2NのHCl(水溶液)を用いてpH2になるまで酸性化した。得られた沈殿物をろ過によって収集し、水で洗浄したところ、H−1(0.95g)が得られた。
ピリジン(10mL)中の、H−1(500mg、1.4mmol)と、アミノケトン2(284mg、1.6mmol)と、EDCI(460mg、2.4mmol)との混合物を、マイクロ波中、0.5時間にわたって110℃まで加熱した。混合物を濃縮して、粗生成物を得て、それを、アセトニトリル(10mL)および冷水で洗浄したところ、中間生成物I−1が、オフホワイトの固体(0.5g)として得られた。
一般的な化学スキーム:
反応スキーム:
トルエン(50mL)中のA(15g、0.13mol)の溶液に、SOCl2(15mL)を加えた。反応混合物を3時間還流させた。トルエンを減圧下で除去した。酸塩化物生成物が、褐色の液体(16g)として得られ、それを次の工程に直接使用した。
ジエチルエーテル(100mL)中のB(16g、0.12mol)の溶液に、CH2N2(200mL)を0℃で加えた。反応混合物をこの温度で2時間撹拌した。エーテルを、室温で、減圧下で除去した。生成物を、フラッシュクロマトグラフィー(シリカゲル、溶離剤:石油エーテル:酢酸エチル10:1)によって精製したところ、C(12g)が得られた。
1H NMR(CDCl3、400MHz):δ(ppm)5.18(br.s.,1H)、2.65(br.s.,1H)、1.45〜1.81(m,8H))。
THF(65mL)中のC(12g、0.096mol)の溶液に、4NのHCl/ジオキサンを0℃で滴下して加えた。反応をTLCによって監視した。反応物を、NaHCO3(飽和水溶液)で中和した。混合物を、酢酸エチル(2×150mL)で抽出し、乾燥させ、濃縮したところ、D(11g)が得られた。この生成物を、すぐに次の工程に使用した。
1H NMR(CDCl3、400MHz):δ(ppm)4.10(s,2H)、3.04(quin,J=7.3Hz、1H)、1.54〜1.87(m,8H)
DMSO(30mL)中のD(7.3g、0.05mol)の溶液に、NaN3(3.9g、0.06mol)を加えた。反応物を一晩撹拌し、TLCによって監視した。反応物を水(50mL)に注ぎ、酢酸エチル(2×100mL)で抽出し、硫酸ナトリウム上で乾燥させ、固体をろ過によって除去し、ろ液の溶媒を減圧下で除去した。石油エーテルから酢酸エチルの勾配を用いたシリカゲルクロマトグラフィーによって粗生成物を精製したところ、E(5.28g)が得られた。
1H NMR(CDCl3、400MHz):δ(ppm)3.93(s,2H)、2.83(quin,J=7.3Hz、1H)、1.56〜1.84(m,8H)
30mLのメタノール中の、E(3.28g、0.02mol)と、濃HCl(1.8mL、0.02mol)と、1gのPd/C(10%)との混合物を、50psiの水素雰囲気下で一晩撹拌した。反応混合物をろ過し、濃縮したところ、アミノケトン−1(2g)が得られた。
1H NMR(MeOD、400MHz):δ(ppm)4.03(s,2H)、3.01〜3.12(quin,J=7.3Hz、1H)、1.67〜1.98(m,8H)
EtONa(904mg;13.3mmol)を、EtOH(30mL)中の2−シアノ−イミダゾールI−1(0.7g;2.66mmol)および中間体C−1(736mg;2.66mmol)の溶液に加えた。混合物を90℃で16時間撹拌した。溶媒を減圧下で除去した。粗生成物を、分取LC(不定形SiOH 45gのMerck、移動相97/3/0.1〜95/5/0.5)によって精製したところ、0.51gのSEM−保護されたエトキシ中間体が淡黄色の固体(38%の収率)として得られた。
HPLC Rt(分)=7.45;MS M+(H+):506方法(v2003v2002)
