JP5081485B2

JP5081485B2 - 抗癌剤及び抗癌剤の製造方法

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Publication number: JP5081485B2
Application number: JP2007099217A
Authority: JP
Inventors: 博飯塚; 史子鈴木
Original assignee: 野田食菌工業株式会社
Priority date: 2007-04-05
Filing date: 2007-04-05
Publication date: 2012-11-28
Anticipated expiration: 2027-04-05
Also published as: JP2008255057A

Description

本発明は、藻類を含有する培地を用いて、担子菌の菌糸体を培養して得られる抗癌剤、及び抗癌剤の製造方法に関する。

きのこ類は、生理活性を有することから、古くから漢方薬として用いられている。また、近年においては、きのこ類の新たな生理活性について種々研究が行われており、例えば、アガリクス、マイタケ、メシマコブ、マンネン茸（霊芝）、ハナビラ茸等の子実体や液体培養菌糸体由来の多糖体による抗癌効果が報告されている。

一方、藻類由来の多糖類にも、抗癌作用を有することが知られており、例えば、下記特許文献１には、クロレラやコッコミクサなどの微細藻類から抽出した酸性多糖による抗癌作用が開示されている。

また、下記特許文献２には、クロレラやコッコミクサなどの微細藻類より抽出した多糖体と、アガリクス茸、メシマコブ、シイタケ、冬虫夏草などの担子菌類より抽出した多糖体とを併用した抗癌性物質が開示されている。
特開２００１−２８８１０２号公報特開２００２−１４５７９６号公報

上記特許文献１、２の抗癌剤は、藻類と、担子菌類とをそれぞれ別々に培養し、それぞれの培養物から抽出した成分を、単独又は組合せて用いるという方法を採用しており、きのこ類や藻類が本来有していた抗癌活性以上の効果は期待できず、それゆえ充分な効果を有するものではなかった。また、組合せて用いる場合には、それぞれの原料について、抽出工程を行わなければならず、製造作業性も悪いという問題があった。

したがって、本発明の目的は、安全かつ優れた抗癌作用を有し、製造工程も簡略化できるようにした抗癌剤を提供することである。

上記目的を達成するため、本発明の抗癌剤は、クロレラ及び／又はスピルリナを含有する原料から調製された培地で、椎茸又はマンネン茸の菌糸体を培養して得られた培養物又は該培養物から調製された抽出物を有効成分として含有することを特徴とする。

本発明によれば、クロレラ及び／又はスピルリナを含有する原料から調製された培地で、椎茸又はマンネン茸の菌糸体を培養することによって、担子菌である椎茸又はマンネン茸によって、藻類であるクロレラ及び／又はスピルリナが分解、資化されると共に、椎茸又はマンネン茸の菌糸体を増殖させることができる。こうして得られた培養物は、藻類であるクロレラ及び／又はスピルリナが分解、資化された成分と、この藻類を栄養分として取り込んだ椎茸又はマンネン茸の菌糸体成分とを含有する。したがって、この培養物又は該培養物から抽出された抽出物は、藻類であるクロレラ及び／又はスピルリナに由来する成分と、担子菌である椎茸又はマンネン茸の菌糸体に由来する成分とが、高次元に分解されて融合した成分であり、両者の抽出物を単に組合せたものとは異なる新しい素材である。そして、この培養物又はその抽出物は、抗腫瘍性サイトカインであるＩＬ−１２の生産を増強して免疫を活性化させて、腫瘍の増殖を抑制する作用に優れている。また、藻類であるクロレラ及び／又はスピルリナを担子菌である椎茸又はマンネン茸の菌糸体によって分解、資化し、これらを培養物ごと一緒に抽出することができるので、製造工程も簡略化することができる。

また、本発明の抗癌剤は、前記培養物中の培地原料を前記菌糸体に含まれる酵素によって分解して得られる代謝産物と、前記培養物中の前記菌糸体を前記酵素によって自己消化させて得られる菌糸体分解物とを含む抽出物を有効成分とすることが好ましい。これによれば、担子菌である椎茸又はマンネン茸の菌糸体自体も酵素分解されるので、有効成分をより効果的に抽出することができる。

