JP5054977B2 - Il−18結合タンパク質 - Google Patents
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Description
CDR−H1:X1−X2−X3−X4−X5−X6−X7(配列番号42)
[上記配列において、
X1はS、N、H、RまたはYであり;
X2はY、G、R、SまたはCであり;
X3はW、G、Y、D、S、VまたはIであり;
X4はI、H、W、Y、M、LまたはDであり;
X5はG、Y、S、NまたはHであり;
X6はWであるか非存在であり;
X7はT、S、Gであるか非存在である。];
CDR−H2:X1−X2−X3−X4−X5−X6−X7−X8−X9−X10−X11−X12−X13−X14−X15−X16−X17(配列番号43)
[上記配列において、
X1はF、Y、H、SまたはVであり;
X2はIまたはFであり;
X3はY、SまたはWであり;
X4はP、YまたはSであり;
X5はG、S、RまたはDであり;
X6はDまたはGであり;
X7はS、T、GまたはRであり;
X8はE、T,IまたはNであり;
X9はT、Y、N,I、KまたはHであり;
X10はR、YまたはSであり;
X11はY、NまたはSであり;
X12はS、P、AまたはVであり;
X13はP、SまたはDであり;
X14はT、LまたはSであり;
X15はF、KまたはVであり;
X16はQ、SまたはKであり;
X17はGであるか非存在である。];
CDR−H3:X1−X2−X3−X4−X5−X6−X7−X8−X9−X10−X11−X12−X13−X14−X15−X16−X17−X18(配列番号44)
[上記配列において、
X1はV、D、E、SまたはCであり;
X2はG、R、D、S、K、L、YまたはAであり;
X3はS、G、YまたはRであり;
X4はG、S、Y、N、TまたはDであり;
X5はW、S、A、G、YまたはTであり;
X6はY、G、S、F、WまたはNであり;
X7はP、S、F、Y、V、G、WまたはVであり;
X8はY、F、D、P、M、IまたはNであり;
X9はT、W、D、L、Y、E、P、FまたはGであり;
X10はF、D、Y、H、V、Yであるか非存在であり;
X11はD、Y、F、Lであるか非存在であり;
X12はI、D、Yであるか非存在であり;
X13はYであるか非存在であり;
X14はYであるか非存在であり;
X15はGであるか非存在であり;
X16はMであるか非存在であり;
X17はDであるか非存在であり;
X18はVであるか非存在である。];
CDR−L1:X1−X2−X3−X4−X5−X6−X7−X8−X9−X10−X11−X12−X13−X14−X15−X16−X17(配列番号45)
[上記配列において、
X1はRまたはKであり;
X2はA、GまたはSであり;
X3はSであり;
X4はE、R、QまたはHであり;
X5はS、I、TまたはNであり;
X6はI、V、LまたはFであり;
X7はS、G、L、NまたはRであり;
X8はS、G、Y、R、N、HまたはDであり;
X9はN、G、Y、RまたはSであり;
X10はL、Y、SまたはDであり;
X11はA、L、N、V、GまたはDであり;
X12はA、N、E、K、Gであるか非存在であり;
X13はK、T、Nであるか非存在であり;
X14はN、Y、Tであるか非存在であり;
X15はY、Lであるか非存在であり;
X16はL、C、Yであるか非存在であり;
X17はA、Dであるか非存在である。];
CDR−L2:X1−X2−X3−X4−X5−X6−X7(配列番号46)
[上記配列において、
X1はT、G、S、WまたはEであり;
X2はA、V、T、IまたはLであり;
X3はSまたはFであり;
X4はT、I、N、S、RまたはYであり;
X5はRまたはLであり;
X6はA、Q、EまたはFであり;
X7はTまたはSである。];
CDR−L3:X1−X2−X3−X4−X5−X6−X7−X8−X9−X10(配列番号47)
[上記式において
X1はQまたはMであり;
X2はQ、HまたはYであり;
X3はY、N、G、SまたはRであり;
X4はN、H、Y、D、G、V、LまたはIであり;
X5はN、G、I、Y、S、Q、FまたはEであり;
X6はW、S、T、L、IまたはFであり;
X7はP、L、T、DまたはIであり;
X8はS、L、P、C、W、IまたはFであり;
X9はI、T、Sであるか非存在であり;
X10はTであるか非存在である。]
からなる群から選択されるアミノ酸配列を有する少なくとも1個のCDRを有する。
当業界で公知の従来法に従って、ならびに本明細書を通じて引用および議論されている各種の一般的参考文献およびより具体的な参考文献に記載の方法に従って行うことができる(Sambrook et al. Molecular Cloning: A Laboratory Manual (2nd ed., Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N. Y. (1989));あらゆる目的において、参照によって本明細書に組み込まれる)。
本発明の1態様は、高親和性、低オフ速度および高中和能でIL−18に結合する単離ヒト抗体またはこの抗原結合部分を提供する。好ましくはこの抗体またはこの部分は、単離抗体である。好ましくは、本発明のヒト抗体は、中和ヒト抗−IL−18抗体である。
本発明の抗体は、当業界で公知の多くの技術のいずれかによって形成することができる。本発明の抗−IL−18抗体の特に好ましい形成方法には、ゼノマウストランスジェニックマウスの使用および抗体製造において当業界で公知のハイブリドーマおよびSLAM細胞操作技術の使用(Abgenix, Inc., Fremont, CA)、ならびに実施例3.2に記載のIL−18ペプチド、すなわち、配列番号1のアミノ酸配列およびこの断片を有するヒトIL−18を含む抗原の使用などがある。
IL−18抗原で動物を免疫化した後、抗体および/または抗体産生細胞をその動物から得ることができる。動物の放血または屠殺によって、抗−IL−18抗体含有血清を動物から得る。動物から血清を得たままでその血清を用いることができ、免疫グロブリン画分を血清から得ることができるか、または抗−IL−18抗体を血清から精製することができる。このようにして得られる血清または免疫グロブリンはポリクローナルであることから、異種性の一連の特性を有する。
本発明の抗体は、当業界で公知の多くの技術によって製造することができる。例えば、重鎖および軽鎖をコードする発現ベクターを標準的な技術によって宿主細胞にトランスフェクションする、宿主細胞からの発現などがある。「トランスフェクション」という用語の各種形態は、例えば電気穿孔法、カルシウム−リン酸沈澱、DEAE−デキストラントランスフェクションなどの原核または真核宿主細胞への外来DNAの導入に一般に用いられる非常に多様な技術を包含するものである。原核または真核宿主細胞で本発明の抗体を発現させることが可能であるが、真核細胞での抗体の発現が好ましく、哺乳動物宿主細胞での発現が最も好ましい。何故ならば、そのような真核細胞(特には哺乳動物細胞)は、原核細胞よりも、適切に折り畳まれた免役的に活性な抗体を構築および分泌しやすいためである。
ヒトIL−18に結合する能力を考慮すると、本発明の抗ヒトIL−18抗体またはその部分を用い、酵素免疫測定法(ELISA)、放射免疫アッセイ(RIA)または組織免疫組織化学分析などの従来の免役アッセイによってヒトIL−18(例えば、血清また血漿などの生体検体中)を検出することができる。本発明は、生体検体中のヒトIL−18を検出する方法であって、生体検体を本発明の抗体または抗体部分に接触させること、およびヒトIL−18に結合された抗体(または抗体部分)または結合されていない抗体(または抗体部分)を検出することを含む方法を提供し、これによって、生体検体中のヒトIL−18が検出される。抗体は、結合されまたは結合されていない抗体の検出を容易にするために、検出可能な物質で直接または間接的に標識される。適切な、検出可能な物質には、各種酵素、補欠分子団、蛍光物質、発光材料および放射性物質などがある。適切な酵素の例には、西洋わさびペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼまたはアセチルコリンエステラーゼなどがあり;適切な補欠分子団複合体の例には、ストレプトアビジン/ビオチンおよびアビジン/ビオチンなどがあり;適切な蛍光物質の例には、ウンベリフェロン、フルオレセイン、イソチオシアン酸フルオレセイン、ローダミン、ジクロロトリアジニルアミンフルオレセイン、ダンシルクロライドまたはフェイコエリトリンなどがあり;発光材料の例にはルミノールなどがあり;適切な放射性物質の例には、3H、14C、35S、90Y、99Tc、111In、125I、131I、177Lu、166Hoまたは153Smなどがある。
本発明は、本発明の抗体またはその抗原結合部分および製薬上許容される担体を含む医薬組成物も提供する。1実施形態において、医薬組成物はさらに、IL−18活性が有害である障害を治療するための少なくとも1種の他の治療薬を含む。
IL−18は、マクロファージ、樹状細胞、星細胞、小膠細胞、上皮細胞、角化細胞、腸上皮細胞、軟骨細胞、滑膜線維芽細胞および骨芽細胞で発現され、さらには副腎皮質および下垂体内で発現される。ヒト単球および樹状細胞などの一部の細胞では発現は構成的であるが、他の細胞ではそれはデノボで誘発しなければならない。インターフェロンγ発現は別として、IL−18単独または他のサイトカインと共同で誘発される他の遺伝子についてはほとんど解明されていない。
実施例1.1:IL−18の生理活性を求めるアッセイ
実施例1および実施例2を通じて、別段の断りがない限り、下記のアッセイを用いて、IL−18の生理活性を測定した。