NaF(170mg;4.05mmol)を、THF(28mL)、HCl(H2O中37%)(28mL)およびMeOH(10mL)中のSEM−保護されたエトキシ中間体(0.41g;0.811mmol)の溶液に加えた。混合物を40℃で16時間撹拌した。混合物を室温に冷まし、溶液のpHが塩基性になるまでK2CO3の10%の溶液を加えた。水層を、K2CO3粉末で飽和し、生成物をDCM/MeOH(5%)で(3回)抽出した。組み合わされた有機層を、MgSO4上で乾燥させ、ろ過し、溶媒を減圧下で除去した。粗生成物を、分取LC(不定形SiOH15〜40μm、移動相DCM/MeOH/NH3水溶液95/5/0.5〜90/10/0.5)によって精製したところ、120mgの化合物1が白色の粉末(43%の収率)として得られた。
中間体J−1の合成:
1H NMR(DMSO−d6、400MHz):δ(ppm)8.60(br.s.,1H)、7.58(s,1H)、6.76(s,1H)、1.85(m,1H)、0.86(m,2H)、0.71(m,2H)。
副位置異性体:
1H NMR(DMSO−d6、400MHz):δ(ppm)7.64(s,1H)、6.56(s,1H)、5.34(s,1H)、3.45(t,J=8.08Hz、2H)、1.73〜1.78(m,1H)、0.80〜0.86(m,2H)、0.72〜0.74(m,2H)、0.52〜0.57(m,2H)、−0.04(s,9H)。
主位置異性体:
1H NMR(DMSO−d6、400MHz):δ(ppm)7.56(s,1H)、6.94(s,1H)、5.20(s,1H)、3.43(t,J=8.08Hz、2H)、1.73〜1.78(m,1H)、0.80〜0.86(m,2H)、0.72〜0.74(m,2H)、0.56〜0.62(m,2H)、−0.04(s,9H)。
粗生成物を、分取LC(不定形SiOH15〜40μm 220gのgrace、移動相ヘプタン/DCM50/50〜10/90)によって精製して、2.2gの不純物J−1を得て、それを、分取LC(不定形SiOH15〜40μm 90gのMerck、移動相ヘプタン/DCM30/70)によってさらに精製したところ、0.94gのJ−1が2つの位置異性体の混合物(15%の収率)として得られた。
HPLC Rt(分)=6.11;MS M+(H+):264(方法V1004V1012)
HPLC Rt(分)=5.30、5.41および5.90;MS M+(H+):282(方法V2002V2002)
HPLC Rt(分)=6.51;MS M+(H+):264(方法V2002V2002)
HPLC Rt(分)=5.23;MS M+(H+):251(方法V2003V2002)
HPLC Rt(分)=5.77;MS M+(HCH3CN+):370−372(方法V2003V2002)
HPLC Rt(分)=4.46;MS M+(H+):298(方法V2003V2002)
HPLC Rt(分)=5.35;MS M+(H+):376(方法V1005V1012)
HPLC Rt(分)=4.45;MS M+(H+):214(方法V1010V1012)
HPLC Rt(分)=5.13;MS M+(H+):248−250(方法V2012V2002)
HPLC Rt(分)=6.68;MS M+(H+):248−250(方法V1010V1012)
HPLC Rt(分)=5.53;MS M+(H+):290−292(方法V2003V2002)
HPLC Rt(分)=4.43;MS M+(H+):490−492(方法V2015V2007)
HPLC Rt(分)=4.96;MS M+(H+):276−278(方法V2003V2002)
HPLC Rt(分)=6.31;MS M+(H+):376−378(方法V2002V2002)
中間体G−2の合成:
密閉管中で、L−2(2.70g、6.12mmol)を、室温で2時間、NH3(MeOH中7M)(50mL)およびTHF(50mL)中で撹拌した。2つのバッチを混合した。混合物を減圧下で蒸発させ、残渣を、EtOHとともに(2回)共沸蒸留することによって乾燥させたところ、黄色の固体が得られた。水およびEtOAcを加え、層を分離し、水層をEtOAcで(2回)抽出した。組み合わされた有機層を、MgSO4上で乾燥させ、ろ過し、減圧下で蒸発させたところ、4.9gの中間体M−2が黄色の固体(90%の収率)として得られた。
