JP2759410B2 - カンゾウタケの子実体生育方法 - Google Patents
カンゾウタケの子実体生育方法Info
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Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、カンゾウタケの大型の
成熟子実体を効率よく形成させることができるカンゾウ
タケの子実体生育方法に関する。
成熟子実体を効率よく形成させることができるカンゾウ
タケの子実体生育方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】カンゾウタケ（Ｆｉｓｔｕｌｉｎａ ｈ
ｅｐａｔｉｃａ）は、ビフテキ茸とも呼ばれ、自然界で
は５〜６月または１０月頃、シイなどに発生する。その
子実体（傘）の形状は、肝臓状又は牛の舌状であり、表
面は赤紅色から暗赤褐色を呈する。また、その子実体の
大きさは直径１０〜２０ｃｍ程度である。このカンゾウ
タケは、子実体を薄く切り、生のまま、あるいはバター
等で炒めて食することができ、非常に美味なきのことし
て知られている。したがって、このカンゾウタケを栽培
し、年間を通して、多量に生産できれば、食生活を豊か
にし、また優れた加工食品を提供することができる。し
かし、近年、人工栽培によりきのこの生産量は高まって
いるが、その種類は限られており、カンゾウタケについ
ても人工栽培技術は確立していない。従来、カンゾウタ
ケの培養については、特公昭５２−４４６０３号公報及
び特公昭５４−２７９１２号公報に開示されているが、
これらの技術は、いずれもカンゾウタケの培養に使用し
た培地及びその培養によって得られた栄養菌糸体から坑
腫瘍性を有する物質を得ることを目的とするものであ
り、カンゾウタケの栄養菌糸体を多量に培養する技術で
あって、子実体を得ることを目的とするものではない。
従って、カンゾウタケの成熟子実体、特に大きな成熟子
実体を短期間で形成させることができるカンゾウタケの
人工栽培方法が望まれている。
ｅｐａｔｉｃａ）は、ビフテキ茸とも呼ばれ、自然界で
は５〜６月または１０月頃、シイなどに発生する。その
子実体（傘）の形状は、肝臓状又は牛の舌状であり、表
面は赤紅色から暗赤褐色を呈する。また、その子実体の
大きさは直径１０〜２０ｃｍ程度である。このカンゾウ
タケは、子実体を薄く切り、生のまま、あるいはバター
等で炒めて食することができ、非常に美味なきのことし
て知られている。したがって、このカンゾウタケを栽培
し、年間を通して、多量に生産できれば、食生活を豊か
にし、また優れた加工食品を提供することができる。し
かし、近年、人工栽培によりきのこの生産量は高まって
いるが、その種類は限られており、カンゾウタケについ
ても人工栽培技術は確立していない。従来、カンゾウタ
ケの培養については、特公昭５２−４４６０３号公報及
び特公昭５４−２７９１２号公報に開示されているが、
これらの技術は、いずれもカンゾウタケの培養に使用し
た培地及びその培養によって得られた栄養菌糸体から坑
腫瘍性を有する物質を得ることを目的とするものであ
り、カンゾウタケの栄養菌糸体を多量に培養する技術で
あって、子実体を得ることを目的とするものではない。
従って、カンゾウタケの成熟子実体、特に大きな成熟子
実体を短期間で形成させることができるカンゾウタケの
人工栽培方法が望まれている。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、カンゾウタ
ケの人工栽培においてカンゾウタケの子実体原基が形成
された後、大型の成熟子実体を形成させることができる
方法を提供することを目的とする。
ケの人工栽培においてカンゾウタケの子実体原基が形成
された後、大型の成熟子実体を形成させることができる
方法を提供することを目的とする。
【０００４】
【課題を解決するための手段】本発明は、培地に子実体
原基が形成された後、子実体原基の回りの容器の壁面を
