JP5335238B2 - 微生物活性制御物質供給方法及びその装置並びにそれを利用した環境浄化方法及びバイオリアクター - Google Patents
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Description
課題を解決するための手段
2 非多孔性膜
3 微生物活性制御物質
4 容器
4a 微生物活性制御物質貯留部
5 供給部
6 微生物活性制御物質貯留タンク
7 供給ノズル
8 チューブ
9 バイオリアクター
10 不織布
11 担体
12 微生物活性制御物質供給装置用ポケット
13 脱窒菌
16 保護材
17 担体
20 酸素供給装置
21 酸素吸収物質
22 酸素
23 アンモニア酸化菌
25 酸素吸収装置
Nitrosomonas europaea IFO-14298、
Nitrosomonas europaea、 N.marina*、
Nitrosococcus oceanus*、 N.mobilis、
Nitrosospira briensis、
Nitroso lobus multiformis、
Nitrosovibrio tenuis、
脱窒菌としては、
Paracoccus denitrificans JCM-6892**、
Paracoccus denitrificans**、
Alcaligenes eutrophus**、 A. faecalis、
Alcaligenes sp.Ab-A-1、Ab-A-2、G-A-2-1(FERM P-13862、P-13860、P-13861)*
Pseudomonas denitrificans、
Thiosphaera pantotropha***、
Thiobacillus denitrificans***
などを挙げることができる。
Nitrobacter winogradskyi 、N. hamburgensis、
Nitrospina gracilis*、
Nitrococcus mobilis*、
Nitrospira marina*
などを挙げることができる。
Dehalococcoides sp.、
Methanosarcina sp.
を挙げることができる。これら微生物は、嫌気性条件下で電子供与体物質として水素ガス、メタノール、エタノールを与えて活性化することで、テトラクロロエチレン、トリクロロエチレン及びジクロロエチレンを脱塩素呼吸によりビニルクロライドまで分解処理することができる。つまり、これらの微生物を担体11に固定することで、テトラクロロエチレン、トリクロロエチレン及びジクロロエチレンを嫌気性条件下で脱塩素呼吸によりビニルクロライドに分解するバイオリアクターを得ることができる。
Pseudomonas sp.、
Pseudomonas ptida、
Acinetobacter sp.、
Ralstonia sp.、
Ralstonia eutropha、
Azoarcus sp.、
Bacillus sp.、
Alcaligenes sp.、
Alcaligenes faecalis、
Rhodococcus sp.
(a)メタン分解菌:メタン
(b)アンモニア酸化菌:アンモニア
(c)トルエン分解菌:トルエン
(d)フェノール分解菌:フェノール、トルエン、ベンゼン
つまり、バイオリアクターに担持させた微生物にあわせて、微生物を刺激するためのエネルギー源物質を適宜使用すればよい。
ポリエチレン膜を用いて袋を形成し、その中にメタノール、エタノールを密封した場合の有機物の透過量を測定して、本発明の微生物活性制御物質供給装置の有効性について確認した。
厚さ0.05mm、0.1mm、0.3mm、0.5mmのポリエチレン膜(商品名:ミポロンフィルム、ミツワ(株)製)を袋状として、その中にメタノール(和光純薬工業製、99.8%)、エタノール(和光純薬工業製、99.5%)をそれぞれ密封した。密封した溶液量は全て5mLとした。これを水の中に浸漬し、経過日数に対して分子透過量をTOC濃度を測定することによりメタノールおよびエタノールの透過量を評価した。TOC濃度は燃焼−赤外線式全有機炭素分析計(TOC−650、東レエンジニアリング製)により測定した。この結果を図6の(A)並びに(B)に示す。図中において、Bはバックグラウンド、MeOHはメタノール、EtOHはエタノール、0.05、0.1、0.3、0.5等の数値はポリエチレン膜厚(単位;mm)を表している。この実験から、メタノール、エタノール共に、ポリエチレン膜厚が薄くなるにつれて、TOC濃度も増加していくことから、ポリエチレン膜の膜厚により、電子供与体供給量の制御が可能であることが確認された。
ポリエチレン膜に対する酢酸、乳酸及びグルコースの透過性を調査した。厚さ0.05mmのポリエチレン膜(商品名:ミポロンフィルム、ミツワ(株)製)を袋状として、その中に酢酸(和光純薬工業製、99.7%)を密封した。また、厚さ0.01mmのポリエチレン膜(商品名:ポリエチレンラップ、(株)ダイエー製)を袋状として、その中に乳酸(和光純薬工業製、DL‐乳酸85〜92%溶液)、グルコース(和光純薬工業製、10%水溶液)をそれぞれ密封した。密封した溶液量はすべて5mLとした。これらをそれぞれ水の中に浸漬し、経過時間に対してTOC濃度を測定して、酢酸、乳酸及びグルコースの透過量を評価した。また、ポリエチレン膜中にエタノール(和光純薬工業製、99.5%)を密封して袋状としたものについても同様にTOC濃度濃度を測定し、酢酸、乳酸及びグルコースのポリエチレン膜透過性との比較を行った。この結果を図12に示す。図中において、EtOHはエタノール、Aceは酢酸、Lacは乳酸、Gluはグルコースを表している。この実験から、酢酸はエタノールよりもポリエチレン膜の透過速度が速いことが確認された。一方、乳酸とグルコースはポリエチレン膜をほとんど透過しないことが確認された。したがって、メタノールやエタノール等のアルコールに加えて、酢酸もポリエチレン膜を透過することが明らかとなった。また、乳酸やグルコース等の水に良く溶ける物質はポリエチレン膜を透過し難いことが明らかとなった。
