JP4731475B2 - 毒性の低いQuilA画分およびその使用 - Google Patents
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Description
本発明は、免疫反応および免疫調節活性のレベルを向上させる相乗効果を有するアジュバント組成物の製造のために、Quil AのA画分を少なくとも1種の他のアジュバントと共に用いることに関する。特に、iscom粒子を含む組成物でのQuil AのA画分の使用に関し、ここで、Quil Aの異なる画分は異なるiscomおよびiscomマトリックス粒子に組み込まれている。
本発明は、免疫調節活性のレベル及び質を向上させる相乗効果を有するアジュバント組成物の製造のために、Quil AのA画分を少なくとも1種の他のアジュバントと共に用いることに関する。特に、Quil AのA画分を他のアジュバント1種以上と共に用いることに関し、ここで、低用量で良好に免疫寛容されている用量でのA画分は、同時投与されるそれ自体は予防用途または臨床用途のためには毒性が強すぎるアジュバントの免疫増強効果を相乗的に向上させる。すなわち、同時投与された、充分に寛容される低用量(言い換えると最適用量未満)のアジュバントを有効にし、使用に適したものとする。それゆえ、他のアジュバントは、実質的に毒性であり、その用量が予防的及び臨床用途に許容される程度に低減されているものが好ましいが、弱く、それ自体では免疫反応のレベルを有効なレベルに増強することができないか、または有効な質的免疫調節能力に影響を及ぼすことができないアジュバントも好ましい。
本実験において、iscomおよびマトリックス中のQWTは非常によく免疫寛容性であり、強い免疫向上および免疫調節能力を有していることを強調する。オボアルブミン(OVA)は弱い抗原であり、それゆえTh1型反応を誘発しないので、これを使用する。QHCはヒト臨床試験において評価されているので、QWTをQHCと比較する。
QHC、QWTおよび703マトリックスiscomの製剤
ホスファチジルコリン(PC)およびコレステロール(C)(各々15 mg/ml)の混合物を、水中20%MEGA-10中で調製する。調製物を60℃まで加熱し、全脂質が可溶化するまで軽く超音波処理を行う。
キラヤ・サポニンを水に100 mg/mlで溶解する。703混合物は、画分Aを7重量部、および画分Cを3重量部含有する。
QWTサポニンは画分Aを単独で含有する。
PBS(5ml)をPC/C混合物(10 mg, 667μl)と混合し、703 (35mg, 350μl)を加え、混合物を攪拌し、最終容量が計10mlになるまでPBSを添加する。混合物をSlide-A-Lyser (3〜15ml, Pierce)透析カセットを用いてPBSに対して透析する。
PBS(5ml)をPCおよびC各10mg(667μl)と混合し、QWT (40mg, 400μl)およびQHC(30mg, 300μl)をそれぞれ加え、混合物を攪拌し、最終容量が計10mlとなるようにPBSを加えた。混合物をSlide-A-Lyser (3〜15ml, Pierce)透析カセットを用いてPBSに対して透析する。
雌性MNRIマウス(18-20g)を本実施例で用いた。第1群は、4週間間隔でQWT(50μg)マトリックスをアジュバント添加したOVA(10μg)で2回皮下(s.c.)注射することにより免疫感作したマウス8匹からなる。第2群は同じ方法で免疫感作した同数のマウスからなるが、アジュバントがQHCマトリックス(50μg)である。1回目の免疫感作の前、および3週間後、および追加免疫の2週間後に血清を回収した。
特異的OVA血清抗体反応を、全IgG反応(全IgGサブクラスを含む)および上記IgG2aサブクラス(Johansson, M and Lovgren-Bengtsson (1999) Iscoms with different quillaja saponin components differ in their immunomodulating activities. Vaccine 19,2894-2900)の両方についてELISAで測定した。
QWTマトリックスでアジュバント添加したOVAを用いて免疫感作したマウスは全て生存し、不快症状の徴候は示さなかった。QHCマトリックスでアジュバント添加したOVAで免疫感作したマウス8匹のうち、マウス4匹(50%)が死んだ。
