JP5809058B2 - 第11因子発現の調節 - Google Patents
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Description
本出願は、35 U.S.C.§119(e)の下で、米国仮特許出願番号61/105,772(2008年10月15日出願)及び米国仮特許出願番号61/174,461(2009年4月30日出願)に対する優先権を主張する。上記出願のいずれも、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本出願は、配列一覧表と共に電子フォーマットで出願されている。配列一覧表は、2009年10月15日に創出されて、サイズが92 Kbである、20091015_BIOL0107WOSEQ.txtと題するファイルとして提供される。配列一覧表の電子フォーマット中の情報は、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本発明の態様は、動物において第11因子のmRNA及びタンパク質の発現を低下させるための方法、化合物、及び組成物を提供する。そのような方法、化合物、及び組成物は、血栓塞栓合併症を治療、予防、又は改善するのに有用である。
凝固カスケードは、主要な経路である組織因子経路(又は「外因系経路」)と接触活性化経路(又は「内因系経路」)という、2つの岐路を通して始動され得る。
少なくとも3つの機序が凝固カスケードを抑制する、即ち、活性化プロテインC、アンチトロンビン、及び組織因子経路阻害剤の作用である。活性化プロテインCは、補因子のVa及びVIIIaを分解するセリンプロテアーゼである。プロテインCは、トロンボモジュリンを伴うトロンビンによって活性化されて、機能するには補酵素のプロテインSを必要とする。アンチトロンビンは、セリンプロテアーゼ:トロンビン、Xa、XIIa、XIa、及びIXaを阻害する、セリンプロテアーゼ阻害剤(セルピン)である。組織因子経路阻害剤は、Xaの作用とTF-VIIa複合体を阻害する(Schwartz AL et al., Trends Cardiovasc Med. 1997; 7:234-239)。
血栓症は、血塊の病的発展であり、血塊が身体の別の部分へ移動して臓器機能に干渉するときに、塞栓症が生じる。血栓塞栓症は、深在性静脈血栓症、肺塞栓症、心筋梗塞、及び卒中のような病気を引き起こす場合がある。重要にも、血栓塞栓症は、毎年200万を超すアメリカ人に影響を及ぼす罹病の主因である(Adcock et al. American Journal of Clinical Pathology. 1997;108:434-49)。血栓症のほとんどの症例は、後天的な外因性の問題、例えば、外科手術、癌、不動性状態によるが、遺伝的素因による症例もある。例えば、抗リン脂質抗体症候群、常染色体優性状態、第V因子ライデンである(Bertina RM et al. Nature 1994; 369: 64-67)。
最も一般的に使用されている抗凝固薬である、ワルファリン、ヘパリン、及び低分子量ヘパリン(LMWH)は、いずれも重大な欠点を保有する。
特殊な定義を提供しなければ、本明細書に記載する、分析化学、合成有機化学、並びに医化学及び薬化学に関連して利用される命名法とその手順及び技術は、当該技術分野においてよく知られていて、一般的に使用されるものである。化学合成と化学分析では、標準技術を使用してよい。許容される場合、すべての特許、特許出願、公開出願と他の公開公報、米国立生物工学情報センター(NCBI)のようなデータベースより入手可能なGENBANK登録番号と関連配列情報、並びに、本明細書の開示を通して言及される他のデータは、その全体だけでなく、本明細書において考察される文書のその部分についても、参照により本明細書に組み込まれる。
「2'-O-メトキシエチル」(又は、2'-MOE及び2'-O(CH2)2-OCH3)は、フロシル環の2'位のO-メトキシ-エチル修飾を意味する。2'-O-メトキシエチル修飾された糖は、修飾糖である。
「5-メチルシトシン」は、メチル基が5'位へ付いて修飾されたシトシンを意味する。5-メチルシトシンは、修飾ヌクレオ塩基である。
「改善」は、関連する疾患、障害、又は状態の少なくとも1つの指標、徴候、又は症状の軽減に言及する。指標の重症度は、当業者に知られている、主観的又は客観的な尺度によって決定してよい。
「解毒オリゴヌクレオチド」は、アンチセンス化合物に相補的でそれとハイブリダイズすることが可能であるオリゴヌクレオチドを含んでなる解毒化合物を意味する。
「抗体」は、抗原と何らかのやり方で特異的に反応することを特徴とする分子に言及して、ここで抗体と抗原は、他方に関してそれぞれ定義される。抗体は、完全抗体分子、又は、重鎖、軽鎖、Fab領域、及びFc領域のような、そのあらゆる断片又は領域に言及する場合がある。
「アンチセンス阻害」は、標的核酸に相補的なアンチセンス化合物の存在下での標的核酸レベル又は標的タンパク質レベルの、そのアンチセンス化合物の非存在下での標的核酸レベル又は標的タンパク質レベルと比較した低下を意味する。
「二環式核酸」又は「BNA」は、ヌクレオシド又はヌクレオチドのフラノース部分に、フラノース環上の2つの原子を連結する架橋が含まれることによって二環式環系が形成される、ヌクレオシド又はヌクレオチドに言及する。
「化学的に異なる領域」は、同じアンチセンス化合物の別の領域とは何らかのやり方で化学的に異なる、アンチセンス化合物の領域に言及する。例えば、2'-O-メトキシエチルヌクレオチドを有する領域は、2'-O-メトキシエチル修飾のないヌクレオチドを有する領域とは化学的に異なる。
「同時投与」は、2以上の薬剤の個体への投与を意味する。2以上の薬剤は、単一の医薬組成物にあっても、別々の医薬組成物にあってもよい。2以上の薬剤のそれぞれは、同じ又は異なる投与経路を介して投与してよい。同時投与には、並行又は連続の投与が含まれる。
「連続ヌクレオ塩基」は、互いにすぐ隣りにあるヌクレオ塩基を意味する。
「血栓塞栓合併症のリスク状態にある動物を同定すること」は、血栓塞栓合併症と診断された動物を同定すること、又は血栓塞栓合併症を発症する素因がある動物を同定することを意味する。血栓塞栓合併症を発症する素因がある個体には、不動性状態、外科手術(特に、整形外科手術)、悪性腫瘍、妊娠、高齢、経口避妊薬の使用、及び先天的又は後天的な血栓形成促進性の凝固障害が含まれる、血栓塞栓合併症の1以上の危険因子を有するものが含まれる。そのような同定は、個体の病歴を評価することと標準的な臨床検査又は評価が含まれる、どの方法によっても達成してよい。
「個体」は、治療又は療法のために選択されるヒト又は非ヒト動物を意味する。
「ヌクレオシド間連結」は、ヌクレオシド間の化学結合に言及する。
「ミスマッチ」又は「非相補的なヌクレオ塩基」は、第一核酸のヌクレオ塩基が第二又は標的核酸の対応するヌクレオ塩基と対合することが可能でない場合に言及する。
「修飾ヌクレオ塩基」は、アデニン、シトシン、グアニン、チミジン、又はウラシル以外のあらゆるヌクレオ塩基に言及する。「非修飾ヌクレオ塩基」は、プリン塩基のアデニン(A)及びグアニン(G)と、ピリミジン塩基のチミン(T)、シトシン(C)、及びウラシル(U)を意味する。
「修飾糖」は、天然糖からの置換又は変化に言及する。
「天然に存在するヌクレオシド間連結」は、3'から5'へのホスホジエステル連結を意味する。
「核酸」は、モノマーヌクレオチドより構成される分子に言及する。核酸には、リボ核酸(RNA)、デオキシリボ核酸(DNA)、一本鎖核酸、二本鎖核酸、低分子干渉リボ核酸(siRNA)、及びミクロRNA(miRNA)が含まれる。
「ヌクレオ塩基配列」は、どの糖、連結、又はヌクレオ塩基の修飾とも無関係な、連続ヌクレオ塩基の順序を意味する。
「ヌクレオシド模倣体」には、例えば、モルホリノ、シクロヘキセニル、シクロヘキシル、テトラヒドロピラニル、二環若しくは三環糖模倣体(例、非フラノース糖単位)を有するヌクレオシド模倣体のように、オリゴマー化合物の1以上の位置で、その糖、又はその糖と塩基、そして(必ずではないが)連結を置き換えるために使用される構造が含まれる。ヌクレオチド模倣体には、例えば、ペプチド核酸又はモルホリノ(-N(H)-C(=O)-O-又は他の非ホスホジエステル連結によって連結されるモルホリノ)のように、オリゴマー化合物の1以上の位置で、そのヌクレオシドとその連結を置き換えるために使用される構造が含まれる。糖代用物は、やや広義では、ヌクレオシド模倣体と重なるが、糖単位(フラノース環)の置き換えだけを示すものとする。本明細書に提供されるテトラヒドロピラニル環は、フラノース糖基がテトラヒドロピラニル環系で置き換えられた糖代用物の1例の例示である。
「オリゴマー化合物」又は「オリゴマー」は、核酸分子の少なくとも1つの領域へハイブリダイズすることが可能である、連結したモノマーサブユニットのポリマーを意味する。
「非経口投与」は、注射又は注入による投与を意味する。非経口投与には、皮下投与、静脈内投与、筋肉内投与、動脈内投与、腹腔内投与、又は頭蓋内投与(例、鞘内又は脳室内投与)が含まれる。
「医薬組成物」は、個体へ投与するのに適した物質の混合物を意味する。例えば、医薬組成物は、1以上の活性薬剤と無菌の水溶液剤を含む場合がある。
「副作用」は、治療薬に起因する、望まれる効果以外の生理学的反応を意味する。ある態様において、副作用には、注射部位での反応、肝機能検査異常、腎機能異常、肝毒性、腎毒性、中枢神経系の異常、ミオパシー、及び倦怠感が含まれる。例えば、血清アミノトランスフェラーゼレベルの増加は、肝毒性又は肝機能異常を示す場合がある。例えば、ビリルビンの増加は、肝毒性又は肝機能異常を示す場合がある。
「特異的にハイブリダイズし得る」は、所望の効果を引き起こすのに十分な度合いの相補性をアンチセンスオリゴヌクレオチドと標的核酸の間に有する一方で、特異結合が所望される条件の下で(即ち、in vivo アッセイや療法的治療の場合の生理学的条件の下で)、非標的核酸に対してはほとんど又は全く効果を示さないアンチセンス化合物に言及する。
「標的核酸」、「標的RNA」、及び「標的RNA転写物」は、いずれも、アンチセンス化合物によって標的指向されることが可能な核酸に言及する。
「血栓塞栓合併症」は、血栓に起因する塞栓症を伴うあらゆる疾患、障害、又は状態を意味する。そのような疾患、障害、及び状態の例には、血栓症、塞栓症、及び血栓塞栓症のカテゴリーが含まれる。ある態様において、そのような疾患、障害、及び状態には、深在性静脈血栓症、肺塞栓症、心筋梗塞、及び卒中が含まれる。
「非修飾ヌクレオチド」は、天然に存在するヌクレオ塩基、糖部分、及びヌクレオシド間連結より構成されるヌクレオチドを意味する。ある態様において、非修飾ヌクレオチドは、RNAヌクレオチド(即ち、β-D-リボヌクレオシド)又はDNAヌクレオチド(即ち、β-D-デオキシリボヌクレオシド)である。
本発明の態様は、第11因子mRNA及びタンパク質の発現を減少させるための方法、化合物、及び組成物を提供する。
(i)本明細書に記載のような第11因子特異的阻害剤;及び、代替的に
(ii)本明細書に記載のような追加の薬剤又は療法を含む。
ある態様において、その修飾オリゴヌクレオチドは、20の連結ヌクレオシドからなる。
ある態様において、修飾オリゴヌクレオチドのヌクレオ塩基配列は、SEQ ID NO: 1又はSEQ ID NO: 2又はSEQ ID NO: 6又はSEQ ID NO: 274のヌクレオ塩基配列に100%相補的である。
ある態様において、前記少なくとも1つの二環糖は、4'-(CH2)n-O-2'架橋(ここでnは、1又は2である)を含む。
ある態様において、前記少なくとも1つの修飾糖は、2'-O-メトキシエチル基を含む。
本発明の態様は、12〜30の連結ヌクレオシドからなり、SEQ ID NO: 15〜241、SEQ ID NO: 15〜269、又はSEQ ID NO: 242〜269に引用されるヌクレオ塩基配列の間より選択されるヌクレオ塩基配列の少なくとも8、少なくとも10、少なくとも12、少なくとも14、少なくとも16、少なくとも18、又は20の連続ヌクレオ塩基を含んでなるヌクレオ塩基配列を有して、少なくとも1つのテトラヒドロピラン修飾ヌクレオシド(ここでは、テトラヒドロピラン環がフラノース環に置き換わっている)を含んでなる、修飾オリゴヌクレオチドを含んでなる化合物を提供する。
ある態様において、本化合物は、修飾ヌクレオ塩基を含んでなる、少なくとも1つのヌクレオシドを有する。ある態様において、修飾ヌクレオ塩基は、5-メチルシトシンである。
(i)連結デオキシヌクレオシドからなるギャップセグメント;
(ii)連結ヌクレオシドからなる5'ウィングセグメント;
(iii)連結ヌクレオシドからなる3'ウィングセグメントを含み、ここでギャップセグメントは、5'ウィングセグメントと3'ウィングセグメントのすぐ隣りでその間に位置して、そしてここでそれぞれのウィングセグメントのそれぞれのヌクレオシドは、修飾糖を含む。いくつかのそのような態様において、修飾オリゴヌクレオチド中のそれぞれのシトシンは、5-メチルシトシンである。
(i)10の連結デオキシヌクレオシドからなるギャップセグメント;
(ii)5の連結ヌクレオシドからなる5'ウィングセグメント;
(iii)5の連結ヌクレオシドからなる3'ウィングセグメントを含み、ここでギャップセグメントは、5'ウィングセグメントと3'ウィングセグメントのすぐ隣りでその間に位置して、そしてここでそれぞれのウィングセグメントのそれぞれのヌクレオシドは、2'-O-メトキシエチル糖を含み;そしてここでそれぞれのヌクレオシド間連結は、ホスホロチオエート連結である。いくつかのそのような態様において、修飾オリゴヌクレオチド中のそれぞれのシトシンは、5-メチルシトシンである。
(i)14の連結デオキシヌクレオシドからなるギャップセグメント;
(ii)3の連結ヌクレオシドからなる5'ウィングセグメント;
(iii)3の連結ヌクレオシドからなる3'ウィングセグメントを含み、ここでギャップセグメントは、5'ウィングセグメントと3'ウィングセグメントのすぐ隣りでその間に位置して、そしてここでそれぞれのウィングセグメントのそれぞれのヌクレオシドは、2'-O-メトキシエチル糖を含み;そしてここでそれぞれのヌクレオシド間連結は、ホスホロチオエート連結である。いくつかのそのような態様において、修飾オリゴヌクレオチド中のそれぞれのシトシンは、5-メチルシトシンである。
(i)13の連結デオキシヌクレオシドからなるギャップセグメント;
(ii)2の連結ヌクレオシドからなる5'ウィングセグメント;
(iii)5の連結ヌクレオシドからなる3'ウィングセグメントを含み、ここでギャップセグメントは、5'ウィングセグメントと3'ウィングセグメントのすぐ隣りでその間に位置して、そしてここでそれぞれのウィングセグメントのそれぞれのヌクレオシドは、2'-O-メトキシエチル糖を含み;そしてここでそれぞれのヌクレオシド間連結は、ホスホロチオエート連結である。いくつかのそのような態様において、修飾オリゴヌクレオチド中のそれぞれのシトシンは、5-メチルシトシンである。
ある態様において、「投与すること」は、深在性静脈血栓症又は肺塞栓症を予防する。
ある態様において、本化合物は、アスピリン、クロピドグレル、ジピリダモール、ヘパリン、レピルジン、チクロピジン、ワルファリン、アピキサバン、リバロキサバン、及びLOVENOX(ロベノックス)より選択される群のいずれとも同時投与される。
ある態様において、第Xa因子阻害剤は、リバロキサバン(Rivaroxaban)、LY517717、YM150、アピキサバン、PRT054021、及びDU-176bのいずれでもよい。
本発明の態様は、血栓塞栓合併症を発症するリスク状態にある動物を同定すること、及び12〜30の連結ヌクレオシドからなる修飾オリゴヌクレオチドを含んでなる化合物の治療有効量をそのリスク状態の動物へ投与することを含んでなる方法を提供し、ここで修飾オリゴヌクレオチドは、第11因子核酸に相補的である。
本発明の態様は、凝固障害を有する動物を同定すること、及び12〜30の連結ヌクレオシドからなる修飾オリゴヌクレオチドを含んでなる化合物の治療有効量をその動物へ投与することを含んでなる方法を提供し、ここで修飾オリゴヌクレオチドは、第11因子核酸に相補的である。
ある態様において、解毒薬は、修飾オリゴヌクレオチドに相補的なオリゴヌクレオチドである。
