JP3445269B2 - インスリン様成長因子およびアナログの適用による網膜ニューロン障害の治療 - Google Patents
インスリン様成長因子およびアナログの適用による網膜ニューロン障害の治療Info
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- C07F9/30—Phosphinic acids [R2P(=O)(OH)]; Thiophosphinic acids ; [R2P(=X1)(X2H) (X1, X2 are each independently O, S or Se)]
- C07F9/301—Acyclic saturated acids which can have further substituents on alkyl
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07F—ACYCLIC, CARBOCYCLIC OR HETEROCYCLIC COMPOUNDS CONTAINING ELEMENTS OTHER THAN CARBON, HYDROGEN, HALOGEN, OXYGEN, NITROGEN, SULFUR, SELENIUM OR TELLURIUM
- C07F9/00—Compounds containing elements of Groups 5 or 15 of the Periodic Table
- C07F9/02—Phosphorus compounds
- C07F9/28—Phosphorus compounds with one or more P—C bonds
- C07F9/38—Phosphonic acids [RP(=O)(OH)2]; Thiophosphonic acids ; [RP(=X1)(X2H)2(X1, X2 are each independently O, S or Se)]
- C07F9/3804—Phosphonic acids [RP(=O)(OH)2]; Thiophosphonic acids ; [RP(=X1)(X2H)2(X1, X2 are each independently O, S or Se)] not used, see subgroups
- C07F9/3808—Acyclic saturated acids which can have further substituents on alkyl
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-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
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Description
いて(デルコール(D'Ercole)、1987、ジャーナル・オ
ブ・ディベロップメンタル・フィジオロジー(J.Devel.
Physiol.)、9:481−495)、種々の組織における細胞の
増殖を刺激するように作用するポリペプチドとして種々
の動物種で同定されてきた(バクスター(Baxter)ら、
1988、コンパラティブ・バイオケミストリー・アンド・
フィジオロジー(Comp.Biochem.Physiol.)91B:229−23
5;ダウガデイ(Daughaday)ら、1989、エンドクリン・
レビューズ(Endocrine Rev.)10:68−91)。その各々
が約7500ダルトンの分子量を有するIGFはヒト・プロイ
ンスリンに化学的に関連する;すなわち、それらは、
(1)プロインスリンの対応するドメインに高度に相同
であり、(2)より小さくかつ非関連のCドメインによ
って結合されているAおよびBドメインを保有する。カ
ルボキシ末端伸長であるDドメインもIGFに存在する
が、プロインスリンには見い出されていない。IGFおよ
びインスリン間の機能的相同性も存在する。インスリン
と同様、IGFは、それらが結合する受容体の細胞質ドメ
イン内の特異的チロシン残基のリン酸化を刺激する。
IおよびIGF−II(時々、「ソマトメジンC」および
「ソマトメジンA」と呼ばれる)が、哺乳動物中枢神経
系(CNS)を含めた種々の組織に見い出されており;CNS
におけるこれらのポリペプチドをコードするmRNAの存在
はCNSにおける局所的合成を示唆する(バスキン(Baski
n)ら、1988、TINS 11:107−111)。加えて、IGF−III
[または「脳IGF」、またはIGF−I(4−70)]、後者
の蛋白の3種のN−末端アミノ酸残基を欠くIGF−Iの
切形形態は、胎児および成人ヒト脳(サラ(Sara)ら、
1986、プロシーディングズ・オブ・ナショナル・アカデ
ミー・オブ・サイエンシズ(Proc.Natl.Acd.Sci.)USA
83:4904−4907)ならびに初乳(フランシス(Franci
s)ら、1988、バイオケミカル・ジャーナル(Biochem.
J.)251−95−103)で見い出されている。
いる(ヴァルトビリッヒ・エル・ヤー(Waldbillig,R.
J.)ら、1988、イクスペリメンタル・アイ・リサーチ
(Exp.Eye Res.)47:587−607;マッサーグ・ジェイ(Ma
ssague,J.)およびエム・ピイ・チェク(M.P.Czech.)1
982、ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリ
ー(J.Biol.Chem.)257:5038−5045;レチュラー・エム
・エム(Rechler,M.M.)およびエス・ピイ・ニスレイ
(S.P.Nissley)、1985、エヌ・レブ・バイオロ(Ann.R
ev.Biol.)47:425−442)。細胞膜で見い出されている
受容体は、1のアルファおよび1のベータサブユニット
からなるダイマー、または2つのアルファ/ベータサブ
ユニット対からなるヘテロテトラマーである。IGFは受
容体のダイマー形態に結合するが、機能の活性化はヘテ
ロテトラマー種に結合する際にのみ起こる(トレフソン
・エス・イー(Tollesfsen,S.E.)ら、1991、バイオケ
ミストリー(Biochemistry)30−48−54)。末梢および
脳組織から単離されているIGF受容体は、そのアルファ
サブユニットの分子量が異なり(ヴァルトビリッヒ・エ
ル・ヤー(Waldbillig,R.J.)ら、1988、イクスペリメ
ンタル・アイ・リサーチ(Exp.Eye Res.)47:587−60
7)、脳組織内においてさえ、ニューロン細胞から単離
されたIGF受容体はグリア細胞から単離されたものとは
異なる(バーゲス・エイ・ケイ(Burgess,S.K.)ら、19
87、ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー
(J.Biol.Chem.)262:1618−1622)。これらの相違が機
能または結合特異性の変化に関連するか否かは知られて
いない。最後に、欧州特許出願第86850417.6号はヒト胎
児膜に存在するIGF受容体のもう1つのタイプの証拠を
記載している。
発育または増殖に対して刺激的影響を与えるようである
(ダウガデイ(Daughaday)ら、前掲)。IGF、またはそ
のある種のポリペプチド断片での処理は、骨の修復およ
び置換療法として(欧州特許出願第88303855.6号)、制
癌性薬剤のある種の有害な副作用に抗する手段として
(特願昭63−196524号)、およびウシおよび他の農業動
物における乳生産および肉生産を増加させる手段として
(ラルソン(Larson)ら、米国特許第4,783,524号)種
々に示唆されている。CNSの種々の部分から、および末
梢神経系から得られた細胞に対するIGFの効果が研究さ
れている(アイゼンマン(Aizenman)ら、1987、ブレイ
ン・リサーチ(Brain Research)406:32−42;フェロウ
ズ(Fellows)ら、1987、ソサイェティ・オブ・ニュー
ロサイエンシズ(Soc.Neurosci.)アブストラクト13:16
15;オニファー(Onifer)ら、1987、ソサイェティ・オ
ブ・ニューロサイエンシズ(Soc.Neurosci.)アブスト
ラクト13:1615;欧州特許出願第86850417.6号;ボスウェ
ル(Bothwell)、1982、ジャーナル・オブ・ニューロサ
イエンス・リサーチ(J.Neurosci.Res.)8:225−231;レ
チオ−ピント(Recio−Pinto)ら、1986、ジャーナル・
オブ・ニューロサイエンス(J.Neurosci.)6:1211−121
9)。加えて、IGFは未分化ニューロン様細胞の発育に影
響することが示されている。IGFをヒト・神経芽細胞腫
細胞の増殖培地に添加すると、これらの細胞は神経突起
を延ばし、細胞分裂を受けることが観察されている(レ
チオ−ピント(Recio−Pinto)およびイシイ(Ishi
i)、1988、ジャーナル・オブ・ニューロサイエンス・
リサーチ(J.Neurosci.Res.)19:312−320;マットソン
(Mattson)ら、1986、ジャーナル・オブ・セル・バイ
オロジー(J.Cell Biol.)102:1949−1954)。
誘導し(マックモリス(MacMorris)ら、1985、ジャー
ナル・オブ・ニューロケミストリー(J.Neurochem.)4
4:1242−1251)、乏突起膠細胞の分化および発育を誘導
し(マックモリスおよびドゥボイス−ダルク(McMorris
and Dubois−Dalcq)、1988、ニューロサイエンス・リ
サーチ(Neurocsi.Res.)21:199−209)、胚性脳細胞の
増殖、発育および神経突起の外植を支持する(ネイルセ
ン・エフおよびエス・ガメルトフト(Neilsen,F.and S.
