JP2759409B2 - カンゾウタケの栽培方法 - Google Patents
カンゾウタケの栽培方法Info
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- JP2759409B2 JP2759409B2 JP5241475A JP24147593A JP2759409B2 JP 2759409 B2 JP2759409 B2 JP 2759409B2 JP 5241475 A JP5241475 A JP 5241475A JP 24147593 A JP24147593 A JP 24147593A JP 2759409 B2 JP2759409 B2 JP 2759409B2
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- medium
- liquorice
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- solid medium
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Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、カンゾウタケの子実体
発生基から短期間で子実体を形成させることができるカ
ンゾウタケの人工栽培方法に関する。
発生基から短期間で子実体を形成させることができるカ
ンゾウタケの人工栽培方法に関する。
【0002】
【従来の技術】カンゾウタケ(Fistulina h
epatica)は、ビフテキ茸とも呼ばれ、自然界で
は5〜6月または10月頃、シイなどに発生する。その
子実体(傘)の形状は、肝臓状又は牛の舌状であり、表
面は赤紅色から暗赤褐色を呈する。また、その子実体の
大きさは直径10〜20cm程度である。このカンゾウ
タケは、子実体を薄く切り、生のまま、あるいはバター
等で炒めて食することができ、非常に美味なきのことし
て知られている。したがって、このカンゾウタケを栽培
し、年間を通して、多量に生産できれば、食生活を豊か
にし、また優れた加工食品を提供することができる。し
かし、近年、人工栽培によりきのこの生産量は高まって
いるが、その種類は限られており、カンゾウタケについ
ても人工栽培技術は確立していない。従来、カンゾウタ
ケの培養については、特公昭52−44603号公報及
び特公昭54−27912号公報に開示されているが、
これらの技術は、いずれもカンゾウタケの培養に使用し
た培地及びその培養によって得られた栄養菌糸体から坑
腫瘍性を有する物質を得ることを目的とするものであ
り、カンゾウタケの栄養菌糸体を多量に培養する技術で
あって、子実体を得ることを目的とするものではない。
従って、カンゾウタケの子実体を短期間で形成させるこ
とができるカンゾウタケの人工栽培方法が望まれてい
る。
epatica)は、ビフテキ茸とも呼ばれ、自然界で
は5〜6月または10月頃、シイなどに発生する。その
子実体(傘)の形状は、肝臓状又は牛の舌状であり、表
面は赤紅色から暗赤褐色を呈する。また、その子実体の
大きさは直径10〜20cm程度である。このカンゾウ
タケは、子実体を薄く切り、生のまま、あるいはバター
等で炒めて食することができ、非常に美味なきのことし
て知られている。したがって、このカンゾウタケを栽培
し、年間を通して、多量に生産できれば、食生活を豊か
にし、また優れた加工食品を提供することができる。し
かし、近年、人工栽培によりきのこの生産量は高まって
いるが、その種類は限られており、カンゾウタケについ
ても人工栽培技術は確立していない。従来、カンゾウタ
ケの培養については、特公昭52−44603号公報及
び特公昭54−27912号公報に開示されているが、
これらの技術は、いずれもカンゾウタケの培養に使用し
た培地及びその培養によって得られた栄養菌糸体から坑
腫瘍性を有する物質を得ることを目的とするものであ
り、カンゾウタケの栄養菌糸体を多量に培養する技術で
あって、子実体を得ることを目的とするものではない。
従って、カンゾウタケの子実体を短期間で形成させるこ
とができるカンゾウタケの人工栽培方法が望まれてい
る。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、カンゾウタ
ケの人工栽培においてカンゾウタケの子実体を短期間で
形成させることができる方法を提供することを目的とす
る。
