CN109694899A - 一种含有chg成分的湿巾产品中微生物限度的检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种含有CHG成分的湿巾产品中微生物限度的检测方法,包括步骤S1,取湿巾样品,制备供试液;步骤S2,检测供试液中的需氧菌总数和霉菌酵母菌总数;步骤S3,取步骤S1中的供试液制备初增菌液A,检测初增菌液A中的金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌以及铜绿假单胞菌;步骤S4,取步骤S1中的供试液制备初增菌液B,检测初增菌液B中的沙门氏菌。本发明提供的方法中,采用含有吐温‑80的无菌氯化钠‑蛋白胨缓冲液对滤膜进行冲洗,中和了湿巾配方中的杀菌剂成分CHG,并采用含有吐温‑80和卵磷脂的培养基进行培养,有效降低了检测中假阴性的可能性,提高了湿巾产品中微生物限度检测的准确度。
Description
技术领域
本发明属于一次性卫生用品领域,具体涉及一种含有CHG成分湿巾产品中微生物限度的检测方法。
背景技术
微生物限度检测,检测能够自行繁殖的微生物的数量,是湿巾产品能否上市的重要指标,其原理是通过对湿巾产品的取样检测,通过相应的培养基培养,将湿巾中的微生物培养出来,如果湿巾中的微生物指标不符合标准要求,则判断产品不合格,不允许上市。
目前,一般都采用薄膜过滤法进行微生物限度的检测,并参照USP61和USP62测试。而市面上销售的人体清洁湿巾配方中一般会具有杀菌剂CHG(洗必泰),据目前的测试方法会存在假阴性的结果。要想准确检测湿巾中的微生物,必须要对消除防腐剂对检测方法的干扰。而目前业内并没有针对含有杀菌剂CHG的湿巾产品中微生物限度的检测方法。因此,为了能够消除湿巾中防腐剂对微生物限度检测的影响,保证湿巾产品中微生物指标判断的准确性,亟需一种能够准确检测含有CHG成分的湿巾产品中微生物限度的方法。
发明内容
为了解决上述生产中的问题,本发明提供了一种含有CHG(洗必泰)成分的湿巾产品中微生物限度的检测方法,其特征在于,包括以下步骤:
步骤S1,取湿巾样品加入到缓冲液中,制备供试液;
步骤S2,将供试液采用滤膜过滤,并采用缓冲液对滤膜进行冲洗,检测滤液中的需氧菌总数和霉菌酵母菌总数;
步骤S3,取步骤S1中的供试液制备初增菌液A,检测初增菌液A中的金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌以及铜绿假单胞菌;
步骤S4,取步骤S1中的供试液制备初增菌液B,检测初增菌液B中的沙门氏菌;
其中,所述缓冲液为含有0.5%吐温-80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液。
进一步地,所述步骤S1具体操作如下,剪取10g样品置于无菌三角瓶中,并加入90ml缓冲液,将无菌三角瓶置于摇床上摇匀,即得到质量体积比为1:10的供试液。
进一步地,所述步骤S2具体操作如下,取1ml 1:10供试液通过膜过滤器过滤,再取100ml无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液进行过滤冲洗,取一次过滤膜贴于大豆-酪蛋白消化物琼脂平板,将所述平板置于30-35℃培养箱中培养3-5天,用于检测需氧菌总数,取另一次过滤膜贴于沙氏葡萄糖琼脂平板,将所述平板置于20-25℃培养箱中培养5-7天,用于检测霉菌酵母菌总数。
进一步地,所述步骤S3中,初增菌液A的制备方法为,取10ml1:10的供试液至100ml大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中,在30-35℃条件下培养18-24小时,即得初增菌液A,所述大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中含有0.5%吐温80和0.07%卵磷脂。
进一步地,所述步骤S3中,初增菌液A中的金黄色葡萄球菌的检测方法为,用接种环从初增菌液A中挑取一环至甘露醇氯化钠琼脂(MSA)上涂匀,30-35℃倒置培养18-72小时;若MSA平板上有黄色菌落或外周有黄色环的白色菌落生长,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为金黄色葡萄球菌;若平板上没有与上述形态特征相符或疑似的菌落生长,或虽有相符或疑似的菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阴性,判断供试品未检出金黄色葡萄球菌。
进一步地,所述步骤S3中,初增菌液A中的大肠埃希菌的检测方法为,取1ml初增菌液A中挑取一环至麦康凯琼脂培养基(MCA)上涂匀,在42℃-44℃再培养18-72小时;若MCA中菌落呈黑紫色,有金属光泽,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为大肠埃希菌;若没有菌落生长,或虽有菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阳性,判断供试品未检出大肠埃希菌。
进一步地,所述步骤S3中,初增菌液A中的铜绿假单胞菌的检测方法为,用接种环从初增菌液A中挑取一环至十六烷基三甲基溴化铵(CM)培养基平板上,在30℃-35℃条件下培养18-72小时;若CM上菌落或菌落周围呈蓝绿色,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为铜绿假单胞菌;若没有菌落生长,或虽有菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阳性,判供试品未检出铜绿假单胞菌。