Gammeltoft)、1990、FEBSレターズ(Letters)262:142
−144;スブルジックおよびシューベルト(Svrzic and S
chubert)、1990、バイオケミカル・アンド・バイオフ
ィジカル・リサーチ・コミューニケーションズ(Bioche
m.Biophys.Res.Comm.)172:54−60;トレス−アルウァン
(Torres−Alwman)ら、1990、ニューロサイエンス(Ne
uroscience)35:601−608;レチオ−ピント(Recio−Pin
to)ら、1986、ジャーナル・オブ・ニューロサイエンシ
ズ(J.Neurosci.)6:1211−1219)ことが示されてい
る。
ブ・ドラッグ・レス(Dev.Drug.Res.)22:1−23)およ
びガラス状体液(グラント(Grant)ら、1991、ダイア
ベーテス(Diabetes)35:416−420)中における成人眼
の発育で共に見い出されている。ヨウ素標識ペプチドを
用いるラジオオートグラフィーの研究により、ブドウ膜
管、脈絡膜、水晶体、強膜および網膜内のIGF結合部位
が明らかにされた(バッサス(Bassas)ら、1989、エン
ドクリノロジー(Endocrinology)125:1255−2320;バス
ネットおよびビーベ(Bassnett and Beebe)、1990、イ
ンベスト・オフサルモル・ビス・サイ(Invest.Ophthal
mol.Vis.Sci.)31:1637−1643;ウァルドビリッヒ(Wald
billig)ら、1990、インベスト・オフサルモル・ビス・
サイ(Invest.Ophthalmol.Vis.Sci.)31:1015−102
2)。成人の網膜において、IGF−I結合部位は、棹状体
外部セグメントを含めた、核層、および光受容体領域に
特異的に位置しているらしいが(オクラント(Ocrant)
ら、1989、エンドクリノロジー(Endocrinology)125:2
407−2413;ウァルドビリッヒ(Waldbillig)ら、1989、
エクスプ・アイ・レス(Exp.Eye.Res.)47:587−607;ジ
ック(Zick)ら、1987、ジャーナル・オブ・バイオロジ
カル・ケミストリー(J.Biol.Chem.)262:10259−1026
4)、IGF−II受容体に免疫学的に関連する蛋白は網膜色
素上皮細胞で証明されている(オクラント(Ocrant)
ら、1989、エンドクリノロジー(Endocrinology)125:2
407−2413)。IGF−IおよびIGF−II mRNAレベルは、眼
の網膜内で最高である(ダニアスおよびスチリアノポウ
ロウ(Danias and Stylianopoulou)、1990、カル・ア
イ・レス(Curr.Eye Res.)9:379−386)。しかしなが
ら、眼におけるIGFの機能は未知であり、網膜におけるI
GF結合部位は十分に特徴付けされていない。従って、こ
れらの部位が現実にIGF受容体として機能するか否か、
すなわち、それらが生物学的応答を媒介するか否かはま
だ知られていない。
(ビーベ(Beebe)ら、1986、プログ・デブ・バイオル
(Prog.Dev.Biol.)パートA:365−369;パルメーレおよ
びビーベ(Parmelee and Beebe)、1986、ジャーナル・
オブ・セリュラー・フィジオロジー(J.Cell Phys.)13
4;491−496)、外部および内部棹状体セグメントはIGF
結合部位を含有すること(ヴァルトビリッヒ(Walbilli
g)ら、1988、エクスペンメンタル・アイ・リサーチ(E
xp.Eye Res.)47:587−607;ジック(Zick)ら、1987、
ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー(J.
Biol.Chem.)262:10259−10264)を確立する結果に基づ
き、IGF−Iは光伝達に関与するかも知れないと推測さ
れている。
る糖尿病網膜症に関し、キングら(1985、ジャーナル・
オブ・クリニカル・インベスティゲーション(J.Clin.I
nvest.)75:1028−1036)は、「現在の研究において、
我々は、受容体、ならびにウシ網膜毛細血管からの内皮
細胞および血管周囲細胞に対する、およびウシ動脈から
の内皮細胞および平滑筋細胞に対するインスリン様成長
因子(IGF−I)の成長促進効果および増殖刺激効果(M
SA、およびIGF−II)を特徴付け」、「これらのデータ
は、血管細胞はインスリンおよびIGF受容体を有する
が、これらのホルモンに対する異なる応答を有する。網
膜毛細血管と大きな動脈の間の生物学的応答におけるこ
れらの相違は、糖尿病性ミクロ−およびマクロ血管障害
の病因を理解する手掛かりを提供し得る。」と述べてい
る。加えて、グラント(Grant)ら(1986、ダイアベー
テス(Diabetes)35:416−420)は、「重症の血管新生
を持つほとんどの糖尿病患者のガラス体中のIGF−Iの
濃度は、かくして、いくつかの系における細胞の分化お
よび増殖を刺激することが知られている範囲にある。そ
れらが、眼においてそうであるか否か、かくして、網膜
障害に寄与するか否かは解決されるべく残っている。」
と述べている。
F−Iの機能的誘導体;IGF−II;またはIGF−IIの機能的
誘導体のうちの少なくとも1つの有効量を哺乳動物に投
与することにより、該哺乳動物において死滅する危険の
ある網膜ニューロン細胞の生存を促進するする方法をそ
の要旨とする。
機能的誘導体を投与する好ましい具体例において、該方
法は、さらに、付加的および/または相乗的効果を生じ
る物質の有効量を哺乳動物に投与することよりなる。相
乗的に作用する物質の2またはそれ以上の組合せを哺乳
動物に投与することができるか、あるいは付加的に作用
する物質の2またはそれ以上の組合せを哺乳動物に投与
することができる。
光受容体細胞、アマクリン細胞、水平細胞、双極性細
胞、または神経節細胞である。
傷、加齢および/または病気の影響を受けている網膜ニ
ューロン組織の治療についての療法の意味で用いられ、
ここに損傷なる語は、その結果、光退化、外傷、軸索切
断、神経毒−興奮性退化または虚血性ニューロン退化の
ごとき網膜退化となる損傷を含むが、それらに限定され
るものではなく、また、病気なる語は遺伝性網膜ジスト
ロフィー、糖尿病網膜障害、アルツハイマー病、小児悪
性大理石骨病、セロイド脂褐素症または胆嚢うっ滞のご
ときいずれかの感染性または非感染性病を包含する広い
語であるが、それらに限定されるものではない。
おいて、IGF−IIIまたは脳IGFとしても知られているIGF
−I(4−70)(配列番号2)が好ましいIGF−I誘導
体である。IGF−IIの機能的誘導体を投与する場合、IGF
−II(54−67)(配列番号13)が好ましいIGF−II誘導
体である。該物質を神経伝達物質促進剤および/または
その誘導体と組み合わせて投与することもできる。
その機能的誘導体を化学的に修飾し、血液−網膜関門を
横切ってのこれらのポリペプチドの輸送を増加させるこ
とによって、例えば、脂質親和性を増加させ、糖鎖付加
を変更し、あるいは正味の正電荷を増加させるポリペプ
チドの修飾によってその効果を増大させることができ
る。
不活性な容器または溶液の受容者の眼に当該容器からの
溶液の液滴を移す他の器具内に含有された、眼内投与用
の添加剤と共に、IGF−IまたはIGF−II、またはその機
能的誘導体、例えばIGF−I(4−70)(配列番号
2)、またはIGF−II(54−67)(配列番号13)を含有
する溶液からなる組成物をその要旨とする。また、本発
明は、当該インプラントからの溶液を受容者の眼へ移行
させるために受容者に移植される化学的に不活性な容
器、例えば、インプラント、例えば、移植されたディス
ク内に含有された、眼内投与用の添加剤と共に、IGF−
IまたはIGF−II、またはその機能的誘導体、例えば、I
GF−I(4−70)(配列番号2)、またはIGF−II(54
−67)(配列番号13)を含有する溶液からなる組成物を
その要旨とする。
はIGF−II、またはその機能的誘導体、例えば、IGF−I
(4−70)(配列番号2)、またはIGF−II(54−67)
(配列番号13)を含有する軟膏からなる組成物をその要
旨とする。
は、アミノ酸配列CALLETYCATPAKSEC(配列番号17)、ア
ミノ酸配列CTYCATPAKSEC(配列番号57)、アミノ酸配列
CEPYCAPPAKSEC(配列番号58)、およびアミノ酸配列CTY
CAPAKSEC(配列番号59)よりなる群から選択される配列
からなる実質的に純粋なペプチドであり、ここに、N−
末端システインは共有結合によってC−末端システイン
に結合している。
はアミノ酸配列CALLETDYCATPAKSEC(配列番号47)、ア
ミノ酸配列CTDYCATPAKSEC(配列番号48)、およびアミ
ノ酸配列CTDYCAPAKSEC(配列番号49)よりなる群から選
択される配列からなる実質的に純粋なペプチドであり、
ここに、N−末端システインは共有結合によってC−末
端システインに結合している。
は、アミノ酸配列CTYTAPAKSEC(配列番号60)、アミノ
酸配列CALLETYATPAKSEC(配列番号61)、アミノ酸配列C
RRLEMYCAPLKPAKSAC(配列番号62)、アミノ酸配列CGYGS
SSRRAPQTC(配列番号63)、アミノ酸配列CYFNKPTGYGC
(配列番号64)、およびアミノ酸配列CYFNKPTGYGSSSRRA
PQTC(配列番号65)、およびアミノ酸配列CKPTGYGSSSRC
(配列番号66)よりなる群から選択される配列からなる
実質的に純粋なペプチドであり、ここに、N−末端シス
テインは共有結合によってC−末端システインに結合し
ている。
は、アミノ酸配列CDLRRLEMYC(配列番号19)、アミノ酸
配列CCFRSCDLRRLEMYC(配列番号20)、アミノ酸配列CCF
RSC(配列番号22)よりなる群から選択される配列から
なる実質的に純粋なペプチドであり、ここに、該ペプチ
ドは該ペプチドの2つの残基の間の共有結合によって環
化されている。
