JP5751640B2 - ｐ３８ＭＡＰキナーゼ阻害剤 - Google Patents

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Description

本発明は、ｐ３８マイトジェン活性化タンパク質キナーゼ酵素、とりわけそのαおよびγキナーゼサブタイプの阻害剤（本明細書でｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤と称される）である化合物、ならびに製薬学的組合せ中を包含する治療、とりわけＣＯＰＤのような肺の炎症性疾患を包含する炎症性疾患の処置におけるその使用に関する。
それぞれ組織特異的発現パターンを表す４種のｐ３８ ＭＡＰＫアイソフォーム（それぞれα、β、γおよびδ）が同定されている。ｐ３８ ＭＡＰＫαおよびβアイソフォームは身体全体で遍在性に発現され、そして多くの異なる細胞型で見出される。ｐ３８ ＭＡＰＫαおよびβアイソフォームはある種の既知の小分子ｐ３８ ＭＡＰＫ阻害剤により阻害される。古い世代の化合物は、これらのアイソフォームの遍在性の発現パターンおよび該化合物のオフターゲット効果により高度に毒性であった。より最近の阻害剤は、ｐ３８ ＭＡＰＫαおよびβアイソフォームに高度に選択的でありかつより広範な安全域を有するように改良されている。
ｐ３８ ＭＡＰＫγおよびδアイソフォームについてはより少なく既知である。これらのアイソフォームは（ｐ３８αおよびｐ３８βアイソフォームと異なり）特定の組織／細胞で発現される。ｐ３８ ＭＡＰＫ−δアイソフォームは、膵、精巣、肺、小腸および腎でより多く発現される。それはまたマクロファージ中でも豊富であり（非特許文献１）、かつ、好中球、ＣＤ４＋ Ｔ細胞および内皮細胞で検出可能である（非特許文献２、非特許文献３）。ｐ３８ ＭＡＰＫγの発現についてはほとんど知られていないが、しかしそれは脳、骨格筋および心、ならびにリンパ球およびマクロファージ中でより多く発現されている（非特許文献２）。
ｐ３８ ＭＡＰＫ−γおよび−δの選択的小分子阻害剤は現在利用可能でないが、しかし１種の既存化合物ＢＩＲＢ ７９６がパンアイソフォーム（ｐａｎ−ｉｓｏｆｏｒｍ）阻害活性を有することが既知である。ｐ３８γおよびｐ３８δ阻害は、ｐ３８ ＭＡＰＫαを阻害するのに必要とされるものより高濃度の該化合物で観察される（非特許文献４）。ＢＩＲＢ ７９６はまた、上流のキナーゼＭＫＫ６若しくはＭＫＫ４によるｐ３８ ＭＡＰＫ若しくはＪＮＫのリン酸化も減少した。Ｋｕｍａは、ＭＡＰＫへの阻害剤の結合により引き起こされるコンホメーション変化が、そのリン酸化部位および上流の活性化因子のドッキング部位の双方の構造に影響を及ぼし、従ってｐ３８ ＭＡＰＫ若しくはＪＮＫのリン酸化を減少させうる可能性を論じた。
ｐ３８ ＭＡＰキナーゼは、ヒト疾患における慢性の持続性炎症、例えば重症の喘息およびＣＯＰＤの開始および維持に関与するシグナル伝達経路の多くで中枢的な役割を演じていると考えられている。現在、ｐ３８ ＭＡＰキナーゼが様々な炎症前サイトカインにより活性化されること、ならびにその活性化がさらなる炎症前サイトカインの動員および遊離をもたらすことを示す豊富な文献が存在する。事実、いくつかの臨床研究からのデータは、ｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤で処置中の患者における疾患活動性の有益な変化を示している。例えば、非特許文献１は、ヒトＰＢＭＣからのＴＮＦα（しかしＩＬ−８でない）遊離に対するｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤の阻害効果を記述している。慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）の処置におけるｐ３８ ＭＡＰキナーゼの阻害剤の使用が提案されている。ｐ３８ ＭＡＰＫα／βに標的指向化される小分子阻害剤は、一般にコルチコステロイド非感受性であるＣＯＰＤを伴う患者から得た細胞および組織（非特許文献１）、ならびにｉｎ ｖｉｖｏ動物モデル（非特許文献５；非特許文献６；非特許文献７）で炎
症の多様なパラメータの低下において有効であることが判明している。Ｉｒｕｓｅｎらもまた、核中のグルココルチコイド受容体（ＧＲ）の結合親和性の低下を介するコルチコステロイド非感受性に対するｐ３８ ＭＡＰＫ α／βの関与の可能性を示唆している（非特許文献８）。ＡＭＧ５４８、ＢＩＲＢ ７９６、ＶＸ７０２、ＳＣＩＯ４６９およびＳＣＩＯ３２３を包含する様々なｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤での臨床経験が非特許文献９に記述されている。
ＣＯＰＤは、根底にある炎症が、吸入コルチコステロイドの抗炎症効果に対し実質的に抵抗性であることが報告されている状態である。結果、ＣＯＰＤの効果的な一処置戦略は、固有の抗炎症効果を有し、かつ、ＣＯＰＤ患者からの肺組織の吸入コルチコステロイドに対する感受性を増大させることが可能であるの双方である介入を開発することであろう。Ｍｅｒｃａｄｏらの最近の刊行物（非特許文献１０）は、ｐ３８γを発現停止させることがコルチコステロイドに対する感受性を回復させる可能性を有することを示している。従って、ＣＯＰＤおよび重症の喘息の処置のためのｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤の使用に対する「２方向の」利益が存在しうる。
今や、喘息および／若しくはＣＯＰＤに苦しむ患者での悪化の開始における呼吸器ウイルス感染症の役割を関係させる実質的な多くのエビデンスが存在する。悪化は疾患症候学の制御を再確立するための治療強度の増大を必要とする。重症の場合、悪化はおそらく患者の入院、若しくはその最も極端な場合は死をもたらすであろう。悪化と一般に関連するウイルスは、ライノウイルス、インフルエンザおよびＲＳウイルスを包含する。これらのウイルスに対する細胞応答は、今や、ＩＣＡＭ１（細胞接着分子１）の上方制御およびサイトカインの遊離、ならびにウイルス粒子の複製を包含することが既知である。これらのウイルス応答に対するｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤の効果へのいくらかの研究が存在し、そして、いくつかの報告は保護効果がｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤で検出され得ることを示唆している。とりわけ、いくつかの報告は、ＩＬ−８のウイルス誘発性遊離の阻害が既知化合物ＳＢ２０３５８０でｉｎ ｖｉｔｒｏで達成され得ることを示唆している。前臨床ｉｎ ｖｉｖｏモデルでライノウイルス誘発性炎症およびウイルス複製を低下させる剤の有効性の評価が大きな課題のままであることに注目すべきである。しかしながら、マウスにおけるインフルエンザおよびモルモットにおけるパラインフルエンザの十分に確立されたｉｎ ｖｉｖｏモデルが存在する。
ヒトの慢性炎症性疾患の処置におけるｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤の利用性を妨害する主な障害物は、患者で観察される毒性であった。これは、上で具体的に挙げられた全部を包含する進行された該化合物の多くの臨床開発からの撤退をもたらすのに十分に重篤であった。
改良された治療可能性を有する、とりわけ適切な治療用量でより有効であり、より長期間作用性であり、かつ／若しくはより少なく毒性である、ｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤として治療上有用な新たな化合物を同定かつ開発する必要性が存続する。本発明の一目的は、良好な抗炎症可能性を示す、例えばある種のサブタイプ特異性を伴いｐ３８ ＭＡＰキナーゼを阻害する化合物を提供することである。
Ｓｍｉｔｈ，Ｓ．Ｊ．（２００６）Ｂｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．１４９：３９３−４０４ ｗｗｗ．ｇｅｎｅｃａｒｄ．ｏｒｇ Ｋａｒｉｎ，Ｋ．（１９９９）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ． Ｋｕｍａ，Ｙ．（２００５）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２８０：１９４７２−１９４７９ Ｕｎｄｅｒｗｏｏｄ，Ｄ．Ｃ．ら（２０００）２７９：８９５−９０２ Ｎａｔｈ，Ｐ．ら（２００６）Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．５４４：１６０−１６７ Ｍｅｄｉｃｈｅｒｌａ Ｓ．ら（２００８）Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．３２４：９２１−９２９ Ｉｒｕｓｅｎ，Ｅ．ら（２００２）Ｊ．Ａｌｌｅｒｇｙ Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１０９：６４９−６５７ Ｌｅｅら（２００５）Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．１２，：２９７９−２９９４ Ｍｅｒｃａｄｏら（２００７）Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｈｏｒａｃｉｃ Ｓｏｃｉｅｔｙ Ａｂｓｔｒａｃｔ Ａ５６
