JP2540508B2 - 化学反応を触媒する方法 - Google Patents
化学反応を触媒する方法Info
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Description
【発明の詳細な説明】 発明の背景 本出願は1983年11月29日に出願された米国出願第556,
016号の一部継続出願であり、よつてその出願の内容は
参照のために本出願に組み入れられる。
016号の一部継続出願であり、よつてその出願の内容は
参照のために本出願に組み入れられる。
本発明は化学反応を触媒する(catalyze)ためのモノ
クローナル抗体の使用に関する。モノクローナル抗体は
ハイブリドーマ細胞が産生する免疫グロブリンである。
モノクローナル抗体は単一の抗原決定基と反応し、従来
の血清由来抗体に比べてより優れた特異性を示す。また
多数のモノクローナル抗体をスクリーニングして、所望
の特異性,結合活性(avidity)およびイソタイプを有
する個々の抗体を選択することができる。ハイブリドー
マ細胞系(cell line)は化学的に同一の抗体に対する
恒存性の安価な資源を提供し、そのような抗体の調製を
容易に標準化しうる。
クローナル抗体の使用に関する。モノクローナル抗体は
ハイブリドーマ細胞が産生する免疫グロブリンである。
モノクローナル抗体は単一の抗原決定基と反応し、従来
の血清由来抗体に比べてより優れた特異性を示す。また
多数のモノクローナル抗体をスクリーニングして、所望
の特異性,結合活性(avidity)およびイソタイプを有
する個々の抗体を選択することができる。ハイブリドー
マ細胞系(cell line)は化学的に同一の抗体に対する
恒存性の安価な資源を提供し、そのような抗体の調製を
容易に標準化しうる。
モノクローナル抗体を産生する方法は当業者に周知であ
る。例えばコプロウスキー,エツチ.(Koprowski,H)
ら,1980年4月1日付発行の米国特許第4,196,265号。
る。例えばコプロウスキー,エツチ.(Koprowski,H)
ら,1980年4月1日付発行の米国特許第4,196,265号。
モノクローナル抗体による抗原識別は免疫グロブリン
(Ig)分子のN−未端域における特異結合部位に帰因す
る。Ig分子は、全てのタンパク−タンパク相互作用に特
有な同型の近距離力を介して抗原と反応すると考えられ
ている。抗原−抗体相互作用は、対応する抗原決定基即
ちエピトープと抗体の結合部位とが相補的な三次元形状
を示すために極めて特異的である。
(Ig)分子のN−未端域における特異結合部位に帰因す
る。Ig分子は、全てのタンパク−タンパク相互作用に特
有な同型の近距離力を介して抗原と反応すると考えられ
ている。抗原−抗体相互作用は、対応する抗原決定基即
ちエピトープと抗体の結合部位とが相補的な三次元形状
を示すために極めて特異的である。
前記相補的形状により、分子が互いに近接して近づき実
質的な表面域上で相互作用が起こりうる。抗体−抗原相
互作用の特異性は、抗原決定基の立体配置の変化によつ
て抗体に対する抗原の結合定数(binding constant)が
著るしく低下するという事実から立証される。その抗原
に対する抗体の結合定数は一般に、基質に対する酵素の
結合定数よりはるかに大きい。
質的な表面域上で相互作用が起こりうる。抗体−抗原相
互作用の特異性は、抗原決定基の立体配置の変化によつ
て抗体に対する抗原の結合定数(binding constant)が
著るしく低下するという事実から立証される。その抗原
に対する抗体の結合定数は一般に、基質に対する酵素の
結合定数よりはるかに大きい。
モノクローナル抗体の用途は知られている。その1つ
が診断法に使用することである。例えばデービツド,ジ
ー.(David,G.)およびグリーン,エツチ.(Green,
H.),1983年3月8日付発行米国特許第4,376,110号。
が診断法に使用することである。例えばデービツド,ジ
ー.(David,G.)およびグリーン,エツチ.(Green,
H.),1983年3月8日付発行米国特許第4,376,110号。
モノクローナル抗体は、免疫吸着クロマトグラフイー
によつて物質を回収するためにも用いられてきた。例え
ばミルシユタイン,シー.(Milstein,C.),1980.サイ
エンテイフイツク・アメリカン(Scientific America
n)243;66,70。
によつて物質を回収するためにも用いられてきた。例え
ばミルシユタイン,シー.(Milstein,C.),1980.サイ
エンテイフイツク・アメリカン(Scientific America
n)243;66,70。
しかしながら、モノクローナル抗体が化学反応を触媒
するために使用されうることは示唆されていない。事
実、触媒作用(catalysis)の分野における開発は免疫
学の分野とは別個に行なわれてきた。抗体を触媒として
使用した試みの唯一の報告例については本出願人らも熟
知しているが、その試みでは所望の反応の速度を大きく
させることはできなかつた。ジー.ピー.ロイヤー(G.
P.Royer),1980,アドバンシス イン カタリシス(Adv
ances in Catalysis)29;197−227。
するために使用されうることは示唆されていない。事
実、触媒作用(catalysis)の分野における開発は免疫
学の分野とは別個に行なわれてきた。抗体を触媒として
使用した試みの唯一の報告例については本出願人らも熟
知しているが、その試みでは所望の反応の速度を大きく
させることはできなかつた。ジー.ピー.ロイヤー(G.
P.Royer),1980,アドバンシス イン カタリシス(Adv
ances in Catalysis)29;197−227。
化学反応のなかで、反応体は異なる状態を通る一連の
遷移をうけ、最終的に生成物に達する。分子的には、中
間状態を介するこれら遷移は結合長さ,角度などの変化
をもたらす。反応体から生成物への遷移は生成物を生成
すべく分解する中間体の形成を含むものとして考えられ
うる。反応全体の速度を、反応体,中間体および生成物
の間の平衡を特徴づける平衡定数で表わすことができ
る。
遷移をうけ、最終的に生成物に達する。分子的には、中
間状態を介するこれら遷移は結合長さ,角度などの変化
をもたらす。反応体から生成物への遷移は生成物を生成
すべく分解する中間体の形成を含むものとして考えられ
うる。反応全体の速度を、反応体,中間体および生成物
の間の平衡を特徴づける平衡定数で表わすことができ
る。
触媒作用は、反応体の状態に関しては中間体の安定化
としてみなされうる。触媒は反応速度を増加させる物質
であり、反応の最後には実質的に化学的変化をうけない
まま回収される。触媒は消費されないが、触媒が反応に
関与することは一般に認められている。
としてみなされうる。触媒は反応速度を増加させる物質
であり、反応の最後には実質的に化学的変化をうけない
まま回収される。触媒は消費されないが、触媒が反応に
関与することは一般に認められている。
触媒作用が産業上重要であるにもかかわらず、簡単な
化学的触媒作用や酵素的触媒作用には多くの制限があ
る。化学的に触媒させた方法ではしばしば所望の生成物
を高収率で製造しえない。前記方法では副反応から不純
物が生じることもよくある。また、多くの重要な化学反
応に対する化学的触媒は知られていない。他の制限とし
ては、比較的高い触媒コスト,化学的活性化の必要性,
大気条件中あるいは少量の水の存在下での有用性欠如、
および大気中の酸素の存在下での可燃性や爆発性が含ま
れる。酵素的触媒作用は、特定の反応を行うために必要
な適度の特異性と触媒機能を有する天然に存在する酵素
の存在と発見に依存する。多くの化学反応に対する酵素
は知られていない。
化学的触媒作用や酵素的触媒作用には多くの制限があ
る。化学的に触媒させた方法ではしばしば所望の生成物
を高収率で製造しえない。前記方法では副反応から不純
物が生じることもよくある。また、多くの重要な化学反
応に対する化学的触媒は知られていない。他の制限とし
ては、比較的高い触媒コスト,化学的活性化の必要性,
大気条件中あるいは少量の水の存在下での有用性欠如、
および大気中の酸素の存在下での可燃性や爆発性が含ま
れる。酵素的触媒作用は、特定の反応を行うために必要
な適度の特異性と触媒機能を有する天然に存在する酵素
の存在と発見に依存する。多くの化学反応に対する酵素
は知られていない。
本発明は、触媒作用に対する新規なアプローチを提供
することによつてこれらの制限を解決する。本発明は、
触媒の分野では今まで得ることのできなかつた作用効率
と特異性とをある程度有する便利で容易に入手可能で安
価な触媒としてのモノクローナル抗体の調製および使用
方法を提供する。
することによつてこれらの制限を解決する。本発明は、
触媒の分野では今まで得ることのできなかつた作用効率
と特異性とをある程度有する便利で容易に入手可能で安
価な触媒としてのモノクローナル抗体の調製および使用
方法を提供する。
発明の要約 本発明は、少なくとも1種の反応体から少なくとも1
種の生成物への変換(conversion)を含む化学反応の速
度を増加させるための、モノクローナル抗体を含む方法
に関する。
種の生成物への変換(conversion)を含む化学反応の速
度を増加させるための、モノクローナル抗体を含む方法
に関する。
本発明を実施するに際し、モノクローナル抗体と1種
以上の反応体との複合体(complex)を形成するのに適
当な条件下で1種以上の反応体を適当なモノクローナル
抗体と接触させる。1種以上の複合体化された反応体を
生成物へ変換し、生成物を複合体から遊離させる。
以上の反応体との複合体(complex)を形成するのに適
当な条件下で1種以上の反応体を適当なモノクローナル
抗体と接触させる。1種以上の複合体化された反応体を
生成物へ変換し、生成物を複合体から遊離させる。
一具体例では、本発明はオキシドレダクターゼ,トラ
ンスフエラーゼ,加水分解酵素,リアーゼ,イソメラー
ゼおよびリガーゼの如き酵素によつても触媒されうる化
学反応の速度を増加させるのに有用である。他の具体例
では、本発明は、触媒酵素が知られていない化学反応の
反応速度を増加させるために有用である。そのような反
