JP4588763B2 - クロストリジウム・ディフィシル(Clostridiumdifficile)毒素に対する抗体およびその使用 - Google Patents
クロストリジウム・ディフィシル(Clostridiumdifficile)毒素に対する抗体およびその使用 Download PDFInfo
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Description
本出願は、2004年2月6日に出願した米国仮特許出願第60/542,357号および2004年9月28日に出願した米国仮特許出願第60/613,854号の優先権を主張し、これらの全内容は参照により本明細書に組み入れられる。
クロストリジウム・ディフィシル(C.ディフィシル)は、ヒトの消化器疾患を引き起こすグラム陽性菌である。C.ディフィシルは入院患者の感染性下痢の最大の原因であり、また全体的に見て、最も頻度の高い院内感染の1つである(Kelly et al., New Eng. J. Med., 330:257-62, 1994(非特許文献1))。実際に、この病原体と関連する疾患は、米国において1年に300万人もの入院患者を苦しめていると考えられる(McFarland et al., New Eng. J. Med., 320:204-10, 1989;Johnson et al., Lancet, 336:97-100, 1990(非特許文献2))。
本発明は一つには、C.ディフィシル毒素Aに対する抗体の対象への投与が、インビボにおいてC.ディフィシル媒介性疾患の再発から対象を防御し得るという発見に基づく。毒素Aおよび毒素Bの一方または両方に対する抗体の投与は、原発性のC.ディフィシル媒介性疾患を予防し得る。C.ディフィシル毒素に対する高親和性抗体は、例えば、ヒト免疫グロブリン遺伝子断片を発現するトランスジェニックマウスなどのマウスで産生され得る。これらの抗体は、インビトロで毒素の細胞毒性を中和し得、またインビボで毒素の腸内毒性を中和し得る。毒素Aおよび/または毒素Bを認識する抗体は、インビボで疾患を抑制し得るおよび防ぎ得る。
明細書および特許請求の範囲の明確な理解を提供するため、次の定義を以下に適宜提供する。
「毒素A」という用語は、C.ディフィシルがコードする毒素Aタンパク質を指す。C.ディフィシル毒素Aのアミノ酸配列(配列番号:41)は、GenBank(登録商標)にアクセッション番号A37052、バージョンGI 98593として提供されている(図22も参照のこと)。「毒素B」とは、C.ディフィシルがコードする毒素Bタンパク質を指す。C.ディフィシル毒素Bのアミノ酸配列(配列番号:42)は、GenBank(登録商標)にアクセッション番号S70172、バージョンGI 7476000として提供されている(図23も参照のこと)。「タンパク質」は「ポリペプチド」と互換的に用いられる。
C.ディフィシルは、ヒトに抗生物質起因性下痢および大腸炎を引き起こすグラム陽性の毒素産生細菌である。本明細書に、C.ディフィシル関連疾患(CDAD)を治療および予防するための方法および組成物を提供する。組成物は、C.ディフィシルによって産生される毒素(例えば、毒素Aおよび毒素B)を認識する抗体をはじめとする、C.ディフィシル細菌のタンパク質および他の分子成分(例えば、脂質、炭水化物、核酸)を認識する抗体を含む。特定の態様において、これらのヒトモノクローナル抗体は、ヒト免疫グロブリン遺伝子断片を発現するマウスで産生される(以下に記載)。抗毒素抗体の組み合わせもまた提供する。
免疫原