［発明の要約］
本発明により、式（１）の化合物
または、その全部の立体異性体および互変異性体を包含するその製薬学的に許容できる塩若しくは溶媒和物
が提供される。
式（１）の化合物の系統名は、Ｎ−（４−（４−（３−（３−ｔｅｒｔ−ブチル−１−ｐ−トリル−１Ｈ−ピラゾル−５−イル）ウレイド）ナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）−２−メトキシアセトアミドである。
［発明の詳細な記述］
化合物（１）の塩の例は、限定されるものでないがＨＣｌおよびＨＢｒ塩のような強無機酸の酸付加塩、ならびにメタンスルホン酸塩のような強有機酸の付加塩を挙げることができる、全部の製薬学的に許容できる塩を包含する。
本明細書で下で使用されるところの式（１）の化合物の定義は、文脈が別の方法で具体的に示さない限り、前記化合物の塩、溶媒和物および全部の互変異性体を包含することを意図している。溶媒和物の例は水和物を包含する。
本明細書に提供される本発明は、式（１）の化合物のプロドラッグ、すなわちｉｎ ｖｉｖｏで分解しかつ／若しくは代謝されて式（１）の有効成分を提供する化合物にまで広がる。プロドラッグの一般的な例は、単純エステル、ならびに混合炭酸エステル、カルバメート、配糖体、エーテル、アセタールおよびケタールのような他のエステルを包含する
。
本発明のさらなる一局面において、式（１）の化合物の１種若しくはそれ以上の代謝物、とりわけ式（１）の化合物の治療活性の１種若しくはそれ以上を保持する代謝物が提供される。本明細書で使用されるところの代謝物は、限定されるものでないが酸化代謝物および／若しくは例えばＯ−脱アルキル化から生成される代謝物を挙げることができる、式（１）の化合物の代謝からｉｎ ｖｉｖｏで産生される化合物である。
本開示の化合物は、指定される原子が天然に存在する若しくは天然に存在しない同位元素であるものを包含する。一態様において、同位元素は安定同位元素である。従って、本開示の化合物は例えば重水素含有化合物などを包含する。
本開示は、定義される本明細書の化合物の全部の多形の形態にもまた広がる。
式（１）の化合物の製造経路の一例をスキーム１に下に示す：
従って、式（１）の化合物は、式（８）の化合物：
を式（Ａ）の化合物：
［ここでＬＧ１は脱離基、例えばクロロのようなハロゲンである］
と反応させることを含んでなる方法により製造し得る。
該反応は、適しては塩基（例えばＮ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン）の存在下で実施する。
式（８）の化合物は、式（７）の化合物
を式（６）の化合物：
および式（Ｂ）の化合物：
［ここでＬＧ２およびＬＧ３はそれぞれ独立に脱離基を表す（例えば、ＬＧ２がＣｌ３ＣＯ−でありかつＬＧ３がＣｌである。あるいは、ＬＧ２およびＬＧ３の双方が同一であることができ、例えばＬＧ２およびＬＧ３が双方ともイミダゾリル若しくはクロロのようなハロゲンを表す）］
と反応させることにより製造し得る。
該反応は、適しては、化学的に感受性の基に適切な保護基を使用して非プロトン性溶媒（例えばジクロロメタン）中で実施する。
式（６）の化合物は、例えば均質なパラジウム触媒のような適する触媒の存在下での式（４ａ）の化合物：
［ここでＰ１は適するアミン保護基でありかつＬＧ４はクロロのような脱離基を表す］
の、式（Ｃ）の化合物
との反応、次いでアミン保護基の除去により製造しうる。例えば、保護基がｔｅｒｔ−ブ
トキシカルボニルである場合、それらの除去はジクロロメタン中ＴＦＡでの処理により達成し得る。
式（４ａ）の化合物は、式（３ａ）の化合物：
［ここでＬＧ４はクロロのような脱離基を表す］
を、例えば二炭酸ジ−ｔｅｒｔ−ブチルおよびＤＭＡＰを使用して保護することにより製造し得る。
式（３ａ）の化合物は、式（２）の化合物：
を、適切な反応条件下、例えばカリウムｔｅｒｔ−ブトキシドおよびＮ−メチルピロリドン（１−メチルピロリジン−２−オン）のような強塩基の存在下で、式（３）の化合物に従って、式（Ｄ）の化合物：
［ここでＬＧ４は脱離基例えば塩素のようなハロゲン原子を表す］
と反応させることにより製造し得る。
式（１）の化合物は、スキーム２に表される方法によってもまた製造し得る。すなわち、
従って、式（１）の化合物は、式（７）の化合物：
を、例えば１，１−カルボニルジイミダゾールのような適するカップリング剤の存在下で、式（１２）の化合物：
と反応させることにより製造し得る。
式（１２）の化合物は、式（１１）の化合物：
の還元により製造し得る。
該還元は、パラジウム炭素のような適する触媒上での水素化条件下で実施しうるか、若しくは、あるいは、酢酸中鉄粉のような適切な還元剤を使用して化学的に実施しうる。
式（１１）の化合物は、式（１０）の化合物
を、式（Ａ）の化合物：
［ここでＬＧ１は上で定義されたところの脱離基を表す］
と反応させることにより製造し得る。
該反応は、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミンのような適する非求核塩基の存在下で適する溶媒例えばジクロロメタン中で実施しうる。
式（１０）の化合物は、式（９）の化合物：
を、例えば水素化ナトリウムのような塩基およびＤＭＦのような適する溶媒の存在下で、式（Ｅ）の化合物：
［ここで基ＮＲ１Ｒ２はアミン若しくはその適して保護された誘導体である］
と反応させることにより製造し得る。ＮＲ１Ｒ２が−ＮＨ２でない場合、適する脱保護段階が、式（１０）の化合物を提供するために包含されなければならないことが認識されるであろう。
式（２）、（７）、（９）、（Ａ）、（Ｂ）、（Ｃ）、（Ｄ）および（Ｅ）の化合物は、商業的に入手可能であるか、若しくは既知であるか、若しくは新規でありかつ慣習的方法により容易に製造し得るかのいずれかである。例えば、Ｒｅｇａｎ，Ｊ．ら；Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．、２００３、４６、４６７６−４６８６、第ＷＯ００／０４３３８４号明細書、第ＷＯ２００７／０８７４４８号明細書および第ＷＯ２００７／０８９５１２号明細書を参照されたい。
該方法が実施され得かつ／若しくは効率的であることを確実にするために、上述された反応の１種若しくはそれ以上の間に化学的に感受性の基を保護するための保護基を必要としうる。従って、所望の若しくは必要な場合は、中間体化合物を慣習的保護基の使用により保護しうる。保護基およびそれらの除去手段は、Ｔｈｅｏｄｏｒａ Ｗ．ＧｒｅｅｎｅとＰｅｔｅｒ Ｇ．Ｍ．Ｗｕｔｓによる“Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｇｒｏｕｐｓ ｉｎ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ”、Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ Ｉｎｃにより刊行；第４版、２００６、ＩＳＢＮ−１０：０４７１６９７５４０に記述されている。
本明細書に記述されるところの新規中間体は本発明の一局面を形成する。
式（１）の化合物はｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤であり、かつ、一局面において、該化合物は疾患、例えばＣＯＰＤおよび／若しくは喘息の処置において有用である。
驚くべきことに、該化合物は、ＢＩＲＢ７９６のような他の既知のｐ３８ ＭＡＰキナーゼ阻害剤と比較して長い作用持続時間および／若しくは作用の持続性を有するようである。
一態様において、式（１）の化合物はｐ３８ ＭＡＰＫαおよび／若しくはγサブタイプ阻害剤である。
本明細書で使用されるところの作用の持続性は、標的（受容体のような）からの化合物の解離速度若しくは解離定数に関する。低い解離速度は持続性につながりうる。
高い会合速度と組合せの低い解離速度は強力な治療実体を提供する傾向がある。
式（１）の化合物はｉｎ ｖｉｖｏで強力でありうる。
典型的に、今日までに開発された従来技術の化合物は経口投与に意図している。この戦略は、適切な薬物動態プロファイルによりそれらの作用持続時間を達成する化合物を最適化することを必要とする。これは、臨床上の利益を提供するために投与の後および間に確立かつ維持される十分な薬物濃度が存在することを確実にする。このアプローチの必然的な結果は、全部の身体組織、とりわけ肝および腸が、処置されている疾患によりそれらが悪影響を及ぼされようと及ぼされなかろうと、該薬物の治療的有効濃度に曝露されることがありそうであることである。
代替の一戦略は、炎症を起こした器官に該薬物を直接投与する処置アプローチ（局所療法）を設計することである。このアプローチは全部の慢性炎症性疾患を処置するのに適しているわけではない一方、それは肺疾患（喘息、ＣＯＰＤ）、皮膚疾患（アトピー性皮膚炎および乾癬）、鼻疾患（アレルギー性鼻炎）ならびに胃腸疾患（潰瘍性大腸炎）で広範囲に利用されている。