除き、子実体を容器の外側に成長させると、効率よく短
期間で成熟子実体を得ることができるとの知見に基づい
てなされたのである。すなわち、本発明は、少なくとも
底部と側面とを有する培養容器内の固体培地に形成され
たカンゾウタケの子実体原基形成部の周辺の容器の一部
を切開し、該切開された部分を通ってカンンゾウタケの
子実体を容器の外に延ばして成長させることを特徴とす
るカンゾウタケの子実体生育方法を提供する。本発明で
は、先ず、任意の方法で、きのこの種菌を培地に接種す
る。一般的には、固体培地の表面にきのこの種菌を接種
する方法があげられるが、固体培地全体に種菌を分散さ
せて接種した後、該培地を培養すると短期間にカンゾウ
タケの菌糸を蔓延させることができるので好ましい。
原基が形成された後、子実体原基の回りの容器の壁面を
除き、子実体を容器の外側に成長させると、効率よく短
期間で成熟子実体を得ることができるとの知見に基づい
てなされたのである。すなわち、本発明は、少なくとも
底部と側面とを有する培養容器内の固体培地に形成され
たカンゾウタケの子実体原基形成部の周辺の容器の一部
を切開し、該切開された部分を通ってカンンゾウタケの
子実体を容器の外に延ばして成長させることを特徴とす
るカンゾウタケの子実体生育方法を提供する。本発明で
は、先ず、任意の方法で、きのこの種菌を培地に接種す
る。一般的には、固体培地の表面にきのこの種菌を接種
する方法があげられるが、固体培地全体に種菌を分散さ
せて接種した後、該培地を培養すると短期間にカンゾウ
タケの菌糸を蔓延させることができるので好ましい。
【０００５】カンゾウタケの培地としては、液体培地及
び固体培地があげられるが、固体培地が好ましく、任意
の固体培地を使用することができる。このうち、（ａ）
木質原料と（ｂ）糖類と有機体窒素を含む栄養物質とを
含有し、ｐＨが3.5 〜5.5 の範囲にある固体培養を使用
すると、より短期間でカンゾウタケの菌糸を培養基に蔓
延させることができるので、カンゾウタケの人工栽培の
実用化を行う上で好ましい。ここで、（ａ）の木質原料
としては、例えば、オガクズなどの木材の粉体を利用す
ることが好ましいが、その他にも樹木を粉砕機により粉
砕、若しくは割砕するか、あるいは鉋、スライサー等に
より薄片化したもの等も利用できる。
び固体培地があげられるが、固体培地が好ましく、任意
の固体培地を使用することができる。このうち、（ａ）
木質原料と（ｂ）糖類と有機体窒素を含む栄養物質とを
含有し、ｐＨが3.5 〜5.5 の範囲にある固体培養を使用
すると、より短期間でカンゾウタケの菌糸を培養基に蔓
延させることができるので、カンゾウタケの人工栽培の
実用化を行う上で好ましい。ここで、（ａ）の木質原料
としては、例えば、オガクズなどの木材の粉体を利用す
ることが好ましいが、その他にも樹木を粉砕機により粉
砕、若しくは割砕するか、あるいは鉋、スライサー等に
より薄片化したもの等も利用できる。
【０００６】また、木質原料として用いる樹木は、ブ
ナ、シイ、コナラ、ミズナラ、ケヤキ、カシ、ハンノ
キ、シラカバ等の広葉樹、スギ、モミ、カラマツ、アカ
マツ、ヒノキ等の針葉樹のいずれであってもよいが、特
にブナ、シイ、コナラ、ミズナラが好ましい。なお、木
質原料は、目開き11.10mm の篩を通過でき、かつ目開き
850μｍの篩を通過し得ないもの、好ましくは目開き6.
00mmの篩を通過でき、かつ目開き1.00mmの篩を通過し得
ないものが、全体の50重量％以上、好ましくは70重量％
以上、さらに好ましくは80重量％以上を占めるものであ
る。より短期間でカンゾウタケの菌糸を培養基に蔓延さ
せるためである。
ナ、シイ、コナラ、ミズナラ、ケヤキ、カシ、ハンノ
キ、シラカバ等の広葉樹、スギ、モミ、カラマツ、アカ
マツ、ヒノキ等の針葉樹のいずれであってもよいが、特
にブナ、シイ、コナラ、ミズナラが好ましい。なお、木
質原料は、目開き11.10mm の篩を通過でき、かつ目開き
850μｍの篩を通過し得ないもの、好ましくは目開き6.