オリゴマー化合物には、限定されないが、オリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオシド、オリゴヌクレオチド類似体、オリゴヌクレオチド模倣体、アンチセンス化合物、アンチセンスオリゴヌクレオチド、及びsiRNAが含まれる。オリゴマー化合物は、標的核酸に対して「アンチセンス」で有り得て、それが水素結合により標的核酸へのハイブリダイゼーションを起こすことが可能であることを意味する。
ある態様において、第11因子核酸へ標的指向されるアンチセンス化合物は、阻害活性の増強、標的核酸への結合親和性の増加、又は in vivo ヌクレアーゼによる分解への抵抗性といった特性をそのアンチセンス化合物へ付与する、パターン配置された化学修飾サブユニット、又はモチーフを有する。
ある態様において、第11因子核酸へ標的指向されるアンチセンス化合物は、3-14-3ギャップマーモチーフを保有する。
ある態様において、第11因子核酸へ標的指向されるアンチセンス化合物は、5-8-5ギャップマーモチーフを保有する。
ある態様において、第11因子核酸へ標的指向されるアンチセンス化合物は、ギャップ拡張モチーフを有する。
第11因子をコードするヌクレオチド配列には、制限なしに、以下が含まれる:GENBANK登録番号NM_000128.3(1999年3月24日にGENBANKに初めて寄託、本明細書では、SEQ ID NO: 1として取り込む);NT_022792.17[19598000〜19624000が切断された](2000年11月29日にGENBANKに初めて寄託、本明細書では、SEQ ID NO: 2として取り込む);GENBANK登録番号NM_028066.1(2002年6月2日にGENBANKに初めて寄託、本明細書では、SEQ ID NO: 6として取り込む);及び、エクソン1-15 GENBANK登録番号NW_001118167.1(2006年3月28日にGENBANKに初めて寄託、本明細書では、SEQ ID NO: 274として取り込む)。
いくつかの態様では、本明細書に開示のアンチセンス化合物と第11因子核酸の間でハイブリダイゼーションが起こる。最も一般的なハイブリダイゼーションの機序は、核酸分子の相補的なヌクレオ塩基の間での水素結合(例、ワトソン-クリック、フーグスティーン、又は逆フーグスティーン水素結合)を伴う。
ある配列が標的核酸へ特異的にハイブリダイズ可能であるかどうかを判定する方法は、当該技術分野でよく知られている。ある態様において、本明細書に提供するアンチセンス化合物は、第11因子核酸と特異的にハイブリダイズ可能である。
アンチセンス化合物と標的核酸は、アンチセンス化合物の十分な数のヌクレオ塩基が、所望の効果(例、第11因子核酸のような標的核酸のアンチセンス阻害)が生じるように、標的核酸の対応するヌクレオ塩基と水素結合することができるとき、互いに相補的である。
本明細書に提供するアンチセンス化合物はまた、特別なヌクレオチド配列、SEQ ID NO: 、又は特定のIsis番号によって表される化合物、又はその部分に対して一定の同一性パーセントを有し得る。本明細書に使用するように、アンチセンス化合物は、それが同一のヌクレオ塩基対合能力を有するならば、本明細書に開示される配列と同一である。例えば、開示されるDNA配列においてチミジンの代わりにウラシルを含有するRNAは、ウラシルとチミジンがともにアデニンと対合するので、そのDNA配列と同一であるとみなされよう。本明細書に記載するアンチセンス化合物の短縮又は延長バージョン、並びに本明細書に提供するアンチセンス化合物に対して非同一の塩基を有する化合物も考慮される。この非同一の塩基は、互いに隣接していても、アンチセンス化合物全体に分散していてもよい。アンチセンス化合物の同一性パーセントは、比較される配列に対する、同一の塩基対合を有する塩基の数に従って計算される。
ヌクレオシドは、塩基-糖の組合せである。ヌクレオシドのヌクレオ塩基(塩基としても知られる)部分は、通常、複素環式塩基部分である。ヌクレオチドは、ヌクレオシドの糖部分へ共有結合したリン酸基がさらに含まれるヌクレオシドである。ペントフラノシル糖が含まれるヌクレオシドでは、リン酸基は、糖の2'、3'又は5'ヒドロキシル部分へ連結することができる。オリゴヌクレオチドは、隣接ヌクレオシドが互いに共有結合することにより形成されて、線状のポリマーオリゴヌクレオチドを形成する。オリゴヌクレオチド構造の内部で、リン酸基は、一般に、オリゴヌクレオチドのヌクレオシド間連結を形成するものとして言及される。
RNA及びDNAの天然に存在するヌクレオシド間連結は、3'から5'へのホスホジエステル連結である。1以上の修飾された、即ち、天然に存在しないヌクレオシド間連結を有するアンチセンス化合物は、しばしば、例えば、細胞取込みの増強、核酸標的への親和性の増強、及びヌクレアーゼの存在下での安定性の増加のような望ましい特性のために、天然に存在するヌクレオシド間連結を有するアンチセンス化合物に優って選択される。
本発明のアンチセンス化合物は、糖基が修飾された1以上のヌクレオシドを含有してもよい。そのような糖修飾ヌクレオシドは、ヌクレアーゼ安定性の増強、結合親和性の増加、又は他の何らかの有益な生物学的特性をアンチセンス化合物へ付与する場合がある。ある態様において、ヌクレオシドは、化学修飾リボフラノース環部分を含む。化学修飾リボフラノース環の例には、制限なしに、置換基(5'及び2'置換基が含まれる)の付加、ノンジェミナル環原子の架橋形成による二環式核酸(BNA)の形成、リボシル環酸素原子のS、N(R)、又はC(R1)(R)2(R=H、C1〜C12アルキル、又は保護基)での置き換え、及びこれらの組合せが含まれる。化学修飾糖の例には、2'-F-5'-メチル置換ヌクレオシド(他の開示された5',2'-ビス置換ヌクレオシドについてのPCT国際出願WO2008/101157、2008年8月21日公開、を参照のこと)、又はリボシル環酸素原子のSでの置き換えと2'位でのさらなる置換(公開の米国特許出願US2005-0130923、2005年6月16日公開、を参照のこと)、またあるいは、BNAの5'置換(PCT国際出願WO2007/134181、2007年11月22日公開、を参照のこと。ここでLNAは、例えば5'-メチル又は5'-ビニル基で置換される)が含まれる。
修飾糖部分を有するヌクレオチドにおいて、ヌクレオ塩基部分(天然、修飾又はそれらの組合せ)は、適正な核酸標的とのハイブリダイゼーションのために維持される。
ヌクレオ塩基(又は塩基)の修飾又は置換は、天然に存在するか又は合成の非修飾ヌクレオ塩基より構造的に識別可能であるが、機能的には、それと交換可能である。天然のヌクレオ塩基と修飾ヌクレオ塩基は、ともに水素結合に参画することが可能である。そのようなヌクレオ塩基修飾は、ヌクレアーゼ安定性、結合親和性、又は他の何らかの有益な生物学的特性をアンチセンス化合物へ付与することができる。修飾ヌクレオ塩基には、例えば、5-メチルシトシン(5-me-C)のような、合成及び天然のヌクレオ塩基が含まれる。5-メチルシトシン置換が含まれる、あるヌクレオ塩基置換は、アンチセンス化合物の標的核酸への結合親和性を高めるのに特に有用である。例えば、5-メチルシトシン置換は、核酸二重鎖の安定性を0.6〜1.2℃だけ高めることが示された(Sanghvi, Y. S., Crooke, S. T. and Lebleu, B.(監修)、「アンチセンスの研究及び応用(Antisense Research and Applications)」CRCプレス、ボカラトン(1993)、276-278 頁)。
アンチセンスオリゴヌクレオチドは、医薬組成物又は製剤の製造のための医薬的に許容される活性又は不活性物質と混合してよい。組成物と、医薬組成物の製剤化のための方法は、限定されないが、投与の経路、疾患の程度、投与すべき用量が含まれるいくつかの判断基準に依存している。
アンチセンス化合物は、生じるアンチセンスオリゴヌクレオチドの活性、細胞分布、又は細胞取込みを高める、1以上の部分又はコンジュゲートへ共有的に連結させることができる。典型的なコンジュゲート基には、コレステロール部分と脂質部分が含まれる。追加のコンジュゲート基には、炭水化物、リン脂質、ビオチン、フェナジン、葉酸、フェナントリジン、アントラキノン、アクリジン、フルオレセイン、ローダミン、クマリン、及び色素が含まれる。
第11因子核酸のレベル、活性、又は発現に対するアンチセンス化合物の効果について、多様な細胞種において in vitro で試験することができる。そのような分析に使用する細胞種は、市販ベンダー(例、American Type Culture Collection、バージニア州マナッサス;Zen-Bio 社、ノースカロライナ州リサーチトライアングルパーク;Clonetics Corporation、メリーランド州ウォーカーズビル)より入手可能であり、ベンダーの説明書に従って、市販の試薬(例、Invitrogen Life Technologies、カリフォルニア州カールスバッド)を使用して培養される。例示の細胞種には、限定されないが、HepG2細胞、Hep3B細胞、及び初代培養肝細胞が含まれる。
本明細書に記載するのは、アンチセンスオリゴヌクレオチドでの細胞の処置についての方法であって、これは、他のアンチセンス化合物での処置のために適宜修飾することができる。
アンチセンスオリゴヌクレオチドを培養細胞の中へ導入するのに通常使用される1つの試薬には、カチオン性脂質トランスフェクション試薬、LIPOFECTIN(Invitrogen、カリフォルニア州カールスバッド)が含まれる。アンチセンスオリゴヌクレオチドをOPTI-MEM1(Invitrogen、カリフォルニア州カールスバッド)中のLIPOFECTINと混合して、アンチセンスオリゴヌクレオチドの所望の最終濃度と、典型的には100 nMアンチセンスオリゴヌクレオチドにつき2〜12μg/mLの範囲に及ぶLIPOFECTIN濃度を達成する。
常法によって、細胞をアンチセンスオリゴヌクレオチドで処置する。典型的には、アンチセンスオリゴヌクレオチド処置後16〜24時間で細胞を採取して、この時点で、当該技術分野で知られて本明細書に記載する方法によって、標的核酸のRNA又はタンパク質レベルを測定する。一般に、処置を多数の反復物で実施するとき。データは、その反復処置の平均として提示する。
RNA分析は、全細胞RNA又はポリ(A)+mRNAで実施することができる。RNA単離の方法は、当該技術分野でよく知られている。RNAは、当該技術分野でよく知られた方法を使用して、例えば、製造業者の推奨プロトコールに従って、TRIZOL試薬(Invitrogen、カリフォルニア州カールスバッド)を使用して調製する。
第11因子核酸のレベル又は発現の阻害は、当該技術分野で知られた多様な方法でアッセイすることができる。例えば、標的核酸レベルは、例えば、ノーザンブロット分析、競合的ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)、又は定量的リアルタイムPCRによって定量することができる。RNA分析は、全細胞RNA又はポリ(A)+mRNAで実施することができる。RNA単離の方法は、当該技術分野でよく知られている。ノーザンブロット分析も、当該技術分野では、常法である。定量的リアルタイムPCRは、簡便には、市販のABI PRISM 7600、7700、又は7900配列検出システム(PE-Applied Biosystems、カリフォルニア州フォスターシティより入手可能)を使用して、そして製造業者の説明書に従って使用して達成することができる。
標的RNAレベルの定量は、ABI PRISM 7600、7700、又は7900配列検出システム(PE-Applied Biosystems、カリフォルニア州フォスターシティ)を製造業者の説明書に従って使用する、定量的リアルタイムPCRによって達成することができる。定量的リアルタイムPCRの方法は、当該技術分野でよく知られている。
第11因子タンパク質レベルを測定することによって、第11因子核酸のアンチセンス阻害を評価することができる。第11因子のタンパク質レベルは、免疫沈降、ウェスタンブロット分析(イムノブロッティング)、酵素結合免疫吸着法(ELISA)、定量的タンパク質アッセイ、タンパク質活性アッセイ(例えば、カスパーゼ活性アッセイ)、免疫組織化学、免疫細胞化学又は蛍光活性化細胞ソーティング(FACS)のような、当該技術分野でよく知られた様々なやり方で評価又は定量することができる。標的へ指向される抗体は、抗体のMSRSカタログ(Aerie Corporation、ミシガン州バーミンガム)のような多様な供給源より同定して入手するか、又は当該技術分野でよく知られた慣用のモノクローナル又はポリクローナル抗体作製法により製造することができる。マウス、ラット、サル、及びヒトの第11因子の検出に有用な抗体が市販されている。
アンチセンス化合物、例えば、アンチセンスオリゴヌクレオチドについて、第11因子の発現を阻害して、aPTTの延長、正常なPTと連動したaPTT時間の延長、血小板第4因子(PF-4)の量の減少、並びに血栓形成の低下又は血栓形成時間の増加といった表現型の変化をもたらすその能力を評価するために、動物で試験する。試験は、正常な動物において、又は実験的な疾患モデルにおいて実施してよい。動物への投与のために、リン酸緩衝化生理食塩水のような医薬的に許容される希釈剤でアンチセンスオリゴヌクレオチドを製剤化する。投与には、腹腔内、静脈内、及び皮下のような非経口の投与経路が含まれる。アンチセンスオリゴヌクレオチドの投与量及び投薬頻度の計算は、当業者の能力内にあり、投与経路や動物体重のような要因に依存する。アンチセンスオリゴヌクレオチドでの処置の期間に続いて、肝臓組織よりRNAを単離して、第11因子核酸発現の変化を測定する。トロンビン産生アッセイを使用して、第11因子タンパク質レベルの変化も測定する。その上に、処置動物からの血漿を使用して、凝固時間(例、PT及びaPTT)に対する効果を判定する。
ある態様において、本明細書に提供する化合物は、ごくわずかな副作用を示す。副作用には、典型的には第11因子の標的化とは無関係である、動物中での炎症反応のような、アンチセンス化合物の投与に対する応答が含まれる。ある態様において、化合物は、動物により十分忍容される。忍容性の増加は、限定されないが、アンチセンス化合物のヌクレオチド配列、ヌクレオチドへの化学修飾、アンチセンス化合物中の非修飾及び修飾ヌクレオシドの特別なモチーフ、又はこれらの組合せが含まれる、いくつかの要因に依存する可能性がある。忍容性は、いくつかの要因によって決定される場合がある。そのような要因には、体重、臓器重量、肝機能、腎機能、血小板数、白血球数が含まれる。
ある態様において、本化合物又は組成物は、好ましい粘度をさらに示す。ある態様において、該化合物又は組成物の粘度は、165〜185 mg/mLの濃度で40 cP以下である。
特定の適応症
ある態様において、本発明は、本発明の1以上の医薬組成物を投与することを含んでなる、個体を治療する方法を提供する。ある態様において、個体は、血栓塞栓合併症を有する。ある態様において、個体は、限定されないが、深在性静脈血栓症、肺塞栓症、心筋梗塞、及び卒中のような、梗塞、血栓症、塞栓症、血栓塞栓症が含まれる血液凝固障害へのリスク状態にある。これには、血栓症のリスクをもたらす後天的な問題、疾患、又は障害(例えば、外科手術、癌、不動性状態、敗血症、アテローム性動脈硬化症、心房細動)、並びに遺伝的素因(例えば、抗リン脂質抗体症候群と常染色体優性状態、第V因子ライデン)のある個体が含まれる。ある態様において、個体は、抗凝固療法を必要とすると確認されている。そのような個体の例には、限定されないが、重大な整形外科手術(例、股関節/膝置換又は股関節骨折の手術)を受けている個体、並びに卒中を予防するために慢性治療の必要がある患者(心房細動に罹患している患者のような)が含まれる。ある態様において、本発明は、第11因子発現を個体において予防的に低下させるための方法を提供する。ある態様には、第11因子核酸へ標的指向されるアンチセンス化合物の治療有効量を個体へ投与することによって、それを必要とする個体を治療することが含まれる。
ある態様では、本発明の1以上の医薬組成物を1以上の他の薬剤と同時投与する。ある態様において、そのような1以上の他の薬剤は、本発明の1以上の医薬組成物と同じ疾患、障害、又は状態を治療するように設計される。ある態様において、そのような1以上の他の薬剤は、本発明の1以上の医薬組成物とは異なる疾患、障害、又は状態を治療するように設計される。ある態様において、そのような1以上の他の薬剤は、本発明の1以上の医薬組成物の望まれない副作用を処置するように設計される。ある態様では、本発明の1以上の医薬組成物を別の薬剤と同時投与して、他の薬剤の望まれない効果を処置する。ある態様では、本発明の1以上の医薬組成物を別の薬剤と同時投与して、組合せの効果をもたらす。ある態様では、本発明の1以上の医薬組成物を別の薬剤と同時投与して、相乗効果をもたらす。
