JP4647502B2 - 光学活性１−置換−２−メチルピロリジンおよびその中間体の製造法 - Google Patents
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Description
本発明は医薬及び農薬等の中間体として有用な光学活性１−置換−２−メチルピロリジンの製造法に関する。また、本発明は、該製造法において合成中間体として有用な光学活性１，４−ペンタンジオールの製造法に関する。
従来、光学活性１−置換−２−メチルピロリジンの製造法としては以下の方法が知られている。
（１）Ｌ−プロリンから誘導されるＬ−プロリノールの水酸基を塩化チオニルでクロロ基に変換し、窒素原子をベンジルオキシカルボニル基により保護した後、水素化トリブチル錫を用いてラジカル的に還元することにより、（Ｒ）−１−ベンジルオキシカルボニル−２−メチルピロリジンを製造する方法（非特許文献１）。
（２）ラセミ体の２−メチルピロリジンを、酒石酸を用いて光学分割する方法（非特許文献２）。
（１）Ｌ−プロリンから誘導されるＬ−プロリノールの水酸基を塩化チオニルでクロロ基に変換し、窒素原子をベンジルオキシカルボニル基により保護した後、水素化トリブチル錫を用いてラジカル的に還元することにより、（Ｒ）−１−ベンジルオキシカルボニル−２−メチルピロリジンを製造する方法（非特許文献１）。
（２）ラセミ体の２−メチルピロリジンを、酒石酸を用いて光学分割する方法（非特許文献２）。
しかしながら、上記（１）の方法は工程が長く、毒性の高い錫化合物を使用している。また、上記（２）の方法は晶析を複数回繰り返す必要があるために操作が煩雑である。このように、いずれの方法も工業的に有利な方法とは言い難い。
光学活性１，４−ペンタンジオールを原料として光学活性１−置換−２−メチルピロリジンに誘導すれば、上記の問題を解決して光学活性１−置換−２−メチルピロリジンを効率良く製造しうると考えられるが、従来の光学活性１，４−ペンタンジオールの製法はいずれも工業的に有利な方法とは言い難い。
例えば、光学活性１，４−ペンタンジオールの製造法としては下記のような方法が報告されている。
（３）２，４，４−トリメチル−２−オキサゾリンとｎ−ブチルリチウムから調製したエノラートと、（Ｓ）−エピクロロヒドリンをカップリングさせた後、塩酸で加水分解し、次いで水素化リチウムアルミニウムで還元することにより（Ｓ）−１，４−ペンタンジオールを製造する方法（非特許文献３）。
（４）Ｄ−グルタミン酸を亜硝酸で処理することによりγ−ブチロラクトン−４−カルボン酸を製造し、カルボン酸をボラン−ジメチルスルフィド錯体でアルコールに還元し、次いで水酸基をトシル化した後、水素化リチウムアルミニウムで還元することにより（Ｓ）−１，４−ペンタンジオールを製造する方法（非特許文献４）。
（５）レブリン酸エステル（４−オキソペンタン酸エステル）のカルボニル基をパン酵母で還元し、次いで水素化リチウムアルミニウムで還元することにより（Ｓ）−１，４−ペンタンジオールを製造する方法（非特許文献５）。
（６）ラセミ体の１，４−ペンタンジオールの１位の水酸基をトリチル基により保護した後、リパーゼで不斉アシル化を行い、得られたエステル体とアルコール体の混合物からエステル体を分離した後、トシル酸で脱保護することにより（Ｒ）−１，４−ペンタンジオールを製造する方法（非特許文献６）。
（３）２，４，４−トリメチル−２−オキサゾリンとｎ−ブチルリチウムから調製したエノラートと、（Ｓ）−エピクロロヒドリンをカップリングさせた後、塩酸で加水分解し、次いで水素化リチウムアルミニウムで還元することにより（Ｓ）−１，４−ペンタンジオールを製造する方法（非特許文献３）。
（４）Ｄ−グルタミン酸を亜硝酸で処理することによりγ−ブチロラクトン−４−カルボン酸を製造し、カルボン酸をボラン−ジメチルスルフィド錯体でアルコールに還元し、次いで水酸基をトシル化した後、水素化リチウムアルミニウムで還元することにより（Ｓ）−１，４−ペンタンジオールを製造する方法（非特許文献４）。
（５）レブリン酸エステル（４−オキソペンタン酸エステル）のカルボニル基をパン酵母で還元し、次いで水素化リチウムアルミニウムで還元することにより（Ｓ）−１，４−ペンタンジオールを製造する方法（非特許文献５）。
（６）ラセミ体の１，４−ペンタンジオールの１位の水酸基をトリチル基により保護した後、リパーゼで不斉アシル化を行い、得られたエステル体とアルコール体の混合物からエステル体を分離した後、トシル酸で脱保護することにより（Ｒ）−１，４−ペンタンジオールを製造する方法（非特許文献６）。
しかしながら、上記（３）及び（４）の方法は工程が長いうえ高価な試剤を多用する必要がある。上記（５）の方法は微生物による還元反応の収率が最大で６０％と低い。また、上記（６）の方法はラセミ体の分割であるため非効率である。
Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．，１９８９，５４，２０９−２１６． Ａｃｔａ．Ｐｈａｒｍ．Ｓｕｅｃ．，１９７８，１５，２５５−２６３． Ｊ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，Ｃｈｅｍ．Ｃｏｍｍｕｎ．，１９９４，４８３−４８４． Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，１９８２，２５，９４３−９４６． Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ，１９９０，２０，９９９−１０１０． Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ ＆ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｌｅｔｔｅｒｓ，１９９６，６，７１−７６．
Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．，１９８９，５４，２０９−２１６． Ａｃｔａ．Ｐｈａｒｍ．Ｓｕｅｃ．，１９７８，１５，２５５−２６３． Ｊ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，Ｃｈｅｍ．Ｃｏｍｍｕｎ．，１９９４，４８３−４８４． Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，１９８２，２５，９４３−９４６． Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ，１９９０，２０，９９９−１０１０． Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ ＆ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｌｅｔｔｅｒｓ，１９９６，６，７１−７６．
上記に鑑み、本発明の目的は光学活性１，４−ペンタンジオールの効率的な製造法を提供し、更には光学活性１，４−ペンタンジオールから簡便かつ効率的に光学活性１−置換−２−メチルピロリジンを製造する方法を提供することにある。
本発明者らは鋭意検討を行った結果、安価且つ入手容易な５−ヒドロキシ−２−ペンタノンを不斉還元することにより、光学活性１，４−ペンタンジオールを簡便に製造でき、更にこれをスルホニル化することにより光学活性スルホナート化合物に変換し、次いでアミンと反応させることにより、光学活性１−置換−２−メチルピロリジンを簡便に製造できる方法を開発するに至った。
即ち本発明は、下記式（１）：
で表される５−ヒドロキシ−２−ペンタノンを不斉還元することを特徴とする、下記式（２）：
（式中、＊は不斉炭素原子を表す。）で表される光学活性１，４−ペンタンジオールの製造法である。
また本発明は、前記式（２）で表される光学活性１，４−ペンタンジオールをスルホニル化することにより、下記式（３）：
（式中、Ｒ１は置換基を有してもよい炭素数１〜１２のアルキル基、置換基を有してもよい炭素数７〜１２のアラルキル基、又は置換基を有してもよい炭素数６〜１２のアリール基を表し、＊は不斉炭素原子を表す。）で表される光学活性ジスルホナート化合物に変換し、更にアミンと反応させることを特徴とする、下記式（４）：
（式中、Ｒ２は水素原子、水酸基、メトキシ基、ベンジルオキシ基、置換基を有してもよい炭素数１〜１２のアルキル基、置換基を有してもよい炭素数７〜１２のアラルキル基、又は置換基を有してもよい炭素数６〜１２のアリール基を表し、＊は不斉炭素原子を表す。）で表される光学活性１−置換−２−メチルピロリジンの製造法である。
本発明によれば、医薬中間体又は農薬中間体として有用な光学活性１，４−ペンタンジオール及び光学活性１−置換−２−メチルピロリジンを安価で入手容易な出発原料から、簡便且つ安価に製造することができる。
まず、本発明で使用する出発原料、並びに生成物について説明する。
本発明の出発原料である５−ヒドロキシ−２−ペンタノンは下記式（１）：
本発明の出発原料である５−ヒドロキシ−２−ペンタノンは下記式（１）：
で表される。本化合物は安価に調達可能であるが、更に安価で入手容易な下記式（５）：
で表される２−アセチル−γ−ブチロラクトンをリン酸、硫酸、硝酸、又はメタンスルホン酸等の酸存在下で加水分解することにより、簡便に製造することもできる。
なお、前記式（１）で表される５−ヒドロキシ−２−ペンタノンは高濃度で保存すると自己脱水縮合により純度低下する場合があるが、前記式（５）で表される２−アセチル−γ−ブチロラクトンを酸加水分解して得られた前記化合物（１）の酸性水溶液、若しくは必要に応じて中和処理した水溶液を保存すれば、このような問題は発生せず、そのまま不斉還元反応の原料として使用することが可能である。
次に、本発明の生成物である光学活性１，４−ペンタンジオールは、下記式（２）：
で表される。ここで、＊は不斉炭素原子を表し、その絶対配置はＲ又はＳである。ここでＲは両対掌体のうちＲ体を過剰に含む全ての場合を表し、同様にＳは両対掌体のうちＳ体を過剰に含む全ての場合を表す。
次に、本発明の生成物である光学活性ジスルホナート化合物は、下記式（３）：
で表される。ここで、Ｒ１は置換基を有してもよい炭素数１〜１２のアルキル基、置換基を有してもよい炭素数７〜１２のアラルキル基、又は置換基を有してもよい炭素数６〜１２のアリール基を表す。
Ｒ１として好ましくは、メチル基、エチル基、クロロメチル基、トリフルオロメチル基、ベンジル基、フェニル基、４−メチルフェニル基、４−クロロフェニル基、２−ニトロフェニル基、３−ニトロフェニル基、４−ニトロフェニル基等であり、更に好ましくはメチル基、又は４−メチルフェニル基である。＊は前記に同じである。
次に、本発明の生成物である光学活性１−置換−２−メチルピロリジンは、下記式（４）：
で表される。ここで、Ｒ２は水素原子、水酸基、メトキシ基、ベンジルオキシ基、置換基を有してもよい炭素数１〜１２のアルキル基、置換基を有してもよい炭素数７〜１２のアラルキル基、又は置換基を有してもよい炭素数６〜１２のアリール基を表す。
Ｒ２として好ましくは、水素原子、水酸基、メトキシ基、ベンジルオキシ基、メチル基、エチル基、ｎ−プロピル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、アリル基、ベンジル基、１−フェネチル基、フェニル基、メトキシフェニル基等であり、更に好ましくはベンジル基である。＊は前記に同じである。
次に、前記式（１）で表される５−ヒドロキシ−２−ペンタノンを不斉還元することにより、前記式（２）で表される光学活性１，４−ペンタンジオールを製造する方法について説明する。本工程における不斉還元方法としては特に限定されず、光学活性化合物によって修飾されたヒドリド還元剤を用いて還元する方法、不斉遷移金属触媒存在下に水素化する方法、不斉遷移金属触媒存在下に水素移動型還元する方法、若しくは微生物、或いは微生物由来の酵素を用いて還元する方法等が挙げられる。
具体的には、光学活性化合物によって修飾されたヒドリド還元剤としては、光学活性酒石酸と水素化ホウ素ナトリウムから調製される還元剤、光学活性オキサボロリジン誘導体とボランから調製される還元剤、光学活性ケトイミナト型コバルト錯体と水素化ホウ素ナトリウムとテトラヒドロフラン−２−メタノールから調製される還元剤、光学活性１，１’−ビ−２−ナフトールと水素化アルミニウムリチウムから調製される還元剤等が挙げられる。