00mmの篩を通過でき、かつ目開き1.00mmの篩を通過し得
ないものが、全体の50重量％以上、好ましくは70重量％
以上、さらに好ましくは80重量％以上を占めるものであ
る。より短期間でカンゾウタケの菌糸を培養基に蔓延さ
せるためである。
【０００７】（ｂ）の栄養物質は、糖類と有機体窒素と
を含むものである。この栄養物質として、グルコース、
ショ糖、デンプン、α化デンプン、マルツエキス等の糖
類、及びアミノ酸類、ペプトン、酵母エキス等の有機体
窒素を、それぞれについて１種又は２種以上を選択して
混合したものを使用できる。また、最初から糖類と有機
体窒素とを含む栄養物質として、例えば、トウモロコシ
の芯を粉砕して粒状又は粉状にしたコーンコブやコーン
ブランなどのトウモロコシ系の栄養添加物、オカラ、脱
脂大豆、大豆粉等の大豆系の栄養添加物、小麦胚芽、ラ
イ麦の全粒粉、カラス麦の全粒粉等の麦系等の栄養添加
物、米ヌカ、フスマ、麹などを挙げることができ、これ
らのなかでも、特に麹が好ましい。また、最初から糖類
と有機体窒素とを含む栄養物質に、糖類及び／又は有機
体窒素を加えて使用してもよい。なお、この栄養物質に
含まれる糖類及び有機体窒素の含量は、特に制限されな
いが、糖類は、栄養物質全体の０．１〜９０重量％、有
機体窒素は０．０２〜５０重量％であるのが好ましい。
また、前記木質原料と栄養物質との使用比率は、特に制
限されないが、乾燥重量として１：１〜９：１、好まし
くは３：１〜９：１となるようにする。尚、この固体培
地に、必要に応じてリン酸塩、マグネシウム塩、カルシ
ウム塩等の無機質及び金属塩類を添加しても良い。
を含むものである。この栄養物質として、グルコース、
ショ糖、デンプン、α化デンプン、マルツエキス等の糖
類、及びアミノ酸類、ペプトン、酵母エキス等の有機体
窒素を、それぞれについて１種又は２種以上を選択して
混合したものを使用できる。また、最初から糖類と有機
体窒素とを含む栄養物質として、例えば、トウモロコシ
の芯を粉砕して粒状又は粉状にしたコーンコブやコーン
ブランなどのトウモロコシ系の栄養添加物、オカラ、脱
脂大豆、大豆粉等の大豆系の栄養添加物、小麦胚芽、ラ
イ麦の全粒粉、カラス麦の全粒粉等の麦系等の栄養添加
物、米ヌカ、フスマ、麹などを挙げることができ、これ
らのなかでも、特に麹が好ましい。また、最初から糖類
と有機体窒素とを含む栄養物質に、糖類及び／又は有機
体窒素を加えて使用してもよい。なお、この栄養物質に
含まれる糖類及び有機体窒素の含量は、特に制限されな
いが、糖類は、栄養物質全体の０．１〜９０重量％、有
機体窒素は０．０２〜５０重量％であるのが好ましい。
また、前記木質原料と栄養物質との使用比率は、特に制
限されないが、乾燥重量として１：１〜９：１、好まし
くは３：１〜９：１となるようにする。尚、この固体培
地に、必要に応じてリン酸塩、マグネシウム塩、カルシ
ウム塩等の無機質及び金属塩類を添加しても良い。
【０００８】前記木質原料と栄養物質とを含有する固体
培地の水分は、培地全体の重量に対して、５０〜７０重
量％、好ましくは５０〜６０重量％、特に好ましくは５
６〜５８重量％である。固体培地においては、加熱殺菌
した後のｐＨを、３．５〜５．５、好ましくは４〜５．
２、さらに好ましくは４．２〜５．０とする。培地のｐ
Ｈは、添加する栄養剤の種類や量により変化する。従っ
て、この培地のｐＨの調整は、例えば、加熱殺菌前又は
加熱殺菌後の培養基に、適当な無機酸及び有機酸、例え
ば、塩酸溶液、乳酸溶液、酢酸溶液、コハク酸緩衝液等
を添加することにより行う。なお、培地のｐＨ測定は、
培地５ｇを蒸留水５０ｍｌ中に懸濁させ、１０分間放置
した後にその懸濁液のｐＨを測定することにより行う。
上記固体培地を常法により殺菌した後に固体あるいは液
体の種菌を上記固体培地に無菌的に均一に混合し菌を固
体培地中に分散させて培養を行う。殺菌後の固体培地を
クリーンベンチ等の無菌的な環境下で種菌と無菌的に混
合したあとで種菌がほぼ均一に混合された固体培地を作
成し培養を開始する。あるいは、液体種菌等培地の隙間
に流し込むことができる形態の種菌を用いる場合は殺菌
後の固体培地に種菌を流し込むことにより、均一に種菌