応の中には、特に酸化,還元,付加,縮合,脱離,置
換,開裂および転位が含まれる。
ンスフエラーゼ,加水分解酵素,リアーゼ,イソメラー
ゼおよびリガーゼの如き酵素によつても触媒されうる化
学反応の速度を増加させるのに有用である。他の具体例
では、本発明は、触媒酵素が知られていない化学反応の
反応速度を増加させるために有用である。そのような反
応の中には、特に酸化,還元,付加,縮合,脱離,置
換,開裂および転位が含まれる。
本発明によれば、化学反応の速度を100倍以上に、好
ましくは1万倍以上に増加させることができる。
ましくは1万倍以上に増加させることができる。
抗体−反応体複合体の形成に適した状態は、約6.0〜
約8.0、好ましくは約6.0〜約7.5のpHに維持されかつ約
4℃〜約50℃、好ましくは約20℃〜約45℃の温度に維持
されたプロトン性溶媒(protic solvent)、好ましくは
水を含む溶液相あるいはエマルジヨン反応系により与え
られる。イオン強度μ=1/2Σciz2 i(式中、cは濃度で
あり、zはイオン性溶質の電荷である)。それは、1リ
ツトルあたり2.0モル以下、好ましくは1リツトルあた
り約0.1〜1.5モルの値に維持されなければならない。本
発明方法は減圧あるいは加圧下で実施されうるが、好ま
しくは大気圧下で実施する。
約8.0、好ましくは約6.0〜約7.5のpHに維持されかつ約
4℃〜約50℃、好ましくは約20℃〜約45℃の温度に維持
されたプロトン性溶媒(protic solvent)、好ましくは
水を含む溶液相あるいはエマルジヨン反応系により与え
られる。イオン強度μ=1/2Σciz2 i(式中、cは濃度で
あり、zはイオン性溶質の電荷である)。それは、1リ
ツトルあたり2.0モル以下、好ましくは1リツトルあた
り約0.1〜1.5モルの値に維持されなければならない。本
発明方法は減圧あるいは加圧下で実施されうるが、好ま
しくは大気圧下で実施する。
本発明の実施に際して使用するのに適したモノクロー
ナル抗体はK>1で特徴づけられる。前記K=kr/kp
(式中、krは反応体に対するモノクローナル抗体の親和
性(アフイニテイー)定数であり、kpは生成物に対する
モノクローナル抗体の親和性定数である)。モノクロー
ナル抗体は更にr1>r0(式中、r1は抗体と反応体との複
合体形成速度であり、r0はモノクローナル抗体の非存在
下での化学反応速度である)、r2>r0(式中、r2は複合
体化された反応体から複合体化された生成物への変換速
度である)およびr3>r0(式中、r3は複合体からの生成
物の遊離速度である)によつて特徴づけられる。
ナル抗体はK>1で特徴づけられる。前記K=kr/kp
(式中、krは反応体に対するモノクローナル抗体の親和
性(アフイニテイー)定数であり、kpは生成物に対する
モノクローナル抗体の親和性定数である)。モノクロー
ナル抗体は更にr1>r0(式中、r1は抗体と反応体との複
合体形成速度であり、r0はモノクローナル抗体の非存在
下での化学反応速度である)、r2>r0(式中、r2は複合
体化された反応体から複合体化された生成物への変換速
度である)およびr3>r0(式中、r3は複合体からの生成
物の遊離速度である)によつて特徴づけられる。
適当なモノクローナル抗体を産生する方法も開示され
ている。一具体例では、当業者に周知の方法を変更して
つくつたハイブリドーマ細胞を、適当なモノクローナル
抗体を産生するという能力の点で選別(スクリーニン
グ)する。
ている。一具体例では、当業者に周知の方法を変更して
つくつたハイブリドーマ細胞を、適当なモノクローナル
抗体を産生するという能力の点で選別(スクリーニン
グ)する。
別の具体例では、抗−イデイオタイプモノクローナル
抗体を公知の酵素−基質系に対してつくる。抗−イデイ
オタイプモノクローナル抗体は、基質を生成物へ変換す
る速度を増加させるために使用可能であり、アロステリ
ツク制御をうけない。
抗体を公知の酵素−基質系に対してつくる。抗−イデイ
オタイプモノクローナル抗体は、基質を生成物へ変換す
る速度を増加させるために使用可能であり、アロステリ
ツク制御をうけない。
発明の詳細な説明 上述した様に、本発明は少なくとも1つの反応体から
少なくとも1つの生成物への変換を含む化学反応の速度
を高める方法を提供するものである。本発明の実施に於
いて、反応体(1つ以上)少なくとも1つの適当なモノ
クローナル抗体と、該モノクローナル抗体と該反応体
(1つ以上)との間の複合体の形成、該反応体(1つ以
上)の生成物(1つ以上)への変換及び該生成物(1つ
以上)の該複合体からの遊離を可能にする適切な条件下
で接触させる。
少なくとも1つの生成物への変換を含む化学反応の速度
を高める方法を提供するものである。本発明の実施に於
いて、反応体(1つ以上)少なくとも1つの適当なモノ
クローナル抗体と、該モノクローナル抗体と該反応体
(1つ以上)との間の複合体の形成、該反応体(1つ以
上)の生成物(1つ以上)への変換及び該生成物(1つ
以上)の該複合体からの遊離を可能にする適切な条件下
で接触させる。
本発明に有用なモノクローナル抗体は、本明細書中に
引用によつて組み入れられている米国特許第4,196,265
号(1980年4月1日発行)中にコプロウスキー(Koprow
ski)等によつて開示されている技術を改良したものに
よつて調製される。これについての詳細は通常の知識を
有する当業者には公知のものである。本発明の1具体例
に於いて、適当な条件下で反応体に対する一連のモノク
ローナル抗体が調製される。これは、まず最初にBALB/C
マウスを適当な抗原で免疫感作することを含む。抗原
は、所望の反応体かあるいはペプチド又は他のキヤリア
分子に結合した所望の反応体か、あるいは反応中間体か
又は反応体、生成物もしくは反応中間体の類似物であり
得る。本明細書中で使用される「類似物(アナログ)」
という用語は、その類似物に対して生産された抗体がそ
の類似物の反応を必ずしも触媒しないか反応体と免疫学
的反応を引き起し得るように、化学構造の点に於いてそ
の反応体に充分似ている異性体、同族体及び他の化合物
を包含する。例えば、触媒されるべき反応がo−ニトロ
フエニル−β−D−ガラクトシドの開裂である場合は、
抗原は例えばアオガイヘモシアニン(keyhole limpet h
emocyanin:KLH)のようなキヤリアに結合した類似物ジ
ニトロフエノールであり得、又抗原はその反応体すなわ
ちo−ニトロフエニル−β−D−ガラクトシドであり得
る。
引用によつて組み入れられている米国特許第4,196,265
号(1980年4月1日発行)中にコプロウスキー(Koprow
ski)等によつて開示されている技術を改良したものに
よつて調製される。これについての詳細は通常の知識を
有する当業者には公知のものである。本発明の1具体例
に於いて、適当な条件下で反応体に対する一連のモノク
ローナル抗体が調製される。これは、まず最初にBALB/C
マウスを適当な抗原で免疫感作することを含む。抗原
は、所望の反応体かあるいはペプチド又は他のキヤリア
分子に結合した所望の反応体か、あるいは反応中間体か
又は反応体、生成物もしくは反応中間体の類似物であり
得る。本明細書中で使用される「類似物(アナログ)」
という用語は、その類似物に対して生産された抗体がそ
の類似物の反応を必ずしも触媒しないか反応体と免疫学
的反応を引き起し得るように、化学構造の点に於いてそ
の反応体に充分似ている異性体、同族体及び他の化合物
を包含する。例えば、触媒されるべき反応がo−ニトロ
フエニル−β−D−ガラクトシドの開裂である場合は、
抗原は例えばアオガイヘモシアニン(keyhole limpet h
emocyanin:KLH)のようなキヤリアに結合した類似物ジ
ニトロフエノールであり得、又抗原はその反応体すなわ
ちo−ニトロフエニル−β−D−ガラクトシドであり得
る。
もう1つの例として、触媒されるべき反応がアミノレ
ブリン酸2分子からポルホビリノーゲンを生ずる縮合で
ある場合、 抗原は類似物である3−グリシル−4−ヒドロキシ−
4−メチル−1,5−ヘパタンニ酸であり得る。
ブリン酸2分子からポルホビリノーゲンを生ずる縮合で
ある場合、 抗原は類似物である3−グリシル−4−ヒドロキシ−
4−メチル−1,5−ヘパタンニ酸であり得る。
その後免疫感作されたマウスの脾臓から抗体産生リン
パ球を取り出し、SP2/0細胞のようなミエローマ細胞と
融合させて融合細胞(hybridoma cells)を作成する。
パ球を取り出し、SP2/0細胞のようなミエローマ細胞と
融合させて融合細胞(hybridoma cells)を作成する。
これらの融合細胞をその後マイクロタイタープレート
のウエル上に播く。この融合細胞によつて産生される一
連のモノクローナル抗体に対して適度な条件下でスクリ
ーニングを行ない、適度な条件下で所望の反応を触媒す
るモノクローナル抗体を同定する。スクリーニングは、
反応体の標準溶液をマイクロタイターのウエルから採取
した一定量の培地で処理し、従来の機器手段によつて所
望の生成物の存在を測定することによつて便利に行ない
得る。この測定は、例えば分光光度計法、ガス液体クロ
マトグラフイ又は高圧液体クロマトグラフイによつて容
易に行ない得る。所望の生成物又は反応体の標準化試料
との比較によつて、反応速度が定量化され得る。この方
法によつて、触媒作用をもつモノクローナル抗体を産生
する融合細胞を含んでいるウエルを同定する。次いで、
こうして選択された融合細胞がコロニーを形成するまで
培養する。
のウエル上に播く。この融合細胞によつて産生される一
連のモノクローナル抗体に対して適度な条件下でスクリ
ーニングを行ない、適度な条件下で所望の反応を触媒す
るモノクローナル抗体を同定する。スクリーニングは、
反応体の標準溶液をマイクロタイターのウエルから採取
した一定量の培地で処理し、従来の機器手段によつて所
望の生成物の存在を測定することによつて便利に行ない
得る。この測定は、例えば分光光度計法、ガス液体クロ
マトグラフイ又は高圧液体クロマトグラフイによつて容
易に行ない得る。所望の生成物又は反応体の標準化試料
との比較によつて、反応速度が定量化され得る。この方
法によつて、触媒作用をもつモノクローナル抗体を産生
