JP5911821B2 - 受容体チロシンキナーゼalkの細胞外ドメインに結合する抗体 - Google Patents
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Description
本出願は、2006年4月28日に出願された米国仮特許出願第60/795,831号に優先権を請求し、該出願の全内容は本明細書に援用される。
技術分野
本発明は、ヒトALK(未分化リンパ腫キナーゼ)に特異的な抗体、特にscFv、該抗体をコードする核酸配列、その産生、および薬剤としてのまたは診断目的のためのその使用に関する。前記抗体は、腫瘍または癌、特に神経膠芽腫の局所治療に適している。
ALK(未分化リンパ腫キナーゼ; CD246)は、受容体チロシンキナーゼ(RTK)ファミリーのメンバーである。このファミリーの典型的なメンバーとして、該キナーゼは、3つのドメイン:1つのLDL受容体クラスAドメインおよび2つのMAMドメイン(MAM:メプリン、A5抗原、タンパク質チロシンホスファターゼμ)を含有する細胞外リガンド結合性ドメイン(aa19〜1038)、膜貫通ドメイン(aa1039〜1059)、ならびにチロシンキナーゼドメインを含有する細胞質ドメイン(aa1060〜1620)から本質的になる、I型膜貫通タンパク質である。シグナルペプチドは、新生タンパク質のN末端に存在し(aa1〜18)、分泌に際して切断される。
Juan 2002)。さらに、アミノ酸396〜406に対応する、ALKの推定上のリガンドの結合性部位がある(Stoica 2001;以下を参照されたい)。ネズミALKのキナーゼドメインのアミノ酸配列は、ヒトALKに98%のaa同一性、マウスLTKに78%の同一性、マウスrosに52%、ヒト・インスリン様増殖因子受容体に47%、そしてヒト・インスリン受容体に46%の同一性を示す(Iwahara 1997; Ladanyi 2000)。ALKのスプライス変異体は、現在まで記載されてきていない。しかし、ALKはしばしば、染色体転位置と関連づけられる(以下を参照されたい)。
kbである(Kutok 2002)。Morrisによると、cDNAは6226bpに渡る(Morris 2001)。
らが増殖刺激の自己分泌ループを形成可能であることが示される(Stoica 2001)。これらのデータすべてにも関わらず、文献によれば、PTNの効果がALKのみによっておよび/または他の同定されていないPTN受容体によって仲介されるのか、未だ明らかでない(Duyster 2001)。PTNの少なくとも2つの他の潜在的な受容体が示唆されてきている:受容体チロシンホスファターゼRPTPβおよびヘパラン硫酸プロテオグリカンN−シンデカン。しかし、RPTPβは、PTN/ALKシグナル伝達のシグナル伝達調節剤として、そしてN−シンデカンはリガンドのシャペロンとして、作用する可能性もある(Bowden 2002)。
mRNAを発現することが見いだされた: HUVEC、NIH3T3、SW−13、Colo357、ME−180、U87、MD−MB 231; Stoica 2001)。興味深いことに、いくつかの癌細胞株(Colo357膵臓癌、Hs578T乳癌およびU87神経膠芽腫)において、PTNおよびALKは同時発現されており、これによって、PTNおよびALKが増殖刺激の自己分泌ループを形成することが示される(Stoica 2001)。
er 2001; Pulford 2001)。にもかかわらず、神経芽細胞腫由来細胞株における、遺伝子増幅によるALKの過剰発現および恒常的リン酸化を発見したMiyakeらによって示唆されるように、ALKシグナル伝達は、少なくともいくつかの神経芽細胞腫においては重要である可能性もある(Miyake 2002)。しかし、他の神経芽細胞腫由来細胞株は、ALKの恒常的活性化を示さず、したがってALKの一般的な病理学的関与には相反する(Dirks 2002; Pulford 2004)。