が存在する固体培地を作成し培養を開始してもよい。
尚、固体培地に対して任意の量の種菌を分散させること
ができるが、好ましくは固体培地１００重量部あたり、
０．４重量部以上、好ましくは０．４〜２０重量部、よ
り好ましくは１〜１０重量部である。
培地の水分は、培地全体の重量に対して、５０〜７０重
量％、好ましくは５０〜６０重量％、特に好ましくは５
６〜５８重量％である。固体培地においては、加熱殺菌
した後のｐＨを、３．５〜５．５、好ましくは４〜５．
２、さらに好ましくは４．２〜５．０とする。培地のｐ
Ｈは、添加する栄養剤の種類や量により変化する。従っ
て、この培地のｐＨの調整は、例えば、加熱殺菌前又は
加熱殺菌後の培養基に、適当な無機酸及び有機酸、例え
ば、塩酸溶液、乳酸溶液、酢酸溶液、コハク酸緩衝液等
を添加することにより行う。なお、培地のｐＨ測定は、
培地５ｇを蒸留水５０ｍｌ中に懸濁させ、１０分間放置
した後にその懸濁液のｐＨを測定することにより行う。
上記固体培地を常法により殺菌した後に固体あるいは液
体の種菌を上記固体培地に無菌的に均一に混合し菌を固
体培地中に分散させて培養を行う。殺菌後の固体培地を
クリーンベンチ等の無菌的な環境下で種菌と無菌的に混
合したあとで種菌がほぼ均一に混合された固体培地を作
成し培養を開始する。あるいは、液体種菌等培地の隙間
に流し込むことができる形態の種菌を用いる場合は殺菌
後の固体培地に種菌を流し込むことにより、均一に種菌
が存在する固体培地を作成し培養を開始してもよい。
尚、固体培地に対して任意の量の種菌を分散させること
ができるが、好ましくは固体培地１００重量部あたり、
０．４重量部以上、好ましくは０．４〜２０重量部、よ
り好ましくは１〜１０重量部である。
【０００９】具体的には、上記固体培地を、適宜容器に
充填後殺菌するが、種菌を接種後カンゾウタケの子実体
を容器の外に延ばして成長させるために用いるのと同じ
容器に充填し殺菌するのが好ましい。このような容器と
しては、少なくとも底部と側面とを有する容器、特に好
ましくは酸素や二酸化炭素等の気体は通すが、胞子等の
侵入を防止できるフィルター付き密封容器、特に容器壁
を容易に切開くことができるプラスチック製の袋があげ
られる。このうち、透明又は半透明のように容器内部に
形成されるカンンゾウタケの子実体原基が容器の外から
見ることができるものが好ましい。特に好ましくは、ポ
リエチレン、ポリプロピレンなどのポリオレフイン、ポ
リエチレンテレフタレートなどのエステルやナイロンな
どの１種又はこれらの多層フィルムから形成された可と
う製のプラスチック製の袋があげられる。該フィルムの
厚みとしては、１０〜８０μｍ程度のものが好ましい。
ここで、プラスチックフィルム自体が酸素と二酸化炭素
等の気体を通す場合には、フィルターを設ける必要がな
いが、通常、０．０５〜２μｍの通気孔を有するポリテ
トラフルオロエチレン、ポリ弗化ビニリデン、セルロー
ス混合エステル、ポリカーボネートなどのフィルターを
設けるのが好ましい。このようなフィルターは、デュラ
ポアメンブレンフィルター（日本ミリポアリミテッド）
などとして容易に入手することができる。本発明におい
ては、固体培地を殺菌するまでは上記容器とは別の容器
を用いてもよく、種菌の接種時に、上記の容器に移して
もよい。容器に固体培地を入れた後、この培地を、例え
ば１００〜１２０°Ｃ、３０〜３００分間の条件で加熱
殺菌処理を施すのがよい。種菌を接種し培養するに際
し、容器に充填する固体培地の量は任意とすることがで
きるが、容器容量の５０〜８５％を占めるように充填す
るのがよい。
充填後殺菌するが、種菌を接種後カンゾウタケの子実体
を容器の外に延ばして成長させるために用いるのと同じ
容器に充填し殺菌するのが好ましい。このような容器と
しては、少なくとも底部と側面とを有する容器、特に好
ましくは酸素や二酸化炭素等の気体は通すが、胞子等の
侵入を防止できるフィルター付き密封容器、特に容器壁
を容易に切開くことができるプラスチック製の袋があげ
られる。このうち、透明又は半透明のように容器内部に
形成されるカンンゾウタケの子実体原基が容器の外から