一般に、抗体を産生させるために、動物をC.ディフィシルによって発現される抗原で免疫する。抗毒素抗体を産生させるには、動物を不活化毒素またはトキソイドで免疫する。毒素は、例えばホルムアルデヒド、グルタルアルデヒド、過酸化物、または酸素処理によって不活化し得る(例えば、Relyveld et al., Methods in Enzymology, 93:24, 1983;Woodrow and Levine, eds., New Generation Vaccines, Marcel Dekker, Inc., New York, 1990を参照されたい)。毒性を低減させた変異体C.ディフィシル毒素は、組換え法によって生成することができる(例えば、米国特許第5,085,862号;第5,221,618号;第5,244,657号;第5,332,583号;第5,358,868号;および第5,433,945号を参照されたい)。例えば、毒素活性部位中に欠失または点突然変異を含む変異体を作製することができる。毒素の組換え断片も免疫原として使用することができる。別のアプローチでは、UDP-ジアルデヒドによる処理によって毒素を不活化する(Genth et al., Inf. and Immun., 68(3):1094-1101, 2000)。この方法は他の処理よりもより容易に毒素の天然構造を保存し、そのため天然毒素に対してより反応性の高い抗体を誘発し得る。この方法は、以下の実施例1においても説明する。
モノクローナル抗体は、ポリクローナル抗体では起こり得ない方法で作製され得る。ポリクローナル抗血清は動物によって異なるのに対し、モノクローナル調製物は均一な抗原特異性を示す。マウス動物系はモノクローナル抗体を作製するのに有用であり、免疫手順、脾細胞の単離および融合の技法、ならびにハイブリドーマを作製する方法および試薬は周知である。モノクローナル抗体は、例えば、Kohler and Milstein, Nature, 256: 495, 1975の標準的な体細胞ハイブリダイゼーション法のような慣用的なモノクローナル抗体方法をはじめとする、様々な技法によって作製され得る。一般的に、Harlow, E. and Lane, D. Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, 1988を参照されたい。
毒素Aに特異的に結合するヒトモノクローナル抗体には、本明細書に記載する3D8、1B11、および3H2クローンによって産生される抗体が含まれる。3D8、1B11、および3H2の可変重鎖および可変軽鎖領域と少なくとも80%またはそれ以上同一である可変重鎖および可変軽鎖領域を有する抗体もまた毒素Aと結合し得る。関連する態様において、抗毒素A抗体は、例えば、3D8、1B11、または3H2の可変重鎖および/または可変軽鎖の相補性決定領域(CDR)を含む。これらのクローンの可変重鎖領域のCDRを以下の表1に示す。
毒素Bに特異的に結合するヒトモノクローナル抗体には、本明細書に記載する124-152、2A11、および1G10クローンによって産生される抗体が含まれる。-152、2A11、および1G10の可変重鎖および可変軽鎖領域と少なくとも80%またはそれ以上同一である可変重鎖および可変軽鎖領域を有する抗体もまた毒素Bと結合し得る。関連する態様において、抗毒素B抗体は、例えば、-152、2A11、または1G10の可変重鎖および/または可変軽鎖の相補性決定領域(CDR)を含む。これらのクローンの可変重鎖領域のCDRを以下の表3に示す。
多くの異なる形態の抗毒素抗体が、CDADの抑制に有用であり得る。抗体は、IgG(例えば、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4)、IgM、IgA1、IgA2、IgD、またはIgEを含む種々のアイソタイプのものであってよい。好ましくは、抗体はIgGアイソタイプ、例えばIgG1である。抗体分子は全長であってよく(例えば、IgG1またはIgG4抗体)、または抗原結合部分のみを含んでもよい(例えば、Fab、F(ab')2、Fv、または一本鎖Fv断片)。これらには、モノクローナル抗体(例えば、ヒトモノクローナル抗体)、組換え抗体、キメラ抗体、およびヒト化抗体、ならびにこれらの抗原結合部分が含まれる。