する融合細胞を含んでいるウエルを同定する。次いで、
こうして選択された融合細胞がコロニーを形成するまで
培養する。
これらのコロニーはインビトロ(in vitro)又はイン
ビボ(in vivo)のシステムで更に増殖させることもで
きる。後者の場合は、選択された融合細胞を同系BALB/C
マウスのようなマウスの腹腔内に移植すると通常2〜3
週内に腫瘍を形成する。この腫瘍に伴つて所望のモノク
ローナル抗体を含む腹水が生成される。その後、このモ
ノクローナル抗体は、限外過、超遠心、透析及び免疫
アフイニテイークロマトグラフイー等の従来の方法によ
つて腹水から分離回収される。
ビボ(in vivo)のシステムで更に増殖させることもで
きる。後者の場合は、選択された融合細胞を同系BALB/C
マウスのようなマウスの腹腔内に移植すると通常2〜3
週内に腫瘍を形成する。この腫瘍に伴つて所望のモノク
ローナル抗体を含む腹水が生成される。その後、このモ
ノクローナル抗体は、限外過、超遠心、透析及び免疫
アフイニテイークロマトグラフイー等の従来の方法によ
つて腹水から分離回収される。
本発明のモノクローナル抗体は以下の式によつて特徴
付けられる。
付けられる。
(1)K=kr/kp>1 (2)r1>r0 (3)r2>r0 (4)r3>r0 式(1)に於いて、Kは、反応体に対するモノクロー
ナル抗体のアフイニテイー定数krの、生成物に対するモ
ノクローナル抗体のアフイニテイー定数kpに対する比と
定義される。この式は、このモノクローナル抗体が生成
物よりも反応体に対してより強い結合アフイニテイー
(binding affinity)を持つているという事実を反映し
ている。従つて、反応体が化学修飾を受け生成物を形成
した結果、複合体を形成した分子に対するモノクローナ
ル抗体の結合アフイニテイーが低下して生成物分子が該
複合体から遊離し、それによつて遊離のモノクローナル
抗体触媒が再生される。好ましくはKは102より大であ
る。
ナル抗体のアフイニテイー定数krの、生成物に対するモ
ノクローナル抗体のアフイニテイー定数kpに対する比と
定義される。この式は、このモノクローナル抗体が生成
物よりも反応体に対してより強い結合アフイニテイー
(binding affinity)を持つているという事実を反映し
ている。従つて、反応体が化学修飾を受け生成物を形成
した結果、複合体を形成した分子に対するモノクローナ
ル抗体の結合アフイニテイーが低下して生成物分子が該
複合体から遊離し、それによつて遊離のモノクローナル
抗体触媒が再生される。好ましくはKは102より大であ
る。
式(2),(3)及び(4)は本発明に有用なモノク
ローナル抗体の速度論的特性を示している。
ローナル抗体の速度論的特性を示している。
式(2)は、抗体−反応体間の複合体形成速度として
定義されるr1がモノクローナル抗体がないときの化学反
応速度r0よりも大でなければならないということを表し
ている。式(3)は、複合体を形成した反応体が複合体
を形成している生成物に変換する速度として定義される
r2がr0よりも大でなければならないことを表している。
式(4)は、複合体からの生成物の遊離速度として定義
されるr3がr0よりも大でなければならないということを
表している。r0,r1,r2及びr3は公知の方法によつて直
接又は間接的に便利に決定され得ることは当業者には理
解されるところである。
定義されるr1がモノクローナル抗体がないときの化学反
応速度r0よりも大でなければならないということを表し
ている。式(3)は、複合体を形成した反応体が複合体
を形成している生成物に変換する速度として定義される
r2がr0よりも大でなければならないことを表している。
式(4)は、複合体からの生成物の遊離速度として定義
されるr3がr0よりも大でなければならないということを
表している。r0,r1,r2及びr3は公知の方法によつて直
接又は間接的に便利に決定され得ることは当業者には理
解されるところである。
これらの特徴の結果、本発明のモノクローナル抗体に
よつて化学反応の速度を好ましくは102倍以上更に好ま
しくは104倍以上に早くすることができる。
よつて化学反応の速度を好ましくは102倍以上更に好ま
しくは104倍以上に早くすることができる。
本発明に依れば、分離回収されたモノクローナル抗体
を適度な条件下で反応体と接触させる。この条件によつ
て該モノクローナル抗体と該反応体間の複合体が形成さ
れ得る。通常の知識を有する当業者には、複合体形成の
ための適当な条件は問題になつているその特定の反応体
とモノクローナル抗体とに依つて変化し得ることは理解
されよう。従つて、モノクローナル抗体が反応体(1つ
以上)と複合体を形成し得なくなつたり又は別様に不活
性化されない限り本発明方法は様々な反応条件下で実施
され得る。より特定的には複合体形成のための適当な条
件は、プロトン性溶媒(protic solvent)、好ましくは
水を含む溶液相及び乳濁反応システムを包含し、これは
pHが約6.0〜約8.0、好ましくは約6.0〜約7.5で温度が約
4℃〜約50℃、好ましくは約20℃〜約45℃に保たれてい
るものである。イオン強度、μ=1/2Σcizi 2(ここでc
は濃度、zはイオン性溶質の電荷である。)は約2.0mol
e/lより小さく、好ましくは0.1〜1.5mole/lに維持すべ
きである。本発明方法は減圧又は加圧下で行ない得る
が、大気圧で行なうのが好ましい。溶液相及び乳濁反応
システムに加えて、モノクローナル抗体が付着される支
持物を用いることも適当な条件として含まれる。このよ
うな支持物は、モノクローナル抗体をそれに付着させる
方法と共に通常の知識を有する当業者には良く知られて
いる。
を適度な条件下で反応体と接触させる。この条件によつ
て該モノクローナル抗体と該反応体間の複合体が形成さ
れ得る。通常の知識を有する当業者には、複合体形成の
ための適当な条件は問題になつているその特定の反応体
とモノクローナル抗体とに依つて変化し得ることは理解
されよう。従つて、モノクローナル抗体が反応体(1つ
以上)と複合体を形成し得なくなつたり又は別様に不活
性化されない限り本発明方法は様々な反応条件下で実施
され得る。より特定的には複合体形成のための適当な条
件は、プロトン性溶媒(protic solvent)、好ましくは
水を含む溶液相及び乳濁反応システムを包含し、これは
pHが約6.0〜約8.0、好ましくは約6.0〜約7.5で温度が約
4℃〜約50℃、好ましくは約20℃〜約45℃に保たれてい
るものである。イオン強度、μ=1/2Σcizi 2(ここでc
は濃度、zはイオン性溶質の電荷である。)は約2.0mol
e/lより小さく、好ましくは0.1〜1.5mole/lに維持すべ
きである。本発明方法は減圧又は加圧下で行ない得る
が、大気圧で行なうのが好ましい。溶液相及び乳濁反応
システムに加えて、モノクローナル抗体が付着される支
持物を用いることも適当な条件として含まれる。このよ
うな支持物は、モノクローナル抗体をそれに付着させる
方法と共に通常の知識を有する当業者には良く知られて
いる。
本発明方法はどのような化学反応の速度を高めるのに
も広く有用である。例えば、本発明方法は1つの反応体
から1つの生成物への変換を含む化学反応に適用し得
る。このような反応はα−ケト酸からα−アミノ酸への
変換を含み、インドールピルビン酸のL−トリプトフア
ンへの変換によつて例示され得る。もう1つの例として
は環状ポリヌクレオチドから鎖状ポリヌクレオチドへの
変換がある。ここで“ポリヌクレオチド”という用語は
ポリ及びオリゴヌクレオチドの両者を含む。
も広く有用である。例えば、本発明方法は1つの反応体
から1つの生成物への変換を含む化学反応に適用し得
る。このような反応はα−ケト酸からα−アミノ酸への
変換を含み、インドールピルビン酸のL−トリプトフア
ンへの変換によつて例示され得る。もう1つの例として
は環状ポリヌクレオチドから鎖状ポリヌクレオチドへの
変換がある。ここで“ポリヌクレオチド”という用語は
ポリ及びオリゴヌクレオチドの両者を含む。
本発明方法はもつと複雑な化学量論の化学反応にも適
用され得る。例えば、2つの反応体からの1つの生成物
への変換を含む反応の速度も本発明によつて高められ得
る。このような反応の例としてアミノレブリン酸2分子
からのポルホビリノーゲン1分子への変換がある。
用され得る。例えば、2つの反応体からの1つの生成物
への変換を含む反応の速度も本発明によつて高められ得
る。このような反応の例としてアミノレブリン酸2分子
からのポルホビリノーゲン1分子への変換がある。
本方法は、1つの反応体から2つの生成物への変換を
含む反応にも有用である。このような反応は、β−D−
ガラクトシドからのD−ガラクトースと第2の生成物へ
の変換、ポリヌクレオチド、ポリペプチド又はポリサツ
カライドからのそれぞれから得られる2つのフラグメン
ト(断片)を生じる開裂によつて例示され得る。ここで
用いられる“ポリペプチド”及び“ポリサツカライド”
という用語は、それぞれポリ及びオリゴペプチド並びに
ポリ及びオリゴサツカライドを含む。
含む反応にも有用である。このような反応は、β−D−
ガラクトシドからのD−ガラクトースと第2の生成物へ
の変換、ポリヌクレオチド、ポリペプチド又はポリサツ
カライドからのそれぞれから得られる2つのフラグメン
ト(断片)を生じる開裂によつて例示され得る。ここで
用いられる“ポリペプチド”及び“ポリサツカライド”
という用語は、それぞれポリ及びオリゴペプチド並びに
ポリ及びオリゴサツカライドを含む。
本方法は更に1つの反応体から多数の生成物への変換
を含む化学反応の速度を高めることに有用である。この
ような反応はポリヌクレオチド、ポリペプチド及びポリ
サツカライドからのそれぞれから生じるフラグメント
(断片)への変換等を含む。
を含む化学反応の速度を高めることに有用である。この
ような反応はポリヌクレオチド、ポリペプチド及びポリ
サツカライドからのそれぞれから生じるフラグメント
(断片)への変換等を含む。
本発明のもう1つの具体例では、反応体を1つより多
くのモノクローナル抗体と接触させる。この抗体の各々
は反応体の異なる決定基にそれぞれ作用する。従つて、
反応体がポリヌクレオチドでモノクローナル抗体がこの