一方、本発明の抗癌剤の製造方法は、クロレラ及び／又はスピルリナを含有する原料から調製された培地で、椎茸又はマンネン茸の菌糸体を培養して培養物を得る工程を含むことを特徴とする。本発明の抗癌剤の製造方法によれば、前述したように、抗腫瘍性サイトカインであるＩＬ−１２の生産を増強して免疫を活性化させて、腫瘍の増殖を抑制する優れた効果を有する抗癌剤を得ることができる。

本発明の抗癌剤の製造方法においては、更に、前記培養物から抽出物を調製する工程を含むことが好ましい。

本発明の抗癌剤によれば、抗腫瘍性サイトカインであるＩＬ−１２の生産増強作用に優れており、これを摂取することによって、腫瘍の増殖を抑制できるので、優れた抗癌作用が期待できる。また、藻類であるクロレラ及び／又はスピルリナを担子菌である椎茸又はマンネン茸の菌糸体によって分解、資化し、これらを培養物ごと一緒に抽出することができるので、製造工程も簡略化することができる。

本発明に用いられる担子菌としては、椎茸又はマンネン茸が用いられる。

また、本発明に用いられる藻類としては、クロレラ及び／又はスピルリナが用いられる。藻類であるクロレラ及び／又はスピルリナは、そのまま原料としてもよいが、細断、破砕、磨砕等の物理的処理や、酸又はアルカリ分解、酵素分解等の化学的処理を施したものを用いることもできる。更に、熱水等で抽出した抽出物を用いることもできる。

本発明では、クロレラ及び／又はスピルリナを含む培地で、椎茸又はマンネン茸の菌糸体を培養することにより、藻類であるクロレラ及び／又はスピルリナを分解、資化させると共に、担子菌である椎茸又はマンネン茸の菌糸体を増殖させる。培地中には、上記藻類の他に、担子菌である椎茸又はマンネン茸の生育に必要な他の栄養源を添加してもよい。また、培地としては、液体培地、固体培地の何れも使用できる。

固体培地の場合は、植物性繊維成分を含有する培地、例えば、バガス（砂糖黍の繊維性成分）、トウモロコシの茎葉、米糠、ふすま、稲藁、茅、竹、熊笹などを、クロレラ及び／又はスピルリナと混合した培地が好ましく用いられる。また、必要に応じて、酵母エキス、乾燥酵母、おから、コーンミールなどを添加混合してもよい。固体培地は、水分が６０〜８０％となるように調整し、常法に従い高圧蒸気滅菌した後、椎茸又はマンネン茸の菌糸体又は胞子を接種し、例えば温度が１８〜２５℃に空調された培養室で１〜６ヶ月間培養する。こうして培地内部に菌糸体が蔓延し、培地ｐＨが５以下に低下した状態で培養を終了する。

液体培地の場合は、上記藻類の他に、担子菌である椎茸又はマンネン茸のエネルギー源となる糖質（五単糖、六単糖、それらのオリゴ糖、ヘテロオリゴ糖、多糖、糖蛋白、糖脂質など）や、穀類等を含む培地が用いられる。また、液体培養では、原料の上記藻類は必要に応じて細かく粉砕し、炭素源や栄養成分等を必要に応じて加え、水で１〜２０％濃度に調整する。常法に従い高圧蒸気滅菌し、培地を冷却後、椎茸又はマンネン茸の胞子から発芽して生育した菌糸や、椎茸又はマンネン茸の子実体から分離培養した菌糸を接種し、例えば１８〜３０℃に温度を制御した条件で７〜３０日、通気攪拌または振盪培養する。培養は、菌糸による発酵が充分達成され、培養液のｐＨが５以下に低下した状態で終了する。

培養終了後、好ましくは、菌糸体が産生した酵素を利用して、培養物中の菌糸体を自己消化させる。そして、培養培地を破砕して培養物を抽出する。

固体培地の場合は、培地を破砕して、必要に応じて少量の水を加え、３０〜６０℃で３〜６時間処理して菌糸の酵素反応を進め、自己消化させる。次いで、この破砕物を５０℃以上の温水または熱水に浸潤させ、有効成分を抽出する。

液体培地の場合は、菌糸体を３０〜６０℃で自己消化した後、熱処理、例えば、１００℃、１０分処理して酵素活性と菌糸体を不活化し、水溶性成分と固形分をそれぞれ分離回収するか、又は水溶性成分と固形分とを一緒に回収する。