抗毒素抗体は、種々の周知の技法によって毒素に対する結合に関して特徴づけし得る。抗体は典型的に、まずELISAによって特徴づける。簡潔に説明すると、マイクロタイタープレートにPBSに溶解した毒素またはトキソイド抗原をコーティングし、次いでPBSに希釈したウシ血清アルブミン(BSA)などの非関連タンパク質でブロッキングし得る。毒素免疫マウスの血漿の希釈物を各ウェルに添加し、37℃で1〜2時間インキュベートする。プレートをPBS/Tween 20で洗浄し、次いでアルカリホスファターゼ結合ヤギ抗ヒトIgG Fc特異的ポリクローナル試薬と共に、37℃で1時間インキュベートする。洗浄した後、プレートをABTS基質で発色させ、405のODで解析する。好ましくは、最も高い力価を生じるマウスを融合に使用する。
別の局面において、本発明は、薬学的に許容される担体と共に製剤化された、本明細書に記載の抗体分子またはその抗原結合部分を含む組成物、例えば薬学的に許容される組成物を提供する。
新たなタンパク質および抗体は、インビトロおよびインビボで治療的、予防的、および診断的有用性を有する。例えば、これらの抗体は、C.ディフィシルおよびC.ディフィシル関連疾患を治療、抑制、その再発を防ぐ、および/または診断するために、例えばインビトロもしくはエクスビボで培養細胞に、または例えばインビボで対象に投与することができる。
抗毒素抗体(例えば、モノクローナル抗体)は、アフィニティークロマトグラフィーまたは免疫沈降などの標準的な技法によって毒素を単離するために使用することができる。さらに、抗毒素抗体は、例えば、C.ディフィシルの存在に関して試料をスクリーニングする目的で、(例えば、便試料中の)毒素を検出するために使用することができる。抗毒素抗体は、例えば所与の治療計画の有効性を決定する目的で、臨床試験手順の一部として組織中の毒素レベルをモニターするために診断上使用することができる。
特に明記しない限り、実施例を通して以下の材料および方法を使用した。
一般に、本発明の実施においては、特記しない限り、化学、分子生物学、組換えDNA技術、免疫学(特に、例えば抗体技術)の慣用的技法、およびポリペプチド調製における標準的な技法を使用する。例えば、Sambrook, Fritsch and Maniatis, Molecular Cloning: Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989);Antibody Engineering Protocols (Methods in Molecular Biology), 510, Paul, S., Humana Pr (1996);Antibody Engineering: A Practical Approach (Practical Approach Series, 169), McCafferty, Ed., Irl Pr (1996);Antibodies: A Laboratory Manual, Harlow et al., C.S.H.L. Press, Pub. (1999);およびCurrent Protocols in Molecular Biology, eds. Ausubel et al., John Wiley & Sons (1992)を参照されたい。
本発明を以下の実施例においてさらに説明するが、本実施例は特許請求の範囲に記載される本発明の範囲を制限するものではない。
C.ディフィシル毒素Aは、Techlab, Inc.(バージニア州、ブラックスバーグ)から入手するか、または組換え産生によって得た。毒素は精製し、免疫する前に不活化した。不活化は、天然毒素の構造を保存しつつ触媒残基をアルキル化する反応性UDP-ジアルデヒドで処理することによって行った。詳細な手順については、Genth et al., Inf and Immun. 68(3):1094-1101, 2000を参照されたい。簡潔に説明すると、緩衝液中で精製毒素AをUDP-2',3'-ジアルデヒド(0.1〜1.0 mM)と共に37℃で18時間インキュベートし、未反応のUDP-2',3'-ジアルデヒドを除去するために100 kDaカットオフフィルターを通してろ過し、さらに緩衝液で洗浄した。不活化毒素A(トキソイドA)を免疫に使用した。
毒素Aに対する各抗体の結合を、標準的な技法を用いてELISAにより決定した。このアッセイの結果を図5に示す。3D8、1B11、および33.3H2によって産生される抗体を、毒素A結合活性を有する4つめのヒトモノクローナル抗体、8E6と比較した。図5から、抗体が同程度の親和性で毒素Aと結合することが示される。