見ることができるものが好ましい。特に好ましくは、ポ
リエチレン、ポリプロピレンなどのポリオレフイン、ポ
リエチレンテレフタレートなどのエステルやナイロンな
どの１種又はこれらの多層フィルムから形成された可と
う製のプラスチック製の袋があげられる。該フィルムの
厚みとしては、１０〜８０μｍ程度のものが好ましい。
ここで、プラスチックフィルム自体が酸素と二酸化炭素
等の気体を通す場合には、フィルターを設ける必要がな
いが、通常、０．０５〜２μｍの通気孔を有するポリテ
トラフルオロエチレン、ポリ弗化ビニリデン、セルロー
ス混合エステル、ポリカーボネートなどのフィルターを
設けるのが好ましい。このようなフィルターは、デュラ
ポアメンブレンフィルター（日本ミリポアリミテッド）
などとして容易に入手することができる。本発明におい
ては、固体培地を殺菌するまでは上記容器とは別の容器
を用いてもよく、種菌の接種時に、上記の容器に移して
もよい。容器に固体培地を入れた後、この培地を、例え
ば１００〜１２０°Ｃ、３０〜３００分間の条件で加熱
殺菌処理を施すのがよい。種菌を接種し培養するに際
し、容器に充填する固体培地の量は任意とすることがで
きるが、容器容量の５０〜８５％を占めるように充填す
るのがよい。
【００１０】本発明では、種菌を接種した容器入り培地
で、任意の方法により培養してカンゾウタケの菌糸を培
地中に蔓延させて子実体発生基を得る。具体的には、殺
菌処理した固体培地に、無菌的に種菌を混合して、種菌
が固体培地に全体に万遍なく分散するようにして接種
し、この固体培地を、１５〜３２℃で１５〜６０日間培
養するのがよい。より好ましくは、２５℃付近、相対湿
度５０〜８５％の暗条件下で培養するのがよい。このよ
うにすると種菌を接種した後、従来の方法によるよりも
短期間で固体培地全体に菌糸が蔓延する。このようにし
て、任意の条件で培養を継続することができるが、カン
ゾウタケの菌糸が培地中に蔓延して子実体発生基が得ら
れた後、該子実体発生基を１０〜３０℃で１〜３０日間
培養して子実体発生基から子実体原基を形成させるのが
好ましい。より好ましくは、１５〜２０℃、相対湿度７
０％以上（好ましくは７５〜９０％）、５０〜１０００
ルックスの明条件下で行うのがよい。特に、暗条件下で
培養して子実体発生基を得た後、温度を２〜１５℃、好
ましくは５〜１２℃低下させて明条件下に培養するのが
よい。
で、任意の方法により培養してカンゾウタケの菌糸を培
地中に蔓延させて子実体発生基を得る。具体的には、殺
菌処理した固体培地に、無菌的に種菌を混合して、種菌
が固体培地に全体に万遍なく分散するようにして接種
し、この固体培地を、１５〜３２℃で１５〜６０日間培
養するのがよい。より好ましくは、２５℃付近、相対湿
度５０〜８５％の暗条件下で培養するのがよい。このよ
うにすると種菌を接種した後、従来の方法によるよりも
短期間で固体培地全体に菌糸が蔓延する。このようにし
て、任意の条件で培養を継続することができるが、カン
ゾウタケの菌糸が培地中に蔓延して子実体発生基が得ら
れた後、該子実体発生基を１０〜３０℃で１〜３０日間
培養して子実体発生基から子実体原基を形成させるのが
好ましい。より好ましくは、１５〜２０℃、相対湿度７
０％以上（好ましくは７５〜９０％）、５０〜１０００
ルックスの明条件下で行うのがよい。特に、暗条件下で
培養して子実体発生基を得た後、温度を２〜１５℃、好
ましくは５〜１２℃低下させて明条件下に培養するのが
よい。
【００１１】このようにして子実体原基を形成させた
後、本発明では、子実体原基形成部の周辺の容器の一部
を切開し、該切開された部分を通ってカンンゾウタケの
子実体が容器の外に延びて成長できるようにする。具体
的には、容器の一部の切開は、容器の外から子実体原基
付近の容器の壁面に切り込みを入れるか又は子実体原基
発生部位を中心に２ｃｍ程の円形に容器の壁面又は上面
を切取ることにより行うが、生長する子実体が培養容器
に物理的に触れて生育が阻害されないような大きさ及び
形状であれば良い。しかしながら、なるべく取り除く面
積が少ないことが望ましい。また、前述の培養容器の取
り除きを行う際は培地および子実体原基を傷つけたり強