ポリビニルアルコール(PVA)膜に対するグルコースと、単糖類であるグルコースより分子量の大きい二糖類のスクロースの透過性を調査した。
厚さ0.025mmのポリビニルアルコール膜(商品名:ビニロンフィルムDX−N#25、東セロ株式会社製)を袋状として、その中にグルコース(和光純薬工業製、10%水溶液)、スクロース(和光純薬工業製、10%水溶液)をそれぞれ密封した。密封した溶液量はすべて5mLとした。これらをそれぞれ水の中に浸漬し、経過時間に対してTOC濃度を測定して、グルコース及びスクロースの透過量を評価した。この結果を図13に示す。図中において、Gluはグルコース、Sucはスクロースを表している。この実験から、グルコースとスクロースはPVA膜を透過していることが確認された。また、TOC濃度が平衡状態に達する時間は、グルコースが約15時間後であるのに対し、スクロースは約50時間後であり、スクロースの方がグルコースと比較して遅いことが確認された。したがって、分子量の大きいグルコースやスクロース等の糖類もPVA膜のような親水性の膜を用いることで透過させることが可能であることが明らかとなった。また、単糖類であるグルコースよりも分子量の大きい二糖類のスクロースの方がTOC濃度の平衡状態に達する時間が遅かったことから、分子量によりPVA膜の分子透過速度を制御することが可能であることが明らかとなった。尚、本実験では、グルコースやスクロースのPVA膜透過速度が、メタノールやエタノール、酢酸のポリエチレン膜透過速度に比べて速い傾向が見られた。これは、使用したPVA膜の膜厚が0.025mmと薄かったことに起因しており、PVA膜厚を厚くすることやポリエチレン膜とPVA膜の中間の性質を持つエチレンビニルアルコール共重合体膜を用いることにより、グルコースやスクロースの透過速度を抑えることが可能である。
ポリエチレン膜に対するアンモニウムイオン(NH4 +)、硝酸イオン(NO3 −)、リン酸イオン(PO4 3−)及び硫酸イオン(SO4 2−)の透過性を調査した。
厚さ0.01mmのポリエチレン膜(商品名:ポリエチレンラップ、(株)ダイエー製)を袋状として、その中にアンモニウムイオンと硫酸イオンを含む溶液、硝酸イオンを含む溶液、リン酸イオンを含む溶液をそれぞれ密封した。アンモニウムイオンと硫酸イオンを含む溶液は、硫酸アンモニウム0.047gを蒸留水10mLに溶解して、濃度を1000mg−N/Lとした。硝酸イオンを含む溶液は、硝酸カリウム0.072gを蒸留水10mLに溶解して、濃度を1000mg−N/Lとした。リン酸イオンを含む溶液は、リン酸カリウム0.056gを蒸留水10mLに溶解して、濃度を1000mg−P/Lした。溶液を密封した袋は、それぞれ水の中に浸漬し、経過時間に対してイオン濃度を測定し、アンモニウムイオン、硝酸イオン、リン酸イオン及び硫酸イオンの透過量を評価した。アンモニウムイオン濃度はインドフェノール青吸光光度法により測定した。その他のイオン濃度は、イオンクロマトアナライザー(DX−AQ、ダイオネックス社製)により測定した。この結果を図14に示す。図中において、図中において、NH4 +−Nはアンモニウムイオンを、NO3 −−Nは硝酸イオンを、PO4 3−−Pはリン酸イオンを、SO4 2−−Sは硫酸イオンを表している。この実験から、アンモニウムイオン、硝酸イオン、リン酸イオン及び硫酸イオンはポリエチレン膜をほとんど透過しないことが確認された。したがって、ポリエチレン膜を用いてもイオンをほとんど透過性させることができないことが明らかとなった。
ポリビニルアルコール(PVA)膜に対するアンモニウムイオン(NH4 +)、硝酸イオン(NO3 −)、リン酸イオン(PO4 3−)及び硫酸イオン(SO4 2−)の透過性を調査した。
厚さ0.025mmのPVA膜(商品名:ビニロンフィルムDX−N#25、東セロ株式会社製)を袋状として、その中にアンモニウムイオンと硫酸イオンを含む溶液、硝酸イオンを含む溶液、リン酸イオンを含む溶液をそれぞれ密封した。これらの溶液は実施例4と同じものとした。これらをそれぞれ水の中に浸漬し、実施例4と同様の手法により、経過時間に対してイオン濃度を測定し、アンモニウムイオン、硝酸イオン、リン酸イオン及び硫酸イオンの透過量を評価した。この結果を図15に示す。この実験から、アンモニウムイオン、硝酸イオン、リン酸イオン及び硫酸イオンはPVA膜を透過していることが確認された。また、各種イオン濃度が平衡状態に達する時間は、アンモニウムイオンと硝酸イオンが約50時間後であるのに対し、リン酸イオンと硫酸イオンは約100時間後であり、リン酸イオン及び硫酸イオンの方がアンモニウムイオン及び硝酸イオンと比較して遅いことが確認された。したがって、アンモニウムイオン、硝酸イオン、リン酸イオン及び硫酸イオン等の水に可溶なイオンをPVA膜のような親水性の膜を用いることで透過させることが可能であることが明らかとなった。また、アンモニウムイオンや硝酸イオンよりも分子量の大きいリン酸イオンや硫酸イオンの方が各種イオン濃度の平衡状態に達する時間が遅かったことから、イオンの分子量によりPVA膜のイオン透過速度を制御することが可能であることが明らかとなった。尚、本実験では、各種イオンのPVA膜透過速度が、メタノールやエタノール、酢酸のポリエチレン膜透過速度に比べて速い傾向が見られた。これは、使用したPVA膜の膜厚が0.025mmと薄かったことに起因しており、PVA膜厚を厚くすることやポリエチレン膜とPVA膜の中間の性質を持つエチレンビニルアルコール共重合体膜を用いることにより、各種イオンの透過速度を抑えることが可能である。