1回目の免疫感作の後、非アジュバント添加OVAまたはQWTマトリックス(0.3μg) アジュバント添加OVAを、QHCマトリックス有り(2μg)および無しで投与したマウスでは、抗体反応は記録されなかった(図1-2A)。
非アジュバント添加または非常に低用量でのアジュバント添加OVA(これらはIgG1サブクラスでの抗体反応を誘発するのみである)とは反対に、QWTは毒性は低いが、強力なTH1型反応を促進することから示されるように、強力な調節効果をやはり有している。また、QWTマトリックスは低用量のQHCマトリックスと相乗作用を示すことも示している。QWTによりアジュバント効果を最適にし、他のアジュバントの副作用を最小限にすることができるので、この事実は重要である。
呼吸器多核体ウイルス(RSV)は幼児にとって主要な病原体(hRSV)であるが、高齢者にとっても同様である。密接に関連するウィルス(bRSV)は若い仔牛に重篤な疾患を引き起こす病原体であり、ウシの畜産家にとって甚大な経済的損失を与える。hRSVのエンベロープタンパク質を、それに対するワクチンが存在せず、それが大いに必要とされている病原体由来の抗原を示しているので、モデル抗原として選択した。新生仔マウスは新生児に対するモデルを示し、実質的な副作用がないワクチン製剤を必要とする非常に感受性の強い動物であり、入手可能な試薬技法により重要な免疫反応を測定することができるモデルである。hRSVに対する昔のワクチンを子供で試験したが、疾患に対する防御にはならなかった。反対に、後に自然に感染した場合の疾患を増悪させた。この実験では、本発明者らはISCOM中のキラヤ成分として703を選択して本発明と比較した。というのも、703ワクチン製剤はヒト臨床試験中であり、ヒトワクチンの候補物質だからである。本発明の実験では、QWTiscomと703iscomの毒性を比較する。
703およびQWT RSV-ISCOMの製剤
異なるキラヤ・サポニン組成物(A、CおよびAC。すなわち、ISCOPREPTM703)を有するRSVを、基本的にはこれまでに記載されている方法[17, 18]を用いてスクロース勾配により精製したHRSVから製造した。簡単に説明すると、精製RSV(2ml, 1.6mg/ml)を、OG(1-O-n-オクチル-β-D-グルコピラノシド、C14H28O6, Boehringer, Mannheim, GmbH, FRG)を最終濃度2%(w/v)で用いて37℃で1時間、一定速度で攪拌することにより可溶化した。可溶化したウィルスを不連続スクロース勾配(2ml、50%スクロースのクッションの上に0.5%OG含有20%スクロース層)にアプライした。Kontron TST-41ローター中4℃で1時間、210,000gで遠心分離した後、ウィルスタンパク質を含む20%スクロース層と共にサンプル容量を回収し、残りの脂質(すなわち、コレステロール)およびホスファチジルコリンおよびキラヤ・サポニン(すなわち、QH-AまたはQH-C)またはISCOPREPTM703を、タンパク質:コレステロール:ホスファチジルコリン:キラヤ・サポニン=1:1:1:5の割合(重量比)で加えた。4℃で72時間、0.15M酢酸アンモニウムに対して大容量で透析をした後、ISCOMをKontron TST-41ローター中10℃で18時間、210,000gで10%スクロースで遠心分離することにより精製した。iscomを含むペレットをPBS(200μl)中で再懸濁した。タンパク質濃度をアミノ酸分析により測定した(Aminosyraanalyslaboratoriet, Uppsala, Sweden)。サンプルをネガティブ染色法電子顕微鏡検査にかけた。これら3つのiscomには形態学的な差異は観察されなかった。全て、典型的なiscom構造、すなわち、直径約40nmの籠様の球形粒子を示した。RSV抗原およびiscom構造は遠心分離後の同じスクロース勾配画分に見出すことができた。
1群当たり少なくとも7匹の同腹仔(1週齢)のマウスに、製剤703iscomまたはQWTiscomのいずれかを用いて腹腔内(i.p.)注射を1回行った。各キラヤ成分の各用量グループはタンパク質含量で0.11μg〜1μgの範囲である(図2-1)。QWTまたは703 (quillaja saponin)タンパク質の重量比は1/1である。仔マウスをi.p.注射後15日間観察した。i.p.注射はおおざっぱな投与態様であるが、マウスは筋肉内注射および皮下投与の態様よりもi.p.注射に対して感受性が強いことに注目すべきである。