ある態様では、第11因子阻害剤を抗血小板療法と組み合わせる。ある態様において、抗血小板療法と組み合わせた第11因子阻害剤の投与は、抗血小板療法単独と比較した、出血のリスクの明瞭又は検出可能な増加をほとんど又はまったくもたらさない。ある態様において、このリスクプロフィール又はリスク徴候は、抗血小板療法単独と変わらない。
本明細書に記載するある化合物、組成物、及び方法について、ある態様に準拠して特定して記載してきたが、以下の実施例は、本明細書に記載する化合物について例解するためにのみ役立つのであって、それを限定することを企図しない。本出願に引用する参考文献のそれぞれは、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。
第11因子核酸へ標的指向されるアンチセンスオリゴヌクレオチドについて、第11因子mRNAに対するその効果を in vitro で試験した。リポフェクチン試薬を75 nMアンチセンスオリゴヌクレオチドとともに使用して、10,000個の細胞/ウェルの密度の培養HepG2細胞にトランスフェクトした。ほぼ24時間の処置期間の後で、この細胞よりRNAを単離して、定量的リアルタイムPCRによって第11因子mRNAレベルを測定した。第11因子mRNAレベルは、RIBOGREENによって測定される全RNA含量に従って補正した。未処置対照細胞に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。
ヒト第11因子の84パーセント以上の in vitro 阻害を明示する12のギャップマーについて、HepG2細胞において様々な用量で試験した。細胞を10,000個の細胞/ウェルの密度でプレート培養して、表3に特定されるように、9.375 nM、18.75 nM、37.5 nM、75 nM、及び150 nM濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドとともにリポフェクチン試薬を使用してトランスフェクトした。ほぼ16時間の処置期間の後で、この細胞よりRNAを単離して、定量的リアルタイムPCRによって第11因子mRNAレベルを測定した。ヒト第11因子プライマープローブセット:RTS2966(フォワード配列:CAGCCTGGAGCATCGTAACA、本明細書ではSEQ ID NO: 3として取り込む;リバース配列:TTTATCGAGCTTCGTTATTCTGGTT、本明細書ではSEQ ID NO: 4として取り込む;プローブ配列:TTGTCTACTGAAGCACACCCAAACAGGGAX、本明細書ではSEQ ID NO: 5として取り込む)を使用して、mRNAレベルを測定した。第11因子mRNAレベルは、RIBOGREENによって測定される全RNA含量に従って補正した。未処置対照細胞に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表3に例証されるように、第11因子mRNAレベルは、アンチセンスオリゴヌクレオチド処置細胞において用量依存的なやり方で低下した。
表3に提示するギャップマーに基づいて、追加のギャップマーを設計した。これらのギャップマーは、表3からの元のギャップマーのやや上流及び下流にシフトした(即ち、「マイクロウォーク」)ギャップマーを創出することによって設計した。ギャップマーは、様々なモチーフ、例、5-10-5MOE、3-14-3MOE、及び2-13-5MOEでも創出した。これらのギャップマーについて in vitro で試験した。75 nMアンチセンスオリゴヌクレオチドとともにリポフェクチン試薬を使用して、10,000個の細胞/ウェルの密度の培養HepG2細胞にトランスフェクトした。ほぼ24時間の処置期間の後で、この細胞よりRNAを単離して、定量的リアルタイムPCRによって第11因子mRNAレベルを測定した。第11因子mRNAレベルは、RIBOGREENによって測定される全RNA含量に従って補正した。未処置対照細胞に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。
ヒト第11因子の in vitro 阻害を明示する、実施例3からのギャップマー(表4、5、6、7、及び8を参照のこと)について、HepG2細胞において様々な用量で試験した。細胞を10,000個の細胞/ウェルの密度でプレート培養して、表9に特定されるように、9.375 nM、18.75 nM、37.5 nM、及び75 nM濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドとともにリポフェクチン試薬を使用してトランスフェクトした。ほぼ16時間の処置期間の後で、この細胞よりRNAを単離して、定量的リアルタイムPCRによって第11因子mRNAレベルを測定した。ヒト第11因子プライマープローブセット:RTS2966を使用して、mRNAレベルを測定した。第11因子mRNAレベルは、RIBOGREENによって測定される全RNA含量に従って補正した。未処置対照細胞に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表9に例証されるように、第11因子mRNAレベルは、アンチセンスオリゴヌクレオチド処置細胞において用量依存的なやり方で低下した。
実施例4においてヒト第11因子の有意な用量依存的阻害を明示するギャップマーについて選択して、HepG2細胞において様々な用量で試験した。細胞を10,000個の細胞/ウェルの密度でプレート培養して、表11に特定されるように、2.34 nM、4.69 nM、9.375 nM、18.75 nM、37.5 nM、及び75 nM濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドとともにリポフェクションを使用してトランスフェクトした。ほぼ16時間の処置期間の後で、この細胞よりRNAを単離して、定量的リアルタイムPCRによってヒト第11因子mRNAレベルを測定した。ヒト第11因子プライマープローブセット:RTS2966を使用して、mRNAレベルを測定した。第11因子mRNAレベルは、RIBOGREENによって測定される全RNA含量に従って補正した。未処置対照細胞に対するヒト第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表11に例証されるように、第11因子mRNAレベルは、対照と比較して、アンチセンスオリゴヌクレオチド処置細胞において用量依存的なやり方で低下した。
ヒト第11因子の有意な用量依存的 in vitro 阻害を明示する実施例4からのギャップマーについて、シアノ初代培養肝細胞においても様々な用量で試験した。細胞を35,000個の細胞/ウェルの密度でプレート培養して、表13に特定されるように、エレクトロポレーションにより、0.74 nM、2.2 nM、6.7 nM、20 nM、60 nM、及び180 nM濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトした。ほぼ16時間の処置期間の後で、この細胞よりRNAを単離して、定量的リアルタイムPCRによってヒト第11因子mRNAレベルを測定した。ヒト第11因子プライマープローブセット:RTS2966を使用して、mRNAレベルを測定した。第11因子mRNAレベルは、RIBOGREENによって測定される全RNA含量に従って補正した。未処置対照細胞に対するヒト第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表13に例証されるように、第11因子mRNAレベルは、対照と比較して、アンチセンスオリゴヌクレオチド処置細胞において用量依存的なやり方で低下した。
実施例4においてヒト第11因子の in vitro 阻害を明示するギャップマーについて、HepB3細胞において様々な用量で試験した。細胞を4,000個の細胞/ウェルの密度でプレート培養して、表14に特定されるように、2.3 nM、4.7 nM、9.4 nM、18.75 nM、37.5 nM、及び75 nM濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドとともにリポフェクチン試薬を使用してトランスフェクトした。ほぼ16時間の処置期間の後で、この細胞よりRNAを単離して、定量的リアルタイムPCRによってヒト第11因子mRNAレベルを測定した。ヒト第11因子プライマープローブセット:RTS2966を使用して、mRNAレベルを測定した。第11因子mRNAレベルは、RIBOGREENによって測定される全RNA含量に従って補正した。未処置対照細胞に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表14に例証されるように、第11因子mRNAレベルは、対照と比較して、アンチセンスオリゴヌクレオチド処置細胞において用量依存的なやり方で低下した。
マウス第11因子に標的指向するキメラアンチセンスオリゴヌクレオチドを、マウス第11因子(GENBANK登録番号NM_028066.1、本明細書ではSEQ ID NO: 6として取り込む)に標的指向する5-10-5MOEギャップマーとして設計した。このギャップマーは、20ヌクレオチドの長さであり、ここで中央のギャップセグメントは、10の2'-デオキシヌクレオチドより構成されて、両端に(5'及び3'方向に)それぞれ5ヌクレオチドを含んでなるウィングが隣接する。それぞれのウィングセグメント中の各ヌクレオチドは、2'-MOE修飾を有する。それぞれのギャップマー全体のヌクレオシド間連結は、ホスホロチオエート(P=S)連結である。それぞれのギャップマー全体のすべてのシチジン残基は、5-メチルシチジンである。このアンチセンスオリゴヌクレオチドについて、マウス初代培養肝細胞においてマウス第11因子mRNAを低下させるその能力を評価した。
マウス第11因子核酸へ標的指向されるアンチセンスオリゴヌクレオチドについて、第11因子mRNAに対するその効果を in vitro で試験した。10,000細胞/ウェルの密度で培養したマウス初代培養肝細胞を100 nMのアンチセンスオリゴヌクレオチドで処置した。ほぼ24時間の処置期間の後で、この細胞よりRNAを単離して、定量的リアルタイムPCRによってマウス第11因子mRNAレベルを測定した。第11因子mRNAレベルは、RIBOGREENによって測定される全RNA含量に従って補正した。未処置対照細胞に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。
統計学的に有意な用量依存的阻害を示す、マウス第11因子mRNA(GENBANK登録番号NM_028066.1、本明細書ではSEQ ID NO: 6として取り込む)へ標的指向されるいくつかのアンチセンスオリゴヌクレオチドについて、in vivo で評価した。BALB/cマウスをISIS404057(TCCTGGCATTCTCGAGCATT、標的開始部位487、本明細書ではSEQ ID NO: 10として取り込む)とISIS404071(TGGTAATCCACTTTCAGAGG、標的開始部位869、本明細書ではSEQ ID NO: 11として取り込む)で処置した。
BALB/cマウスに、5 mg/kg、10 mg/kg、25 mg/kg、又は50 mg/kgのISIS404057又はISIS404071を週2回、3週間注射した。対照群のマウスには、リン酸緩衝化生理食塩水(PBS)を週2回、3週間注射した。最後の投薬を受けてから5日後にマウスを犠牲にした。RNA分析のために肝臓全体を回収して、凝固分析(PT及びaPTT)とタンパク質分析のために血漿を採取した。
第11因子のリアルタイムPCR分析のために肝臓組織よりRNAを抽出した。表17に示すように、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、PBS対照に優って、マウス第11因子の用量依存的な低下をもたらした。未処置対照細胞に対するヒト第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。
ISIS404057及びISIS404071で処置したマウスからの血小板欠乏血漿(PPP)を使用して、プロトロンビン時間(PT)と活性化部分トロンボプラスチン時間(aPTT)を測定した。表18に提供するPT及びaPTT値は、国際標準化比(INR)の数値として報告する。PT及びaPTTのINR値は、各実験群(即ち、ISIS404057又はISIS404071で、5 mg/kg、10 mg/kg、25 mg/kg、及び50 mg/kgの処置)のPT又はaPTT値をPBS処置群のPT又はaPTTで割ることによって定量した。次いで、使用する組織因子の国際感度指数(ISI)の冪数だけこの比を掛け合わせた。表18に示すように、ISIS404057又はISIS404071で処置したマウスにおいて、PTは、有意には延長しなかった。しかしながら、ISIS404057及びISIS404071で処置したマウスにおいて、aPTTは、用量依存的なやり方で延長した。これらのデータは、第11因子のアンチセンス低下が血液凝固の接触活性化経路には影響を及ぼすが、その外因性経路には影響を及ぼさないことを示唆する。
凝固時間に基づいたF11アッセイを使用して、ISIS404071で処置したマウスの血漿からの第11因子プロ酵素を測定した。凝固時間は、ST4半自動化凝固測定機器(Diagnostica Stago、ニュージャージー州)を用いて、同一2検体で定量した。BSA入りHEPES-NaCl緩衝液で20倍希釈した30μlのクエン酸添加試料血漿を30μlのaPTT試薬(血小板第3因子試薬+粒子状アクチベータ)と30μlの第11因子欠乏クエン酸添加血漿(ヒト先天性、George King Bio-Medical 社)とともに37℃でインキュベートして、凝固を開始させた。系列希釈したクエン酸添加対照マウス血漿の標準曲線で結果を内挿した。
処置
ISIS404071とワルファリン(COUMADIN)をFeCl3誘導性VTマウスモデルにおいて評価した。1.25 mg/kg、2.5 mg/kg、5 mg/kg、10 mg/kg、20 mg/kg、又は40 mg/kgのISIS404071を週2回、3週間皮下投与して、6群のBALB/cマウスを処置した。最後のISIS404071の投薬を受けてから2日後に、10 mg/kgのキシラジンと混合した150 mg/kgのケタミンを腹腔内注射により投与して、マウスを麻酔した。0.5 mg/kg、1 mg/kg、2 mg/kg、3 mg/kg、4 mg/kg、及び5 mg/kgのワルファリンを毎日6日間腹腔内投与して、追加の6群のBALB/cマウスを処置した。最後のワルファリンの投薬から4時間後に、10 mg/kgのキシラジンと混合した150 mg/kgのケタミンを腹腔内注射により投与して、マウスを麻酔した。PBSを週2回、3週間皮下投与して、2つの対照群のBALB/cマウスを処置した。最後のPBSの投薬から2日後に、10 mg/kgのキシラジンと混合した150 mg/kgのケタミンを腹腔内注射により投与して、両群のマウスを麻酔した。第一の対照群を除く全群のマウスにおいて、FeCl3で血栓形成を誘導した。
第11因子のリアルタイムPCR分析用に、RNAを肝臓組織より抽出した。PBS対照に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表20に示すように、ISIS404071での処置は、PBS対照と比較して、第11因子mRNAの有意な用量依存的低下をもたらした。逆に、ワルファリンでの処置は、PBS対照と比較して、第11因子mRNAの有意な低下をもたらさなかった。
血小板第4因子(PF-4)のリアルタイムPCR定量を使用して、血栓形成の尺度として大静脈中の血小板を定量した。2つのPBS処置対照群に比較した、ISIS404071又はワルファリン処置マウスにおけるPF-4の百分率として結果を提示する。表21に示すように、ISIS404071での処置は、5 mg/kg以上の投与量で、PBS対照と比較して、PF-4の用量依存的な低下をもたらした。ワルファリンでの処置は、2 mg/kg以上の投与量で、PBS対照と比較して、PF-4の低下をもたらした。故に、本明細書に提供する化合物による第11因子の低下は、血栓及び血塊形成を阻害するのに有用である。