は、アミノ酸配列TYCATPAKSE(配列番号68)、およびア
ミノ酸配列RRLEMYCAPLKPAKSA(配列番号67)よりなる群
から選択される実質的に純粋なペプチドである。該アミ
ノ酸配列を挟む残基は、IGF−Iの天然に存在する配列
に相同、あるいはIGF−IIの天然に存在する配列に相同
であり得る。
は、アミノ酸配列CGCELVDALQFVC(配列番号18)およびC
CFRSCDLRRLEMYC(配列番号20)より実質的になる実質的
に純粋な環化ペプチドであり、ここに該環化ペプチドは
該環化ペプチドの2つの残基の間の少なくとも1つの共
有結合からなる。
は、アミノ酸配列CGCELVDALQFVC(配列番号18)、アミ
ノ酸配列CDLRRLEMYCCPLKPAKSE(配列番号21)、アミノ
酸配列CGPETLC(配列26)、アミノ酸配列CGYGSSSRRCPQT
GIVDEC(配列番号27)、アミノ酸配列CGDRGFYNKPTC(配
列番号28)、およびアミノ酸配列CCPLKPAKSAC(配列番
号29)、およびアミノ酸配列CDLRRLEMYAPLKPAKSAC(配
列番号30)よりなる群から選択される配列からなる実質
的に純粋なペプチドであり、ここに、N−末端システイ
ンは共有結合によってC−末端システインに結合してい
る。
は、アミノ酸配列CGGELVDTLQFVC(配列番号32)、アミ
ノ酸配列CCFRSCDDLALLETYC(配列番号34)よりなる群か
ら選択される実質的に純粋なペプチドであり、ここに、
該ペプチドは該ペプチドの2つの残基の間の共有結合に
よって環化されている。好ましくは、アミノ酸配列を挟
む残基はIGF−Iの天然に存在する配列、またはIGF−II
の天然に存在する配列に相同である。
は、アミノ酸配列CGGELVDTLQFVC(配列番号32)およびC
CFRSCDLCLLETYC(配列番号39)より実質的になる実質的
に純粋な環化ペプチドであり、ここに該環化ペプチドは
該環化ペプチドの2つの残基の間の少なくとも1つの共
有結合からなる。
は、アミノ酸配列CDLCLLETYC(配列番号33)、アミノ酸
配列CDLCLLETYCATPAKSE(配列番号35)、アミノ酸配列C
CYRPSETLC(配列番号40)、CRPCSRVSRRSRGIVEEC(配列
番号41)、CGDRGFYFSRPC(配列番号42)、CCTPAKSEC
(配列番号43)およびCDLCLLETATPAKSEC(配列番号44)
よりなる群から選択される配列からなる実質的に純粋な
ペプチドであり、ここに、N−末端システインは共有結
合によってC−末端システインに結合している。
は、アミノ酸配列CATPAKSE(配列番号53)、YCAPAKSE
(配列番号54)、YCAPA(配列番号55)、TYCAPA(配列
番号56)、CAPAKSE(配列番号24)、EALLETYCATPAKSE
(配列番号36)、およびAPSTCEYKA(配列番号38)より
なる群から選択される配列からなる実質的に純粋なペプ
チドからなる。
は、アミノ酸配列YFNKPTGYGSSSRRAPQT(配列番号3)、
アミノ酸配列GYGSSSRRAPQT(配列番号4)、アミノ酸配
列APLKPAKSA(配列番号5)、アミノ酸配列YFNKPTGYG
(配列番号6)、アミノ酸配列SSSRRAPQT(配列番号1
0)、アミノ酸配列PTGYGSSSRRAPQT(配列番号11)、お
よびアミノ酸配列KPTGYGSSSR(配列番号12)よりなる群
から選択される実質的に純粋なペプチドである。好まし
くは、アミノ酸配列を挟む残基はIGF−Iの天然に存在
する配列、またはIGF−IIの天然に存在する配列に相同
である。
は、アミノ酸配列YFNKPTGYGSSSRRAPQT−NH2(配列番号
7)、アミノ酸配列SSSRRAPQT−NH2、アミノ酸配列GIVD
ECC(Acm)FRSCLDRRL−NH2(配列番号9)、アミノ酸配
列EPYCAPPAKSE(配列番号69)、アミノ酸配列TYCAPAKSE
(配列番号70)、アミノ酸配列ALLETYSATPAKSE(配列番
号71)、アミノ酸配列ETQCATPAKSE(配列番号72)、お
よびアミノ酸配列GAELVDALQFYSGDRGFYFNKPTG(配列番号
73)よりなる群から選択される配列からなる実質的に純
粋なペプチドである。
は、アミノ酸配列ALLETDYCATPAKSE(配列番号45)、ア
ミノ酸配列TDYCATPAKSE(配列番号46)、およびアミノ
酸配列TDYCAPAKSE(配列番号50)よりなる群から選択さ
れる配列からなる実質的に純粋なペプチドである。
は、アミノ酸配列ALLETYCATPAKSE(配列番号13)、アミ
ノ酸配列TPAKSE(配列番号14)、およびアミノ酸配列SR
VSRRSR(配列番号15)よりなる群から選択される実質的
に純粋なペプチドである。
個の間のアミノ酸、好ましくは6−25個のアミノ酸を含
有する。機能的誘導体はヨウ素化することができる。
40個のアミノ酸残基、または6−25個のアミノ酸残基よ
り実質的になる環状ペプチドである。好ましくは、環状
ペプチドは、そのアミノ酸配列の少なくとも一部として
各IGF−I、IGF−II、またはIGF−IIIの断片を包含す
る。該環状ペプチドは、当該ペプチドの2つのシステイ
ンの間のジスルフィド結合を包含することができ、該シ
ステインは当該ペプチドの末端または内部いずれかに位
置する。それとは別に、あるいはジスルフィド結合に加
え、該環状ペプチドは、当該ペプチドのアミノおよびカ
ルボキシ末端に間にアミド結合を包含する。好ましい環
状ペプチドは、環化によって誘導されたもの、例えば、
ジスルフィド結合の形成またはアミドの形成によって誘
導されたものを包含するが、それらに限定されるもので
はない。
はレトロ−インベルソ・ペプチド、好ましくは、IGF−
Iに相同なレトロインベルソ・ペプチド、もしくはその
断片、またはIGF−IIに相同なレトロインベルソ・ペプ
チド、もしくはその断片である。本明細書中で用いる
「レトロ−インベルソ・ペプチド」とは、少なくとも1
つの位置におけるペプチド結合の方向が逆のもの、すな
わち、当該アミノ酸の側鎖に関してアミノ−およびカル
ボキシ−末端が逆のペプチドをいう。レトロ−インベル
ソ・ペプチドは、L−アミノ酸もしくはD−アミノ酸、
またはL−アミノ酸もしくはD−アミノ酸の混合物を含
有できる。
ペプチドであり得る。本明細書中で用いる「スクランブ
ルド・ペプチド」は、天然に存在するペプチドまたはそ
の機能的誘導体の同一の残基を含有するが、該残基の配
列が再配列されているペプチドである。
プチドに対しても、最も好ましいのは、ジスルフィド結
合形成に関与しない少なくとも1つのシステイン残基を
含有する線状および環状ペプチドである。天然に存在す
るアラニンがシステインに変化されたいくつかの場合に
おいて、本発明は、少なくとも部分的な活性を有する天
然に存在するアラニンを含有するペプチド、ならびに好
ましい活性を有する置換されたシステインを含有するペ
プチドの双方をその具体例とする。
2つの核酸分子の間の配列の同様性をいう。2つの比較
される配列の双方における位置が、同一の塩基またはア
ミノ酸単量体サブユニットによって占められている場
合、例えば、2つのポリペプチド分子の各々における位
置がロイシンによって占められていれば、当該分子はそ
の位置において相同である。2つの配列の間の相同性
は、2つの配列によって占められる一致するまたは相同
の位置の数の関数である。例えば、2つの配列の位置の
10のうち6つが一致または相同であれば、2つの配列は
60%相同である。例えば、アミノ酸配列Leu−gly−val
−ala−gly−proおよびLeu−his−tyr−ala−gly−leu
は50%相同を有する。
−I、IGF−II、またはIGF−IIIポリペプチドの断片も
包含する。本明細書で用いるごとく、ポリペプチドに適
用される「断片」なる語は、通常、少なくとも約5個の
隣接アミノ酸、典型的には、少なくとも約20個の隣接ア
ミノ酸、通常約40個の隣接アミノ酸、好ましくは少なく
とも約60個またはそれ以上の隣接アミノ酸の長さであ
る。IGF I、II、またはIIIの断片は当業者に公知の方
法によって生成させることができる。
ドを包含し、該ペプチドは、アミノ酸配列ALLETYSATPAK
SE(配列番号71)、アミノ酸配列ETQCATPAKSE(配列番
号72)、およびアミノ酸配列GAELVDALQFYSGDRGFYFNKPTG
(配列番号73)よりなる群から選択される配列からな
る。本発明のいずれのペプチドもヨウ素化され得る。
て、本発明の方法に有用なペプチドの範囲を限定するも
のと解釈されるべきでない。
それよりも大きい程度までの細胞の生存の維持を示す。
網膜ニューロン細胞の優勢は、通常細胞分裂できないと
信じられているので、かかる細胞の生存を促進する薬剤
の能力は、生きた細胞として染色する、または生きたニ
ューロンの他の特性を保有する細胞の直接的計数のごと
き、細胞の相対数を再現性よく示すアッセイによって測
定できる。本発明の方法および組成物は、網膜ニューロ
ン細胞の加齢の病気、または損傷に起因する障害を含め
た、かかる網膜ニューロン細胞の死滅および/または機
能不全によって特徴付けられるヒトまたは他の哺乳動物
の障害を治療するのに有用である。
および請求の範囲の記載によって明らかになるであろ
う。
フである。
団に対するIGF−Iの生存促進効果を示すヒストグラム
である。
ロン培養の集団の生存との間の関係を示すグラフであ
る。
ロン培養の集団の生存との間の関係を示すグラフであ
る。
索再生効果を示す顕微鏡写真を含有する。
(アミノ酸54−67)が網膜ニューロンの集団の生存に与
える効果を示すヒストグラムである。
は未処理の生後ラット網膜ニューロン培養の写真であ
る。
グラフである。
網膜ニューロン細胞培養の光受容体サブ集団に与える効
果を示すヒストグラムである。
I、IGF−II、およびIGF−IIIの効果を示すグラフであ
る。
の線状ペプチド誘導体の効果を示すグラフである。
双方から得られる分離した網膜から調製した細胞の生存
を促進するようIGFが機能することを見い出した。この