ケの人工栽培においてカンゾウタケの子実体を短期間で
形成させることができる方法を提供することを目的とす
る。
【0004】
【課題を解決するための手段】本発明は、カンゾウタケ
の菌糸を培地中に蔓延させて子実体発生基が得られた
後、特定の温度条件下で子実体発生基を成長させると、
効率よく短期間で子実体を得ることができるとの知見に
基づいてなされたのである。すなわち、本発明は、
(1)カンゾウタケの菌糸が培地中に蔓延して子実体発
生基が得られた後、該子実体発生基を10〜30℃で1
〜30日間培養して子実体発生基から子実体原基を形成
させる工程及び(2)該子実体原基を10〜30℃で1
0〜40日間保って子実体を形成させる工程、とを含む
ことを特徴とするカンゾウタケの栽培方法を提供する。
本発明では、先ず、任意の方法で、きのこの種菌を培地
に接種する。一般的には、固体培地の表面にきのこの種
菌を接種する方法があげられるが、固体培地全体に種菌
を分散させて接種した後、該培地を培養すると短期間に
カンゾウタケの菌糸を培養基に蔓延させることができる
ので、固体培地全体に種菌を分散させて接種するのが好
ましい。
の菌糸を培地中に蔓延させて子実体発生基が得られた
後、特定の温度条件下で子実体発生基を成長させると、
効率よく短期間で子実体を得ることができるとの知見に
基づいてなされたのである。すなわち、本発明は、
(1)カンゾウタケの菌糸が培地中に蔓延して子実体発
生基が得られた後、該子実体発生基を10〜30℃で1
〜30日間培養して子実体発生基から子実体原基を形成
させる工程及び(2)該子実体原基を10〜30℃で1
0〜40日間保って子実体を形成させる工程、とを含む
ことを特徴とするカンゾウタケの栽培方法を提供する。
本発明では、先ず、任意の方法で、きのこの種菌を培地
に接種する。一般的には、固体培地の表面にきのこの種
菌を接種する方法があげられるが、固体培地全体に種菌
を分散させて接種した後、該培地を培養すると短期間に
カンゾウタケの菌糸を培養基に蔓延させることができる
ので、固体培地全体に種菌を分散させて接種するのが好
ましい。
【0005】カンゾウタケの培地としては、液体培地及
び固体培地があげられるが、固体培地が好ましく、任意
の固体培地を使用することができる。このうち、(a)
木質原料と(b)糖類と有機体窒素を含む栄養物質とを
含有し、pHが3.5 〜5.5 の範囲にある固体培養を使用
すると、より短期間でカンゾウタケの菌糸を培養基に蔓
延させることができるので、カンゾウタケの人工栽培の
実用化を行う上で好ましい。ここで、(a)の木質原料
としては、例えば、オガクズなどの木材の粉体を利用す
ることが好ましいが、その他にも樹木を粉砕機により粉
砕、若しくは割砕するか、あるいは鉋、スライサー等に
より薄片化したもの等も利用できる。
び固体培地があげられるが、固体培地が好ましく、任意
の固体培地を使用することができる。このうち、(a)
木質原料と(b)糖類と有機体窒素を含む栄養物質とを
含有し、pHが3.5 〜5.5 の範囲にある固体培養を使用
すると、より短期間でカンゾウタケの菌糸を培養基に蔓
延させることができるので、カンゾウタケの人工栽培の
実用化を行う上で好ましい。ここで、(a)の木質原料
としては、例えば、オガクズなどの木材の粉体を利用す
ることが好ましいが、その他にも樹木を粉砕機により粉
砕、若しくは割砕するか、あるいは鉋、スライサー等に
より薄片化したもの等も利用できる。
【0006】また、木質原料として用いる樹木は、ブ
ナ、シイ、コナラ、ミズナラ、ケヤキ、カシ、ハンノ
キ、シラカバ等の広葉樹、スギ、モミ、カラマツ、アカ
マツ、ヒノキ等の針葉樹のいずれであってもよいが、特
にブナ、シイ、コナラ、ミズナラが好ましい。なお、木
質原料は、目開き11.10mm の篩を通過でき、かつ目開き
850μmの篩を通過し得ないもの、好ましくは目開き6.
00mmの篩を通過でき、かつ目開き1.00mmの篩を通過し得
ないものが、全体の50重量%以上、好ましくは70重量%
以上、さらに好ましくは80重量%以上を占めるものであ
る。より短期間でカンゾウタケの菌糸を培養基に蔓延さ
せるためである。
ナ、シイ、コナラ、ミズナラ、ケヤキ、カシ、ハンノ
キ、シラカバ等の広葉樹、スギ、モミ、カラマツ、アカ
マツ、ヒノキ等の針葉樹のいずれであってもよいが、特
にブナ、シイ、コナラ、ミズナラが好ましい。なお、木
質原料は、目開き11.10mm の篩を通過でき、かつ目開き
850μmの篩を通過し得ないもの、好ましくは目開き6.