1B11、3D8、および33.3H2ハイブリドーマによって発現される抗体を、インビトロで毒素A中和活性について試験した。細胞を円形化し、細胞培養皿への接着性を失わせる種々の濃度の毒素Aの存在下で、細胞をインキュベートした。細胞を目視観察することにより、細胞変性効果(CPE)を判定した。目視観察の結果に基づき、0〜4のCPEスコアを決定した(4=100%細胞毒性、0=0%毒性)。これらのアッセイの結果を図6Aおよび6Bに示す。ヒト肺線維芽細胞株、IMR-90およびヒト腸上皮細胞株、T-84に対する毒性の中和を決定した。図6Aから、すべての抗体がIMR-90細胞に対して中和能を有したことが示される。IMR-90細胞に対する毒素A細胞毒性の相対的中和活性は、1B11 > 3H2 > 3D8であった。興味深いことに、ヒト結腸上皮細胞であるT-84細胞に対しては、相対的中和活性は3D8 > 1B11 > 3H2であった(図6A)。T-84細胞は、他の細胞種よりも毒素Aに対する感受性が高いと考えられている。T-84細胞は、毒素A細胞毒性を判定するためのより関連性の高い標的細胞を提供し得る。
各モノクローナル抗体が結合する毒素Aのエピトープをウェスタンブロッティングによって決定した。酵素ドメイン(すなわち、毒素Aのアミノ酸1〜659)、受容体結合ドメイン(すなわち、毒素Aのアミノ酸1853-2710)、およびその間の2つの領域(すなわち、毒素Aのアミノ酸660〜1255および1256〜1852)を示す毒素Aの4つの断片を発現する組換え大腸菌クローンを構築した。C.ディフィシル株ATCC 43255から調製したゲノムDNAから、毒素A遺伝子の適切な部分をPCR増幅した。pETベクターを用いて断片をクローニングし、発現させるためにBL21 DE3細胞に形質転換した。このベクターは、誘導発現ならびに精製(すなわち、Hisタグ)および検出(すなわち、V5エピトープタグ)のための親和性ドメインを提供する。IPTGで発現を誘導し、アフィニティークロマトグラフィーにより断片を精製した。毒素Aの4つの異なる断片に対する結合を測定した:断片1はアミノ酸1〜659に相当した;断片2はアミノ酸660〜1255に相当した;断片3はアミノ酸1256〜1852に相当した;および断片4はアミノ酸1853-2710に相当した(図7)。1B11は断片1および2と反応した。33.3H2は断片2と反応した。3D8および別のヒトモノクローナル抗体、6B4は、断片4(受容体結合ドメイン)と反応した。毒素Aで免疫したウサギによるポリクローナル抗血清は、4つの断片すべてと反応した。
各抗体を、致死量の毒素Aによる攻撃からマウスを防御する能力について試験した。それぞれ体重10〜20グラムのSwiss Webster雌マウスの腹腔内に、毒素Aによる攻撃の前に、最大250μgの3D8、1B11、もしくは33.3H2、または対照抗体(抗呼吸器合胞体ウイルス抗体、MedImmune)を注射した。注射から約24時間後、致死量(LD50)の10倍を超える毒素Aの用量、典型的に100 ngでマウスを攻撃した。次の7日間、毒性の徴候について動物を観察した。これらの実験の結果を図9に要約する。データは生存率として表す。括弧内の数字は、250μg以外の用量を与えた場合の抗体用量を指す。図9から、各抗体は、致死的毒素A攻撃からマウスをある程度防御し得ることが示される。3D8で処置した場合のマウス生存率は、10〜100パーセントであった。33.3H2で処置した場合のマウス生存率は、20〜100パーセントであった。1B11で処置した場合のマウス生存率は、0〜60パーセントであった。これらのモノクローナルがマウスを保護する相対的能力は、3H2 > 3D8 > 1B11であった。