知見は、他の成長因子は、出生前または生後双方で、広
いクラスの網膜ニューロン細胞の生存を促進することが
示されていない点で、重要かつ予期せぬことであった。
またはアナログであって、本明細書中で網膜ニューロン
細胞の生存を促進する能力と定義した所望の生物学的活
性を保有する化合物である。ポリペプチドの「断片」と
は、そのポリペプチドのいずれかのポリペプチドサブセ
ットをいう。ポリペプチドの「アナログ」とは、生物学
的活性を有するが、当該ポリペプチドと比較していくつ
かの構造的相違を有する分子をいう。該アナログは、好
ましくは、親分子と50%を超えるまたはそれと同等の相
同性を持ち、より好ましくは、親分子と75%を超えるま
たはそれと同等の相同性を持つ。ポリペプチドのアナロ
グは、変更されたアミノ酸配列を有し、あるいは通常は
分子の一部でないさらなる化学部位の存在を含有する。
(アシル化、アルキル化、カチオン化、または糖鎖付加
によって導入された)かかる部位は、分子の溶解性、吸
着、輸送、生物学的半減期等を変化させ得る。それとは
別に、あるいはそれに加えて、いくつかの部位は当該分
子の毒性を減じ、当該分子のいずれの望まない副作用も
解消しまたは減少させ得る。かかる効果を媒介できる部
位は、レミントンズ・ファルマシューティカル・サイエ
ンシズ(Remington's Pharmaceutical Sciences)マッ
ク・パブ・カンパニー(Mack Pub.Co.,)、イートン(E
aton)、ペンシルベニア州、1980)。IGF−IおよびIGF
−IIのいくつかの誘導体は単独または組み合わせて作用
しないかも知れないが、開示分野の当業者は、後記にて
詳細に説明するごとく、いずれが作用し、いずれが作用
しないかを認識できる。
されており、そこでは、IGF−I、IGF−IIならびにIGF
−IおよびIGF−IIの多数の機能的誘導体のアミノ酸配
列(表2で定義する一文字省略で表示)をリストする。
表1のリストは例示するものであり、本発明はそれらの
誘導体に限定されるものではない。これらの誘導体は、
IGF−IまたはIGF−II受容体に結合する能力に関し、か
くして本発明のさらなる誘導体の確認に有用な以下の1
またはそれを超える基準に基づいて研究用に選択した:
(1)種間のアミノ酸配列の保存;(2)種間の「保存
的」アミノ酸置換(例えば、同様の形状、電荷または他
の顕著な特性を持つアミノ酸)の存在;(3)放射性ヨ
ウ素化からのチロシン残基の受容体保護(マリおよびル
シ(Maly and Luthi)、1988、ジャーナル・オブ・バイ
オロジカル・ケミストリー(J.Biol.Chem.)263:706
8);(4)当該ポリペプチドの表面における受容体結
合ドメインの位置を示唆する親水性残基の優勢、受容体
相互反応の推定要件;および(5)3次元モデル(例え
ば、ブルンデル(Blundell)ら、1983、フェデレーショ
ン・プロシーディングズ(Fed.Proc.)42:2592−2597)
の疎水性および極性領域の考慮およびそれから可能な結
合部位である領域を確認すること。
の正味のイオン電荷に関し得るので、例えば、フェニル
アラニンをペンタフルオロフェニルアラニンで置き換え
る、あるいはカチオン化アルブミンへの接合によるこれ
らのペプチドの適当な修飾(カスティン(Kastin)ら、
1979、バイオケム・ビハブ(Biochem.Behav.)11:713−
716;ラポポルト(Rapoport)ら、1980、サイエンス(Sc
ience)207:84−86;パードリッジ(Pardridge)ら、198
7、バイオケミカル・アンド・バイオフィジカル・リサ
ーチ・コミュニケーションズ(Biochem.Biopys.Res.Com
un.)146:307−313;リーキニン(Riekkinen)ら、198
7、ペブタイズ(Peptides)8:261−265)は、その生物
学的利用性に重要であり得、これらの修飾は本発明の範
囲内のものである。加えて、ペプチドの生物学的利用性
は、プロテアーゼおよびペプチダーゼによる分解の受け
易さ(リトルウッド(Littlewood)ら、1988、ニューロ
ケム・イント(Neurochem.Int,)12:383−389)、これ
らのペプチドの修飾、例えば、その代謝安定性を増加さ
せるためのD−アミノ酸でのL−アミノ酸の置換もその
治療効果に重要であり、これらの修飾されたペプチドも
本発明の範囲内のものである。
ち1つまたはそれ以上により天然のIGF分子から変化さ
せたペプタドを包含する。
キシル基の化学的修飾。
のアミノ酸残基の1またはそれ以上のアミノ酸残基の置
換。
残基での、天然の配列中の1またはそれ以上のアミノ酸
残基の置換。
失。
または好ましくは一連の数個のアミノ酸残基の反復、ま
たは当該配列の1またはそれ以上のメンバーの置換また
は欠失。
への結合。
合による、IGF−IまたはIGF−II、またはIGF−Iもし
くはIGF−IIのいずれかの誘導体と、ポリペプチドまた
は炭水化物のごとき他の分子(例えば、IGF−IまたはI
GF−IIのもう1つの断片)との連結。
列:R1−AA1−AA2−AA3−AA4...AAn−R2(式中、AA1、AA
2、AA3、AA4...AAnはIGFまたはIGFサブセットのアミノ
酸残基であるか、あるいは表2で定義したに同じ保存的
置換であり、nはIGF−I機能的誘導体については5な
いし70のいずれかの整数であってIGF−II機能的誘導体
については5−67)を有するIGF機能的誘導体内のもの
を利用する。R1はAA1のアミノ基に付着しており、水
素、低級(C1-6)アルキル、低級カルキルカルボニル、
低級アルケニル、低級アルキニル、ホルミル、低級(C
6-10)アリール、アロイル、アリールオキシカルボニ
ル、アラルキルオキシ−カルボニル、低級アルキルオキ
シカルボニル、ベンゾイル、1−もしくは2−テノイ
ル、ニコチノイル、ジヒドロニコチノイル、N−アルキ
ルジヒドロイソニコトノイル、イソニイチノイル、およ
びN−アルキルジヒドロイソニコチノイルよりなる群か
ら選択される。ペプチドのカルボキシ−末端置換基
(R2)は以下の:OH;NH2、OR3(ここに、R3は低級アルキ
ルまたは低級アリール);OR3OH(ここに、R3は前記定義
に同じ);およびNH−R3またはN(CH3)R3(ここに、R
3は前記定義に同じ)から選択される。別法として、該
カルボキシル−末端アミノ酸のカルボキシル基は−PO3H
2、−B(OH)2、−CH2OH、−SO3Hまたは5−テトラゾ
ール基のうちいずれか1つで置換されていてもよい。
/またはリシン、セリンまたはトレオニン側鎖は、所望
により、ホルミル、アセチル、プロピオニル、および同
様の低級アルキルアシル残基によって、あるいはアリー
ル、またはベンゾイル、テノイル、ニコチノイル、イソ
ニコチノイル、N−アルキルニコチノイルおよびそのジ
ヒドロおよびテトラヒド誘導体のごとき複素環アシル残
基によってアシル化されていてもよい。かかる修飾は、
当該治療剤の血液−脳関門浸透性を促進することが期待
される(クレベリング(Creveling)ら、1969、エクス
ペリエンシア(Experientia)25:26−27;ボーダー(Bod
or)ら、1981、サイエンス(Science)214:1370−137
2)。
酸を含有するペプチド配列において、該アミノ末端アミ
ノ酸は、所望により、L−ピログルタミン酸によって置
換されていてもよい。
天然の分子よりも少ないアミノ酸残基を含有するIGF−
IまたはIGF−II分子のサブセットである。該断片のア
ミノ酸の一部は、生成物ポリペプチドの化学的もしくは
生物学的安定性を改良する、あるいは血液−脳関門を横
切ってその輸送を改良する保存的置換または欠失で置き
換えられていてもよい。好ましくは、30%以下の、より
好ましくは、20%以下のアミノ酸残基が置換または欠失
されている。適当な保存的置換のリストは、蛋白中に見
い出される通常の天然に存在するアミノ酸残基について
の一文字省略に対するキィと共に表2に掲げる。表2で
用いるある種の他の省略をここに定義する;Nleはノルロ
イシンを意味し、Aibはアミノイソ酪酸を意味し、AdaA
はβ−アダマンチルアラニンを意味し、AdaGはα−アダ
マルチングリシンを意味し、homo−ArgはL−ホモアル
ギニンを意味し、D−homo−ArgはD−ホモアルギニン
を意味し、Acpはε−アミノカプロン酸を意味し、Chgは
L−α−シクロヘキシルグリシンを意味し、alla−Thr
はL−アロスレオニンを意味する。さらに、Chaはβシ
クロヘキシル−アラニンを意味し、Meはメチル(CH3)
を意味し、Ornはオルニチンを意味し、pyro−Gluはピロ
グルタミル基を意味し、Met(O)およびD−Met(O)
は、各々、L−およびD−メチオニンから誘導されるス
ルホキシドを意味し、L−Dopaは3−(3,4−ジヒドロ
キシフェニル)−L−アラニンを意味し、およびBpaは
4−ベンゾイル−フェニルアラニンを意味する。
イント・コミッション生物化学命名法によって推奨され
ものである(「Nomenclature and Symbolism for Amino
Acids and Peptides)260:14−42)。通常におけるご
とく、これらがペプチド鎖に連結している場合には、こ
れらの同一の記号を用いてアミノ酸の対応する残基を定
義する。アミノ酸残基が異性体形を有する場合は、特に
断りのない限り、表示されているアミノ酸のL−形であ
る。通常の表示において、各ペプチドのN−末端のアミ
ノ基は左側に出現し、C−末端のアルボキシ基は右側に
出現する。
化学修飾のごとき、血液−脳関門を横切ってのポリペプ
チドの輸送を改良する他の方法を使用することができ
る。いずれの化学的修飾法においても、例えば、カチオ
ン化または糖鎖付加よりなり得る化学的修飾工程の間
に、受容体結合部位構造を保護し維持するために、ポリ
ペプチドをまずその受容体に付着させる。
好ましいサブグループとして、好ましくは5〜40個のア
ミノ酸残基の、最も好ましくは6〜25個のアミノ酸残基
の環状ペプチドを利用する。かかるペプチドは、好まし
くは、IGF分子のループドメインの後に形成する。かか