00mmの篩を通過でき、かつ目開き1.00mmの篩を通過し得
ないものが、全体の50重量%以上、好ましくは70重量%
以上、さらに好ましくは80重量%以上を占めるものであ
る。より短期間でカンゾウタケの菌糸を培養基に蔓延さ
せるためである。
【0007】(b)の栄養物質は、糖類と有機体窒素と
を含むものである。この栄養物質として、グルコース、
ショ糖、デンプン、α化デンプン、マルツエキス等の糖
類、及びアミノ酸類、ペプトン、酵母エキス等の有機体
窒素を、それぞれについて1種又は2種以上を選択して
混合したものを使用できる。また、最初から糖類と有機
体窒素とを含む栄養物質として、例えば、トウモロコシ
の芯を粉砕して粒状又は粉状にしたコーンコブやコーン
ブランなどのトウモロコシ系の栄養添加物、オカラ、脱
脂大豆、大豆粉等の大豆系の栄養添加物、小麦胚芽、ラ
イ麦の全粒粉、カラス麦の全粒粉等の麦系等の栄養添加
物、米ヌカ、フスマ、麹などを挙げることができ、これ
らのなかでも、特に麹が好ましい。また、最初から糖類
と有機体窒素とを含む栄養物質に、糖類及び/又は有機
体窒素を加えて使用してもよい。なお、この栄養物質に
含まれる糖類及び有機体窒素の含量は、特に制限されな
いが、糖類は、栄養物質全体の0.1〜90重量%、有
機体窒素は0.02〜50重量%であるのが好ましい。
また、前記木質原料と栄養物質との使用比率は、特に制
限されないが、乾燥重量として1:1〜9:1、好まし
くは3:1〜9:1となるようにする。なお、この固体
培地に、必要に応じてリン酸塩、マグネシウム塩、カル
シウム塩等の無機質及び金属塩類を添加しても良い。
を含むものである。この栄養物質として、グルコース、
ショ糖、デンプン、α化デンプン、マルツエキス等の糖
類、及びアミノ酸類、ペプトン、酵母エキス等の有機体
窒素を、それぞれについて1種又は2種以上を選択して
混合したものを使用できる。また、最初から糖類と有機
体窒素とを含む栄養物質として、例えば、トウモロコシ
の芯を粉砕して粒状又は粉状にしたコーンコブやコーン
ブランなどのトウモロコシ系の栄養添加物、オカラ、脱
脂大豆、大豆粉等の大豆系の栄養添加物、小麦胚芽、ラ
イ麦の全粒粉、カラス麦の全粒粉等の麦系等の栄養添加
物、米ヌカ、フスマ、麹などを挙げることができ、これ
らのなかでも、特に麹が好ましい。また、最初から糖類
と有機体窒素とを含む栄養物質に、糖類及び/又は有機
体窒素を加えて使用してもよい。なお、この栄養物質に
含まれる糖類及び有機体窒素の含量は、特に制限されな
いが、糖類は、栄養物質全体の0.1〜90重量%、有
機体窒素は0.02〜50重量%であるのが好ましい。
また、前記木質原料と栄養物質との使用比率は、特に制
限されないが、乾燥重量として1:1〜9:1、好まし
くは3:1〜9:1となるようにする。なお、この固体
培地に、必要に応じてリン酸塩、マグネシウム塩、カル
シウム塩等の無機質及び金属塩類を添加しても良い。
【0008】前記木質原料と栄養物質とを含有する固体
培地の水分は、培地全体の重量に対して、50〜70重
量%、好ましくは50〜60重量%、特に好ましくは5
6〜58重量%である。固体培地においては、加熱殺菌
した後のpHを、3.5〜5.5、好ましくは4〜5.