また、前記水素化又は水素移動型還元に用いる不斉遷移金属触媒としては、ルテニウム、ロジウム、イリジウム、又は白金等の周期律表第ＶＩＩＩ族元素の金属錯体が好ましく、錯体の安定性や入手容易さ、経済性の観点からルテニウム錯体がより好ましい。
該金属錯体中の不斉配位子としてはホスフィン系配位子が好ましく、ホスフィン系配位子として好ましくは二座配位子である。二座配位子として好ましくは、ＢＩＮＡＰ（２，２’−ビスジフェニルホスフィノ−１，１’−ビナフチル）；Ｔｏｌ−ＢＩＮＡＰ（２，２’−ビス（ジ−ｐ−トリルホスフィノ−１，１’−ビナフチル）等のＢＩＮＡＰ誘導体；ＢＤＰＰ（２，４−ビス（ジフェニルホスフィノ）ペンタン）；ＤＩＯＰ（４，５−ビス（ジフェニルホスフィノメチル）−２，２−ジメチル−１，３−ジオキサン；ＢＰＰＦＡ（１−［１’，２−ビス（ジフェニルホスフィノ）フェロセニル］エチルアミン）；ＣＨＩＲＡＰＨＯＳ（２，３−ビス（ジフェニルホスフィノ）ブタン）；ＤＥＧＰＨＯＳ（１−置換−３，４−ビス（ジフェニルホスフィノ）ピロリジン）；ＤｕＰＨＯＳ（１，２−ビス（２，５−置換ホスホラノ）ベンゼン）；ＤＩＰＡＭＰ（１，２−ビス［（ｏ−メトキシフェニル）フェニルホスフィノ］エタン）等が挙げられる。
前記不斉遷移金属触媒存在下に水素ガス、若しくは水素供与能を有する化合物、例えばイソプロパノール、蟻酸、又は蟻酸アンモニウム等を用いて不斉還元することが可能である。
また、前記式（１）で表される５−ヒドロキシ−２−ペンタノンのカルボニル基を立体選択的に還元する活性を有する酵素源の存在下、前記式（１）のカルボニル基を立体選択的に還元することにより、前記式（２）で表される光学活性１，４−ペンタンジオールを製造することもできる。
ここで、「酵素源」とは、上記還元活性を有する酵素自体はもちろんのこと、上記還元活性を有する微生物の培養物も含まれる。「微生物の培養物」とは、菌体を含む培養液、培養菌体、又はその処理物を意味する。ここで「その処理物」とは、例えば、粗抽出液、凍結乾燥菌体、アセトン乾燥菌体、又はそれら菌体の磨砕物等を意味する。さらにこれら酵素源は、公知の手段により固定化酵素あるいは固定化菌体の形態として用いることもできる。固定化は、当業者に周知の方法（例えば架橋法、物理的吸着法、包括法等）で行うことができる。
本発明の酵素還元工程において、前記式（１）で表される化合物のカルボニル基を立体選択的に還元する活性を有する酵素源としては、キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属、デボシア（Ｄｅｖｏｓｉａ）属、ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属、又はロドトルラ（Ｒｈｏｄｏｔｏｒｕｌａ）属からなる群から選ばれた微生物由来の酵素源が挙げられる。
上記酵素源のうち、前記式（１）で表される化合物のカルボニル基をＳ選択的に還元する活性を有する酵素源としては、ロドコッカス・スピーシーズ（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ ｓｐ．）、又はロドトルラ・グルチニス（Ｒｈｏｄｏｔｏｒｕｌａ ｇｌｕｔｉｎｉｓ）等の微生物由来の酵素源が挙げられる。
また、前記式（１）で表される化合物のカルボニル基をＲ選択的に還元する活性を有する酵素源としては、キャンディダ・マグノリエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍａｇｎｏｌｉａｅ）、キャンディダ・マリス（Ｃａｎｄｉｄａ ｍａｌｉｓ）、又はデボシア・リボフラビナ（Ｄｅｖｏｓｉａ ｒｉｂｏｆｌａｖｉｎａ）等の微生物由来の酵素源が挙げられる。
また、上記微生物由来の還元酵素の産生能を有する微生物としては、野生株又は変異株のいずれでもよい。あるいは細胞融合または遺伝子操作等の遺伝学的手法により誘導される微生物も用いることができる。遺伝子操作された本酵素を生産する微生物は、例えば、これらの酵素を単離及び／または精製して酵素のアミノ酸配列の一部または全部を決定する工程、このアミノ酸配列に基づいて酵素をコードするＤＮＡ配列を得る工程、このＤＮＡを他の微生物に導入して組換え微生物を得る工程、及びこの組換え微生物を培養して、本酵素を得る工程を含有する方法により得ることができる（ＷＯ９８／３５０２５）。
酵素源として用いる微生物の為の培養培地は、その微生物が増殖し得るものである限り特に限定されない。例えば、炭素源として、グルコース、シュークロース等の糖質、エタノール、グリセロール等のアルコール類、オレイン酸、ステアリン酸等の脂肪酸及びそのエステル類、菜種油、大豆油等の油類、窒素源として、硫酸アンモニウム、硝酸ナトリウム、ペプトン、カザミノ酸、コーンスティープリカー、ふすま、酵母エキスなど、無機塩類として、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、炭酸カルシウム、リン酸一水素カリウム、リン酸ニ水素カリウムなど、他の栄養源として、麦芽エキス、肉エキス等を含有する通常の液体培地が使用することができる。培養は好気的に行い、通常、培養時間は１〜５日間程度、培地のｐＨが３〜９、培養温度は１０〜５０℃で行うことができる。
本発明の還元反応は、適当な溶媒中に基質の５−ヒドロキシ−２−ペンタノン、補酵素ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ及び上記微生物の培養物またはその処理物等を添加し、ｐＨ調整下に攪拌することにより行うことができる。反応溶媒としては、通常、水や緩衝液等の水性媒体を用いるが、酢酸エチル、トルエン等の有機溶媒と水性媒体の２相系で反応を行うこともできる。
反応条件は用いる酵素源や基質濃度等によって異なるが、通常、基質濃度は約０．１〜１００重量％、好ましくは１〜６０重量％であり、補酵素ＮＡＤ（Ｐ）Ｈは基質に対して０．０００００１〜１倍モル量、好ましくは０．０００００１〜０．００１倍モル量、反応温度は１０〜６０℃、好ましくは２０〜５０℃であり、反応のｐＨは４〜９、好ましくは５〜８である。反応時間は通常１〜１２０時間、好ましくは１〜７２時間で行うことができる。基質は一括、または連続的に添加して行うことができる。反応はバッチ方式または連続方式で行うことができる。