ポリヌクレオチド内部の異なつたヌクレオチド配列に作
用するものであるときは、特定のポリヌクレオチドフラ
グメントを該反応体から開裂し得る。
くのモノクローナル抗体と接触させる。この抗体の各々
は反応体の異なる決定基にそれぞれ作用する。従つて、
反応体がポリヌクレオチドでモノクローナル抗体がこの
ポリヌクレオチド内部の異なつたヌクレオチド配列に作
用するものであるときは、特定のポリヌクレオチドフラ
グメントを該反応体から開裂し得る。
本方法は2つの反応体から2つの生成物への変換を含
む反応の速度を高めるのにも有用である。このような反
応は1つの反応体と2番目の反応体との間での官能基の
交換によつて2つの新しい生成物を生じる、例えばエス
テル交換反応を含む。
む反応の速度を高めるのにも有用である。このような反
応は1つの反応体と2番目の反応体との間での官能基の
交換によつて2つの新しい生成物を生じる、例えばエス
テル交換反応を含む。
前述したところの化学量論の列挙は限定的なものでは
なく、むしろ本発明の広範囲に恒る有用性を指摘し、本
方法がいま問題にされている反応の化学量論に限定され
ないということを示すつもりのものである。
なく、むしろ本発明の広範囲に恒る有用性を指摘し、本
方法がいま問題にされている反応の化学量論に限定され
ないということを示すつもりのものである。
前述の議論及び実例によつても明らかなように、本発
明の方法は酸化還元、付加、縮合、脱離、置換、開裂及
び転位その他のものを含む広範囲な化学反応に対して有
用である。
明の方法は酸化還元、付加、縮合、脱離、置換、開裂及
び転位その他のものを含む広範囲な化学反応に対して有
用である。
これらの実例は本発明の触媒特異性が高いということ
もまた例証するものである。例えば本発明の実施に際し
て、ポリヌクレオチドのある特定なヌクレオチド配列だ
け、又はペプチドのある特定なアミノ酸配列だけと相互
作用するモノクローナル抗体を調製し得る。
もまた例証するものである。例えば本発明の実施に際し
て、ポリヌクレオチドのある特定なヌクレオチド配列だ
け、又はペプチドのある特定なアミノ酸配列だけと相互
作用するモノクローナル抗体を調製し得る。
本発明の方法は酵素によつても触媒され得る反応の速
度を高めることに用い得る。例えば酵素としては、アル
コールデヒドロゲナーゼ、グルコースオキシダーゼ、キ
サンチンオキシダーゼ、ジヒドロウラシルデヒドロゲナ
ーゼ若しくはL−アミノ酸オキシダーゼのような酸化還
元酵素、グアニジノ酢酸メチルトランスフエラーゼ、セ
リンヒドロキシメチルトランスフエラーゼ若しくはアス
パラギン酸アミノトランスフエラーゼのような転移酵
素、アセチルコリンエステラーゼ、グルコース−6−ホ
スフアターゼ若しくはホスホジエステラーゼのような加
水分解酵素、ピルビン酸デカルボキシラーゼ、アルドラ
ーゼ若しくはヒスチジンアンモニア−リアーゼのような
リアーゼ、リブロースリン酸エピメラーゼのようなイソ
メラーゼ又はチロシル−ttRNAシンターゼ若しくはアセ
チルCoAカルボキシラーゼのようなリガーゼが考えられ
る。
度を高めることに用い得る。例えば酵素としては、アル
コールデヒドロゲナーゼ、グルコースオキシダーゼ、キ
サンチンオキシダーゼ、ジヒドロウラシルデヒドロゲナ
ーゼ若しくはL−アミノ酸オキシダーゼのような酸化還
元酵素、グアニジノ酢酸メチルトランスフエラーゼ、セ
リンヒドロキシメチルトランスフエラーゼ若しくはアス
パラギン酸アミノトランスフエラーゼのような転移酵
素、アセチルコリンエステラーゼ、グルコース−6−ホ
スフアターゼ若しくはホスホジエステラーゼのような加
水分解酵素、ピルビン酸デカルボキシラーゼ、アルドラ
ーゼ若しくはヒスチジンアンモニア−リアーゼのような
リアーゼ、リブロースリン酸エピメラーゼのようなイソ
メラーゼ又はチロシル−ttRNAシンターゼ若しくはアセ
チルCoAカルボキシラーゼのようなリガーゼが考えられ
る。
前記した様に本方法は、自然にはアミノレブリン酸デ
ヒドラターゼという酵素によつて触媒される反応であ
る、アミノレブリン酸2分子からポルホビリノーゲン1
分子への変換、自然にはホスホジエステラーゼ(制限)
酵素によつて触媒されるポリヌクレオチド中の特定なホ
スホジエステル結合の開裂を含む反応である。環状ポリ
ヌクレオチドから鎖状ポリヌクレオチドへの変換又は鎖
状ポリヌクレオチドから2つ以上のそれのフラグメント
への変換、自然にはトランスアミナーゼ酵素によつて触
媒される反応体から生成物へのアミノ基への転移(tran
sfer)を含む反応である、インドールピルビン酸のよう
なα−ケト酸からL−トリプトフアンのようなα−アミ
ノ酸への変換、及び自然にはβ−D−ガラクトシターゼ
によつて触媒されるβ−D−ガラクトシド結合の開裂を
含む反応である、β−D−ガラクトシドからのD−ガラ
クトース及び第2生成物への変換、の速度を高めるのに
用いることができる。
ヒドラターゼという酵素によつて触媒される反応であ
る、アミノレブリン酸2分子からポルホビリノーゲン1
分子への変換、自然にはホスホジエステラーゼ(制限)
酵素によつて触媒されるポリヌクレオチド中の特定なホ
スホジエステル結合の開裂を含む反応である。環状ポリ
ヌクレオチドから鎖状ポリヌクレオチドへの変換又は鎖
状ポリヌクレオチドから2つ以上のそれのフラグメント
への変換、自然にはトランスアミナーゼ酵素によつて触
媒される反応体から生成物へのアミノ基への転移(tran
sfer)を含む反応である、インドールピルビン酸のよう
なα−ケト酸からL−トリプトフアンのようなα−アミ
ノ酸への変換、及び自然にはβ−D−ガラクトシターゼ
によつて触媒されるβ−D−ガラクトシド結合の開裂を
含む反応である、β−D−ガラクトシドからのD−ガラ
クトース及び第2生成物への変換、の速度を高めるのに
用いることができる。
本発明のその他の態様においては、ある酵素の既知の
基質である抗原に対するモノクローナル抗体を調製し基
質を生成物に変換する速度を増加させるために使用す
る。本方法は例えば、酵素β−D−ガラクトシダーゼの
基質として公知のo−ニトロフエニル−β−D−ガラク
トシドのo−ニトロフエノールとD−ガラクトースへの
分解(変換)の速度を増加させるのに有用である。本方
法においては、該酵素をBALB/Cマウスに接種し、前記し
た一般的技術に従って処理することによって、該酵素に
対する一連のモノクローナル抗体を調製する。こうして
調製した一連の抗体を至適条件下でスクリーニングし、
酵素の活性部位に結合する第1モノクローナル抗体を同
定する。そのようなモノクローナル抗体は、適当な条件
下で抗原(基質)が酵素に対して結合するのを阻害する
抗体をスクリーニングすることによつて同定し得る。こ
のスクリーニング工程は、例えばラジオイムノアツセイ
(RIA)のような酵素結合活性を測定する慣用の方法に
より行うのが便利である。このようにして同定した第1
モノクローナル抗体を一般的方法により分離回収し、新
たな別のBALB/Cマウスに接種するのに使用する。一般的
方法に従い、第1モノクローナル抗体に対する一連のモ
ノクローナル抗体を生成する。かくして生成された抗体
を“抗−イデイオタイプ”モノクローナル抗体と称す
る。次に一連の抗−イデイオタイプモノクローナル抗体
を一般的方法に従つてスクリーニングし、至適条件下で
抗原(基質)に結合しそれを生成物に変換する抗−イデ
イオタイプモノクローナル抗体を同定する。“(適切
な)至適条件”とは抗体−反応体複合体形成のための前
記パラメーター内にある条件を意味する。かくして生成
され、分離回収された抗−イデイオタイプモノクローナ
ル抗体は本発明に従い、基質を生成物に変換する速度を
増加するために使用し得る。
基質である抗原に対するモノクローナル抗体を調製し基
質を生成物に変換する速度を増加させるために使用す
る。本方法は例えば、酵素β−D−ガラクトシダーゼの
基質として公知のo−ニトロフエニル−β−D−ガラク
トシドのo−ニトロフエノールとD−ガラクトースへの
分解(変換)の速度を増加させるのに有用である。本方
法においては、該酵素をBALB/Cマウスに接種し、前記し
た一般的技術に従って処理することによって、該酵素に
対する一連のモノクローナル抗体を調製する。こうして
調製した一連の抗体を至適条件下でスクリーニングし、
酵素の活性部位に結合する第1モノクローナル抗体を同
定する。そのようなモノクローナル抗体は、適当な条件
下で抗原(基質)が酵素に対して結合するのを阻害する
抗体をスクリーニングすることによつて同定し得る。こ
のスクリーニング工程は、例えばラジオイムノアツセイ
(RIA)のような酵素結合活性を測定する慣用の方法に
より行うのが便利である。このようにして同定した第1
モノクローナル抗体を一般的方法により分離回収し、新
たな別のBALB/Cマウスに接種するのに使用する。一般的
方法に従い、第1モノクローナル抗体に対する一連のモ
ノクローナル抗体を生成する。かくして生成された抗体
を“抗−イデイオタイプ”モノクローナル抗体と称す
る。次に一連の抗−イデイオタイプモノクローナル抗体
を一般的方法に従つてスクリーニングし、至適条件下で
抗原(基質)に結合しそれを生成物に変換する抗−イデ
イオタイプモノクローナル抗体を同定する。“(適切
な)至適条件”とは抗体−反応体複合体形成のための前
記パラメーター内にある条件を意味する。かくして生成
され、分離回収された抗−イデイオタイプモノクローナ
ル抗体は本発明に従い、基質を生成物に変換する速度を
増加するために使用し得る。
本発明のこの実施態様において酵素の代りにこのよう
なモノクローナル抗体を使用することは、酵素がアロス
テリツクな場合特に有利である。アロステリツク酵素
は、基質、生成物あるいは他の分子であり得るモジユレ
ーター分子により活性化あるいは阻害される酵素であ
る。その結果、アロステリツク酵素の動力学的挙動はモ
ジユレーター(1種以上)の濃度の変動により大きく変
化する。アロステリツク挙動の比較的簡単な例はフイー
ドバツク阻害を受ける酵素により例示される。この場合
酵素の触媒効率は、直接のあるいはその後の生成物の濃
度の増加に従い減少する。これによりこのような酵素の
多くの用途での使用は制限され、生成物の連続的な除去
が必要となる。本発明においてはそのような酵素の代り
