JP2620728B2 - ペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体とその用途 - Google Patents
ペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体とその用途Info
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- JP2620728B2 JP2620728B2 JP2333717A JP33371790A JP2620728B2 JP 2620728 B2 JP2620728 B2 JP 2620728B2 JP 2333717 A JP2333717 A JP 2333717A JP 33371790 A JP33371790 A JP 33371790A JP 2620728 B2 JP2620728 B2 JP 2620728B2
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- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
- Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
- Y02P20/55—Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups
Description
【発明の詳細な説明】 ［産業上の利用分野］ 本発明は、アルギニン−グリシン−アスパラギン酸の
トリペプチド単位を有する、ポリエチレングリコール誘
導体またはその塩及びこれを有効成分とする動物細胞の
接着阻害剤並びに血小板凝集・粘着抑制剤に関する。
トリペプチド単位を有する、ポリエチレングリコール誘
導体またはその塩及びこれを有効成分とする動物細胞の
接着阻害剤並びに血小板凝集・粘着抑制剤に関する。
［従来の技術］ フィブロネクチンは細胞−細胞外基質の接着に関与す
るタンパク質であり、血小板凝集やガン転移にも関与し
ていると考えられている。これらの相互作用は一連の細
胞表面のレセプターにより仲介され、フィブロネクチン
や分子量約25万の巨大分子であるにもかかわらず、これ
らのレセプターがそのアルギニン−グリシン−アスパラ
ギン酸（以下、Arg−Gly−Aspと略す）配列を特異的に
認識することが明らかにされ、レセプターとの相互作用
に重要なものであることが報告されている（ネイチャー
（Nature）、第309巻、30頁、1984年）。以来、Arg−Gl
y−Asp配列を有するオリゴあるいはポリペプチドを用い
る研究が進められている。
るタンパク質であり、血小板凝集やガン転移にも関与し
ていると考えられている。これらの相互作用は一連の細
胞表面のレセプターにより仲介され、フィブロネクチン
や分子量約25万の巨大分子であるにもかかわらず、これ
らのレセプターがそのアルギニン−グリシン−アスパラ
ギン酸（以下、Arg−Gly−Aspと略す）配列を特異的に
認識することが明らかにされ、レセプターとの相互作用
に重要なものであることが報告されている（ネイチャー
（Nature）、第309巻、30頁、1984年）。以来、Arg−Gl
y−Asp配列を有するオリゴあるいはポリペプチドを用い
る研究が進められている。
例えば、Arg−Gly−Asp配列を有する種々の鎖状およ
び環状のオリゴペプチドを用いて血小板凝集を阻害する
方法（高分子学会予縞集（Polymer Preprints,Japa
n）、第38巻、3149頁、1989年、特開平２−174797
号）、Arg−Gly−Asp配列を有するペプチドを細胞移動
抑制剤として用いる方法（特開平２−4716号）、Arg−G
ly−Aspを固定化したPMMA膜を細胞接着膜として用いる
方法（高分子学会予縞集（Polymer Preprints,Japa
n）、第37巻、705頁、1988年）が報告されている。さら
に、ポリマーにArg−Gly−Aspを必須構成単位とするペ
プチドを共有結合させ動物細胞培養基体、生体複合人工
臓器用基体として用いる方法（特開平１−309682号、特
開平１−305960号）、Arg−Gly−Asp−Ser配列を有する
ポリペプチドを体外血液用血小板保護剤として用いる方
法が開示されている（特開昭64−6217号）。また、Arg
−Gly−Asp配列を有するオリゴペプチドあるいはその繰
り返し構造を有するポリペプチドを用いて、ガン転移を
抑制する方法が知られている（（Int.J.Biol.Macromo
l.）、第11巻、23頁、1989年、同誌、第11巻、226頁、1
989年、（Jpn.J.Cancer Res.）第60巻、722頁、1989
年）。
び環状のオリゴペプチドを用いて血小板凝集を阻害する
方法（高分子学会予縞集（Polymer Preprints,Japa
n）、第38巻、3149頁、1989年、特開平２−174797
号）、Arg−Gly−Asp配列を有するペプチドを細胞移動
抑制剤として用いる方法（特開平２−4716号）、Arg−G
ly−Aspを固定化したPMMA膜を細胞接着膜として用いる
方法（高分子学会予縞集（Polymer Preprints,Japa
n）、第37巻、705頁、1988年）が報告されている。さら
に、ポリマーにArg−Gly−Aspを必須構成単位とするペ