容量0.66μgおよび1μgの場合、703iscomを注射したマウスはそれぞれ、65および50%が死亡したが、QWTiscomを投与したマウスは、QWTiscomを1μgで投与したマウスを含めて全て生存した。
QWT iscomはi.p.経路のような動物モデルにおいて非常に反応性が強い不快な経路による場合でさえ、良好に寛容性がある。ヒト臨床試験が行われている製剤よりも良好な寛容性である。
この実施例において、hRSVのエンベロープタンパク質GおよびFをワクチン抗原のモデルとして用いて血清抗体反応を試験した。hRSV抗原はワクチンが存在せず、そして必要性が高い病原体由来の抗原を提示することから、hRSV抗原を選択した。新生仔マウスは、免疫学的に未成熟であり、強力な免疫調節能力を有するアジュバント系を必要とする新生仔に関するモデルを示す(W097/30727)。さらに、新生仔マウスは、非常に感受性が強く、実質的に副作用を有さないワクチン製剤を必要とする動物系を提供する。類似のワクチン製剤、すなわち、QWTおよび703iscomを実施例2の記載に従って試験した。
QWTおよび703 RSV-iscomの製剤
実施例2を参照のこと。
1週齢マウスおよび成体マウス(BALB/C)を、新生仔2群および成体2群に分けた。一群当たり同腹新生仔を最低で7匹、および成体マウス8匹をQWT iscomまたは703 iscom製剤中hRSV1μgを用いてi.p.で免疫感作した。新生仔1群および成体マウス1群を1回免疫感作すると同時に、新生仔1群および成体マウス1群には、同様の様式で同じ製剤を用いて1回目の免疫感作の3週間後に追加免疫を行った。実験は全て1回繰り返した。
特異的RSV血清抗体反応は、以下の文献に記載のように、コーティング抗原としてホルマリン死滅RSVウィルス0.1μlを用いてIgG1およびIgG2aサブクラスの両方でELISAにより測定した(Johansson, MおよびLoevgren-Bengtsson (1999) Iscoms with different quillaja saponin components differ in their immunomodulating activities. Vaccine 19,2894- 2900)。
結果を図3-1に示す。1回の免疫感作の後、ELISAで測定すると、成体群および新生仔群は両方とも、RSV特異的IgG1抗体に反応した。1回目の免疫感作の後、新生仔マウスでは、QWT iscomは703 iscomよりも高いレベルでRSV特異的IgG1抗体反応を誘発した。または、IgG1およびIgG2a RSV特異的抗体反応を成体および新生仔において誘発する能力に関しては、2つのiscom製剤の間には明瞭な差異はなかった。通常、抗体力価は新生仔の場合よりも成体において10倍高かった。新生仔での免疫感作1回の後のRSVに対するIgG2a反応は、QWTでの免疫感作または703 iscomでの免疫感作にかかわらず、顕著なものではなかった。RSV特異的IgG2aは、成体での免疫感作1回の後に明瞭に測定された。
新生仔または成体におけるQWT iscom製剤での1回目ならびに2回目の免疫感作の後の血清抗体反応は、少なくとも、703 iscomを用いた同じ免疫感作スケジュールの後の場合と同じ程度に高かった。QWT iscomが703 iscomよりもかなり毒性が低いことを示す実施例2の結果を考慮すると、QWT iscomはワクチン製剤として好ましい。
細胞傷害性Tリンパ球 (CTL) は、細胞内病原体に対する免疫防御に必須である。上記のウィルスに感染した細胞全ては、感染細胞を殺傷することによるCTLの標的である。結果として、CTLはウィルス感染に対する免疫防御の重要な武器である。本実施例は、hRSVエンベロープ抗原を含むQWT iscomが、新生仔および成体マウスの両方において記憶CTLを特異的に誘導し、効率よくプライミングすることを示す。驚くべきことに、未成熟な免疫系を考慮すると、QWT iscomは成体における場合と同様に新生仔において効率よくCTL記憶を誘発した。
QWTおよび703 RSV iscomの製剤