にアロステリツクコントロールを受けない適当な抗−イ
デイオタイプモノクローナル抗体を使用することによつ
てアロステリツク性の問題及び制限を打破し得る。
なモノクローナル抗体を使用することは、酵素がアロス
テリツクな場合特に有利である。アロステリツク酵素
は、基質、生成物あるいは他の分子であり得るモジユレ
ーター分子により活性化あるいは阻害される酵素であ
る。その結果、アロステリツク酵素の動力学的挙動はモ
ジユレーター(1種以上)の濃度の変動により大きく変
化する。アロステリツク挙動の比較的簡単な例はフイー
ドバツク阻害を受ける酵素により例示される。この場合
酵素の触媒効率は、直接のあるいはその後の生成物の濃
度の増加に従い減少する。これによりこのような酵素の
多くの用途での使用は制限され、生成物の連続的な除去
が必要となる。本発明においてはそのような酵素の代り
にアロステリツクコントロールを受けない適当な抗−イ
デイオタイプモノクローナル抗体を使用することによつ
てアロステリツク性の問題及び制限を打破し得る。
本発明は、以後コファクター(補因子)と称する非タ
ンパク性有機分子によつても触媒され得る反応の速度を
増加するのに使用し得ることもまた考えられる。コファ
クターとは例えば、ピリドキサールリン酸、ニコチンア
ミドアデニンジヌクレオチド、ニコチンアミドアデニン
ジヌクレオチドリン酸、フラビンアデニンジヌクレオチ
ド、アデノシン三リン酸、チアミンピロリン酸(pyrosp
hospohave)、フラビンモノヌクレオチド、ビオチン、
テトラヒドロ葉酸、コエンザイムB12、及びコエンザイ
ムA等である。例えばピリドキサールリン酸によつて触
媒され得る反応にはα−ケト酸及びα−アミノ酸の相互
変換(inter−conversion)がある。コファクターのみ
によつて触媒される反応は他のものも含めて比較的遅い
反応で、また非選択的である。コファクターのみを使用
した時に遭遇する問題を打破するために、コファクター
のみの比較的効率の悪い触媒能力と高度に特異的で効率
の高いモノクローナル抗体の有利性とを結合する本発明
に従つてモノクローナル抗体を調製し得る。そのような
モノクローナル抗体を調製するためには、反応体あるい
は反応体又は生成物の類似物に結合したコファクターを
マウスに接種し、その後前述したコプロウスキー(Kopr
owski)の一般的方法を行なう。次に一般的方法により
一連のハイブリドーマ細胞を調製して、遊離コファクタ
ー及び反応体と複合化し、化学反応の速度を増加し、生
成物を解放(遊離)し得るモノクローナル抗体の生成に
関してスクリーニングする。例えばインドールピルビン
酸−ピリドキサミンリン酸イミンに対するその様なモノ
クローナル抗体は、インドールピルビン酸のアミノ酸ト
リプトフアンへの変換の速度を選択的に増加させる。本
発明のこの態様の実施においては、モノクローナル抗体
と少なくとも等モル量の適当なコファクターを反応混合
物に加えることが好ましい。
ンパク性有機分子によつても触媒され得る反応の速度を
増加するのに使用し得ることもまた考えられる。コファ
クターとは例えば、ピリドキサールリン酸、ニコチンア
ミドアデニンジヌクレオチド、ニコチンアミドアデニン
ジヌクレオチドリン酸、フラビンアデニンジヌクレオチ
ド、アデノシン三リン酸、チアミンピロリン酸(pyrosp
hospohave)、フラビンモノヌクレオチド、ビオチン、
テトラヒドロ葉酸、コエンザイムB12、及びコエンザイ
ムA等である。例えばピリドキサールリン酸によつて触
媒され得る反応にはα−ケト酸及びα−アミノ酸の相互
変換(inter−conversion)がある。コファクターのみ
によつて触媒される反応は他のものも含めて比較的遅い
反応で、また非選択的である。コファクターのみを使用
した時に遭遇する問題を打破するために、コファクター
のみの比較的効率の悪い触媒能力と高度に特異的で効率
の高いモノクローナル抗体の有利性とを結合する本発明
に従つてモノクローナル抗体を調製し得る。そのような
モノクローナル抗体を調製するためには、反応体あるい
は反応体又は生成物の類似物に結合したコファクターを
マウスに接種し、その後前述したコプロウスキー(Kopr
owski)の一般的方法を行なう。次に一般的方法により
一連のハイブリドーマ細胞を調製して、遊離コファクタ
ー及び反応体と複合化し、化学反応の速度を増加し、生
成物を解放(遊離)し得るモノクローナル抗体の生成に
関してスクリーニングする。例えばインドールピルビン
酸−ピリドキサミンリン酸イミンに対するその様なモノ
クローナル抗体は、インドールピルビン酸のアミノ酸ト
リプトフアンへの変換の速度を選択的に増加させる。本
発明のこの態様の実施においては、モノクローナル抗体
と少なくとも等モル量の適当なコファクターを反応混合
物に加えることが好ましい。
本発明の特定実施態様の説明のため、実施例を以下に
記載する。
記載する。
材料及び方法 以下の実施例で使用した化学的、生物学的試薬は下記
の市販先より入手した。o−ニトロフエニル−β−D−
ガラクトシダーゼ及びバツフアーはシグマケミカル社
(Sigma Chemical Co.,セントルイス、ミズーリ)より
入手した。ジニトロフエノール(DNP)及びジニトロベ
ンゼンスルホン酸塩はイーストマンコダツク社(Eastma
n Kodak Co.,ロチエスター、ニユーヨーク)より入手し
た。ホースラデイツシユベルオキシド標識ヤギ抗マウス
イムノグロブリン及び2,2′−アジノージ(3−エチル
ベンズチアゾリンスルホン酸)(ABTS)はKLPラボラト
リー(KPL Laboratories,Inc.,ゲザーズバーグ、メリー
ランド)より入手した。マイクロタイタープレート(Im
mulon II )はダイナテツク(Dynatech,アレキサンド
リア、バージニア)より入手した。カノマイシンはジブ
コラボラトリーズ(GIBCO Laboratories、グランドアイ
ランド、ニユーヨーク)より入手した。牛胎児血清及び
アオガイヘモシアニン及び他のタンパク質はカルバイオ
ケム−ベーリング(Calbiochem−Behring.サンジエゴ、
カリフオルニア)より入手し得る。細胞生長培地及び添
加物はエムエーバイオプロダクツ(M.A.Bioproducts、
ウオーカーズビル、メリーランド)より入手し得る。Sp
20ミエローマ細胞(ATCC CRL 1581)はアメリカンタイ
プカルチユアコレクシヨン(American Type Culture Co
llection,ロツクビル、メリーランド)より入手した。
他の試薬、例えばo−ニトロフエニル−β−D−ガラク
トシド、5−アミノレビユリン酸、過酸化水素、フエノ
ール、硫酸マグネシウム、重炭酸ナトリウム、インドー
ル−3−ピルビン酸、ピリドキサール−5−リン酸モレ
キユラーシーブ及びモルフオ(morpho)CDI等はアルド
リツチケミカル社(Aldrich Chemical Co.,セントルイ
ス、ミズーリ)より入手し得る。BALB/Cマウスはナシヨ
ナルカンサーインステイテユート、フレデリツクリサー
チフアシリテイ(National Cancer Institute,Frederic
k Research Facility,フレドリツク、メリーランド)よ
り入手した。アジユバンドはシグマ(Sigma)より入手
した。マウス乳腺腫瘍ウイルスRNAは、例えばMTV ATCC
VR−731(アメリカンタイプカルチユアコレクシヨン)
のような市販のマウス乳腺腫瘍ウイルスから従来法によ
り抽出し得る。3−グリシル−4−ヒドロキシ−4−メ
チル−1,5−ヘプタン二酸類似体は慣用の合成法、例え
ばアミノレビユリン酸及びレビユリン酸(アルドリツ
ヒ,Aldrich)を適当に保護した分子の塩基触媒縮合及び
その後の脱保護及びHPLC精製により調製し得る。
の市販先より入手した。o−ニトロフエニル−β−D−
ガラクトシダーゼ及びバツフアーはシグマケミカル社
(Sigma Chemical Co.,セントルイス、ミズーリ)より
入手した。ジニトロフエノール(DNP)及びジニトロベ
ンゼンスルホン酸塩はイーストマンコダツク社(Eastma
n Kodak Co.,ロチエスター、ニユーヨーク)より入手し
た。ホースラデイツシユベルオキシド標識ヤギ抗マウス
イムノグロブリン及び2,2′−アジノージ(3−エチル
ベンズチアゾリンスルホン酸)(ABTS)はKLPラボラト
リー(KPL Laboratories,Inc.,ゲザーズバーグ、メリー
ランド)より入手した。マイクロタイタープレート(Im
mulon II )はダイナテツク(Dynatech,アレキサンド
リア、バージニア)より入手した。カノマイシンはジブ
コラボラトリーズ(GIBCO Laboratories、グランドアイ
ランド、ニユーヨーク)より入手した。牛胎児血清及び
アオガイヘモシアニン及び他のタンパク質はカルバイオ
ケム−ベーリング(Calbiochem−Behring.サンジエゴ、
カリフオルニア)より入手し得る。細胞生長培地及び添
加物はエムエーバイオプロダクツ(M.A.Bioproducts、
ウオーカーズビル、メリーランド)より入手し得る。Sp
20ミエローマ細胞(ATCC CRL 1581)はアメリカンタイ
プカルチユアコレクシヨン(American Type Culture Co
llection,ロツクビル、メリーランド)より入手した。
他の試薬、例えばo−ニトロフエニル−β−D−ガラク
トシド、5−アミノレビユリン酸、過酸化水素、フエノ
ール、硫酸マグネシウム、重炭酸ナトリウム、インドー
ル−3−ピルビン酸、ピリドキサール−5−リン酸モレ
キユラーシーブ及びモルフオ(morpho)CDI等はアルド
リツチケミカル社(Aldrich Chemical Co.,セントルイ
ス、ミズーリ)より入手し得る。BALB/Cマウスはナシヨ
ナルカンサーインステイテユート、フレデリツクリサー
チフアシリテイ(National Cancer Institute,Frederic
k Research Facility,フレドリツク、メリーランド)よ
り入手した。アジユバンドはシグマ(Sigma)より入手
した。マウス乳腺腫瘍ウイルスRNAは、例えばMTV ATCC
VR−731(アメリカンタイプカルチユアコレクシヨン)