本発明の還元工程において、一般に用いられる補酵素ＮＡＤ（Ｐ）Ｈ再生系を組み合わせて用いることにより、高価な補酵素の使用量を大幅に減少させることができる。代表的なＮＡＤ（Ｐ）Ｈ再生系としては、例えば、グルコース脱水素酵素及びグルコースを用いる方法が挙げられる。
酵素源として、還元酵素遺伝子及びこの酵素が依存する補酵素を再生する能力を有する酵素（例えばグルコース脱水素酵素）の遺伝子を同一宿主微生物内に導入した形質転換微生物の培養物を用いて還元反応を行えば、別途補酵素の再生に必要な酵素源を調製する必要がないため、より低コストで光学活性１，４−ペンタンジオールを製造することができる。
上記のような形質転換微生物としては、上記還元酵素をコードするＤＮＡ及び該酵素が依存する補酵素を再生する能力を有する酵素をコードするＤＮＡを有するプラスミドで形質転換された形質転換微生物が挙げられる。ここで、補酵素を再生する能力を有する酵素としては、グルコース脱水素酵素が好ましく、バシラス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）由来のグルコース脱水素酵素がより好ましい。また、宿主微生物としては大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）が好ましい。
より好ましくは、キャンディダ・マグノリエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍａｇｎｏｌｉａｅ）ＩＦＯ０７０５由来の還元酵素遺伝子及びバシラス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）由来のグルコース脱水素酵素遺伝子で形質転換されたＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＳ１Ｇ）（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−５８３５、原寄託日平成９年２月２４日）、
キャンディダ・マリス（Ｃａｎｄｉｄａ ｍａｌｉｓ）ＩＦＯ１０００３由来の還元酵素遺伝子及びバシラス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）由来のグルコース脱水素酵素遺伝子で形質転換されたＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＦＰＧ）（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−７１１７、原寄託日平成１２年４月１１日）、
デボシア・リボフラビナ（Ｄｅｖｏｓｉａ ｒｉｂｏｆｌａｖｉｎａ）ＩＦＯ１３５８４由来の還元酵素遺伝子及びバシラス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）由来のグルコース脱水素酵素遺伝子で形質転換されたＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＤＲＧ１）（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−０８４５８、原寄託日平成１４年５月２９日の国内寄託株をブダペスト条約に基づく国際寄託に移管）、
ロドコッカス・スピーシーズ（Ｒｏｄｏｃｏｃｃｕｓ ｓｐ．）ＫＮＫ０１由来の還元酵素遺伝子で形質転換されたＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＲＳ）（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−０８５４５、原寄託日平成１４年２月１３日の国内寄託株をブダペスト条約に基づく国際寄託に移管）、又は、ロドトルラ・グルチニス（Ｒｈｏｄｏｔｏｒｕｌａ ｇｌｕｔｉｎｉｓ）ＩＦＯ４１５由来の還元酵素遺伝子及びバシラス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）由来のグルコース脱水素酵素遺伝子で形質転換されたＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＲＧＧ１）（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−７８５８、原寄託日平成１４年１月２２日）等が挙げられる。これらの形質転換微生物は、それぞれ、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に寄託されている。
キャンディダ・マリス（Ｃａｎｄｉｄａ ｍａｌｉｓ）ＩＦＯ１０００３由来の還元酵素遺伝子及びバシラス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）由来のグルコース脱水素酵素遺伝子で形質転換されたＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＦＰＧ）（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−７１１７、原寄託日平成１２年４月１１日）、
デボシア・リボフラビナ（Ｄｅｖｏｓｉａ ｒｉｂｏｆｌａｖｉｎａ）ＩＦＯ１３５８４由来の還元酵素遺伝子及びバシラス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）由来のグルコース脱水素酵素遺伝子で形質転換されたＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＤＲＧ１）（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−０８４５８、原寄託日平成１４年５月２９日の国内寄託株をブダペスト条約に基づく国際寄託に移管）、