局所療法において、有効性は、（ｉ）該薬物が長期の作用持続期間を有しかつ適切な器官に保持されて全身毒性の危険性を最小限にすることを確実にすること、若しくは（ｉｉ）有効成分の所望の効果を持続するために利用可能である該薬物の「貯蔵所」を生成する製剤を製造することのいずれかにより達成し得る。アプローチ（ｉ）は抗コリン作用薬チオトロピウム（Ｓｐｉｒｉｖａ）により例示される。これは、ＣＯＰＤの処置として肺に局所投与され、かつ、その標的受容体に対する例外的高親和性を有して非常に遅いオフ速度（ｏｆｆ ｒａｔｅ）および必然的な長期の作用持続期間をもたらす。
本開示の一局面において、式（１）の化合物は、とりわけ呼吸器疾患、例えばＣＯＰＤおよび／若しくは喘息のような慢性呼吸器疾患の処置のための肺への局所送達のような局所送達にとりわけ適する。
一態様において、式（１）の化合物はコルチコステロイド処置計画に対し不応性となった患者をコルチコステロイドでの処置に対し感作するのに適する。
式（１）の化合物は関節リウマチの処置にもまた有用でありうる。
式（１）の化合物は、抗ウイルス特性、例えばピコルナウイルス、具体的にはライノウイルス、インフルエンザ若しくはＲＳウイルスへの（呼吸器上皮細胞のような）細胞の感染を予防する能力を有しうる。
従って、該化合物は、とりわけ、ライノウイルス感染症、インフルエンザ若しくはＲＳウイルスのようなピコルナウイルス感染症の予防、処置若しくは改善に適する抗ウイルス薬であると考えられる。
一態様において、式（１）の化合物は、ライノウイルス感染症、および、具体的には、とりわけｉｎ ｖｉｖｏでＩＬ−８のようなサイトカインの遊離をもたらすウイルス感染症のようなウイルス感染症により誘発される炎症を低下させることが可能である。この活性は、例えば、本明細書の実施例に記述されるところのライノウイルス誘発性ＩＬ−８アッセイを使用してｉｎ ｖｉｔｒｏで試験しうる。
一態様において、式（１）の化合物はとりわけｉｎ ｖｉｖｏでライノウイルスにより誘発されるＩＣＡＭ１発現を低下させることが可能である。ＩＣＡＭ１は細胞を感染させるのにいわゆる主溝（ｍａｊｏｒ ｇｒｏｏｖｅ）ライノウイルス血清型により使用される受容体機構である。この活性は例えば本明細書の実施例に記述される方法により測定しうる。
上の特性が、うっ血性心不全、ＣＯＰＤ、喘息、糖尿病、癌および／若しくは免疫抑制患者、例えば臓器移植後のような１種若しくはそれ以上の慢性の状態を伴う患者における悪化、とりわけウイルス性の悪化の処置および／若しくは予防における使用に、式（１）の化合物をとりわけ適するようにすることが期待される。
とりわけ、式（１）の化合物は、ＣＯＰＤ（慢性気管支炎および肺気腫を包含する）、喘息、小児喘息、嚢胞性線維症、サルコイドーシス、特発性肺線維症、アレルギー性鼻炎、鼻炎、副鼻腔炎、とりわけ喘息ならびにＣＯＰＤ（慢性気管支炎および肺気腫を包含する）を包含する１種若しくはそれ以上の呼吸器障害の処置で有用でありうる。
式（１）の化合物はまた、アレルギー性結膜炎、結膜炎、アレルギー性皮膚炎、接触皮膚炎、乾癬、潰瘍性大腸炎、関節リウマチ若しくは変形性関節症に二次的な炎症を起こした関節を包含する局所（ｔｏｐｉｃａｌ）若しくは局所（ｌｏｃａｌ）治療により処置されうる１種若しくはそれ以上の状態の処置でも有用でありうる。
式（１）の化合物は、関節リウマチ、膵炎、悪液質を包含するある種の他の状態の処置、非小細胞肺癌、乳癌、胃癌、結腸直腸癌および悪性黒色腫を包含する腫瘍の増殖および転移の阻害で有用でありうることもまた期待される。
式（１）の化合物は、患者の状態がコルチコステロイドに対し不応性になった場合にコルチコステロイドでの処置に対し患者の状態を再感作もまたしうる。
さらに、本発明は、場合によっては１種若しくはそれ以上の製薬学的に許容できる希釈剤若しくは担体とともに本開示の化合物を含んでなる製薬学的組成物を提供する。
希釈剤および担体は非経口、経口、局所、粘膜および直腸投与に適するものを包含しうる。
上で挙げられたとおり、こうした組成物は、例えば、とりわけ液体溶液若しくは懸濁液の形態で非経口、皮下、筋肉内、静脈内、動脈内若しくは動脈周囲投与のため；とりわけ錠剤若しくはカプセル剤の形態で経口投与のため；とりわけ散剤、点鼻薬若しくはエアゾル剤の形態で局所例えば肺若しくは鼻内投与、および経皮投与のため；例えば頬側、舌下若しくは膣粘膜への粘膜投与のため、ならびに例えば坐剤の形態で直腸投与のために製造しうる。
該組成物は単位剤形で便宜的に投与することができ、また、例えばＲｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ、第１７版、Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ、ペンシルバニア州イーストン（１９８５）に記述され
るところの製薬学的技術分野で公知の方法のいずれによっても製造しうる。非経口投与のための製剤は、滅菌水若しくは生理的食塩水、プロピレングリコールのようなアルキレングリコール、ポリエチレングリコールのようなポリアルキレングリコール、植物起源の油、水素化ナフタレン（ｈｙｄｒｏｇｅｎａｔｅｄ ｎａｐｈｔｈａｌｅｎｅ）などを賦形剤として含有しうる。鼻投与のための製剤は固体であることができ、そして賦形剤、例えば乳糖若しくはデキストランを含有しうるか、または点鼻薬若しくは定量スプレー剤の形態での使用のために水性若しくは油性溶液であってもよい。頬側投与のためには、典型的な賦形剤は、糖、ステアリン酸カルシウム、ステアリン酸マグネシウム、アルファ化デンプンなどを包含する。
経口投与に適する組成物は１種若しくはそれ以上の生理学的に適合性の担体および／若しくは賦形剤を含むことができ、そして固体若しくは液体の形態であってよい。錠剤およびカプセル剤は、結合剤、例えば、シロップ、アラビアゴム、ゼラチン、ソルビトール、トラガカント若しくはポリビニルピロリドン；乳糖、ショ糖、トウモロコシデンプン、リン酸カルシウム、ソルビトール若しくはグリシンのような増量剤；ステアリン酸マグネシウム、タルク、ポリエチレングリコール若しくはシリカのような滑沢剤；およびラウリル硫酸ナトリウムのような界面活性剤とともに製造しうる。液体組成物は、懸濁化剤、例えばソルビトールシロップ、メチルセルロース、糖シロップ、ゼラチン、カルボキシメチルセルロース若しくは可食脂肪；レシチン若しくはアラビアゴムのような乳化剤；アーモンド油、ココナッツ油のような植物油、タラ肝油若しくはラッカセイ油；ブチル化ヒドロキシアニソール（ＢＨＡ）およびブチル化ヒドロキシトルエン（ＢＨＴ）のような保存剤のような慣習的な添加物を含有しうる。液体組成物は、単位剤形を提供するために例えばゼラチン中に被包化しうる。
固体の経口剤形は、錠剤、２片硬殻カプセル剤および軟質弾性ゼラチン（ＳＥＧ）カプセル剤を包含する。
乾燥殻製剤は、典型的に、約４０％ないし６０％濃度のゼラチン、約２０％ないし３０％濃度の可塑剤（グリセリン、ソルビトール若しくはプロピレングリコールのような）、および約３０％ないし４０％濃度の水から構成される。保存剤、色素、乳白剤および着香料のような他の材料もまた存在しうる。液体充填物質は、鉱物油、植物油、トリグリセリド、グリコール、多価アルコールおよび界面活性剤のようなベヒクル若しくはベヒクルの組合せに溶解、可溶化または（ミツロウ、硬化ヒマシ油若しくはポリエチレングリコール４０００のような懸濁化剤で）分散された固体の薬物あるいは液体の薬物を含んでなる。
適しては、式（Ｉ）の化合物は肺に局所投与される。これゆえに、われわれは、本発明により、場合によっては１種若しくはそれ以上の局所で許容できる希釈剤若しくは担体とともに本開示の化合物を含んでなる製薬学的組成物を提供する。肺への局所投与はエアゾル製剤の使用により達成しうる。エアゾル製剤は、典型的には、クロロフルオロカーボン（ＣＦＣ）若しくはハイドロフルオロカーボン（ＨＦＣ）のような適するエアゾル噴射剤に懸濁若しくは溶解された有効成分を含んでなる。適するＣＦＣ噴射剤は、トリクロロモノフルオロメタン（噴射剤１１）、ジクロロテトラフルオロメタン（噴射剤１１４）およびジクロロジフルオロメタン（噴射剤１２）を包含する。適するＨＦＣ噴射剤は、テトラフルオロエタン（ＨＦＣ−１３４ａ）およびヘプタフルオロプロパン（ＨＦＣ−２２７）を包含する。噴射剤は、典型的には総吸入組成物の４０％ないし９９．５％、例えば４０％ないし９０重量％を含んでなる。該製剤は、補助溶媒（例えばエタノール）および界面活性剤（例えばレシチン、ソルビタントリオレエートなど）を包含する賦形剤を含みうる。エアゾル製剤はキャニスター中に包装され、そして適する一用量が（例えば、Ｂｅｓｐａｋ、Ｖａｌｏｉｓ、若しくは３Ｍにより供給されるところの）計量バルブによって送達される。
肺への局所投与は、水性溶液若しくは懸濁液のような加圧されない製剤の使用によってもまた達成しうる。これはネブライザーによって投与しうる。肺への局所投与は乾燥粉末製剤の使用によってもまた達成しうる。乾燥粉末製剤は、典型的には１〜１０ミクロンの動力学的粒径（ＭＭＡＤ）をもつ微粉形態の本開示の化合物を含有することができる。該製剤は、典型的には、通常大きな粒子径例えば１００μｍ若しくはそれ以上のＭＭＡＤの乳糖のような局所で許容できる希釈剤を含有することができる。乾燥粉末送達装置の例は、ＳＰＩＮＨＡＬＥＲ、ＤＩＳＫＨＡＬＥＲ、ＴＵＲＢＯＨＡＬＥＲ、ＤＩＳＫＵＳおよびＣＬＩＣＫＨＡＬＥＲを包含する。
式（１）の化合物は治療活性を有する。さらなる一局面において、本発明は医薬品としての使用のための本開示の化合物を提供する。従って、さらなる一局面において、本発明は、上で挙げられた状態の１種若しくはそれ以上の処置での使用のための本明細書に記述されるところの化合物を提供する。