QWTおよび703 ISCOMは実施例2に記載するように製造した。
少なくとも7匹の同腹新生仔(1週齢)および成体BALB/C (H-2Kd)マウス8匹を各実験に用いた。各実験は2回行った。1週齢のマウスまたは成体マウスにQWT iscom(1μg)をi.p.注射した。免疫感作の1週間後および3週間後に、それぞれ、脾細胞(エフェクター細胞)を、6日間、HRSV感染(BCH4)-線維芽細胞(標的細胞)と共にインビトロで培養した(再刺激)。エフェクター/標的 (E/T) の比は2〜100の範囲である(図4-1)。標準方法により、標的細胞溶解物をCr51放出で測定し、特異的溶解%で表した(SL%)。100%溶解は、界面活性剤で処理した細胞からのCr51放出として測定した。バックグラウンドは未感染の線維芽細胞により引き起こされる溶解である(BC) (図4-1を参照)。
QWT iscomで新生仔マウスおよび成体マウスをプライミングした1週間後、それらの脾細胞はhRSV感染線維芽細胞(BCH4)でのインビトロでの再刺激に対して強い細胞傷害性T細胞反応を生じた(図4-1)。未感染の標的細胞に対しては溶解は観察されなかった(図4-1のBC)。
RSV-QWT iscomは、1週齢マウスおよび成体マウスにおいて強い細胞傷害性T細胞反応を誘発する。強い特異的な細胞傷害性が、免疫感作1回の1週間後にすでに観察される。QWT iscomの強力なアジュバント効果およびその低い毒性を考慮すると、このワクチン送達およびアジュバント系は、ヒトおよび動物ワクチンの両方に関しておそらく非常に価値がある。
キラヤ・サポニンが強力なアジュバント効果を有することは示されているが、その溶解特性(赤血球細胞の溶解により測定することができる)により副作用が引き起こされてきた。毒性の影響はどのような種類であっても細胞成長または生存細胞の増殖を阻害する。QHCおよびQuil A に類似の精製度の低いキラヤ・サポニンが赤血球細胞を溶解することは確立されている(Roennberg B, Fekadu MおよびMorein B, Adjuvant activity of non-toxic Quillaja saponaria Molina components for use in iscom matrix, Vaccine, 1995 13, (14): 1375-82)。また、キラヤ・サポニンの溶解効果が注射時の局所反応を引き起こしていることは明らかである。サポニンの溶解効果を避ける方法の1つは、それらをISCOMマトリックス中に含ませることである。さらに、比較的副作用が低いキラヤ・サポニンを選択することにより副作用を低減させることができる。本実施例では、QWTマトリックスの効果をVERO細胞(これは霊長類細胞株である)で試験し、QHCおよび703マトリックス製剤と比較する。第2の実験において、マウス由来の脾細胞をQWTおよびQHCマトリックスに暴露した。脾細胞は、免疫反応の誘発に必須のリンパ系の代表例である。代謝活性を測定することにより細胞の増殖を定量的に測定するalamarBlue Assayを使用する。
細胞および細胞成長
7%ウシ胎仔血清(上記の通りに入手)を補充したRPMI 1640培地(National Veterinary Institute Uppsala Sweden)中でVero細胞を培養した。75cm2フラスコ(Corning-Costar, Acton MA, USA)で増殖させた後、細胞をプラスチック表面から遊離させ、25〜30 000/mlに希釈し、96ウェル細胞培養プレート(Nunc A/S, Roskilde, Denmark)に1ウェルあたり100μlずつ分配した。培養物をC02雰囲気下で24、48および72時間インキュベートする。QWTまたは703またはQHCを用いて調製したマトリックスを培地中で0〜1300μg/mlに希釈した。細胞培養物を培地から採取し、マトリックス希釈物をウェルに添加する。コントロールとしては培地のみを用いた。試験製剤を用いて、24、48および72時間インキュベーションして試験を行った。ここに示した時間で最も適当な時間は72時間である。コントロールは100%増殖と見なす。
代謝活性の測定に基づき細胞の増殖量を測定するAlamarBlueアッセイ(Serotec Ltd, Oxford UK)を、製造業者の説明書の通りに使用した。