るループは天然のジスルフィド結合形成の結果であって
もよく、一方、他のものは、それが結合を可能とするた
めに、最小のエネルギーのコンフォメーションまた受容
体−誘導コンフォメーションを達成する場合の、蛋白の
折り畳みの結果である。前記したごとく、環化は、線状
ペプチドのアミノおよびカルボキシル末端を結合させ
て、直接的にアミド(ラクタム)結合(実施例14)を形
成させるか、あるいは末端システイン基を使用するジス
ルフィド結合形成によって行うことができる。存在する
いずれの内部システイン基も、好ましくは、環化の前に
選択的にブロックし、よく確立された手法を用いて後に
ブロックを解くことができる(実施例13)。別法とし
て、内部システインは、ペプチドのコンフォメーション
に対して最小の影響を有すると予測されるアミノ酸、例
えば、突然変異誘発走査研究でしばしば用いられるアラ
ニンによって置き換えることができる。
スルフィド結合を介して以下の単量体ペプチドの環化に
よって誘導されたものを包含する。
は以下の環状(TYCAPAKSE)(配列番号70)である。
好ましい環状ペプチドの例は以下のものである: 提案されているループペプチド: 1.IGF−Iに存在するCysを使用 (1数字は対応する天然に存在するIGF−Iにおけるア
ミノ酸の位置を指す) 2.余分なCysの使用 (2*は天然に存在するIGF−IまたはIGF−IIの対応す
る位置からのアミノ酸の欠失を示す) 提案されているループペプチド3 1.IGF−IIに存在するCysを使用 (3以下のペプチドのいくつかはAla−−−>Cys置換を
含有する) (4数字は対応する天然に存在するIGF−IIにおけるア
ミノ酸の位置を指す) 2.余分なCysの使用 レトロ−インベルソペプチド ペプチドのレトロ異性体は、側鎖のトポケミストリー
(topochemistry)を維持しつつ当該ペプチドの方向を
逆にしたものと定義される。レトロ−インベルソペプチ
ドにおいて、D−アミノ酸はL−アミノ酸に代えて置き
換えて、天然のペプチドと同様の生物学的応答および受
容体結合についての総じてのコンフォメーションを保持
する(ハイワード(Hayward)ら、ペプタイズ(Peptide
s)1974;第13回欧州ペプチドシンポジウム、ワイ・ウォ
ルマン(Y.Wolman)編、287−297頁;グッドマン(Good
man)ら、アカウンツ・オブ・ケミカル・リサーチ(Ac
c.Chem.Res.)12:1−7(1979))。レトロ−インベル
ソペプチドは、はっきりとしたコンフォメーションの制
約を導入し、エンドペプチダーゼによる限定された生分
解を示すことがで示されている。
シル末端を逆にすることは、末端基が活性に関与してい
る場合に当該活性を減じる。アミノ−末端に2−アルキ
ルマロナート誘導体および2−アルキル置換gem−ジア
ミンを導入することによってカルボキシ−末端にて修飾
を行うことができる。また、これらの基は、一部のまた
は単一のアミド修飾レトロ−インベルソセグメントを天
然配列に取り込む場合に架橋残基として使用することも
できる。部分的かつ選択された単一のアミド修飾レトロ
ペプチドを用いて生物学的活性を修飾することもでき
る。異なるレトロ−インベルソペプチドの例をここで一
般的配列にて示す。
ogate) mAA=2−アルキルマロナートアミノ酸の代わり AA=設計に基づくL−、D−または通常のアミノ酸 レトロ−インベルソペプチドは、液相セグメント縮合
方法および固相法の双方によって合成される。アラニン
のgem−ジアミノおよびマロニル誘導体を調製する一般
的手法を以下に掲げる。
のレトロ−インベルソペプチドは一般に公知のペプチド
手法によって作製できる。数字は、各々、全長IGF−I
(配列番号1)、または全長IGF−II(配列番号16)の
対応するアミノ酸位置を示す。
およびIGF−IIおよびその機能的誘導体の使用、網膜ニ
ューロン細胞の死滅の増大した危険によって特徴付けら
れる病気または障害の治療用の薬剤として追加的または
相乗的効果を提供し得る他の物質と組み合わせたIGG−
I、IGF−IIおよびその機能的誘導体の新規な使用を提
供する。本発明の各ポリペプチド(またはポリペプチド
の組合せ)の生物活性は、都合よくは、後記にて詳細に
記載する培養した網膜細胞のアッセイによって検定され
る。このアッセイは、IHG−I、およびIGF−IIの機能的
誘導体の知られていない生物活性を従前に開示してい
る。当業者によるこのアッセイのルーチン的適用は、IG
F−Iのそれに追加的または相乗的な活性を有する他の
分子、ならびにIGF−IおよびIGF−IIの治療的に有用な
機能的誘導体を発見するのに使用できる。かくして、本
発明のペプチドは、網膜ニューロン細胞の死滅の増大し
た危険によって特徴付けられる網膜の病気または障害に
悩むヒトおよび他の哺乳動物に投与するのに有用であ
る。
下、筋肉内、眼窩内、眼内、点眼、局所、鼻孔内、およ
びエアロゾ投与に有用である。組成物は、前記した網膜
病の治療を提供するために、治療上有効量(例えば、患
者の病理状態を解消または低下させる量)にて、ヒトま
たは他の哺乳動物に投与される。
非毒性添加剤および担体と混合することによって医薬組
成物に処方できる。前記したごとく、かかる組成物は、
特に、液体の溶液または懸濁液の形態で非経口投与に;
特に、点眼剤または軟膏の形態で眼への投与用に調製で
きる。
例えば、レミントンズ・ファルマシューティカル・サイ
エンシズ(Remigton's Pharmaceutical Sciences)に記
載されているごとく、医薬分野でよく知られた方法によ
って調製できる。投与用の処方は、通常の添加剤とし
て、滅菌水またはセーライン、シクロデキストリン、ポ
リエチレングリコールのごときポリアルキレングリコー
ル、植物起源の油、水素化ナフタレン等を含有させるこ
とができる。特に、生体適合性は、生分解性のラクチド
ポリマー、ラクチド/グリコリドコポリマー、またはポ
リオキシエチレン−ポリオキシプロピレンコポリマーは
ペプチドの徐放を制御するのに有用な添加剤であり得
る。これらのペプチドの他の可能な有用なデリバリ系
は、エチレン−酢酸ビニルコポリマー粒子、浸透圧ポン
プ、インプラント可能な注入系、およびリポソームを包
含する。投与用の処方は、ヒト血清アルブミンのごとき
安定化剤、グリココレートのごとき浸透促進剤を包含す
る。加えて、当該化合物は、プロピルパラベン、無水液
体ラノリン、鉱物油、および白色ペテロラタムのごとき
通常の添加剤と共に活性化合物を含有する軟膏形態の眼
投与に供することができる。
物の用量、使用する化合物の化学的特性(例えば、疎水
性)、および投与経路を含めた多数の因子に依存して変
化する。一般に、本発明の化合物は、非経口または眼投
与のためには、約0.1ないし10%w/v化合物を含有する水
性生理学的緩衝液または軟膏にて供することができる。
典型的な用量範囲は、1日当たり約1μg/kgないし約1g
/kg体重の範囲であり;好ましい用量範囲は1日当たり
約0.01mg/kgないし100mg/kgの範囲である。投与すべき
薬物の好ましい用量は、網膜病の進行のタイプおよび程
度、個々の患者の総じての健康状態、選択した化合物の
相対的生物学的効果、当該化合物の添加剤の処方、およ
びその投与経路のような変数に依存するようである。
の実施例は本発明の範囲を限定するものと解釈されるべ
きでなく、それは添付の請求の範囲によってのみ決定さ
れるべきである。
およびIGF−IIの部分配列からなるいくつかの化学的に
合成したペプチドは、表1に示した商業的な起源から購
入するか、もしくは直接的な、化学合成から得ることが
できる(脚注5−7を参照せよ)。
進するよう作用するかどうかを確認するために、鳥類の
網膜分培養を種々の発育年令の動物から調製し、IGF−
Iの存在または不在下で48時間インキュベート後、培養
中に存在する細胞数を測定した。
分解し、サト(Sato)ら、(1979、プロシーディングス
・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンシー
ズ・イン・ユーエスエイ(Proc.Natl.Acad.Sci.USA)、
76:514−517頁)に準じて、成分のはっきりとしたイン
スリン/血清−フリー培地で、in vitro培養した。培養
中の細胞数は、生染色カルセイン−AM(vital stain ca
lcein−AM)を用いて測定した。全ての細胞は、カルセ
イン−AM透過性であるが、生細胞だけがこの化合物を常
法により検知できる蛍光性誘導体に変換できる。最初の
実験において、カルセイン−AM(6μM)を異なった網
膜細胞培養に添加し、蛍光レベルと細胞数との間の関係
を測定した。この関係は、図1に示すように直線になる
ことが見い出され、このアッセイが、培養中の細胞の生
存に対する化合物の効果を試験するのに有用であること
を証明している。
の半分に添加し、処理後48時間における残存細胞数を、
前記カルセイン−AMアッセイを用いて測定した。結果を
図2に示す。IGF−Iは、対照の未処理培養に比して、
8、10、12および14日齢の胚から得た網膜ニューロン培
養中の細胞生存を一様に(20−60%だけ)向上させた。
ン細胞の生存を促進するのに要するIGF−Iの濃度を測
定するために、以下の実験を行った:網膜ニューロン
は、10日齢のニワトリヒナの胚、あるいは、前記の出生
後の成人期のラット6匹から得た分離した網膜から調製
した。培養を、濃度を増加させる一連のIGF−Iの存在
下でインキュベートし、処理後48時間に生存する細胞数
をカルセイン−AMアッセイで測定した。データを図3お
よび図4に示し、IGF−Iが、出生前および出生後の両
時期において、投与量依存的に、培養中の網膜ニューロ
ンの寿命を延ばすよう作用することが証明されている。
以前に発表されたデータに基づき、本発明者らの実験に
おけるニューロン細胞の生存を促進するIGF−I濃度
は、IGF−Iが、それ自身の受容体を通して作用すると
いう事実(カーレー(Karey)ら、1988、イン・ビトロ
・セル・ディブ・バイオル(In Vitro Cell.Dev.Bio