KG−1(ATCC#CCL−246)は、低レベルの機能性IL−18受容体を構成的に発現するヒト骨髄単核細胞系である。TNFで処理することで、これらの細胞上の機能性IL−18受容体のIL−18Rαおよびβサブユニットの両方が上昇する。TNF処理KG−1細胞を組換えヒトIL−18(rhu−IL−18)とともにインキュベートし、ELISAによってIL−18誘発ヒトIFNγ産生のレベルを測定することで、KG−1バイオアッセイを行った(Konishi, K., et al (1997) J. Immunol. Methods 209: 187-191)。KG−1バイオアッセイを用いて、IL−18拮抗薬の中和能力を測定した。例えば、抗IL−18抗体を各種濃度のrhu−IL−18とともにインキュベートし、次に96ウェルプレートで37℃にて16〜18時間にわたってTNF処理KG−1細胞とともにインキュベートした。上清を回収し、ELISAによってヒトIFNγレベルについてのアッセイを行った。このアッセイは、IL−18拮抗薬のIC50値を4×10−11〜6×10−11Mまで測定することができる。
簡潔に言えば、ヒト全血アッセイ(WBA)によって、生理的状況での天然IL−18に対するIL−18拮抗薬の中和力を測定する。このアッセイでは、読み取りは内因性IL−18依存性ヒトIFNγ産生の阻害とした。IL−18拮抗薬の存在下または非存在下に37℃で、LPS(1μg/mL)+IL−12(50pg/mL)で全血を刺激した。LPS+IL−12刺激後18〜24時間にわたり、ヒトIFNγ濃度をELISAによって測定した。
簡潔に言えば、受容体結合アッセイ(RBA)では、125I標識rhu−IL−18を用いて、IL−18のIL−18受容体への結合を測定した。125I−rhu−IL−18は、TNF処理KG−1細胞上のIL−18Rαβに特異的に結合する(約7000部位/細胞)。125I−rhu−IL−18は、未標識IL−18と同じ特異的活性を有し、未標識IL−18と競合し得る。
実施例1.2.A:ヒトプロIL−18のプラスミド構築、発現および精製
SF−9昆虫細胞においてIL−18の前駆体を発現することで、組換えヒトIL−18を形成した。当業界で公知の標準的な分子生物学的方法により、発表されている配列(Ushio, S., et al. (1996) J. Immunol. 156: 4274-4279)に基づく特異的PCRプライマーを用いて全長ヒトプロ−IL−18cDNAを形成し、次にバキュロウィルス(BV)転移ベクターpVL1393にクローニングした(BD Biosciences, San Jose, CA; Cat#51-21201P)。全長ヒトプロ−IL−18cDNAを形成するのに用いた5′PCRプライマーは、6−ヒスチジン領域をコードする配列を有することで、プロIL−18のN末端が6−HIS−タグを有するようになった。SF9昆虫細胞を、IL−18cDNAを含むpVL1393ベクターを持ったバキュロウィルスで感染させた。感染SF9細胞を溶解させ、溶解物をニッケルカラムに流して、組換えHIS標識プロIL−18(rhuプロIL−18)を精製した(BD Biosciences, San Jose, CA; Cat#554802)。組換えHIS標識プロIL−18を、ヒトカスパーゼ−1で消化することでさらに処理して、生理活性IL−18(成熟IL−18)を形成した(Ghayur T., (1997) Nature 386: 619-623)。
林原生物化学研究所(日本)から得た組換えヒトIL−18は、特異的活性およびIL−18結合親和性におけるバッチ間の変動を示した。IL−18は、成熟IL−18における4つのシステインの各種ペア間にジスルフィド結合を有していた。これらが、バッチ間での構造的および機能的不均一性および変動の原因となっていた。IL−1b配位を用いるヒトIL−18の相同性モデリングで、成熟ヒトIL−18の38位および68位でのシステイン残基が露出しているために反応性であることが明らかになった。
成熟IL−18中の前記4つのシステイン残基をアラニンに変異させることで、IL−18の4C/A変異体を形成した(「4C/A−huL−18」)。下記の表4にまとめたように、IL−18の4C/A変異体をNEM−huIL−18と比較したところ、生理特性および生化学的特性において2つのタンパク質が識別できないことがわかった。IL−18の4C/A変異体およびNEM−huIL−18の両方とも、動的光散乱(DLS)および粒径排除クロマトグラフィー(SEC)分析によってモノマーであり、円偏光二色性分析によって配座および物理的安定性は類似していた。IL−18の4C/A変異体およびNEM−huIL−18の生理活性は、KG−1アッセイにおいて類似していて、いずれの形態のIL−18も類似の親和性でIL−18BPおよび抗IL−18抗体に結合した。4C/A−huL−18は酸化的不安定性がなく、大腸菌において高レベルで容易に発現された。
当業界で公知の標準的な技術を用いて、リジン残基上で実施例1.2.BからのNEM−IL−18のビオチン化を行い(スルホ−NHS−LC−ビオチン(Pierce, Rockford, IL);カタログ番号21335)、得られたビオチン化rhu−IL−18(ビオト−IL−18)は、huIL−18当たり1、2、3または4個のビオチンを有するものを含む不均一混合物であった。さらに、huIL−18当たり2または3個のビオチンを有するものが、ビオト−IL−18において主要物であった。ビオト−IL−18は生理的に活性であり、ELISAによる測定で抗−IL−18抗体に結合しており、調べた全ての中和抗−huIL−18抗体によって中和された。ビオト−IL−18は、高親和性で表面にIL−18Rαβを発現するKG−1細胞に結合し、KG−1細胞の表面上のビオト−IL−18を、抗ビオチン抗体(Sigma-Aldrich, St Louis, MO;カタログ番号B3640)を用いるFACS分析によって検出した。このように、ビオチン化は受容体結合を妨害せず、rhuIL−18の中和エピトープを遮蔽しない。
実施例1.2.BからのNEM−IL−18上のリジン残基を、アマシャム指定の条件を用いて125Iで標識した(Amersham; Piscataway, NJ;カタログ番号IM5861)。1251−標識IL−18はその特異的活性を保持しており、未修飾IL−18と競合し、KG−1細胞上のIL−18Rに特異的に結合した。125I−標識IL−18のIL−18受容体への結合を、中和抗huIL−18モノクローナル抗体によって遮断した。このように、ヨウ素化はIL−18の受容体結合に影響せず、IL−18上の中和エピトープを遮蔽しなかった。125I−標識IL−18を用いて、中和モードおよび受容体結合アッセイでの抗IL−18抗体の効力を求めた。
実施例2.1:抗IL−18抗体を単離するためのアッセイ
実施例3を通じて、別段の断りがない限り、下記のアッセイを用いて抗IL−18抗体の同定および特性決定を行った。
あるELISAが、ヒトIL−18に結合する抗体をスクリーニングするために開発された。このELISAにおいては、ヤギ抗ビオチン化IgGによって、またはストレプトアビジンでコーティングしたプレート上に、ビオチン化NEM−huIL−18(実施例1.2.B参照)を捕捉した。ハイブリドーマまたはB細胞上清を加え、当業界で公知の標準的なELISAプロトコールに従い、HRP接合抗−ヒトIgGを用いて、IL−18に結合した抗体を検出した。
ビアコアアッセイ(Biacore, Inc., Piscataway, NJ)は、オン速度定数、オフ速度定数の動力学的測定によって抗体の親和性を測定するものである。共有結合的に連結された二次抗体(例:ヤギ抗ヒトIgGまたは抗マウスIgG)によってバイオセンサーチップ上に抗体を捕捉し、各種濃度の組換えIL−18を加える。結合を時間の関数として記録し、動力学的速度定数を計算する。このアッセイでは、106M−1s−1という高いオン速度および10−6s−1という低いオフ速度を測定することができる。
ビアコア技術を用いて、抗IL−18抗体などのIL−18拮抗薬によって認識されるエピトープをマッピングした。すなわち、一つのIL−18拮抗薬をビアコアチップ上に捕捉し、rhuIL−18を固定化試薬に結合させた。次に、別の抗IL−18拮抗薬のこの複合体への結合を調べた。2つが試薬の同時に結合することにより、これらの2つの試薬は異なるエピトープを認識することを示す。
ゼノマウストランスジェニックマウス技術(Abgenix, Inc., Fremont, CA)を用いて、完全ヒト抗ヒトIL−18モノクローナル抗体(HuMAb)を得た。この技術は、VH、DHおよびJHを有するヒト可変重鎖座、Cmu、Cデルタおよび単一ヒトIgG定常重鎖座ならびに軽鎖遺伝子座を有するトランスジェニックマウスからなる。対象抗原で免役化すると、これらのマウスは抗原に対する完全ヒト抗体を形成する。
ゼノマウス動物を、全ての注射について足蹠経路で免役化した。各注射の総容量は、マウス当たり50μL、足蹠当たり25μLとした。最初の免役化注射には、マウス1匹当たり、タイターマックス・ゴールド(TiterMax Gold)と1:1(体積比)混合した発熱物質を含まないDPBS中にヒトIL−18(NEM−rhuIL−18)40μgを含有させた。以後の追加免疫は、6回にわたってマウス1匹当たりアジュホス(Adju-Phos)(リン酸アルミニウムゲル)25μgと混合した発熱物質を含まないDPBS中でのヒトIL−18 40μLによって行い、最終追加免疫はマウス1匹当たりアジュバントを含まず発熱物質を含まないDPBS中のヒトIL−18 40μgで行った。このプロトコールでは、動物を第0、4、8、11、17、21、25および35日に免疫化した。第39日に融合を行った。上記の免疫化後、マウスを屠殺し、鼠径リンパ節および腰リンパ節を回収した。