ロドコッカス・スピーシーズ（Ｒｏｄｏｃｏｃｃｕｓ ｓｐ．）ＫＮＫ０１由来の還元酵素遺伝子で形質転換されたＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＲＳ）（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−０８５４５、原寄託日平成１４年２月１３日の国内寄託株をブダペスト条約に基づく国際寄託に移管）、又は、ロドトルラ・グルチニス（Ｒｈｏｄｏｔｏｒｕｌａ ｇｌｕｔｉｎｉｓ）ＩＦＯ４１５由来の還元酵素遺伝子及びバシラス・メガテリウム（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｍｅｇａｔｅｒｉｕｍ）由来のグルコース脱水素酵素遺伝子で形質転換されたＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＲＧＧ１）（受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−７８５８、原寄託日平成１４年１月２２日）等が挙げられる。これらの形質転換微生物は、それぞれ、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６）に寄託されている。
なお、本発明の還元工程を、補酵素再生系と組み合わせて実施する、又は酵素源として上記形質転換微生物の培養物もしくはその処理物を用いる場合は、補酵素として、より安価な酸化型のＮＡＤ（Ｐ）を添加して反応を行うことも可能である。
還元反応で生じた光学活性１，４−ペンタンジオールは、常法により精製することができる。例えば、微生物等を用いた場合には必要に応じ遠心分離、濾過等の処理を施して菌体等の懸濁物を除去し、次いで酢酸エチル、トルエン等の有機溶媒で抽出し、有機溶媒を減圧下に除去することにより目的物が得られる。このようにして得られた目的物は、後続工程に使用できる十分な純度を有しているが、後続工程の収率、若しくは後続工程で得られる化合物の純度をさらに高める目的で、分別蒸留、カラムクロマトグラフィー等の一般的な精製手法により、さらに純度を高めてもよい。
次に、前記式（２）で表される光学活性１，４−ペンタンジオールをスルホニル化することにより、前記式（３）で表される光学活性ジスルホナート化合物に変換する工程について説明する。本工程は、塩基存在下にスルホニル化剤を用いることにより行うことができる。
ここで、前記スルホニル化剤としては、ハロゲン化スルホニル、スルホン酸無水物等が挙げられる。ハロゲン化スルホニルとしては、塩化メタンスルホニル、塩化エタンスルホニル、塩化クロロメタンスルホニル、塩化ベンジルスルホニル、塩化ベンゼンスルホニル、塩化４−メチルベンゼンスルホニル、塩化４−クロロベンゼンスルホニル、塩化２−ニトロベンゼンスルホニル、塩化３−ニトロベンゼンスルホニル、塩化４−ニトロベンゼンスルホニル等が挙げられ、スルホン酸無水物としては、無水トリフルオロメタンスルホン酸等が挙げられる。好ましくは塩化メタンスルホニル、又は塩化４−メチルベンゼンスルホニルである。前記スルホニル化剤の使用量としては、好ましくは前記化合物（２）に対して２〜１０倍モル量であり、更に好ましくは２〜４倍モル量である。
また、前記塩基としては、特に制限されないが、第３級アミン類が好ましく、例えばトリエチルアミン、トリ−ｎ−ブチルアミン、Ｎ−メチルモルホリン、Ｎ−メチルピペリジン、ジイソプロピルエチルアミン、ピリジン、Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノピリジン等が挙げられる。更に好ましくはトリエチルアミン、又はピリジンである。前記塩基の使用量としては、好ましくは前記化合物（２）に対して２〜１００倍モル量であり、更に好ましくは２〜４倍モル量である。
反応溶媒としては、塩基をそのまま反応溶媒として使用してもよいし、又はテトラヒドロフラン、１，４−ジオキサン、エチレングリコールジメチルエーテル等のエーテル系溶媒；酢酸エチル、酢酸イソプロピル等のエステル系溶媒；ベンゼン、トルエン、ヘキサン等の炭化水素系溶媒；アセトン、メチルエチルケトン等のケトン系溶媒；アセトニトリル、プロピオニトリル等のニトリル系溶媒；塩化メチレン、クロロホルム等のハロゲン系溶媒；Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアセトアミド等のアミド系溶媒；ジメチルスルホキシド等のスルホキシド系溶媒；ジメチルプロピレンウレア等のウレア系溶媒；ヘキサメチルホスホン酸トリアミド等のホスホン酸トリアミド系溶媒を用いてもよい。好ましくは、テトラヒドロフラン、酢酸エチル、トルエンが挙げられる。これらは単独で用いてもよく、２種以上を併用してもよい。２種以上併用する場合、混合比は特に制限されない。前記反応溶媒の使用量としては、前記化合物（２）に対し、好ましくは５０倍重量以下、更に好ましくは５〜２０倍重量である。
反応温度は、反応時間短縮、及び収率向上の観点から−２０〜１５０℃が好ましく、０〜１００℃が更に好ましい。前記式（２）で表される光学活性１，４−ペンタンジオール、スルホニル化剤、塩基および溶媒の添加方法や、添加順序に特に制限はない。
反応後の処理としては、反応液から生成物を取得するための一般的な処理を行えばよい。例えば、反応終了後の反応液に水、また必要に応じて水酸化ナトリウム水溶液、炭酸水素ナトリウム水溶液等のアルカリ水溶液、或いは塩酸水溶液、硫酸水溶液等の酸水溶液を加えて中和し、一般的な抽出溶媒、例えば酢酸エチル、ジエチルエーテル、塩化メチレン、トルエン、ヘキサン等を用いて抽出操作を行う。得られた抽出液から減圧加熱等の操作により、反応溶媒及び抽出溶媒を留去すると目的物が得られる。このようにして得られた目的物は、後続工程に使用できる十分な純度を有しているが、後続工程の収率、若しくは後続工程で得られる化合物の純度をさらに高める目的で、晶析、分別蒸留、カラムクロマトグラフィー等の一般的な精製手法により、さらに純度を高めてもよい。
次に、前記式（３）で表される光学活性ジスルホナート化合物をアミンと反応させることにより、前記式（４）で表される光学活性１−置換−２−メチルピロリジンを製造する工程について説明する。本工程は過剰のアミンと反応させるか、若しくは塩基存在下にアミンと反応させることにより行うことが出来る。