l.)、24:1107−1113頁;バラード(Ballard)ら、198
8、バオケミカル・ジャーナル(Biochem.J.)、249:721
−726頁)と一致する。
どうかを確認するために、分離した網膜から調製したニ
ューロンの集団を、100nM IGF−I存在または不在下
で、成分のはっきりしたインスリン/血清−フリー培地
中で培養した。培養をIGF−I処理後2−4日に位相コ
ントラスト顕微鏡で精査した。図5は、IGF−I処理培
養が、未処理の対照培養よりも神経突起を有する細胞を
多く含有することを証明し、これは、IGF−Iが網膜ニ
ューロンにおける軸索再生に影響することを示してい
る。
下でインキュベートした場合に、網膜の生存を促進しう
るかどうかを確認するために、IGF−IおよびIGF−IIの
双方の中に比較的保存されているIGF−IIの線状断片
を、本発明者らのアッセイで試験した。試験片は、IGF
−IIからの14個のアミノ酸の配列(アミノ酸54−67、こ
こに、IGF−IIのアミノ末端のアミノ酸が、番号1であ
る)を含有する。以後IGF−II(54−67)と名付けるこ
の断片を、分離したラット網膜から調製したニューロン
の集団に、最終濃度100μMで添加し、図6に示すよう
に網膜ニューロン細胞の生存を促進することが判明し
た。
網膜ニューロン培養中の光受容体副次集団の細胞の生存
を特異的に促進しうるか否かを確認するために、以下の
実験を行った:桿状光受容体細胞(rod photoreceptor
cell)の表面に発現しているロドプシンの細胞外ドメイ
ン内の抗原性エピトープに結合するモノクローナル抗体
Rho42(モルデイ(Molday)およびマッケンジー(MacKe
nzie)、1983、バイオケミストリー(Biochemistry)、
22:653頁)を、このアッセイに用いた。出生後のラット
網膜ニューロン培養を、IGF−I 100nMの存在または不在
下でインキュベートした。細胞を収穫し、蛍光標識を添
加したRho42と反応させた。スライドを調製し、培養中
の蛍光レベルを、蛍光顕微鏡を用いて定性的に評価し
た。IGF−I処理した培養が、未処理の培養に比して蛍
光レベルが増加していることを示していることは図7か
ら明らかであり、これはIGF−Iが出生後のラット網膜
ニューロン培養中の細胞の光受容体副次集団の細胞の生
存を促進することを証明している。
の細胞ベースRho42エライザ試験(cell−based ELISA t
est)を開発した:異なった細胞数を含有するいくつか
の出生後のラット網膜培養を2−4日間インキュベート
し、次いで、培養を固定し、該Rho42モノクローナル抗
体、もしくは、ミエローマ細胞系P3X6Ag8により分泌さ
れる非特異的なモノクローナル抗体P3の一方で免疫標識
した。抗体の結合は、490nmに最大吸収波長を有する西
洋ワサビペルオキシダーゼで標識した二次抗体および発
色体基質o−フェニレンジアミン(OPD)を用いて検知
した。培養中にて測定した490nmにおける吸光レベル
は、よって該細胞に元来結合する一次抗体量に直接関連
する。図8において、490nmにおける吸収レベルと、各
々の培養中の細胞数との間に直接関係があることが分か
る。加えて、該アッセイは、反応しなかったP3に比し
て、Rho42のみが該細胞と反応したため、光受容体細胞
に特異的である。
GF−II(54−67)の存在下で48時間インキュベートし、
次いで、それらを前記の細胞ベースELISA試験に付し
た。結果を図9に示す。IGF−IおよびIGF−II(54−6
7)は、共に、対照の未処理培養に比して20−30%、光
受容体の生存を促進する。
荷を増加させるために、ポリペプチドの酸性アミノ酸残
基(例えば、アスパラギン酸およびグルタミン酸残基)
の遊離カルボキシ基を修飾することによる反応である。
カチオン化反応は、アルブミンおよび西洋ワサビペルオ
キシダーゼのような大きな分子のマウス線維芽細胞への
取り込みを向上するために用いられている(シェン(Sh
en)ら、1978、プロシーディングス・オブ・ナショナル
・アカデミー・オブ・サイエンシーズ・イン・ユーエス
エイ(Proc.Natl.Acad.USA)、75:1872−1876頁)。ク
マガイ(Kumagai)ら(1987、ジャーナル・オブ・バイ
オロジカル・ケミストリー(J.Biol.Chem.)、262:1521
4−15219頁)は、血液−脳関門を透過する運搬を測定す
るモデル系であると報告されているウシ脳からの無傷の
微細血管を用い、分離したウシ脳の微細血管によるカチ
オン化アルブミンの取り込みが、天然アルブミンの取り
込みに比して、向上されることを証明した。
ド(例えば、IGF−I、IGF−IIまたは機能的誘導体)
と、過剰量のヘキサメチレンジアミン(HMD)(15.5g/g
全タンパク質)とを室温で30分間反応させ、次いで、HM
Dと1−エチル−3[−3−ジメチル−アミノプロピ
ル]カルボジイミド塩酸塩(EDAC)(1.0g/g全タンパク
質)とを室温で3時間共有結合させることができる。未
反応種は、セントリコン−3 MPS−1分離装置(Centr
icon−3MPS−1separation device)(アミコン社(Amic
on)、マサチューセッツ州(MA)、ダンバーズ(Danver
s))またはイオン交換クロマトグラフィーを用いた濾
過によって除去できる。該精製したポリペプチドは、等
電点電気泳動を用いて分析し、カチオン化量を測定でき
る。
であるポリペプチドに用い、該修飾が生物的活性を欠い
た分子を生成したら、該カチオン化反応は、該ポリペプ
チドの受容体結合サイトを保護するために、該ポリペプ
チドを適当な受容体にカチオン化の前に予め結合させる
点を除いて前記のように繰り返してできる。この保護処
理は、以下のようにして達成することができる: 初めに、目的のポリペプチド(例えば、IGF−I)の
受容体を含有する組織、例えば脳を調製する。[別法と
して、組織由来の受容体の代わりに組換え受容体を用い
ることもできる。]大脳皮質を含有する脳組織を成人ラ
ットから切開し、低速で5分間、10mM HEPES、0.5% BS
A、0.0125% HEM、0.025%バシトラシンおよび100KIU/m
lアプロチニンからなるpH7.6の50倍量の氷冷緩衝液を含
有するホモジナイザー(例えば、ブリンクマン・ポリト
ロン・ホモジナイザー(Brinkman Polytron homogenize
r))中でホモジナイズする(ボーアンノン(Bohanno
n)ら、1986、エンドクライノロジー(Endocrinolog
y)、119:943−945頁)。ホモジナイズにつづいて、該
組織を7800×gで20分間遠心することによって収集し、
10倍量のアッセイ緩衝液に再懸濁する。
2時間インキュベートし、受容体へ結合させる。反応混
合物を室温に移し、前記のHMDおよびEDACを用いてカチ
オン化反応を行う。次いで、該反応混合物を4℃、16,0
00rpmで30秒間、ソボール(Sorvall)RC5B遠心分離器中
のSS34ローターで遠心する。上清を破棄し、ペレットを
ウシ血清アルブミン(1mg/ml)を含むリン酸緩衝液セリ
ンで3回洗浄する。ペレットを100mMの酢酸に再懸濁
し、4℃で10分間インキュベートして、その受容体から
カチオン化ポリペプチドを解離させる。再度、16,000rp
mで遠心し、解離したカチオン化ポリペプチドを含有す
る上清をNaOHでpH中和する。次いで、それを等電点電気
泳動または生物活性用のいずれの適当なアッセイで分析
する。
容体の保護もしくは保護なしに(IGF−I、IGF−IIまた
はいずれかの機能的誘導体のような)該ポリペプチドの
遊離カルボキシル基の少なくとも1個にポリリジンを結
合させることである。該方法は、シェン(Shen)らの方
法(1978、プロシーディングス・オブ・ナショナル・ア
カデミー・オブ・サイエンシーズ・イン・ユーエスエイ
(Proc.Natl.Acad.Sci.USA)、75:1872−1876頁)に準
じたものである。例えば、ポリリジン、IGF−Iおよび
カルボジイミドを1:1:1の比で水または緩衝液中に室温
で3時間にて添加する。修飾タンパク質は、前実施例6
記載のように分離および分析できる。
ク質のカルボキシル基を修飾する第3番目の方法は、ジ
アゾメタンまたはN,N−ジメチルホルムアミド Rアセ
タール(DMFアセタール)とエステルを形成させること
である(ここで、Rは、ジメチル、ジエチル、ジブチ
ル、ジベンジル等である)。修飾のこのタイプは、負に
荷電したカルボン酸基から迅速にエステルを形成し、よ
って全体の正電荷が増加する。この修飾からのさらなる
利点は、これらの付加エステル基がポリペプチドの全体
的な脂質親和性を増加でき、in vivoで内在性エステラ
ーゼにより除去されて無傷の成長因子を得ることができ
ることである。この修飾反応は、前実施例6に記載した
受容体の保護もしくは保護なしに、ジアゾメタンまたは
DMFアセタールを該ポリペプチドと溶液中に1:1の割合
で、室温で30分間反応させ、次いで、前実施例6記載の
ように精製および特徴付けることである。
なしに、カチオン化する第4の方法は、血液−脳関門透
過性を向上させる分解性エステル形成と、ならびに透過
後の無傷の成長因子を得ることと、ポリリジンカチオン
化の利点を合わせたものである。ポリリジンは、塩化ベ
ンジルオキシルアセチルとの反応、次いで、水素添加お
よび温和なエステル化反応によって、反応性とできる
(ハスナー(Hassner)ら、1978、テトラヘドロン・レ
ターズ(Tet.Let.)、46:4475−4478頁;ミハラ(Mihar
a)ら、1986、インターナショナル・ジャーナル・オブ
・ペプチド・アンド・プロテイン・リサーチ(Int.J.Pe
ptide Protein Res.)、29:141−145頁)。別法とし
て、ポリリジンと反応できるDMFアセタール誘導体を、
エステル結合を用いてポリリジンを遊離カルボキシ基に
結合するのに用いることができる。
鎖付加:例えば、グルコースおよびシアノホウ水素化ナ
トリウム(NaCNBH3)を用いた還元的アミノ化によるグ
ルコールまたは同様の残渣の導入である。タンパク質の