2、さらに好ましくは4.2〜5.0とする。培地のp
Hは、添加する栄養剤の種類や量により変化する。従っ
て、この培地のpHの調整は、例えば、加熱殺菌前又は
加熱殺菌後の培養基に、適当な無機酸及び有機酸、例え
ば、塩酸溶液、乳酸溶液、酢酸溶液、コハク酸緩衝液等
を添加することにより行う。なお、培地のpH測定は、
培地5gを蒸留水50ml中に懸濁させ、10分間放置
した後にその懸濁液のpHを測定することにより行う。
上記固体培地を常法により殺菌した後に固体あるいは液
体の種菌を上記固体培地に無菌的に均一に混合し菌を固
体培地中に分散させて培養を行う。殺菌後の固体培地を
クリーンベンチ等の無菌的な環境下で種菌と無菌的に混
合したあとで種菌がほぼ均一に混合された固体培地を作
成し培養を開始する。あるいは、液体種菌等培地の隙間
に流し込むことができる形態の種菌を用いる場合は殺菌
後の固体培地に種菌を流し込むことにより、均一に種菌
が存在する固体培地を作成し培養を開始してもよい。
培地の水分は、培地全体の重量に対して、50〜70重
量%、好ましくは50〜60重量%、特に好ましくは5
6〜58重量%である。固体培地においては、加熱殺菌
した後のpHを、3.5〜5.5、好ましくは4〜5.
2、さらに好ましくは4.2〜5.0とする。培地のp
Hは、添加する栄養剤の種類や量により変化する。従っ
て、この培地のpHの調整は、例えば、加熱殺菌前又は
加熱殺菌後の培養基に、適当な無機酸及び有機酸、例え
ば、塩酸溶液、乳酸溶液、酢酸溶液、コハク酸緩衝液等
を添加することにより行う。なお、培地のpH測定は、
培地5gを蒸留水50ml中に懸濁させ、10分間放置
した後にその懸濁液のpHを測定することにより行う。
上記固体培地を常法により殺菌した後に固体あるいは液
体の種菌を上記固体培地に無菌的に均一に混合し菌を固
体培地中に分散させて培養を行う。殺菌後の固体培地を
クリーンベンチ等の無菌的な環境下で種菌と無菌的に混
合したあとで種菌がほぼ均一に混合された固体培地を作
成し培養を開始する。あるいは、液体種菌等培地の隙間
に流し込むことができる形態の種菌を用いる場合は殺菌
後の固体培地に種菌を流し込むことにより、均一に種菌
が存在する固体培地を作成し培養を開始してもよい。
【0009】具体的には、上記固体培地を、所定の容
器、好ましくは、酸素や二酸化炭素等の気体は通すが、
細菌の侵入を防止できるフィルター付き容器に充填す
る。続いて、この培地を、例えば100〜120°C、
30〜300分間の条件で加熱殺菌処理を施す。その
後、前記の殺菌処理した固体培地に、無菌的に種菌を混
合して、種菌が固体培地に全体に万遍なく分散するよう
にして接種し、この固体培地を、前記した酸素や二酸化
炭素等の気体を通すが、胞子等の浸入を防止できるフィ
ルター付容器に充填し、温度10〜30℃、好ましくは
20〜25℃、湿度50〜90%、好ましくは60〜9
0%で培養する。種菌を接種した後、従来の接種方法に
よるよりも短期間で固体培地全体に菌糸が蔓延する。
器、好ましくは、酸素や二酸化炭素等の気体は通すが、
細菌の侵入を防止できるフィルター付き容器に充填す
る。続いて、この培地を、例えば100〜120°C、
30〜300分間の条件で加熱殺菌処理を施す。その
後、前記の殺菌処理した固体培地に、無菌的に種菌を混
合して、種菌が固体培地に全体に万遍なく分散するよう
にして接種し、この固体培地を、前記した酸素や二酸化
炭素等の気体を通すが、胞子等の浸入を防止できるフィ
ルター付容器に充填し、温度10〜30℃、好ましくは
20〜25℃、湿度50〜90%、好ましくは60〜9
0%で培養する。種菌を接種した後、従来の接種方法に
よるよりも短期間で固体培地全体に菌糸が蔓延する。
【0010】本発明では、上記種菌を接種した培地は、
任意の方法により培養してカンゾウタケの菌糸を培地中
に蔓延させて子実体発生基を得る。この際、15〜32
℃で15〜60日間培養するのがよい。より好ましく
は、25℃付近、相対湿度50〜85%の暗条件下で培
養するのがよい。このようにして、カンゾウタケの菌糸
が培地中に蔓延して子実体発生基が得られた後、該子実
体発生基を10〜30℃で1〜30日間培養して子実体
発生基から子実体原基を形成させる。より好ましくは、
15〜20℃、相対湿度70%以上(好ましくは75〜
90%)、50〜1000ルックスの明条件下で行うの
がよい。特に、暗条件下で培養して子実体発生基を得た
後、温度を2〜15℃、好ましくは5〜12℃低下させ
て明条件下に培養するのがよい。
任意の方法により培養してカンゾウタケの菌糸を培地中
に蔓延させて子実体発生基を得る。この際、15〜32
℃で15〜60日間培養するのがよい。より好ましく