組織破砕機を用い、実施例2.2.Aに従って得た鼠径リンパ節および腰リンパ節の機械的撹乱によってリンパ球を放出させ、CD90陰性選択によってT細胞枯渇とした。洗浄した豊富化B細胞およびATCCから購入した非分泌性骨髄腫P3X63Ag8.653細胞(カタログ番号CRL1580;Kearney et al., J. Immunol., 123, 1979, 1548-1550)を1:1の比率で混合することで、ハイブリドーマ融合を行った。細胞混合物について、800gでの遠心によって温和なペレット化を行った。上清を完全に除去した後、細胞を、2分以内にてプロナーゼ溶液(CalBiochem, San Diego, CA;カタログ番号53702;0.5mg/mLのPBS溶液)2〜4mLで処理した。次に、FBS 3〜5mLを加えて酵素活性を停止し、電気細胞融合溶液ECFS(0.3Mショ糖、Sigma-Aldrich, St Louis, MO、カタログ番号S7903、0.1mM酢酸マグネシウム、Sigma、カタログ番号M2545、0.1mM酢酸カルシウム、Sigma-Aldrich, St Louis, MO、カタログ番号C4705)を用いて、得られた懸濁液を総容量40mLに調節した。遠心後に上清を除去し、細胞をECFS 40mLに再懸濁させた。この洗浄段階を繰り返し、細胞を再度、細胞2×106個/mLの濃度までECFSに再懸濁させた。融合発生装置ECM2001型(Genetronic, Inc., San Diego, CA)を用いて、電気細胞融合を行った。使用した融合チャンバの大きさは2.0mLであり、用いた装置設定は、アラインメント条件:電圧:50V、時間:50秒;膜破壊:電圧:3000V、時間:30秒;融合後保持時間:3秒であった。
別法として、実施例2.2.Bで得られたリンパ球について、ゼノマックス抗体選択技術を規定する選択的リンパ球抗体形成法(SLAM)を行った(Abgenix, Inc., Fremont, CA)。単一B細胞を、96ウェルプレートで平板培養し、所望の抗原(ヒトIL−18)に対するヒトモノクローナル抗体を産生するB細胞を、プラーク形成細胞アッセイ(Babcook, J. S., Leslie, K. B.,Olsen, O. A., Salmon, R. A., and Schrader, J. W. Isolation of functional antibody genes from single lymphocytes of defined antigen-specificity. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 93: 7843-7848, 1996)によって確認し、VHおよびVkリーダー配列の5′プライマーおよびヒトCγおよびCκに特異的な3′プライマーを用いる単離B細胞の単一細胞RT−PCRによってIgG遺伝子をクローニングした。得られた組換えIgG遺伝子を、実施例2.2.Eおよび2.2.Gに記載の方法に従って、哺乳動物細胞で発現させた。
実施例2.2.Bおよび2.2.Cに従って形成したIL−18に結合した抗体を産生するハイブリドーマおよびB細胞を、ビオチン化IL−18ELISAを用いて特定した(実施例2.1.A参照)。次いで、IL−18に結合した抗体を含むハイブリドーマおよびB細胞上清について、実施例1.1.Aに従って行うKG−1バイオアッセイで、IL−18中和能力について調べた。中和抗IL−18抗体(ハイブリドーマおよびSLAM手法から)を哺乳動物発現ベクターにサブクローニングし、COS細胞で発現させ、精製し、KG−1バイオアッセイで再度調べた(表5参照)。
製造者の指示に従って、CMVプロモーターの制御下に、抗体の重鎖および軽鎖の遺伝子をpCDNA(Invitrogen, Carlsbad, Ca)ベクターにクローニングした。ヒトゲノムγ−2配列およびκ配列を有するこれらのプラスミドを用いて、当業界で公知の標準的な条件を用いて各クローンに相当する重鎖および軽鎖での電気穿孔法によって、COS細胞を同時トランスフェクションした。
異なる生殖系列配列を有するいくつかの組換え抗ヒトIL−18抗体を哺乳動物細胞で産生させ、精製し、各種アッセイで機能的に特性決定した(表6参照)。
2.5(E)mg1抗体を発現する安定なCHO細胞系を、下記に記載の手順に従って形成した。
プラスミドpA510を、哺乳動物細胞系での抗体の高レベル発現用に構築した。このpUC19由来プラスミドは、複製の大腸菌ColE1起源およびアンピシリン抵抗性のβ−ラクタマーゼ遺伝子を含んでいた。
ジヒドロ葉酸レダクターゼ(DHFR)遺伝子の発現が欠損している細胞系CHODUXB11.(Urlaub, G. and Chasin L. A., Proc Natl Acad Sci USA 77: 4216-4220 (1980))を用いて、実施例2.2.G1に記載の発現ベクターのトランスフェクションを行った。CHODUXB11細胞を、下記の変更を加えた当業者に公知のリン酸カルシウム沈澱法を用いてベクターでトランスフェクションした(Current Protocols in Molecular Biology; Ausubel, F. V., Brent, R., Moore, D. M., Kingston, R. E., Seidman, J. G., Smith, J. A., and K. Struhl eds; Wiley Interscience, N. Y., N. Y. (1990))。プレートを吸引し、F12培地9mLを各プレートに加えた。プレートを37℃で2時間インキュベートした。50mL円錐管中、DNA 150μgを、水2.7mLに溶かした。2.5M CaCl2 300μLを加え、そのDNA混合物を1回1滴で、50mL円錐管に入った2×Hepes緩衝生理食塩水(HeBS)3mLに加えた。
トランスフェクションCHO細胞からの培養上清について、ヒトIgGに特異的なELISAを用いて分泌抗体2.5(E)mg1の存在を調べた。1組のCHOトランスフェクタントについてヒト抗体の発現をスクリーニングし終わったら、追加の選択を用いて、CHOゲノムに組み込まれた発現ベクターのコピー数が増幅された細胞を単離した。増幅系の選択には、薬剤メトトレキセート(MTX)を用いた。MTX存在下に増殖させた培養物について、免疫グロブリンの産生能を調べた。MTX感受性の祖先より多くの抗体を発現したMTX抵抗性系を、より高濃度のMTXでの別の選択サイクルで取り、免疫グロブリン産生を調べた。CHO細胞を発現する2.5(E)mg1を1リットルまたは1.5リットルのバイオリアクタで培養し、抗体の収量を2週間の試験で約1.0g/リットルと測定した。
CHO由来2.5(E)mg1の予備的な物理的・化学的特性決定を行った。The2.5(E)mg1の実験的に測定した分子量は、約149kDaであり、理論上の分子量と良好な一致があった。ペプチドマッピング技術(K Biemann Annu. Rev. Biochem. 1992 61 977-1010; D A. Lewis Accelerated Articles, Anal. Chem. 1994, 66, 585-595)を用いて、2.5(E)mg1が軽鎖および重鎖の両方に正しいN末端を有していることを確認した。2.5(E)mg1分子の99%が重鎖カルボキシ末端でリジンを持たないことから、重鎖C末端の変動性は非常に小さかった。各2.5(E)mg1重鎖は、オリゴマンノースおよび複合体を有する単一のN連結グリコキシル化部位、0、1または2個の末端ガラクトース残基を有するフコシル化ビナテナリ(binatennary)構造を有していた。
精製2.5(E)mg1は、最低4週間にわたり、pH5、6および7緩衝液中にて少なくとも62mg/mLまで可溶であった。これらの緩衝液中37℃での2.5(E)mg1を用いた加速安定性試験を行って、安定性を示すアッセイおよび至適な長期保管pHを確認した。粒径排除HPLCおよびSDS−PAGEによる分析用にサンプルを週1回の間隔で取って、凝集および断片化、S−S結合検出用のLC−MS/MSペプチドマッピング、抗原−ELISAおよび/または活性測定のための細胞に基づくバイオアッセイおよびカチオン交換HPLCおよび電荷不均一性測定のためのイソ−Asp定量の試験を行った。SEC(粒径排除クロマトグラフィー)、SDS−PAGEおよびカチオン交換クロマトグラフィーによるサンプルの予備分析で、これら3つのアッセイのいずれも安定性を示すことが明らかになったことから、2.5(E)mg1は約pH6で比較的安定である。
実施例2.2.J1:IL−18動物特異性
2.5(E)mg1がヒト、カニクイザル、マウス、ラットおよびイヌからのIL−18に結合および/または中和する能力を評価した。製造者の指示に従ったビアコアアッセイ(実施例2.1.B参照)を用いて、2.5(E)mg1が成熟ヒトIL−18に結合するが、マウスIL−18には結合しないことが明らかになった。さらに、免役沈澱データから、2.5(E)mg1がカニクイザルIL−18に結合するが(cynoIL−18のIC50=9.1E×10−11)、イヌおよびラットのIL−18には結合しないことが明らかになった。2.5(E)mg1は、ヒトおよびカニクイザルIL−18生理活性を同様に機能的に中和したが、イヌ、ラットおよびマウスIL−18の阻害は全く認められなかった。
2.5(E)mg1のIL−18に対する特異性を、製造者の指示に従ったビアコアアッセイを用いて評価した(実施例2.1.B参照)。2.5(E)mg1抗体をバイオセンサーチップで捕捉し、これが、溶液における一連の公知ヒトサイトカインに結合する能力を測定した。表7に示したように、2.5(E)mg1は組換えヒト成熟IL−18およびプロ−IL−18に結合した。これとは対照的に、2.5(E)mg1は、IL−1ファミリーの構成員であるIL−1αおよびIL−1βなどの他の調べた23種類のヒトサイトカインのいずれにも結合しなかった。
実施例2.2.J3:親和性測定
表8に、製造者の指示によるビアコアアッセイを用いて測定した2.5(E)mg1のin vitroIL−18結合特性を示してある。2.5(E)mg1抗体は高いオン速度、低いオフ速度を有し、全体の親和性は0.196nMであった。2つの基準IL−18拮抗薬(125−2HおよびIL−18結合タンパク質)の動力学的速度パラメータを比較のために示している。
KG−1バイオアッセイ、受容体結合アッセイ(RBA)およびヒトWBAで、2.5(E)mg1のインビトロ中和能力を求めた(実施例1.1.A〜1.1.C参照)。表8に示したように、2.5(E)mg1抗体は、組換え(KG−1およびRBA)および天然IL−18(WBA)の両方を中和し(IC50はKG−1で<0.5nM、RBAで<2nMおよびWBAで<5nM)、IL−18結合親和性と一致している。