プチドを共有結合させ動物細胞培養基体、生体複合人工
臓器用基体として用いる方法（特開平１−309682号、特
開平１−305960号）、Arg−Gly−Asp−Ser配列を有する
ポリペプチドを体外血液用血小板保護剤として用いる方
法が開示されている（特開昭64−6217号）。また、Arg
−Gly−Asp配列を有するオリゴペプチドあるいはその繰
り返し構造を有するポリペプチドを用いて、ガン転移を
抑制する方法が知られている（（Int.J.Biol.Macromo
l.）、第11巻、23頁、1989年、同誌、第11巻、226頁、1
989年、（Jpn.J.Cancer Res.）第60巻、722頁、1989
年）。
一方、ポリエチレングリコールは、疎水性および親水
性の両親媒性を兼ねそなえた合成高分子である。。この
ポリエチレングリコールを用いて酵素の性質を改変する
方法が報告されており（Trends in Biotech.,第４巻,68
頁,1986年）、ポリエチレングリコール誘導体に酵素を
導入して様々な酵素の改変に成功している。このポリエ
チレングリコール誘導体に、Arg−Gly−Asp配列を有す
るオリゴペプチドあるいはその繰り返し構造を有するポ
リペプチドを導入した化合物は知られておらず、導入し
た場合にはレセプターとの結合能の増強および血液中で
の安定化が期待できる。
性の両親媒性を兼ねそなえた合成高分子である。。この
ポリエチレングリコールを用いて酵素の性質を改変する
方法が報告されており（Trends in Biotech.,第４巻,68
頁,1986年）、ポリエチレングリコール誘導体に酵素を
導入して様々な酵素の改変に成功している。このポリエ
チレングリコール誘導体に、Arg−Gly−Asp配列を有す
るオリゴペプチドあるいはその繰り返し構造を有するポ
リペプチドを導入した化合物は知られておらず、導入し
た場合にはレセプターとの結合能の増強および血液中で
の安定化が期待できる。
［発明が解決しようとする課題］ 本発明の目的は、アルギニン−グリシン−アスパラギ
ン酸のトリペプチド単位を有する、ポリエチレングリコ
ール誘導体およびその合成法を提供することである。
ン酸のトリペプチド単位を有する、ポリエチレングリコ
ール誘導体およびその合成法を提供することである。
本発明の他の目的は、これを有効成分とする動物細胞
の接着阻害剤及び血小板凝集・粘着抑制剤を提供するこ
とである。
の接着阻害剤及び血小板凝集・粘着抑制剤を提供するこ
とである。
［課題を解決するための手段］ 本発明の化合物は、下記一般式［Ｉ］または［III］
で規定されるペプチド含有ポリエチレングリコール誘導
体であり、分子内に存在するイオン性基は適当なイオン
と塩を形成してもよい。
で規定されるペプチド含有ポリエチレングリコール誘導
体であり、分子内に存在するイオン性基は適当なイオン
と塩を形成してもよい。
式中、R1、R2はそれぞれ下記一般式［II］で表される
ペプチド残基を示す。
ペプチド残基を示す。
−（［Ｘ］−Arg−Gly−Asp−［Ｙ］）ｍ−Ｚ ……［II］ 式中のArg、Gly、Aspはそれぞれアルギニン、グリシ
ン、アスパラギン酸残基を表す。［Ｘ］、［Ｙ］は存在
するかあるいは存在しないアミノ酸残基またはペプチド
残基を表す。存在する場合には、［Ｘ］、［Ｙ］がセリ
ン、グリシン、バリン、アスパラギン、プロリン、シス
テイン、トレオニン残基から選択されるアミノ酸残基ま
たはペプチド残基であることが好ましく、ペプチド残基
を構成するアミノ酸残基の数は２および３が好ましい。
特に、［Ｘ］がグリシン残基、［Ｙ］がセリン残基であ
ることが好ましく、［Ｙ］がセリン−プロリンペプチド
残基であることが好ましい。また［Ｘ］、［Ｙ］がとも
に存在しない場合も好ましい。ｎは１から150までの整
数が好ましく、５から120までの整数が特に好ましい。
ｍは１から５までの整数を表し、ｍが１から３までの整
数が特に好ましい。Ｚは−OHまたは−NH2を表す。
ン、アスパラギン酸残基を表す。［Ｘ］、［Ｙ］は存在
するかあるいは存在しないアミノ酸残基またはペプチド
残基を表す。存在する場合には、［Ｘ］、［Ｙ］がセリ
ン、グリシン、バリン、アスパラギン、プロリン、シス
テイン、トレオニン残基から選択されるアミノ酸残基ま
たはペプチド残基であることが好ましく、ペプチド残基
を構成するアミノ酸残基の数は２および３が好ましい。
特に、［Ｘ］がグリシン残基、［Ｙ］がセリン残基であ
ることが好ましく、［Ｙ］がセリン−プロリンペプチド
残基であることが好ましい。また［Ｘ］、［Ｙ］がとも
に存在しない場合も好ましい。ｎは１から150までの整
数が好ましく、５から120までの整数が特に好ましい。
ｍは１から５までの整数を表し、ｍが１から３までの整
数が特に好ましい。Ｚは−OHまたは−NH2を表す。
本発明の化合物の好ましい塩の例としてはナトリウム
塩、カリウム塩、アンモニウム塩、マグネシウム塩、塩
酸塩、硫酸塩、硝酸塩、酢酸塩が挙げられる。
塩、カリウム塩、アンモニウム塩、マグネシウム塩、塩
酸塩、硫酸塩、硝酸塩、酢酸塩が挙げられる。
以下に、本発明の好ましい化合物例を挙げるが、本発
明はこれらに限られるものではない。
明はこれらに限られるものではない。
化合物例 本発明の化合物は、レセプターとの結合能の増強およ
び血液中での安定化が期待さ、アルギニン−グリシン−
アスパラギン酸ペプチド部位がガン細胞、血小板、リン
パ球等の表面に存在するフィブロネクチンレセプターと