は、25℃付近、相対湿度50〜85%の暗条件下で培
養するのがよい。このようにして、カンゾウタケの菌糸
が培地中に蔓延して子実体発生基が得られた後、該子実
体発生基を10〜30℃で1〜30日間培養して子実体
発生基から子実体原基を形成させる。より好ましくは、
15〜20℃、相対湿度70%以上(好ましくは75〜
90%)、50〜1000ルックスの明条件下で行うの
がよい。特に、暗条件下で培養して子実体発生基を得た
後、温度を2〜15℃、好ましくは5〜12℃低下させ
て明条件下に培養するのがよい。
【0011】このようにして子実体原基を形成させた
後、本発明では、10〜30℃で10〜40日間保って
子実体を形成させる。好ましくは、15〜20℃、相対
湿度90%以上(好ましくは95〜98%)、50〜1
000ルックスの明条件下で行うのがよい。特に、子実
体原基を形成させた後、湿度を5%以上増加させた多湿
条件下で栽培するのがよい。
後、本発明では、10〜30℃で10〜40日間保って
子実体を形成させる。好ましくは、15〜20℃、相対
湿度90%以上(好ましくは95〜98%)、50〜1
000ルックスの明条件下で行うのがよい。特に、子実
体原基を形成させた後、湿度を5%以上増加させた多湿
条件下で栽培するのがよい。
【0012】
【発明の効果】本発明によれば、短期間にカンゾウタケ
の子実体を形成することができるので、本発明の栽培方
法は、実用的なカンゾウタケの人工栽培を行うのに極め
て適した方法である。次に、本発明の内容を実施例によ
り説明する。
の子実体を形成することができるので、本発明の栽培方
法は、実用的なカンゾウタケの人工栽培を行うのに極め
て適した方法である。次に、本発明の内容を実施例によ
り説明する。
【0013】
【実施例】実施例1 目開き2mmの篩を通過せず、かつ目開き6mmの篩を
通過するブナのチップ(全体の100重量%)979
g、乾燥麹178gを混合し、更にこの混合物に水分が
60重量%になるように水を加え、固体培地を得た。続
いて、得られた固体培地を2.5kg容量のフィルター
付き、きのこ培養用パウチ(商品名;キノパック、製造
者;日昌(株))に密度が0.5g/cm3となるよう
に充填し、これに121℃、60分の条件で加熱殺菌処
理を施した。加熱殺菌後の固体培地は、pH4.9であ
った。その後、無菌的な条件下でカンゾウタケの種菌1
7g(上記固体培地と同じ組成の培地に培養して得た種
菌)を、該加熱殺菌した固体培地に加えて混合し、種菌
を固体培地中に均一に分散させた。この固体培地を、温
度25℃、湿度85%、暗所の条件下で25日間培養し
てカンゾウタケの子実体発生基を形成させた。その後、
温度20℃、湿度90%、200ルックスの条件下で5
日間培養してカンゾウタケの原基を形成し、さらに温度
13〜23℃、湿度90%以上、200ルックスの条件
下で19日間培養して子実体を得た。
通過するブナのチップ(全体の100重量%)979
g、乾燥麹178gを混合し、更にこの混合物に水分が
60重量%になるように水を加え、固体培地を得た。続
いて、得られた固体培地を2.5kg容量のフィルター
付き、きのこ培養用パウチ(商品名;キノパック、製造
者;日昌(株))に密度が0.5g/cm3となるよう
に充填し、これに121℃、60分の条件で加熱殺菌処
理を施した。加熱殺菌後の固体培地は、pH4.9であ
った。その後、無菌的な条件下でカンゾウタケの種菌1
7g(上記固体培地と同じ組成の培地に培養して得た種
菌)を、該加熱殺菌した固体培地に加えて混合し、種菌
を固体培地中に均一に分散させた。この固体培地を、温
度25℃、湿度85%、暗所の条件下で25日間培養し
てカンゾウタケの子実体発生基を形成させた。その後、
温度20℃、湿度90%、200ルックスの条件下で5
日間培養してカンゾウタケの原基を形成し、さらに温度
13〜23℃、湿度90%以上、200ルックスの条件
下で19日間培養して子実体を得た。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭62−155025(JP,A) 特開 昭62−205721(JP,A) 特開 昭58−56614(JP,A) 特開 昭56−23814(JP,A) 特開 平1−231823(JP,A) 特開 昭58−116609(JP,A) 特開 平4−330228(JP,A) (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) A01G 1/04
Claims (1)
- 【請求項1】 (1)カンゾウタケの菌糸が培地中に蔓
延して子実体発生基が得られた後、該子実体発生基を1