マウス回腸係蹄モデルにおいて、3D8および33.3H2抗体を毒素A腸内毒性の中和について試験した。このモデルでは、マウス腸内の毒素A誘導性液体貯留を測定する。これらの実験を行うため、各マウスを16時間飢餓状態にし、麻酔し、盲腸の隣の回腸を露出した。3〜5センチメートルの係蹄を各末端で二重に結紮し、毒素A 10μgを注射した。回腸係蹄を腹腔に戻し、傷を閉鎖して、動物を回復させた。手術から4時間後、動物を安楽死させ、動物から係蹄を摘出した。各部分の長さを再度測定し、腔内の液体を抽出した。各ループについて、液体の量、およびミリリットル/センチメートルでの体積対長さ(V:L)比を算出した。被験マウスには、手術の1〜2日前に抗体を非経口投与した。これらの実験の結果を図10に示す。毒素Aの注射により、腸液の重量対長さの比が50%増加した。3D8および33.3H2はいずれも、この液体貯留の増加を妨げた。どちらの抗体を投与したマウスも、毒素Aを注射しなかったマウスと同等の重量対長さの比を有した。したがって、3D8および33.3H2はインビボにおいて腸内液体貯留を防ぐ。
ハムスター再発モデルにおいて3D8を試験した。ハムスターはC.ディフィシル毒素の毒性作用に対して感受性があり、典型的にC.ディフィシルの存在下においてクリンダマイシンの単回投与の2〜3日以内に死亡する。ハムスターにおいて3D8の有効性を試験するため、再発モデルを使用した。このモデルにおいて、ハムスターにクリンダマイシンを投与し、その翌日にC.ディフィシルB1胞子を投与した。対照ハムスターの第1セットには、さらなる抗生物質も抗体も投与しなかった。対照ハムスターの第2セットは、10 mg/kg/日バンコマイシンで処置した。バンコマイシンは、C.ディフィシル疾患の治療で用いられる抗生物質である。図11Aに示すように、ハムスターの試験セットに、図中に矢印で示したC.ディフィシル汚染後の7日間、それぞれ10 mg/kg/日バンコマイシンおよび毒素Aに対して産生された2 mg/kg/日のウサギポリクローナル抗血清を投与した。ハムスターの第2試験セットには、10 mg/kg/日バンコマイシンおよび50 mg/kg/日3D8を同じ時間間隔で投与した。ハムスターの生存度を時間に対してプロットし、これを図11Bに示す。
3D8抗体の可変重鎖および軽鎖をコードする核酸配列を、標準的な組換えDNA方法を用いてpIE-Uγ1Fベクターにクローニングした。ベクターを大腸菌中で増幅し、精製し、CHO-dg44細胞にトランスフェクションした。トランスフェクションした細胞を96ウェルディッシュにウェル当たり4 x 105細胞でプレーティングし、G418でベクターのトランスフェクションについて選択した。1D3と命名した1つのクローンがG418耐性によって最初に選択され、次いでこれを他のトランスフェクトーマと共にIgGの産生についてアッセイした。1D3は、数回の拡大を通して、他のトランスフェクタントよりも高レベルのIgG産生を有した。メトトレキセートの濃度を増していきながら培養することによって、3D8抗体の発現を増幅した。175 nMメトトレキセート中で増殖し得る培養物を、さらなる開発のために単一細胞のクローニング用に選択した。培養物を低密度で96ウェルプレートにプレーティングすることで、単一細胞またはクローンから生じる培養物の作製を可能にした。培養物をヒトIgGの産生についてスクリーニングし、最も高レベルのIgGを産生する細胞をさらなる使用に選択した。メトトレキセート増幅クローンを拡大して、複数の細胞凍結バイアルを含む細胞バンクを作製した。
2匹のNubianヤギ(#330および#331)の筋肉内に、50μg UDPジアルデヒド不活化毒素B(Techlab)および完全フロイントアジュバントを注射した。2週間間隔で、フロイント不完全アジュバントと共に25μgトキソイドBの追加免疫用量を筋肉内に投与した。4回免疫した後、試験血液を採取した。毒素Aおよび毒素Bに対するELISA反応性ならびにこれらに対する細胞毒性の中和についてアッセイし、血清の特異性および交差反応性を測定した。