进一步地,所述步骤S4的操作如下,取100ml的1:10供试液过滤后,将滤膜放至100ml TSB中,在30-35℃条件下培养18-24小时,即得初增菌液B,取0.1ml的初增菌液B至10mlRVS肉汤培养基中,在30℃-35℃条件下培养18-24小时,用接种环从RVS肉汤中挑取一环至木糖赖氨酸脱氧胆盐琼脂培养基(XLD)培养基平板上,在30℃-35℃条件下培养18-48小时;若XLD平板上出现有生长良好的红色菌落,带有或没有黑色中心,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为沙门氏菌;若没有菌落生长,或虽有菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阳性,判断供试品未检出沙门氏菌。
进一步地,所述步骤S2-S4中还设置有阴性对照。
相关术语说明
其中,所述TSAWLP:大豆酪蛋白消化物琼脂培养基(含有0.5%吐温80和0.07%卵磷脂)
所述SDAWLP:沙氏葡萄糖琼脂培养基(含有0.5%吐温80和0.07%卵磷脂)
所述TSB:大豆酪蛋白消化物肉汤
所述MSA:甘露醇氯化钠琼脂
所述CM:十六烷基三甲基溴化铵培养基
所述MCB:麦康凯肉汤培养基
所述MCA:麦康凯琼脂培养基
所述RV:增菌肉汤
所述XLD:木糖赖氨酸脱氧胆盐琼脂培养基。
与现有技术相比,本发明具有以下技术效果:
1.本发明的检测方法中,采用含有0.5%吐温-80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液处理供试液,在处理过程中既不影响微生物生长,也能很好中和杀菌剂CHG(洗必泰),从而保证检测结果的准确性,为生产企业检测湿巾中微生物生长状况提供真实可靠数据。
2.本发明中采用仅添加0.7%的卵磷脂制备初增菌液A,消除了对所检测的所有菌种的假阴性结果,且相对于同时添加卵磷脂和吐温而言,既节约成本又能够保证检测的精确性。
3.本发明采用薄膜过滤法,并在此基础上增加冲洗液对滤膜进行冲洗的步骤,能够有效中和防腐剂,且操作简单方便,实用性强。
具体实施方式
为了更清楚地说明本发明具体实施方式或现有技术中的技术方案,下面将对具体实施方式作简单地介绍,显而易见地,下面描述中的实施例是本发明的一些实施方式,对于本领域普通技术人员来讲,在不付出创造性劳动的前提下,还可以根据这些实施例获得其他的实施方式。
实施例1制备供试液
把剪刀的前端在注射针红外线加热消毒器中消毒至少5秒钟,然后冷却至少5秒钟,剪开样品包装袋,从样品上部剪取10g样品至90ml含有0.5%吐温-80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液的罐子中,标记上简短的数字批号、抽样日期。将罐子放置摇床上,以190-220转/分的速度振荡至少10分钟,即得到质量体积比为1:10的供试液。
实施例2需氧菌总数和霉菌酵母菌总数的测定
将膜过滤器安装在装置上,量取100ml含0.5%吐温80的pH 7.0无菌氯化钠蛋白胨缓冲液至过滤器中,再加入1ml的1:10供试液,过滤,再用100ml含0.5%吐温80的pH 7.0无菌氯化钠蛋白胨缓冲液冲洗两次然后过滤,将滤膜贴在已制备好的大豆-酪蛋白消化物琼脂培养基上,倒置于30-35℃培养3-5天。同样操作,将另一次滤膜贴在沙氏葡萄糖琼脂培养基上,倒置于20-25℃培养5-7天。
检测结果如表1所述,其中,
Inoculums Product:接种浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液于平板上。
Product Challenge:在含有样品的供试液中同时添加浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液,并按照实施例1-2的方法取样并过滤,接种滤膜。
Neutralizing Agent Control:供试液中不添加样品,添加浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液,并按照实施例1-2的方法过滤,接种滤膜。
Product Control:供试液按照实施例1-2的方法过滤,接种滤膜。
检测结果如表1所示,本发明检测的菌落回收率均在70%以上,符合药典规定中回收率的要求。同时,经过菌液回收率检测可知,采用缓冲液对滤膜进行冲洗,既不影响微生物生长,也能很好中和防腐剂,从而保证检测结果的准确性。
实施例3金黄色葡萄球菌的检测
取10ml1:10的供试液至100ml大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中,在30-35℃条件下培养18-24小时,所述大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中含有0.5%吐温80和0.07%卵磷脂,即得初增菌液A。用接种环从初增菌液A中挑取一环至甘露醇氯化钠琼脂(MSA)上涂匀,30-35℃倒置培养18-72小时;若MSA平板上有黄色菌落或外周有黄色环的白色菌落生长,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为金黄色葡萄球菌;若平板上没有与上述形态特征相符或疑似的菌落生长,或虽有相符或疑似的菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阴性,判断供试品未检出金黄色葡萄球菌。检测结果如表2所示。
其中,Product Challenge:在含有样品的供试液中同时添加浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液,并按照本实施例的方法检测。