実施例1で用いたエタノールを密封するポリエチレンの袋を使って、バイオリアクターの機能を確認した。
アンモニア酸化菌としてNitrosomonas europaea IFO-14298、脱窒菌としてParacoccus denitrificans JCM-6892を用いた。培養には、Nitrosomonas europaeaはIFO Medium List No.240、Paracoccus denitrificansは JCM Medium List No.22(Nutrient agar No.2)を基本とした液体培地を用いた。培地の組成を表1に示す。IFO培地No.240にPhenol RedをpH指示薬として添加し、pHはCaCO3の代わりにNa2CO3を適宜添加することにより調整した。また、JCM培地No.22からは寒天を除き、液体培地として用いた。それぞれ30℃で振とう(110rpm)培養後、遠心分離により集菌し、リン酸緩衝液(9g/l Na2HPO4・12H2O、1.5g/l KH2PO4、pH=7.5)により3回洗浄した。洗浄菌体は、N.europaeaは8mg dry wt./ml、P.denitrificansは33mg dry wt./mlになるようそれぞれリン酸緩衝液に懸濁した。
光硬化性樹脂PVA−SbQ(SPP−H−13、東洋合成工業製)9mlに対し、前述のN.europaeaの菌懸濁液1ml、P.denitrificansの菌懸濁液2mlを混合し、固定化した。菌体と樹脂の混合液は直接不織布に塗布し、メタルハロゲンランプ下で1時間照射することにより不織布の片面にシート状に固定化担体(縦50mm、横50mm、厚さ20mm)を成形した。
固定化担体を用いたバイオリアクターにポリエチレン膜でエタノールを密封した電子供与体供給装置を用いたときの性能評価を行った。
上記実施例で作製した、Nitrosomonas europaea IFO-14298とParacoccus denitrificans JCM-6892を同時に包埋した担体を不織布の片面にシート状に成形したものを、不織布を外側になるようにし、且つ、担体に微生物活性制御物質供給装置用ポケットを設けるようにして、その中に厚さ0.05mmおよび0.3mmのポリエチレン膜にてエタノールを密封した袋状の微生物活性制御物質供給装置を入れて、アンモニア排水処理能力を評価した。
培地溶液中のアンモニア、亜硝酸濃度は、それぞれインドフェノール青吸光光度法、ナフチルアミン吸光光度法により測定した。
図7にバイオリアクターの性能評価結果を示す。Cは電子供与体を供給していないバイオリアクターで、EtOH−0.05はポリエチレン膜厚0.05mmでエタノールを密封した微生物活性制御物質供給装置を用いたバイオリアクター、EtOH−0.3はポリエチレン膜厚0.3mmでエタノールを密封した微生物活性制御物質供給装置を用いたバイオリアクターの結果である。C、EtOH−0.05、EtOH−0.3共に、4日目にはアンモニア濃度は0になったが、亜硝酸濃度に関しては、Cの場合は7日目まで上昇し続け、EtOH−0.3では2日目までは上昇したが、それ以降は減少し、7日目には検出されなかった、また、EtOH−0.05は1日目から亜硝酸は検出されなかった。従って、ポリエチレン膜を介してエタノールがバイオリアクターに供給されていることが確認され、ポリエチレン膜厚が薄い方がエタノールを供給しやすいことが確認された。
酸性物質である塩酸や酢酸、塩基性物質である水酸化ナトリウムやアンモニアをポリエチレン膜またはPVA膜から透過させることによる、ポリエチレン膜またはPVA膜周辺環境のpH制御性について調査した。
厚さ0.01mmのポリエチレン膜(商品名:ポリエチレンラップ、(株)ダイエー製)中に、HCl溶液(和光純薬工業製、1N)、酢酸(和光純薬工業製、99.7%)、NaOH溶液(和光純薬工業製、1N)、アンモニア溶液(和光純薬工業製、25%)をそれぞれ密封して袋状とした。また、厚さ0.025mmのPVA膜(商品名:ビニロンフィルムDX‐N#25、東セロ株式会社製)中に、HCl溶液(和光純薬工業製、1N)、NaOH溶液(和光純薬工業製、1N)をそれぞれ密封して袋状とした。溶液を密封した袋は、それぞれ水の中に浸漬し、経過時間に対してpHを測定し、ポリエチレン膜またはPVA膜による酸性物質や塩基性物質の透過性の評価を行った。この結果を図16に示す。この実験から、酸性物質である酢酸、塩基性物質であるアンモニアがポリエチレン膜を透過して、袋の周辺環境のpHの制御が可能であることが確認され、酸性物質である塩酸、塩基性物質である水酸化ナトリウムはポリエチレン膜は透過しにくいがPVA膜を透過して、袋の周辺環境のpHの制御が可能であることが確認された。したがって、酸性物質や塩基性物質の透過性をポリエチレン膜、PVA膜またはその中間性質を持つエチレンビニルアルコール共重合体膜の選別、膜の厚さにより制御して、袋の周辺環境を所望のpHに変化させて、所望のpHを長期に亘り維持できることが明らかとなった。
Claims (14)