結合できることを利用して、ガン転移抑制、血小板凝集
抑制、リンパ球活性化の目的に使用することができる。
び血液中での安定化が期待さ、アルギニン−グリシン−
アスパラギン酸ペプチド部位がガン細胞、血小板、リン
パ球等の表面に存在するフィブロネクチンレセプターと
結合できることを利用して、ガン転移抑制、血小板凝集
抑制、リンパ球活性化の目的に使用することができる。
次に本発明の化合物の合成法について説明する。本発
明の化合物は、たとえば次の４段階で合成することがで
きる。
明の化合物は、たとえば次の４段階で合成することがで
きる。
ポリエチレングリコール誘導体［IV］及び［Ｖ］の合
成 保護アミノ酸の逐次延伸による保護ペプチドの合成 保護ペプチドのポリエチレングリコール誘導体への導
入による式［VI］及び［VII］の化合物の合成 R3及びR4は式［II］で表されるペプチド残基の保護体
を示す。
成 保護アミノ酸の逐次延伸による保護ペプチドの合成 保護ペプチドのポリエチレングリコール誘導体への導
入による式［VI］及び［VII］の化合物の合成 R3及びR4は式［II］で表されるペプチド残基の保護体
を示す。
脱保護および精製 以下、各段階を詳細に説明する。
一般式［IV］および［Ｖ］で表される化合物は、例
えばBiochem.Biophys.Res.Commun.,83,385（1978）、Li
fe Sciences,33,1467（1983）に記載されている方法に
よって合成でき、［Ｖ］の化合物は市販もされている。
えばBiochem.Biophys.Res.Commun.,83,385（1978）、Li
fe Sciences,33,1467（1983）に記載されている方法に
よって合成でき、［Ｖ］の化合物は市販もされている。
保護アミノ酸を逐次伸長する方法としては、既知の
方法、すなわち、泉屋ら著「ペプチド合成の基礎と実
験」（丸善）やBodanszky著“PRINCIPLES OF PEPTIDE S
YNTHESIS"、“THE PRACTICEOF PEPTIDE SYNTHESIS"（Sp
ringer Verlag,New York）に記載されている方法がいず
れも有効である。縮合反応の段階では、DCC−additive
法、アジド法、混合酸無水物法、活性エステル法のいず
れを採用してもよいが、１−ヒドロキシベンゾトリアゾ
ールとジシクロヘキシルカルボジイミドを併用するDCC
−additive法が最も良好な結果を与える。
方法、すなわち、泉屋ら著「ペプチド合成の基礎と実
験」（丸善）やBodanszky著“PRINCIPLES OF PEPTIDE S
YNTHESIS"、“THE PRACTICEOF PEPTIDE SYNTHESIS"（Sp
ringer Verlag,New York）に記載されている方法がいず
れも有効である。縮合反応の段階では、DCC−additive
法、アジド法、混合酸無水物法、活性エステル法のいず
れを採用してもよいが、１−ヒドロキシベンゾトリアゾ
ールとジシクロヘキシルカルボジイミドを併用するDCC
−additive法が最も良好な結果を与える。
一般式［VI］および［VII］で表される化合物は、
一般式［IV］および［Ｖ］で表されるポリエチレングリ
コール誘導体および保護ペプチドをこれらが溶解する有
機溶媒中で塩基存在下室温で攪拌、反応させることによ
り得られる。
一般式［IV］および［Ｖ］で表されるポリエチレングリ
コール誘導体および保護ペプチドをこれらが溶解する有
機溶媒中で塩基存在下室温で攪拌、反応させることによ
り得られる。
保護基を脱保護するのに用いられる条件は、用いた
保護基の種類に大きく依存する。通常使用される脱保護
条件は、接触水素添加、トリフルオロ酢酸、無水フッ化
水素、トリフルオロメタンスルホン酸−チオアニソール
混合系、トリフルオロ酢酸−チオアニソール混合系等で
あるが、保護基の種類によってはさらに多様な手段が可
能である。また、目的物の精製は、ゲルろ過法等を用い
ることにより行うことがでる。
保護基の種類に大きく依存する。通常使用される脱保護
条件は、接触水素添加、トリフルオロ酢酸、無水フッ化
水素、トリフルオロメタンスルホン酸−チオアニソール
混合系、トリフルオロ酢酸−チオアニソール混合系等で
あるが、保護基の種類によってはさらに多様な手段が可
能である。また、目的物の精製は、ゲルろ過法等を用い
ることにより行うことがでる。
本発明において数平均分子量はゲルパーミエーション
クロマトグラフィー（GPC）による測定結果をもとに算
出することができる。
クロマトグラフィー（GPC）による測定結果をもとに算
出することができる。
GPCの測定条件は以下のとおりである。
カラム:TSKgel（東洋曹達製） G1000H8 排除限界分子量 1000 カラム寸法 7.51D×600mm １本 G2000H8 排除限界分子量 10000 カラム寸法 7.51D×600mm ２本 G2500H8 排除限界分子量 20000 カラム寸法 7.51D×600mm １本 溶媒：テトラヒドロフラン 流量:1ml/min カラム温度:40℃ 検出器:UV,RI併用 TSKスタンダードポリエチレンオキサイドで検量線を
作成。
作成。
数平均分子量は、高分子学会編「高分子科学実験法」
（東京化学同人1981年）P.204〜208に記載の一般的な方
法、すなわち線分法を用いて計算した。得られたクロマ
トグラムを等間隔のカウント（Ｄ）に分割してｉ番目の