い刺激を与えると子実体が生長しなくなったり、子実体
原基あるいは小子実体が溶解することがあるので注意し
て行う。
後、本発明では、子実体原基形成部の周辺の容器の一部
を切開し、該切開された部分を通ってカンンゾウタケの
子実体が容器の外に延びて成長できるようにする。具体
的には、容器の一部の切開は、容器の外から子実体原基
付近の容器の壁面に切り込みを入れるか又は子実体原基
発生部位を中心に２ｃｍ程の円形に容器の壁面又は上面
を切取ることにより行うが、生長する子実体が培養容器
に物理的に触れて生育が阻害されないような大きさ及び
形状であれば良い。しかしながら、なるべく取り除く面
積が少ないことが望ましい。また、前述の培養容器の取
り除きを行う際は培地および子実体原基を傷つけたり強
い刺激を与えると子実体が生長しなくなったり、子実体
原基あるいは小子実体が溶解することがあるので注意し
て行う。
【００１２】本発明では、上記処理により、カンゾウタ
ケの子実体が該切開された部分を通って容器の外に延び
て成長し、大きな成熟子実体が得られる。このようにす
ると、培地の多くの部分が培養容器に覆われたままであ
るから、培地自体の乾燥が防止され、培地内の高温高湿
条件が一定に保たれるので、極めて効率的にカンゾウタ
ケの子実体を生育させることができる。この際、１０〜
３０℃で１０〜４０日間保って成熟子実体を形成させる
のがよい。好ましくは、１５〜２０℃、相対湿度９０％
以上（好ましくは９５〜９８％）、５０〜１０００ルッ
クスの明条件下で行うのがよい。特に、子実体原基を形
成させた後、湿度を５％以上増加させた多湿条件下で栽
培するのがよい。容器の切開された部分を通ってカンン
ゾウタケの子実体が容器の外に延びて成長している様子
を第１図に示す。図中、１は容器、２は容器に設けた切
開部、３は成熟子実体、４はフィルターを示す。
ケの子実体が該切開された部分を通って容器の外に延び
て成長し、大きな成熟子実体が得られる。このようにす
ると、培地の多くの部分が培養容器に覆われたままであ
るから、培地自体の乾燥が防止され、培地内の高温高湿
条件が一定に保たれるので、極めて効率的にカンゾウタ
ケの子実体を生育させることができる。この際、１０〜
３０℃で１０〜４０日間保って成熟子実体を形成させる
のがよい。好ましくは、１５〜２０℃、相対湿度９０％
以上（好ましくは９５〜９８％）、５０〜１０００ルッ
クスの明条件下で行うのがよい。特に、子実体原基を形
成させた後、湿度を５％以上増加させた多湿条件下で栽
培するのがよい。容器の切開された部分を通ってカンン
ゾウタケの子実体が容器の外に延びて成長している様子
を第１図に示す。図中、１は容器、２は容器に設けた切
開部、３は成熟子実体、４はフィルターを示す。
【００１３】
【発明の効果】本発明によれば、カンゾウタケの人工栽
培において発生子実体が大きく生長し子実体収量を向上
させることができる。次に、本発明の内容を実施例によ
り説明する。
培において発生子実体が大きく生長し子実体収量を向上
させることができる。次に、本発明の内容を実施例によ
り説明する。
【００１４】
【実施例】実施例１ 目開き２ｍｍの篩を通過せず、かつ目開き６ｍｍの篩を
通過するブナのチップ７８１ｇ、乾燥麹１７８ｇを混合
し、更にこの混合物に水分が５８重量％になるように水
を加え、固体培地を得た。続いて、得られた固体培地を
２．５ｋｇ容量のフィルター付き、きのこ培養用パウチ
（商品名；キノパック、製造者；日昌（株）；高密度ポ
リエチレンフィルム製、厚み４０μｍ）に密度が０．５
ｇ／ｃｍ３となるように充填、これに１２１℃、６０分
間の条件で加熱殺菌処理を施した。加熱殺菌後の固体培
地は、ｐＨ４．９であった。その後、無菌的な条件下で
カンゾウタケの種菌１７ｇ（上記固体培地と同じ組成の
培地に培養して得た種菌）を、該加熱殺菌した固体培地
に加えて混合し、種菌を固体培地中に均一に分散させ
た。この固体培地を、温度２５℃、湿度８５％、暗所の
条件下で２５日間培養してカンゾウタケの子実体発生基
を形成させた。次いで、温度２０℃、湿度９０％、２０
０ルックスの条件下で５日間培養してカンゾウタケの子
