JP5975000B2 - 微生物検出方法 - Google Patents
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Description
菌懸濁液の調製:
第16改正日本薬局方 一般試験法4.05 微生物限度試験法に準じて、微生物試験に使用する接種用菌液を調製した。
(試験菌株)
大腸菌(Escherichia coli,以下、ECOと略す):IFO No.3972
黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus,以下、SAUと略す):IFO No.13276
緑膿菌(Pseudomonas aeruginosa,以下、PAEと略す):IFO No.13275
バチルス・サブチルス(Bacillus subtilis,以下、BSUと略す):IFO No.3134
カンジダ・アルビカンス(Candida albicans,以下、CALと略す):IFO No.1594
アスペルギルス・ブラジリエンシス(Aspergillus brasiliensis,以下、ABRと略す):NBRC No.9455
クロストリジア(Clostridium sporogenes, 以下、CSPと略す):NCTC No.12935
(菌懸濁液の調製)
100mL容の三角フラスコに入れたSCD培地50mLに斜面培地保存菌株を1エーゼ(白金耳)接種し、ECO、SAU、PAEは30〜35℃で、CALは20〜25℃で培養して、菌懸濁液とした。
BSUは培養菌液を加熱処理し、栄養細胞を殺滅して胞子懸濁液を調製した。
ABRはPDA培地で20〜25℃で培養し、良好な胞子形成が認められたら、得られた胞子をかき取り、胞子液を調製した。
(接種用菌液の調製)
これらの菌懸濁液をペプトン食塩緩衝液等で段階希釈し、接種用菌液を調製した。
吸着剤の検討(1):
試料(大承気湯エキス顆粒;株式会社ツムラ製)10gを秤取し、10質量%吸着剤が添加されたペプトン食塩緩衝液90mL(200mL三角フラスコにて調製)に加え、攪拌し、試料液を調製した。吸着剤として、ダイヤイオン(登録商標)HP20(スチレン系)、ダイヤイオン(登録商標)HP2MG(メタクリル系)、セパビーズ(登録商標)SP700(スチレン系)、セパビーズ(登録商標)SP207(スチレン系)を使用した(いずれも三菱化学株式会社製)。また10質量%吸着剤に代えて、10質量%スキムミルクを用いて同様に調製した試料液、3質量%活性炭および5質量%活性白土を加えたSCD培地を用意した。各試料液を分取し、篩(ステンレス製)を通過させて10倍希釈試料液とした。この10倍希釈試料液を10mLずつ試験管に分取した。各試験管に、参考例1で調製したSAUの接種用菌液を100CFU/mL以下になるように添加し、2時間静置したのちにシャーレに分注し、SCDLPA培地(日本製薬株式会社製)にて混釈した。30〜35℃、5日以内で培養後、集落測定を実施した。10倍希釈試料液にペプトン食塩緩衝液を添加したもの(ブランク)及びろ過した10質量%吸着剤加SCD培地10mLに上記と同様にして菌液を添加したもの(試料非添加区)についても同様に集落測定を行い、下記式より回収率を算出した。回収率が50%以上であれば適合:○、50%未満であれば不適合:×と判定した。
A:各試験区の集落数
B:ブランクの集落数
C:試料非添加区の集落数
吸着剤の検討(2):
試料(大承気湯エキス顆粒;株式会社ツムラ製)10gを秤取し、3、5、10質量%となるように吸着剤(HP20、HP2MG)を添加したSCD培地90mL(200mL容三角フラスコにて調製)に加え、攪拌し、試料液を調製した。これら試料液を分取し、篩を通過させて10倍希釈試料液とした。この10倍希釈試料液を10mLずつ試験管に分取した。各試験区に、参考例1により調製したSAUの接種用菌液を100CFU/mL以下になるように添加し、1時間静置したのちにシャーレに分注し、SCDA培地にて混釈した。30〜35℃、5日以内で培養後、集落測定を実施した。実施例1と同様にして回収率を算出し、適合性を判定した。また合成吸着剤はシャーレへの分注(ピペット操作)においてハンドリングが困難になるケースがあるので、その難易について下記基準により評価した。結果を表2に示す。