したがって、in vitroおよびin vivoでヒトALKタンパク質に結合する、安定でそして可溶性である抗体または抗体誘導体を提供することが本発明の一般的な目的である。最も好ましくは、抗体はALKのリガンド結合性ドメイン(アミノ酸396〜406)に対して特異的にターゲティングされ、そしてしたがって、ALKに対して約170pMのKdを有するMKの生物学的効果、ならびにALKに対して約20〜30p
MのKdを有するPTNの生物学的効果の両方を遮断するであろう(Stoica 2002; Stoica 2001)。好ましい態様において、前記抗体または抗体断片は、scFv抗体またはFab断片である。以下において、用語、抗体は、全長抗体ならびに他の抗体誘導体を含む。
よび配列番号5に示すような可変軽鎖アミノ酸配列に、少なくとも80%、85%、90%、95%、98%、またはより好ましくは少なくとも99%同一であるアミノ酸配列を含む可変軽鎖領域の両方が含まれる。
本発明の他の特徴および利点は、以下の詳細な説明から、そして請求項から明らかであ
ろう。
発明の詳細な説明
本発明がより容易に理解されうるように、特定の用語をまず定義する。
用語「ALK」および「Alk−1」には、膜貫通タンパク質チロシンキナーゼ(PTK)/受容体である、ALK(未分化リンパ腫キナーゼ)遺伝子にコードされるヒトALKタンパク質が含まれる。
IgG1、IgG2、IgG3、またはIgG4サブタイプ)、IgA1、IgA2、IgD、IgE、またはIgM抗体のものであってもよい。
術分野に知られ、そして例えばSambookら、下記に記載される。
を持つアミノ酸(例えばスレオニン、バリン、イソロイシン)、および芳香族側鎖を持つアミノ酸(例えばチロシン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジン)が含まれる。したがって、ヒト抗ALK抗体中の予測される非必須アミノ酸残基は、好ましくは、同じ側鎖ファミリー由来の別のアミノ酸残基で置換される。抗原結合を排除しない、ヌクレオチドおよびアミノ酸の保存的置換を同定する方法が当該技術分野に周知である(例えば、Brummellら, Biochem. 32:1180−1187 (1993); Kobayashiら Protein Eng. 12(10):879−884 (1999);およびBurksら Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94:412−417 (1997)を参照されたい)。
こうした治療が必要な被験体、例えばALKが仲介する障害を有する被験体またはこうした障害を最終的に獲得しうる被験体への、本発明の抗体の投与を使用する。
別に定義しない限り、本明細書で用いるすべての技術的および科学的用語は、本発明が属する技術分野の一般の当業者に、一般的に理解されるのと同じ意味を有する。本発明の実施または試験において、本明細書記載のものと類似であるかまたは同等である方法および材料を用いてもよいが、適切な方法および材料を以下に記載する。不一致の場合は、定義を含む本明細書が支配するであろう。さらに、材料、方法、および実施例は例示のみであり、そして限定することを意図しない。
質管理系」と称される酵母スクリーニング系によって以前単離されたフレームワーク4.4である(Auf der Maurら 2001; Auf der Maurら 2004)。フレームワーク部分が、下線がなくそしてまっすぐな文字によって示され、一方、CDR配列が下線で示され、そしてリンカー配列が斜字体である、例えば配列番号20(以下を参照されたい)から、フレームワークの配列を推定してもよい。
本発明の別の態様において、配列番号3の配列に、少なくとも50%の配列同一性を持つ配列の可変軽鎖CDR3を含む抗体。好ましくは、配列同一性は、少なくとも60%、70%、80%、85%、より好ましくは少なくとも90%である。最も好ましくは、CDR3は配列番号3と同一である。再び、この抗体は、配列番号1の配列に、少なくとも75%、好ましくは80%、85%、90%、95%、または最も好ましくは100%のアミノ酸同一性を持つ配列の16アミノ酸ALKエピトープペプチドに結合する。また、抗体は、10nM未満、好ましくは7nM未満のKdの、ALKエピトープペプチドに対するアフィニティーを有する。