実施例7のハムスター再発モデルに記載したように、ハムスター群(n = 20)をクリンダマイシンおよびC.ディフィシルで攻撃し、その後バンコマイシンで処置した。バンコマイシン処置後、1日に2回、抗体(3D8、ヤギ#331の血清、3D8およびヤギ#331の血清)を投与した(図14)。生存(図15)および疾病(図16)に関して動物をモニターした。抗体用量は、ヤギ#331の血清については1 mlを1日に2回、および3D8については3 mgを1日に2回であった。バンコマイシンのみを投与した動物(すなわち、抗体処置なし)を陰性対照とした。以前に観察されたように、3D8およびバンコマイシン処置のみでは部分的な防御効果が示され、20匹の動物のうち10匹が致死性から防御された(図15)。この群の動物の50%が健康を維持した(図16)。バンコマイシン処置のみを施した動物20匹のうち6匹が防御された(図15)。30パーセントが健康を維持した(図16)。ヤギ血清を単独で使用した場合にも、部分的な防御(9/20の動物が防御された)が認められた(図15)。40パーセントが健康を維持した。ヤギ血清および3D8の両方を共に投与した場合、防御はほぼ100%まで上昇し(18/20)、疾患の発症は遅延した(図15)。これらの動物の90%が健康を維持した(図16)。明らかに、疾病の防止は致死性の防止に似たパターンに従った。これらのデータから、3D8は、毒素Bをさらに中和した場合、ハムスター疾患モデルにおいて十分に防御的であり得ることが示される。
大腸菌で発現させた毒素BのCOOH末端断片(毒素Bの1777〜2366に相当する)10μgを、アジュバントとしてRIBIを使用して、ハムスターの腹腔内に免疫した。動物に毒素B抗原を7回投与した。試験した動物において、中和抗体応答を観察した。実施例7のハムスター再発モデルに記載したように、免疫ハムスター群をクリンダマイシンおよびC.ディフィシルで攻撃し、次いでバンコマイシンで処置した。19匹の動物に対してバンコマイシン処置した後に抗体(3D8、3mg/用量)を1日に2回投与し、処置しなかった陰性対照群(n = 20)と比較した(図17および18)。6匹の動物にはバンコマイシン処置なしで攻撃し、毒素B抗原を免疫したハムスターがC.ディフィシル感染を起こしやすいことを確実にした。生存(図17)および疾病(図18)に関して動物をモニターした。図17から、3D8を投与しなかった免疫動物が、以前に観察された比率と同様の比率で再発したことが示される(65%再発)。3D8を投与した毒素B免疫動物は、以前に観察されたよりもより完全に再発から防御された(10%再発、別の実験における毒素Bを前もって免疫しなかった動物での約50%の再発と比較)。
ハムスターにおけるC.ディフィシル疾患の再発の予防は、直接攻撃(すなわち、バンコマイシン投与なしの攻撃)からの防御よりも示すのが容易であった。ウサギ血清を用いた実験では直接攻撃からの弱い防御しか示さず、3D8は直接攻撃に対して検出可能な影響を及ぼさなかった。3D8は毒素B中和抗体のバックグラウンドにおいてより防御的であったため、3D8および抗毒素B抗血清の併用投与が直接攻撃に起因する疾患を予防し得るかどうかを決定した。図19に示すように、攻撃前に3日間、3D8(3 mg)、3D8(3 mg)およびヤギ#331(1 ml)血清の組み合わせ、または抗体なしを1日に1度投与した後、5匹のハムスター群を攻撃した。図20のデータから、抗体を投与しなかったまたは3D8もしくはヤギ血清を単独で投与した動物がすべてC.ディフィシル攻撃の48時間以内に死亡したことが示される。3D8およびヤギ血清を両方投与した動物の大部分(80%)が生存し、感染動物は攻撃から10日間生存した。図21より、3D8およびヤギ血清で処置した動物は発病するものの回復したことが示される。これらのデータから、3D8は、毒素Bも同様に中和した場合、ハムスター疾患モデルにおいて十分に防御的であり得るというさらなる証拠が提供される。このモデルにおいて、C.ディフィシル疾患からの最適な防御には、毒素Aに加えて毒素Bの中和が必要であった。