2.5(E)mg1がインビボでの炎症環境で天然ヒトIL−18誘発IFNγを中和する能力を評価するため、ヒトPBMCをマウスに注射し、細胞をインビボで刺激してヒトIL−18を産生させた重度複合免疫不全(SCID)マウスモデルを用いた(HuPBMC−SCIDモデル)。結果(表9)から、2.5(E)mg1が、いずれの投与経路によっても、明瞭な用量−応答で、インビボにてヒトIL−18依存性ヒトIFNγ産生を阻害することがわかった。2.5(E)mg1のED50は、腹腔内投与または静脈投与により、それぞれ約1μgまたは0.1μg/マウス(=0.05mg/kgまたは0.005mg/kg)であった。
抗体のFc部分は、サイトカイン誘発、抗体依存性細胞介在細胞傷害性(ADCC)、食作用、補体依存性細胞傷害(CDC)ならびに抗体および抗原−抗体複合体の半減期/クリアランス速度などのいくつかの重要なエフェクター機能に介在する。場合によっては、これらのエフェクター機能は治療抗体には望ましいものであるが、治療目的によっては他の場合には不必要であったり、有害である場合もあると考えられる。ある種のヒトIgGアイソタイプ、特にはIgG1およびIgG3は、それぞれFcγR類および補体C1qへの結合を介してADCCおよびCDCに介在する。新生児Fc受容体(FcRn)が、抗体の循環半減期を決定する必須の成分である。
ヒトFcγRI(CD64)は、IgG1免疫複合体(KD1E−8−1E−9M)に対して比較的高い親和性を有する。これは、単球およびマクロファージならびにU937などの多くの骨髄細胞系上で発現される。2.5(E)wtg1および2.5(E)mg1のU937細胞への結合を、蛍光活性化細胞分類(FACS)によって測定した(CURRENT PROTOCOLS IN IMMUNOLOGY. Vol (1) 5.3. 1, Edited by J. E. Coligan et.al., Published by John Wiley & Sons, Inc., 2002)。得られたデータ(表11参照)は、2.5(E)wtg1がU937細胞に結合するが、予想通り、2.5(E)mg1は結合しないことを示していた。この結合にFcγRIが介在していることを確認するため、マウス抗hFcγRI阻止抗体(10.1)を用いて、競争実験を行った。得られた結果は、抗体10.1が下記の試験濃度で用量依存的に2.5(E)wtg1のU937細胞への結合を遮断することから、2.5(E)wtg1がU937細胞上のFcγRIに結合することを示していた。
ヒトFcγRII(CD32)は、IgG1免疫複合体(KD1E−5−1E−7M)に対して比較的低い結合親和性を有する。生理的条件下では、これは活性化に多重免疫複合体の形成を必要とする。FcγRI、IIもしくはIIIに特異的なフルオレセインイソチオチアネート(FITC)標識抗体およびフローサイトメトリーによる検出を用いて、本発明者らは、K562細胞上のFcγRIIの発現を検証し、この細胞系をFcγRII結合アッセイに用いた。モノマー2.5(E)wtg1のK562細胞への結合は非常に弱いものであった。従って、抗カッパ鎖抗体を用いてIgG1分子を予備架橋することで多重免疫複合体を模倣させ、K562細胞上のFcγRIIに対するこれらの結合を調べた。架橋後、2.5(E)wtg1はK562細胞に結合したが、架橋後であっても2.5(E)mg1が示す結合は、存在してもごくわずかであった(表12)。抗FcγRII抗体、クローンIV3は、2.5(E)wtg1の結合を遮断したことから、2.5(E)wtg1のK562への結合にはFcγRIIが介在していた。
従来の経路による補体活性化および細胞溶解は、IgG分子のFc部分へのC1qの結合を介して活性化される。C1qの2.5(E)wtg1および2.5(E)mg1への結合を、当業界で公知の標準的なELISA技術を用いて測定した(Hezareh, M., et. al., (2001) J. Virology, 75 (24): 12161-12168)。2.5(E)wtg1および2.5(E)mg1HuMAbを、プラスチックプレート上にコーティングし、次にヒトC1qとともにインキュベートした。結合したC1q分子を、ヤギ抗ヒトC1qおよびウサギ抗ヤギIgGアルカリ性リン酸塩接合体の混合物によって検出した。結果から、2.5(E)wtg1がC1qに結合するが、2.5(E)mg1は結合しないことが明らかになった(表13)。
内皮細胞でのIgGと新生児Fc受容体(ブランブル受容体とも称される)との相互作用が、IgG性質制御系およびIgG類の長い半減期の非常に重要な決定基であることが提案されている[Ghetie, V., et al (1997) Nat. Biotechnol. 15: 637-640]。飲細胞作用および細胞内空胞中のFcRnへの良好な結合によって取られたIgG分子は循環に戻る。FcRnに結合しないIgG分子は分解される。
2.5(E)mg1の薬物動態(PK)をスクリーニングマウス試験で評価して、2.5(E)mg1のFcγRおよびC1qへの結合を防止するために導入されたFc突然変異(L234A、L235A)が血清PKプロファイルに悪影響を与えたか否かを決定した。マウスFcRnはマウスおよびヒトIgGと同等に結合したことから、このマウスを、マウスでの構造活性相関試験における妥当な動物として使えた(Ober, R. J., et al (2001) Int. Immunol. 13: 1551-1559)。マウスでは、2.5(E)mg1の末端半減期は12日間と推算された。同様の試験で、他のヒトモノクローナル抗体の半減期は10〜14日間であった。
実施例2.2.L:疾患モデルでの抗IL−18抗体の効果
実施例2.2.L.1:抗muIL−18mAbによるLPS誘発IFNg産生の阻害
LPS誘発IFNγ産生は、IL−18発現に依存している(Ghayur, T., et al, 1997. Nature 386: 619-623)。LPS誘発IFNγ産生アッセイを用いて、93−10Cがin vivoでIL−18依存性LPS誘発IFNγ産生を阻害する効力を測定した。マウスに対して、単回静脈投与の93−10C(50μg)を投与した。30分後、マウスにLPSを負荷し(20mg/kg)、4時間後に放血した。血清IFNγ力価をELISAによって測定した。表15に示したように、93−10CはLPS誘発IFNγ産生を約70%阻害した。
IL−18は、炎症部位への好中球招集に関与している。カラギーナン誘発足蹠浮腫は、単球および好中球依存性の炎症モデルである。このモデルでの浮腫は、IL−18の生理活性を中和することで大きく阻害することができる(Leung, B. P., et al (2001) J. Immunol. 167: 2879-2886)。マウスに1C5(400μg)(林原研究所、日本)または93−10C(100μg)(Medical and Biological Laboratories (MBL) Co., Watertown, MA)または対照抗体を投与し(腹腔内投与)、次に後足の足蹠にカラギーナン(皮下注射)を注射した。カラギーナン誘発浮腫を、1日1回で24〜96時間にわたって測定した。1C5および93−10Cは、負荷後24時間〜96時間でカラギーナン誘発浮腫を有意に抑制した(約50%阻害)(表16)。好中球浸潤の遮断に加えて、93−10Cは、このモデルでの炎症部位でTNF発現も遮断する(Leung, B. P., et al (2001) J. Immunol. 167: 2879-2886)。
関節リウマチ(RA)は、関節の慢性炎症ならびに骨および関節軟骨の損失を特徴とする。RAは自己免疫疾患と考えられているが、関与する自己抗原は特定されておらず、疾患の正確な病因は不明である。コラーゲン誘発関節炎(CIA)は、広く使用されるRAモデルであり、ヒト疾患と同様の組織病理的特徴を有する(Bendele, A., et al (1999) Toxicol Pathol. 27: 134-142; Trentham, D. E. et al (1977) J. Exp. Med. 146: 857-868)。このモデルでは、遺伝的に感受性のマウスまたはラットを、完全フロイントアジュバント中、II型コラーゲン(CII)で免疫化する。得られた多発性関節炎は、軟骨の破壊、骨吸収、滑膜炎および関節周囲炎を特徴とする(Bendele, A., et al (1999) Toxicol Pathol. 27: 134-142)。DBA/1バックグラウンド上のIL−18KOマウスは、野生型マウスと比較して、CIAの発生率および重度の低下を示した(Wei, X. Q., et al (2000) J. Immunol. 166: 517-521)。
IL−18は、敗血症性関節炎のマウスモデルの病因における重要な因子である。これは、RAのモデルとは考えられておらず、RAに関係する一部の炎症要素および病因を共有するものと考えられている。このモデルでは、生存グループB連鎖球菌(GBS)を膝関節に注射することで疾患を誘発する。それに続く関節炎の重度は、IL−10およびIL−6の全身レベルおよび局所レベルの両方に相関するが、TNFには相関しない(Tissi L., et al (1999) Infect. Immunol. 67: 4545-50)。血清型IV(GBS)注射から12時間後という早期に関節で有意なIL−18レベルが検出され、その後5日後にピークIL−18産生となった(1C5処理で約550pg/mL、これに対してIgG対照で約30pg/mL)。注射後第5日までに、血清で高IL−18レベルが検出された(1C5処理で約180pg/mL、これに対してIgG対照で約20pg/mL)。
狼瘡の最も研究されているモデルでは、重度の糸球体腎炎、自己抗体産生(抗DNA、抗RNPなど)、脾腫、リンパ節腫脹およびある程度の関節炎および血管炎を伴う狼瘡様症候群を自然に発症するマウスの系統(MRL/lprおよびNZB/NZWF1)を用いる。腎臓の関与が通常は3〜5月齢で認められ、急速に進行し、6〜10ヶ月までに致死的となる。両方のマウス系統について広範囲に調べられて、臨床的疾患についての知見が得られている。