ここで、前記アミンとしては例えば、アンモニア、ヒドロキシルアミン、メトキシアミン、ベンジルオキシアミン、メチルアミン、エチルアミン、ｎ−プロピルアミン、ｔｅｒｔ−ブチルアミン、アリルアミン、ベンジルアミン、１−フェネチルアミン、アニリン、４−メトキシアニリン等が挙げられ、好ましくはベンジルアミンである。
前記塩基としては例えば、水素化ナトリウム、水素化カリウム等のアルカリ金属水素化物；ナトリウムメトキシド、ナトリウムエトキシド、カリウムｔｅｒｔ−ブトキシド等のアルカリ金属アルコキシド；水酸化リチウム、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム等のアルカリ金属水酸化物；炭酸ナトリウム、炭酸カリウム等のアルカリ金属炭酸塩；トリエチルアミン、トリ−ｎ−ブチルアミン、Ｎ−メチルモルホリン、Ｎ−メチルピペリジン、ジイソプロピルエチルアミン、ピリジン、Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノピリジン等の第３級アミン類が挙げられる。好ましくは水酸化ナトリウム、水酸化カリウム、炭酸ナトリウム、炭酸カリウム、トリエチルアミン、又はピリジンである。
前記アミンの使用量としては、好ましくは前記化合物（３）に対して１〜１００倍モル量であり、更に好ましくは１〜１０倍モル量である。前記塩基の使用量としては、好ましくは前記化合物（３）に対して１〜１０倍モル量であり、更に好ましくは１〜５倍モル量である。
反応溶媒としては、アミンをそのまま反応溶媒として使用してもよいし、又は水；メタノール、エタノール、イソプロパノール等のアルコール系溶媒；テトラヒドロフラン、１，４−ジオキサン、エチレングリコールジメチルエーテル等のエーテル系溶媒；酢酸エチル、酢酸イソプロピル等のエステル系溶媒；ベンゼン、トルエン、ヘキサン等の炭化水素系溶媒；アセトン、メチルエチルケトン等のケトン系溶媒；アセトニトリル、プロピオニトリル等のニトリル系溶媒；塩化メチレン、クロロホルム等のハロゲン系溶媒；Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアセトアミド等のアミド系溶媒；ジメチルスルホキシド等のスルホキシド系溶媒；ジメチルプロピレンウレア等のウレア系溶媒；ヘキサメチルホスホン酸トリアミド等のホスホン酸トリアミド系溶媒を用いてもよい。好ましくは、テトラヒドロフラン、酢酸エチル、トルエンが挙げられる。これらは単独で用いてもよく、２種以上を併用してもよい。２種以上併用する場合、混合比は特に制限されない。前記反応溶媒の使用量としては、前記化合物（３）に対し、好ましくは５０倍重量以下、更に好ましくは５〜２０倍重量である。
反応温度は、反応時間短縮、及び収率向上の観点から−２０〜１５０℃が好ましく、０〜１００℃が更に好ましい。前記式（３）で表される光学活性ジスルホネート化合物、アミン、塩基および溶媒の添加方法や、添加順序に特に制限はない。
反応後の処理としては、反応液から生成物を取得するための一般的な処理を行えばよい。例えば、反応終了後の反応液に水、また必要に応じて水酸化ナトリウム水溶液、炭酸水素ナトリウム水溶液等のアルカリ水溶液、或いは塩酸水溶液、硫酸水溶液等の酸水溶液を加えて中和し、一般的な抽出溶媒、例えば酢酸エチル、ジエチルエーテル、塩化メチレン、トルエン、ヘキサン等を用いて抽出操作を行う。得られた抽出液から減圧加熱等の操作により、反応溶媒及び抽出溶媒を留去すると目的物が得られる。このようにして得られた目的物は、医薬、農薬等の合成中間体として十分な純度を有しているが、晶析、分別蒸留、カラムクロマトグラフィー等の一般的な精製手法により、さらに純度を高めてもよい。
以下に実施例を挙げて、本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれら実施例のみに限定されるものではない。
（実施例１）光学活性１，４−ペンタンジオールの製造
表１に示す各種組換え大腸菌を５００ｍＬ容坂口フラスコ中で滅菌した５０ｍＬの２×ＹＴ培地（トリペプトン１．６％、イーストエキス１．０％、ＮａＣｌ ０．５％、ｐＨ＝７．０）に接種し、３７℃で１８時間振とう培養した。得られた培養液１ｍＬに５−ヒドロキシ−２−ペンタノン１０ｍｇ、ＮＡＤ又はＮＡＤＰ１ｍｇ、グルコース２０ｍｇを添加し、３０℃で２０時間攪拌した。反応終了後、反応液を酢酸エチル２ｍＬにて抽出し、抽出液にトリフルオロ酢酸無水物を加えて誘導化した後、生成物のＯ−ＴＦＡ誘導体を下記分析法に従い分析した。その結果を表１に示す。
［分析条件］
カラム：ＣＨＩＲＡＬＤＥＸ Ｇ−ＴＡ ２０ｍ×０．２５ｍｍＩ．Ｄ．（ＡＳＴＥＣ社製）、カラム温度：８０℃、スプリット比：１００／１、キャリアーガス：Ｈｅ ４０ｃｍ３／ｓｅｃ、検出：ＦＩＤ、試料：Ｏ−ＴＦＡ誘導体
変換率（％）＝生成物量／（基質量＋生成物量）ｘ１００
光学純度（％ｅｅ）＝（Ａ−Ｂ）／（Ａ＋Ｂ）ｘ１００
（Ａ及びＢは対応する鏡像異性体量を表わし、Ａ＞Ｂである）。
表１に示す各種組換え大腸菌を５００ｍＬ容坂口フラスコ中で滅菌した５０ｍＬの２×ＹＴ培地（トリペプトン１．６％、イーストエキス１．０％、ＮａＣｌ ０．５％、ｐＨ＝７．０）に接種し、３７℃で１８時間振とう培養した。得られた培養液１ｍＬに５−ヒドロキシ−２−ペンタノン１０ｍｇ、ＮＡＤ又はＮＡＤＰ１ｍｇ、グルコース２０ｍｇを添加し、３０℃で２０時間攪拌した。反応終了後、反応液を酢酸エチル２ｍＬにて抽出し、抽出液にトリフルオロ酢酸無水物を加えて誘導化した後、生成物のＯ−ＴＦＡ誘導体を下記分析法に従い分析した。その結果を表１に示す。
［分析条件］
カラム：ＣＨＩＲＡＬＤＥＸ Ｇ−ＴＡ ２０ｍ×０．２５ｍｍＩ．Ｄ．（ＡＳＴＥＣ社製）、カラム温度：８０℃、スプリット比：１００／１、キャリアーガス：Ｈｅ ４０ｃｍ３／ｓｅｃ、検出：ＦＩＤ、試料：Ｏ−ＴＦＡ誘導体
変換率（％）＝生成物量／（基質量＋生成物量）ｘ１００
光学純度（％ｅｅ）＝（Ａ−Ｂ）／（Ａ＋Ｂ）ｘ１００
（Ａ及びＢは対応する鏡像異性体量を表わし、Ａ＞Ｂである）。
（実施例２）５−ヒドロキシ−２−ペンタノンの製造