本発明のさらに別の側面は、前記抗体の発現ベクターで形質転換された宿主細胞を、前記抗体の合成を可能にする条件下で培養し、そして前記培養から前記抗体を回収する工程を含む、本発明の抗体の産生である。
材料および方法
一般的に、本発明の実施は、別に示さない限り、化学、分子生物学、組換えDNA技術、免疫学(特に、例えば抗体技術)の慣用的な技術、およびポリペプチド調製における標準的技術を使用する。例えば、Sambrook, FritschおよびManiatis, Molecular Cloning: Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989); Antibody Engineering Protocols (Methods in Molecular Biology), 510, Paul, S., Humana Pr (1996); Antibody Engineering: A Practical Approach (Practical Approach Series, 169), McCafferty監修, Irl Pr (1996); Antibodies:
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抗体−抗原相互作用に関する豊富な構造的研究において、重鎖の相補性決定領域3(CDR−H3)中の残基は、一般的に抗原への大部分の実質的な接触に寄与することが見いだされた(ChothiaおよびLesk、1987; Chothiaら、1985;
Padlan、1994)。本発明者らは、本発明者らが最近記載した酵母2ハイブリッド抗原−抗体相互作用スクリーニング技術を適用して、ランダム化した合成CDR−H3配列の4つのscFvライブラリーをスクリーニングすることによって、抗原結合性s
cFvを直接単離した(Auf der Maurら、2002)。4つのライブラリーは、4つの異なる安定ヒトscFvフレームワークに基づき、この中で、可変重鎖の第三のCDRループ(VH−CDR3)内の7つのアミノ酸がランダム化された。標準的PCRクローニング技術によって、ランダム化部分を導入した。「品質管理」と称される酵母スクリーニング系によって、ヒト・チロシン受容体キナーゼ未分化リンパ腫キナーゼ(ALK)の細胞外ドメイン由来の16アミノ酸ペプチドに対して、scFvライブラリーをスクリーニングした(Auf der Maurら、2001; Auf der Maurら、2004)。簡潔には、品質管理技術は、ヒト可変軽鎖(VL)および可変重鎖(VH)の天然プールから、安定性、可溶性および発現収率などの好ましい生物物理学的特性を持つVLおよびVHの組み合わせを同定するための、抗原独立性イントラボディ選択系である。第一のスクリーニング周期後、4つのscFvライブラリーの1つから、1つの有望でそして特異的な結合剤を単離した。この特定のscFvを、フレームワークFW4.4ライブラリーから得た。FW4.4(配列番号20)は、古典的で柔軟なグリシン−セリンリンカー(GGGGS)4によって、VH3ドメインに連結された、VLドメイン(ラムダ1)からなる。FW4.4のVH CDR3は、13アミノ酸を含む(DAGIAVAGTGFDY;配列番号18)。ライブラリーを構築するため、縮重オリゴヌクレオチドを用いた標準的PCRクローニング法によって、VH CDR3の中央部分をランダム化した(DAXXXXXXXGFDY)。最後の2残基(AspおよびTyr)の構造的重要性が多くの場合で立証されているため、これらを不変のまま維持した(ChothiaおよびLesk、1987)。ライブラリーの複雑性を取り扱い可能な次元に留めるため、残りの残基は修飾しなかった。Gal4の転写活性化ドメインへのC末端融合体として、酵母発現ベクター(pLib1)中に、scFvライブラリーをクローニングした(Auf der Maurら、2002)。