全ての化合物を、LC−MSによって特性評価した。以下のLC−MS方法を使用した:
全ての分析を、デガッサを備えたバイナリポンプ、オートサンプラ、サーモスタットカラムコンパートメントおよびダイオードアレイ検出器からなるAgilent 1100シリーズの液体クロマトグラフィー(LC)システムに連結されたAgilent 1100シリーズのLC/MSD四重極を用いて行った。質量分析計(MS)を、正イオンモードでの大気圧エレクトロスプレーイオン化(API−ES)源を用いて操作した。キャピラリ電圧を3000Vに設定し、フラグメンタ電圧を70Vに設定し、四重極温度を100℃に維持した。乾燥ガス流量および温度値はそれぞれ、12.0L/分および350℃であった。35psigの圧力で、窒素を噴霧器ガスとして使用した。データ収集を、Agilent Chemstationソフトウェアを用いて行った。
移動相:A:メタノール、B:90%の水中10mMの酢酸アンモニウムおよび10%のアセトニトリル
カラム:カラムのタイプ:Aquity UPLC BEH C18 1.7μm 2.1×50mmのカラム(Waters No 186002350)、温度:70℃。勾配スケジュール(Gradient timetable)。流量:0.7ml/分、収集停止:1.8分。停止時間:2分。
開始波長:210nm。終了波長:400nm。分解能:1.2nm。サンプリングレート:20点/秒
MS−方法:
機能1:イオンモード:ES+、データ形式:セントロイド
開始質量:160。終了質量:1000
走査時間(秒):0.1、開始時間(分):0.0、終了時間(分):2.0、コーン電圧(V):30
機能2:
イオンモード:ES−、データ形式:セントロイド、開始質量:160、終了質量:1000
走査時間(秒):0.1、開始時間(分):0.0、終了時間(分):2.0、コーン電圧(V):30、MSにおける流量:700μl/分
デガッサを備えたクォータナリポンプ、オートサンプラ、ダイオードアレイ検出器(DAD)および以下のそれぞれの方法で指定されるカラムを含むAlliance HT 2795(Waters)システムを用いて、HPLC測定を行った。カラムを30℃の温度に保持する。カラムからの流れを、MS分光計に分けた。MS検出器は、エレクトロスプレーイオン化源とともに構成されていた。キャピラリ針電圧は3kVであり、イオン化源温度を、LCT(方法V100xV10xx.olpのための、Waters製のTime of Flight Zspray(商標)質量分析計)において100℃に、およびZQ(商標)(方法V200xV20xx.olpのための、Waters製の単一四重極型Zspray(商標)質量分析計)において110℃で3.15kVに維持した。窒素を噴霧器ガスとして使用した。データ収集を、Waters−Micromass MassLynx−Openlynxデータシステムを用いて行った。
デガッサを備えたバイナリポンプ、オートサンプラ、ダイオードアレイ検出器(DAD)および以下のそれぞれの方法で指定されるカラムを含むUPLC(超高性能液体クロマトグラフィー(Ultra Performance Liquid Chromatography))Acquity(Waters)システムを用いて、LC測定を行った。カラムを、40℃の温度に保持する。カラムからの流れを、MS検出器に提供した。MS検出器は、エレクトロスプレーイオン化源とともに構成されていた。キャピラリ針電圧は3kVであり、イオン化源温度を、Quattro(Waters製のトリプル四重極型質量分析計)において130℃に維持した。窒素を噴霧器ガスとして使用した。データ収集を、Waters−Micromass MassLynx−Openlynxデータシステムを用いて行った。