さらなる一局面において、本発明は、上で挙げられた状態の１種若しくはそれ以上の処置のための医薬品の製造のための本明細書に記述されるところの化合物の使用を提供する。
さらなる一局面において、本発明は、本開示の化合物若しくは該化合物を含んでなる製薬学的組成物の有効量を被験体に投与することを含んでなる、上で挙げられた状態の１種若しくはそれ以上の処置方法を提供する。
「処置」という語は予防的ならびに治療的処置を包含することを意図している。
本開示の化合物は、１種若しくはそれ以上の他の有効成分、例えば上で挙げられた状態を処置するのに適する有効成分とともに投与してもまたよい。例えば、呼吸器障害の処置のための可能な組合せは、ステロイド（例えばブデソニド、ベクロメタゾンプロピオン酸エステル、フルチカゾンプロピオン酸エステル、モメタゾンフランカルボン酸エステル、フルチカゾンフランカルボン酸エステル）、βアゴニスト（例えばテルブタリン、サルブタモール、サルメテロール、ホルモテロール）、および／若しくはキサンチン（例えばテオフィリン）との組合せを包含する。他の適する有効成分は、チオトロピウムのような抗コリン薬、および限定されるものでないが例えばリン酸エステルとしてのザナミビル若しくはオセルタミビルを挙げることができる抗ウイルス薬を包含する。他の抗ウイルス薬はペラミビルおよびラニナミビルを包含する。
式（１）の化合物の抗ウイルス特性に関して下で生成されるデータは、発明者が、他の抗ウイルス療法がＣＯＰＤおよび／若しくは喘息のような呼吸器疾患ならびに／または上で列挙される適応症の１種若しくはそれ以上を伴う患者の悪化の処置若しくは予防で有用であることができると考えることに導く。従って、一局面において、うっ血性心不全、糖尿病、癌のような慢性状態を伴う患者、若しくは免疫抑制患者、例えば臓器移植後の呼吸器ウイルス感染症の処置若しくは予防における、限定されるものでないがザナマビル（ｚａｎａｍａｖｉｒ）若しくはオセルタミビル（例えばオセルタミビルリン酸エステル）を挙げることができる抗ウイルス療法の使用が提供される。
略語
ＡｃＯＨ 氷酢酸
Ａｑ 水性
Ａｃ アセチル
ＡＴＰ アデノシン−５’−三リン酸
ＢＡＬＦ 気管支肺胞洗浄液
Ｂｒ ｂｒｏａｄ
ＢＳＡ ウシ血清アルブミン
ＣａｒＣａｒｔ（Ｒ） 触媒カートリッジ
ＣＤＩ １，１−カルボニル−ジイミダゾール
ＣＯＰＤ 慢性閉塞性肺疾患
Ｄ 二重項
Ｐｄ２（ｄｂａ）３ トリス（ジベンジリデンアセトン）ジパラジウム
ＤＣＭ ジクロロメタン
ＤＩＡＤ アゾジカルボン酸ジイソプロピル
ＤＩＢＡＬ−Ｈ 水素化ジイソブチルアルミニウム
ＤＭＡＰ Ｎ，Ｎ−ジメチルピリジン−４−アミン
ＤＩＰＥＡ Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン
ＤＭＦ Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド
ＤＭＳＯ ジメチルスルホキシド
ＥＬＩＳＡ 酵素結合免疫吸着検定法
ＥｔＯＡｃ 酢酸エチル
ＦＣＳ ウシ胎児血清
ＦＲＥＴ 蛍光共鳴エネルギー転移
ＨＥＰＥＳ ２−（４−（２−ヒドロキシエチル）ピペラジン−１−イル）エ
タンスルホン酸
Ｈｒ 時間（１若しくは複数）
ＨＲＰ ワサビペルオキシダーゼ
ＨＲＶ ヒトライノウイルス
ＩＣＡＭ１ 細胞接着分子１
ＩｇＧ 免疫グロブリンＧ
ＩＬ−８ インターロイキン８
ＪＮＫ ｃ−Ｊｕｎ Ｎ末端キナーゼ
ＬＰＳ リポ多糖
ＭＡＰＫ マイトジェンタンパク質活性化タンパク質キナーゼ
ＭＡＰＫＡＰ−Ｋ２ マイトジェン活性化タンパク質キナーゼ活性化タンパク質キナー
ゼ２
ＭｅＯＨ メタノール
Ｍｉｎ 分（１若しくは複数）
ＭＴＴ 臭化３−（４，５−ジメチルチアゾル−２−イル）−２，５−ジ
フェニルテトラゾリウム
ＮＭＰ Ｎ−メチルピロリドン（１−メチルピロリジン−２−オン）
ＮＳＥ 有意の効果なし
ＯＤ 光学密度
ＰＢＭＣ 末梢血単核細胞
ＰＢＳ リン酸緩衝生理的食塩水
ＰＭＡ ホルボールミリステートアセテート
ＰＰｈ３ トリフェニルホスフィン
ＲＳＶ ＲＳウイルス
ＲＴ 室温
ＲＰ ＨＰＬＣ 逆相高速液体クロマトグラフィー
Ｓ 一重項
ＳＣＸ 固体支持陽イオン交換
ＳＤＳ ドデシル硫酸ナトリウム
ＳｉＯ２ シリカゲル
Ｔ 三重項
ＴＣＩＤ５０ ５０％組織培養物感染用量
ＴＦＡ トリフルオロ酢酸
ＴＨＦ テトラヒドロフラン
ＴＭＢ ３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン
ＴＮＦα 腫瘍壊死因子α
キサントホス ４，５−ビス（ジフェニルホスフィノ）−９，９−ジメチルキサ
ンテン
一般的手順
全部の出発原料および溶媒は商業的供給源から得たか、若しくは文献の引用に従って製造したかのいずれかであった。水素化は、述べられた条件下でＴｈａｌｅｓ Ｈ−ｃｕｂｅフローリアクターで実施した。有機溶液は硫酸マグネシウムで慣例に乾燥した。ＳＣＸはＳｕｐｅｌｃｏから購入しかつ使用前に１Ｍ水性ＨＣｌで処理した。精製されるべき反応混合物を最初にＭｅＯＨで希釈し、そして数滴のＡｃＯＨで酸性にした。この溶液をＳＣＸに直接負荷しかつＭｅＯＨで洗浄した。所望の物質をその後ＭｅＯＨ中１％ＮＨ３で洗浄することにより溶出した。カラムクロマトグラフィーは、示される量を使用してＳｉｌｉｃｙｃｌｅ充填済みシリカ（２３０〜４００メッシュ、４０〜６３μＭ）カートリッジで実施した。
調製的逆相高速液体クロマトグラフィー：
Ａｇｉｌｅｎｔ ＳｃａｌａｒカラムＣ１８、５μｍ（２１．２×５０ｍｍ）、２１５および２５４ｎｍでのＵＶ検出を使用する、１０ｍｉｎにわたる０．１％ｖ／ｖギ酸を含有するＨ２Ｏ−ＭｅＣＮ勾配で溶出する流速２８ｍＬ／ｍｉｎ。勾配情報：０．０〜０．５ｍｉｎ：９５％Ｈ２Ｏ−５％ＭｅＣＮ；０．５〜７．０ｍｉｎ；９５％Ｈ２Ｏ−５％ＭｅＣＮから５％Ｈ２Ｏ−９５％ＭｅＣＮまで傾斜；７．０〜７．９ｍｉｎ：５％Ｈ２Ｏ−９５％ＭｅＣＮで保持；７．９〜８．０ｍｉｎ：９５％Ｈ２Ｏ−５％ＭｅＣＮに戻す；８．０〜１０．０ｍｉｎ：９５％Ｈ２Ｏ−５％ＭｅＣＮで保持。
分析法
逆相高速液体クロマトグラフィー：
Ａｇｉｌｅｎｔ ＳｃａｌａｒカラムＣ１８、５μｍ（４．６×５０ｍｍ）若しくはＷａｔｅｒｓ ＸＢｒｉｄｇｅ Ｃ１８、５μｍ（４．６×５０ｍｍ）２１５および２５４ｎｍでのＵＶ検出を使用する、７ｍｉｎにわたる０．１％ｖ／ｖギ酸を含有するＨ２Ｏ−ＭｅＣＮ勾配で溶出する流速２．５ｍＬ／ｍｉｎ。勾配情報：０．０〜０．１ｍｉｎ：９５％Ｈ２Ｏ−５％ＭｅＣＮ；０．１〜５．０ｍｉｎ：９５％Ｈ２Ｏ−５％ＭｅＣＮから５％Ｈ２Ｏ−９５％ＭｅＣＮまで傾斜；５．０〜５．５ｍｉｎ：５％Ｈ２Ｏ−９５％ＭｅＣＮで保持；５．５〜５．６ｍｉｎ：５％Ｈ２Ｏ−９５％ＭｅＣＮで保持、流速を３．５ｍｌ／ｍｉｎに増加；５．６〜６．６ｍｉｎ：５％Ｈ２Ｏ−９５％ＭｅＣＮで保持、流速３．５ｍｌ／ｍｉｎ；６．６〜６．７５ｍｉｎ：９５％Ｈ２Ｏ−５％ＭｅＣＮに戻す、流速３．５ｍｌ／ｍｉｎ；６．７５〜６．９ｍｉｎ：９５％Ｈ２Ｏ−５％ＭｅＣＮで保持、流速３．５ｍｌ／ｍｉｎ；６．９〜７．０ｍｉｎ：９５％Ｈ２Ｏ−５％ＭｅＣＮで保持、流速を２．５ｍｌ／ｍｉｎに減少。
１Ｈ ＮＭＲ分光法：
参照として残留非重水素化溶媒を使用するＢｒｕｋｅｒ Ａｖａｎｃｅ ＩＩＩ ４００ＭＨｚ
スキーム１の実験手順
４−（２−クロロピリジン−４−イルオキシ）ナフタレン−１−アミン（３）
−２０℃のＮＭＰ（４０ｍＬ）中の２−クロロ−４−フルオロピリジン（１．２６１ｇ、９．５８ｍｍｏｌ）および４−アミノ−１−ナフトール塩酸塩（２）（７５０ｍｇ、３．８３ｍｍｏｌ）の攪拌溶液にカリウムｔｅｒｔ−ブトキシド（１．２９０ｇ、１１．５０ｍｍｏｌ）を添加した。該反応混合物をＲＴに温まらせた。２．５ｈｒ後に該反応混合物を水（１００ｍＬ）で希釈しかつＥｔＯＡｃ（１００ｍＬ、その後２×８０ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出液を塩水（１５０ｍＬ）で洗浄し、乾燥しかつ真空中で蒸発させた。粗生成物をＭｅＯＨ中１％ＮＨ３溶液で溶出するＳＣＸ捕捉および遊離にかけ、そして溶媒を真空中で除去して４−（２−クロロピリジン−４−イルオキシ）ナフタレン−１−アミン（３）（１．０１９ｇ、９２％）を褐色固形物：ｍ／ｚ ２７１（Ｍ＋Ｈ）＋（ＥＳ＋）として生じた。
４−（２−クロロピリジン−４−イルオキシ）ナフタレン−１−Ｎ，Ｎ−ジ−ｔｅｒｔ−ブチルカルバメート（４）
０℃のＴＨＦ（３０ｍＬ）中の４−（２−クロロピリジン−４−イルオキシ）ナフタレン−１−アミン（３）（１．０１９ｇ、３．７６ｍｍｏｌ）の攪拌溶液にＤＭＡＰ（０．０３４ｇ、０．２８２ｍｍｏｌ）およびその後二炭酸ジ−ｔｅｒｔ−ブチル（０．９０４ｇ、４．１４ｍｍｏｌ）を添加した。該反応混合物を０℃で３０ｍｉｎ攪拌し、そしてその後ＲＴに温まらせた。１．５ｈｒ後に該反応混合物を０℃に冷却し、そしてさらなる二炭酸ジ−ｔｅｒｔ−ブチル（０．９０４ｇ、４．１４ｍｍｏｌ）を添加した。生じる混合物を０℃で１５ｍｉｎおよびその後ＲＴで攪拌した。１６ｈｒ後に該反応混合物を水（４０ｍＬ）で希釈しかつＥｔＯＡｃ（２×４０ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出液を塩水（７５ｍＬ）で洗浄し、乾燥しかつ真空中で蒸発させた。粗物質をイソヘキサン中０ないし４０％ＥｔＯＡｃで溶出するフラッシュカラムクロマトグラフィー（ＳｉＯ２；８０ｇ）により精製して４−（２−クロロピリジン−４−イルオキシ）ナフタレン−１−Ｎ，Ｎ−ジ−ｔｅｒｔ−ブチルカルバメート（４）（０．８９２ｇ、４８％）を紫色固形物：ｍ／ｚ ４７１（Ｍ＋Ｈ）＋（ＥＳ＋）として生じた。