実体原基を形成させた。パウチの外側から見て、子実体
原基を中心に２ｃｍ程の円形にパウチ壁面を切取り、さ
らに温度１３〜２３℃、湿度９０％以上、２００ルック
スの条件下で１９日間培養したところ、子実体がパウチ
の外に延びて成長し、大きな成熟子実体であるカンゾウ
タケを収穫することができた。延べ培養日数４９日、固
体培地当たりの子実体収量６５ｇ、平均子実体重量２１
ｇであった。
通過するブナのチップ７８１ｇ、乾燥麹１７８ｇを混合
し、更にこの混合物に水分が５８重量％になるように水
を加え、固体培地を得た。続いて、得られた固体培地を
２．５ｋｇ容量のフィルター付き、きのこ培養用パウチ
（商品名；キノパック、製造者；日昌（株）；高密度ポ
リエチレンフィルム製、厚み４０μｍ）に密度が０．５
ｇ／ｃｍ３となるように充填、これに１２１℃、６０分
間の条件で加熱殺菌処理を施した。加熱殺菌後の固体培
地は、ｐＨ４．９であった。その後、無菌的な条件下で
カンゾウタケの種菌１７ｇ（上記固体培地と同じ組成の
培地に培養して得た種菌）を、該加熱殺菌した固体培地
に加えて混合し、種菌を固体培地中に均一に分散させ
た。この固体培地を、温度２５℃、湿度８５％、暗所の
条件下で２５日間培養してカンゾウタケの子実体発生基
を形成させた。次いで、温度２０℃、湿度９０％、２０
０ルックスの条件下で５日間培養してカンゾウタケの子
実体原基を形成させた。パウチの外側から見て、子実体
原基を中心に２ｃｍ程の円形にパウチ壁面を切取り、さ
らに温度１３〜２３℃、湿度９０％以上、２００ルック
スの条件下で１９日間培養したところ、子実体がパウチ
の外に延びて成長し、大きな成熟子実体であるカンゾウ
タケを収穫することができた。延べ培養日数４９日、固
体培地当たりの子実体収量６５ｇ、平均子実体重量２１
ｇであった。
【００１５】比較例１ 実施例１と同様の方法でカンゾウタケの子実体原基を形
成させた後、パウチを完全に取り除いた状態で実施例１
と同様の条件で培養した。その結果、固体培地当たりの
子実体収量44g 、平均子実体重量4gであった。
成させた後、パウチを完全に取り除いた状態で実施例１
と同様の条件で培養した。その結果、固体培地当たりの
子実体収量44g 、平均子実体重量4gであった。
【図１】容器の切開された部分を通ってカンンゾウタケ
の子実体が容器の外に延びて成長している様子を示す概
略図である。 図中、 １ 容器、 ２ 容器に設けた切開部、 ３ 成熟子実体 を示す。
の子実体が容器の外に延びて成長している様子を示す概
略図である。 図中、 １ 容器、 ２ 容器に設けた切開部、 ３ 成熟子実体 を示す。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (56)参考文献 特開 昭52−30643（ＪＰ，Ａ) 特開 昭57−91123（ＪＰ，Ａ) 特開 昭54−4738（ＪＰ，Ａ) 特開 平４−45724（ＪＰ，Ａ) 特開 平３−112417（ＪＰ，Ａ) 特開 平４−45721（ＪＰ，Ａ) 特開 昭62−36115（ＪＰ，Ａ) (58)調査した分野(Int.Cl.6，ＤＢ名) A01G 1/04
Claims (1)
- 【請求項１】 少なくとも底部と側面とを有する培養容
器内の固体培地に形成されたカンゾウタケの子実体原基
の周辺の容器の一部を切開し、該切開された部分を通っ
てカンンゾウタケの子実体を容器の外に延ばして成長さ
せることを特徴とするカンゾウタケの子実体生育方法。
Priority Applications (12)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5241476A JP2759410B2 (ja) | 1993-09-28 | 1993-09-28 | カンゾウタケの子実体生育方法 |
| US08/305,353 US5590489A (en) | 1993-09-28 | 1994-09-13 | Method for growing fruit body of Fistulina hepatica |