- 微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は、電子供与体として機能する物質、酸性物質、塩基性物質、酸素放出物質及び酸素吸収物質からなる群から選択される1種以上であり(但し、前記酸性物質及び前記塩基性物質並びに前記酸素吸収物質及び前記酸素放出物質の組み合わせを除く)、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、前記微生物活性制御物質(但し、前記微生物活性制御物質が前記酸素放出物質及び前記酸素吸収物質の場合は酸素)を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御するものであり、
前記容器は前記微生物活性制御物質を補充する供給部を備えるものであり、
前記供給部は、前記微生物活性制御物質を一時的に貯留するタンク部を備え、前記タンク部は、前記容器と一体に形成されている微生物活性制御物質供給装置。 - 微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は、電子供与体として機能する物質、酸性物質、塩基性物質、酸素放出物質及び酸素吸収物質からなる群から選択される1種以上であり(但し、前記酸性物質及び前記塩基性物質並びに前記酸素吸収物質及び前記酸素放出物質の組み合わせを除く)、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、前記微生物活性制御物質(但し、前記微生物活性制御物質が前記酸素放出物質及び前記酸素吸収物質の場合は酸素)を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御するものであり、
前記容器は、前記非多孔性膜の保護材として機能し且つ微生物を固定し得る担体で形成された鞘体に挿入されることにより、前記微生物活性制御物質による前記容器の膨らみが抑えられて前記容器の厚みが制限されている微生物活性制御物質供給装置。 - 前記容器は前記微生物活性制御物質を密封した袋状あるいはチューブ状である請求項2に記載の微生物活性制御物質供給装置。
- 前記容器は前記微生物活性制御物質を補充する供給部を備えるものである請求項2に記載の微生物活性制御物質供給装置。
- 前記供給部は、前記微生物活性制御物質を一時的に貯留するタンク部を備え、前記タンク部は、前記容器と一体に形成されている請求項4に記載の微生物活性制御物質供給装置。
- 前記容器は液体の前記微生物活性制御物質を貯留する前記容器とは別体のタンクと連通し、必要に応じて前記微生物活性制御物質を補充可能とする供給ノズルを備えるものである請求項4に記載の微生物活性制御物質供給装置。
- 請求項2〜6のいずれか1項に記載の微生物活性制御物質供給装置の担体に目的とする成分の除去に有効な微生物が固定されているバイオリアクター。
- 請求項2〜6のいずれか1項に記載の微生物活性制御物質供給装置の担体にアンモニア酸化菌と脱窒菌が固定され、電子供与体として機能する物質が微生物活性制御物質として容器に充填されているバイオリアクター。
- 請求項8に記載のバイオリアクターを、アンモニアを含む好気的な除染対象領域に1つ又は2つ以上配置し、前記除染対象領域に含まれるアンモニアを窒素ガスに変換する浄化方法。
- 微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は電子供与体として機能する物質であり、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され前記微生物活性制御物質を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御する微生物活性制御物質供給装置を、砂漠化が進んだ土壌に埋設し、土壌微生物に前記電子供与体として機能する物質を与えて活性化することにより前記土壌微生物にバイオポリマーを産生させて該バイオポリマーを前記土壌に蓄積し、前記土壌中に植物の生育に適した団粒構造を形成する土壌改良方法。
- 微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は電子供与体として機能する物質であり、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、前記微生物活性制御物質を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御する第一の微生物活性制御物質供給装置を除染対象領域に配置すると共に、
微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は酸素吸収物質であり、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、酸素を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御する第二の微生物活性制御物質供給装置を前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍から酸素を吸収して嫌気性雰囲気が形成される位置に配置し、