処置
尾出血を測定して、ISIS404071又はワルファリンでの処置がマウスにおいて内出血を引き起こすかどうかを観察した。ISIS404071とワルファリン(COUMADIN)を尾出血アッセイにおいて評価した。1.25 mg/kg、2.5 mg/kg、5 mg/kg、10 mg/kg、20 mg/kg、又は40 mg/kgのISIS404071を週2回、3週間皮下投与して、6群のBALB/cマウスを処置した。0.5 mg/kg、1 mg/kg、2 mg/kg、3 mg/kg、4 mg/kg、及び5 mg/kgのワルファリンを毎日6日間腹腔内投与して、追加の6群のBALB/cマウスを処置した。PBSを週2回、3週間皮下投与して、別の対照群のBALB/cマウスを処置した。
ISIS404071、ワルファリン、又はPBSでの最後の処置から2日後、マウスを尾出血チャンバに入れた。このチャンバにおいてマウスをイソフルランで麻酔して、尾の小片(先端からほぼ4 mm)を無菌の鋏で切断した。切断した尾を、ほぼ10 mLの0.9%NaCl緩衝液で満たして37℃へ温めた15 mLファルコン管にすぐに入れた。40分の経過にわたり血液を採取した。この生理食塩水を満たした試験管を出血の前と後で秤量した。この結果を表22に提供する。
処置
1.25 mg/kg、2.5 mg/kg、5 mg/kg、10 mg/kg、20 mg/kg、又は40 mg/kgのISIS404071を週2回、3週間皮下投与して、6群のBALB/cマウスを処置した。0.5 mg/kg、1 mg/kg、2 mg/kg、3 mg/kg、4 mg/kg、及び5 mg/kgのワルファリンを毎日6日間腹腔内投与して、追加の6群のBALB/cマウスを処置した。対照群では、PBSを週2回、3週間皮下投与して、BALB/cマウスを処置した。最後の用量を投与してから2日後に、PPPを採取して、PT及びaPTTアッセイを実施した。
表16に提供したPT及びaPTTの数値は、国際標準化比(INR)の値として報告する。PT及びaPTTのINR値は、各実験群(即ち、ISIS404071で、5 mg/kg、10 mg/kg、25 mg/kg、及び50 mg/kgの処置)のPT又はaPTT値をPBS処置群のPT又はaPTTで割ることによって定量した。次いで、使用する組織因子の国際感度指数(ISI)の冪数だけこの比を掛け合わせた。表23に示すように、ワルファリン処置マウスのPTは、どの投与量でも有意に延長している。ワルファリン処置マウスのaPTTは、特に1 mg/kg以上の投与量で延長した。ISIS404071は、PTに有意には影響を及ぼさなかったが、aPTTは、延長させた;しかしながら、ワルファリン処置マウスほど有意ではなかった。これらのデータは、ワルファリンが血液凝固の接触活性化経路と外因性経路の両方に影響を及ぼす一方で、ISIS404071は、血液凝固の接触活性化経路には影響を及ぼすが、その外因性経路には影響を及ぼさないことを示唆する。
処置
ISIS404071とアピキサバンをFeCl3誘導性VTマウスモデルにおいて評価した。1.25 mg/kg、2.5 mg/kg、5 mg/kg、10 mg/kg、20 mg/kg、又は40 mg/kgのISIS404071を週2回、3週間皮下投与して、6群のBALB/cマウスを処置した。最後のISIS404071の投薬を受けてから2日後に、10 mg/kgのキシラジンと混合した150 mg/kgのケタミンを腹腔内注射により投与して、マウスを麻酔した。0.5 mg/kg、1 mg/kg、2 mg/kg、3 mg/kg、4 mg/kg、及び5 mg/kgのアピキサバンを1回皮下投与して、追加の6群のBALB/cマウスを処置した。アピキサバンを受けてから20分後に、10 mg/kgのキシラジンと混合した150 mg/kgのケタミンを腹腔内注射により投与して、マウスを麻酔した。PBSを週2回、3週間皮下投与して、2つの対照群のBALB/cマウスを処置した。最後のPBSの投薬から2日後に、10 mg/kgのキシラジンと混合した150 mg/kgのケタミンを腹腔内注射により投与して、両群のマウスを麻酔した。第一の対照群を除くすべてのマウスにおいて、FeCl3で血栓形成を誘導した。
第11因子のリアルタイムPCR分析用に、RNAを肝臓組織より抽出した。PBS対照に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表24に示すように、ISIS404071での処置は、PBS対照と比較して、第11因子mRNAの有意な用量依存的低下をもたらした。逆に、アピキサバンでの処置は、PBS対照と比較して、第11因子mRNAの有意な低下をもたらさなかった。
血小板第4因子(PF-4)のリアルタイムPCR定量を使用して、血栓形成の尺度として大静脈中の血小板を定量した。表25に示すように、ISIS404071での処置は、PBS対照と比較して、PF-4の低下をもたらした。アピキサバンでの処置も、PBS対照と比較して、PF-4の低下をもたらした。2つのPBS処置対照群と比較した、ISIS404071又はアピキサバン処置マウスにおけるPF-4の百分率として結果を提示する。
処置
尾出血を測定して、ISIS404071又はアピキサバンでの処置がマウスにおいて内出血を引き起こすかどうかを観察した。ISIS404071とアピキサバンを尾出血モデルにおいて評価した。1.25 mg/kg、2.5 mg/kg、5 mg/kg、10 mg/kg、20 mg/kg、又は40 mg/kgのISIS404071を週2回、3週間皮下投与して、6群のBALB/cマウスを処置した。0.5 mg/kg、1 mg/kg、2 mg/kg、3 mg/kg、4 mg/kg、及び5 mg/kgのアピキサバンを単回皮下用量で投与して、追加の6群のBALB/cマウスを処置した。PBSを週2回、3週間皮下投与して、別の対照群のBALB/cマウスを処置した。
ISIS404071、アピキサバン、又はPBSでの最後の処置から2日後、マウスを尾出血チャンバに入れた。このチャンバにおいてマウスを麻酔して、尾の小片(先端からほぼ4 mm)を無菌の鋏で切断した。切断した尾を、ほぼ10 mLの0.9%NaCl緩衝液で満たして37℃へ温めた15 mLファルコン管にすぐに入れた。40分の経過にわたり血液を採取した。この生理食塩水を満たした試験管を出血の前と後で秤量した。
処置
10 mg/kg、20 mg/kg、又は40 mg/kgのISIS404071を週2回、3週間皮下投与して、3群のBALB/cマウスを処置した。PBSを週2回、3週間投与して、対照群のマウスを処置した。最後の投薬から5日後、マウスを犠牲にして、血漿を採取した。低分子量(LMW)ヘパリン、LOVENOXを、0μg/ml、2.5μg/ml、5.0μg/ml、及び7.5μg/mlの様々な濃度で血漿へ ex vivo(生体外)投与した。LOVENOXを投与して20分後にPTとaPTTを測定した。
表27に示すように、LOVENOXでの処置は、PTを用量依存的なやり方で増加させる。ISIS404071での処置は、PTを有意には増加させない。PTは、ISIS404071での処置によって有意には影響を受けない。ISIS404071及びLOVENOXで処置した血漿において、PTに対する組合せ効果の証拠はない。
処置
ISIS404071及びLOVENOXの組合せをFeCl3誘導性VTマウスモデルにおいて評価した。15 mg/kg、30 mg/kg、45 mg/kg、又は60 mg/kgのLOVENOXを1日1回、3日間皮下投与して、4群のBALB/cマウスを処置した。20 mg/kgのISIS404071を週2回、3週間皮下投与して、追加の4群のBALB/cマウスを処置した。最後のISIS404071の投薬後、15 mg/kg、30 mg/kg、45 mg/kg、又は60 mg/kgのLOVENOXを1日1回、3日間皮下投与して、マウスを処置した。PBSを週2回、3週間皮下投与して、2つの対照群のBALB/cマウスを処置した。第一の対照群を除くすべてのマウスにおいて、FeCl3で血栓形成を誘導した。10 mg/kgのキシラジンと混合した150 mg/kgのケタミンを腹腔内注射により投与して、すべてのマウスを麻酔した。
PF-4のリアルタイムPCR定量を使用して、血栓形成の尺度として大静脈中の血小板を定量した。表29に示すように、LOVENOXでの処置は、PBS対照と比較して、PF-4の低下をもたらした。ISIS404071と組み合わせたLOVENOXでの処置は、LOVENOX単独と比較して、PF-4のより大きな低下をもたらした。
処置
尾出血を測定して、ISIS404071及びLOVENOXでの処置がマウスにおいて内出血を引き起こすかどうかを観察した。4群のBALB/cマウスへISIS404071を20 mg/kgの投与量で週2回、3週間皮下投与して、ISIS404071処置の最後の3日間に、LOVENOXを15 mg/kg、30 mg/kg、45 mg/kg、及び60 mg/kgの様々な投与量で1日1回皮下投与した。第五群では、BALB/cマウスへISIS404071を20 mg/kgの投与量で週2回、3週間皮下投与した。第六群では、対照として、BALB/cマウスへPBSを週2回、3週間皮下投与した。
最後の処置を受けてから2日後、マウスを尾出血チャンバに入れた。このチャンバにおいてマウスをイソフルランで麻酔して、尾の小片(先端からほぼ4 mm)を無菌の鋏で切断した。切断した尾を、ほぼ10 mLの0.9%NaCl緩衝液で満たして37℃へ温めた15 mLファルコン管にすぐに入れた。40分の経過にわたり血液を採取した。この生理食塩水を満たした試験管を出血の前と後で秤量した。
PT及びaPTTに対する in vivo 効果
処置
LOVENOXと組み合わせたISIS404071で処置したマウスからのPPPを使用して、PT及びaPTTを測定した。第一コホートでは、BALB/cマウスへISIS404071を25 mg/kgの投与量で週2回、3週間皮下投与した。これらのマウスより、ISIS404071の最終投薬を受けてから5日後に血漿を採取した。第二コホートでは、BALB/cマウスへLOVENOXを20 mg/kgの投与量で1日1回、3日間皮下投与した。これらのマウスより、LOVENOXの最終投薬を受けてから4時間後に血漿を採取した。第三コホートでは、BALB/cマウスへISIS404071を20 mg/kgの投与量で週2回、3週間皮下投与して、ISIS404071の最終投薬を受けてから2日後に、LOVENOXを20 mg/kgの投与量で1日1回皮下投与した。これらのマウスより、LOVENOXの最終投薬の4時間後に血漿を採取した。第四コホートでは、対照として、PBSを週2回、3週間皮下投与した。これらのマウスより、最終投薬の5日後に血漿を採取した。
表31に提供するPT及びaPTT値は、国際標準化比(INR)の数値として報告する。表31に示すように、PTは、ISIS40471、LOVENOXでの処置によっても、LOVENOXと組み合わせたISIS40471での処置によっても有意に影響を受けない。これらのデータは、LOVENOXと組み合わせたISIS404071による、PTに対する組合せの効果はないことを示唆する。また表31に示されるように、LOVENOXでの処置と、LOVENOXと組み合わせたISIS404071での処置は、aPTTを増加させる。これらのデータは、ISIS404071及びLOVENOXの組合せの処置がaPTTに対して相加効果を有することを示唆する。
PT及びaPTTに対する in vivo 効果
処置
アピキサバンと組み合わせたISIS404071で処置したマウスからのPPPを使用して、PT及びaPTTを測定した。第一コホートでは、BALB/cマウスへISIS404071を25 mg/kgの投与量で週2回、3週間皮下投与した。これらのマウスより、ISIS404071の最終投薬を受けてから5日後に血漿を採取した。第二コホートでは、BALB/cマウスへアピキサバンを6 mg/kgの投与量で1日2回、3日間皮下投与した。これらのマウスより、アピキサバンの最終投薬を受けてから20分後に血漿を採取した。第三コホートでは、BALB/cマウスへISIS404071を20 mg/kgの投与量で週2回、3週間皮下投与して、ISIS404071処置の最後の3日間に、アピキサバンを6 mg/kgの投与量で1日2回皮下投与した。これらのマウスより、アピキサバンの最終投薬を受けてから20分後に血漿を採取した。第四コホートでは、対照として、PBSを週2回、3週間皮下投与した。PBSの最終投薬の5日後に血漿を採取した。
表32に提供するPT及びaPTT値は、国際標準化比(INR)の数値として報告する。表32に示すように、PTは、ISIS40471での処置によって有意には影響を受けない。しかしながら、アピキサバンと、ISIS404071と組み合わせたアピキサバンは、PTを増加させた。また表32に示されるように、アピキサバン、ISIS404071、アピキサバンと組み合わせたISIS404071は、aPTTを増加させる。
PT及びaPTTに対する in vivo 効果
処置
ワルファリンと組み合わせたISIS404071で処置したマウスからのPPPを使用して、PT及びaPTTを測定した。25 mg/kg又は50 mg/kgのいずれかのISIS404071を週2回、3週間皮下投与して、2群のBALB/cマウスを処置した。各群より、最終用量を投与してから5日後に血漿を採取した。第3群では、BALB/cマウスを2 mg/kgのワルファリンで、1日1回、5日間処置した。ワルファリンの最終用量を投与してから6時間後に血漿を採取した。25 mg/kg又は50 mg/kgのいずれかのISIS404071を週2回、3週間皮下投与し、ISIS404071処置の最後の5日間にワルファリンを2 mg/kgの投与量で1日1回皮下投与して、2つの追加群のBALB/cマウスを処置した。各群より、最後のワルファリン処置の6時間後に血漿を採取した。BALB/cマウスの最後の群では、対照として、PBSを週2回、3週間皮下投与した。最後のPBS処置の5日後に血漿を採取した。
表33に提供するPT及びaPTT値は、国際標準化比(INR)の数値として報告する。表33に示すように、PTは、PBS又はISIS40471での処置により、いずれの投与量でも影響を受けない。しかしながら、2 mg/kgのワルファリン、2 mg/kgワルファリンと組み合わせた25 mg/kgのISIS404071、そして2 mg/kgのワルファリンと組み合わせた50 mg/kgのISIS404071での処置は、PTを増加させる。これらのデータは、ISIS404071及びワルファリンの組合せの処置がPTに対して相加効果を有することを示唆する。また表33に示されるように、aPTTは、ISIS404071とワルファリンでの処置によって影響を受ける。ISIS404071及びワルファリンの組合せは、それぞれの薬物単独より大きいaPTTの増加を示す。これらのデータは、ISIS404071及びワルファリンの組合せの処置がaPTTに対して相乗効果を有することを示唆する。
処置
第一コホートでは、C57BL/6マウスへISIS404071を50 mg/kgの用量で週2回、3週間皮下投与した。第二コホートでは、C57Bl/6マウスへ対照オリゴヌクレオチド、ISIS405277(AAGGACCTACACTATGGAAT;第2因子のアンチセンスオリゴヌクレオチド、本明細書では、SEQ ID NO: 12として取り込む)を50 mg/kgの用量で週2回、3週間皮下投与した。
純系C57BL/6マウスの後眼窩静脈より、穿刺によって血液を採取して、300μlのヘパリン(30 U/ml)を含有するポリプロピレン管に採取した。1000 rpmで5分間の遠心分離によって、血小板濃厚血漿(PRP)を入手した。このPRPを、2μlのプロスタグランジンI2(PGI2)(2μg/ml)を含有する新鮮な試験管へ移して、37℃で5分間インキュベートした。2600 rpmでの遠心分離後、2μlのPGI2を含有する1 mlの改良タイロード(Tyrode)-HEPES緩衝液(137 mM NaCl、0.3 mM Na2HPO4、2 mM KCl、12 mM NaHCO3、5 mM HEPES、5 mMグルコース、0.35% BSA、pH7.2)にペレットを再懸濁させて、37℃で5分間インキュベートした。懸濁したペレットを2600 rpmで5分間遠心分離させた。PGI2を除去するために、洗浄工程を2回繰り返して、血小板をカルセインAM 2.5μg/mL(Molecular Probe,オレゴン州ユージーン)で、室温で10分間、蛍光標識した。