ｔｅｒｔ−ブチル４−（４−（Ｎ，Ｎ−ジ−ｔｅｒｔ−ブチルカルバミル）ナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イルカルバメート（５）
４−（２−クロロピリジン−４−イルオキシ）ナフタレン−１−Ｎ，Ｎ−ジ−ｔｅｒｔ−ブチルカルバメート（４）（０．８９２ｇ、１．８９４ｍｍｏｌ）、ｔｅｒｔ−ブチルカルバメート（０．６６６ｇ、５．６８ｍｍｏｌ）、炭酸セシウム（０．９２６ｇ、２．８４ｍｍｏｌ）、Ｐｄ２（ｄｂａ）３（０．０４３ｇ、０．０４７ｍｍｏｌ）およびキサントホス（０．０５５ｇ、０．０９５ｍｍｏｌ）の混合物をＴＨＦ（１０ｍＬ）に懸濁した。該反応混合物を窒素で徹底的にパージし、そしてその後還流で加熱した。１５ｈｒ後に該混合物をＲＴに冷却し、水（３５ｍＬ）で希釈しかつＥｔＯＡｃ（３５ｍＬ、２５ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出液を塩水（５０ｍＬ）で洗浄し、乾燥しかつ真空中で蒸発させた。粗物質をイソヘキサン中０ないし３０％ＥｔＯＡｃで溶出するフラッシュカラムクロマトグラフィー（ＳｉＯ２；８０ｇ）により精製してｔｅｒｔ−ブチル４−（４−（Ｎ，Ｎ−ジ−ｔｅｒｔ−ブチルカルバミル）ナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イルカルバメート（５）（２８９ｍｇ、２８％）を白色固形物：ｍ／ｚ ５５２（Ｍ＋Ｈ）＋（ＥＳ＋）として生じた。
４−（４−アミノナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−アミン（６）
０℃のＤＣＭ（８ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル４−（４−（Ｎ，Ｎ−ジ−ｔｅｒｔ−ブチルカルバミル）ナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イルカルバメート（５）（２８９ｍｇ、０．５２４ｍｍｏｌ）の攪拌溶液にＴＦＡ（４ｍＬ）を添加した。生じる混合物をＲＴにゆっくりと加温しつつ攪拌した。５ｈｒ後に揮発性物質を真空中で除去し、そして残渣をＭｅＯＨ（５ｍＬ）に溶解しかつＭｅＯＨ中１％ＮＨ３溶液で溶出するＳＣＸ捕捉および遊離にかけた。溶媒を真空中で除去して、４−（４−アミノナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−アミン（６）（１１６ｍｇ、８５％）を褐橙色油状物：ｍ／ｚ ２５２（Ｍ＋Ｈ）＋（ＥＳ＋）として提供した。
１−（４−（２−アミノピリジン−４−イルオキシ）ナフタレン−１−イル）−３−（３−ｔｅｒｔ−ブチル−１−ｐ−トリル−１Ｈ−ピラゾル−５−イル）尿素（８）
ＮａＨＣＯ３の飽和溶液（１４ｍＬ）をＤＣＭ（２０ｍＬ）中の５−アミノピラゾール（７）（０．２０６ｇ、０．９００ｍｍｏｌ）の溶液に添加した。該混合物を活発に攪拌し、０℃に冷却しかつクロロギ酸トリクロロメチル（０．３２６ｍＬ、２．７０ｍｍｏｌ）を一部分で添加した。該反応混合物を０℃でさらなる８０ｍｉｎ活発に攪拌した。層を分離しかつ有機層を乾燥し、真空中で蒸発させ、そして生じる橙色油状物を高真空下で３０ｍｉｎさらに乾燥した。単離されたイソシアネートをその後ＴＨＦ（６ｍＬ）に溶解しかつ窒素下０℃に保った。
０℃のＴＨＦ（３ｍＬ）中の４−（４−アミノナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−アミン（６）（１１６ｍｇ、０．４６２ｍｍｏｌ）およびＤＩＰＥＡ（２４１μｌ、１．３８５ｍｍｏｌ）の攪拌溶液に、上で製造されたイソシアネート溶液のアリコート（２ｍＬ、０．３００ｍｍｏｌ）を添加した。生じる混合物をＲＴにゆっくりと加温しながら攪拌した。ＴＨＦ中のイソシアネート溶液の追加のアリコートを１．５ｈｒ後（１ｍＬ、０．１５０ｍｍｏｌ）およびさらなる３．５ｈｒ後（０．５ｍＬ、０．０７５ｍｍｏｌ）に該反応混合物に添加した。２０ｈｒ後に水（３０ｍＬ）を添加しそして該混合物をＥｔＯＡｃ（２×３０ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出液を塩水（５０ｍＬ）で洗浄し、乾燥しかつ真空中で蒸発させた。粗物質をイソヘキサン中２５ないし１００％（ＥｔＯＡｃ中５％ＭｅＯＨ）で溶出するフラッシュカラムクロマトグラフィー（ＳｉＯ２；１２ｇ）により精製して、１−（４−（２−アミノピリジン−４−イルオキシ）ナフタレン−１−イル）−３−（３−ｔｅｒｔ−ブチル−１−ｐ−トリル−１Ｈ−ピラゾル−５−イル）尿素（８）（１２７ｍｇ、４９％）を褐色油状物：ｍ／ｚ ５０７（Ｍ＋Ｈ）＋（ＥＳ＋）として提供した。
Ｎ−（４−（４−（３−（３−ｔｅｒｔ−ブチル−１−ｐ−トリル−１Ｈ−ピラゾル−５−イル）ウレイド）ナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）−２−メトキシアセトアミド（１）
塩化メトキシアセチル（６４．２μｌ、０．７０３ｍｍｏｌ）をＴＨＦ（５ｍＬ）中の１−（４−（２−アミノピリジン−４−イルオキシ）ナフタレン−１−イル）−３−（３−ｔｅｒｔ−ブチル−１−ｐ−トリル−１Ｈ−ピラゾル−５−イル）尿素（８）（８９ｍｇ、０．１７６ｍｍｏｌ）およびＤＩＰＥＡ（１５３μｌ、０．８７８ｍｍｏｌ）の混合物にゆっくりと添加した。該反応混合物を０℃でさらなる２０ｍｉｎ攪拌し、そしてその後ＲＴに加温した。２．５ｈｒ後に該反応をＭｅＯＨ中１％ＮＨ３の溶液（３ｍＬ）の添加によりクエンチし、そして生じる混合物をさらなる４５ｍｉｎ攪拌した。揮発性物質を真空中で除去し、そして残渣をＭｅＯＨ（５ｍＬ）およびＡｃＯＨ（２ｍＬ）の混合物に溶解しかつＭｅＯＨ中１％ＮＨ３溶液で溶出するＳＣＸ捕捉および遊離にかけた。粗物質をイソヘキサン中０ないし６０％（ＥｔＯＡｃ中５％ＭｅＯＨ）で溶出するフラッシュカラムクロマトグラフィー（ＳｉＯ２；１２ｇ）により精製して、Ｎ−（４−（４−（３−（３−ｔｅｒｔ−ブチル−１−ｐ−トリル−１Ｈ−ピラゾル−５−イル）ウレイド）ナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）−２−メトキシアセトアミド（１）（６２ｍｇ、６１％）を白色固形物：ｍ／ｚ ５７９（Ｍ＋Ｈ）＋（ＥＳ＋）として生じた。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）δ：１．２９（９Ｈ、ｓ）、２．４０（３Ｈ、ｓ）、３．３１（３Ｈ、ｓ）、３．９９（２Ｈ、ｓ）、６．４１（１Ｈ、ｓ）、６．７０（１Ｈ、ｄｄ）、７．３２−７．４０（３Ｈ、ｍ）、７．４４−７．４８（２Ｈ、ｍ）、７．５５−７．６１（１Ｈ、ｍ）、７．６３−７．６７（２Ｈ、ｍ）、７．８４（１Ｈ、ｄｄ）、７．９７（１Ｈ、ｄ）、８．０９（１Ｈ、ｄ）、８．１９（１Ｈ、ｄ）、８．７９（１Ｈ、ｓ）、９．１３（１Ｈ、ｓ）、１０．０２（１Ｈ、ｓ）。
スキーム２の実験手順
４−（４−ニトロナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−アミン（１０）
窒素下０℃のＤＭＦ（２００ｍＬ）中の２−アミノピリジン−４−オール（２３．０ｇ、２０９ｍｍｏｌ）の攪拌溶液に、ＮａＨ（鉱物油中６０％分散系、９．２１ｇ、２３０ｍｍｏｌ）を３０分にわたり一部分ずつ添加した。該混合物をＲＴに加温しかつ１ｈｒ後に０℃に冷却し、そしてＤＭＦ（１００ｍＬ）中の１−フルオロ−４−ニトロナフチレン（９）（４０．０ｇ、２０９ｍｍｏｌ）の溶液を添加した。該反応混合物をＲＴに温まらせ、そして１．５ｈｒ後にそれを水（１Ｌ）で希釈しかつＥｔＯＡｃ（３×５００ｍＬ）で抽出した。有機抽出液を合わせ、そして水（３×７００ｍＬ）および塩水（５００ｍＬ）で洗浄した。黄色沈殿物が分離し、これを濾過により収集しかつ水（５００ｍＬ）で洗浄しそして真空中で一夜乾燥した。有機層を乾燥し（ＭｇＳＯ４）、濾過しかつ真空中で蒸発させた。残渣をアセトニトリル（２０ｍＬ）およびエーテル（２００ｍＬ）の混合物とともに摩砕して赤色固形物を生じ、これをイソヘキサン（２００ｍＬ）で洗浄した。摩砕からの上清液を真空中で蒸発させ、そして残渣をフラッシュカラムクロマトグラフィー（ＳｉＯ２、１２０ｇ、イソヘキサン中３０〜１００％ＥｔＯＡｃ、勾配溶出）により精製した。この生成物を前に単離された２種の固形物と合わせ、ＭｅＯＨ（５００ｍＬ）に溶解しかつ真空中で蒸発させて、４−（４−ニトロナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−アミン（１０）（４０．１ｇ、６５％）を黄色固形物：ｍ／ｚ ２８２（Ｍ＋Ｈ）＋（ＥＳ＋）として提供した。
２−メトキシ−Ｎ−（４−（４−ニトロナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）アセトアミド（１１）