固体培地、液体培地のいずれの場合も、抽出は、高圧下、例えば１ｋｇ/ｃｍ^２の蒸気圧下で、１２０℃というような加圧高温下で行うこともできる。

本発明の抗癌剤は、上記の方法で得られた抽出液を、そのまま又は濃縮して、液体のまま製品化することもでき、更に上記抽出液を凍結乾燥又は噴霧乾燥により粉末化することもできる。抽出液を乾燥すると、微粉末が得られるが、これをさらに粉砕し、超微細粒子とすることもできる。

こうして得られた本発明品の抗癌剤は、常法によって、粉末、顆粒、錠剤、カプセル剤として製品化することができる。また、抽出液を添加して液状、ゼリー状の飲料として製品化することもできる。更に、本発明品の抗癌剤を、各種飲食品に添加して、抗癌機能増強効果が期待できる飲食品として製品化することもできる。

このような飲食品としては、特に限定されないが、例えば、食肉、魚介類、野菜類、果実類等の生鮮食品；ハム、ソーセージ等の加工畜産物；はんぺん、かまぼこ等の加工水産物；ジャム、乾燥果実等の加工果実；漬物等の加工野菜；牛乳、バター、クリーム、チーズ等の乳製品；ナタネ油、パーム油、ひまわり油、ショートニング等の油脂類；豆腐、油揚げ、納豆等の大豆加工食品；コーヒー、ココア、清涼飲料等の飲料；醤油、味噌、ソース、ケチャップ等の調味料；パン・ケーキ類；和菓子、洋菓子等の菓子類；うどん、そば、そうめん、スパゲッティ等の麺類などが挙げられる。

本発明の抗癌剤は、蛋白質３０〜６０％、炭水化物３０〜６０％、灰分５〜１５％を含み、後述する実施例に示されるように、抗腫瘍性サイトカインであるＩＬ−１２の生産を増強して免疫を活性化し、腫瘍の増殖を抑制する。また、正常細胞であるＭＤＢＫ細胞には影響を示さない濃度で、腫瘍細胞である白血病細胞に対して優れた毒性を示しており、癌細胞に対して直接作用がある。その効果は、原料とした藻類を単独で用いた場合に比べて、顕著に向上している。

本発明の抗癌剤は、後述する実施例に示されるように、安全性試験において、ラット（雌）における２ｇ／ｋｇの単回投与試験で全く毒性を示さず、ウムラックＡＴでの変異原性試験でも陰性であった。したがって、本発明の抗癌剤は、長い食経験からも予想されるように、極めて毒性が低いことが推測される。

また、本発明の抗癌剤の有効投与量は、経口摂取において成人１日当り１〜１０ｇである。投与量がこれよりも少ないと、抗癌効果が十分に期待できず、投与量がこれよりも多いと、軟便又は腹部膨満感が生じることがある。ただし、投与量が上記より多くても安全性には問題ない。

＜調製例１＞（マンネン茸種菌）
マルツエキス２％、酵母エキス０．２５％を含有する液体培地２５０ｍｌを、５００ｍｌ坂口フラスコに入れ、１２１℃、２０分滅菌した。冷却後、寒天平板培地上に生育したマンネン茸菌糸を５ｍｍ角に切り取り、液体培地に添加し、２３℃で１４日間振盪培養してマンネン茸菌種を得た。

＜調製例２＞〈椎茸種菌〉
マルツエキス２％、酵母エキス０．２５％を含有する液体培地２５０ｍｌを、５００ｍｌ坂口フラスコに入れ、１２１℃、２０分滅菌した。冷却後、寒天平板培地上に生育した椎茸菌糸を５ｍｍ角に切り取り、液体培地に添加し、２３℃で２５日間振盪培養して、椎茸菌種を得た。

＜実施例１＞（クロレラ−マンネン茸液体培養発酵物の製造）
２００ｍｌ容三角フラスコに、クロレラ５ｇ、グルコース３ｇ、精製水１００ｍｌを入れ、１２１℃、２０分滅菌し、培養基を作製した。この培養基を２３℃に冷却した後、調製例１のマンネン茸種菌５ｍｌを無菌的に加え、１４日間振盪培養した。培養の進み方は、培養液のｐＨ変化で判断した。培養終了後、１００℃、１０分加熱して、菌糸体および酵素類を不活化し、凍結乾燥して、微粉末を得た。