実験的アレルギー性脳脊髄炎(EAE;MSのマウスモデル)の病因に対するIL−18の寄与を調べた。再発性−緩解性EAEは、同様の疾患経過、臨床徴候およびCNS病理によるヒト疾患の妥当なモデルであると考えられている。これらの試験では、その疾患をIL−18KOマウスおよびWTC57/B16マウスで誘発した。IL−18KOマウスは、WTマウスと比較して疾患症状の発症にわずかな遅延を示し、後の時点において重度が有意に低い疾患を発症した(表18)。免疫化後第0日から第14にかけて、WTマウスをBA77(抗マウスIL−18IgG(250mg、2回/週)で処理することで、疾患症状の発症が遅延され、後の時点において疾患重度が有意に制限された(表18)。抗IL−18IgGの保護効果は、処置中止後であっても後の時点で認めることができた。
コンカナバリンA(ConA)誘発肝臓炎症/損傷は、T細胞介在肝臓疾患の動物モデルである。ConAによる肝臓内T細胞の活性化によって、炎症介在物質(例:IFNγおよびFasリガンド)の局所産生が生じる。Fas−Fasリガンド相互作用によって、IL−18の産生が生じ、これがさらにIFNγ、FasリガンドおよびTNFの産生を誘発する。このように、正フィードバックループが確立され、これによって肝臓の損傷が生じ、死んでいく細胞からのALTおよびASTなどの肝臓酵素の過剰産生が生じる。1C5または93−10CmAbを注射(腹腔内注射)し、1時間後にConA 150μgを静脈投与した。ConA注射から24時間後にマウスを放血し、肝臓酵素(ALTおよびAST)の血清力価を測定した。1C5および93−10Cのいずれも、肝臓酵素のLPS誘発上昇を遮断したが、93−10Cの方が相対的に低用量で有効であった(表19)。
エンドトキシンショックの重要な介在物質として、IL−18が登場してきた。IL−18は、エンドトキシン誘発の肺、肝臓および多臓器の不全の非常に重要な介在物質である可能性がある(Neeta, M. G. , et al (2000) J. Immunol. 164: 2644-2649)。IL−18のこの効果は、IL−18の細胞傷害性介在物質の産生を調節する能力、ならびに生来の免疫応答を活性化し好中球を局所炎症部位に招集する能力によって決まり得る。さらに、LPS負荷によって、IFNγ、TNFおよびIL−1の血清レベル上昇が誘発され、これらのサイトカインはLPS誘発の致死に寄与する可能性がある。LPSを負荷させたIL−18ノックアウトマウスはLPS誘発IFNγ欠乏であり、WTマウスと比較してTNFおよびIL−1の産生が有意に低い(Takeda, K., et al. (1998) Immunity 8: 383-390)。
本発明の抗体が結晶化し得ることで、結晶化抗体を含む製剤および組成物を得ることが可能であることを示すため、下記の実験を行った。
2.5(E)ヒトIgGを、SR−286培地にてCHO細胞で発現させた。溶解後の上清を0.5ミクロンフィルターで濾過し、タンパク質A緩衝液A(1×PBS)で平衡としておいたタンパク質Aカラムに乗せた。次に、IgGをタンパク質A緩衝液B(0.1M 酢酸Na(pH3.5)、150mM NaCl)で溶離した。蓄積したIgGを20mg/mLまで濃縮し、50%パパインゲルスラリーと混和し、高攪拌下に37℃で24時間インキュベートした。得られた抗体/スラリー混合物を、4℃で終夜にわたり、50mM Tris緩衝液(pH7.0)に対して透析して、緩衝液からシステインを除去した。25mLタンパク質Aセファロース4ファストフロー(Sepharose 4 Fast Flow)アフィニティカラム(Amersham Pharmacia)を、緩衝液A(50mM Tris (pH7.0))100mLで洗浄することで準備した。透析上清を、そのアフィニティカラムに流した(流量2mL/分)。2.5(E)Fab分画(280nmでのUV吸光度によってモニタリング)をフロースルー(flow-thru)で回収した。2.5(E)Fab濃度が0.3mg/mLより高い(280nmでのUV吸光度によって測定)分画を集め、ウルトラフリー−15バイオマックス(Ultrafree-15 Biomax)10kDa分子量カットオフ(MWCO)遠心フィルター装置(Millipore)を用いて濃縮して約20mg/mLとし、−80℃で冷凍した。その濃縮サンプルを、下記の結晶学実験で用いた。サンプル純度をSDS−PAGEで評価した。
凍結2.5(E)Fab原液(約20mg/mL)を氷上で解凍した。Fab(2μL)を25〜30%ポリエチレングリコール(PEG)400、100mM CAPS(pH10.5)からなる貯留液2μLと混合し、約4℃でシリコン処理カバーグラス片の下側にある貯留部上に懸濁させた。棒状結晶が1日以内に現れた。その棒状結晶は、2.5(E)Fab断片結晶であることを確認した(データは示していない)。
実施例3.1:材料および方法
実施例4を通じて、別段の断りがない限り、下記の材料および方法を用いる。
実施例3.1.A.1:KG−1細胞
約3.0×107のKG1細胞(ATCC番号CCL−246)を、4つの処理群での各実験条件に用いた。第1の群では、10mg/mLのシクロヘキシミドとともに30分間の前インキュベーションを行った場合と行わない場合で、50ng/mLの組み換えIL18で細胞を処理した。30分後または2時間後に、細胞についてRNAの回収を行った。第2の群では、10mg/mLのシクロヘキシミドとともに30分間の前インキュベーションを行った場合と行わない場合で、0、0.5、2.0、10または50ng/mLの組換えIL18で細胞を処理した。2時間後に、細胞についてRNAの回収を行った。第3の群では、0または10ng/mLのTNFで細胞を処理した。終夜インキュベーション後、10mg/mLのシクロヘキシミドとともに30分間の前インキュベーションを行った場合と行わない場合で、0、0.5、2.0、10または50ng/mLの組換えIL18で細胞を処理した。2時間後に、細胞についてRNAの回収を行った。最後の処理群では、10mg/mLのシクロヘキシミドとともに30分間の前インキュベーションを行った場合と行わない場合で、0または10ng/mLのTNFおよび0もしくは2.0ng/mLの組換えIL18で細胞を同時に処理した。2時間後に、細胞についてRNAの回収を行った。
ヒト全血2.5mLを15mL円錐管に小分けして入れ、IL18、IL12、IL18+IL12、IL18+IL12+抗IL18またはIL18+1L12、IL18+1L12+対照抗体で処理した。最終濃度は、IL12(500pg/mL)、IL18(YK27−1)(50ng/mL)、mIgG(5μg/mL)、抗IL181252H(5μg/mL)および抗IL182.5(4μg/mL)であった。間歇的な反転を温和に行いながら、混合物を37℃で4時間インキュベートした。インキュベーション後、1×溶解緩衝液(Depcで1:10希釈したファーム・ライス(Pharm Lyse)塩化アンモニウム溶解試薬)5mLを加えることで、塩化アンモニウムを用いて赤血球を除去した。氷上で5分後、混合物を1200rpmで5分間遠心した。その手順を1回繰り返して、血液白血球の白色ペレットを得た。次に、上記のトリゾール(Trizol)手順を用いて、RNAを単離した。微量アッセイ分析のため、全てのサンプル容量を4倍に増やした。
総RNA 10μgおよびcDNA合成用スーパースクリプト(SuperScript)選択システム(Gibco BRL, Gaithersburg, MD)を用いて、二本鎖cDNAを合成した。この合成はアフィメトリクス(Affymetrix, Santa Clala, CA)のプロトコールに従って行い、このプロトコールではキットを設けたオリゴ(dT)またはランダムプライマーに代えてT7−(dT)24オリゴマープライマー(GENSET)と、温度調節および最初の鎖合成段階時に42℃でのインキュベーションが必要である。得られたcDNAを、フェーズロックゲルライト(Phase Lock Gel Light)2mL管(Eppendorf AG, Hamburg, DE)で清浄化し、ペレットをDEPC−H2O 12μLに懸濁させた。このcDNA 5μLを、バイオアレー(BioArray)高収量RNA転写標識キット(Enzo, Farmingdale, NY)とともに用いて、T7RNAポリメラーゼプロモーターからのin vitro転写(IVT)によってビオチン標識cRNA標的を得た。遊離ヌクレオチドを、RNeasyミニカラム(RNeasy Mini Column;Qiagen, Hilden, DE)を用いてUVT反応液から除去した。ビオチン標識cRNA 15μgを、アフィメトリクスプロトコールに従って断片化した。全断片化サンプルを、対照オリゴヌクレオチドB2(アフィメトリクス)5μL、20×真核ハイブリダイゼーション対照(アフィメトリクス)15μL、超音波処理サケ精子DNA(10mg/mL、Stratagene, La Jolla, CA)3μL、アセチル化BSA(50mg/mL、Gibco BRL)3μL、2×MESハイブリダイゼーション緩衝液150μLおよび最終容量300μLまでの水と合わせた。アフィメトリクスプロトコールに従って、ジーンチップ(Genechip)HuGeneFLアレイ(アフィメトリクス)を1×MESで予め湿らせた。次に、ハイブリダイゼーションカクテルを加熱および遠心し、200μLをチップ上に乗せた。そのチップを45℃のローティッセリー(rotisserie)オーブン中で16時間遠心した。
ハイブリダイゼーションカクテルをチップから除去し、非ストリンジェント洗浄緩衝液と置き換えた。製造者の説明(アフィメトリクス)に従ったジーンチップ・フリュイディクス・ステーション(GeneChip Fluidics Station)400に関するEuKGE−WS2プロトコール;ストレプトアビジン・フィコエリトリン(SAPE)染色溶液および抗体溶液の両方でチップの染色を行うプロトコールを用いて、チップを洗浄および染色した。全ての必要な洗浄緩衝液および染色液は、アフィメトリクスのプロトコールに従って調製した。ジーンアレイ走査装置(GeneArray Scanner)(Agilent, Palo Alto, CA)を、ジーンチップ(GeneChip)ソフトウェア(アフィメトリクス)とともに用いて、染色アレイの走査を行った。