前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍に存在する微生物のうちの電子供与体を必要とする嫌気性微生物を活性化して環境汚染物質を除去することを特徴とする環境浄化方法。 - 微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は電子供与体として機能する物質であり、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、前記微生物活性制御物質を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御する第一の微生物活性制御物質供給装置を除染対象領域に配置すると共に、
微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は酸素放出物質であり、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、酸素を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御する第二の微生物活性制御物質供給装置を前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍に好気性雰囲気が形成される位置に配置し、
前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍に存在する微生物のうちの電子供与体を必要とする好気性微生物により環境汚染物質を除去することを特徴とする環境浄化方法。 - 微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は電子供与体として機能する物質であり、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、前記微生物活性制御物質を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御する第一の微生物活性制御物質供給装置を除染対象領域に配置すると共に、
微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は酸素放出物質であり、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、酸素を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御する第二の微生物活性制御物質供給装置を前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍に酸素が供給されない位置であって、前記第二の微生物活性制御物質供給装置の近傍に存在する活性化された好気性微生物により産生される物質が前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍の微生物に供給される位置に配置して、
前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍に存在する微生物のうちの電子供与体を必要とする微生物と、前記第二の微生物活性制御物質供給装置の近傍に存在する微生物のうちの好気性微生物により環境汚染物質を除去することを特徴とする環境浄化方法。 - 微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は電子供与体として機能する物質であり、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、前記微生物活性制御物質を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御する第一の微生物活性制御物質供給装置を除染対象領域に配置すると共に、
微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は酸素放出物質であり、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、酸素を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御する第二の微生物活性制御物質供給装置を前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍に酸素が供給されない位置であって、前記第二の微生物活性制御物質供給装置の近傍に存在する活性化された好気性微生物により産生される物質が前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍の微生物に供給される位置に配置し、さらに、
微生物活性制御物質と、疎水性の非多孔性膜を少なくとも一部に備える密封構造の容器とを含み、前記微生物活性制御物質は酸素吸収物質であり、前記容器内には前記微生物活性制御物質が充填され、酸素を前記容器の前記疎水性の非多孔性膜部分から前記疎水性の非多孔性膜の分子透過性能に支配される速度で透過させ、前記容器周辺の微生物の活性を制御する第三の微生物活性制御物質供給装置を前記第二の微生物活性制御物質供給装置から酸素が供給されない位置であって、前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍から酸素を吸収して嫌気性雰囲気が形成される位置に配置して、
前記第一の微生物活性制御物質供給装置の近傍に存在する嫌気性微生物のうちの電子供与体を必要とする微生物と、前記第二の微生物活性制御物質供給装置の近傍に存在する微生物のうちの好気性微生物により環境汚染物質を除去することを特徴とする環境浄化方法。
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