＜実施例２＞（スピルリナ−マンネン茸液体培養発酵物の製造）
２００ｍｌ容三角フラスコに、スピルリナ５ｇ、グルコース３ｇ、精製水１００ｍｌを入れ、１２１℃、２０分滅菌し、培養基を作製した。この培養基を２３℃に冷却した後、調製例１のマンネン茸種菌５ｍｌを無菌的に加え、１４日間振盪培養した。培養の進み方は、培養液のｐＨ変化で判断した。培養終了後、１００℃、１０分加熱して、菌糸体および酵素類を不活化し、凍結乾燥して、微粉末を得た。

＜実施例３＞（クロレラ−椎茸液体培養発酵物の製造）
２００ｍｌ容三角フラスコに、クロレラ５ｇ、グルコース３ｇ、精製水１００ｍｌを入れ、１２１℃、２０分滅菌し、培養基を作製した。この培養基を２３℃に冷却した後、調製例２の椎茸種菌５ｍｌを無菌的に加え、１４日間振盪培養した。培養の進み方は、培養液のｐＨ変化で判断した。培養終了後、１００℃、１０分加熱して、菌糸体および酵素類を不活化し、凍結乾燥して、微粉末を得た。

＜実施例４＞（スピルリナ−椎茸液体培養発酵物の製造）
２００ｍｌ容三角フラスコに、スピルリナ５ｇ、グルコース３ｇ、精製水１００ｍｌを入れ、１２１℃、２０分滅菌し、培養基を作製した。この培養基を２３℃に冷却した後、調製例２の椎茸種菌５ｍｌを無菌的に加え、１４日間振盪培養した。培養の進み方は、培養液のｐＨ変化で判断した。培養終了後、１００℃、１０分加熱して、菌糸体および酵素類を不活化し、凍結乾燥して、微粉末を得た。

＜実施例５＞（クロレラ−マンネン茸固体培養発酵物の製造）
クロレラ２４ｇと、バガス（砂糖黍の繊維性成分）２１６ｇに水５６０ｍｌを加え良く混合し、ポリプロピレン製の袋に詰め、１２１℃、４０分滅菌し、培養基を作製した。この培養基を冷却したのち、調製例１のマンネン茸種菌１０ｍｌを接種し、２０〜２３℃で３ヶ月間静置して発酵させた。発酵終了後、培地を親指大に破砕し、マンネン茸の菌糸体に内在する酵素で自己消化させながら、６０℃の温水で１５時間程度で抽出液を得た。抽出液は、網（１２メッシュ）で粗濾過後、遠心分離（１２０００回転、１０分）し、上清液を得た。更に、この上清液を減圧濃縮した後、凍結乾燥して、微粉末を得た。

＜実施例６＞（スピルリナ−マンネン茸固体培養発酵物の製造）
スピルリナ２４ｇと、バガス（砂糖黍の繊維性成分）２１６ｇに水５６０ｍｌを加え良く混合し、ポリプロピレン製の袋に詰め、１２１℃、４０分滅菌し、培養基を作製した。この培養基を冷却したのち、調製例１のマンネン茸種菌１０ｍｌを接種し、２０〜２３℃で３ヶ月間静置して発酵させた。発酵終了後、培地を親指大に破砕し、マンネン茸の菌糸体に内在する酵素で自己消化させながら、６０℃の温水で１５時間程度で抽出液を得た。抽出液は、網（１２メッシュ）で粗濾過後、遠心分離（１２０００回転、１０分）し、上清液を得た。更に、この上清液を減圧濃縮した後、凍結乾燥して、微粉末を得た。