高分子種のベースラインからのピーク高さをHiとし、以
下の関係式（１）を利用して求めた。
（東京化学同人1981年）P.204〜208に記載の一般的な方
法、すなわち線分法を用いて計算した。得られたクロマ
トグラムを等間隔のカウント（Ｄ）に分割してｉ番目の
高分子種のベースラインからのピーク高さをHiとし、以
下の関係式（１）を利用して求めた。
によって、 ここで、Niはｉ番目の高分子種の数を表わし、Miはｉ
番目の高分子種の分子量を表わす。（Miは前記の検量線
から求めることができる。）。
番目の高分子種の分子量を表わす。（Miは前記の検量線
から求めることができる。）。
本発明のペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体
は、細胞接着性蛋白質のコア配列（アルギニン−グリシ
ン−アスパラギン酸）を有し、該コア配列を介して細胞
接着性蛋白質と同様の機序で細胞に接着する。そのた
め、細胞接着性蛋白質のアゴニストまたはアンタゴニス
トとして様々の生物活性を示す。その他にも、免疫調整
作用、創傷治癒作用、毛細血管中で起こる癌細胞による
血小板凝集の抑制作用、神経疾患治癒作用等の広範な生
物活性が認められる。
は、細胞接着性蛋白質のコア配列（アルギニン−グリシ
ン−アスパラギン酸）を有し、該コア配列を介して細胞
接着性蛋白質と同様の機序で細胞に接着する。そのた
め、細胞接着性蛋白質のアゴニストまたはアンタゴニス
トとして様々の生物活性を示す。その他にも、免疫調整
作用、創傷治癒作用、毛細血管中で起こる癌細胞による
血小板凝集の抑制作用、神経疾患治癒作用等の広範な生
物活性が認められる。
従って、本発明のペプチド含有ポリエチレングリコー
ル誘導体は、その少なくとも一種を、場合により慣用の
担体または医薬用製剤とともに、癌転移抑制剤、創傷治
癒剤、免疫調整剤、血小板凝集抑制剤または神経疾患治
療剤として患者に投与することが可能である。特に動物
細胞接着阻害剤または血小板凝集・粘着抑制剤としての
使用が好ましい。その投与量は、0.2μg/kg〜400mg/kg
の範囲で症状、年令、体重等に基づいて決定される。
ル誘導体は、その少なくとも一種を、場合により慣用の
担体または医薬用製剤とともに、癌転移抑制剤、創傷治
癒剤、免疫調整剤、血小板凝集抑制剤または神経疾患治
療剤として患者に投与することが可能である。特に動物
細胞接着阻害剤または血小板凝集・粘着抑制剤としての
使用が好ましい。その投与量は、0.2μg/kg〜400mg/kg
の範囲で症状、年令、体重等に基づいて決定される。
本発明のペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体
は、ペプチド系医薬に一般に使用されている投与方法、
即ち非経口投与方法、例えば静脈内投与、筋肉内投与、
皮下投与等によって投与するのが好ましい。そのような
注射用製剤を製造する場合、本発明のペプチド含有ポリ
エチレングリコール誘導体を例えば、後記実施例で示す
ようにPBS（NaH2PO40.005M,NaCl0.07M）または生理食塩
水に溶解して、注射用製剤としてもよく、あるいは0.1N
程度の酢酸水等に溶解した後、凍結乾燥製剤としてもよ
い。このような製剤には、グリシンやアルブミン等の慣
用の安定化剤を添加してもよく、血中半減期を延長させ
る等の目的のために、コラーゲンやリポソームを担体と
して用いてもよい。
は、ペプチド系医薬に一般に使用されている投与方法、
即ち非経口投与方法、例えば静脈内投与、筋肉内投与、
皮下投与等によって投与するのが好ましい。そのような
注射用製剤を製造する場合、本発明のペプチド含有ポリ
エチレングリコール誘導体を例えば、後記実施例で示す
ようにPBS（NaH2PO40.005M,NaCl0.07M）または生理食塩
水に溶解して、注射用製剤としてもよく、あるいは0.1N
程度の酢酸水等に溶解した後、凍結乾燥製剤としてもよ
い。このような製剤には、グリシンやアルブミン等の慣
用の安定化剤を添加してもよく、血中半減期を延長させ
る等の目的のために、コラーゲンやリポソームを担体と
して用いてもよい。
さらに、本発明のペプチド含有ポリエチレングリコー
ル誘導体は、例えばリポソーム中に包含したマイクロカ
プセル剤とすれば、経口投与剤とすることも可能であ
り、座剤、舌下錠、点鼻スプレー剤等の形にすれば、消
化管以外の粘膜から吸収させることも可能である。
ル誘導体は、例えばリポソーム中に包含したマイクロカ
プセル剤とすれば、経口投与剤とすることも可能であ
り、座剤、舌下錠、点鼻スプレー剤等の形にすれば、消
化管以外の粘膜から吸収させることも可能である。
実施例１ 以下に本発明の化合物（１）の合成例を示す。
化合物（１）を以下の合成経路で合成した。なお、ア
ミノ酸、各種保護基および脱保護試薬は通常用いられて
いる略号を使って表した。また、他の化合物例もここに
例示した方法で合成できる。
ミノ酸、各種保護基および脱保護試薬は通常用いられて
いる略号を使って表した。また、他の化合物例もここに
例示した方法で合成できる。
Bzl:ベンジル基、 TFA:トリフルオロ酢酸、 Boc:t−ブトキシカルボニル基、 HOBt:1−ヒドロキシベンゾトリアゾール、 Z:ベンジルオキシカルボニル基、 以下にそれぞれの合成法を記す。
（1b）の合成 文献（Biochem.Biophys.Res.Commun.,83,385（197