○:一般的な滅菌メスピペットでの液体のハンドリング上問題ない。
×:秤取困難、均一に分取出来ない、つまる等の問題があるなど、ハンドリングに支障が出る。
添加回収試験(1):
抗菌活性が高いことが確認されている漢方エキス製剤(小青竜湯、潤腸湯、大黄甘草湯、大承気湯;株式会社ツムラ製、いずれもエキス顆粒)を10g秤取し、5、10質量%HP2MG加SCD培地90mL(200mL容三角フラスコにて調製)に加え、攪拌し、試料液を調製した。この試料液を分取し、篩を通過させて10倍希釈試料液とした。この10倍希釈試料液を10mLずつ試験管に分取した。各試験区に、参考例1で調製したBSU又はPAEの接種用菌液を、それぞれ100CFU/mL以下になるように添加し、1時間静置したのちにシャーレに分注し、SCDA培地にて混釈した。30〜35℃、5日以内で培養後、集落測定を実施した。実施例1と同様にして回収率を算出した。回収率が50%以上であれば適合:○、50%未満であれば不適合:×と判定した。結果を表3に示す。
吸着剤の検討(3):
BSUに対して抗菌活性を示すことが確認されている潤腸湯のエキス粉末、二朮湯および大承気湯の漢方エキス顆粒(いずれも株式会社ツムラ製)およびSAUに対して抗菌活性を示すことが確認されている潤腸湯のエキス粉末および大承気湯の漢方エキス顆粒(いずれも株式会社ツムラ製)を生菌数試験の被験試料とした。また、ECOに対して抗菌活性を示すことが確認されている大柴胡湯、大黄甘草湯、通導散の漢方エキス粉末(いずれも株式会社ツムラ製)を大腸菌試験の被験試料とした。各漢方エキス製剤について、第16改正日本薬局方 一般試験法4.05の微生物限度試験法に準じ、生菌数試験及び大腸菌試験を行った。漢方エキス顆粒については、各試料10gを秤取し、表4に示す吸着剤を10質量%添加したSCD培地90mL(200mL容三角フラスコにて調製)に加え、30分間攪拌し、試料液を調製した。これら試料液を分取し、篩を通過させて10倍希釈の試料液とした。エキス粉末については、各試料5gを秤取し、表4に示す吸着剤を10質量%添加したSCD培地95mLに加えた以外は同様にして20倍希釈の試料液とした。
(生菌数試験)
調製した試料液に、参考例1で調製したBSUもしくはSAUの接種用菌液を接種菌数が100CFU/mL以下になるように添加し、攪拌した。攪拌後の試料液をろ過し、ろ液をシャーレに分注して、SCDA培地にて混釈した。30〜35℃、5日以内で培養し、BSUもしくはSAUの集落測定を実施した。実施例1と同様にして回収率を算出した。回収率が50%以上であれば適合:○、50%未満であれば不適合:×と判定した。
(大腸菌試験)
調製した試料液に、ECOの接種菌数が50CFU/mL以下になるように添加し、30〜35℃で24時間培養した。培養後、培養液をマッコンキーカンテン培地に塗抹し、30〜35℃で24時間培養し、ECOの発育を確認した。ECOが発育していれば適合:+、発育していなければ不適合:−と判定した。これらの結果を表4に示す。
生菌数試験(カンテン平板混釈法):
下記表5に示す漢方エキス顆粒128処方(いずれも株式会社ツムラ製)について、SAU、PAE、BSU、CAL、ABRを供試菌として生菌数試験を行った。CAL、ABRについては、総好気性菌数(TAMC)測定及び総真菌数(TYMC)測定を行い、SAU、PAE、BSUについてはTAMC測定を行った。
各試料10gを秤取し、10質量%となるようにHP2MGを添加したSCD培地90mL(200mL容三角フラスコにて調製)に加え、攪拌し、試料液を調製した。これら試料液を分取し、篩を通過させて10倍希釈試料液とした。この10倍希釈試料液を10mLずつ試験管に分取した。参考例1で調製した各接種用菌液を、それぞれ100CFU/mL以下になるように添加し、1時間静置した。
(TAMC測定)
接種した10倍希釈試料液を攪拌した後、シャーレに1mL分注し、SCDA培地にて混釈した。培養条件は30〜35℃にて5日以内で集落測定を実施し、実施例1と同様にして回収率を算出した。回収率が50%以上であれば適合:○、50%未満であれば不適合:×と判定した。