のような市販のマウス乳腺腫瘍ウイルスから従来法によ
り抽出し得る。3−グリシル−4−ヒドロキシ−4−メ
チル−1,5−ヘプタン二酸類似体は慣用の合成法、例え
ばアミノレビユリン酸及びレビユリン酸(アルドリツ
ヒ,Aldrich)を適当に保護した分子の塩基触媒縮合及び
その後の脱保護及びHPLC精製により調製し得る。
実施例1 o−ニトロフエニル−β−D−ガラクトシドによるマウ
スの免疫化 第0日目に、7週令の雌BALB/Cマウスの1グループ
(表1のグループ1)に10mgのo−ニトロフエニル−β
−D−ガラクトシド(ONPG)を静脈内、12mgのONPGを腹
腔内接種した。ONPGはpH7.3の0.1Mリン酸バツフアーに2
5mg/mlの濃度で溶解し、37℃に加温した。第33日目のマ
ウスに、不完全フロインドアジユバント中のONPGを12.5
mg腹腔内接種した。ONPGリン酸バツフアー溶液は等容量
の不完全フロインドアジユバントと混合し、接種に先立
ち乳化させた。第54日目に各マウスから血液試料を採取
した。血液サンプルから遠心分離により血清を分離し4
℃で保存した。
スの免疫化 第0日目に、7週令の雌BALB/Cマウスの1グループ
(表1のグループ1)に10mgのo−ニトロフエニル−β
−D−ガラクトシド(ONPG)を静脈内、12mgのONPGを腹
腔内接種した。ONPGはpH7.3の0.1Mリン酸バツフアーに2
5mg/mlの濃度で溶解し、37℃に加温した。第33日目のマ
ウスに、不完全フロインドアジユバント中のONPGを12.5
mg腹腔内接種した。ONPGリン酸バツフアー溶液は等容量
の不完全フロインドアジユバントと混合し、接種に先立
ち乳化させた。第54日目に各マウスから血液試料を採取
した。血液サンプルから遠心分離により血清を分離し4
℃で保存した。
実施例2 ジニトロフエノール−アオガイヘモシアニン結合体によ
るマウスの免疫化 実施例1の接種マウスの91日目に、アオガイヘモシア
ニン(KLH)に結合させ不完全フロイントアジユバント
中に乳化させたジニトロフエノール(DNP)を腹腔内接
種した。ブラツドフオード(Bradford)の方法(1976,
アナル・バイオケム〔Anal.Biochem.〕72:248)により
測定したところ、接種物は10mgのタンパク質を含有して
いた。ジニトロフエノールのKLHへの結合はリトル及び
エイセン(Little,Eisen)の方法(1967,メゾ・イムノ
ル・イムノケム〔Meth.Immunol.Immunochem.〕1:12)に
より行なつた。DNP−KLH接種を第101日目に繰り返し
た。接種物は第91日目の接種物について記載したように
調製した。第105日目に各マウスから血液サンプルを
得、遠心分離により血清を分離し4℃で保存した。
るマウスの免疫化 実施例1の接種マウスの91日目に、アオガイヘモシア
ニン(KLH)に結合させ不完全フロイントアジユバント
中に乳化させたジニトロフエノール(DNP)を腹腔内接
種した。ブラツドフオード(Bradford)の方法(1976,
アナル・バイオケム〔Anal.Biochem.〕72:248)により
測定したところ、接種物は10mgのタンパク質を含有して
いた。ジニトロフエノールのKLHへの結合はリトル及び
エイセン(Little,Eisen)の方法(1967,メゾ・イムノ
ル・イムノケム〔Meth.Immunol.Immunochem.〕1:12)に
より行なつた。DNP−KLH接種を第101日目に繰り返し
た。接種物は第91日目の接種物について記載したように
調製した。第105日目に各マウスから血液サンプルを
得、遠心分離により血清を分離し4℃で保存した。
実施例3 o−ニトロフエニル−β−D−ガラクトシドによるマウ
スの免疫化 BALB/Cマウス(表1のグループ2)に第0日目に完全
フロイントアジユバント中に乳化した50mgあるいは100m
gのONPGを腹腔内に、第30日目にpH7.3の0.1Mリン酸バツ
フアー中のONPG10mgを静脈内に、第63日目に不完全フロ
イントアジユバント中のONPG(25mg/ml)12.5mgを腹腔
内にそれぞれ接種した。その9日後にマウスから採血
し、遠心分離により血清を分離して4℃で保存した。
スの免疫化 BALB/Cマウス(表1のグループ2)に第0日目に完全
フロイントアジユバント中に乳化した50mgあるいは100m
gのONPGを腹腔内に、第30日目にpH7.3の0.1Mリン酸バツ
フアー中のONPG10mgを静脈内に、第63日目に不完全フロ
イントアジユバント中のONPG(25mg/ml)12.5mgを腹腔
内にそれぞれ接種した。その9日後にマウスから採血
し、遠心分離により血清を分離して4℃で保存した。
実施例4 ジニトロフエノール−アオガイヘモシアニン結合体によ
るマウスの免疫化 実施例3の接種マウスの第121日目及び第131日目に、
不完全フロイントマジユバントに乳化したDNP−KLHを10
mg腹腔内接種し、第135日目に採血した。遠心分離によ
り血清を分離し4℃で保存した。
るマウスの免疫化 実施例3の接種マウスの第121日目及び第131日目に、
不完全フロイントマジユバントに乳化したDNP−KLHを10
mg腹腔内接種し、第135日目に採血した。遠心分離によ
り血清を分離し4℃で保存した。
実施例5 マウス血清の評価 A マイクロタイタープレートウエルの調製 炭酸バツフアー中にONPG(1mg/ml)を含有する溶液50
μlをポリスチレンマイクロタイタープレートの各ウエ
ルに加えた。4℃で18時間後溶液を除去し、ウエルを0.
05%Tween−20を含有するリン酸緩衝生理食塩水(PBS−
Tween)で4回洗浄した。次に、ウエルに1%ウシ血清
アルブミン(BSA)を含有するPBS−Tweenを入れ、120分
間37°でインキユベートしてONPG−コートウエルをブロ
ツクした。
μlをポリスチレンマイクロタイタープレートの各ウエ
ルに加えた。4℃で18時間後溶液を除去し、ウエルを0.
05%Tween−20を含有するリン酸緩衝生理食塩水(PBS−
Tween)で4回洗浄した。次に、ウエルに1%ウシ血清
アルブミン(BSA)を含有するPBS−Tweenを入れ、120分
間37°でインキユベートしてONPG−コートウエルをブロ
ツクした。
B ONPG−結合アツセイ 実施例1及び3において採集した血清及び免疫化して
いないマウスの血清を、1%BSAを含有するPBS−Tween
で種々の程度に希釈した。かくして得られた溶液試料を
上記のように調製したONPGコートウエルに加え、37℃で
120分間インキユベートした。その後溶液を除去しPBS−
Tweenでウエルを4回洗浄した。ONPGに結合する血清抗
体の存在を、ホースラデイツシユペルオキシダーゼに結
合した抗−マウスヤギイムノグロブリンを使用するエン
グバル(Engvall)及びパールマン(Perlman)の方法
(1971、イムノケム〔Immunochem.〕8:871)により検出
した。洗浄してウエルから非結合抗マウス抗体を除去し
た後、2,2′−アジノ−ジ(3−エチルベンズチアゾリ
ンスルホン酸)(ABTS)及び過酸化水素を各ウエルに加
え15〜20分間接触させておいた。ONPGで免疫化したマウ
スから得た血清の1:10〜1:320の希釈液と接触したウエ
ルにおいて着色生成物が検出された。実施例3で採集し
た血清のうち当初に100mgのONPGを接種したマウスから
得たものは1:320よりも大きいタイターを有しており、
これは当初50mgのONPGを接種したマウスから得られた血
清の少なくとも2倍以上である。ONPGで免疫化されてい
ないマウスから得た血清は、本アツセイにおいては着色
生成物を生成しなかつた。これ等の結果は、ONPGで免疫
化されたマウスから得た血清はONPGに結合した抗体を含
有していることを示している。
いないマウスの血清を、1%BSAを含有するPBS−Tween
で種々の程度に希釈した。かくして得られた溶液試料を
上記のように調製したONPGコートウエルに加え、37℃で
120分間インキユベートした。その後溶液を除去しPBS−
Tweenでウエルを4回洗浄した。ONPGに結合する血清抗
体の存在を、ホースラデイツシユペルオキシダーゼに結
合した抗−マウスヤギイムノグロブリンを使用するエン
グバル(Engvall)及びパールマン(Perlman)の方法
(1971、イムノケム〔Immunochem.〕8:871)により検出
した。洗浄してウエルから非結合抗マウス抗体を除去し
た後、2,2′−アジノ−ジ(3−エチルベンズチアゾリ
ンスルホン酸)(ABTS)及び過酸化水素を各ウエルに加
え15〜20分間接触させておいた。ONPGで免疫化したマウ
スから得た血清の1:10〜1:320の希釈液と接触したウエ
ルにおいて着色生成物が検出された。実施例3で採集し
た血清のうち当初に100mgのONPGを接種したマウスから
得たものは1:320よりも大きいタイターを有しており、
これは当初50mgのONPGを接種したマウスから得られた血
清の少なくとも2倍以上である。ONPGで免疫化されてい
ないマウスから得た血清は、本アツセイにおいては着色
生成物を生成しなかつた。これ等の結果は、ONPGで免疫
化されたマウスから得た血清はONPGに結合した抗体を含
有していることを示している。
C ONPGの開裂を触媒する活性のアツセイ ONPGと反応する抗体の触媒活性を下記のようにして測
定した。実施例1及び3において上記したように得たマ
ウス血清の希釈物の50μlを、1%BSAを含有するPBS−
Tweenバツフアー中のONPG50μlと23℃で18時間接触さ
せた。同様に、50μlのPBS−Tween−BSAバツフアー中
の50ngの酵素β−D−ガラクトシダーゼをONPG溶液と接
触させた。触媒活性の結果、β−D−ガラクトース及び
o−ニトロフエノールを生成する(後者は黄色を有す
る)ことになる触媒活性はどの血清試料中にも検出され
なかつた。予想されたように酵素β−D−ガラクトシダ
ーゼは触媒活性を有していた。
定した。実施例1及び3において上記したように得たマ
ウス血清の希釈物の50μlを、1%BSAを含有するPBS−
Tweenバツフアー中のONPG50μlと23℃で18時間接触さ