8）、Life Sciences,33,1467（1983））に記載の方法に
より、アルドリッチ社から購入した平均分子量5,000の
ポリエチレングリコールモノメチルエーテル（1a）（10
g,2mmol）を充分乾燥し、トルエン（100ml）、炭酸ナト
リウム（5g）、塩化シアヌル（1.1g,6mmol）を加え、80
℃で120時間攪拌した。反応液が室温になるまで放冷し
た後にろ過し、ろ液にヘキサンを加えて結晶化した。さ
らにトルエン・アセトン・ヘキサンの溶媒系からこの結
晶を再結晶させ精製し、白色粉末（7g）を得た。
8）、Life Sciences,33,1467（1983））に記載の方法に
より、アルドリッチ社から購入した平均分子量5,000の
ポリエチレングリコールモノメチルエーテル（1a）（10
g,2mmol）を充分乾燥し、トルエン（100ml）、炭酸ナト
リウム（5g）、塩化シアヌル（1.1g,6mmol）を加え、80
℃で120時間攪拌した。反応液が室温になるまで放冷し
た後にろ過し、ろ液にヘキサンを加えて結晶化した。さ
らにトルエン・アセトン・ヘキサンの溶媒系からこの結
晶を再結晶させ精製し、白色粉末（7g）を得た。
（1d）の合成 文献（Chem.Pharm.Bull.,24,3025（1978））に記載の
方法により、国産化学（株）から購入した（1c）（29.5
g,0.1mol）、トリエチルアミン（14ml）、臭化ベンジル
（17.1g）、酢酸エチル（200ml）の混合物を３時間加熱
還流した。反応液を室温になるまで放冷した後に、1N炭
酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水各200mlで洗浄
し、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナトリウムを
ろ過して除き、ろ液を減圧濃縮して無色油状物を得た。
この反応混合物をシリカゲルクロマトグラフィー（溶出
液ヘキサン／酢酸エチル40:1）で精製し、（1d）（36
g）を得た。
方法により、国産化学（株）から購入した（1c）（29.5
g,0.1mol）、トリエチルアミン（14ml）、臭化ベンジル
（17.1g）、酢酸エチル（200ml）の混合物を３時間加熱
還流した。反応液を室温になるまで放冷した後に、1N炭
酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水各200mlで洗浄
し、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナトリウムを
ろ過して除き、ろ液を減圧濃縮して無色油状物を得た。
この反応混合物をシリカゲルクロマトグラフィー（溶出
液ヘキサン／酢酸エチル40:1）で精製し、（1d）（36
g）を得た。
（1e）の合成 （1d）（7.71g,20mmol）を塩化メチレン20mlに溶解
し、トリフルオロ酢酸20mlを加えて室温で30分間攪拌し
た。溶媒を減圧留去した後にクロロホルム100mlを加
え、1N炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水各100ml
で数回洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナ
トリウムをろ過して除き、ろ液を減圧濃縮して無色油状
物を得た。これとBocAsp（OBzl）（国産化学（株）から
購入）（6.47g,20mmol）、DCC（4.54g,22mmol）、HOBt
（2.76g,18mmol）、DMF80mlの混合物を０℃で３時間、
さらに室温で12時間攪拌した。DCUreaを除去した後に溶
媒を減圧留去し、クロロホルム100mlを加え、1N炭酸水
素ナトリウム水溶液、飽和食塩水各200mlで洗浄し、無
水硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナトリウムをろ過し
て除き、ろ液を減圧濃縮し、t1c（薄膜クロマトグラフ
ィー）で単独スポットなので精製することなく次の反応
に用いた。
し、トリフルオロ酢酸20mlを加えて室温で30分間攪拌し
た。溶媒を減圧留去した後にクロロホルム100mlを加
え、1N炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水各100ml
で数回洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナ
トリウムをろ過して除き、ろ液を減圧濃縮して無色油状
物を得た。これとBocAsp（OBzl）（国産化学（株）から
購入）（6.47g,20mmol）、DCC（4.54g,22mmol）、HOBt
（2.76g,18mmol）、DMF80mlの混合物を０℃で３時間、
さらに室温で12時間攪拌した。DCUreaを除去した後に溶
媒を減圧留去し、クロロホルム100mlを加え、1N炭酸水
素ナトリウム水溶液、飽和食塩水各200mlで洗浄し、無
水硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナトリウムをろ過し
て除き、ろ液を減圧濃縮し、t1c（薄膜クロマトグラフ
ィー）で単独スポットなので精製することなく次の反応
に用いた。
（1f）の合成 （1e）の合成と同様に行った。トリフルオロ酢酸で脱
保護した後に、BocGly（国産化学（株）から購入）（3.