C.ディフィシル毒素Bは、Techlab, Inc.(バージニア州、ブラックスバーグ)から入手するか、または組換え産生によって得た。毒素は精製し、免疫する前に不活化した。不活化は、天然毒素の構造を保存しつつ触媒残基をアルキル化する反応性UDP-ジアルデヒドで処理することによって行った。簡潔に説明すると、緩衝液中で精製毒素BをUDP-2',3'-ジアルデヒド(0.1〜1.0 mM)と共に37℃で18時間インキュベートし、未反応のUDP-2',3'-ジアルデヒドを除去するために100 kDaカットオフフィルターを通してろ過し、さらに緩衝液で洗浄した。不活化毒素B(トキソイドB)または組換え毒素B断片を免疫に使用した。毒素B受容体結合ドメイン(アミノ酸残基1777〜2366)は、ニッケルキレートアフィニティークロマトグラフィーを用いて親和性精製するために、免疫タグ(ヘキサヒスチジン)を含む融合タンパク質として大腸菌で発現させた(断片4と命名;実施例11を参照)。
毒素Bに対する各抗体の結合を、標準的な技法を用いてBiacoreにより決定した。このアッセイの結果を表6に示す。124-152;2A11;および1G10よって産生される抗体を、適切な対照と比較した。
124-152;2A11;および1G10ハイブリドーマによって発現される抗体を、インビトロで毒素B中和活性について試験した。毒素Bへの曝露後に細胞を円形化から妨げる毒素Bに特異的な様々な濃度のモノクローナル抗体の存在下で細胞をインキュベートした。細胞を目視観察することにより、細胞変性効果(CPE)を判定した。目視観察の結果に基づき、0〜4のCPEスコアを決定した(4=100%細胞毒性、0=0%毒性)。これらのアッセイの結果を図27に示す。ヒト肺線維芽細胞株、IMR-90に対する毒性の中和。図27から、すべての抗体がIMR-90細胞に対して中和能を有したことが示される。IMR-90細胞に対する毒素A細胞毒性の相対的中和活性は、124-152 > 1G10 > 2A11であった。
C.ディフィシル接種の直接攻撃(-1日目におけるクリンダマイシンおよび0日目におけるC.ディフィシル胞子(1/100,000希釈))からの防御を、抗毒素B抗体の存在下または非存在下において4〜10日間にわたって実施した。図24に示すように、攻撃前に3日間、3D8(4日間にわたって全部で20 mg)、3D8(同上)およびヤギ#331(3 ml)血清の組み合わせ、3D8および抗毒素B抗体124-152(4日間にわたって全部で18 mg)、2A11(4日間にわたって全部で20mg)、もしくは1G10(4日間にわたって全部で20 mg)の組み合わせ、または抗体なしを1日に1度投与した後、5匹のハムスター群を攻撃した。図24のデータから、抗体を投与しなかったまたは3D8もしくはヤギ血清を単独で投与した動物がすべてC.ディフィシル攻撃の72時間以内に死亡するのに対して、3D8および抗毒素B抗体を投与した動物、好ましくは124-152と併用して投与した動物は、40%生存率を有した(図24)。抗毒素B抗体124-152の増加量を使用して(-3、-2、-1、および0日目に0.56 mg、1.7 mg、または5.0 mgを投与)、前述の研究(しかし、より希釈したC.ディフィシル接種材料を使用)に類似した10日間の研究を実施した。3D8およびヤギ血清の両方を投与した動物は生存し、また3D8を124-152と併用して投与した場合には、大部分の動物(60%〜70%)が攻撃後10日間生存した。最も低用量の抗毒素B抗体124-152(3D8と併用した0.56 mg)でさえ、非常に有効であった(70%生存;図25を参照)。結果から、124-152および3D8は単独では併用して使用した場合よりも有効性が低く、併用した場合には、実際に相加性を超えて相乗的治療結果が達成される(図24〜26)。これらのデータから、抗毒素B抗体は、特に抗毒素A抗体3D8と併用した場合に非常に有効であるというさらなる証拠が提供される。このモデルにおいて、毒素Aに加えて毒素Bの中和がC.ディフィシル疾患からの防御を提供すると決定された。