Neutralizing Agent Control:供试液中不添加样品,添加浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液,并按照本实施例的方法检测。
Product Control:并按照本实施例的方法检测。
表2金黄色葡萄球菌的检测
实施例4大肠埃希菌的检测
取10ml1:10的供试液至100ml大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中,在30-35℃条件下培养18-24小时,所述大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中含有0.5%吐温80和0.07%卵磷脂,即得初增菌液A。用接种环从初增菌液A中挑取一环至麦康凯琼脂培养基(MCA)上涂匀,在30℃-35℃再培养18-72小时;若MCA中菌落呈黑紫色,有金属光泽,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为大肠埃希菌;若没有菌落生长,或虽有菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阳性,判断供试品未检出大肠埃希菌。检测结果如表3所示。
其中,Product Challenge:在含有样品的供试液中同时添加浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液,并按照本实施例的方法检测。
Neutralizing Agent Control:供试液中不添加样品,添加浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液,并按照本实施例的方法检测。
Product Control:并按照本实施例的方法检测。
表3大肠埃希菌的检测
实施例5铜绿假单胞菌的检测
取10ml1:10的供试液至100ml大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中,在30-35℃条件下培养18-24小时,所述大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中含有0.5%吐温80和0.07%卵磷脂,即得初增菌液A。用接种环从初增菌液A中挑取一环至十六烷基三甲基溴化铵(CM)培养基平板上,在30℃-35℃条件下培养18-72小时;若CM上菌落或菌落周围呈蓝绿色,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为铜绿假单胞菌;若没有菌落生长,或虽有菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阳性,判供试品未检出铜绿假单胞菌。检测结果如表4所示。
其中,Product Challenge:在含有样品的供试液中同时添加浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液,并按照本实施例的方法检测。
Neutralizing Agent Control:供试液中不添加样品,添加浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液,并按照本实施例的方法检测。
Product Control:并按照本实施例的方法检测。
表4铜绿假单胞菌的检测
实施例6沙门氏菌的检测
取10ml的1:10供试液至100mlRVS增菌肉汤培养基中,在30℃-35℃条件下培养18-24小时,用接种环从RVS增菌肉汤中挑取一环至木糖赖氨酸脱氧胆盐琼脂培养基(XLD)培养基平板上,在30℃-35℃条件下培养18-48小时;若XLD平板上出现有生长良好的红色菌落,带有或没有黑色中心,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为沙门氏菌;若没有菌落生长,或虽有菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阳性,判断供试品未检出沙门氏菌。检测结果如表5所示。
其中,Product Challenge:在含有样品的供试液中同时添加浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液,并按照本实施例的方法检测。
Neutralizing Agent Control:供试液中不添加样品,添加浓度100cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液,并按照本实施例的方法检测。
Product Control:并按照本实施例的方法检测。
表5沙门氏菌的检测
实施例7
按照实施例1方法制备供试液,其中缓冲液中不添加吐温80,接种浓度103cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液于9.9ml的所述供试液中,并涂布与TSA平板上。同时,接种浓度103cfu/ml左右,体积为0.1ml左右的菌液于9.9ml的pH=7.0的氯化钠-蛋白胨缓冲液中,并涂布与TSA平板上。将平板置于30-35℃培养箱中培养3-5天,检测其中需氧菌数量,结果如表6所示。
表6需氧菌数量的检测
从表6中可以看出,在供试液中不含吐温80的情况下,需氧菌Staphylococcusaureus、Pseudomonas aeruginosa、Bacilus subtilis、Candida albicans、Aspergillusniger中均会出现假阴性,从而影响检测结果的准确性。因此,在缓冲液中添加吐温80可以有效中和防腐剂对需氧菌生长的影响。
实施例8