50g,20mmol）、DCC（4.54g,22mmol）、HOBt（2.76g,18m
mol）、DMF80mlを加えて縮合反応した。t1cで単独スポ
ットなので精製することなく次の反応に用いた。
保護した後に、BocGly（国産化学（株）から購入）（3.
50g,20mmol）、DCC（4.54g,22mmol）、HOBt（2.76g,18m
mol）、DMF80mlを加えて縮合反応した。t1cで単独スポ
ットなので精製することなく次の反応に用いた。
（1g）の合成 （1e）の合成と同様に行った。トリフルオロ酢酸で脱
保護した後に、BocArg（Ｚ）２（国産化学（株）から購
入）（10.83g,20mmol）、DCC（4.54g,22mmol）、HOBt
（2.76g,18mmol）、DMF80mlを加えて縮合反応した。ク
ロマトグラフィー（溶出液クロロホルム・メタノール9
9:1）により精製して、（1g）の白色粉末14.4gを得た。
保護した後に、BocArg（Ｚ）２（国産化学（株）から購
入）（10.83g,20mmol）、DCC（4.54g,22mmol）、HOBt
（2.76g,18mmol）、DMF80mlを加えて縮合反応した。ク
ロマトグラフィー（溶出液クロロホルム・メタノール9
9:1）により精製して、（1g）の白色粉末14.4gを得た。
（1h）の合成 （1g）（1.03g,1mmol）を塩化メチレン10mlに溶解
し、トリフルオロ酢酸10mlを加えて室温で30分間攪拌し
た。溶媒を減圧留去した後にクロロホルム100mlを加
え、1N炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水各100ml
で数回洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナ
トリウムをろ過して除き、ろ液を減圧濃縮して白色粉末
を得た。これと（1b）（2.5g）、トリエチルアミン（0.
1g）、クロロホルム50mlの混合物を室温で24時間攪拌し
た。ゲルろ過（Sephadex LH−60）により精製し、（1
h）を3.1gを得た。
し、トリフルオロ酢酸10mlを加えて室温で30分間攪拌し
た。溶媒を減圧留去した後にクロロホルム100mlを加
え、1N炭酸水素ナトリウム水溶液、飽和食塩水各100ml
で数回洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥した。硫酸ナ
トリウムをろ過して除き、ろ液を減圧濃縮して白色粉末
を得た。これと（1b）（2.5g）、トリエチルアミン（0.
1g）、クロロホルム50mlの混合物を室温で24時間攪拌し
た。ゲルろ過（Sephadex LH−60）により精製し、（1
h）を3.1gを得た。
（１）の合成 （1h）（3.1g）を酢酸50mlに溶解し、10％パラジウム
炭素1gを加え、室温で常圧加水素分解を24時間行った。
触媒をセライトを用いてろ別し、溶媒を減圧留去した。
ゲルろ過（Sephadex LH−60）により精製し、（１）を
2.5g得た。
炭素1gを加え、室温で常圧加水素分解を24時間行った。
触媒をセライトを用いてろ別し、溶媒を減圧留去した。
ゲルろ過（Sephadex LH−60）により精製し、（１）を
2.5g得た。
アミノ酸分析:Gly（1.03）,Asp（0.98）,Ser（0.92） 数平均分子量:6000 実施例２ 実施例１記載の方法にしたがい、化合物（２）を合成
した。平均分子量5,000のポリエチレングリコールモノ
メチルエーテルを用いて、ポリエチレングリコール誘導
体［Ｖ］を合成した。化合物（２）の物性値を表１に示
す。
した。平均分子量5,000のポリエチレングリコールモノ
メチルエーテルを用いて、ポリエチレングリコール誘導
体［Ｖ］を合成した。化合物（２）の物性値を表１に示
す。
実施例３ 実施例１記載の方法にしたがい、化合物（３）を合成
した。平均分子量2,000のポリエチレングリコールモノ
メチルエーテルを用いて、ポリエチレングリコール誘導
体［IV］を合成した。保護ペプチドはBoc Asp（OBzl）O
Bzlを出発物質にＮ端側へ逐次延長した。化合物（３）
の物性値を表１に示す。
した。平均分子量2,000のポリエチレングリコールモノ
メチルエーテルを用いて、ポリエチレングリコール誘導
体［IV］を合成した。保護ペプチドはBoc Asp（OBzl）O
Bzlを出発物質にＮ端側へ逐次延長した。化合物（３）
の物性値を表１に示す。
実施例４ 実施例１記載の方法にしたがい、化合物（４）を合成
した。平均分子量750のポリエチレングリコールモノメ
チルエーテルを用いて、ポリエチレングリコール誘導体
［Ｖ］を合成した。化合物（４）の物性値を表１に示
す。
した。平均分子量750のポリエチレングリコールモノメ
チルエーテルを用いて、ポリエチレングリコール誘導体
［Ｖ］を合成した。化合物（４）の物性値を表１に示
す。
実施例５ 実施例１記載の方法にしたがい、化合物（５）を合成
した。平均分子量5,000のポリエチレングリコールモノ
メチルエーテルを用いて、ポリエチレングリコール誘導
体［IV］を合成した。保護ペプチドはBoc Pro OBzlを出
発物質にＮ端側へ逐次延長した。化合物（５）の物性値
を表１に示す。
した。平均分子量5,000のポリエチレングリコールモノ
メチルエーテルを用いて、ポリエチレングリコール誘導
体［IV］を合成した。保護ペプチドはBoc Pro OBzlを出
発物質にＮ端側へ逐次延長した。化合物（５）の物性値
を表１に示す。
実施例６ 実施例１記載の方法にしたがい、化合物（６）を合成
した。平均分子量5,000のポリエチレングリコールモノ
メチルエーテルを用いて、ポリエチレングリコール誘導
体［IV］を合成した。保護ペプチドはBoc Pro NH2を出
発物質にＮ端側に逐次延長した。化合物（６）の物性値
を表１に示す。
した。平均分子量5,000のポリエチレングリコールモノ