蛍光標識した血小板をISIS404071処置及び対照オリゴヌクレオチド処置のC57BL/6マウスに静脈内注射した。このマウスを2.5%アバチンで麻酔して、腹壁を貫いて切開を施して、直径250〜300μmで、ほぼ150 s-1のずり速度(shear rate)を有する腸間膜静脈を曝露した。この曝露した腸間膜は、加温(37℃)PBSでの周期的な表面灌流によって、実験を通して湿った状態にした。この腸間膜を、12 V、100 W、DC安定化電源でトランス蛍光化(transluminated)した。CCDビデオカメラ(浜松ホトニックス、浜松市、日本)を使用するSVHSビデオレコーダー(AG-6730;パナソニック、東京、日本)へ接続した Zeiss(ドイツ)Axiovert 135倒立顕微鏡(対物レンズ32倍)を使用して、静脈を可視化した。光学式ドップラー速度計(Microcirculation Research Institute、テキサスA&M医科大学、テキサス州カレッジステーション)を使用して、中心線赤血球速度(Vrbc)を測定した。ニュートン流体についてのポアズイユの法則:τ=8(V平均/Dv)[ここでDvは、細静脈の直径であり、V平均は、測定したVrbcより、経験的相関性:V平均=Vrbc/1.6を使用して推定する]に基づいて、細静脈ずり速度を計算した。
最後のアンチセンスオリゴヌクレオチド注射の2日後に、腸間膜静脈の血栓形成(thrombosis)を実施した。10%FeCl3溶液に浸した Whatman 濾紙を腸間膜静脈上に5分間当てることによって、血栓症を誘導した。この静脈を40分間、又は閉塞までモニタリングした。直径30〜50μmの最初の血栓前の経過時間と、血液の流れが30秒間止まる前の経過時間を観測した。
処置
BALB/cマウスにおいて、ISIS404071に対する特異的センスオリゴヌクレオチドの解毒薬としての効果を試験した。第一コホートでは、BALB/cマウスへISIS404071を40 mg/kgの用量で週2回、3週間皮下投与した。第二コホートでは、BALB/cマウスへISIS404057を40 mg/kgの用量で週2回、3週間皮下投与した。両方のコホートへISIS404071の特異的解毒薬、ISIS418026(CCTCTGAAAGTGGATTACCA;ISIS404071へ相補的、本明細書では、SEQ ID NO: 13として取り込む)を、ISIS404071又は404057の最終処置から48時間後に、90 mg/kgの単回注射で皮下投与した。第三コホートでは、BALB/cマウスへISIS404071を40 mg/kgの用量で週2回、3週間皮下投与した。ISIS404071の最終処置に続いて、マウスにPBSを皮下注射した。第四コホートでは、BALB/cマウスへISIS404057を40 mg/kgの用量で週2回、3週間皮下投与した。ISIS404057の最終処置に続いて、マウスにPBSを皮下注射した。解毒薬投与に続く12時間、1日、2日、3日、7日、及び14日の時点で各コホートより4匹のマウスのセットを犠牲にした。全肝臓をRNA分析用に採取して、aPTT分析用にPPPを採取した。
第11因子のリアルタイムPCR分析のために肝臓組織よりRNAを抽出した。PBS対照に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表34に示すように、解毒薬なしのISIS404071で処置したマウスは、14日の観察期間にわたって阻害の漸進的な減少を示した。しかしながら、ISIS404071及び解毒薬で処置したマウスは、解毒薬を受けなかったマウスと比較して、14日の観察期間にわたって、加速的な減少を示した。また表34に示されるように、ISIS418026での処置は、ISIS404057処置マウスにおける第11因子mRNA発現の阻害に影響を及ぼさなかった。
表35に示すように、ISIS404071及び解毒薬(ISIS418026)で処置したマウスは、解毒薬なしのISIS404071で処置したマウスと比較して、14日の観察期間にわたり、aPTTの漸進的な減少を示した。
処置
BALB/cマウスにおいて、ヒト第7a因子(第VIIa因子)タンパク質のISIS404071への解毒薬としての効果について試験した。20 mg/kgのISIS404071を週2回、3週間皮下投与して、2つの実験群のBALB/cマウスを処置した。PBSを週2回、3週間皮下投与して、2つの対照群のBALB/cマウスを処置した。第一の対照群を除くすべてのマウスにおいて、FeCl3で血栓形成を誘導した。FeCl3処置の15分前に、第一の実験群を5μg/kgのヒト第7a因子タンパク質解毒薬(製品番号:407act、American Diagnostica 社)で処置した。その最終投薬の2日後に、10 mg/kgのキシラジンと混合した150 mg/kgのケタミンを腹腔内注射により投与して、すべてのマウスを麻酔した。
血小板第4因子(PF-4)のリアルタイムPCR定量を使用して、血栓形成の尺度として大静脈中の血小板を定量した。2つのPBS処置対照群と比較した、解毒薬処置及び非処置マウスにおけるPF-4の百分率として結果を提示する。表36に示すように、ヒト7a因子タンパク質解毒薬で処置した動物は、ISIS404071単独で処置した動物との比較において、より多くのPF-4を発現した。これらのデータは、ヒト7a因子がアンチセンスオリゴヌクレオチド阻害の効果から救出することに成功することを示す。
処置
コラゲナーゼ誘導性脳内出血モデルにおいて、ISIS404071とワルファリン(COUMADIN)を試験した。第一コホートでは、BALB/cマウスへISIS404071を40 mg/kgの用量で週2回、2週間皮下投与した。第二コホートでは、マウスへワルファリンを2 mg/kgの用量で週2回、2週間腹腔内投与した。第三コホートでは、BALB/cマウスへISIS421208(TCGGAAGCGACTCTTATATG、マウス第11因子に対して8つのミスマッチ、本明細書では、SEQ ID NO: 14として取り込む)を40 mg/kgの用量で週2回、2週間皮下投与した。第四コホートでは、BALB/cマウスへPBSを週2回、2週間皮下投与した。
処置
ISIS404071及びPLAVIXの組合せをFeCl3誘導性VTマウスモデルにおいて評価した。それぞれほぼ25 gの体重である、4群の8匹のBALB/cマウスを6.25 mg/kg、12.50 mg/kg、25.00 mg/kg、又は50.00 mg/kgのPLAVIXで処置した。このマウスには、1日目に2用量のPLAVIX、そして2日目、外科手術の2時間前に1用量のPLAVIXを与えた。
PF-4のリアルタイムPCR定量を使用して、血栓形成の尺度として大静脈中の血小板を定量した。表40に示すように、PLAVIXでの処置は、PBS対照と比較して、PF-4の低下をもたらした。ISIS404071と組み合わせたPLAVIXでの処置は、PLAVIX単独と比較して、PF-4のより大きい低下をもたらした。故に、第11因子ASO(アンチセンスオリゴヌクレオチド)と抗血小板療法の組合せは、抗血栓活性を増加させる。データは、PBS+FeCl3対照と比較した、PF-4 mRNAのパーセントとして提示する。
処置
尾出血を測定して、PLAVIXと組み合わせたISIS404071での処置が出血傾向の増加を引き起こすかどうかを観測した。5群の8匹のBALB/cマウスへISIS404071を20 mg/kgの投与量で週2回、3週間皮下投与した。ISIS404071の最終投薬の後で、マウスを0 mg/kg、6.25 mg/kg、12.50 mg/kg、25.00 mg/kg、又は50.00 mg/kgのPLAVIXで処置した。このマウスには、1日目に2用量のPLAVIX、そして2日目、出血の2時間前に1用量のPLAVIXを投与した。
尾出血アッセイ
その最後の処置を与えてから2時間後、マウスを尾出血チャンバに入れた。このチャンバにおいてマウスをイソフルランで麻酔して、尾の小片(先端からほぼ4 mm)を無菌の鋏で切断した。切断した尾を、ほぼ10 mLの0.9%NaCl緩衝液で満たして37℃へ温めた15 mLファルコン管にすぐに入れた。40分の経過にわたり血液を採取した。この生理食塩水を満たした試験管を出血の前と後で秤量した。
処置
尾出血を測定して、PLAVIXと組み合わせた第10a因子低分子での処置が出血傾向の増加を引き起こすかどうかを観測した。5群の8匹のBALB/cマウスを0 mg/kg、6.25 mg/kg、12.50 mg/kg、25.00 mg/kg、又は50.00 mg/kgのPLAVIXで処置した。マウスには、1日目に2用量のPLAVIX、そして2日目、出血の2時間前に1用量のPLAVIXを与えた。
その最後の処置を与えてから2時間後、マウスを尾出血チャンバに入れた。このチャンバにおいてマウスをイソフルランで麻酔して、尾の小片(先端からほぼ4 mm)を無菌の鋏で切断した。切断した尾を、ほぼ10 mLの0.9%NaCl緩衝液で満たして37℃へ温めた15 mLファルコン管にすぐに入れた。40分の経過にわたり血液を採取した。この生理食塩水を満たした試験管を出血の前と後で秤量した。
処置
BALB/cマウスにおいて、マウス第11因子mRNAのアンチセンス媒介性低下の経時変化を観測した。BALB/cマウスへ1回用量の50 mg/kg ISIS404071を皮下投与した。ISIS404071投与に続いて、マウスを12時間、1日、2日、3日、4日、7日、14日、28日、及び56日で犠牲にした。全肝臓をRNA分析用に採取して、aPTT分析用にPPPを採取した。対照群のマウスを1回の皮下用量のPBSで処置した。
第11因子のリアルタイムPCR分析のために肝臓組織よりRNAを抽出した。PBS対照に対する結果を提示する。ISIS404071で処置したマウスは、有意な第11因子mRNAダウンレギュレーションを1日目までに示した。マウスは、第11因子mRNA発現の回復を14目までに始めた。マウスは、完全な第11因子mRNA発現を28日目までに回復して、56日目からの結果は、第11因子mRNAが処置前のレベルに維持されたことを示す。故に、ISIS404071処置マウスは、リバウンド効果を経験しなかった。
表43に提供するaPTT値は、国際標準化比(INR)の数値として報告する。aPTTのINR値は、ISIS404071処置マウスのaPTT値をPBS処置群のaPTTで割ることによって定量した。次いで、使用する組織因子の国際感度指数(ISI)の冪数だけこの比を掛け合わせた。表43に示すように、ISIS404071で処置したマウスは、aPTTの漸進的な減少を4日目まで示してから、処置前レベルへの漸進的な増加を7日目から28日目に示した。
ISIS416850及びISIS416858に基づいて、追加のギャップマーを設計した(上記の表8を参照のこと)。これらのギャップマーは、ISIS416850及びISIS416858の上流及び下流でややシフトさせた(即ち、「マイクロウォーク」)。このマイクロウォークギャップマーは、5-8-5MOE又は6-8-6MOEモチーフのいずれかで設計した。
ヒト第11因子の in vitro 阻害を示す、実施例30からのギャップマーについて、HepG2細胞において様々な用量で試験した。細胞を20,000個の細胞/ウェルの密度でプレート培養して、表45に特定されるように、エレクトロポレーションを使用して、123.46 nM、370.37 nM、1,111.11 nM、3,333.33 nM、及び10,000 nM濃度のアンチセンスオリゴヌクレオチドでトランスフェクトした。ほぼ16時間の処置期間の後で、この細胞よりRNAを単離して、定量的リアルタイムPCRによって第11因子mRNAレベルを測定した。ヒト第11因子プライマープローブセット:RTS2966を使用して、mRNAレベルを測定した。第11因子mRNAレベルは、RIBOGREENによって測定される全RNA含量に従って補正した。未処置対照細胞に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表45に例証されるように、第11因子mRNAレベルは、アンチセンスオリゴヌクレオチド処置細胞において用量依存的なやり方で低下した。
ISIS416850及びISIS416858に基づいて、追加のギャップマーを設計した(上記の表8を参照のこと)。これらのギャップマーは、ISIS416850及びISIS416858の上流及び下流でややシフトさせる(即ち、「マイクロウォーク」)。マイクロウォークによって設計したギャップマーは、3-8-3MOE、4-8-4MOE、2-10-2MOE、3-10-3MOE、又は4-10-4MOEのモチーフを有する。
ヒト第11因子に標的指向するISISアンチセンスオリゴヌクレオチドでCD1マウスを処置して、様々な代謝マーカーのレベルの変化を評価した。
数群の5匹のCD1マウスのそれぞれに、週2回、2、4、又は6週の間、50 mg/kgのISIS416825、ISIS416826、ISIS416838、ISIS416850、ISIS416858、ISIS416864、ISIS416892、ISIS416925、ISIS416999、ISIS417002、又はISIS417003を皮下注射した。対照群の5匹のマウスには、2週間、PBSを皮下注射した。すべての実験群(即ち、2、4、6週間、ASO処置したマウス)を対照群(即ち、PBS、2週間)と比較した。
臓器重量
肝臓、脾臓、及び腎臓の重量を試験の最後に測定して、体重へ正規化したPBS対照のパーセントとして、表48、49、及び50に提示する。肝臓及び脾臓の重量がPBS対照の6倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。
肝機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、トランスアミナーゼの血漿濃度を測定した。アラニントランスアミナーゼ(ALT)及びアスパラギン酸トランスアミナーゼ(AST)の測定値をIU/Lで表して、その結果を表51及び52に提示する。ビリルビン及びアルブミンの血漿レベルも同じ臨床化学分析機を使用して測定して、mg/dLで表した。この結果を表53及び54に提示する。ALT/ASTレベルが対照レベルの7倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。ビリルビンのレベルを対照レベルの2倍より多く増加させなかったアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
腎機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、血中尿素窒素(BUN)及びクレアチニンの血漿濃度を測定した。結果をmg/dLで表して、表55及び56に提示する。BUNレベルがPBS対照に比較して2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
すべてのマウス群より入手した血液をヘマトクリット(HCT)、平均赤血球容積(MCV)、平均赤血球ヘモグロビン量(MCH)、及び平均赤血球ヘモグロビン濃度(MCHC)の測定及び分析、並びにWBC(好中球、リンパ球、及び単球)、RBC、血小板のような様々な血球と全ヘモグロビン含量の測定のために Antech Diagnostics へ送った。この結果を表57〜67に提示する。表に示す百分率は、全血球数のパーセントを示す。50%より多い血小板数の減少、及び/又は3倍より多い単球数の増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
ヒト第11因子に標的指向するISISアンチセンスオリゴヌクレオチドでCD1マウスを処置して、このオリゴヌクレオチドの半減期、並びにオリゴヌクレオチドの分解と肝臓からの消失の経過時間について評価した。
数群の15匹のCD1マウスのそれぞれに、週2回、2週間、50 mg/kgのISIS416825、ISIS416826、ISIS416838、ISIS416850、ISIS416858、ISIS416864、ISIS416892、ISIS416925、ISIS416999、ISIS417002、又はISIS417003を皮下注射した。各群より5匹のマウスを、最終投薬に続く3日目、28日目、及び56日目に犠牲にした。肝臓を分析用に回収した。