一般的な手順VDR1に加えて:0.8ml/分の流量で、Waters X−bridge C18カラム(3.5μm、4.6×100mm)において、逆相HPLCを行った。2つの移動相(移動相A:100%の7mMの酢酸アンモニウム;移動相B:100%のアセトニトリル)を用いて、80%のAおよび20%のB(0.5分間保持)から90%のBへと4.5分間、90%のBで4分間の勾配条件を実施し、3分間にわたって初期条件で再度平衡化した。5μlの注入量を使用した。コーン電圧は、正および負イオン化モードで20Vであった。0.3秒間のスキャン間遅延を用いて、0.4秒間で100から1000へと走査することによって、質量スペクトルを取得した。
一般的な手順VDR1に加えて:0.85ml/分の流量で、Kromasil C18カラム(3.5μm、4.6×100mm)において、逆相HPLCを行った。3つの移動相(移動相A:100%の7mMの酢酸アンモニウム;移動相B:100%のアセトニトリル;移動相C:0.2%のギ酸+99.8%の超純水)を用いて、35%のA、30%のBおよび35%のC(1分間保持)から100%のBへと3分間、100%のBで4.5分間の勾配条件を実施し、3分間にわたって初期条件で再度平衡化した。5μlの注入量を使用した。コーン電圧は、正および負イオン化モードで20Vであった。0.3秒間のスキャン間遅延を用いて、0.4秒間で100から1000へと走査することによって、質量スペクトルを取得した。
一般的な手順VDR1に加えて:0.8ml/分の流量で、Waters Atlantis C18カラム(5μm、3.9×100mm)において、逆相HPLCを行った。3つの移動相(移動相A:100%の7mMの酢酸アンモニウム;移動相B:100%のアセトニトリル;移動相C:0.2%のギ酸+99.8%の超純水)を用いて、50%のAおよび50%のC(1.5分間保持)から10%のA、80%のBおよび10%のCへと4.5分間の勾配条件を実施し、4分間保持し、3分間にわたって初期条件で再度平衡化した。5μlの注入量を使用した。コーン電圧は、正および負イオン化モードで20Vであった。0.3秒間のスキャン間遅延を用いて、0.4秒間で100から1000へと走査することによって、質量スペクトルを取得した。
一般的な手順VDR1に加えて:0.8ml/分の流量で、Kromasil C18カラム(3.5μm、4.6×100mm)において、逆相HPLCを行った。3つの移動相(移動相A:100%の7mMの酢酸アンモニウム;移動相B:100%のアセトニトリル;移動相C:0.2%のギ酸+99.8%の超純水)を用いて、35%のA、30%のBおよび35%のC(1分間保持)から100%のBへと4分間、100%のBで4分間の勾配条件を実施し、2分間にわたって初期条件で再度平衡化した。10μlの注入量を使用した。コーン電圧は、正および負イオン化モードで20Vであった。0.3秒間のスキャン間遅延を用いて、0.4秒間で100から1000へと走査することによって、質量スペクトルを取得した。
一般的な手順VDR1に加えて:0.8ml/分の流量で、X−Bridge C18カラム(3.5μm、4.6×100mm)において、逆相HPLCを行った。2つの移動相(移動相A:100%の7mMの酢酸アンモニウム;移動相B:100%のアセトニトリルを用いて;80%のA、20%のB(0.5分間保持)から10%のA、90%のBへと4.5分間の勾配条件を実施し、10%のAおよび90%のBで4分間保持し、3分間にわたって初期条件で再度平衡化した。10μlの注入量を使用した。コーン電圧は、正および負イオン化モードで20Vであった。0.3秒間のスキャン間遅延を用いて、0.4秒間で100から1000へと走査することによって、質量スペクトルを取得した。
一般的な手順VDR1に加えて:0.8ml/分の流量で、Waters Atlantis C18カラム(5μm、3.9×100mm)において、逆相HPLCを行った。3つの移動相(移動相A:100%の7mMの酢酸アンモニウム;移動相B:100%のアセトニトリル;移動相C:0.2%のギ酸+99.8%の超純水)を用いて、50%のA、0%のBおよび50%のC(1.5分間保持)から10%のA、80%のBおよび10%へと3.5分間の勾配条件を実施し、これらの条件で4分間保持し、3分間にわたって初期条件で再度平衡化した。10μlの注入量を使用した。コーン電圧は、正および負イオン化モードで20Vであった。0.3秒間のスキャン間遅延を用いて、0.4秒間で100から1000へと走査することによって、質量スペクトルを取得した。