取10ml1:10的供试液至100ml大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中,在30-35℃条件下培养18-24小时,所述大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中含有不同质量分数的卵磷脂,即得初增菌液A,检测需氧菌的数量,此外,在同时添加不同质量分数的卵磷脂和吐温80的初增菌液A中,检测需氧菌的数量。数据见表7。可以看出,在含有不同浓度的卵磷脂的培养基中,各种需氧菌的生长情况是不同的。此外,同时添加卵磷脂和吐温的初增菌液A中,由于过多的添加中和剂,需氧菌的生长也会受到不同程度的影响,因此也会出现假阴性的结果。综上,仅有在添加0.7%卵磷脂的初增菌液A中,才能避免所有的需氧菌检测过程中出现假阴性的结果。
表7不同需氧菌的检测
以上所述仅为本发明的实施方式,并非因此限制本发明的专利范围,凡是利用本发明说明书内容所作的等效流程变换,或直接或间接运用在其他相关的技术领域,均同理包括在本发明的专利保护范围内。
Claims (9)
1.一种含有CHG成分的湿巾产品中微生物限度的检测方法,其特征在于,包括以下步骤:
步骤S1,取湿巾样品加入到缓冲液中,制备供试液;
步骤S2,将供试液采用滤膜过滤,并采用缓冲液对滤膜进行冲洗,检测滤液中的需氧菌总数和霉菌酵母菌总数;
步骤S3,取步骤S1中的供试液制备初增菌液A,检测初增菌液A中的金黄色葡萄球菌、大肠埃希菌以及铜绿假单胞菌;
步骤S4,取步骤S1中的供试液制备初增菌液B,检测初增菌液B中的沙门氏菌;
其中,所述缓冲液为含有质量分数为0.5%吐温-80的pH7.0无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液。
2.根据权利要求1所述的检测方法,其特征在于,所述步骤S1具体操作如下,剪取10g样品置于无菌三角瓶中,并加入90ml缓冲液,将无菌三角瓶置于摇床上摇匀,得到质量体积比为1:10的供试液。
3.根据权利要求2所述的检测方法,其特征在于,所述步骤S2具体操作如下,取1ml 1:10供试液通过膜过滤器过滤,再取100ml无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液进行过滤冲洗,取一次过滤膜贴于大豆-酪蛋白消化物琼脂平板,将所述平板置于30-35℃培养箱中培养3-5天,用于检测需氧菌总数,取另一次过滤膜贴于沙氏葡萄糖琼脂平板,将所述平板置于20-25℃培养箱中培养5-7天,用于检测霉菌酵母菌总数。
4.根据权利要求2所述的检测方法,其特征在于,所述步骤S3中,初增菌液A的制备方法为,取10ml1:10的供试液至100ml大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中,在30-35℃条件下培养18-24小时,即得初增菌液A,所述大豆-酪蛋白消化物肉汤(TSB)中含有质量分数为0.7%卵磷脂。
5.根据权利要求4所述的检测方法,其特征在于,所述步骤S3中,初增菌液A中的金黄色葡萄球菌的检测方法为,用接种环从初增菌液A中挑取一环至甘露醇氯化钠琼脂(MSA)上涂匀,30-35℃倒置培养18-72小时;若MSA平板上有黄色菌落或外周有黄色环的白色菌落生长,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为金黄色葡萄球菌;若平板上没有与前述形态特征相符或疑似的菌落生长,或虽有相符或疑似的菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阴性,判断供试品未检出金黄色葡萄球菌。
6.根据权利要求4所述的检测方法,其特征在于,所述步骤S3中,初增菌液A中的大肠埃希菌的检测方法为,取1ml初增菌液A中挑取一环至麦康凯琼脂培养基(MCA)上涂匀,在42℃-44℃再培养18-72小时;若MCA中菌落呈黑紫色,有金属光泽,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为大肠埃希菌;若没有菌落生长,或虽有菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阳性,判断供试品未检出大肠埃希菌。
7.根据权利要求4所述的检测方法,其特征在于,所述步骤S3中,初增菌液A中的铜绿假单胞菌的检测方法为,用接种环从初增菌液A中挑取一环至十六烷基三甲基溴化铵(CM)培养基平板上,在30℃-35℃条件下培养18-72小时;若CM上菌落或菌落周围呈蓝绿色,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为铜绿假单胞菌;若没有菌落生长,或虽有菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阳性,判供试品未检出铜绿假单胞菌。
8.根据权利要求2所述的检测方法,其特征在于,所述步骤S4的操作如下,取100ml的1:10供试液过滤后,将滤膜放至100ml TSB中,在30-35℃条件下培养18-24小时,即得初增菌液B,取0.1ml的初增菌液B至10mlRVS肉汤培养基中,在30℃-35℃条件下培养18-24小时,用接种环从RVS肉汤中挑取一环至木糖赖氨酸脱氧胆盐琼脂培养基(XLD)培养基平板上,在30℃-35℃条件下培养18-48小时;若XLD平板上出现有生长良好的红色菌落,带有或没有黑色中心,应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验,确证是否为沙门氏菌;若没有菌落生长,或虽有菌落生长但革兰氏染色鉴定结果为阳性,判断供试品未检出沙门氏菌。
9.根据权利要求1所述的检测方法,其特征在于,所述步骤S2-S4中还设置有阴性对照。
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