全長オリゴヌクレオチドの濃度、並びにオリゴヌクレオチド全体(分解型が含まれる)の濃度を測定した。使用した方法は、フェノール-クロロホルム(液体-液体)抽出に続く固相抽出からなる、すでに公表された方法(Leeds et al., 1996; Geary et al., 1999)の改良法である。抽出に先立って、内部標準(ISIS355868、27マー2'-O-メトキシエチル修飾ホスホロチオエートオリゴヌクレオチド、GCGTTTGCTCTTCTTCTTGCGTTTTTT、本明細書ではSEQ ID NO: 270と表記する)を加えた。定量下限濃度(LLOQ)がほぼ1.14μg/gである検量線を使用して、組織試料濃度を計算した。次いで、WinNonlin ソフトウェア(PHARSIGHT)を使用して、半減期を計算した。
ヒト第11因子に標的指向するISISアンチセンスオリゴヌクレオチドでスプラーグ・ドーリーラットを処置して、様々な代謝マーカーのレベルの変化を評価した。
数群の4匹のスプラーグ・ドーリーラットのそれぞれに、週2回、6週間、50 mg/kgのISIS416825、ISIS416826、ISIS416838、ISIS416850、ISIS416858、ISIS416848、ISIS416864、ISIS416892、ISIS416925、ISIS416999、ISIS417002、又はISIS417003を皮下注射した。対照群の4匹のスプラーグ・ドーリーラットには、週2回、6週間、PBSを皮下注射した。体重測定を処置期間の前とそれを通して行なった。尿試料を処置の開始前に採取した。最終投薬から3日後に、尿試料を採取して、ラットを犠牲にした。臓器重量を測定して、さらなる分析のために血液を採取した。
ラットの体重を試験の開始時に、そしてその後、週2回測定した。体重を表71に提示して、試験の開始時に記録した重量に対する変化パーセントとして表す。肝臓、脾臓、及び腎臓の重量を試験の最後に測定して、体重へ正規化した生理食塩水対照のパーセントとして表71に提示する。肝臓及び脾臓の重量がPBS対照の6倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。
肝機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、トランスアミナーゼの血漿濃度を測定した。アラニントランスアミナーゼ(ALT)及びアスパラギン酸トランスアミナーゼ(AST)の測定値をIU/Lで表して、その結果を表72に提示する。ALT/ASTレベルが対照レベルの7倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。ビリルビン及びアルブミンの血漿レベルも同じ臨床化学分析機で測定して、その結果もmg/dLで表して、表72に提示する。アンチセンスオリゴヌクレオチド処置による、ビリルビンのレベルの対照レベルの2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
腎機能への影響を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、血中尿素窒素(BUN)及びクレアチニンの血漿濃度を測定した。結果をmg/dLで表して、表73に提示する。BUNレベルがPBS対照に比較して2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。全尿試料における尿タンパク質対クレアチニンの比もアンチセンスオリゴヌクレオチド処置の前と後で計算して、表74に提示する。尿タンパク質/クレアチニンの比がPBS対照に比較して5倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
すべてのラット群より入手した血液をヘマトクリット(HCT)、平均赤血球容積(MCV)、平均赤血球ヘモグロビン量(MCH)、及び平均赤血球ヘモグロビン濃度(MCHC)の測定及び分析、並びにWBC(好中球、リンパ球、及び単球)、RBC、及び血小板のような様々な血球とヘモグロビン含量の測定のために Antech Diagnostics へ送った。この結果を表75及び76に提示する。50%より多い血小板数の減少と3倍より多い単球数の増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
ヒト第11因子に標的指向するISISアンチセンスオリゴヌクレオチドでスプラーグ・ドーリーラットを処置して、このオリゴヌクレオチドの半減期、並びにオリゴヌクレオチドの分解と肝臓及び腎臓からの消失の経過時間について評価した。
数群の4匹のスプラーグ・ドーリーラットのそれぞれに、週2回、2週間、20 mg/kgのISIS416825、ISIS416826、ISIS416838、ISIS416850、ISIS416858、ISIS416864、ISIS416892、ISIS416925、ISIS416999、ISIS417002、又はISIS417003を皮下注射した。最終投薬から3日後、ラットを犠牲にして、肝臓と腎臓を分析用に回収した。
全長オリゴヌクレオチドの濃度、並びにオリゴヌクレオチド全体(分解型が含まれる)の濃度を測定した。使用した方法は、フェノール-クロロホルム(液体-液体)抽出に続く固相抽出からなる、すでに公表された方法(Leeds et al., 1996; Geary et al., 1999)の改良法である。抽出に先立って、内部標準(ISIS355868、27マー2'-O-メトキシエチル修飾ホスホロチオエートオリゴヌクレオチド、GCGTTTGCTCTTCTTCTTGCGTTTTTT、本明細書ではSEQ ID NO: 270と表記する)を加えた。定量下限濃度(LLOQ)がほぼ1.14μg/gである検量線を使用して、組織試料濃度を計算した。この結果をμg/g(肝臓又は腎臓の組織)として表して、表77及び78に提示する。次いで、WinNonlin ソフトウェア(PHARSIGHT)を使用して、半減期を計算した。
ヒト第11因子に標的指向するISISアンチセンスオリゴヌクレオチドでCD1マウスを処置して、様々な代謝マーカーのレベルの変化を評価した。
数群の5匹のCD1マウスのそれぞれに、週2回、6週間、50 mg/kgのISIS412223、ISIS412224、ISIS412225、ISIS413481、ISIS413482、ISIS416848、ISIS416849、ISIS416850、ISIS416851、ISIS416852、ISIS416853、ISIS416854、ISIS416855、ISIS416856、ISIS416857、ISIS416858、ISIS416859、ISIS416860、ISIS416861、ISIS416862、ISIS416863、ISIS416864、ISIS416865、ISIS416866、又はISIS416867を皮下注射した。対照群の10匹のCD1マウスには、週2回、6週間、PBSを皮下注射した。体重測定を処置期間の前とそれを通して行なった。最終投薬から3日後に、尿試料を採取して、マウスを犠牲にし、臓器重量を測定して、さらなる分析のために血液を採取した。
体重を試験の開始時に、そしてその後、週2回測定した。マウスの体重を表80に提示して、処置の開始時に記録したPBS対照体重に優るグラム数で増加を表す。肝臓、脾臓、及び腎臓の重量を試験の最後に測定して、体重の百分率として表80にまた提示する。肝臓及び脾臓の重量がPBS対照の6倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。
肝機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、トランスアミナーゼの血漿濃度を測定した。アラニントランスアミナーゼ(ALT)及びアスパラギン酸トランスアミナーゼ(AST)の測定値をIU/Lで表して、その結果を表81に提示する。ALT/ASTレベルが対照レベルの7倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。ビリルビン、コレステロール、及びアルブミンの血漿レベルも同じ臨床化学分析機を使用して測定し、mg/dLで表して、表81に提示する。アンチセンスオリゴヌクレオチド処置による、ビリルビンのレベルの対照レベルの2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
腎機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機を使用して、血中尿素窒素(BUN)の血漿濃度を測定し、結果をmg/dLで表して、表82に提示する。BUNレベルがPBS対照に比較して2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
すべてのマウス群より入手した血液をヘマトクリット(HCT)測定、並びにWBC(好中球、リンパ球、及び単球)、RBC、及び血小板のような様々な血球と全ヘモグロビン含量分析の測定のために Antech Diagnostics へ送った。この結果を表83及び84に提示する。50%より多い血小板数の減少と3倍より多い単球数の増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
CD1マウスにおいてすでに評価した15種のアンチセンスオリゴヌクレオチド(実施例37)についてさらに評価した。CD1マウスをISISアンチセンスオリゴヌクレオチドで処置して、このオリゴヌクレオチドの半減期、並びに肝臓におけるオリゴヌクレオチドの分解及び消失の経過時間について評価した。
数群の15匹のCD1マウスのそれぞれに、週2回、2週間、50 mg/kgのISIS412223、ISIS412225、ISIS413481、ISIS413482、ISIS416851、ISIS416852、ISIS416856、ISIS416860、ISIS416861、ISIS416863、ISIS416866、ISIS416867、ISIS412224、ISIS416848、又はISIS416859を皮下注射した。各群より5匹のマウスを、最終投薬後の3日目、28日目、及び56日目に犠牲にして、肝臓を分析用に回収した。
全長オリゴヌクレオチドの濃度を測定した。使用した方法は、フェノール-クロロホルム(液体-液体)抽出に続く固相抽出からなる、すでに公表された方法(Leeds et al., 1996; Geary et al., 1999)の改良法である。抽出に先立って、内部標準(ISIS355868、27マー2'-O-メトキシエチル修飾ホスホロチオエートオリゴヌクレオチド、GCGTTTGCTCTTCTTCTTGCGTTTTTT、本明細書ではSEQ ID NO: 270と表記する)を加えた。定量下限濃度(LLOQ)がほぼ1.14μg/gである検量線を使用して、組織試料濃度を計算した。この結果をμg/g(肝臓組織)として表して、表85に提示する。各オリゴヌクレオチドの半減期も、表85に提示した。
CD1マウスにおいてすでに評価した15種のアンチセンスオリゴヌクレオチド(実施例37)について、スプラーグ・ドーリーラットにおいて様々な代謝マーカーのレベルの変化をさらに評価した。
数群の4匹のスプラーグ・ドーリーラットのそれぞれに、週2回、6週間、50 mg/kgのISIS412223、ISIS412224、ISIS412225、ISIS413481、ISIS413482、ISIS416848、ISIS416851、ISIS416852、ISIS416856、ISIS416859、ISIS416860、ISIS416861、ISIS416863、ISIS416866、又はISIS416867を皮下注射した。対照群の4匹のスプラーグ・ドーリーラットには、週2回、6週間、PBSを皮下注射した。体重測定を処置期間の前とそれを通して行なった。最終投薬から3日後に、尿試料を採取してから、ラットを犠牲にし、臓器重量を測定して、さらなる分析のために血液を採取した。
ラットの体重を試験の開始時に、そしてその後、週2回測定した。体重を表86に提示して、処置の開始時に記録したPBS対照体重に優るグラム数の増加として表す。肝臓、脾臓、及び腎臓の重量を試験の最後に測定して、体重の百分率として表86にまた提示する。肝臓及び脾臓の重量がPBS対照の6倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。
肝機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、トランスアミナーゼの血漿濃度を測定した。アラニントランスアミナーゼ(ALT)及びアスパラギン酸トランスアミナーゼ(AST)の測定値をIU/Lで表して、その結果を表87に提示する。ALT/ASTレベルが対照レベルの7倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。ビリルビン及びアルブミンの血漿レベルも同じ臨床化学分析機を使用して測定して、その結果をmg/dLで表して、表87に提示する。アンチセンスオリゴヌクレオチド処置による、ビリルビンのレベルの対照レベルの2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
腎機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、血中尿素窒素(BUN)及びクレアチニンの血漿濃度を測定した。結果をmg/dLで表して、表88に提示する。BUNレベルがPBS対照に比較して2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。全尿試料における全尿タンパク質と尿タンパク質対クレアチニンの比をアンチセンスオリゴヌクレオチド処置の後で計算して、表88にまた提示する。尿タンパク質/クレアチニンの比がPBS対照に比較して5倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
すべてのラット群より入手した血液をヘマトクリット(HCT)測定、並びにWBC(好中球及びリンパ球)、RBC、及び血小板のような様々な血球と全ヘモグロビン含量の測定のために Antech Diagnostics へ送った。この結果を表89及び90に提示する。50%より多い血小板数の減少と3倍より多い単球数の増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
ヒト第11因子に標的指向するISISアンチセンスオリゴヌクレオチドでスプラーグ・ドーリーラットを処置して、このオリゴヌクレオチドの半減期、並びにオリゴヌクレオチドの分解と肝臓及び腎臓からの消失の経過時間について評価した。
数群の4匹のスプラーグ・ドーリーラットのそれぞれに、週2回、2週間、20 mg/kgのISIS412223、ISIS412224、ISIS412225、ISIS413481、ISIS413482、ISIS416848、ISIS416851、ISIS416852、ISIS416856、ISIS416859、ISIS416860、ISIS416861、ISIS416863、ISIS416866、又はISIS416867を皮下注射した。最終投薬から3日後、ラットを犠牲にして、肝臓と腎臓を回収した。
全長オリゴヌクレオチドの濃度、並びにオリゴヌクレオチド全体(分解型が含まれる)の濃度を測定した。使用した方法は、フェノール-クロロホルム(液体-液体)抽出に続く固相抽出からなる、すでに公表された方法(Leeds et al., 1996; Geary et al., 1999)の改良法である。抽出に先立って、内部標準(ISIS355868、27マー2'-O-メトキシエチル修飾ホスホロチオエートオリゴヌクレオチド、GCGTTTGCTCTTCTTCTTGCGTTTTTT、本明細書ではSEQ ID NO: 270と表記する)を加えた。定量下限濃度(LLOQ)がほぼ1.14μg/gである検量線を使用して、組織試料濃度を計算した。この結果をμg/g(肝臓又は腎臓の組織)として表して、表91及び92に提示する。次いで、WinNonlin ソフトウェア(PHARSIGHT)を使用して、半減期を計算した。
ヒト第11因子に標的指向する、6-8-6MOE及び5-8-5MOEモチーフのISISオリゴヌクレオチドをCD1マウスに投与して、様々な代謝マーカーのレベルの変化を評価した。