窒素下０℃のＤＣＭ（６００ｍＬ）中の４−（４−ニトロナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−アミン（１０）（４０．０ｇ、１３５ｍｍｏｌ）およびＤＩＰＥＡ（４８．１ｍＬ、２７０ｍｍｏｌ）の攪拌溶液に塩化メトキシアセチル（１８．５３ｍｌ、２０３ｍｍｏｌ）を一滴ずつ添加した。該混合物をＲＴに加温し、そして１ｈｒ後にアンモニアの溶液（１００ｍＬ、ＭｅＯＨ中７Ｍ）を添加しかつ攪拌を３０ｍｉｎ継続し、その時間の間に沈殿物が生じた。該混合物を真空中で蒸発させ、そして水（１Ｌ）を残渣に添加して赤色懸濁液を提供した。黄色が持続するまで（約５ｍＬ）氷酢酸を一滴ずつ添加した。該固形物を濾過により収集しかつ水（３００ｍＬ）で洗浄して、２−メトキシ−Ｎ−（４−（４−ニトロナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）アセトアミド（１１）（４４．１ｇ、９０％）を黄色固形物：ｍ／ｚ ３５４（Ｍ＋Ｈ）＋（ＥＳ＋）として提供した。
Ｎ−（４−（４−アミノナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）−２−メトキシアセトアミド（１２）
酢酸（３００ｍＬ）中の２−メトキシ−Ｎ−（４−（４−ニトロナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）アセトアミド（１１）（４４．０ｇ、１２５ｍｍｏｌ）および鉄粉（４１．７ｇ、７４７ｍｍｏｌ）の攪拌懸濁液を４５℃で加熱した。３ｈｒ後に該混合物をＲＴに冷却し、そして固体Ｎａ２ＣＯ３（２００ｇ）上にゆっくりとかつ慎重に注いだ。該混合物は活発に発泡した。該混合物を水（５００ｍＬ）とＥｔＯＡｃ（５００ｍＬ）の間で分配した。水層を固体Ｎａ２ＣＯ３でｐＨ１１に塩基性化し、そしてセライトのパッドで濾過した。水層およびセライトパッドをＥｔＯＡｃ（３×５００ｍＬ）で抽出し、そして合わせた抽出液を飽和水性ＮａＨＣＯ３溶液（５００ｍＬ）で洗浄し、乾燥し（ＭｇＳＯ４）かつ真空中で蒸発させて、Ｎ−（４−（４−アミノナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）−２−メトキシアセトアミド（１２）（３５．０ｇ、７８％）を紫色泡状物：ｍ／ｚ ３２４（Ｍ＋Ｈ）＋（ＥＳ＋）として提供した。
Ｎ−（４−（４−（３−（３−ｔｅｒｔ−ブチル−１−ｐ−トリル−１Ｈ−ピラゾル−５−イル）ウレイド）ナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）−２−メトキシアセトアミド（１）
ＲＴの窒素下のＤＣＭ（２５０ｍＬ）中のＣＤＩ（２８．８ｇ、１７８ｍｍｏｌ）の攪拌懸濁液に３−ｔｅｒｔ−ブチル−１−ｐ−トリル−１Ｈ−ピラゾル−５−アミン（７）（４０．７ｇ、１７８ｍｍｏｌ）を１ｈｒにわたり一部分ずつ添加した。１ｈｒ後に、生じる暗赤色溶液を、ＤＣＭ（１Ｌ）中のＮ−（４−（４−アミノナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）−２−メトキシアセトアミド（１２）（３５．５ｇ、９９ｍｍｏｌ）の攪拌溶液に１ｈｒにわたり一滴ずつ添加した。１ｈｒ後にＭｅＯＨ（１００ｍＬ）を添加し、そして該混合物をＲＴで１６ｈｒ保った。該反応混合物を真空中で蒸発させ、そして残渣をＤＣＭ（５００ｍＬ）に溶解しかつ水および飽和水性ＮａＨＣＯ３溶液（５００ｍＬ）で洗浄した。有機層を乾燥し（ＭｇＳＯ４）、真空中で蒸発させかつ残渣をフラッシュカラムクロマトグラフィー（ＳｉＯ２、８００ｇ、ＤＣＭ中２％ＭｅＯＨ、アイソクラチック溶出）により精製した。この生成物を酢酸エチル／ヘプタン（５：３ ｖ／ｖ混合物８００ｍＬ）から再結晶して、Ｎ−（４−（４−（３−（３−ｔｅｒｔ−ブ
チル−１−ｐ−トリル−１Ｈ−ピラゾル−５−イル）ウレイド）ナフタレン−１−イルオキシ）ピリジン−２−イル）−２−メトキシアセトアミド（１）（２５．５ｇ、４５％）を白色粉末として提供した。実測値：Ｃ、６８．４１；Ｈ、５．９３；Ｎ、１４．３６；Ｃ３３Ｈ３４Ｎ６Ｏ４は、Ｃ、６８．４９；Ｈ、５．９２；Ｎ、１４．５２％を必要とする。
生物学的試験
ｉｎ ｖｉｔｒｏアッセイを使用して確立された式（１）の化合物の特性の要約を下に提示する。式（１）の化合物はＢＩＲＢ７９６に対するそのプロファイルの実質的差違を示した。双方の化合物はＴＨＰ−１細胞および分化Ｕ９３７細胞におけるＬＰＳ誘発性ＴＮＦα遊離の強力かつ効果的な阻害剤であった（表１）とは言え、ＢＩＲＢ７９６は、われわれが検討した６種の他の系、すなわち分化Ｕ９３７細胞におけるＬＰＳ誘発性ＩＬ−８遊離（ＢＩＲＢ７９６ 最大阻害の３１％；式（１）の化合物のＩＣ５０：７．９ｎＭ）；痰マクロファージからのＬＰＳ誘発性ＩＬ−８遊離（表２）；ヒト気管支上皮細胞株ＢＥＡＳ２Ｂ細胞におけるポリＩ：Ｃ誘発性ＩＣＡＭ１発現（ＢＩＲＢ７９６ １０μｇ／ｍｌで効果なし；式（１）の化合物のＩＣ５０：１．７ｎＭ）、ＢＥＡＳ２Ｂ細胞におけるライノウイルス誘発性ＩＣＡＭ１発現（表２）；ＢＥＡＳ２Ｂ細胞におけるライノウイルス誘発性ＩＬ−８遊離（表２）およびＭＲＣ５細胞におけるライノウイルス複製において有意の効果なし（ＮＳＥ）を示した。顕著に対照的に、式（１）の化合物は全６種の系で活性を示し、かつ、Ｕ９３７細胞におけるＬＰＳ誘発性ＴＮＦα遊離で示されたにおけるものに同等であったか若しくはそれを超えた効力のレベルを示した。
これら２種の化合物のヒト胎児肺線維芽細胞ＭＲＣ５細胞中でのライノウイルス複製を阻害する能力をさらに検討した。ＢＩＲＢ７９６は１．９μＭまでの濃度範囲にわたりウイルス複製に対する効果を伴わなかったことが確立された。しかしながら、われわれは式（１）の化合物の濃度効果曲線を検討し、そして５．２ｎＭという濃度がウイルス力価を１対数桁減少したことを見出した。
これらのアッセイの説明は後に続くとおりである。すなわち、
酵素阻害アッセイ
化合物の酵素阻害活性を、ドナーおよびアクセプター双方のフルオロフォア（Ｚ−ＬＹＴＥ、Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ Ｌｔｄ．、英国ペーズリー）で標識した合成ペプチドを使用するＦＲＥＴにより測定した。組換えリン酸化ｐ３８ ＭＡＰＫ γ（ＭＡＰＫ１２：Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）をＨＥＰＥＳ緩衝液で希釈し、所望の最終濃度の化合物と混合し、そして室温で２時間インキュベートした。ＦＲＥＴペプチド（２μＭ）およびＡＴＰ（１００μＭ）を次に酵素／化合物の混合物に添加しかつ１ｈｒインキュベートした。発色試薬（プロテアーゼ）は蛍光マイクロプレートリーダー（Ｖａｒｉｏｓｋａｎ（Ｒ）Ｆｌａｓｈ、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）での検出前に１時間添加した。部位特異的プロテアーゼはリン酸化されていないペプチドのみを切断しそしてＦＲＥＴシグナルを除外する。各反応のリン酸化レベルを、フルオレセイン発光（アクセプター）に対するクマリン発光（ドナー）の比を使用して計算し、高い比は高リン酸化および低い比は低リン酸化レベルを示す。各反応の阻害パーセントを阻害されない対照に関して計算し、そして５０％阻害濃度（ＩＣ５０値）をその後濃度反応曲線から計算した。
ｐ３８ ＭＡＰＫα（ＭＡＰＫ１４：Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）について、酵素活性を下流の分子ＭＡＰＫＡＰ−Ｋ２の活性化／リン酸化を測定することにより間接的に評価した。ｐ３８ ＭＡＰＫαタンパク質を試験化合物とＲＴで２時間混合した。ｐ３８αの不活性標的ＭＡＰＫＡＰ−Ｋ２（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）およびＭＡＰＫＡＰ−Ｋ２のリン酸化標的であるＦＲＥＴペプチド（２μＭ）ならびにＡＴＰ（１０μＭ）をその後該酵素／化合物の混合物に添加しかつ１時間インキュベートした。発色試薬をその後添加し、そして、蛍光による検出がアッセイプロトコルを終了する前１時間、該混合物をインキュベートした。
Ｕ９３７細胞およびＴＨＰ−１細胞におけるＬＰＳ誘発性ＴＮＦα遊離：効力
ヒト単球細胞株Ｕ９３７細胞を、ホルボールミリステートアセテート（ＰＭＡ；１００ｎｇ／ｍｌ）との４８ないし７２ｈｒのインキュベーションによりマクロファージ型細胞
に分化させた。適切な場合は、細胞を最終濃度の化合物と２ｈｒプレインキュベートした。細胞をその後０．１μｇ／ｍｌのＬＰＳ（大腸菌（Ｅ．Ｃｏｌｉ）：Ｏ１１１：Ｂ４、Ｓｉｇｍａから）で４ｈｒ刺激し、そしてサンドイッチＥＬＩＳＡ（Ｄｕｏ−ｓｅｔ、Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ）によるＴＮＦα濃度の測定のため上清を収集した。ＴＮＦα産生の阻害を、ベヒクル対照との比較により各濃度の試験化合物で１０μｇ／ｍｌのＢＩＲＢ７９６により達成されたもののパーセントとして計算した。相対５０％有効濃度（Ｒ−ＥＣ５０）を、結果として生じる濃度反応曲線から決定した。ヒト単球細胞株ＴＨＰ−１もまたこのアッセイに使用した。ＴＨＰ−１細胞を３μｇ／ｍｌのＬＰＳ（大腸菌（Ｅ．Ｃｏｌｉ）：Ｏ１１１：Ｂ４、Ｓｉｇｍａから）で４ｈｒ刺激し、そしてＴＮＦα濃度の測定のため上清を収集した。５０％阻害濃度（ＩＣ５０）を、結果として生じる濃度反応曲線から決定した。