ジーンチップデータを、アフィメトリクスMAS4からマイクロソフトエクセルに送り、スポットファイア・デシジョンサイト(Spotfire Decisionsite)7.0にアップロードした。
実施例3.2.1:IL18単独でのKG1細胞における遺伝子コホートの直接調節
IL18によって直接調節される転写物を確認するため、タンパク質合成阻害薬であるシクロヘキシミドの存在下および非存在下にKG1細胞を用いて、サイトカイン力価測定実験を行った。表1には、シクロヘキシミドの存在下および非存在下における少なくとも一つの条件下に0.05未満のp値で(スチュデントのt検定を用いて)2倍以上調節されていることが認められた67の異なるプローブ集合(チップ上の重複性による)によって代表される62種類の転写物のリストを示してある。これらの遺伝子は、転写因子、キナーゼおよび分泌タンパク質などの各種機能カテゴリーを有していた。これらの遺伝子はデノボタンパク質合成なしに調節されることから、それら遺伝子はIL18誘発信号伝達に直接応答する。12の遺伝子が分泌タンパク質をコードし、13が表面分子をコードしている(それらを使用可能な抗体標的とする)。残りの遺伝子は、核および細胞質タンパク質をコードする(表21参照)。
サイトカイン類は代表的には免疫応答時に順次現れることから、hIL18での処理に先だってTNFとともにKG−1細胞を前インキュベートする効果を調べた。この実験では、細胞のサイトカイン曝露履歴が、その後のサイトカイン曝露に対するそれの応答に影響し得るという仮説も調べた。細胞をTNF12 2ngで処理してから、12時間後にIL18を加え、4時間後に回収した。
IL18単独またはIL12との組み合わせに対して応答するヒト白血球(単離白血球泳動)の応答を調べた。抗IL18モノクローナル抗体が転写応答を阻害する能力も調べた。細胞を実施例4.1に記載の方法に従って処理した。RNAを単離し、それを用いて、アフィメトリクス・ジーンチップ(Hugene, FL)のプロービングを行った。結果を表23に示してあり、その表にはIL18+IL12によって誘発され、抗IL18抗体によって逆転される49種類の転写物を挙げてある。いくつかの遺伝子が、免疫系に関連している。これら遺伝子の多くが、KG−1細胞においてIL18によっても誘発された。
ヒト全血がIL18単独またはIL12との組み合わせに対して応答する応答を調べた。抗IL18モノクローナル抗体が転写応答を阻害する能力も調べた。正常供血者血液検体を、実施例4.1に記載の方法に従って処理した。RNAを単離し、それを用いてアフィメトリクス・ジーンチップ(Hugene FL)のプロービングを行った。結果を表24にしめしてあり、その表には、2名の健常供血者から単離した全血献体で、IL18+IL12によって有意に調節され、抗IL18抗体によって逆転された16種類の転写物を挙げてある。いくつかの遺伝子が免疫系に関連していた。本発明者らは続いて、定量的PCRを用いて、10名の正常供血者群でのこれら遺伝子のうちの3種類の応答も調べた。このヒト変動性試験の結果を、インターフェロンγについて表25に、CXCL9について表26に、CCL8について表27に示してある。この変動性試験の結果は、ヒト血液でのIL18によるこれら転写物の調節が、ヒトの間で一般的なものである可能性が高いことを示していた。
実施例4.1:ヒトサイトカイン特異性
ヒトIL−18に対する2.13(E)mg1の特異性を、製造者の説明に従ってビアコアアッセイを用いて評価した(実施例2.1.B参照)。2.13(E)mg1をバイオセンサーチップ上に捕捉し、それが溶液での既知のヒトサイトカイン群に結合する能力を測定した。表28に示したように、2.13(E)mg1は組換え成熟ヒトIL−18に結合した。しかしながら、2.13(E)mg1はヒトプロIL−18には結合せず、さらにはIL−1ファミリー構成員であるIL−1αおよびIL−1βなどの調べた他の23種類のヒトサイトカインのいずれにも結合しなかった。
いくつかの抗IL−18抗体がヒトIL−18への結合について2.13(E)mg1と競合する能力を、製造者の説明に従ってビアコアアッセイを用いて評価した(実施例2.1.B参照)。すなわち、ポリクローナル抗ヒトまたは抗マウス抗体をバイオセンサーチップ上に捕捉した。その後、抗IL−18抗体を導入し、上記のバイオセンサーチップ上に固定化したポリクローナル抗ヒトまたは抗マウス(125−2Hの場合のみ)抗体(一次固定化抗体)によって捕捉した。次に、組換えヒトIL−18を導入し、この一次固定化抗体によって捕捉した。最後に、二次可溶性抗IL−18抗体を導入した。このアッセイによって、二次可溶性抗IL−18が組換えIL−18に結合し、一次抗体と競合する能力を測定した。2.13(E)mg1は2.5(E)mg1およびIL−18BPのいずれとも競合しなかった。マウス抗huIL−18モノクローナル抗体125−2Hは、ヒトIL−18に対する結合について2.13(E)mg1と競合した。
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Winnacker, E. L. From Genes To Clones: Introduction To Gene Technology (1987) VCH Publishers, NY (translated by HorstIbelgaufts). 634 pp. (ISBN0-89573-614-4)。
Claims (80)
- 配列番号2および配列番号3からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むIg重鎖定常領域;
配列番号4および配列番号5からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むIg軽鎖定常領域;
配列番号8のアミノ酸配列を含むIg重鎖可変領域;および
配列番号9のアミノ酸配列を含むIg軽鎖可変領域
を含む、ヒトIL−18へ結合できる単離抗体またはその抗原結合部分。 - 配列番号3のアミノ酸配列を含むIg重鎖定常領域;
配列番号4のアミノ酸配列を含むIg軽鎖定常領域;
配列番号8のアミノ酸配列を含むIg重鎖可変領域;および
配列番号9のアミノ酸配列を含むIg軽鎖可変領域
を含む、ヒトIL−18へ結合できる単離抗体またはその抗原結合部分。 - 配列番号8のアミノ酸配列を含むIg重鎖可変領域;および
配列番号9のアミノ酸配列を含むIg軽鎖可変領域
を含む、ヒトIL−18へ結合できる単離抗体またはその抗原結合部分。 - ヒトIL−18を中和する能力を有する、請求項1から3のいずれか一項に記載の単離中和抗体またはその抗原結合部分。
- 前記IL−18が、成熟−ヒトIL−18である請求項4に記載の単離中和抗体またはその抗原結合部分。
- ヒトIL−18がその受容体に結合する能力を弱める、請求項4に記載の単離中和抗体またはその抗原結合部分。
- 成熟−ヒトIL−18がその受容体に結合する能力を弱める、請求項6に記載の単離中和抗体またはその抗原結合部分。
- Th1調節;Th2調節;Nk調節;好中球調節;単球−マクロファージ系統調節;好中球調節;好酸球調節;B−細胞調節;サイトカイン調節;ケモカイン調節;接着分子調節;および細胞動員調節からなる群から選択される1以上のIL−18生理活性を低下させる能力を有する、請求項4に記載の単離中和抗体またはその抗原結合部分。
- 検出可能な標識とコンジュゲート形成している、請求項1から3のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分を含む標識抗体またはその抗原結合部分。
- 前記検出可能な標識が、放射能標識、酵素、蛍光標識、発光標識、生体発光標識、磁気標識およびビオチンからなる群から選択される請求項9に記載の標識抗体またはその抗原結合部分。
- 前記標識が、3H、14C、35S、90Y、99Tc、111In、125I、131I、177Lu、166Hoおよび153Smからなる群から選択される放射能標識である請求項10に記載の標識抗体またはその抗原結合部分。
- 治療薬または細胞傷害薬とコンジュゲート形成している、請求項1から3のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分を含む複合体抗体またはその抗原結合部分。
- 前記治療薬または細胞傷害薬が、代謝拮抗薬、アルキル化剤、抗生物質、成長因子、サイトカイン、血管新生阻害剤、有糸分裂阻害剤、アントラサイクリン、毒物およびアポトーシス剤からなる群から選択される請求項12に記載の複合体抗体またはその抗原結合部分。
- 請求項1から3のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分のアミノ酸配列をコードする単離核酸。
- 請求項14に記載の単離核酸を含むベクター。
- 前記単離核酸が、pcDNA、pTT、pTT3、pEFBOS、pBV、pJVおよびpBJからなる群から選択されるベクターにクローニングされる、請求項15に記載のベクター。
- 請求項15に記載のベクターを有する単離宿主細胞。
- 前記宿主細胞が原核細胞である請求項17に記載の単離宿主細胞。
- 前記宿主細胞が大腸菌(E.coli)である請求項18に記載の単離宿主細胞。
- 前記宿主細胞が真核細胞である請求項17に記載の単離宿主細胞。
- 前記真核細胞が動物細胞、植物細胞および真菌細胞からなる群から選択される請求項20に記載の単離宿主細胞。
- 前記真核細胞が、哺乳動物細胞、トリ細胞および昆虫細胞からなる群から選択される動物細胞である請求項21に記載の単離宿主細胞。
- 前記動物細胞がCHO細胞である請求項22に記載の単離宿主細胞。
- 前記宿主細胞がCOSである請求項22に記載の単離宿主細胞。
- 前記真核細胞がサッカロミセス・セレヴィシエ(Saccharomyces cerevisiae)である請求項21に記載の単離宿主細胞。