糖鎖付加は、これらのタンパク質の細胞取り込みを向上
させることが示されており、血管−脳関門透過性の改善
に有用のようである。実施例6記載の受容体の保護もし
くは保護なしでの糖鎖付加の方法は、シュワルツ(Schw
artz)らの方法(1977....)に基づいており、そこで
は、IGF−I、IGF−IIまたはいずれかの機能的誘導体の
ようなポリペプチドを、pH7.0の200mMリン酸緩衝液中、
モル比1:300:1600にて、グルコースおよびNaCNBH3と、3
7℃で少なくとも24時間合する。未反応物は、実施例6
記載のように、またはレクチンアフィニティークロマト
グラフィーで除去できる。糖鎖付加アルブミンを用いた
以前の研究において、修飾アルブミンは、ラット精巣上
体微細血管によって、天然アルブミンより非常に高い比
率で取り込まれた(ウイリアムス(Williams)ら、198
1、プロシーディングス・オブ・ナショナル・アカデミ
ー・オブ・サイエンシーズ・イン・ユーエスエイ(Pro
c.Natl.Acad.Sci.USA)、78:2393−2397頁))。
膜ニューロン細胞の生存を促進しうるか否かを確認する
ために、出生後のラット網膜の分離培養を調製し、IGF
の存在または不在下でインキュベートした後に存在する
全細胞数をアッセイした。出生後の6匹のラットから網
膜を切開し、酵素消化によってバラバラにし、成分のは
っきりしたインスリン/血清−フリー培地に、6.25×10
4細胞/cm2の密度で接種した(ボッテンシュタイン(Bot
tenstein)ら、1979、プロシーディングス・オブ・ナシ
ョナル・アカデミー・オブ・サイエンシーズ・イン・ユ
ーエスエイ(PNAS)、76:514−517頁))。これらの培
養は、異成分系であり、少なくとも5つの独立した網膜
ニューロン細胞副次集団、すなわち、アマクリン、双
極、水平、光受容体および神経節細胞からなる。各々の
IGF 100nMの存在または不在下で培養をインキュベート
した。4日後に残存する合計細胞数を、6μMの生活性
株カルセイン−AMとインキュベートすることによりアッ
セイした。この化合物は、全ての細胞に取り込まれる
が、生細胞によってのみ蛍光性誘導体に変換できる。細
胞数と相対蛍光との間の関係は直線であり、このアッセ
イが、細胞数の相対差(relative differences)を評価
するのに用いることができることを示している。図10
は、IGF−I、IGF−IIおよびIGF−III処理培養におい
て、未処理対照培養に認められるよりも、得られた相対
蛍光単位が高いことを示すグラフである。これらのデー
タは、IGF−I、IGF−IIおよびIGF−IIIが、未処理培養
よりも、生存する出生後のラット網膜ニューロン細胞の
合計数を増加させることを示している。
ン細胞の生存を補助できるか否かを確認するために、出
生後のラット網膜の解離培養を調製し、ペプチド(100
μM)の存在または不在下でインキュベート後に存在す
る合計細胞数をアッセイした。網膜ニューロン細胞培養
は、実施例11記載のように調製し、生存する合計細胞数
を同様に分析した。ペプチドは、IGF−IおよびIGF−II
Iのアミノ酸領域7−30および55−70、ならびにIGF−II
内の領域、アミノ酸54−67から由来したものであった。
ペプチドIGF−II54−67(ALLETYCATPAKSE)(配列番号:
13);IGF−II(59がD−Yである54−67)(配列番号:4
5);IGF−II(60がセリンで置換された54−67)(配列
番号:71);IGF−II(58−67)(配列番号:68);IGF−II
(59がD−Yである58−67)(配列番号:46);IGF−I
およびIGF−III(7−30;18が置換されたセリン:GAELVD
ALQFVSGDRGFYFNKPTG)(配列番号:73);IGF−IおよびI
GF−III(55−70;RRLEMYCAPLKPAKSA)(配列番号:67);
EALLETYCATPAKSE(配列番号:36);TYCAPAKSE(配列番
号:70);TdYCAPAKSE(配列番号:50);ヨウ素化TYCAPAK
SE(配列番号:25);ETQCATPAKSE(配列番号:72);EPYCA
PPAKSE(配列番号:69);YCAPAKSE(配列番号:54);YCAP
A(配列番号:55);TYCAPA(配列番号:56);CATPAKSE
(配列番号:53);CAPAKSE(配列番号;24)およびAPSTCE
YKA(配列番号:38)で処理された網膜ニューロン培養
は、未処理培養より高い蛍光値を供した。これらのデー
タは、これらのペプチドが、未処理の培養に対して、出
生後のラット網膜ニューロン培養の解離調製物において
生存する合計細胞数を増加させたことを示している(図
11)。
養で認められるものに対し増加させないペプチドを列挙
している。それらの構造から予め予想できるものではな
いが、本明細書に列挙したペプチドの高比率は、本発明
の方法に有用であり、本明細書に記載したスクリーニン
グ法、および当業者に公知の方法によって確認できる。
業者によく知られた方法を用いた固相ペプチド合成法に
より調製した。それらは、1992年4月15日付け出願の譲
受人の共同譲渡された(assignee's coassigned)特許
出願、USSN 07/869,913号に記載され特許請求されてい
る。
ェン・バイオサーチ・9600型・ペプチド・シンセサイザ
ー(Milligen Bio Search Model 9600 Peptide Synthes
izer)にてペプチド合成の固相法により調製した。
キシベンジルアルコール樹脂(アドバンスド ケムテッ
ク社(Advanced Chem Tech))0.5gm(0.46mM/gm)を反
応容器に入れ、ベンゾトリアゾール−1−イルオキシト
リス(ジメチルアミノ)ホスホニウム ヘキサフルオロ
ホスフェート(BOP)および1−ヒドロキシベンゾトリ
アゾール(HOBT)を結合剤として用い、1:1 DMF/DCM中
で、 1)Fmoc−グルタミン酸−γ−t−ブチルエステル 2)Fmoc−セリン−t−ブチルエーテル 3)ε−t−ブチルオキシカルボニル−Fmoc−リジン 4)Fmoc−アラニン 5)Fmoc−プロリン 6)Fmoc−スレオニン−t−ブチルエーテル 7)Fmoc−アラニン 8)S−アセトアミドメチル−Fmoc−システイン 9)Fmoc−チロシン−t−ブチルエーテル 10)Fmoc−スレオニン−t−ブチルエーテル 11)Fmoc−グルタミン酸−γ−t−ブチルエステル 12)Fmoc−ロイシン 13)Fmoc−ロイシン 14)Fmoc−アラニン 15)S−トリフェニルメチル−Fmoc−システイン の1.0mM溶液と順次反応させた。最後に、樹脂0.91gmか
ら、粗ペプチド CALLETYC(Acm)ATPAKSEC(配列番号:
17)を、90% トリフルオロ酢酸、5% チオアニソー
ル、3% エタンジチオールおよび2% アニソールを
含有する脱遮断剤カクテル 10mLで処理することにより
除去した。4.5時間撹拌した後に、該混合物を濾過し、
濾液をアルゴンを用いて乾燥し、無水エーテルを用いて
沈澱させた。得られた粗ペプチドの重量は、0.34gmであ
った。
の50%水酸化アンモニウムでpHを8.4に調整する。フェ
リシアン化カリウムの希釈溶液(0.01N)を、淡黄色が
消えなくなるまで滴下する。2時間撹拌した後、氷酢酸
で溶液をpH4.6に調整することによって該反応をクエン
チする。過剰量のフェロ−およびフェリシアンイオン
を、陰イオン交換カラムを通すことにより除去する。溶
出液を10mLに濃縮し、該溶液をpH4.6に調整する。内部
のCysからアセトアミドメチル(Acm)保護基を除去する
ため、水/酢酸1:1中の酢酸水銀(II)の0.2M溶液(4m
L)を添加し、該反応混合物を1時間撹拌する。得られ
た混合物を脱塩し、前記のようにHPLCにより精製する。
リジェン・バイオサーチ社、9600型ペプチド・シンセサ
イザー)および液相法を利用して調製した。
イオサイエンス(Bachem Bio Science)社)0.79g(0.9
7mM/gm)を反応容器に入れ、[2−(1H−ベンゾトリア
ゾール−1−イル)−1,1,3,3−テトラメチルウロニウ
ムテトラフルオロボレート(TBTU)およびHOBTを結合剤
として用い、1:1 DMF/DCM中で、 1)Fmoc−グルタミン酸−γ−ベンジルエステル 2)Fmoc−セリン−o−ベンジルエーテル 3)ε−ベンジルオキシカルボニル−Fmoc−リジン 4)Fmoc−アラニン 5)Fmoc−プロリン 6)Fmoc−アラニン 7)S−アセトアミドメチル−Fmoc−システイン 8)Fmoc−チロシン−o−ベンジルエーテル 9)Fmoc−ステオニン−o−ベンジルエーテル の3.0mM溶液と順次反応させた。各々の結合段階は、記
載のように行った(実施例19)。粗ペプチド(0.84g)
を、15mLのTEA、10mLのDCMおよび0.5mLの水を含有する
脱遮断カクテルで処理することにより1.82gの樹脂から
除去した。
ルホリンおよび2.5mLのジフェニルホスホルアジドを含
有するDMF 1000mL溶液に1時間にわたって添加した。
一晩撹拌した後、該溶媒を蒸発させた。該粗生成物を酢
酸エチル(200mL)に溶解し、溶液を2% クエン酸、
水および3% 重炭酸ナトリウムで洗浄した。蒸発後に
得られたペプチドを、溶媒として酢酸エチルを用いた活
性チャコール上の10%Pdを用いて1時間水素添加した。
Acm基を、酢酸水銀(II)を用いてペプチドから除去
し、前記したHPLCを用いて精製した。
を含有するアセトニトリル 液速=9.5mL/分(ウォーターズ(Waters))および3.
5mL/分(ビダック(Vydac)) I.40分間でBを0−40% カラム:ウォーターズ C8 II.40分間でBを0−10% カラム:ウォーターズ C8 III.15分間でBを5−15% カラム:ビダック C8 IV.10分間でBを0−10% カラム:ビダック C8 V.40分間でBを5−60% カラム:ビダック C18 VI.60分間でBを5−60% カラム:ウォーターズ C18 VII.25分間でBを5−40% カラム:ビダック C18 VIII.40分間でBを10−25% カラム:ウォーターズ C