Ｕ９３７細胞におけるＬＰＳ誘発性ＩＬ−８遊離：効力
ヒト単球細胞株Ｕ９３７細胞を、ホルボールミリステートアセテート（ＰＭＡ；１００ｎｇ／ｍｌ）との４８ないし７２時間のインキュベーションによりマクロファージ型細胞に分化させた。細胞を最終濃度の化合物と２ｈｒプレインキュベートした。細胞をその後０．１μｇ／ｍｌのＬＰＳ（大腸菌（Ｅ．Ｃｏｌｉ）：Ｏ１１１：Ｂ４、Ｓｉｇｍａから）で４ｈｒ刺激し、そしてサンドイッチＥＬＩＳＡ（Ｄｕｏ−ｓｅｔ、Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ）によるＩＬ−８濃度の測定のため上清を収集した。ＩＬ−８産生の阻害をベヒクル対照との比較により各濃度の試験化合物で計算した。５０％阻害濃度（ＩＣ５０）を、結果として生じる濃度反応曲線から決定した。
ＢＥＡＳ２Ｂ細胞におけるポリＩ：Ｃ誘発性ＩＣＡＭ−１誘導：効力
ポリＩ：Ｃ（１μｇ／ｍｌ）（Ｉｎｖｉｖｏｇｅｎ Ｌｔｄ．、カリフォルニア州サンディエゴ）を、Ｏｌｉｇｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、カリフォルニア州カールズバッド）を用いてＢＥＡＳ２Ｂ細胞（ヒト気管支上皮細胞、ＡＴＣＣ）にトランスフェクトした。細胞は最終濃度の化合物と２ｈｒプレインキュベートした。細胞表面上のＩＣＡＭ１発現のレベルを細胞に基づくＥＬＩＳＡにより測定した。簡潔には、ポリＩ：Ｃトランスフェクション後１８ｈｒに細胞をＰＢＳ中４％ホルムアルデヒドで固定した。０．１％アジ化ナトリウムおよび１％過酸化水素を添加することにより内因性ペルオキシダーゼをクエンチした後に、細胞を洗浄緩衝液（ＰＢＳ中０．１％Ｔｗｅｅｅｎ：ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ）で洗浄した。ウェルをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ中５％乳で１ｈｒブロッキングした後、細胞を１％ＢＳＡ ＰＢＳ中抗ヒトＩＣＡＭ−１抗体（Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、マサチューセッツ州ダンバーズ）と４℃で一夜インキュベートした。細胞をＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで洗浄しかつ二次抗体（ＨＲＰ結合抗ウサギＩｇＧ、Ｄａｋｏ Ｌｔｄ．、デンマーク・グロストルップ）とインキュベートした。ＩＣＡＭ−１シグナルを、基質を添加すること、および分光光度計を使用して６５５ｎｍの参照波長を用い４５０ｎｍでの吸光度を読み取ることにより検出した。細胞をその後ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで洗浄し、そして各ウェル中の総細胞数を、クリスタルバイオレット染色および１％ＳＤＳ溶液による溶出後に５９５ｎｍでの吸光度を読み取ることにより測定した。測定されたＯＤ４５０−６５５読み取り値を、各ウェル中のＯＤ５９５読み取り値で除算することにより細胞数について補正した。ＩＣＡＭ−１発現の阻害はベヒクル対照との比較により各濃度の試験化合物で計算した。５０％阻害濃度（ＩＣ５０）を、結果として生じる濃度反応曲線から決定した。
痰マクロファージアッセイ
痰を健康志願者への３％（ｗ／ｖ）高張食塩水の噴霧溶液の吸入により誘導した。ジチオスレイトール（最終で０．０２％）をその後添加し、そして痰がより少なく粘性になるまでボルテックスミキサーを使用して活発に混合した。遠心分離（１５００ｒｐｍで１０ｍｉｎ）により生じられた細胞ペレットを１０％ＦＣＳ ＲＰＭＩ−１６４０に再懸濁し
、そして痰マクロファージを高結合プレート（ＣｅｌｌＢＩＮＤ（Ｒ）、Ｃｏｒｎｉｎｇ
Ｌｉｍｉｔｅｄ．英国）での２ｈｒのプレート接着により分離した。接着された細胞をＲＰＭＩ−１６４０で洗浄しかつＬＰＳ（１μｇ／ｍｌ）で刺激した。４ｈｒのインキュベーション後に、Ｄｕｏｓｅｔ ＥＬＩＳＡ発色キット（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ、ミネソタ州ミネアポリス）を使用するＩＬ−８産生の測定のため上清を収集した。化合物はＬＰＳ刺激の２ｈｒ前に添加した。
ライノウイルスに誘発されるＩＬ−８およびＩＣＡＭ−１
ヒトライノウイルスＲＶ１６（ＨＲＶ）をＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（バージニア州マナサス）から得た。ウイルスストックを、細胞の８０％が細胞壊死性になるまでＨｅｌａ細胞をＨＲＶに感染させることにより生成した。
ＢＥＡＳ２Ｂ細胞を５ＭＯＩ（５の感染多重度）のＨＲＶに感染させ、そして吸収のため穏やかな振とうを伴い３３℃で２ｈｒインキュベートした。細胞をその後ＰＢＳで洗浄し、新鮮培地を添加し、そして細胞をさらなる７２ｈｒインキュベートした。Ｄｕｏｓｅｔ ＥＬＩＳＡ発色キット（Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ、ミネソタ州ミネアポリス）を使用してＩＬ−８濃度のアッセイのため上清を収集した。
ＩＣＡＭ−１を発現する細胞表面のレベルを細胞に基づくＥＬＩＳＡにより測定した。適切なインキュベーション後に細胞をＰＢＳ中４％ホルムアルデヒドで固定した。０．１％アジ化ナトリウムおよび１％過酸化水素を添加することにより内因性ペルオキシダーゼをクエンチした後に、ウェルを洗浄緩衝液（ＰＢＳ中０．０５％Ｔｗｅｅｎ：ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ）で洗浄した。ウェルをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ中５％乳で１ｈｒブロッキングした後、細胞を５％ＢＳＡ ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎ中抗ヒトＩＣＡＭ−１抗体（１：５００）とともに一夜インキュベートした。ウェルをＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで洗浄しかつ二次抗体（ＨＲＰ結合抗ウサギＩｇＧ、Ｄａｋｏ Ｌｔｄ．）とともにインキュベートした。ＩＣＡＭ−１シグナルを、基質を添加すること、および分光光度計を使用して６５５ｎｍの参照波長を用いて４５０ｎｍで読み取ることにより検出した。ウェルをその後ＰＢＳ−Ｔｗｅｅｎで洗浄し、そして各ウェル中の総細胞数を、クリスタルバイオレット染色および１％ＳＤＳ溶液による溶出後に５９５ｎｍでの吸光度を読み取ることにより測定した。測定されたＯＤ４５０−６５５読み取り値を、各ウェル中のＯＤ５９５読み取り値で除算することにより細胞数について補正した。化合物を、ＨＲＶ感染２ｈｒ前、および非感染ＨＲＶを洗い落とした感染２ｈｒ後に添加した。
ライノウイルス力価アッセイ
ＭＲＣ５細胞（ヒト肺線維芽細胞、ＡＴＣＣ）を１ＭＯＩ（１．０の感染多重度）のＨＲＶに感染させ、そして吸収のため穏やかな振とうを伴い３３℃で１ｈｒインキュベートした。細胞をその後ＰＢＳで洗浄し、新鮮培地を添加し、そして細胞をさらなる９６ｈｒインキュベートした。上清を収集し、そしてウイルス含有上清の１０倍連続希釈を調製した。全部の滴定（ｔｉｔｒａｔｉｏｎ）は、コンフルエントなＨｅｌａ細胞単層を連続希釈上清（１０−１ないし１０−５）に感染させること、および感染４日後にＭＴＴアッセイにより細胞変性効果を評価することにより実施した。Ｈｅｌａ細胞の５０％を感染させるのに必要とされるウイルスの量をＴＣＩＤ５０Ｕ／ｍＬとして各処置で計算した。化合物は、ＨＲＶ感染の２４および２ｈｒ前、ならびに非感染ＨＲＶを洗い落とした感染１ｈｒ後に添加した。
マウスにおけるＬＰＳ誘発性好中球蓄積
非絶食マウスに、ＬＰＳ処置を開始する前の示された時点（２〜１２ｈｒの範囲内）にベヒクル若しくは試験物質いずれかを気管内経路により投与した。Ｔ＝０でマウスを曝露
チャンバーに入れかつＬＰＳに曝露した。ＬＰＳ投与８時間後に動物を麻酔下にし、気管にカニューレ処置し、そして気管カテーテルを介して肺中に１ｍｌのＰＢＳを注入することおよび引き抜くことによりＢＡＬＦを抽出した。ＢＡＬＦサンプル中の総白血球数および白血球百分率数はＮｅｕｂａｕｒ血球計算器を使用して測定した。ＢＡＬＦサンプルのサイトスピンスメアを室温で２００ｒｐｍで５分間の遠心分離により調製し、そしてＤｉｆｆＱｕｉｋ染色系（Ｄａｄｅ Ｂｅｈｒｉｎｇ）を使用して染色した。油浸顕微鏡検査を使用して細胞を計数した。化合物（１）でのマウスの処置は、ＬＰＳ投与前２、８若しくは１２ｈｒに処置される場合にＢＡＬＦ中への好中球蓄積を阻害することが見出された（表３および４）。
モルモットにおけるアレルゲン誘発性好酸球蓄積
Ｄｕｎｋｉｎ Ｈａｒｔｌｅｙモルモットを卵アルブミンで免疫した。６用量のベヒクル若しくは実施例８（１．５ｍｇ／ｍｌ）をエアゾルにより１２時間ごとに投与し、最後の用量はアレルゲン投与（等級Ｖ、ＯＶＡ；Ｄｅ Ｖｉｂｌｉｓｓ超音波ネブライザー２０００を使用してエアゾル化した１０μｇ／ｍＬ溶液、３０ｍｉｎにわたる）の開始２ｈｒ前に投与した。２群の動物が６用量の実施例８を受領した一方、さらなる２群が６用量のベヒクルを受領した。ＯＶＡ投与（上の群の詳細を参照されたい）の８若しくは２４時間後に気管にカニューレ処置しかつＢＡＬＦを抽出した。このための手順は気管カテーテルを介して肺中に５ｍｌのＰＢＳを吸引することを必要とした。ＢＡＬ液サンプル中の総白血球数および白血球百分率数はＮｅｕｂａｕｒ血球計算器を使用して測定した。ＢＡＬ液サンプルのサイトピンスメアを２００ｒｐｍで室温で５ｍｉｎの遠心分離により調製し、そしてＤｉｆｆＱｕｉｋ染色系（Ｄａｄｅ Ｂｅｈｒｉｎｇ）を使用して染色した。細胞は油浸顕微鏡検査を使用して盲検で（ｂｌｉｎｄ）計数した。