一般的な手順VDR1に加えて:0.7ml/分の流量で、Supelco Ascentis Express C18カラム(2.7μm、3.0×50mm)において、逆相HPLCを行った。2つの移動相(移動相A:100%の7mMの酢酸アンモニウム;移動相B:100%のアセトニトリル)を用いて、80%のAおよび20%のB(0.5分間保持)から5%のAおよび95%のBへと2.5分間の勾配条件を実施し、4.5分間保持し、1.5分間で初期条件に戻し、1分間保持した。5mlの注入量を使用した。コーン電圧は、正および負イオン化モードで20Vであった。0.3秒間のスキャン間遅延を用いて、0.4秒間で100から1000へと走査することによって、質量スペクトルを取得した。
一般的な手順VDR2に加えて:0.343ml/分の流量で、Waters Acquity BEH(架橋されたエチルシロキサン/シリカハイブリッド)C18カラム(1.7μm、2.1×100mm)において、逆相UPLCを行った。2つの移動相(移動相A:95%の7mMの酢酸アンモニウム/5%のアセトニトリル;移動相B:100%のアセトニトリル)を用いて、84.2%のAおよび15.8%のB(0.49分間保持)から10.5%のAおよび89.5%のBへと2.18分間の勾配条件を実施し、1.94分間保持し、0.73分間で初期条件に戻し、0.73分間保持した。2μlの注入量を使用した。コーン電圧は、正および負イオン化モードで20Vであった。0.1秒間のスキャン間遅延を用いて、0.2秒間で100から1000へと走査することによって、質量スペクトルを取得した。
一般的な手順VDR2に加えて:0.35ml/分の流量で、Waters HSS(高強度シリカ)T3カラム(1.8μm、2.1×100mm)において、逆相UPLCを行った。2つの移動相(移動相A:95%の7mMの酢酸アンモニウム/5%のアセトニトリル;移動相B:100%のアセトニトリル)を用いて、99%のA(0.5分間保持)から15%のAおよび85%のBへと4.5分間の勾配条件を実施し、2分間保持し、0.5分間で初期条件に戻し、1.5分間保持した。2□lの注入量を使用した。コーン電圧は、正および負イオン化モードで20Vであった。0.1秒間のスキャン間遅延を用いて、0.2秒間で100から1000へと走査することによって、質量スペクトルを取得した。
生物学的アッセイの説明
TLR7活性の評価のためのレポーターアッセイ(24時間)
化合物がヒトTLR7を活性化する能力を、TLR7またはTLR8発現ベクターおよびNFκB−lucレポーター構築物で一過的にトランスフェクトされたHEK293細胞を用いた細胞レポーターアッセイで評価した。一例として、TLR発現構築物は、それぞれの野生型配列またはTLRの2番目のロイシンリッチリピート(dlRR2)の欠失を含む変異配列を発現する。このような変異TLRタンパク質は、アゴニスト活性化の影響をより受けやすいことが既に示されている(米国特許第7,498,409号明細書)。
ヒトTLR7の活性化により、ヒト血液中に存在する形質細胞様樹枝状細胞によってインターフェロンの強力な産生が得られる。化合物がインターフェロンを誘導する可能性を、末梢血単核細胞(PBMC)からの馴化培地を用いたインキュベーションの際のHCVレプリコンシステムにおける抗ウイルス活性を調べることによって評価した。HCVレプリコンアッセイは、Krieger et al.(Journal of Virology(2001)75:4614−4624)によって記載される修正とともに、Lohmann et al.(Science(1999)285:110−113;Journal of Virology(2003)77:3007−15 3019)によって記載される2シストロン性発現構築物に基づくものである。