２−アセチル−γ−ブチロラクトン１２．８ｇ（１００ｍｍｏｌ）に５％リン酸水溶液１００ｍＬを加え、１００℃、４時間攪拌した。室温まで冷却後、水酸化ナトリウム水溶液で中和することにより、５−ヒドロキシ−２−ペンタノン水溶液（１３０ｇ、７．８重量％）を得た。
２−アセチル−γ−ブチロラクトン１２．８ｇ（１００ｍｍｏｌ）に５％リン酸水溶液１００ｍＬを加え、１００℃、４時間攪拌した。室温まで冷却後、水酸化ナトリウム水溶液で中和することにより、５−ヒドロキシ−２−ペンタノン水溶液（１３０ｇ、７．８重量％）を得た。
（実施例３）（Ｓ）−１，４−ペンタンジオールの製造
組換え大腸菌ＨＢ１０１（ｐＮＴＲＧＧ１）受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−７８５８を、５００ｍＬ容坂口フラスコ中で滅菌した５０ｍＬの２×ＹＴ培地（トリペプトン１．６％、イーストエキス１．０％、ＮａＣｌ ０．５％、ｐＨ＝７．０）に接種し、３７℃で２０時間振とう培養した。得られた培養液５０ｍＬに、実施例２で得られた５−ヒドロキシ−２−ペンタノン２．５ｇを含む水溶液（３２ｇ）、ＮＡＤＰ２．５ｍｇ、グルコース６．６ｇを添加し、７．５Ｍの水酸化ナトリウム水溶液を滴下することによりｐＨ６．５に調整しながら、３０℃で２４時間攪拌した。反応終了後、反応液に酢酸エチル５０ｍＬを加えて抽出し、有機層を減圧下で留去することにより、薄茶色油状物の（Ｓ）−１，４−ペンタンジオール２．６ｇを得た（収率：１００％）。また、実施例１と同様の方法で光学純度を測定したところ、９９％ｅｅ以上であった。
１Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ１．２１（３Ｈ，ｄ）、１．４−１．６（４Ｈ，ｍ）、２．６−３．０（２Ｈ，ｂｒｓ）、３．６７（２Ｈ，ｍ）、３．８６（１Ｈ，ｍ）。
組換え大腸菌ＨＢ１０１（ｐＮＴＲＧＧ１）受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−７８５８を、５００ｍＬ容坂口フラスコ中で滅菌した５０ｍＬの２×ＹＴ培地（トリペプトン１．６％、イーストエキス１．０％、ＮａＣｌ ０．５％、ｐＨ＝７．０）に接種し、３７℃で２０時間振とう培養した。得られた培養液５０ｍＬに、実施例２で得られた５−ヒドロキシ−２−ペンタノン２．５ｇを含む水溶液（３２ｇ）、ＮＡＤＰ２．５ｍｇ、グルコース６．６ｇを添加し、７．５Ｍの水酸化ナトリウム水溶液を滴下することによりｐＨ６．５に調整しながら、３０℃で２４時間攪拌した。反応終了後、反応液に酢酸エチル５０ｍＬを加えて抽出し、有機層を減圧下で留去することにより、薄茶色油状物の（Ｓ）−１，４−ペンタンジオール２．６ｇを得た（収率：１００％）。また、実施例１と同様の方法で光学純度を測定したところ、９９％ｅｅ以上であった。
１Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ１．２１（３Ｈ，ｄ）、１．４−１．６（４Ｈ，ｍ）、２．６−３．０（２Ｈ，ｂｒｓ）、３．６７（２Ｈ，ｍ）、３．８６（１Ｈ，ｍ）。
（実施例４）（Ｓ）−１，４−ペンタンジオールの製造
組換え大腸菌ＨＢ１０１（ｐＮＴＲＳ）受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−０８５４５を、５００ｍＬ容坂口フラスコ中で滅菌した５０ｍＬの２×ＹＴ培地（トリペプトン１．６％、イーストエキス１．０％、ＮａＣｌ ０．５％、硫酸亜鉛７水和物５０ｍｇ、ｐＨ＝７．０）に接種し、３０℃で４０時間振とう培養した。得られた培養液５０ｍＬにグルコース脱水素酵素（天野エンザイム社製）１，０００ｕｎｉｔｓ、実施例２で得られた５−ヒドロキシ−２−ペンタノン５．０ｇを含む水溶液（６４ｇ）、ＮＡＤ２．５ｍｇ、グルコース１３．２ｇを添加し、７．５Ｍの水酸化ナトリウム水溶液を滴下することによりｐＨ６．５に調整しながら、３０℃で２４時間攪拌した。反応終了後、反応液に酢酸エチル１００ｍＬを加えて抽出し、有機相を減圧下で留去後、シリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製し、油状の（Ｓ）−１，４−ペンタンジオール５．０ｇを得た（収率：１００％）。また、実施例１と同様の方法で光学純度を測定したところ、９９％ｅｅ以上であった。
組換え大腸菌ＨＢ１０１（ｐＮＴＲＳ）受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−０８５４５を、５００ｍＬ容坂口フラスコ中で滅菌した５０ｍＬの２×ＹＴ培地（トリペプトン１．６％、イーストエキス１．０％、ＮａＣｌ ０．５％、硫酸亜鉛７水和物５０ｍｇ、ｐＨ＝７．０）に接種し、３０℃で４０時間振とう培養した。得られた培養液５０ｍＬにグルコース脱水素酵素（天野エンザイム社製）１，０００ｕｎｉｔｓ、実施例２で得られた５−ヒドロキシ−２−ペンタノン５．０ｇを含む水溶液（６４ｇ）、ＮＡＤ２．５ｍｇ、グルコース１３．２ｇを添加し、７．５Ｍの水酸化ナトリウム水溶液を滴下することによりｐＨ６．５に調整しながら、３０℃で２４時間攪拌した。反応終了後、反応液に酢酸エチル１００ｍＬを加えて抽出し、有機相を減圧下で留去後、シリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製し、油状の（Ｓ）−１，４−ペンタンジオール５．０ｇを得た（収率：１００％）。また、実施例１と同様の方法で光学純度を測定したところ、９９％ｅｅ以上であった。
（実施例５）（Ｓ）−１，４−ビス（メタンスルホニルオキシ）ペンタンの製造
実施例３にて製造した（Ｓ）−１，４−ペンタンジオール２．５ｇ（２４ｍｍｏｌ）、トルエチルアミン７．３ｇ（７２ｍｍｏｌ）、酢酸エチル３０ｍＬからなる溶液を５℃に冷却し、塩化メタンスルホニル６．６ｇ（５８ｍｍｏｌ）を加えて１時間攪拌した。飽和炭酸水素ナトリウム水溶液１５ｍＬを加えて洗浄し、有機層を更に水１５ｍＬで洗浄、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、減圧下に溶媒を留去することにより、（Ｓ）−１，４−ビス（メタンスルホニルオキシ）ペンタンを淡黄色油状物として得た（６．１ｇ、収率：９８％）。
１Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ１．４５（３Ｈ，ｄ）、１．７−２．０（４Ｈ，ｍ）、３．０３（６Ｈ，ｓ）、４．２７（２Ｈ，ｍ）、４．８６（１Ｈ，ｍ）。
実施例３にて製造した（Ｓ）−１，４−ペンタンジオール２．５ｇ（２４ｍｍｏｌ）、トルエチルアミン７．３ｇ（７２ｍｍｏｌ）、酢酸エチル３０ｍＬからなる溶液を５℃に冷却し、塩化メタンスルホニル６．６ｇ（５８ｍｍｏｌ）を加えて１時間攪拌した。飽和炭酸水素ナトリウム水溶液１５ｍＬを加えて洗浄し、有機層を更に水１５ｍＬで洗浄、無水硫酸マグネシウムで乾燥後、減圧下に溶媒を留去することにより、（Ｓ）−１，４−ビス（メタンスルホニルオキシ）ペンタンを淡黄色油状物として得た（６．１ｇ、収率：９８％）。
１Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ１．４５（３Ｈ，ｄ）、１．７−２．０（４Ｈ，ｍ）、３．０３（６Ｈ，ｓ）、４．２７（２Ｈ，ｍ）、４．８６（１Ｈ，ｍ）。
（実施例６）（Ｒ）−１−ベンジル−２−メチルピロリジンの製造
実施例５にて製造した（Ｓ）−１，４−ビス（メタンスルホニルオキシ）ペンタン２．４９ｇ（９．６ｍｍｏｌ）とベンジルアミン５．１３ｇ（４７．９ｍｍｏｌ）を７０℃、３時間攪拌した。酢酸エチル３０ｍＬ、２０重量％水酸化ナトリウム水溶液４．０ｇを加えて抽出し、有機層を減圧濃縮することにより、黄色油状物を得た。このものをシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製することにより、（Ｒ）−１−ベンジル−２−メチルピロリジンを淡黄色油状物として得た（１．８３ｇ、収率：１００％）。
１Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ１．１７（３Ｈ，ｄ）、１．４５（１Ｈ，ｍ）、１．６−１．８（２Ｈ、ｍ）、１．９３（１Ｈ，ｍ）、２．０９（１Ｈ，ｄｄ）、２．３８（１Ｈ，ｄｑ）、２．８９（１Ｈ，ｄｄ）、３．１３（１Ｈ，ｄ）、４．０２（１Ｈ，ｄ）、７．２−７．４（５Ｈ，ｍ）。
実施例５にて製造した（Ｓ）−１，４−ビス（メタンスルホニルオキシ）ペンタン２．４９ｇ（９．６ｍｍｏｌ）とベンジルアミン５．１３ｇ（４７．９ｍｍｏｌ）を７０℃、３時間攪拌した。酢酸エチル３０ｍＬ、２０重量％水酸化ナトリウム水溶液４．０ｇを加えて抽出し、有機層を減圧濃縮することにより、黄色油状物を得た。このものをシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製することにより、（Ｒ）−１−ベンジル−２−メチルピロリジンを淡黄色油状物として得た（１．８３ｇ、収率：１００％）。
１Ｈ−ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ１．１７（３Ｈ，ｄ）、１．４５（１Ｈ，ｍ）、１．６−１．８（２Ｈ、ｍ）、１．９３（１Ｈ，ｍ）、２．０９（１Ｈ，ｄｄ）、２．３８（１Ｈ，ｄｑ）、２．８９（１Ｈ，ｄｄ）、３．１３（１Ｈ，ｄ）、４．０２（１Ｈ，ｄ）、７．２−７．４（５Ｈ，ｍ）。
Claims (10)
- 下記式（１）：
- 前記酵素源が、前記式（１）で表される化合物をＳ選択的に還元する活性を有し、かつ、ロドコッカス（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ）属、又はロドトルラ（Ｒｈｏｄｏｔｏｒｕｌａ）属に属する微生物の培養物及び／又はこれらの微生物から得られる酵素である、請求項１に記載の製造法。
- 前記Ｓ選択的な酵素源が、ロドコッカス・スピーシーズ（Ｒｈｏｄｏｃｏｃｃｕｓ ｓｐ．）、又はロドトルラ・グルチニス（Ｒｈｏｄｏｔｏｒｕｌａ ｇｌｕｔｉｎｉｓ）の培
養物及び／又はこれらの微生物から得られる酵素である、請求項２に記載の製造法。 - 前記Ｓ選択的な酵素源が、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＲＳ）（ＦＥＲＭ ＢＰ−０８５４５）、又はＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＲＧＧ１）（ＦＥＲＭ ＢＰ−７８５８）の培養物、及び／又はこれらの微生物から得られる酵素である、請求項３に記載の製造法。
- 前記酵素源が、前記式（１）で表される化合物をＲ選択的に還元する活性を有し、かつ、キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属、又はデボシア（Ｄｅｖｏｓｉａ）属に属する微生物の培養物及び／又はこれらの微生物から得られる酵素である、請求項１に記載の製造法。
- 前記Ｒ選択的な酵素源が、キャンディダ・マリス（Ｃａｎｄｉｄａ ｍａｌｉｓ）、キャンディダ・マグノリエ（Ｃａｎｄｉｄａ ｍａｇｎｏｌｉａｅ）、又はデボシア・リボフラビナ（Ｄｅｖｏｓｉａ ｒｉｂｏｆｌａｖｉｎａ）の培養物及び／又はこれらの微生物から得られる酵素である、請求項５に記載の製造法。
- 前記Ｒ選択的な酵素源がＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＳ１Ｇ）（ＦＥＲＭ ＢＰ−５８３５）、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＦＰＧ）（ＦＥＲＭ ＢＰ−７１１７）、又はＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＨＢ１０１（ｐＮＴＤＲＧ１）（ＦＥＲＭ ＢＰ−０８４５８）の培養物及び／又はこれらの微生物から得られる酵素である、請求項６に記載の製造法。
- 下記式（５）：
- 請求項１〜８のいずれかに記載の方法により前記式（２）で表される光学活性１，４−ペンタンジオールを製造した後、当該化合物（２）をスルホニル化することにより、下記式（３）：
- Ｒ１がメチル基又は４−メチルフェニル基であり、Ｒ２がベンジル基である請求項９に記載の製造法。
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