＜実施例７＞（クロレラ−椎茸固体培養発酵物の製造）
クロレラ２４ｇと、バガス（砂糖黍の繊維性成分）２１６ｇに水５６０ｍｌを加え良く混合し、ポリプロピレン製の袋に詰め、１２１℃、４０分滅菌し、培養基を作製した。この培養基を冷却したのち、調製例２の椎茸種菌１０ｍｌを接種し、２０〜２３℃で３ヶ月間静置して発酵させた。発酵終了後、培地を親指大に破砕し、椎茸の菌糸体に内在する酵素で自己消化させながら、６０℃の温水で１５時間程度で抽出液を得た。抽出液は、網（１２メッシュ）で粗濾過後、遠心分離（１２０００回転、１０分）し、上清液を得た。更に、この上清液を減圧濃縮した後、凍結乾燥して、微粉末を得た。

＜実施例８＞（スピルリナ−椎茸固体培養発酵物の製造）
スピルリナ２４ｇと、バガス（砂糖黍の繊維性成分）２１６ｇに水５６０ｍｌを加え良く混合し、ポリプロピレン製の袋に詰め、１２１℃、４０分滅菌し、培養基を作製した。この培養基を冷却したのち、調製例２の椎茸種菌１０ｍｌを接種し、２０〜２３℃で３ヶ月間静置して発酵させた。発酵終了後、培地を親指大に破砕し、椎茸の菌糸体に内在する酵素で自己消化させながら、６０℃の温水で１５時間程度で抽出液を得た。抽出液は、網（１２メッシュ）で粗濾過後、遠心分離（１２０００回転、１０分）し、上清液を得た。更に、この上清液を減圧濃縮した後、凍結乾燥して、微粉末を得た。

＜比較例１＞（原料クロレラ）
実施例１、３、５、７で用いた原料クロレラを比較例１とした。なお、原料クロレラはピレノイドサ種の種株をオープン培養法により生産し、スプレードライ乾燥法により粉末化したクロレラ原末（台湾産、販売者；サンライフ株式会社）を用いた。

＜比較例２＞（原料スピルリナ）
実施例２、４、６、８で用いた原料スピルリナを比較例２とした。なお、原料スピルリナは、スピルリナ原末（中華人民共和国産、販売者；サンライフ株式会社）を使用した。

＜比較例３＞
調製例１で得たマンネン茸種菌の子実体抽出物を比較例３とした。

＜比較例4＞
調製例１で得たマンネン茸種菌の菌糸体抽出物を比較例４とした。

＜試験例１＞（各サンプルの組成分析）
実施例１〜６で得た各サンプル及び、比較例１（クロレラ）、比較例２（スピリルナ）、比較例３（マンネン茸子実体）、比較例４（マンネン茸菌糸体）の組成を分析した結果を表１に示す。なお、それぞれの成分分析は、炭水化物がフェノール硫酸法（但し、実施例１〜４および比較例１，２では、炭水化物＝１００−（蛋白質＋灰分＋水溶性リグニン＋水分）で算出した）、蛋白質がセミミクロケルダール法、水溶性リグニンがイオン化示差スペクトル法、灰分が直接灰化法により行った。

＜試験例２＞（ＩＬ−１２産生の測定）
雌のＩＣＲマウスを１群１０匹とし、正常群、コントロール群、実施例１群、実施例３群に無作為に分けた。
予備飼育の後、正常群以外の群に、癌種としてＳａｒｃｏｍａ−１８０を、５×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍｌに調製し、０．２ｍｌ／マウスで、マウスの左腋下部皮下に移植した。
実施例１及び実施例３の各サンプルは、水に懸濁し、腫瘍移植の翌日から、１０００ｍｇ／Ｋｇを１日１回、マウス用金属製胃ゾンデで強制的に経口投与した。投与は、２０日間連続して行った。コントロール群は、腫瘍移植後無処置とした。
腫瘍移植後、１８日目にエーテル麻酔下で眼静脈より採血し、血清中のＩＬ−１２を、ＥＬＩＳＡキットで定量した。測定結果を表２に示す。

表２に示したように、腫瘍を移植した担癌マウス（コントロール群）では、ＩＬ−１２産生が増加して免疫系の監視機構が活性化されている。
そして、クロレラを、マンネン茸菌や椎茸菌で発酵させた実施例１及び実施例３の物質の投与では、ＩＬ−１２産生はさらに増強されていた。