細胞培養物をQWTマトリックスと濃度1300μg/mlで72時間インキュベーションした後、コントロール培養物と比較して80%の細胞増殖が記録されたが、一方で703マトリックスを800μg/mlの濃度で暴露させた場合には細胞増殖は0%まで低下した。QHCマトリックスに濃度40μg/mlで暴露すると細胞増殖は0%まで減少した。図5-1は、3回の実験のうち1回を示す。これらの結果は類似していた。
QWTマトリックスは細胞により良好に寛容され、細胞毒性の影響が非常に低い。
脾細胞をQWTおよびQHCマトリックスに暴露した。
細胞および細胞増殖
Balb/Cマウス由来の脾細胞を、96ウェル細胞培養プレート(Nunc, Roskilde Denmark)中で7%ウシ胎仔血清を補充したRPMI 1640培地(National Veterinary Institute, Uppsala, Sweden)中で培養した。24、48および72時間のインキュベーション時間でQWT-iscom製剤およびQHC-iscom製剤を用いて脾細胞に試験を行った。記載した時間のうち、最も適切な時間は72時間であった。コントロールを100%増殖と見なす。
代謝活性の測定に基づき細胞の増殖量を測定するalamarBlueアッセイを、製造業者の説明書の通りに使用した。
脾細胞培養物をQWTマトリックスに濃度10μg/mlで72時間暴露すると、暴露していない脾細胞(コントロール)培養物と比較して80%の細胞増殖を記録したが、他方、QVCマトリックスに濃度2μg/mlで暴露すると細胞増殖はほぼ0%まで減少した(図5-2AおよびB)。図5-2は3回の実験のうち1回の実験を示す。これらの結果は類似していた。
キラヤ・サポナリア・モリナのサブフラグメントサポニンの調製
キラヤ・サポナリア・モリナ粗抽出物のA画分、B画分およびC画分への精製
キラヤ樹皮水性粗抽出物(0.5ml、0.5g/ml)を、sep-pakカラム(Waters Associates, MA)で前処理した。前処理は、ロードしたsep-pakカラムを酸性水溶液中10%アセトニトリルで洗浄して親水性物質を取り除く工程を包含する。次いで、QH-A、QH-BおよびQH-Cを含む親油性物質を水中70%アセトニトリルで溶離する。
OVAは強力な免疫反応を誘導するためにアジュバントを必要とする弱い抗原である。それゆえ、アジュバント候補物をOVAと共に試験すると、抗体レベルを測定すると量的免疫増強を示すか、または免疫調節効果を測定すると質的な免疫増強を示す。調節効果は、例えば、抗原特異的IgGサブクラスの反応を促進する能力により記録される。主にIgG1抗体による反応はTh2型反応に重要であり、他方、IgG2aはTh1型反応に重要である。IgG1およびIgG2aの両方における反応はTh1とTh2との間の免疫調節のバランスに関与する。本実施例は、QWTマトリックスがより毒性の高いQHCマトリックスと相乗的に作用して、比較的低用量で、かつ良好に寛容された用量でQHCマトリックスを最適な効果で用いることを可能にすることを実証するために行う。
QWTおよびQHCマトリックス
これらのキラヤサポニン構成成分(実施例5参照)は、実施例1に記載するように入手し、ISCOMマトリックス中に処方した。オボアルブミン(OVA)はSigma (St Louis, USA)から得た。
全マウスを全用量100μlで尾の付け根部分に皮下注射(s.c.)で免疫感作した。第1群は、4週間間隔で2回免疫感作したBalb/cマウス8匹からなる(OVAを5μg、アジュバント添加無し)。第2群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(QWTマトリックス(6μg)をアジュバント添加したOVAを5μg)。第3群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(QHCマトリックス(6μg)をアジュバント添加したOVAを5μg)。第4群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(OVA5μg、低用量のQHCマトリックス(2μg)補充およびQWTマトリックス6μg補充)。1回目の免疫感作の前、プライミングの3週間後、および追加免疫の2週間後に血清を回収した。