0〜30℃で1〜30日間培養して子実体発生基から子
実体原基を形成させる工程及び(2)該子実体原基を1
0〜30℃で10〜40日間保って子実体を形成させる
工程、とを含むことを特徴とするカンゾウタケの栽培方
法。
Priority Applications (12)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP5241475A JP2759409B2 (ja) | 1993-09-28 | 1993-09-28 | カンゾウタケの栽培方法 |
US08/305,353 US5590489A (en) | 1993-09-28 | 1994-09-13 | Method for growing fruit body of Fistulina hepatica |
GB9502142A GB2284428B (en) | 1993-09-28 | 1994-09-16 | Method for mixing inocula of Fistulina hepatica with a sterilized solid culture medium |
GB9418742A GB2282388B (en) | 1993-09-28 | 1994-09-16 | Method for growing fruit bodies of Fistulina hepatica |
GB9502143A GB2284429B (en) | 1993-09-28 | 1994-09-16 | Method for forming fruit bodies of Fistulina hepatica |
TW083108710A TW283622B (ja) | 1993-09-28 | 1994-09-22 | |
NL9401563A NL192716C (nl) | 1993-09-28 | 1994-09-26 | Werkwijze voor het kweken van vruchtlichamen van paddestoelen. |
FR9411525A FR2710493B1 (fr) | 1993-09-28 | 1994-09-27 | Procédé pour faire développer le chapeau de Fistulina Hepatica. |
CN94116581A CN1051202C (zh) | 1993-09-28 | 1994-09-27 | 使肝色牛排菌子实体生长的方法 |
KR1019940024568A KR0136838B1 (ko) | 1993-09-28 | 1994-09-28 | 소 혀 버섯의 자실체 생육방법 |
DE4434681A DE4434681A1 (de) | 1993-09-28 | 1994-09-28 | Verfahren zum Züchten von Fruchtkörpern von Fistulina hepatica |
NL9700003A NL9700003A (nl) | 1993-09-28 | 1997-04-09 | Werkwijze voor het inoculeren van Fistulina hepatica. |
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP5241475A JP2759409B2 (ja) | 1993-09-28 | 1993-09-28 | カンゾウタケの栽培方法 |
US08/305,353 US5590489A (en) | 1993-09-28 | 1994-09-13 | Method for growing fruit body of Fistulina hepatica |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH0795821A JPH0795821A (ja) | 1995-04-11 |
JP2759409B2 true JP2759409B2 (ja) | 1998-05-28 |
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ID=26535282
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1993
- 1993-09-28 JP JP5241475A patent/JP2759409B2/ja not_active Expired - Fee Related
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