せた。同様に、50μlのPBS−Tween−BSAバツフアー中
の50ngの酵素β−D−ガラクトシダーゼをONPG溶液と接
触させた。触媒活性の結果、β−D−ガラクトース及び
o−ニトロフエノールを生成する(後者は黄色を有す
る)ことになる触媒活性はどの血清試料中にも検出され
なかつた。予想されたように酵素β−D−ガラクトシダ
ーゼは触媒活性を有していた。
次に実施例2及び4で採集された、KLHに結合したDNP
をさらに接種されたマウスから得られた血清について測
定した。該血清につき上記した方法によりONPGに結合す
る抗体の存在を試験した。免疫化マウスより得た血清が
抗−ONPG抗体を含有することが示された。1:5,120の希
釈血清が、抗−ONPG抗体の存在に対して陽性の反応を示
した。このことは、KLHに結合された類似体による追加
の免疫化が、血清中の抗−ONPG抗体の濃度の増加をもた
らしたことを示している。免疫化していないマウスから
得られた血清を使用すると何の反応も見られなかつた。
をさらに接種されたマウスから得られた血清について測
定した。該血清につき上記した方法によりONPGに結合す
る抗体の存在を試験した。免疫化マウスより得た血清が
抗−ONPG抗体を含有することが示された。1:5,120の希
釈血清が、抗−ONPG抗体の存在に対して陽性の反応を示
した。このことは、KLHに結合された類似体による追加
の免疫化が、血清中の抗−ONPG抗体の濃度の増加をもた
らしたことを示している。免疫化していないマウスから
得られた血清を使用すると何の反応も見られなかつた。
実施例2及び4で採集された血清中の血清抗体の触媒
活性を上記のようにして試験した。
活性を上記のようにして試験した。
結果を表1に示すが、免疫化されたマウスからの血清
試料中において触媒活性が検知されたことを示してい
る。
試料中において触媒活性が検知されたことを示してい
る。
実施例6 o−ニトロフエニル−β−D−ガラクトシドで免疫感作
することによる融合(ハイブリダイゼーシヨン)用脾臓
細胞の調製 実施例4と同様に免疫感作し、実施例5と同様にアツ
セイした抗体産生マウスを殺し、その脾臓を摘出する。
10匹のマウスの脾臓を穏やかに細片化し、細いナイロン
スクリーンを通過させてリンパ球(脾臓細胞)懸濁液を
得る。この懸濁液を血清を含有しないRPMI−1640で3回
洗浄する。
することによる融合(ハイブリダイゼーシヨン)用脾臓
細胞の調製 実施例4と同様に免疫感作し、実施例5と同様にアツ
セイした抗体産生マウスを殺し、その脾臓を摘出する。
10匹のマウスの脾臓を穏やかに細片化し、細いナイロン
スクリーンを通過させてリンパ球(脾臓細胞)懸濁液を
得る。この懸濁液を血清を含有しないRPMI−1640で3回
洗浄する。
実施例7 融合(ハイブリダイゼーシヨン)用骨髄腫(ミエロー
マ)細胞の調製 SP2/0系由来の骨髄腫細胞を、2%牛胎仔血清、ペニ
シリン及びストレプトマイシンを補つたHB101培地(完
全HB101)中で増殖させる。SP2/0細胞は細胞融合に使用
する前に3日間毎日継代培養し、105細胞/mlを超えない
濃度で接種する。SP2/0細胞は融合前にRPMI−1640で一
回洗浄する。
マ)細胞の調製 SP2/0系由来の骨髄腫細胞を、2%牛胎仔血清、ペニ
シリン及びストレプトマイシンを補つたHB101培地(完
全HB101)中で増殖させる。SP2/0細胞は細胞融合に使用
する前に3日間毎日継代培養し、105細胞/mlを超えない
濃度で接種する。SP2/0細胞は融合前にRPMI−1640で一
回洗浄する。
実施例8 ハイブリドーマ細胞の調製 実施例6と同様に調製したリンパ球懸濁液と実施例7
に従つて調製したSP2/0骨髄腫細胞懸濁液とを4:1の割合
で混合する。
に従つて調製したSP2/0骨髄腫細胞懸濁液とを4:1の割合
で混合する。
細胞をペレツト状にし、次いで1.6×105リンパ球に対
して1mlの割合でポリエチレングリコール(PEG)1450
(イーストマン−コダツク(Eastman−Kodak)、ロチエ
スター(Rochester)、NY)溶液(RPMI−1640中に50%P
EG wt/volを含有)を細胞ペレツトに滴加する。PEG溶液
で細胞融合した後、細胞懸濁液を200xgで5分間遠心す
る。上清を除去し、最終濃度107細胞/mlとなるように細
胞を完全HB101中に静かに懸濁する。次いで、96−ウエ
ルマイクロタイタープレートのウエル中にこの最終細胞
懸濁物を100μlの容量で分配し、37℃で培養する。次
いで、24時間後に各ウエルに100μlのHAT培地(1×10
-4Mヒポキサンチン、4.0×10-7Mアミノプテリン及び
1.6×10-5Mチミジンを補つた完全HB101)を添加する。
各ウエルから約100μlの培地を吸引し、新しいHAT培地
100μlを添加することにより2〜3日毎に細胞に栄養
を与える。
して1mlの割合でポリエチレングリコール(PEG)1450
(イーストマン−コダツク(Eastman−Kodak)、ロチエ
スター(Rochester)、NY)溶液(RPMI−1640中に50%P
EG wt/volを含有)を細胞ペレツトに滴加する。PEG溶液
で細胞融合した後、細胞懸濁液を200xgで5分間遠心す
る。上清を除去し、最終濃度107細胞/mlとなるように細
胞を完全HB101中に静かに懸濁する。次いで、96−ウエ
ルマイクロタイタープレートのウエル中にこの最終細胞
懸濁物を100μlの容量で分配し、37℃で培養する。次
いで、24時間後に各ウエルに100μlのHAT培地(1×10
-4Mヒポキサンチン、4.0×10-7Mアミノプテリン及び
1.6×10-5Mチミジンを補つた完全HB101)を添加する。
各ウエルから約100μlの培地を吸引し、新しいHAT培地
100μlを添加することにより2〜3日毎に細胞に栄養
を与える。
HAT培地中での培養の週1の間に、親の骨髄腫細胞と
リンパ球はほとんど死亡するのが観察される。
リンパ球はほとんど死亡するのが観察される。
インキユベーシヨンの10〜15日後に、ハイブリダイゼ
ーシヨンが成功したことを示すHAT培地中での細胞の増
殖が観察される。
ーシヨンが成功したことを示すHAT培地中での細胞の増
殖が観察される。
実施例9 触媒的モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細
胞のスクリーニング 実施例8に従つて調製した、o−ニトロフエニル−β
−D−ガラクトシドからo−ニトロフエノールとD−ガ
ラクトースへの開裂を触媒しうる抗体を産生するハイブ
リドーマ細胞を含むマイクロタイターウエルを次のよう
にアツセイする:各ウエルがo−ニトロフエニル−β−
D−ガラクトシドの0.05M溶液を含有している第2の96
−ウエルマイクロタイタープレート(アツセイプレー
ト)を調製し、37℃に維持する。第1プレート(ハイブ
リドーマプレート)の各ハイブリドーマ含有ウエルの内
容物のアリコート100μlを取り出し、アツセイプレー
トの対応ウエルに移す。o−ニトロフエノールの存在は
分光光度計で測定するのが好ましい。又、移した各5分
後にアツセイプレートウエルのアリコート50μlを生成
物の1つ又は両者の存在についてHPLCで分析する。o−
ニトロフエノールとD−ガラクトースを含むことが判明
した各アツセイプレートウエルを同定し、対応するハイ
ブリドーマプレートウエルに印をつける。
胞のスクリーニング 実施例8に従つて調製した、o−ニトロフエニル−β
−D−ガラクトシドからo−ニトロフエノールとD−ガ
ラクトースへの開裂を触媒しうる抗体を産生するハイブ
リドーマ細胞を含むマイクロタイターウエルを次のよう
にアツセイする:各ウエルがo−ニトロフエニル−β−
D−ガラクトシドの0.05M溶液を含有している第2の96
−ウエルマイクロタイタープレート(アツセイプレー
ト)を調製し、37℃に維持する。第1プレート(ハイブ
リドーマプレート)の各ハイブリドーマ含有ウエルの内
容物のアリコート100μlを取り出し、アツセイプレー
トの対応ウエルに移す。o−ニトロフエノールの存在は
分光光度計で測定するのが好ましい。又、移した各5分
後にアツセイプレートウエルのアリコート50μlを生成
物の1つ又は両者の存在についてHPLCで分析する。o−
ニトロフエノールとD−ガラクトースを含むことが判明
した各アツセイプレートウエルを同定し、対応するハイ
ブリドーマプレートウエルに印をつける。
実施例10 ハイブリドーマ細胞の培養 実施例9で同定した各触媒的ハイブリドーマ細胞懸濁
物の一部を新しいマイクロタイタープレートの各ウエル
に播種する。ハイブリツド細胞のコロニー形成率は50%
である(すなわち、播種した細胞の50%が増殖してコロ
ニーを形成する)。この操作により、2週間以内に80〜
100%のウエルでハイブリツド細胞のコロニーが得られ
る。実施例9に記載の方法により、再度ハイブリドーマ
細胞の触媒的抗体の産生について調べる。胸腺リンパ球
支持細胞を用い、但し、3つのウエル当りハイブリツド
細胞1つの濃度で、触媒的抗体を産生し続けているハイ
ブリドーマ細胞を再びクローン化する。特異的な組み合
せからのクローンの90%未満が抗体を産生するときには
常にこの操作を繰り返す。
物の一部を新しいマイクロタイタープレートの各ウエル
に播種する。ハイブリツド細胞のコロニー形成率は50%
である(すなわち、播種した細胞の50%が増殖してコロ
ニーを形成する)。この操作により、2週間以内に80〜
100%のウエルでハイブリツド細胞のコロニーが得られ
る。実施例9に記載の方法により、再度ハイブリドーマ
細胞の触媒的抗体の産生について調べる。胸腺リンパ球
支持細胞を用い、但し、3つのウエル当りハイブリツド
細胞1つの濃度で、触媒的抗体を産生し続けているハイ
ブリドーマ細胞を再びクローン化する。特異的な組み合
せからのクローンの90%未満が抗体を産生するときには
常にこの操作を繰り返す。
実施例11 インビボ(in vivo)での触媒的モノクローナル抗体 実施例9に従つて選択したハイブリツド細胞106個を
同系のBALB/Cマウスに腹腔内接種すると、2〜3週間以
内に接種したマウスの90%より多くで触知可能な腫瘍が
誘発される。これらの腫瘍は腹水の産生(マウス当り0.