血清抗体測定(全IgG、およびサブクラスIgG1およびIgG2aを含む)を実施例1に記載するようにELISAで行った。
プライミングの後(図7−1)、OVA+QWTマトリックスで免疫感作したマウス8匹(第2群)のうち1匹と、OVA+QHCマトリックスで免疫感作した群のマウス8匹(第3群)のうち2匹とで、1:100を超えるIgG反応があった。反対に、QWTマトリックスを補充した低用量のQHCマトリックスで免疫感作した群のマウス8匹(第4群)は全て、IgG反応を伴って反応した。OVA単独で免疫感作したマウスは、いずれも一次免疫感作の後は1:100を超える力価では反応しなかった。
低用量のQWTマトリックスは良好に寛容され、本実施例で用いた用量では副作用は測定されなかったが、実施例1で示されるような数倍高い用量でもまた寛容されている。本実施例では、QHCマトリックスを低用量で使用し、良好に寛容されているが、これはそれ自体はアジュバントとしては最適用量未満での使用である。QWTマトリックスおよびQHCマトリックスは良好に寛容されるアジュバント製剤中で相乗的に作用することが本実施例において良好に実証されている。本実施例における併用製剤中で用いたQWTマトリックスおよびQHCマトリックスの用量はいずれも低すぎてそれら自体単独では有効ではないので、相乗作用を示すという点を重視すべきである。
本実施例において、QWTマトリックスの相乗効果を強力なアジュバント活性細菌由来化合物であるモノホスホリル脂質A(MPL)およびコレラ毒素(CT)で試験した。弱い抗原であるOVAの免疫原性の増強に関して評価する。NMRI非近交系マウスを用いた。これはBalb/Cマウスとは反対に、容易にTH1およびTH2型(これらは、IgG2a(Th1)およびIgGl (Th2)抗体レベルにより反映される)免疫で反応する。
OVA QWT iscom
これらのISCOMは、製剤にパルミチン酸化(palmitified)OVA(pOVA)を1mg/コレステロールの濃度で添加したことを除き、基本的には実施例1においてQWTマトリックスに関して記載したように製造した。pOVA-iscomの調製は、Vaccine 17 (1999)にJohanssonおよびLoevgren-Bengtsson(p2894)により記載されている。CTはKeLab, Gothenburg, Sweden. MPL (L6895)から市販されており、OVAはSigma (St. Louis, USA)から市販されている。
全マウスを全容量100μlで尾の付け根部分に皮下注射(s.c.)して免疫感作した。第1群は、4週間間隔で2回免疫感作したNMRIマウス8匹からなる(OVA5μg、アジュバント添加無し)。第2群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(OVA5μg、QWTを6μg含有し、追加のアジュバントは含有しないQWT iscomに組み込んでいる)。第3群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(OVA5μg(第1群と同様)、高用量のCTでアジュバント添加(1μg))。第4群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(OVA5μg(第1群と同様)、高用量のMPLでアジュバント添加(50μg))。第5群は、免疫感作したマウス8匹からなる(QWT-ISCOM中のOVA5μg(第2群と同様)、低用量CT(0.2μg)を補充)。第6群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(低用量MPL(10μg)でアジュバント添加したQWT-ISCOM中のOVA5μg(第2群と同様))。プライミングの3週間後、および追加免疫注射の2週間後に血清を回収した。
血清抗体測定(全IgG、およびサブクラスIgG1およびIgG2a)を実施例1に記載するようにELISAで行った。
結果を図8に示す。
最初の免疫感作の後、全IgGレベルは第2群〜第6群については同程度であり、OVAに対するIgG2a抗体反応は全ての群のマウスにおいて低かった(図示せず)。
基本的に、IgG1は全IgG抗体反応により反映されるので、図示しない。