＜試験例３＞（腫瘍増殖抑制の測定）
試験例２と同様に、ＩＣＲマウスを無作為に群分け（１群１０匹）し、Ｓａｒｃｏｍａ−１８０腫瘍を、１×１０^６ｃｅｌｌｓ／マウスで、マウスの左腋下の皮下に移植した。移植翌日から被験物質（実施例１〜４、比較例１〜２の物質）を、それぞれ水に懸濁し、１０００ｍｇ／Kｇ、２０日間連続で強制経口投与した。
腫瘍移植後２５日でマウスを屠殺し、腫瘍重量の測定を行った。コントロール群は、腫瘍を移植後無処置とした。
腫瘍増殖抑制率は、腫瘍平均重量から下式により算出し、結果を表３に記す。
腫瘍増殖抑制率（％）＝（１−Ｔ／Ｃ）×１００
（Ｔ：被験物質投与群の平均腫瘍重量、Ｃ：コントロール群の平均腫瘍重量）

表３の結果より、ＩＣＲマウスに移植したＳａｒｃｏｍａ−１８０腫瘍は、移植後何の処置も施さないコントロール群に比べ、比較例１の被験物質（クロレラ）、比較例２の被験物質（スピルリナ）を経口投与した群で、腫瘍重量がそれぞれ３９％、３１%抑制された。
これに対し、このクロレラ及びスピルリナを、マンネン茸菌で発酵した実施例１、２の物質を経口投与した群では、腫瘍重量が、それぞれ５８％、５７％抑制された。
また、クロレラ及びスピルリナを、椎茸菌で発酵した、実施例３、４の物質を経口投与した群では、腫瘍重量が、それぞれ６７％、５４％抑制された。

＜試験例４＞（細胞毒性試験）
白血病細胞Ｋ５６２及びＭＤＢＫ細胞に対する毒性試験を行った。

（白血病細胞に対する毒性）
白血病細胞Ｋ５６２は、１０％ＦＢＳ含有ＲＰＭＩ１６１４培地に、４０００ｃｅｌｌｓ／ｍｌに懸濁し、９６ｗｅｌｌｐｌａｔｅに１００μｌ／ｗｅｌｌで添加した。
そして、被験物質（実施例１〜４）を、前記培地で０〜５０００μｇ／ｍｌの範囲で１０段階に希釈し、細胞を添加したマイクロプレートに１００μｌ／ｗｅｌｌずつ加え、軽く混和した後、３７℃、５％ＣＯ_２下で２日間培養した。
培養後、培養上清を１００μｌ／ｗｅｌｌ除去し、ＭＴＴ試薬（５ｍｇ／ｍｌＰＢＳ）を添加して、３７℃、５％ＣＯ_２下でさらに４時間培養した。
培養後、０．０４ＮＨＣｌ／イソプロパノール溶液を、１００μｌ/ｗｅｌｌ加え、生細胞によって生じた還元型のＭＴＴ沈殿を溶解させ、マイクロプレートリーダーで５４０ｎｍでの吸光度を測定した。

（ＭＤＢＫ細胞に対する毒性）
ＭＤＢＫ細胞は、１０％ＦＢＳ含有モディファイドＥａｇｌｅＭＥＭに懸濁し、９６ｗｅｌｌｐｌａｔｅに、１５００ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで播種した。そして、３７℃、５％ＣＯ_２下で２４時間培養後、上清を吸引除去し、ＰＢＳ（リン酸バッファー化した生食）でｗｅｌｌ底面に付着した細胞を洗浄した後、培地で０〜５０００μg／ｍｌに希釈した被験物質（実施例１〜４）を、１００μｌ／ｗｅｌｌで添加し、３７℃、５％ＣＯ_２下で２日間培養した。
培養後、培養上清を吸引除去し、ＰＢＳで各ｗｅｌｌを洗浄した後、新たにＰＢＳを１００μｌ／ｗｅｌｌ添加し、更に、ＭＴＴ試薬を１５μｌ／ｗｅｌｌ加えて、３７℃、５％ＣＯ_２下でさらに４時間培養した。
培養後、０．０４ＮＨＣｌ／イソプロパノール溶液を、１００μｌ/ｗｅｌｌ加え、生細胞によって生じた還元型のＭＴＴ沈殿を溶解させ、マイクロプレートリーダーで５４０ｎｍでの吸光度を測定した。