このアッセイは、レポーター遺伝子(ホタルルシフェラーゼ)および選択可能なマーカー遺伝子(neoR、ネオマイシンホスホトランスフェラーゼ)が前にある、脳心筋炎ウイルス(EMCV)からの内部リボソーム侵入部位(Internal Ribosome Entry Site)(IRES)から翻訳されるHCV 1b型の野生型NS3−NS5B領域を含む2シストロン性発現構築物をコードするRNAを有する安定的にトランスフェクトされた細胞株Huh−7 luc/neoを用いた。構築物には、HCV 1b型からの5’および3’NTR(非翻訳領域)が隣接している。G418(neoR)の存在下におけるレプリコン細胞の培養の継続は、HCV RNAの複製に依存する。特にルシフェラーゼをコードするHCV RNAを自律的にかつ高いレベルで複製する安定的にトランスフェクトされたレプリコン細胞を、馴化された細胞培養培地のプロファイリング(profiling)に使用した。簡潔に述べると、標準的なFicoll遠心分離プロトコルを用いて、少なくとも2供与体の軟膜からPBMCを調製した。単離されたPBMCを、10%のヒトAB血清が補充されたRPMI培地に再懸濁させ、2×105個の細胞/ウェルを、化合物(70μLの全体積)を含む384ウェルプレート中に計量分配した。一晩のインキュベーションの後、10μLの上清を、30μL中2.2×103個のレプリコン細胞/ウェルを含む384ウェルプレート(前日に平板培養された)に移した。24時間のインキュベーションの後、40μL/ウェルのSteady Lite Plus基質(Perkin Elmer)を用いてルシフェラーゼ活性を評価することによって、複製を測定し、ViewLux ultraHTSマイクロプレートイメージャー(Perkin Elmer)を用いて測定した。Huh7−luc/neo細胞に対する各化合物の阻害活性を、EC50値として報告した。EC50値は、規定量のPBMC培養培地の移入(transfer)に対するレプリコンRNAの複製の程度を示すルシフェラーゼ活性の50%の低下をもたらすPBMCに適用される化合物濃度として定義される。組み換えインターフェロンα−2a(Roferon−A)を標準的な対照化合物として使用した。全ての化合物は、上記のHEK 293 TOXアッセイにおいて、24μMを超えるCC50を示した。
ヒトTLR7の活性化により、ヒト血液中に存在する形質細胞様樹枝状細胞によってインターフェロンの強力な産生が得られる。化合物がインターフェロンを誘導する可能性を、末梢血単核細胞(PBMC)からの馴化培地におけるインターフェロンの測定によって評価した。インターフェロン刺激応答領域(interferon−stimulated responsive element)(ISRE)−lucレポーター構築物を安定的に発現するインターフェロンレポーター細胞株を用いて、試料におけるインターフェロンの存在を決定した。配列GAAACTGAAACTを有するISRE領域は、STAT1−STAT2−IRF9転写因子に対する反応性が高く、IFN受容体へのIFN−Iの結合の際に活性化される。簡潔に述べると、標準的なFicoll遠心分離プロトコルを用いて、少なくとも2供与体の軟膜からPBMCを調製した。単離されたPBMCを、10%のヒトAB血清が補充されたRPMI培地に再懸濁させ、2×105個の細胞/ウェルを、化合物(70μLの全体積)を含む384ウェルプレート中に計量分配した。化合物によるPBMCの一晩のインキュベーションの後、10μLの上清を、30μL中5×103個のHEK−ISRE−luc細胞/ウェルを含む384ウェルプレート(前日に平板培養された)に移した。24時間のインキュベーションの後、40μL/ウェルのSteady Lite Plus基質(Perkin Elmer)を用いてルシフェラーゼ活性を評価することによって、ISRE領域の活性化を測定し、ViewLux ultraHTSマイクロプレートイメージャー(Perkin Elmer)を用いて測定した。HEK−ISRE−luc細胞に対する各化合物の刺激活性を、LECとして報告した。ここで、LECは、規定量のPBMC培養培地の移入に対するISRE活性化の程度を示す。組み換えインターフェロンα−2a(Roferon−A)を標準的な対照化合物として使用した。