各モノクローナル抗体が結合する毒素Bのエピトープをウェスタンブロッティングによって決定した。毒素Bの様々なドメインを表す毒素Bの断片を発現する組換え大腸菌クローンを構築した。適切なC.ディフィシル株から調製したDNAから、毒素B遺伝子の適切な部分をPCR増幅した。断片を発現ベクターにクローニングし、大腸菌で発現させた。結合エピトープをマッピングするため、ウェスタンブロットにおいてヒトモノクローナル抗体152を用いて毒素B断片をプロービングした。毒素B遺伝子の部分を含む大腸菌から毒素Bタンパク質断片を単離し、SDS-PAGEを用いて分離した。電気泳動した後、毒素B断片をニトロセルロースに転写し、モノクローナル抗体152、次いでアルカリホスファターゼ結合ヤギ抗ヒトでプロービングし、MAb152結合を検出した。HuMab 152は、アミノ酸1777と2366の間の毒素BのCOOH断片部分に結合すると決定された(例えば、図32を参照されたい)。
本発明の多くの態様について記載した。それにもかかわらず、本発明の精神および範囲から逸脱することなく、様々な修飾がなされ得ることが理解されよう。したがって、他の態様も特許請求の範囲の範囲内に含まれる。
Claims (23)
- それぞれ、配列番号:1及び4、または配列番号:2及び5のアミノ酸配列を含む重鎖及び軽鎖可変領域を含む、単離されたモノクローナル抗体またはその抗原結合部分。
- それぞれ、配列番号:54及び58のアミノ酸配列を含む重鎖及び軽鎖可変領域を含む、単離されたモノクローナル抗体またはその抗原結合部分。
- ヒト抗体、ヒト化抗体またはキメラ抗体である、請求項1または2記載の単離されたモノクローナル抗体。
- Fab、Fab'2、ScFv、Fd、FvまたはdAbである、請求項1または2記載の抗原結合部分。
- 薬学的に許容される担体中に請求項1または2記載の抗体またはその抗原結合部分を含む、組成物。
- (a)それぞれ、配列番号:1及び4、または配列番号:2及び5のアミノ酸配列を有する重鎖及び軽鎖可変領域を含む、第1のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分、並びに
(b)配列番号54及び配列番号58のアミノ酸配列を有する重鎖及び軽鎖可変領域を含む、第2のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分、
を含む組成物。 - 第1及び第2の抗体が、ヒト抗体、ヒト化抗体またはキメラ抗体である、請求項6記載の組成物。
- 第1及び第2の抗体の抗原結合部分が、Fab、Fab'2、ScFv、Fd、FvまたはdAbである、請求項6記載の組成物。
- 第1及び第2の抗体、またはそれらの抗原結合部分が、インビトロまたはインビボで、C.ディフィシルの毒素A及びC.ディフィシルの毒素Bのそれぞれを中和する、請求項6記載の組成物。
- C.ディフィシル疾患を治療するための請求項6〜9のいずれか一項記載の組成物。
- 対象に静脈内、筋肉内、または皮下投与するための請求項10記載の組成物。
- 対象がヒトである、請求項11記載の組成物。
- 第2の薬剤と併用して投与されることを特徴とする請求項10記載の組成物。
- 第2の薬剤が抗生物質である、請求項13記載の組成物。
- 第2の薬剤がバンコマイシンまたはメトロニダゾールである、請求項13記載の組成物。
- 第2の薬剤がC.ディフィシルワクチンである、請求項13記載の組成物。
- C.ディフィシルが抗生物質起因性下痢、C.ディフィシル媒介性偽膜性大腸炎(PMC)、下痢、またはC.ディフィシル媒介性疾患の再発を引き起こす、請求項10記載の組成物。
- 請求項5〜17のいずれか一項記載の組成物、およびC.ディフィシル媒介性疾患の治療における使用に関する取扱説明書を含むキット。
- 対象のC.ディフィシル疾患を治療するための薬剤の製造における、請求項1〜4のいずれか一項記載の単離されたモノクローナル抗体若しくはその抗原結合部分の使用。
- 対象のC.ディフィシル疾患を治療するための薬剤の製造における、請求項5〜17のいずれか一項記載の組成物の使用。
- 対象がヒトである、請求項19または20記載の使用。
- 該薬剤が対象に静脈内、筋肉内、または皮下投与される、請求項19または20記載の使用。
- C.ディフィシルが抗生物質起因性下痢、C.ディフィシル媒介性偽膜性大腸炎(PMC)、下痢、またはC.ディフィシル媒介性疾患の再発を引き起こす、請求項19または20記載の使用。
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