メチルエーテルを用いて、ポリエチレングリコール誘導
体［IV］を合成した。保護ペプチドはBoc Pro NH2を出
発物質にＮ端側に逐次延長した。化合物（６）の物性値
を表１に示す。
製剤例 生理食塩水に、本発明のペプチド含有ポリエチレング
リコール誘導体（１）を100μg/mlの濃度で溶解して、
注射用製剤を調製した。この製剤は、動物細胞の接着阻
害剤及び血小板凝集・粘着抑制剤として使用可能であ
る。
リコール誘導体（１）を100μg/mlの濃度で溶解して、
注射用製剤を調製した。この製剤は、動物細胞の接着阻
害剤及び血小板凝集・粘着抑制剤として使用可能であ
る。
試験例 『細胞接着阻害活性の測定』 本発明のペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体
は細胞のフィブロネクチンやビトロネクチンに対する接
着を阻害する。その活性測定方法を以下に示す。ここで
用いられた競争法は基本的に生化学分野では広く用いら
れているものであり、例えば『Methods in Enzymolog
y』82 803（1981）、特開平１−309682、同２−174797
に開示されている。
は細胞のフィブロネクチンやビトロネクチンに対する接
着を阻害する。その活性測定方法を以下に示す。ここで
用いられた競争法は基本的に生化学分野では広く用いら
れているものであり、例えば『Methods in Enzymolog
y』82 803（1981）、特開平１−309682、同２−174797
に開示されている。
実験方法 1.吸着プレートの作製 市販のフィブロネクチン（ヒト由来：生化学工業
（株）から購入）あるいはビトロネクチン（ヒト由来：
フナコシ（株）から購入）をPBS（NaH2PO40.005M＋NaCl
0.07M）で各々1.0μ/ml、2.0μ/mlに希釈し、その
希釈液0.5mlを24ウエルのプラスチックプレートにい
れ、37℃で一晩保温し、コーテイングした。次に非特異
吸着を防ぐ目的で牛血清アルブミン（BSA １％）を加
え、37℃、１時間保温し、その後通常の洗浄操作（PB
S）を行い充分に水きりして吸着プレートを作製した。
（株）から購入）あるいはビトロネクチン（ヒト由来：
フナコシ（株）から購入）をPBS（NaH2PO40.005M＋NaCl
0.07M）で各々1.0μ/ml、2.0μ/mlに希釈し、その
希釈液0.5mlを24ウエルのプラスチックプレートにい
れ、37℃で一晩保温し、コーテイングした。次に非特異
吸着を防ぐ目的で牛血清アルブミン（BSA １％）を加
え、37℃、１時間保温し、その後通常の洗浄操作（PB
S）を行い充分に水きりして吸着プレートを作製した。
2.接着阻害実験 Dulbeccos Modified Eagles Medium（以下DMEMと略記
する）で希釈したペプチド含有ポリエチレングリコール
誘導体溶液0.25〜1.5mlを上記方法で作製したプレート
にいれ、そこへ血管内皮細胞（４×106cells/ml）懸濁
液を0.25ml加え、37℃で一時間保温し細胞を接着させ
た。DMEM培地で３回洗浄し、未接着の細胞を除いた後、
0.025％EDTAトリプシン溶液で接着した細胞を剥離し、
２％トリパンブルーで染色して細胞数を計測した。結果
を下記表２に示す。表中、RGDはアルギニン−グリシン
−アスパラギン酸のトリペプチドを表し、GRGDSはグリ
シン−アルギニン−グリシン−アスパラギン酸−セリン
のペンタペプチドを表す。
する）で希釈したペプチド含有ポリエチレングリコール
誘導体溶液0.25〜1.5mlを上記方法で作製したプレート
にいれ、そこへ血管内皮細胞（４×106cells/ml）懸濁
液を0.25ml加え、37℃で一時間保温し細胞を接着させ
た。DMEM培地で３回洗浄し、未接着の細胞を除いた後、
0.025％EDTAトリプシン溶液で接着した細胞を剥離し、
２％トリパンブルーで染色して細胞数を計測した。結果
を下記表２に示す。表中、RGDはアルギニン−グリシン
−アスパラギン酸のトリペプチドを表し、GRGDSはグリ
シン−アルギニン−グリシン−アスパラギン酸−セリン
のペンタペプチドを表す。
『血小板凝集阻害活性試験』 本発明のペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体
のIN VITRO系での血小板凝集阻害作用をヒト多血小板血
漿を用いて検定した。以下にその実験方法を示す。
のIN VITRO系での血小板凝集阻害作用をヒト多血小板血
漿を用いて検定した。以下にその実験方法を示す。
実験方法 新鮮なヒト血液に1/9量の3.8％クエン酸ナトリウムを
加え遠心（1000rpm、10分）し、上層を多血小板血漿と
して分取した。この血漿200μにペプチド含有ポリエ
チレングリコール誘導体溶液25μ（max1.5mg/ml）を
加え、３分間37℃でインキュベートしたのち、20−50μ
MADP（アデノシンニリン酸）溶液あるいは200μg/mlの
コラーゲン溶液を25μ加えて凝集の程度を、アグリゴ
メーターを用いて透過度を測定することにより検定し
た。結果を表３に示す。
加え遠心（1000rpm、10分）し、上層を多血小板血漿と
して分取した。この血漿200μにペプチド含有ポリエ
チレングリコール誘導体溶液25μ（max1.5mg/ml）を
加え、３分間37℃でインキュベートしたのち、20−50μ
MADP（アデノシンニリン酸）溶液あるいは200μg/mlの
コラーゲン溶液を25μ加えて凝集の程度を、アグリゴ
メーターを用いて透過度を測定することにより検定し
た。結果を表３に示す。
凝集阻害率（１−T/T0）/100％ T0＝ペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体非添加
時の透過度 Ｔ＝ペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体添加時