(TYMC測定)
接種した10倍希釈試料液を攪拌した後、シャーレに1mL分注し、SDA培地にて混釈した。培養条件は20〜25℃にて5日以内で集落測定を実施し、実施例1と同様にして回収率を算出した。回収率が50%以上であれば適合:○、50%未満であれば不適合:×と判定した。結果を表5〜8に示す。
なお、回収率が50%未満となった1試験区についても、多少の試験法の改変で回収率50%以上にすることが可能である。
添加回収試験(2):
希釈倍率の添加回収率に対する影響を確認した。BSUに対して抗菌性があることが確認されている漢方エキス粉末(大黄甘草湯、大承気湯;いずれも、株式会社ツムラ製)を5g秤取し、SCD培地95mLまたは10質量%HP2MG加SCD培地95mL(200mL容三角フラスコにて調製)に加え、攪拌して希釈倍率20倍試料液を得た。同様に、当該漢方エキス粉末をSCD培地または10質量%HP2MG加SCD培地に30、50、および100倍希釈になるように加え、攪拌して希釈倍率30、50、および100倍試料液を得た。希釈倍率20、30、50、100倍の各試験区に、参考例1で調製したBSUの接種用菌液を接種菌数が100CFU/mL以下になるように添加し、1時間静置した。その後、HP2MG加SCDBにて調製した試料液は篩を通過させて、各試料液をシャーレに分注し、SCDA培地にて混釈した。30〜35℃、5日以内にて培養後、集落測定を行い、実施例1と同様にして回収率を算出した。回収率が50%以上であれば適合:○、50%未満であれば不適合:×と判定した。結果を表9と図1及び図2に示す。
添加回収試験(3):
BSUに対して抗菌性があることが確認されている漢方エキス粉末11処方(半夏厚朴湯、人参湯、半夏白朮天麻湯、桃核承気湯、調胃承気湯、平胃散、大黄甘草湯、竹ジョ温胆湯、黄連湯、麻子仁丸、大承気湯;いずれも、株式会社ツムラ製)を5g秤取し、SCD培地95mL又は10質量%HP2MG加SCD培地95mL(200mL容三角フラスコにて調製)に加え、攪拌し、試料液を調製した。試料液を分取し篩を通過させて、それぞれ20倍希釈試料液とした。各試験区に、参考例1で調製したBSUの接種用菌液を接種菌数が100CFU/mL以下になるように添加し、1時間静置したのちにシャーレに分注し、SCDA培地にて混釈した。30〜35℃、5日以内にて培養後、集落測定を行い、実施例1と同様にして回収率を算出した。回収率が50%以上であれば適合:○、50%未満であれば不適合:×と判定した。結果を表10に示す。
特定微生物試験(大腸菌):
(直接培養法)
大腸菌に対して抗菌活性があることが確認されている漢方エキス粉末(乙字湯、大柴胡湯、 小柴胡湯、加味逍遙散、潤腸湯、桃核承気湯、シャク薬甘草湯、大黄甘草湯、通導散、柴苓湯、茵チン蒿湯;いずれも、株式会社ツムラ製)5gを秤取し、SCD培地95mL又は10質量%HP2MG加SCD培地95mL(200mL容三角フラスコにて調製)に加え、攪拌し、20倍希釈の試料液を調製した。試料液に参考例1で調製したECOの接種用菌液を接種菌数が50CFU/mL以下になるように添加し、30〜35℃で24時間培養した。培養後、培養液をマッコンキーカンテン培地に塗抹し、30〜35℃で24時間培養し、ECOの発育を確認した。ECOが発育していれば適合:+、発育していなければ不適合:−と判定した。結果を表11に示す。
直接培養法(20倍希釈)でECOの発育が認められなかった大黄甘草湯エキス粉末を10%HP2MG加SCD培地にて20倍希釈の試料液を調製した。当該試料液にECOの接種菌数が100CFU/mL以下になるように添加した後、20倍希釈液20mLを40mLのSCD培地に分注して60倍希釈液とし、30〜35℃で24時間培養した。培養後、培養液をマッコンキーカンテン培地に塗抹し、30〜35℃で24時間培養し、ECOの発育を確認した。ECOが発育していれば適合:+、発育していなければ不適合:−と判定した。結果を表11に示す。
特定微生物試験(クロストリジア):