低用量のCTまたはMPLと共に製剤化したQWT-ISCOM中のOVAは、QWTを含まない高用量MPLまたはCTの対応する製剤よりも、かなり免疫原性が高かった。OVAの免疫原性のQWT-ISCOMによる増強はIgG2aサブクラスにおいて最も目立つものであり、これは個々の製剤におけるQWT構成成分の強い免疫調節効果を示す。Th1調節はTh2調節よりも目立つが、QWT-ISCOMに連動した調節は平衡が保たれていた。Th1の促進効果は、CTよりも突出しており、これはCTがMPLよりもTh2促進性であるという事実により説明される。
細菌またはウィルスに対するワクチンの場合によくあることだが、ワクチンは粒子型の抗原から構成されることが多い。他方、毒素は、例えば、ホルマリンでの処理により、トキソイドへと変換して解毒された可溶性抗原である。実施例1(図1-2A、BおよびC)および実施例6および7において、低用量で、かつ良好に寛容される用量のQHCマトリックス、CTまたはMPLを補完するためにQWTマトリックスを用いると、弱い可溶性抗原OVAの免疫原性がQWTマトリックスの相乗効果により強く増強されることが示されている。
QWTマトリックス
QWTマトリックスは実施例1に記載したように処方した。
TTはThe State SERUM Institute, Copenhagen, Denmarkから市販されているものを入手した。
CTはKeLab, Gothenburg, Swedenから市販されているものを入手した。
全マウスにワクチン100μlで尾の付け根部分に皮下注射(s.c.)で免疫感作した。第1群は、4週間間隔で2回免疫感作した近交系NMRIマウス6匹からなる(2.5Lf TT、アジュバント添加無し)。第2群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(2.5Lf TT、低用量のCT(1μg)でアジュバント添加)。第3群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(2.5Lf TT、低用量のCT(0.2μg)でアジュバント添加)。第4群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(2.5LF TT、低用量のCT(0.2μg)でアジュバント添加、QWTマトリックス10μgを補充)。
プライミングの3週間後、および追加免疫注射の2週間後に血清を回収した。
抗体測定は、抗原がELISAプレート(Nunc)をコーティングしたTT(濃度1μg/ml)であることを除き、実施例1に記載するようにELISAで行った。
抗原特異的IgGとして測定した明らかな一次抗体反応は4群全てで記録され、これはTTが比較的強い免疫原であることを示す。低用量のCT(0.2μg)でアジュバント添加し、QWTマトリックスを補充したTTは、他の製剤と比較して約3倍強い一次IgG反応を誘導した(図9-1A)。
TTはTh2型反応を促進する比較的強い可溶性免疫原である。CTはTh2型反応をも促進する強いアジュバント効果を有する強力な毒素である。本実験において、低用量のCTを補充したTT抗原に添加した場合、QWTマトリックスは宿主が抗原特異的IgG2a抗体をも伴って反応するように強く促進(調節)されることが示された。Th2を強く駆動するCTのアジュバント効果が、QWTマトリックスによりTh1を指向するように調節されることは興味深いことである。それゆえ、QWTマトリックスをアジュバントであるCTと併用すると強力な免疫調節効果を有する。
本実施例では、市販の可溶性ワクチン抗原である破傷風トキソイド(TT)に、Th1型反応を促進する強力なアジュバントのモノホスホリル脂質A(MPL)を補充する。低用量のMPLにQWTマトリックスを補充して、MPL存在下でのTT抗原に対するQWTマトリックスの調節および相乗効果を実証した。
QWTマトリックス
QWTマトリックスは実施例1に記載したように処方した。
TTはThe State SERUM Institute, Copenhagen, Denmarkから市販されているものを入手した。MPL(L6895)はSigma(St. Louis, USA)製である。
TTはThe State SERUM Institute, Copenhagen, Denmarkから市販されているものを入手した。