数群の5匹のCD1マウスのそれぞれに、週2回、6週間、50 mg/kgのISIS416850、ISIS445498、ISIS445503、ISIS445504、ISIS445505、ISIS445509、ISIS445513、ISIS445522、ISIS445530、ISIS445531、又はISIS445532を皮下注射した。対照群の5匹のマウスには、週2回、6週間、PBSを皮下注射した。体重測定を処置期間の前と最後に行った。最終投薬から3日後に、マウスを犠牲にし、臓器重量を測定して、さらなる分析のために血液を採取した。
マウスの体重変化を表94に提示して、試験の開始時に記録したPBS対照体重に優るグラム数で増加を表す。肝臓、脾臓、及び腎臓の重量を試験の最後に測定して、体重の百分率として表94にまた提示する。肝臓及び脾臓の重量がPBS対照の6倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。
肝機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、トランスアミナーゼの血漿濃度を測定した。アラニントランスアミナーゼ(ALT)及びアスパラギン酸トランスアミナーゼ(AST)の測定値をIU/Lで表して、その結果を表95に提示する。ALT/ASTレベルが対照レベルの7倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。ビリルビン及びアルブミンの血漿レベルも測定して、結果をmg/dLで表して、表95にまた提示する。アンチセンスオリゴヌクレオチド処置による、ビリルビンのレベルの対照レベルの2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
腎機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、血中尿素窒素(BUN)の血漿濃度を測定した。結果をmg/dLで表して、表96に提示する。BUNレベルがPBS対照に比較して2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
すべてのマウス群より入手した血液をヘマトクリット(HCT)測定、並びにWBC(好中球及びリンパ球)、RBC、及び血小板のような様々な血球と全ヘモグロビン含量の測定のために Antech Diagnostics へ送った。この結果を表97及び98に提示する。50%より多い血小板数の減少と3倍より多い単球数の増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
CD1マウスにおいてすでに評価した8種のアンチセンスオリゴヌクレオチド(実施例41)について、スプラーグ・ドーリーラットにおいて様々な代謝マーカーのレベルの変化をさらに評価した。
数群の4匹のスプラーグ・ドーリーラットのそれぞれに、週2回、6週間、50 mg/kgのISIS445498、ISIS445504、ISIS445505、ISIS445509、ISIS445513、ISIS445522、ISIS445530、又はISIS445531を皮下注射した。対照群のスプラーグ・ドーリーラットには、週2回、6週間、PBSを皮下注射した。体重測定を処置期間の前とそれを通して行なった。最終投薬から3日後に、尿試料を採取してから、ラットを犠牲にし、臓器重量を測定して、さらなる分析のために血液を採取した。
ラットの体重を試験の開始時に、そしてその後、週2回測定した。体重を表99に提示して、処置の開始時に記録したPBS対照重量に対する増加パーセントとして表す。肝臓、脾臓、及び腎臓の重量を試験の最後に測定して、体重の百分率として表99にまた提示する。肝臓及び脾臓の重量がPBS対照の6倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。
肝機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、トランスアミナーゼの血漿濃度を測定した。ALT(アラニントランスアミナーゼ)及びAST(アスパラギン酸トランスアミナーゼ)の血漿濃度を測定して、結果をIU/Lで表して、表100に提示する。ALT/ASTレベルが対照レベルの7倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。ビリルビン及びアルブミンの血漿レベルも同じ臨床化学分析機を使用して測定して、その結果をmg/dLで表して、表100に提示する。アンチセンスオリゴヌクレオチド処置による、ビリルビンのレベルの対照レベルの2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
腎機能に対するISISオリゴヌクレオチドの影響を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、血中尿素窒素(BUN)及びクレアチニンの血漿濃度を測定した。結果をmg/dLで表して、表101に提示する。BUNレベルがPBS対照に比較して2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。全尿試料における全尿タンパク質と尿タンパク質対クレアチニンの比をアンチセンスオリゴヌクレオチド処置の後で計算して、表101にまた提示する。尿タンパク質/クレアチニンの比がPBS対照に比較して5倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
すべてのラット群より入手した血液をヘマトクリット(HCT)測定、並びにWBC(好中球、リンパ球、及び単球)、RBC、及び血小板のような様々な血球と全ヘモグロビン含量の測定のために Antech Diagnostics へ送った。この結果を表102及び103に提示する。50%より多い血小板数の減少と3倍より多い単球数の増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
ヒト第11因子に標的指向する、4-8-4MOE、3-8-3MOE、2-10-2MOE、3-10-3MOE、及び4-10-4MOEモチーフのISISオリゴヌクレオチドをCD1マウスに投与して、様々な代謝マーカーのレベルの変化を評価した。
数群の5匹のCD1マウスのそれぞれに、週2回、6週間、50 mg/kgのISIS449707、ISIS449708、ISIS449409、ISIS449710、又はISIS449711を皮下注射した。対照群の5匹のCD1マウスには、週2回、6週間、PBSを皮下注射した。体重測定を処置期間の前と最後に行なった。最終投薬から3日後に、マウスを犠牲にし、臓器重量を測定して、さらなる分析のために血液を採取した。
試験の最後に記録したマウスの体重をグラム数で表して、表104に提示する。肝臓、脾臓、及び腎臓の重量も試験の最後に測定して、体重の百分率として表104にまた提示する。肝臓及び脾臓の重量がPBS対照の6倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。
肝機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、トランスアミナーゼの血漿濃度を測定した。ALT(アラニントランスアミナーゼ)及びAST(アスパラギン酸トランスアミナーゼ)の血漿濃度を測定して、結果をIU/Lで表して、表105に提示する。ALT/ASTレベルが対照レベルの7倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。ビリルビン及びアルブミンの血漿レベルも同じ臨床化学分析機を使用して測定して、その結果をmg/dLで表して、表105に提示する。アンチセンスオリゴヌクレオチド処置による、ビリルビンのレベルの対照レベルの2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
腎機能に対するISISオリゴヌクレオチドの効果を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、血中尿素窒素(BUN)及びクレアチニンの血漿濃度を測定した。結果をmg/dLで表して、表106に提示する。BUNレベルがPBS対照に比較して2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
すべてのマウス群より入手した血液をヘマトクリット(HCT)測定、並びにWBC(好中球、リンパ球、及び単球)、RBC、及び血小板のような様々な血球と全ヘモグロビン含量の測定のために Antech Diagnostics へ送った。この結果を表107及び108に提示する。50%より多い血小板数の減少と3倍より多い単球数の増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
CD1マウスにおいてすでに評価した5種のアンチセンスオリゴヌクレオチド(実施例43)について、スプラーグ・ドーリーラットにおいて様々な代謝マーカーのレベルの変化をさらに評価した。
数群の4匹のスプラーグ・ドーリーラットのそれぞれに、週2回、6週間、50 mg/kgのISIS449707、ISIS449708、ISIS449709、ISIS449710、又はISIS449711を皮下注射した。対照群の4匹のスプラーグ・ドーリーラットには、週2回、6週間、PBSを皮下注射した。体重測定を処置期間の前とそれを通して行なった。最終投薬から3日後に、尿試料を採取してから、ラットを犠牲にし、臓器重量を測定して、さらなる分析のために血液を採取した。
ラットの体重を試験の開始時と試験の終了時に測定した。体重の変化を表109に提示して、処置の開始時に記録したPBS対照重量に優る増加としてグラム数で表す。肝臓、脾臓、及び腎臓の重量を試験の最後に測定して、体重の百分率として表109にまた提示する。肝臓及び脾臓の重量がPBS対照の6倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。
肝機能に対するISISオリゴヌクレオチドの影響を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、ALT及びASTの血漿濃度を測定した。アラニントランスアミナーゼ(ALT)及びアスパラギン酸トランスアミナーゼ(AST)の血漿濃度を測定して、その結果をIU/Lで表して、表110に提示する。ALT/ASTレベルが対照レベルの7倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。ビリルビン及びアルブミンの血漿レベルも測定して、結果をmg/dLで表して、表110に提示する。アンチセンスオリゴヌクレオチド処置による、ビリルビンのレベルの対照レベルの2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
腎機能に対するISISオリゴヌクレオチドの影響を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、BUN及びクレアチニンの血漿濃度を測定した。結果をmg/dLで表して、表111に提示する。BUNレベルがPBS対照に比較して2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。全尿試料における全尿タンパク質と尿タンパク質対クレアチニンの比をアンチセンスオリゴヌクレオチド処置の後で計算して、表111にまた提示する。尿タンパク質/クレアチニンの比がPBS対照に比較して5倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
すべてのラット群より入手した血液をヘマトクリット(HCT)測定、並びにWBC(好中球、リンパ球、及び単球)、RBC、及び血小板のような様々な血球と全ヘモグロビン含量の測定のために Antech Diagnostics へ送った。この結果を表112及び113に提示する。50%より多い血小板数の減少と3倍より多い単球数の増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
いくつかのアンチセンスオリゴヌクレオチドをカニクイザルにおいて試験して、第11因子活性、抗凝固及び出血の時間、肝臓及び腎臓での分布、及び忍容性に対する、このオリゴヌクレオチドの薬理効果を判定した。この試験に使用したすべてのISISオリゴヌクレオチドは、標的ヒト第11因子mRNAに標的指向して、アカゲザルの遺伝子配列とも完全に交差反応性である(表44を参照のこと)。アカゲザルのISISオリゴヌクレオチドは、カニクイザルの遺伝子配列とも完全に交差反応性であると予測される。本試験を行った時点で、カニクイザルのゲノム配列は、米国立生物工学情報センター(NCBI)のデータベースで入手可能でなかった;故に、カニクイザルの遺伝子配列との交差反応性を確かめることはできなかった。
2匹の雄ザルと3匹の雌ザルからそれぞれなる数群のサルに、ISIS416838、ISIS416850、ISIS416858、ISIS416864、又はISIS417002を上昇用量で皮下注射した。そのサルへアンチセンスオリゴヌクレオチドを5 mg/kgで週3回、1週間;5 mg/kgで週2回、2及び3週間;10 mg/kgで週3回、4週間;10 mg/kgで週2回、5及び6週間;25 mg/kgで週3回、7週間;及び、25 mg/kgで週2回、8、9、10、11、及び12週間投与した。2匹の雄ザルと3匹の雌ザルからなる1つの対照群に、同じ投薬レジメンに従って、PBSを皮下投与した。2匹の雄ザルと3匹の雌ザルからなる追加の実験群に、慢性的でより低い用量レジメンでISIS416850を皮下注射した。そのサルへアンチセンスオリゴヌクレオチドを5 mg/kgで週3回、1週間;5 mg/kgで週2回、2及び3週間;10 mg/kgで週3回、4週間;及び、10 mg/kgで週2回、5〜12週間投与した。体重を毎週測定した。血漿中の第11因子タンパク質活性分析、フィブリノーゲン測定、PT及びaPTT測定、出血時間、及び様々な血液学的因子の測定のために、血液試料を処置の開始の14日前と5日前に、そしてその後は週1回採取した。85日目、このサルを、深い麻酔下の間に瀉血により安楽死させて、臓器をさらなる分析用に回収した。
85日目に、プライマープローブセット:LTS00301(フォワードプライマー配列:ACACGCATTAAAAAGAGCAAAGC、本明細書においてSEQ ID NO: 271として表記する;リバースプライマー配列:CAGTGTCATGGTAAAATGAAGAATGG、本明細書においてSEQ ID NO: 272として表記する;及び、プローブ配列:TGCAGGCACAGCATCCCAGTGTTCTX、本明細書においてSEQ ID NO: 273として表記する)を使用する第11因子のリアルタイムPCR分析のために肝臓組織よりRNAを抽出した。PBS対照に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表114に示すように、ISISオリゴヌクレオチドでの処置は、PBS対照と比較して、第11因子mRNAの有意な低下をもたらした。
全群のサルより異なる日に採取した血漿試料を、アフィニティー精製ポリクローナル抗第11因子抗体を捕捉抗体として、そしてペルオキシダーゼ共役ポリクローナル抗第11因子抗体を検出抗体として使用するサンドイッチ式ELISAアッセイ(Affinity Biologicals 社)によって分析した。サルの血漿をアッセイ用に50倍希釈した。ペルオキシダーゼ活性を、基質:o-フェニレンジアミンとのインキュベーションによって発現させた。発現された色は、マイクロプレートリーダーを490 nmで使用して定量して、試料中の第11因子の濃度に比例するとみなされた。
クエン酸ナトリウムを含有する試験管に血液試料を採取した。PT及びaPTTは、ACL9000凝固機器(Instrumentation Laboratory、イタリア)を用いて、同一2検体で定量した。試験した系列希釈クエン酸添加対照サル血漿の標準曲線で結果を内挿して、報告結果を正常値パーセントで示した。