より高いアフィニティーを持つscFvを得るため、突然変異誘発および酵母における第二のスクリーニング周期による、さらなるアフィニティー成熟プロセスに、この一次結合剤を供した。アフィニティー成熟を可能にする際、Alk LBDペプチドと一次結合剤の相互作用によって駆動されるレポーター遺伝子活性化を弱めるため、LexA Alk LBDペプチド融合タンパク質の発現レベルを減少させた。pBait1ベクター上の強いアクチンプロモーターを、ADHプロモーター(アルコールデヒドロゲナーゼ)の一部切除され、そしてしたがってより活性でない型と交換して、pBait3を生じた。一次結合剤の存在下でのベイト発現レベルのこの減少は、ヒスチジンを欠き、そして5mM 3−ATを含有するプレート上での増殖を阻害するのに十分であった。可変軽鎖内のCDR3の部分をランダム化することによって、アフィニティー成熟のための、一次結合剤の突然変異誘発を達成した。相同組換えによって、酵母中でこれを直接行った(Schaerer−BrodbeckおよびBarberis、2004)。FW4.4のVL
CDR3は、11アミノ酸(配列番号14: GTWDSSLSGVV)を含む。最初の2つの位は、第一の位がGly、AlaまたはGlnのいずれかをコードし、そして第二の位がThr、SerまたはAlaをコードするように、部分的にランダム化された。VL CDR3内の5〜8位では、すべてのアミノ酸残基を可能にした。残りの位は不変のままにした。PCRによってランダム化を導入した。生じたPCR産物は、356bpのサイズを有し、そして267bpの上流および27bpの下流フレームワーク配列を持つランダム化CDRカセットを含んだ。この産物は、いわゆるドナーPCR断片であり、該断片は、ターゲットベクターに対する相同性を所持する。ターゲットベクターは、Gal4の活性化ドメインに融合した一次結合剤をコードする酵母プラスミド(pLib1)
である。相同組換えの効率を改善し、そして続くスクリーニングにおいて偽陽性を排除するため、ターゲットベクター中のCDR−L3をわずかに修飾した。ユニークなSacI制限部位をVL CDR3の中央に導入し、これによって融合タンパク質のscFvコード部分にフレームシフトが起こり、そしてAlk LBDに結合不能な一部切除タンパク質が生じる。さらに、SacI部位は、ターゲットベクターの直線化を可能にし、これによって、酵母における組換え効率が増進する。
CDR3は、ランダム化VL CDR3に交換された。これによって、レポーター遺伝子発現を活性化し、そしてAlk LBDペプチドとの相互作用に際して選択プレート上での増殖を可能にするであろう、新規VL CDR3配列を持つ、完全に機能する融合タンパク質を発現する、環状プラスミドの再構築が可能になる。
新たに同定されたscFvが、生存細胞表面上の膜貫通ヒトALKタンパク質もまた認識可能であるかどうかを試験するため、一過性にトランスフェクションされたHELA細胞の免疫染色実験を実行した。ESBA521は、ポリクローナル抗体に匹敵する方式で、ALKタンパク質と反応する(図4)。対照実験において、フレームワーク4.4 scFvは、ヒトALKと反応しないことが示された。マウス抗原性ペプチドは、ヒトペプチド配列と2つのアミノ酸位が異なるにすぎないが、驚くべきことに、ESBA521は、ヒトAlkタンパク質にしか結合せず、対応するマウスタンパク質には結合しない。対照的に、ポリクローナルALK抗体は、ヒトおよびマウスタンパク質の両方を認識する。したがって、ESBA521の結合は、細胞表面でのヒトALKタンパク質に特異的である。
抗原結合をさらに改善するため、この場合は、VHのCDR2をPCR突然変異誘発によって変化させ、そして酵母レシピエント内に形質転換し、該レシピエント中で、類似の方式でCDR2での相同組換えが強制されることを除いて、第一周期のアフィニティー成熟と同じ2ハイブリッドアプローチを用いて、さらなる周期のアフィニティー成熟において、ESBA521を出発scFvとして用いた。再び、制限部位をCDR2中に導入して、ターゲットプラスミドの直線化を可能にした。CDR2中に導入した突然変異を表2に示す。
プレイオトロフィンに結合することが知られるアミノ酸(396〜406)(Stoica 2001)を含む、ALKのアミノ酸391〜406に結合する、抗体ESBA5