全マウスをワクチン100μlで尾の付け根部分に皮下注射(s.c.)して免疫感作した。第1群は、4週間間隔で2回免疫感作した近交系NMRIマウス6匹からなる(2.5Lf TT、アジュバント添加無し)。第2群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(2.5Lf TT、高用量のMPL(50μg)でアジュバント添加)。第3群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(2.5Lf TT、低用量のMPL(10μg)でアジュバント添加)。第4群は、4週間間隔で2回免疫感作したマウス8匹からなる(2.5LF TT、低用量のMPL(0.2μg)でアジュバント添加、QWTマトリックス10μgを補充)。
プライミングの3週間後、および追加免疫注射の2週間後に血清を回収した。
実施例8に記載するように行った。
抗原特異的IgGとして測定される明らかな一次抗体反応が4群全てで記録され、このことはTTが比較的強い免疫原であることを示す(10-1A)。低用量のMPL(10μg)でアジュバント添加し、QWTマトリックスを補充したTTは、MPL(10μg)をアジュバント添加したTT製剤よりも約2倍高い一次IgG反応を誘導した。
QWTマトリックス+抗原および/またはMPLはIgG2a抗体反応のみならず、IgG1をも強く増加させるが、これはMPL存在下におけるTT抗原に対する強力な平衡化された免疫調節効果を示す。TTの強力な免疫原性は、MPL自体はTT抗原に対する全IgGまたはIgG2aまたはIgG1の反応を増強しないか、またはわずかに増強するのみであるという事実により強調される。これは、MPLのような強力なアジュバントはTTのような強力な免疫原の存在下では制限された免疫調節効果を有するかもしれないことを示す。反対に、QWTはMPLを用いた場合に効果が共存的であり、このことはこの組合せが強力な免疫調節効果を有するという事実により実証される。
Claims (12)
- 免疫反応および免疫調節活性の増強を含む相乗効果を備えたアジュバント組成物の製造のための、1つのiscom粒子に組み込まれているQuil AのA画分ならびに遊離しているかまたは別個のiscom粒子に組み込まれている免疫調節能を有する少なくとも1種の他のアジュバントの使用であって、該少なくとも1種の他のアジュバントが、Quil AのC画分および/またはモノホスホリル脂質Aおよび/またはコレラ毒素からなる群から選ばれ、単独で使用すると有効な用量で毒性がありうる該他のアジュバントの使用を促進する使用。
- 該少なくとも1種の他のアジュバントが1つのiscom粒子に組み込まれている、請求項1に記載の使用。
- Quil AのA画分が1つのiscom粒子に組み込まれており、少なくとも1種の他のアジュバントが別のiscom粒子に組み込まれている、請求項1に記載の使用。
- 少なくとも1種の他のアジュバントが別個のiscom粒子に組み込まれている、請求項3に記載の使用。
- Quil AのA画分は1つのiscom粒子に組み込まれており、少なくとも1種の他のアジュバントが遊離していて、いずれのiscom粒子にも組み込まれていない、請求項1に記載の使用。
- 遊離していて、いずれのiscom粒子にも組み込まれていない少なくとも1種の他のアジュバントがモノホスホリル脂質Aおよび/またはコレラ毒素CTである、請求項5に記載の使用。
- iscom粒子がiscom複合体である、請求項1〜6のいずれか1項に記載の使用。
- iscom粒子がiscomマトリックス複合体である、請求項1〜6のいずれか1項に記載の使用。
- 組成物が、Quil AのA画分およびC画分の総重量に対して、A画分を50-99.9%、C画分を0.1-50%含有している、請求項1〜5、7または8のいずれか1項に記載の使用。
- 組成物が、Quil AのA画分およびC画分の総重量に対してA画分を75-99.9%、C画分を0.1-25%含有している、請求項9のいずれか1項に記載の使用。
- iscom粒子が、Quil AのA画分およびC画分の総重量に対してA画分を91-99.1%、C分画を0.1-9%含有している、請求項10に記載の使用。
- 組成物が製薬上許容される担体、希釈剤、賦形剤または添加剤を含有する、請求項1〜11のいずれか1項に記載の使用。
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