- 前記動物細胞が昆虫Sf9細胞である請求項22に記載の単離宿主細胞。
- ヒトIL−18に結合する抗体またはその抗原結合部分を生産する条件で培地にて請求項17に記載の宿主細胞を培養する段階を有する、ヒトIL−18に結合する抗体またはその抗原結合部分の生産方法。
- 請求項1から3のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分および製薬上許容される担体を含む、自己免疫疾患を治療するための医薬組成物。
- 少なくとも1種類の別の治療薬をさらに含む請求項28に記載の医薬組成物。
- 前記別の薬剤が、血管新生阻害薬;キナーゼ阻害薬;共刺激分子遮断薬;接着分子遮断薬;抗サイトカイン抗体またはそれの機能性断片;メトトレキセート;コルチコステロイド類;シクロスポリン;ラパマイシン;FK506;および非ステロイド系抗炎症剤からなる群から選択される請求項29に記載の医薬組成物。
- ヒトIL−18へ結合できる抗原結合ドメインを含む単離抗体またはその抗原結合部分であって、
該抗原結合ドメインは、配列番号8の残基31〜37を有するCDR−H1;配列番号8の残基52〜67を有するCDR−H2;配列番号8の残基100〜110を有するCDR−H3;配列番号9の残基24〜35を有するCDR−L1;配列番号9の残基51〜57を有するCDR−L2;および配列番号9の残基90〜98を有するCDR−L3を含む前記単離抗体またはその抗原結合部分。 - 前記抗原結合ドメインがVHを含む、請求項31に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記VHが配列番号8のアミノ酸配列を含む、請求項32に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記抗原結合ドメインがVLを含む、請求項31に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記VLが配列番号9のアミノ酸配列を含む、請求項34に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記抗原結合ドメインがVHおよびVLを含む、請求項31に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記VLが配列番号9のアミノ酸配列を含み、且つ、前記VHが配列番号8のアミノ酸配列を含む、請求項36に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- ヒトIgM定常ドメイン;ヒトIgG1定常ドメイン;ヒトIgG2定常ドメイン;ヒトIgG3定常ドメイン;ヒトIgG4定常ドメイン;ヒトIgE定常ドメインおよびヒトIgA定常ドメインからなる群から選択される重鎖免疫グロブリン定常ドメインをさらに含む、請求項31に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記重鎖免疫グロブリン定常領域ドメインがヒトIgG1定常ドメインである請求項38に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記ヒトIgG1定常ドメインが、配列番号2および配列番号3からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項39に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- ヒトIgカッパ定常ドメインおよびヒトIgラムダ定常ドメインからなる群から選択される軽鎖免疫グロブリン定常ドメインをさらに含む請求項31に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記軽鎖免疫グロブリン定常領域ドメインが、配列番号4のアミノ酸配列を含むヒトIgカッパ定常ドメインである、請求項41に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記軽鎖免疫グロブリン定常領域ドメインが、配列番号5のアミノ酸配列を含む、ヒトIgラムダ定常ドメインである請求項41に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 抗体が、免疫グロブリン分子;scFv;モノクローナル抗体;ヒト抗体;キメラ抗体;ヒト化抗体;Fab断片;Fab′断片;F(ab′)2;Fv;およびジスルフィド連結Fvからなる群から選択される請求項31に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記抗体またはその抗原結合部分がヒト抗体である請求項44に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 請求項31から45のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分を含み、且つ、ヒトIL−18を中和する能力を有する、単離中和抗体またはその抗原結合部分。
- 前記IL−18が、成熟−ヒトIL−18である請求項46に記載の単離中和抗体またはその抗原結合部分。
- ヒトIL−18がその受容体に結合する能力を弱める、請求項46に記載の単離中和抗体またはその抗原結合部分。
- 成熟−ヒトIL−18がその受容体に結合する能力を弱める、請求項48に記載の単離中和抗体またはその抗原結合部分。
- Th1調節;Th2調節;Nk調節;好中球調節;単球−マクロファージ系統調節;好中球調節;好酸球調節;B−細胞調節;サイトカイン調節;ケモカイン調節;接着分子調節;および細胞動員調節からなる群から選択される1以上のIL−18生理活性を低下させる能力を有する、請求項46に記載の単離中和抗体またはその抗原結合部分。
- 検出可能な標識とコンジュゲート形成している、請求項31から45のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分を含む標識抗体またはその抗原結合部分。
- 前記検出可能な標識が、放射能標識、酵素、蛍光標識、発光標識、生体発光標識、磁気標識およびビオチンからなる群から選択される請求項51に記載の標識単離抗体またはその抗原結合部分。
- 前記標識が、3H、14C、35S、90Y、99Tc、111In、125I、131I、177Lu、166Hoおよび153Smからなる群から選択される放射能標識である請求項52に記載の標識単離抗体またはその抗原結合部分。
- 治療薬または細胞傷害薬とコンジュゲート形成している、請求項31から45のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分を含む複合体抗体またはその抗原結合部分。
- 前記治療薬または細胞傷害薬が、代謝拮抗薬、アルキル化剤、抗生物質、成長因子、サイトカイン、血管新生阻害剤、有糸分裂阻害剤、アントラサイクリン、毒物およびアポトーシス剤からなる群から選択される請求項54に記載の複合体抗体またはその抗原結合部分。
- 請求項31から45のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分および製薬上許容される担体を含む、自己免疫疾患を治療するための医薬組成物。
- 少なくとも1種類の追加の治療薬をさらに含む請求項56に記載の医薬組成物。
- 少なくとも1種類の追加の、疾患の治療をする治療薬をさらに含む請求項57に記載の医薬組成物であって、
当該疾患は、関節リウマチ、変形性関節症、若年性慢性関節炎、ライム関節炎、乾癬性関節炎、反応性関節炎および敗血症性関節炎、脊椎関節症、全身性エリテマトーデス、クローン病、潰瘍性大腸炎、炎症性腸疾患、インスリン依存性糖尿病、甲状腺炎、喘息、アレルギー疾患、乾癬、強皮性皮膚炎、対宿主性移植片病、臓器移植拒絶反応、臓器移植に伴う急性または慢性免疫疾患、サルコイドーシス、アテローム硬化症、汎発性血管内凝固症候群、川崎病、グレーヴズ病、ネフローゼ症候群、慢性疲労症候群、ヴェーゲナー肉芽腫症、ヘーノホ−シェーンライン紫斑病、腎臓の顕微鏡的血管炎、慢性活動性肝炎、ブドウ膜炎、敗血症性ショック、トキシックショク症候群、敗血症症候群、悪液質、感染症、寄生虫病、後天性免疫不全症候群、急性横断性脊髄炎、ハンティングトン舞踏病、パーキンソン病、アルツハイマー病、発作、原発性胆汁性肝硬変、溶血性貧血、悪性疾患、心不全、心筋梗塞、アジソン病、散発性疾患、I型多分泌腺機能低下およびII型多分泌腺機能低下、シュミット症候群、成人(急性)呼吸促進症候群、脱毛症、円形脱毛症、血清陰性関節症、関節症、ライター病、乾癬性関節症、潰瘍性大腸炎性関節炎、腸性滑膜炎、クラミジア、エルジニアおよびサルモネラに関連する関節症、脊椎関節症、アテローム性疾患/動脈硬化症、アトピー、自己免疫性水泡性疾患、尋常性天疱瘡、落葉状天疱瘡、類天疱瘡、線状IgA疾患、自己免疫性溶血性貧血、クームス陽性溶血性貧血、後天性悪性貧血、若年性悪性貧血、筋肉痛脳炎/ロイヤルフリー病、慢性粘膜皮膚カンジダ症、巨細胞性動脈炎、原発性硬化性肝炎、原因不明の自己免疫性肝炎、後天性免疫不全疾患症候群、後天性免疫不全に関連する疾病、B型肝炎、C型肝炎、分類不能型免疫不全(分類不能型低ガンマグロブリン血症)、拡張型心筋症、女性の不妊症、卵巣不全、早発性卵巣不全、線維性肺疾患、原因不明の線維化肺胞炎、ポスト炎症性間隙性肺疾患、間隙性肺炎、結合組織病に伴う間隙性肺疾患、混合結合組織病に伴う肺疾患、全身性硬化症に伴う間隙性肺疾患、慢性関節リウマチに伴う間隙性肺疾患、全身性エリテマトーデスに伴う肺疾患、皮膚筋炎/多発性筋炎に伴う肺疾患、シェーグレン病に伴う肺疾患、強直性脊椎炎に伴う肺疾患、脈管性びまん性肺疾患、ヘモジデリン沈着症に伴う肺疾患、薬物誘発性の間隙性肺疾患、放射線線維症、閉塞性細気管支炎、慢性好酸球性肺炎、リンパ球浸潤性肺疾患、感染後間隙性肺疾患、通風性関節炎、自己免疫性肝炎、1型自己免疫性肝炎(古典的な自己免疫性またはルポイド肝炎)、2型自己免疫性肝炎(抗LKM抗体肝炎)、自己免疫媒介型低血糖症、黒色表皮症を伴うB型インスリン抵抗性、上皮小体低下症、臓器移植に伴う急性免疫疾患、臓器移植に伴う慢性免疫疾患、変形性関節症、原発性硬化性胆管炎、1型乾癬、2型乾癬、特発性白血球減少症、自己免疫性好中球減少症、腎疾患NOS、糸球体腎炎、腎臓の顕微鏡的脈管炎、ライム病、ジスコイドエリテマトーデス、特発性またはNOSの男性不妊症、精子自己免疫、多発性硬化症(全てのサブタイプ)、交感性眼炎、結合組織疾患の二次的な肺高血症、グッドパスチャー症候群、結節性多発性動脈炎の肺発現、急性リウマチ熱、リウマチ様脊椎炎、スティル病、全身性硬化症、シェーグレン症候群、高安病/動脈炎、自己免疫性血小板減少症、特発性血小板減少症、自己免疫性甲状疾患、甲状腺機能亢進、甲状腺腫自己免疫性甲状腺機能亢進(橋本病)、萎縮性自己免疫性甲状腺機能低下症、原発性粘液水腫、水晶体起因性ブドウ膜炎、原発性脈管炎、白斑、急性肝疾患、慢性肝疾患、アルコール性肝硬変、アルコール誘発肝臓損傷、胆汁鬱帯、特異体質性肝臓疾患、薬物誘発肝炎、非アルコール性脂肪肝炎、アレルギーおよび喘息、B群溶連菌(GBS)感染、精神障害、抑鬱、統合失調症、Th2型およびTh1型介在疾患、急性および慢性疼痛ならびに癌からなる群から選択される前記医薬組成物。 - 前記追加の薬剤が、血管新生阻害薬;キナーゼ阻害薬;共刺激分子遮断薬;接着分子遮断薬;抗サイトカイン抗体またはそれの機能性断片;メトトレキセート;コルチコステロイド類;シクロスポリン;ラパマイシン;FK506;および非ステロイド系抗炎症剤からなる群から選択される請求項57に記載の医薬組成物。
- ヒトIL−18へ結合し、且つ、ヒトIL−18への結合に関して125−2H抗体と競合する能力を有する、請求項31に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- ヒトIL−18へ結合し、且つ、ヒトIL−18への結合に関してIL−18BPと競合する能力を持たない、請求項31に記載の単離抗体またはその抗原結合部分。
- 結晶として存在する、請求項1−8および31−50のいずれかに記載の抗体またはその抗原結合部分を含む結晶化抗体またはその抗原結合部分。
- 前記結晶が担体を含まない医薬徐放性結晶である請求項62に記載の結晶化抗体またはその抗原結合部分。
- 前記抗体またはその抗原結合部分の可溶性対応物よりインビボで長い半減期を有する、請求項62に記載の結晶化抗体またはその抗原結合部分。
- 生理活性を保持している請求項62に記載の結晶化抗体またはその抗原結合部分。
- (a)請求項62−65のいずれかに記載の結晶化抗体またはその抗原結合部分を含む製剤;ならびに
(b)少なくとも1種類のポリマー担体
を含む、抗体またはその抗原結合部分の放出用の組成物。 - 前記ポリマー担体が、ポリ(アクリル酸)、ポリ(シアノアクリレート)、ポリ(アミノ酸)、ポリ(無水物)、ポリ(デプシペプチド)、ポリ(エステル)、ポリ(乳酸)、乳酸グリコール酸共重合体(PLGA)、ポリ(b−ヒドロキシブチレート)、ポリ(カプロラクトン)、ポリ(ジオキサノン);ポリ(エチレングリコール)、ポリ((ヒドロキシプロピル)メタクリルアミド、ポリ[(有機)ホスファゼン]、ポリ(オルトエステル)、ポリ(ビニルアルコール)、ポリ(ビニルピロリドン)、無水マレイン酸−アルキルビニルエーテルコポリマー、プルロニックポリオール、アルブミン、アルギン酸化合物、セルロースおよびセルロース誘導体、コラーゲン、フィブリン、ゼラチン、ヒアルロン酸、オリゴ糖類、グリカミノグリカン類、硫酸化多糖類、およびこれらの混合物、ならびにこれらのコポリマーからなる群の1以上から選択されるポリマーである請求項66に記載の組成物。
- アルブミン、ショ糖、トレハロース、ラクチトール、ゼラチン、ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリン、メトキシポリエチレングリコールおよびポリエチレングリコールからなる群から選択される成分を含む、請求項66に記載の組成物。
- ヒトIL−18活性を低下させる薬剤を製造するための、請求項1−8および31−50のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分の使用。
- IL−18活性が有害である障害を患うヒト被験者においてヒトIL−18活性を低下させる薬剤を製造するための、請求項1−8および31−50のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分の使用。
- IL−18活性が有害である疾患または障害の被験者を治療する薬剤を製造するための、請求項1−8および31−50のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分の使用。
- 前記障害は、関節リウマチ、変形性関節症、若年性慢性関節炎、ライム関節炎、乾癬性関節炎、反応性関節炎および敗血症性関節炎、脊椎関節症、全身性エリテマトーデス、クローン病、潰瘍性大腸炎、炎症性腸疾患、インスリン依存性糖尿病、甲状腺炎、喘息、アレルギー疾患、乾癬、強皮性皮膚炎、対宿主性移植片病、臓器移植拒絶反応、臓器移植に伴う急性または慢性免疫疾患、サルコイドーシス、アテローム硬化症、汎発性血管内凝固症候群、川崎病、グレーヴズ病、ネフローゼ症候群、慢性疲労症候群、ヴェーゲナー肉芽腫症、ヘーノホ−シェーンライン紫斑病、腎臓の顕微鏡的血管炎、慢性活動性肝炎、ブドウ膜炎、敗血症性ショック、トキシックショク症候群、敗血症症候群、悪液質、感染症、寄生虫病、後天性免疫不全症候群、急性横断性脊髄炎、ハンティングトン舞踏病、パーキンソン病、アルツハイマー病、発作、原発性胆汁性肝硬変、溶血性貧血、悪性疾患、心不全、心筋梗塞、アジソン病、散発性疾患、I型多分泌腺機能低下およびII型多分泌腺機能低下、シュミット症候群、成人(急性)呼吸促進症候群、脱毛症、円形脱毛症、血清陰性関節症、関節症、ライター病、乾癬性関節症、潰瘍性大腸炎性関節炎、腸性滑膜炎、クラミジア、エルジニアおよびサルモネラに関連する関節症、脊椎関節症、アテローム性疾患/動脈硬化症、アトピー、自己免疫性水泡性疾患、尋常性天疱瘡、落葉状天疱瘡、類天疱瘡、線状IgA疾患、自己免疫性溶血性貧血、クームス陽性溶血性貧血、後天性悪性貧血、若年性悪性貧血、筋肉痛脳炎/ロイヤルフリー病、慢性粘膜皮膚カンジダ症、巨細胞性動脈炎、原発性硬化性肝炎、原因不明の自己免疫性肝炎、後天性免疫不全疾患症候群、後天性免疫不全に関連する疾病、B型肝炎、C型肝炎、分類不能型免疫不全(分類不能型低ガンマグロブリン血症)、拡張型心筋症、女性の不妊症、卵巣不全、早発性卵巣不全、線維性肺疾患、原因不明の線維化肺胞炎、ポスト炎症性間隙性肺疾患、間隙性肺炎、結合組織病に伴う間隙性肺疾患、混合結合組織病に伴う肺疾患、全身性硬化症に伴う間隙性肺疾患、慢性関節リウマチに伴う間隙性肺疾患、全身性エリテマトーデスに伴う肺疾患、皮膚筋炎/多発性筋炎に伴う肺疾患、シェーグレン病に伴う肺疾患、強直性脊椎炎に伴う肺疾患、脈管性びまん性肺疾患、ヘモジデリン沈着症に伴う肺疾患、薬物誘発性の間隙性肺疾患、放射線線維症、閉塞性細気管支炎、慢性好酸球性肺炎、リンパ球浸潤性肺疾患、感染後間隙性肺疾患、通風性関節炎、自己免疫性肝炎、1型自己免疫性肝炎(古典的な自己免疫性またはルポイド肝炎)、2型自己免疫性肝炎(抗LKM抗体肝炎)、自己免疫媒介型低血糖症、黒色表皮症を伴うB型インスリン抵抗性、上皮小体低下症、臓器移植に伴う急性免疫疾患、臓器移植に伴う慢性免疫疾患、変形性関節症、原発性硬化性胆管炎、1型乾癬、2型乾癬、特発性白血球減少症、自己免疫性好中球減少症、腎疾患NOS、糸球体腎炎、腎臓の顕微鏡的脈管炎、ライム病、ジスコイドエリテマトーデス、特発性またはNOSの男性不妊症、精子自己免疫、多発性硬化症(全てのサブタイプ)、交感性眼炎、結合組織疾患の二次的な肺高血症、グッドパスチャー症候群、結節性多発性動脈炎の肺発現、急性リウマチ熱、リウマチ様脊椎炎、スティル病、全身性硬化症、シェーグレン症候群、高安病/動脈炎、自己免疫性血小板減少症、特発性血小板減少症、自己免疫性甲状疾患、甲状腺機能亢進、甲状腺腫自己免疫性甲状腺機能亢進(橋本病)、萎縮性自己免疫性甲状腺機能低下症、原発性粘液水腫、水晶体起因性ブドウ膜炎、原発性脈管炎、白斑、急性肝疾患、慢性肝疾患、アルコール性肝硬変、アルコール誘発肝臓損傷、胆汁鬱帯、特異体質性肝臓疾患、薬物誘発肝炎、非アルコール性脂肪肝炎、アレルギーおよび喘息、B群溶連菌(GBS)感染、精神障害、抑鬱、統合失調症、Th2型およびTh1型介在疾患、急性および慢性疼痛ならびに癌からなる群から選択される、請求項71に記載の使用。
- 前記障害は喘息である請求項71に記載の使用。
- 前記障害は全身性エリテマトーデス(SLE)である請求項71に記載の使用。
- 前記障害は変形性関節症である請求項71に記載の使用。
- 前記障害は慢性閉塞性肺である請求項71に記載の使用。
- 前記障害は乾癬である請求項71に記載の使用。
- 前記障害は乾癬性関節炎である請求項71に記載の使用。
- IL−18活性が有害である疾患から被験者を治療する薬剤を製造するための、請求項1−8および31−50のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分の使用であって、
第2の薬剤の投与の前、同時または後に請求項1−8および31−50のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分を投与する段階を有し
前記第2の薬剤がヒトIL−12への結合能を有する抗体またはその断片、メトトレキセート;ヒトTNFへの結合能を有する抗体またはその断片;コルチコステロイド類、シクロスポリン、ラパマイシン、FK506および非ステロイド系抗炎症剤からなる群から選択される、前記使用。 - ヒトIL−18を請求項1−8および31−50のいずれか一項に記載の抗体またはその抗原結合部分と接触させることで、ヒトIL−18活性を低下させるようにする段階を有する、イン・ビトロにおけるヒトIL−18活性の低減方法。
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