本発明は、以下の態様を包含し得る。
[1]
式(I)
の化合物、またはその薬学的に許容できる塩、溶媒和物もしくは多形体。
[2]
R 1 が、ハロゲン、ヒドロキシル、C 1〜6 アルキル、C 1〜4 アルコキシまたはC 3〜6 シクロアルキルから独立して選択される1つまたは複数の置換基によってそれぞれ任意に置換される、イミダゾリル、ピラゾリルまたはピリジニルを含む群から選択される、上記[1]に記載の式(I)の化合物。
[3]
1つまたは複数の薬学的に許容できる賦形剤、希釈剤または担体とともに、上記[1]または[2]に記載の式(I)の化合物またはその薬学的に許容できる塩、溶媒和物もしくは多形体を含む医薬組成物。
[4]
薬剤として使用するための、上記[1]または[2]に記載の式(I)の化合物またはその薬学的に許容できる塩、溶媒和物もしくは多形体、または上記[3]に記載の医薬組成物。
[5]
TLR7の調節が関与する疾患の治療に使用するための、上記[1]または[2]に記載の式(I)の化合物またはその薬学的に許容できる塩、溶媒和物もしくは多形体、または上記[3]に記載の医薬組成物。
Claims (4)
- 式(I)
(式中、Yが、(C1〜4)アルキレンであり、
R1が、ハロゲン、ヒドロキシルまたはC1〜6アルキルから独立して選択される1つまたは複数の置換基によってそれぞれ任意に置換される、イミダゾリル、ピラゾリル、ピロリル、フリル、オキサジアゾリル、オキサゾリルおよびピリミジルからなる群から選択され、
R2が、
フェニル、ナフチル、アントラセニルおよびフェナントレニルからなる群から選択されるアリールであって、該アリールは、ヒドロキシル、C1〜6アルキル、C1〜4アルコキシ、トリフルオロメチル、CO2R3、R4R5N−C1〜4−アルキル−、ハロゲン、ヒドロキシル−C1〜4アルキル−、NR6R7、C(O)R6、C(O)NR6R7、C1〜4アルキル−ジエトキシホスホリルまたはC1〜4アルキル−ホスホン酸から独立して選択される1つまたは複数の置換基によって任意に置換される、アリール、または
テトラヒドロピランおよびヘテロアリールからなる群から選択されるヘテロシクリルで
あって、該ヘテロアリールは、ピリジル、テトラヒドロイソキノリニル、イミダゾピリジニル、キノリニル、イソキノリニル、ピラジニル、ピリミジル、ナフチリジニル、ピリダジニル、ベンズイミダゾリル、ベンゾチアゾリル、ピラゾリル、チアゾリル、イミダゾリルおよびインダゾリルから選択され、該ヘテロアリールは、ハロゲン、ヒドロキシル、C1〜6アルキル、C1〜4アルコキシ、オキシ−C1〜4アルキルアミンまたはピロリジニル−メタノンから独立して選択される1つまたは複数の置換基によって任意に置換される、ヘテロシクリルであり、
R 3 は、HおよびC 1〜6 アルキルから選択され、
R 4 およびR 5 は、それらが両方とも結合される窒素と一緒になって、以下のものからなる群から選択される複素環を形成し:
R 6 およびR 7 はそれぞれ、独立して、H、C 1〜6 −アルキルまたはC 1〜4 アルコキシから選択される)
の化合物、またはその薬学的に許容できる塩もしくは溶媒和物。 - 以下:
から選択される式によって表される化合物、またはその薬学的に許容できる塩もしくは溶媒和物。 - 1つまたは複数の薬学的に許容できる賦形剤、希釈剤または担体とともに、請求項1または2に記載の化合物またはその薬学的に許容できる塩もしくは溶媒和物を含む医薬組成物。
- 薬剤として使用するための、請求項1または2に記載の化合物またはその薬学的に許容できる塩もしくは溶媒和物、または請求項3に記載の医薬組成物。
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