8 IX.40分間でBを10−30% カラム:ビダック C8 **TFA=トリフルオロ酢酸;(I)=ヨウ素化 配列リスト (1)一般情報: (i)出願人:セファロン・インコーポレイテッド
(Cephalon,Inc.) (ii)発明の名称:インスリン様成長因子およびアナ
ログの適用による網膜ニューロン障害の治療 (iii)配列数:79 (iv)通信住所: (A)受信人:フィッシュ・アンド・リチャードソ
ン(Fish & Richardson) (B)ストリート:フランクリン・ストリート225
番(225 Franklin Street) (C)都市:ボストン(Boston) (D)州:マサチューセッツ州 (E)国名:アメリカ合衆国 (F)郵便番号:02110−2804 (v)コンピューター判読型(readable form): (A)媒体型:3,5''ディスケット、1.44Mb (B)コンピューター:IBM PS/2モデル50Zまたは55
SX (C)オペレーティング・システム:MS−DOS(バー
ジョン5.0) (D)ソフトウェア:ワードパーフェクト(バージ
ョン5.1) (vi)現出願のデータ: (A)出願番号: (B)出願日: (C)分類: (vii)先の出願のデータ: (A)出願番号:07/790,690 (B)出願日:1991年11月8日 (viii)代理人情報: (A)氏名:クラーク,ポール・ティー(Cleak,Pa
ul T.) (B)登録番号:30,162 (C)参照/事件整理番号:02655/012002 (ix)通信情報: (A)電話:(617)542−5070 (B)ファックス:(617)542−8906 (C)テレックス:200154 (2)配列番号1についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:70 (B)形:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:1: (2)配列番号2についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:67 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:2: (2)配列番号3についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:18 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:3: (2)配列番号4についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:12 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:4: (2)配列番号5についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:9 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:5: (2)配列番号6についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:9 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:6: (2)配列番号7についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:18 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (ix)他の情報:Xaaは、カルボキシ末端のアミド基を
有するスレオニン (xi)配列:配列番号:7: (2)配列番号8についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:9 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (ix)他の情報:Xaaは、カルボキシ末端のアミド基を
有するスレオニン (xi)配列:配列番号:8: (2)配列番号9についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:16 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (ix)他の情報:Xaaは、カルボキシ末端のアミド基を
有するロイシン、Zaaは、側鎖に、アセトアミドメチル
置換基を有する (xi)配列:配列番号:9: (2)配列番号10についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:9 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:10: (2)配列番号11についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:14 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:11: (2)配列番号12についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:10 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:12: (2)配列番号13についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:14 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:13: (2)配列番号14についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:6 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:14: (2)配列番号15についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:8 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:15: (2)配列番号16についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:67 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:16: (2)配列番号17についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:16 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:17: (2)配列番号18についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:13 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:18: (2)配列番号19についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:10 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:19: (2)配列番号20についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:15 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:20: (2)配列番号21についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:19 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:21: (2)配列番号22についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:6 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:22: (2)配列番号23についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:5 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:23: (2)配列番号24についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:7 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (xi)配列:配列番号:24: (2)配列番号25についての情報 (i)配列の特徴: (A)鎖長:9 (B)型:アミノ酸 (C)鎖の数:測定されず (D)トポロジー:測定されず (ix)他の情報:Xaaは、ヨード化チロシンを示す。
す。
す。
す。
す。
す。
す。
である。
Claims (4)
- 【請求項1】IGF−I、IGF−IIまたはIGF−IIIを含む、
網膜退化を治療するための医薬組成物。 - 【請求項2】該網膜退化が、光退化、外傷、軸索切断、
神経毒−興奮性退化、虚血性ニューロン退化、遺伝性網
膜ジストロフィー、糖尿病網膜障害、アルツハイマー病
関連、小児悪性大理石骨病、セロイド脂褐素症または胆
嚢うっ滞である請求項1記載の医薬組成物。 - 【請求項3】該網膜退化が光受容体細胞についてのもの
である請求項1または2記載の医薬組成物。 - 【請求項4】IGF−I、IGF−IIまたはIGF−IIIを含有す
る、眼への移植に適したインプラント。
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