| GB9502142A GB2284428B (en) | 1993-09-28 | 1994-09-16 | Method for mixing inocula of Fistulina hepatica with a sterilized solid culture medium |
| GB9418742A GB2282388B (en) | 1993-09-28 | 1994-09-16 | Method for growing fruit bodies of Fistulina hepatica |
| GB9502143A GB2284429B (en) | 1993-09-28 | 1994-09-16 | Method for forming fruit bodies of Fistulina hepatica |
| TW083108710A TW283622B (ja) | 1993-09-28 | 1994-09-22 | |
| NL9401563A NL192716C (nl) | 1993-09-28 | 1994-09-26 | Werkwijze voor het kweken van vruchtlichamen van paddestoelen. |
| CN94116581A CN1051202C (zh) | 1993-09-28 | 1994-09-27 | 使肝色牛排菌子实体生长的方法 |
| FR9411525A FR2710493B1 (fr) | 1993-09-28 | 1994-09-27 | Procédé pour faire développer le chapeau de Fistulina Hepatica. |
| KR1019940024568A KR0136838B1 (ko) | 1993-09-28 | 1994-09-28 | 소 혀 버섯의 자실체 생육방법 |
| DE4434681A DE4434681A1 (de) | 1993-09-28 | 1994-09-28 | Verfahren zum Züchten von Fruchtkörpern von Fistulina hepatica |
| NL9700003A NL9700003A (nl) | 1993-09-28 | 1997-04-09 | Werkwijze voor het inoculeren van Fistulina hepatica. |
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5241476A JP2759410B2 (ja) | 1993-09-28 | 1993-09-28 | カンゾウタケの子実体生育方法 |
| US08/305,353 US5590489A (en) | 1993-09-28 | 1994-09-13 | Method for growing fruit body of Fistulina hepatica |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0795822A JPH0795822A (ja) | 1995-04-11 |
| JP2759410B2 true JP2759410B2 (ja) | 1998-05-28 |
Family
ID=26535284
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5241476A Expired - Fee Related JP2759410B2 (ja) | 1993-09-28 | 1993-09-28 | カンゾウタケの子実体生育方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2759410B2 (ja) |
-
1993
- 1993-09-28 JP JP5241476A patent/JP2759410B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0795822A (ja) | 1995-04-11 |
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