それぞれの被験物質による、白血病細胞Ｋ５６２及びＭＤＢＫ細胞に対する毒性結果を図１〜４にまとめて記す。なお、コントロールとして、被験物質０μｇ／ｗｅｌｌを用い、生存率は、コントロールに対する割合（％）で表した。
図１〜４の結果より、クロレラ及びスピルリナを、マンネン茸菌、椎茸菌で発酵した実施例１、２、３、４では、白血病細胞Ｋ５６２に対して、２５０μｇ／ｍｌ〜１２５０μｇ／ｍｌで毒性を示した。
一方、正常細胞であるＭＤＢＫ細胞に対しては、６００μｇ／ｍｌまで毒性は認められず、更には、１２５０μｇ／ｍｌという高濃度でも、白血病細胞Ｋ５６２に対する毒性の１／５以下であった。

＜試験例５＞（安全性試験−単回投与試験）
ラット（Ｓｌｃ：Ｗｉｓｔｅｒ系ＳＰＦ、６週齢、雌）５匹を用い、実施例１〜４の物質を、経口ゾンデを用いて、２０００ｍｇ／Ｋｇ単回投与した。投与量は、体重１００ｇ当たり１ｍｌとし、被検物質２ｇを０．５％カルボキシメチルセルロースナトリウム水溶液に懸濁させて１０ｍｌに定容したものを投与液として用いた。
投与後の観察期間は７日間とし、投与当日については投与３０分以内に1回、その後は投与６時間後まで１時間に１回一般状態を観察した。また、投与直前および投与7日後に体重を測定した。観察期間終了時に全ての動物についてエーテル麻酔後放血致死させ剖検した。
観察期間中に死亡例は認められず、いずれの動物にも一般状態の異常は認められなかった。また、いずれの動物も投与7日後の体重が、投与前と比べて増加しており、7週齢の標準的な体重と差は認められなかった。また、観察期間終了時の剖検では、いずれの動物にも異常は認められなかった。

＜試験例６＞（安全性試験−変異原性試験）
変異原性試験キット、ウムラックＡＴ（株式会社ＪＩＭＲＯ製）を用いて実施した。
実施例１〜８の物質１ｇを５０ｍｌの蒸留水に溶解し、これを蒸留水で希釈して４０〜１００００μg／ｍｌの希釈系列を作製し、試験に用いた。
菌株は、ＳａｌｍｏｎｅｌｌａｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍＮＭ２００９株を、陽性対照として２−Ａｍｉｎｏａｎｔｈｒａｃｅｎｅ（２−ＡA）およびＦｕｒｙｌｆｕｒａｍｉｄｅ（ＡＦ−２）を用いた。
ＳａｌｍｏｎｅｌｌａｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍＮＭ２００９株のＤＮＡの損傷により誘発される一連の遺伝子群（ＳＯＳ遺伝子）のうち、突然変異に直接関与しているｕｍｕ遺伝子の発現を、β−ガラクトシダーゼ活性を指標として比色測定する方法を用いて実施例１〜８の物質を測定したところ、４０〜１００００μｇ／ｍｌの範囲で陰性であった。

クロレラ−マンネン茸液体培養発酵物の細胞毒性試験結果を示す図表である。スピルリナ−マンネン茸液体培養発酵物の細胞毒性試験結果を示す図表である。クロレラ−椎茸液体培養発酵物の細胞毒性試験結果を示す図表である。スピルリナ−椎茸液体培養発酵物の細胞毒性試験結果を示す図表である。

Claims

クロレラ及び／又はスピルリナを含有する原料から調製された培地で、椎茸又はマンネン茸の菌糸体を培養して得られた培養物又は該培養物から調製された抽出物を有効成分として含有することを特徴とする抗癌剤。
前記培養物中の培地原料を前記菌糸体に含まれる酵素によって分解して得られる代謝産物と、前記培養物中の前記菌糸体を前記酵素によって自己消化させて得られる菌糸体分解物とを含む抽出物を有効成分とする請求項１記載の抗癌剤。
クロレラ及び／又はスピルリナを含有する原料から調製された培地で、椎茸又はマンネン茸の菌糸体を培養して培養物を得る工程を含むことを特徴とする抗癌剤の製造方法。
更に、前記培養物から抽出物を調製する工程を含む請求項３記載の抗癌剤の製造方法。