の透過度
時の透過度 Ｔ＝ペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体添加時
の透過度
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ０７Ｋ 7/06 Ｃ０８Ｇ 65/32 ＮＱＨ 7/08 Ａ６１Ｋ 37/02 ＡＣＢ Ｃ０８Ｇ 65/32 ＮＱＨ ＡＤＳ
Claims (6)
- 【請求項１】下記一般式［Ｉ］で表されるペプチド含有
ポリエチレングリコール誘導体またはその塩。 ただし、ｎは１から150までの整数を表す。また、R1は
下記一般式［II］で表されるペプチド残基を示す。式
中、Arg、Gly、Aspはそれぞれアルギニン、グリシン、
アスパラギン酸残基を表す。［Ｘ］、［Ｙ］は存在する
かあるいは存在しないアミノ酸残基またはペプチド残基
を表す。ｍは１から５までの整数を表す。Ｚは−OHまた
は−NH2を表す。 −（［Ｘ］−Arg−Gly−Asp−［Ｙ］）ｍ−Ｚ ……［II］ - 【請求項２】下記一般式［III］で表されるペプチド含
有ポリエチレングリコール誘導体またはその塩。 ただし、ｎは１から150までの整数を表す。また、R2は
請求項（１）の一般式［II］で表されるペプチド残基を
示す。 - 【請求項３】一般式［II］において、［Ｘ］、［Ｙ］が
存在するアミノ酸残基を表し、［Ｘ］、［Ｙ］がセリ
ン、グリシン、バリン、アスパラギン、プロリン、シス
テイン、トレオニン残基から選択されるアミノ酸残基ま
たはペプチド残基である請求項（１）記載のペプチド含
有ポリエチレングリコール誘導体またはその塩。 - 【請求項４】一般式［II］において、［Ｘ］、［Ｙ］が
存在するアミノ酸残基を表し、［Ｘ］、［Ｙ］がセリ
ン、グリシン、バリン、アスパラギン、プロリン、シス
テイン、トレオニン残基から選択されるアミノ酸残基ま
たはペプチド残基である請求項（２）記載のペプチド含
有ポリエチレングリコール誘導体またはその塩。 - 【請求項５】請求項（１）−（４）のいずれか１項記載
のペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体またはそ
の塩を有効成分とする動物細胞の接着阻害剤。 - 【請求項６】請求項（１）−（４）のいずれか１項記載
のペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体またはそ
の塩を有効成分とする血小板凝集・粘着抑制剤。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US07/780,081 US5229366A (en) | 1990-10-23 | 1991-10-21 | Peptide-containing polyethylene glycol derivatives and application thereof |
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2-285172 | 1990-10-23 | ||
| JP28517290 | 1990-10-23 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04217693A JPH04217693A (ja) | 1992-08-07 |
| JP2620728B2 true JP2620728B2 (ja) | 1997-06-18 |
Family
ID=17688034
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2333717A Expired - Fee Related JP2620728B2 (ja) | 1990-10-23 | 1990-11-30 | ペプチド含有ポリエチレングリコール誘導体とその用途 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP2620728B2 (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE10136722A1 (de) * | 2001-07-27 | 2003-02-13 | Evotec Ag | Verfahren zur Verhinderung der Adhäsion von Partikeln |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS57192435A (en) * | 1981-05-20 | 1982-11-26 | Toyobo Co Ltd | Modified polypeptide |
| ES8800982A1 (es) * | 1985-07-05 | 1987-12-01 | Takeda Chemical Industries Ltd | Un metodo para producir la enzima superoxido-dismutasa modificada con derivados de polietilenglicol y triazina. |
| JPH0796558B2 (ja) * | 1988-03-31 | 1995-10-18 | 協和醗酵工業株式会社 | 修飾ポリペプチド |
-
1990
- 1990-11-30 JP JP2333717A patent/JP2620728B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH04217693A (ja) | 1992-08-07 |
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Legal Events
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