血液試料を様々な時点で採取して、凝固時間に基づいたF11アッセイを使用して、第11因子プロ酵素を測定した。凝固時間は、ST4半自動化凝固測定機器(Diagnostica Stago、ニュージャージー州)を用いて、同一2検体で定量した。BSA入りHEPES-NaCl緩衝液で20倍希釈した30μlのクエン酸添加試料血漿を30μlのaPTT試薬(自動化aPTT、Organon Technika、ノースカロライナ州)と30μlの第11因子欠乏クエン酸添加血漿(George King Bio-Medical 社)とともに37℃で5分間インキュベートして、30μlの25 mM CaCl2の添加を続けて、凝固を開始させた。系列希釈したクエン酸添加対照血漿の標準曲線で結果を内挿した。
9分量の新鮮なサル血漿を1分量のクエン酸三ナトリウムへ採取した。この試料について、ACL9000凝固機器(Instrumentation Laboratory、イタリア)を使用して、フィブリノーゲン含量を評価した。結果をmg/dLで表して、表119に提示する。慢性用量レジメンで投与したISISオリゴヌクレオチドのISIS416850を他のオリゴヌクレオチドからアステリスク(*)で識別する。
処置期間の間の異なる日に、Surgicutt Jr. デバイス(ITC、ニュージャージー州)を使用して、出血アッセイを実施した。サルを、その腕を安定支持具に入れた状態で、モンキーチェアに入れた。この腕を軽く剃毛して、血圧計を上腕に装着した。血圧計のカフ(cuff)を40 mmHgへ上昇させて、この手順を通してこの圧力を維持した。切開する上腕の領域を防腐スワブで清潔にして、Surgicutt Jr. デバイスを使用して、肘前皮線(antecubital crease)に平行した、その5 cm下の側面部、前腕の掌側表面上を切開した。切開を行った瞬間に、ストップウォッチを始動させた。30秒ごとに、切開部からの血液を、血栓の形成が妨害されないように、切開部に直に触ることなく、吸取紙を使用して拭った。血液がもはや吸取紙を汚さなくなるまで、血液を30秒ごとに拭った。このときにストップウォッチを止めて、出血時間を決定した。血圧計を動物の腕から外し、切開部位を防腐的に綿棒処理して、創傷閉鎖ストリップを当てた。この結果を秒数で表して、表Xに提供する。この結果を表120に提供する。慢性用量レジメンで投与したISISオリゴヌクレオチドのISIS416850を他のオリゴヌクレオチドからアステリスク(*)で識別する。
血漿試料へ1ミリモル/L ADP及び/又は3μgコラーゲン(表121に概括するように、採取日に依る)を加えることによって、血小板凝集を開始させて、そのまま10分間進行させた。電気抵抗又はインピーダンスの変化と血小板形状変化後の凝集の初期傾斜(initial slope)の変化を記録することによって、凝集を特性決定した。この凝集試験は、それぞれの採取日に、試料につき2回実施して、その平均値を取った。慢性用量レジメンで投与したISISオリゴヌクレオチドのISIS416850を他のオリゴヌクレオチドからアステリスク(*)で識別する。
投薬レジメンを通して週1回、体重を記録した。各群の測定値をグラム数で表して、表122に示す。この結果は、アンチセンスオリゴヌクレオチドでの処置が、PBS対照に比較して体重の有意な変化をもたらす可能性がある、動物の健康における有害な変化を引き起こさなかったことを示している。動物を安楽死させた後で臓器重量を記録して、肝臓、腎臓、及び脾臓を採取して秤量した。この結果を表123に提示すると、脾臓重量の増加を示すISIS416858以外は、PBS対照に比較して重量の有意な変化も示さない。慢性用量レジメンで投与したISISオリゴヌクレオチドのISIS416850を他のオリゴヌクレオチドからアステリスク(*)で識別する。
肝機能に対するISISオリゴヌクレオチドの影響を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、トランスアミナーゼの血漿濃度を測定した。ALT(アラニントランスアミナーゼ)及びAST(アスパラギン酸トランスアミナーゼ)の血漿濃度を測定して、その結果をIU/Lで表して、表124及び125に提示する。ALT/ASTレベルが対照レベルの7倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドを、さらなる試験のために選択した。ビリルビンの血漿濃度も測定して、結果をmg/dLで表して、表126に提示する。アンチセンスオリゴヌクレオチド処置による、ビリルビンのレベルの対照レベルの2倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。慢性用量レジメンで投与したISISオリゴヌクレオチドのISIS416850を他のオリゴヌクレオチドからアステリスク(*)で識別する。
腎機能に対するISISオリゴヌクレオチドの影響を評価するために、尿試料を採取した。アンチセンスオリゴヌクレオチド処置後の尿試料中の尿タンパク質対クレアチニンの比を計算して、表127に提示する。尿タンパク質/クレアチニン比がPBS対照に比較して5倍より多い増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。
全長オリゴヌクレオチドの濃度、並びにオリゴヌクレオチドの分解と肝臓及び腎臓からの消失の経過時間を評価した。使用した方法は、フェノール-クロロホルム(液体-液体)抽出に続く固相抽出からなる、すでに公表された方法(Leeds et al., 1996; Geary et al., 1999)の改良法である。抽出に先立って、内部標準(ISIS355868、27マー2'-O-メトキシエチル修飾ホスホロチオエートオリゴヌクレオチド、GCGTTTGCTCTTCTTCTTGCGTTTTTT、本明細書ではSEQ ID NO: 270と表記する)を加えた。定量下限濃度(LLOQ)がほぼ1.14μg/gである検量線を使用して、組織試料濃度を計算した。次いで、WinNonlin ソフトウェア(PHARSIGHT)を使用して、半減期を計算した。この結果をμg/g(肝臓又は腎臓の組織)として表して、表128及び129に提示する。
全群のサルより入手した血液を、HCT、MCV、MCH、及びMCHC分析、並びにWBC(好中球、リンパ球、単球、好酸球、好塩基球、網状赤血球)、RBC、血小板のような様々な血球と全ヘモグロビン含量の測定のために韓国安全性評価研究所(KIT)へ送った。この結果を表130〜143に提示する。50%より多い血小板数の減少と3倍より多い単球数の増加に影響しないアンチセンスオリゴヌクレオチドをさらなる試験のために選択した。慢性用量レジメンで投与したISISオリゴヌクレオチドのISIS416850を他のオリゴヌクレオチドからアステリスク(*)で識別する。
上昇する用量レジメンで投与するPBS、ISIS416850、及びISIS416858で処置したサルの群より入手した血液試料を、ケモカイン及びサイトカインのレベルの測定のために Pierce Biotechnology(マサチューセッツ州ウォバーン)へ送った。それぞれの霊長動物の抗体を使用してIL-1β、IL-6、IFN-γ、及びTNF-αのレベルを測定して、それぞれの交差反応ヒト抗体を使用してIL-8、MIP-1α、MCP-1、MIP-1β、及びRANTESのレベルを測定した。処置の開始の14日前と、サルを安楽死させた85日目に測定値を取った。この結果を表144及び145に提示する。
齧歯動物の忍容性試験(実施例41〜44)より選択したいくつかのアンチセンスオリゴヌクレオチドをカニクイザルにおいて試験して、カニクイザルモデルにおけるその薬理効果、第11因子活性に対する相対効力、及び忍容性を判定した。このアンチセンスオリゴヌクレオチドは、先に記載のサル試験(実施例45)より選択したISIS416850及びISIS416858とも比較した。この試験に使用したすべてのISISオリゴヌクレオチドは、ヒト第11因子mRNAに標的指向して、アカゲザルの遺伝子配列とも完全に交差反応性である(表44及び46を参照のこと)。アカゲザルのISISオリゴヌクレオチドは、カニクイザルの遺伝子配列とも完全に交差反応性であると予測される。本試験を行った時点で、カニクイザルのゲノム配列は、米国立生物工学情報センター(NCBI)のデータベースで入手可能でなかった;故に、カニクイザルの遺伝子配列との交差反応性を確かめることはできなかった。
2匹の雄ザルと2匹の雌ザルからそれぞれなる数群のサルに、25 mg/kgのISIS416850、ISIS449709、ISIS445522、ISIS449710、ISIS449707、ISIS449711、ISIS449708、416858、及びISIS445531を皮下注射した。そのサルへアンチセンスオリゴヌクレオチドを25 mg/kgで週3回、1週間、そして25 mg/kgで週2回、2〜8週間投与した。2匹の雄ザルと2匹の雌ザルからなる対照群に、同じ投薬レジメンに従って、PBSを皮下投与した。体重を処置の開始の14日前と7日前に記録して、その後は処置期間を通して毎週測定した。血液試料は、PT及びaPTT測定と様々な血液学的因子の測定のために、処置の開始の14日前と5日前に、そしてその後は投薬レジメンの間に数回採取した。55日目、このサルを、深い麻酔下の間に瀉血により安楽死させて、臓器をさらなる分析用に回収した。
55日目に、プライマープローブセット:LTS00301を使用する第11因子のリアルタイムPCR分析のために肝臓組織よりRNAを抽出した。PBS対照に対する第11因子の阻害パーセントとして結果を提示する。表146に示すように、ISIS416850、ISIS449709、ISIS445522、ISIS449710、ISIS449707、ISIS449708、ISIS416858、及びISIS445531での処置は、PBS対照と比較して、第11因子mRNAの有意な低下をもたらした。
全群のサルより異なる日に採取した血漿試料を、アフィニティー精製ポリクローナル抗第11因子抗体を捕捉抗体として、そしてペルオキシダーゼ共役ポリクローナル抗第11因子抗体を検出抗体として使用するサンドイッチ式ELISAアッセイ(Affinity Biologicals 社)によって分析した。サルの血漿をアッセイ用に50倍希釈した。ペルオキシダーゼ活性を、基質:o-フェニレンジアミンとのインキュベーションによって発現させた。発現された色は、マイクロプレートリーダーを490 nmで使用して定量して、試料中の第11因子の濃度に比例するとみなされた。
ISISオリゴヌクレオチドで処置したサルからの血小板欠乏血漿(PPP)を使用して、PTとaPTTを測定した。PT及びaPTTの数値を表148及び149に提供して、国際標準化比(INR)値として報告する。PT及びaPTTのINR値は、各実験群のPT又はaPTT値をPBS処置群のPT又はaPTTで割ることによって定量した。次いで、使用する組織因子の国際感度指数(ISI)の冪数だけこの比を掛け合わせた。表148に示すように、PTは、ISISオリゴヌクレオチドで処置したサルにおいて、有意には延長しなかった。しかしながら、aPTTは、表148に提示するように、ISIS416850、ISIS445522、及びISIS416858で処置した群において、有意に延長した。これらのデータは、第11因子のアンチセンス低下が血液凝固の接触活性化経路には影響を及ぼすが、その外因性経路には影響を及ぼさないことを示唆する。故に、これらのISISオリゴヌクレオチドでの第11因子のアンチセンス低下は、組織損傷への応答ではなく、異常な血管壁に応答した血栓又は血塊の形成を阻害するのに有用である。
各群の体重をグラム数で表して、表150に示す。この結果は、アンチセンスオリゴヌクレオチドでの処置が、PBS対照に比較して体重の有意な変化をもたらす可能性がある、動物の健康における有害な変化を引き起こさなかったことを示している。55日目に動物を安楽死させた後で臓器重量を記録して、肝臓、腎臓、及び脾臓を採取した。この結果を体重の百分率として表して表150に提示すると、脾臓重量の増加を引き起こしたISIS449711以外は、PBS対照に比較して重量の有意な変化も示さない。
肝機能に対するISISオリゴヌクレオチドの影響を評価するために、自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、ALT及びASTの血漿濃度を測定した。アラニントランスアミナーゼ(ALT)及びアスパラギン酸トランスアミナーゼ(AST)の血漿濃度を測定して、その結果をIU/Lで表して、表152及び153に提示する。ビリルビンの血漿濃度も測定して、結果をmg/dLで表して、表154に提示する。表152〜154に観測されるように、アンチセンスオリゴヌクレオチド処置後、肝臓代謝マーカーのいずれにも有意な増加がなかった。
腎機能に対するISISオリゴヌクレオチドの影響を評価するために、尿試料を異なる日に採取した。自動化臨床化学分析機(日立オリンパス、AU400e、ニューヨーク州メルヴィル)を使用して、BUNレベルを様々な時点で測定して、その結果を表155に提示する。アンチセンスオリゴヌクレオチド処置後の尿試料における尿タンパク質対クレアチニンの比も49日目に計算して、結果を表156に提示する。表155及び156に観測されるように、アンチセンスオリゴヌクレオチド処置後、腎臓代謝マーカーのいずれにも有意な増加がなかった。
全群のサルより異なる日に入手した血液を、HCT、MCV、MCH、及びMCHC測定、並びにWBC(好中球と単球)、RBC、及び血小板のような様々な血球と全ヘモグロビン含量の測定のために韓国安全性評価研究所(KIT)へ送った。この結果を表157〜166に提示する。
全群のサルより入手した血液試料を、ケモカイン及びサイトカインレベルの測定のためにPierce Biotechnology(マサチューセッツ州ウォバーン)へ送った。それぞれの霊長動物の抗体を使用してIL-1β、IL-6、IFN-γ、及びTNF-αのレベルを測定して、それぞれの交差反応ヒト抗体を使用してIL-8、MIP-1α、MCP-1、MIP-1β、及びRANTESのレベルを測定した。処置の開始の14日前と、サルを安楽死させた55日目に測定値を取った。この結果を表167及び168に提示する。
165〜185 mg/mLの濃度で40 cPより高い粘度を有するアンチセンスオリゴヌクレオチドを篩い落とす目的で、ヒト第11因子に標的指向するアンチセンスオリゴヌクレオチドの粘度を測定した。
Claims (29)
連結デオキシヌクレオシドからなるギャップセグメント;
連結ヌクレオシドからなる5'ウィングセグメント;
連結ヌクレオシドからなる3'ウィングセグメント;
を含み、
ここでギャップセグメントは、5'ウィングセグメントと3'ウィングセグメントにすぐ隣接してその間に位置して、そしてここでそれぞれのウィングセグメントのそれぞれのヌクレオシドは、修飾糖を含む、請求項1〜16のいずれか1項に記載の化合物。
10個の連結デオキシヌクレオシドからなるギャップセグメント;
5個の連結ヌクレオシドからなる5'ウィングセグメント;
5個の連結ヌクレオシドからなる3'ウィングセグメント;
を含み、
ここでギャップセグメントは、5'ウィングセグメントと3'ウィングセグメントにすぐ隣接してその間に位置して、ここでそれぞれのウィングセグメントのそれぞれのヌクレオシドは、2'-O-メトキシエチル糖を含み;そしてここでそれぞれのヌクレオシド間連結は、ホスホロチオエート連結である、請求項17の化合物。
10個の連結デオキシヌクレオシドからなるギャップセグメント;
5個の連結ヌクレオシドからなる5'ウィングセグメント;
5個の連結ヌクレオシドからなる3'ウィングセグメント;
を含み、
ここでギャップセグメントは、5'ウィングセグメントと3'ウィングセグメントにすぐ隣接してその間に位置して、ここでそれぞれのウィングセグメントのそれぞれのヌクレオシドは、2'-O-メトキシエチル糖を含み;そしてここでそれぞれのヌクレオシド間連結は、ホスホロチオエート連結であり、そしてそれぞれのシトシンが5-メチルシトシンである、
請求項1〜18のいずれか1項に記載の化合物。
10個の連結デオキシヌクレオシドからなるギャップセグメント;
5個の連結ヌクレオシドからなる5'ウィングセグメント;
5個の連結ヌクレオシドからなる3'ウィングセグメントを含み、
ここでギャップセグメントは、5'ウィングセグメントと3'ウィングセグメントにすぐ隣接してその間に位置して、ここでそれぞれのウィングセグメントのそれぞれのヌクレオシドは、2'-O-メトキシエチル糖を含み;そしてここでそれぞれのヌクレオシド間連結は、ホスホロチオエート連結であり、そしてそれぞれのシトシンが5-メチルシトシンである、
請求項1〜18のいずれか1項に記載の化合物。
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