化合物（１）でのモルモットの処置は、卵アルブミン投与後８および２４時間で検討した場合にＢＡＬＦ中への好酸球蓄積を阻害することが見出された（表５）。
たばこ煙モデル
Ａ／Ｊマウス（雄性、５週齢）を、小動物向けのたばこ煙吸入実験装置（ＳＩＳ−ＣＳ型；柴田科学株式会社、東京）を使用して、１１日間１日あたり３０ｍｉｎ間たばこ煙（４％たばこ煙、圧縮空気で希釈）に曝露した。試験物質を、最後のたばこ煙曝露後３日間１日２回、鼻内に（５０％ＤＭＳＯ／ＰＢＳ中溶液３５μｌ）かつ治療的に与えた。最終投与１２時間後に動物を麻酔し、気管にカニューレ処置しかつ気管支肺胞洗浄液（ＢＡＬＦ）を収集した。肺胞マクロファージおよび好中球の数を、抗マウスＭＯＭＡ２抗体（マクロファージ）若しくは抗マウス７／４抗体（好中球）を使用するＦＡＣＳ分析（ＥＰＩＣＳ（Ｒ）ＡＬＴＲＡ ＩＩ、Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ，Ｉｎｃ．、米国カリフォルニア州フラートン）により測定した。
化合物（１）での処置の結果を図１（好中球）および図２（活性化肺胞マクロファージ）に示す。細胞数のデータは平均±ＳＥＭとして示す。この試験に使用したたばこ煙モデルはコルチコステロイド不応性の系として報告されており（Ｍｅｄｉｃｈｅｒｌａ Ｓ．ら、（２００８）；Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．３２４（３）：９２１−９）、そして、フルチカゾンプロピオン酸エステルが、ＬＰＳ誘発性好中球蓄積の８０％超の阻害を生じた同じ用量である５０μｇ／ｍＬ（３５μｌ、１日２回、鼻内）で気道への好中球若しくはマクロファージいずれの蓄積も阻害しなかったことが確認された。しかしながら、化合物（１）での処置は、好中球および活性化マクロファージ双方の数の顕著な用量依存性の減少をもたらすことが見出された。
卵アルブミン投与／パラインフルエンザ感染モデル
雄性Ｄｕｎｋｉｎ−Ｈａｒｔｌｅｙモルモット（３００〜３５０ｇ、ｎ＝６／群）を、第２および６日に１ｍｌ生理的食塩水中１００μｇの卵アルブミン（ＯＶＡ）＋１００ｍｇのＡｌ２（ＯＨ）３で感作した（ｉ．ｐ．）。パラインフルエンザウイルス（ＰＩＶ−３；１０６感染単位）若しくはウイルスを含まない培地を第１１および１２日に鼻に注入した。動物を、第１０〜１５日から、噴霧される（ｉ）１日あたり１．５ｍｇの用量のフルチカゾンプロピオン酸エステル（初期の試験は、この用量のフルチカゾンプロピオン酸エステルがＰＩＶ３培地で処置した感作動物での卵アルブミン媒介性肺機能変化を阻害したことを確立した）若しくは（ｉｉ）化合物（１）（１日あたり０．１５ｍｇ）若しくは（ｉｉｉ）上で示された用量のフルチカゾンプロピオン酸エステルおよび化合物（１）の組合せ若しくは（ｉｖ）ベヒクル（ＤＭＳＯ：エタノール：生理的食塩水、３０：３０：４０％）いずれかで処置した。全動物に第１５日に噴霧ＯＶＡ（１０μｇ／ｍｌ）を１ｈｒ投与し、そして比気道コンダクタンス（ｓＧａｗ）の反復測定を、全身プレチスモグラフィーを使用して２４ｈにわたり行った。ＯＶＡ投与後のｓＧａｗの測定値をベースラインからの変化％としてプロットする。図３は単剤療法としての化合物１の効果を示す一方
、図４はフルチカゾンプロピオン酸エステルと組合せで投与される場合のその効果を示す。化合物（１）単独での処置は、卵アルブミン投与に対する初期（第１ｈｒ）の気管支括約筋応答に対する影響を生じないことが見出されたが、しかしその後の応答（処置後２〜１２ｈｒ）を顕著に阻害した。フルチカゾンプロピオン酸エステルと共投与される場合、卵アルブミン投与により惹起される初期およびその後の双方の気管支括約筋応答が阻害された。
要約
ｉｎ ｖｉｔｒｏの生物学的研究は、式（１）の化合物が、抗炎症活性のｉｎ ｖｉｔｒｏモデル（分化Ｕ９３７細胞およびＴＨＰ−１細胞からのＬＰＳ誘発性ＴＮＦα遊離）における良好な有効性を伴う、ｐ３８ ＭＡＰキナーゼサブタイプαおよびγの強力な阻害剤であることを示す。加えて、式（１）の化合物は、ライノウイルス誘発性炎症およびライノウイルス複製の双方を阻害することが可能であるという驚くべき特性を示す。
本明細および後に続く請求の範囲を通じて、文脈が別の方法で必要としない限り、「含んでなる（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」という語、ならびに「含んでなる（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」および「含んでなること（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」のような変形は、述べられた整数、段階、整数の群若しくは段階の群の包含を意味しているが、しかしいかなる他の整数、段階、整数の群若しくは段階の群の除外も意味していないことが理解されるであろう。
本明細書で言及される全部の特許および特許出願はそっくりそのまま引用することにより組み込まれる。
本記述および請求の範囲が一部を形成する本出願は、いかなるその後の出願に関しても優先権の基礎として使用しうる。こうしたその後の出願の請求の範囲は、本明細書に記述されるいずれの特徴若しくは特徴の組合せにも向けることができる。それらは製品、組成物、方法若しくは使用の請求項の形態をとることができ、そして例としてかつ制限を伴わずに請求の範囲を包含しうる。
ＢＡＬＦ中の好中球蓄積（化合物（１）） ＢＡＬＦ中のＭＯＭＡ２＋マクロファージ蓄積（化合物（１）） ＯＶＡ感作ＰＩＶ３感染モルモットにおけるＯＶＡ曝露後のｓＧａｗ値の変化（化合物（１）） ＯＶＡ感作ＰＩＶ３感染モルモットにおけるＯＶＡ曝露後のｓＧａｗ値の変化（化合物（１））

Claims (14)

  1. 式（Ｉ）の化合物
    若しくは、その全部の立体異性体および互変異性体を包含するその製薬学的に許容できる塩。
  2. １種若しくはそれ以上の製薬学的に許容できる希釈剤若しくは担体とともに請求項１に記載の化合物を含んでなる製薬学的組成物。
  3. 医薬品としての使用のための請求項１に記載の式（１）の化合物。
  4. 慢性呼吸器疾患を伴う患者における悪化の処置若しくは予防における使用のための、請求項１に記載の式（１）の化合物を含んでなる製薬学的組成物。
  5. 慢性疾患が、ＣＯＰＤ（慢性気管支炎および肺気腫を包含する）、喘息、小児喘息、嚢胞性線維症、サルコイドーシス、特発性肺線維症から成る群から選択される、請求項４に記載の製薬学的組成物。
  6. ＣＯＰＤ（慢性気管支炎および肺気腫を包含する）、喘息、小児喘息、嚢胞性線維症、サルコイドーシス、特発性肺線維症、アレルギー性鼻炎、鼻炎、副鼻腔炎、アレルギー性結膜炎、結膜炎、アレルギー性皮膚炎、接触皮膚炎、乾癬、潰瘍性大腸炎、関節リウマチ若しくは変形性関節症に二次的な炎症を起こした関節、関節リウマチ、膵炎、悪液質、非小細胞肺癌、乳癌、胃癌、結腸直腸癌および悪性黒色腫を包含する腫瘍の増殖および転移の阻害から選択される状態の処置若しくは予防における使用のための、請求項１に記載の式（１）の化合物を含んでなる製薬学的組成物。
  7. ＣＯＰＤ（慢性気管支炎および肺気腫を包含する）、喘息、小児喘息、嚢胞性線維症、サルコイドーシス、特発性肺線維症、アレルギー性鼻炎、鼻炎、副鼻腔炎、肺高血圧症、アレルギー性結膜炎、結膜炎、アレルギー性皮膚炎、接触皮膚炎、乾癬、潰瘍性大腸炎、関節リウマチ若しくは変形性関節症に二次的な炎症を起こした関節、関節リウマチ、膵炎、悪液質、非小細胞肺癌、乳癌、胃癌、結腸直腸癌および悪性黒色腫を包含する腫瘍の増殖および転移の阻害から選択される状態の処置若しくは予防のための医薬品の製造のための、請求項１に記載の式（１）の化合物若しくは請求項２に記載の組成物の使用。
  8. 慢性状態を伴う患者における呼吸器ウイルス感染症の処置若しくは予防における使用のための、請求項１に記載の式（１）の化合物を含んでなる製薬学的組成物。
  9. 慢性状態がうっ血性心不全、糖尿病および癌から選択される、請求項８に記載の製薬学的組成物。
  10. 患者が免疫抑制されている、請求項８に記載の製薬学的組成物。
  11. 患者が臓器移植後である、請求項１０に記載の製薬学的組成物。
  12. 慢性状態を伴う患者における呼吸器ウイルス感染症の処置若しくは予防における使用のための、抗ウイルス療法と組合せの、請求項１に記載の式（１）の化合物を含んでなる製薬学的組成物。
  13. ザナマビルおよびオセルタミビルから選択される抗ウイルス療法と組合せの、請求項１２に記載の製薬学的組成物。
  14. 慢性状態がうっ血性心不全、糖尿病または癌であり、免疫抑制患者が臓器移植後である、請求項１２または請求項１３に記載の製薬学的組成物。
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