21の前駆体を選択した。前駆体のCDR中のさらなるアミノ酸をランダム化することによって、そしてALK細胞外ドメイン(ECD)の天然背景中に含有される391〜406アミノ酸ストレッチに結合する結合剤に関して選択することによって、ESBA521を得た。これらの手順によって、PTNに結合するのと同じ部位で、高いアフィニティーでALK ECDに結合する抗体が生じた。本発明者らの知る限りでは、これは、ALKのPTN結合性部位を特異的にターゲティングする最初のモノクローナル抗体である。したがって、ESBA521は、ALK ECDに高いアフィニティーを有すると予測され、そしてALK受容体に対する結合に関して、プレイオトロフィン(PTN)およびミッドカイン(MK)と効率的に競合し、そしてしたがって、ESBA521抗体は、ALKタンパク質へのMKおよびPTNリガンド結合両方を阻害するのに適している。
第一のアッセイにおいて、ALKが癌増殖を律速する役割を決定するため、異種移植片実験を準備する(Powers 2002)。簡潔には、10%ウシ胎児血清を補った2000万細胞/ml培地のU87MG細胞懸濁物を調製する。これらをNU/NUマウス内に注射して、そして生じた腫瘍を測定する。試験抗体、好ましくは全長抗体、より好ましくはpeg化抗体を導入し、そして腫瘍増殖を評価する。
Claims (18)
- ヒト未分化リンパ腫キナーゼ(ALK)タンパク質に結合する抗体であって、
配列番号4の可変重鎖(VH)配列またはその変異配列であるVH配列、および
配列番号5の可変軽鎖(VL)配列を含み、
変異配列の場合、
配列番号4のVH CDR2は配列番号74、75、78、83、85、86および87からなる群より選択されるVH CDR2配列で置換され、
前記抗体がscFv抗体、Fab断片、IgG、またはIgMである、抗体、但し、該抗体は配列番号4のVH配列および配列番号5のVL配列を含むscFv抗体ではない、前記抗体。 - 請求項1の抗体であって、アミノ酸残基391±3および406±3(配列番号91)、またはアミノ酸391〜406(配列番号1)に渡る領域の断片であるか、該領域を含むエピトープに結合する、前記抗体。
- 30nM以下のKdによって特徴付けられるALKエピトープペプチドに対するアフィニティーを有する、請求項1または2のいずれか1項の抗体。
- 10nM以下のKdによって特徴付けられるALKエピトープペプチドに対するアフィニティーを有する、請求項1または2のいずれか1項の抗体。
- 3nM未満のKdによって特徴付けられるALKエピトープペプチドに対するアフィニティーを有する、請求項1または2のいずれか1項の抗体。
- scFvであり、構造NH2−VL−リンカー−VH−COOHまたはNH2−VH−リンカー−VL−COOHを含み、リンカーが配列番号16の配列を有する、請求項1の抗体。
- 放射標識または毒素標識されている、請求項の1から6のいずれか一項の抗体。
- 薬剤または診断ツールとしての、請求項1から7のいずれか一項の抗体。
- 癌または腫瘍の治療用の薬剤の製造のための、請求項1から8のいずれか一項の抗体の使用。
- 薬剤が、ALKおよび/またはALKが仲介するシグナル伝達へのMKおよび/またはPTN結合の阻害に適している、請求項9記載の使用。
- 薬剤が、抗癌剤、例えばメトトレキサートと併用して、前記抗体を投与するのに適した併用薬剤である、請求項9または10の使用。
- 治療が、神経芽細胞腫、神経膠芽腫、横紋筋肉腫、乳癌、黒色腫、膵臓癌、B細胞NHL、甲状腺癌、小細胞肺癌、網膜芽細胞腫、ユーイング肉腫、前立腺癌、結腸癌、脂肪腫、脂肪肉腫、線維肉腫、特に神経膠芽腫、神経芽細胞腫および横紋筋肉腫の治療である、請求項9の使用。
- 請求項1〜8のいずれか一項の抗体をコードする、DNA。
- 請求項13のDNAを含む、発現ベクター。
- 請求項14の発現ベクターで形質転換された宿主細胞。
- 大腸菌(E. coli)細胞である、請求項15の宿主細胞。
- 請求項1〜7のいずれか一項の抗体の産生のための方法であって、前記抗体の合成を可能にする条件下で、請求項15または16の宿主細胞を培養し、そして前記培養から該抗体を回収する工程を含む、前記方法。
- 請求項1〜7のいずれか一項の抗体を含有する薬剤。
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