クロストリジアに対して抗菌活性があることが確認されている漢方エキス顆粒(麻黄湯、茵チン蒿湯;いずれも、株式会社ツムラ製)10gを、SCD培地90mL又は10質量%HP2MG加SCD培地90mLに加えて攪拌し、10倍希釈の試料液を調製した。各試料液10mLを90mLの強化クロストリジア培地に接種したのちに、CSP菌液(シスメックスビオメリュー社製BioBall(登録商標)MultiShot550 Clostridium sporogenes NCTC12935)を接種菌数が50CFU/mL以下になるように添加し、30〜35℃で48時間嫌気的条件下培養した。培養後、培養液をコロンビアカンテン培地に塗抹し、30〜35℃で48時間嫌気的条件下培養し、CSPの発育を確認した。CSPが発育していれば適合:+、発育していなければ不適合:−と判定した。結果を表12に示す。
特定微生物試験(大腸菌):
大腸菌に対して抗菌活性があることが確認されている生薬(大黄)を5g秤取し、SCD培地95mL又は10質量%HP2MG加SCD培地95mL(200mL容三角フラスコにて調製)に加え、攪拌して希釈倍率20倍試料液を得た。同様に、生薬(大黄)をSCD培地または10質量%HP2MG加SCD培地に100および200倍希釈になるように加え、攪拌して希釈倍率100、200倍試料液を得た。各試料液に参考例1で調製したECOの接種用菌液を接種菌数が50CFU/mL以下になるように添加し、30〜35℃で24時間培養した。培養後、培養液をマッコンキーカンテン培地に塗抹し、30〜35℃で24時間培養し、ECOの発育を確認した。ECOが発育していれば適合:+、発育していなければ不適合:−と判定した。結果を表13に示す。
Claims (11)
- 抗菌活性を有する被験試料を含有する試料液を調製する工程及び対象微生物を培養培地で培養する工程を含み、試料液及び/又は培養培地に(メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤を作用させることを特徴とする抗菌活性を有する被験試料中の微生物検出方法。
- (メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤の細孔の最頻度(細孔)半径が50〜1000Åである請求項1記載の微生物検出方法。
- 試料液に(メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤を作用させるものである請求項1又は2に記載の微生物検出方法。
- 試料液中に(メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤を添加するものである請求項3記載の微生物検出方法。
- 試料液中の(メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤の含有量が3〜20質量%である請求項3又は4記載の微生物検出方法。
- 抗菌活性を有する被験試料及び(メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤を含有する試料液を所定時間撹拌混合するものである請求項3〜5のいずれかの項記載の微生物検出方法。
- (メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤を試料液に作用させた後、(メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤を試料液から分離除去するものである請求項1〜6のいずれかの項記載の微生物検出方法。
- 培養培地に(メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤を作用させるものである請求項1〜7のいずれかの項記載の微生物検出方法。
- 培養培地中に(メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤を添加するものである請求項8記載の微生物検出方法。
- 培養培地中の(メタ)アクリル酸エステル系合成吸着剤の含有量が3〜20質量%である請求項8又は9記載の微生物検出方法。
- 抗菌活性を有する被験試料が漢方エキス製剤又は生薬である請求項1〜10のいずれかの項記載の微生物検出方法。
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