5〜3ml)を伴う。ハイブリドーマを有するマウスの腹水
及び血清中の免疫グロブリン濃度は放射免疫拡散アツセ
イで測定する。個々のマウスの血清及び腹水中のモノク
ローナル抗体の濃度はほぼ等しく、各々ml当り5〜50mg
の抗体を含有している。次に、ゲル過又は限外過の
ような通常の方法で、血清又は腹水からo−ニトロフエ
ニル−β−D−ガラクトシドの開裂を触媒しうるモノク
ローナル抗体を採取する。
同系のBALB/Cマウスに腹腔内接種すると、2〜3週間以
内に接種したマウスの90%より多くで触知可能な腫瘍が
誘発される。これらの腫瘍は腹水の産生(マウス当り0.
5〜3ml)を伴う。ハイブリドーマを有するマウスの腹水
及び血清中の免疫グロブリン濃度は放射免疫拡散アツセ
イで測定する。個々のマウスの血清及び腹水中のモノク
ローナル抗体の濃度はほぼ等しく、各々ml当り5〜50mg
の抗体を含有している。次に、ゲル過又は限外過の
ような通常の方法で、血清又は腹水からo−ニトロフエ
ニル−β−D−ガラクトシドの開裂を触媒しうるモノク
ローナル抗体を採取する。
実施例12 o−ニトロフエニル−β−D−ガラクトシドの開裂を触
媒するモノクローナル抗体の使用 0.5Mリン酸バツフアでpH6.8に緩衝し37℃に維持した
蒸留水1000ml中に30.12g(100ミルモル)のo−ニトロ
フエニル−β−D−ガラクトシドを含有する溶液に、実
施例6に従つて調製したモノクローナル抗体10mgを加え
る。反応混合物を2時間静かに攪拌する。次いで、限外
過により反応混合物からモノクローナル抗体を回収す
る。次に、液を10℃に冷却し、重炭酸ナトリウム9.2g
(110ミリモル)で処理する。液をジエチルエーテル1
00ml3部で抽出することによりD−ガラクトースを回収
する。エーテル部分を合せて、1.0N重炭酸ナトリウムで
1回洗浄し、硫酸マグネシウム上で乾燥させ、過し、
減圧下に濃縮してD−ガラクトースを得る。次いで水性
部分と重炭酸ソーダ洗液とを合せ、5N塩酸の添加により
pH3へと酸性化する。次に、酸性化した水性部分をエー
テルで3回抽出する。エーテル抽出物を合せ、硫酸マグ
ネシウム上で乾燥させ、過し、減圧下に濃縮してo−
ニトロフエノールを得る。HPLC又は再結晶によりo−ニ
トロフエノール及びD−ガラクトースを更に精製しても
よい。
媒するモノクローナル抗体の使用 0.5Mリン酸バツフアでpH6.8に緩衝し37℃に維持した
蒸留水1000ml中に30.12g(100ミルモル)のo−ニトロ
フエニル−β−D−ガラクトシドを含有する溶液に、実
施例6に従つて調製したモノクローナル抗体10mgを加え
る。反応混合物を2時間静かに攪拌する。次いで、限外
過により反応混合物からモノクローナル抗体を回収す
る。次に、液を10℃に冷却し、重炭酸ナトリウム9.2g
(110ミリモル)で処理する。液をジエチルエーテル1
00ml3部で抽出することによりD−ガラクトースを回収
する。エーテル部分を合せて、1.0N重炭酸ナトリウムで
1回洗浄し、硫酸マグネシウム上で乾燥させ、過し、
減圧下に濃縮してD−ガラクトースを得る。次いで水性
部分と重炭酸ソーダ洗液とを合せ、5N塩酸の添加により
pH3へと酸性化する。次に、酸性化した水性部分をエー
テルで3回抽出する。エーテル抽出物を合せ、硫酸マグ
ネシウム上で乾燥させ、過し、減圧下に濃縮してo−
ニトロフエノールを得る。HPLC又は再結晶によりo−ニ
トロフエノール及びD−ガラクトースを更に精製しても
よい。
実施例13 ポルホビリノーゲン(PBG)産生用触媒的モノクローナ
ル抗体の調製 BALB/Cマウスを3−グリシル−4−ヒドロキシ−4−
メチル−1,5−ヘプタン二酸で免疫感作するほかは実施
例6の方法に従つて、ハイブリダイゼーシヨン用脾臓細
胞を調製する。実施例7に従つて骨髄腫細胞を調製す
る。次に、実施例8の方法に従つて脾臓細胞と骨髄腫細
胞を融合させてハイブリドーマ細胞を生じさせる。次い
で、アツセイ基質がアミノレブリン酸(0.05M)であ
り、アツセイがPBGに対応するHPLC−ピークの出現につ
いて試験するものである、実施例9の方法の変法により
ハイブリドーマ細胞をスクリーニングする。そのように
同定したハイブリドーマ細胞を実施例10の方法に従つて
培養し、実施例11の方法に従つてマウスから得る。
ル抗体の調製 BALB/Cマウスを3−グリシル−4−ヒドロキシ−4−
メチル−1,5−ヘプタン二酸で免疫感作するほかは実施
例6の方法に従つて、ハイブリダイゼーシヨン用脾臓細
胞を調製する。実施例7に従つて骨髄腫細胞を調製す
る。次に、実施例8の方法に従つて脾臓細胞と骨髄腫細
胞を融合させてハイブリドーマ細胞を生じさせる。次い
で、アツセイ基質がアミノレブリン酸(0.05M)であ
り、アツセイがPBGに対応するHPLC−ピークの出現につ
いて試験するものである、実施例9の方法の変法により
ハイブリドーマ細胞をスクリーニングする。そのように
同定したハイブリドーマ細胞を実施例10の方法に従つて
培養し、実施例11の方法に従つてマウスから得る。
実施例14 PBGの産生を触媒するためのモノクローナル抗体の使用 0.5Mリン酸バツフアでpH6.8に緩衝し、37℃に維持し
た蒸留水1000ml中に13.1g(100ミリモル)のアミノレブ
リン酸を含有する溶液に、実施例13に従つて調製したモ
ノクローナル抗体30mgを添加する。反応混合物を2時間
静かに攪拌する。次いで、限外過により反応混合物か
らモノクローナル抗体を回収する。反応混合物を凍結乾
燥し、残留物をクロマトグラフイーにかけ精製PBGを得
る。
た蒸留水1000ml中に13.1g(100ミリモル)のアミノレブ
リン酸を含有する溶液に、実施例13に従つて調製したモ
ノクローナル抗体30mgを添加する。反応混合物を2時間
静かに攪拌する。次いで、限外過により反応混合物か
らモノクローナル抗体を回収する。反応混合物を凍結乾
燥し、残留物をクロマトグラフイーにかけ精製PBGを得
る。
実施例15 L−トリプトフアン産生用触媒的モノクローナル抗体の
調製 窒素雰囲気下、無水メタノール中で2.03g(10ミリモ
ル)のインドール−3−ピルビン酸と2.65g(10ミルモ
ル)のピリドキサミンリン酸と3gの乾燥した4Åのモレ
キユラーシーブとを混合することによりシツフ塩基を調
製する。反応混合物を一晩静かに攪拌し、過し、減圧
下で濃縮してシツフ塩基を得る。BALB/Cマウスをシツフ
塩基で免疫感作する以外は実施例6の方法で脾臓細胞を
調製する。このようにして得られた脾臓細胞を、実施例
7に従つて調製した骨髄腫細胞と実施例8の方法に従つ
て融合させる。次いで、基質がインドール−3−ピルビ
ン酸(0.05M)とピリドキサミン−5−リン酸(0.05M)
との混合物であり、アツセイによりL−トリプトフアン
に対応するHPLCピークの出現について試験する。実施例
9の方法の変法によりハイブリドーマ細胞をスクリーニ
ングする。このように同定したハイブリドーマ細胞を、
実施例10の方法に従つて培養し、実施例11の方法に従つ
てマウスから得る。
調製 窒素雰囲気下、無水メタノール中で2.03g(10ミリモ
ル)のインドール−3−ピルビン酸と2.65g(10ミルモ
ル)のピリドキサミンリン酸と3gの乾燥した4Åのモレ
キユラーシーブとを混合することによりシツフ塩基を調
製する。反応混合物を一晩静かに攪拌し、過し、減圧
下で濃縮してシツフ塩基を得る。BALB/Cマウスをシツフ
塩基で免疫感作する以外は実施例6の方法で脾臓細胞を
調製する。このようにして得られた脾臓細胞を、実施例
7に従つて調製した骨髄腫細胞と実施例8の方法に従つ
て融合させる。次いで、基質がインドール−3−ピルビ
ン酸(0.05M)とピリドキサミン−5−リン酸(0.05M)
との混合物であり、アツセイによりL−トリプトフアン
に対応するHPLCピークの出現について試験する。実施例
9の方法の変法によりハイブリドーマ細胞をスクリーニ
ングする。このように同定したハイブリドーマ細胞を、
実施例10の方法に従つて培養し、実施例11の方法に従つ
てマウスから得る。
実施例16 L−トリプトフアン産生を触媒するためのモノクローナ
ル抗体の使用 0.5Mリン酸バツフアーでpH6.5に緩衝し、37℃に維持
した蒸留水1000ml中にインドール−3−ピルビン酸20.3
g(100ミリモル)とピリドキサミン5−リン酸26.5g(1
00ミルモル)とを含有する溶液に、実施例15に従つて調
製したモノクローナル抗体50mgを添加する。反応混合物
を2時間静かに攪拌する。次いで、限外過によりモノ
クローナル抗体を回収する。反応混合物を透析した後凍
結乾燥すると生成物のL−トリプトフアンが得られる。
ル抗体の使用 0.5Mリン酸バツフアーでpH6.5に緩衝し、37℃に維持
した蒸留水1000ml中にインドール−3−ピルビン酸20.3
g(100ミリモル)とピリドキサミン5−リン酸26.5g(1
00ミルモル)とを含有する溶液に、実施例15に従つて調
製したモノクローナル抗体50mgを添加する。反応混合物
を2時間静かに攪拌する。次いで、限外過によりモノ
クローナル抗体を回収する。反応混合物を透析した後凍
結乾燥すると生成物のL−トリプトフアンが得られる。
実施例17 特異的ヌクレオチド配列でRNAを開裂しうる触媒的モノ
クローナル抗体の調製 (A)抗原の調製 冷水(8ml)中に溶解し、0.1N水酸化ナトリウムでpH
6.5に滴定した牛血清アルブミン(BSA)(50mg)の溶液
に、1−シクロヘキシル−3−(2−モルホリノエチ
ル)カルボジイミド メト−p−トルエンスルホネート
(morpho CDI)を添加し、直後にマウス乳腺腫瘍ウイル
ス35SRNA(50mg)を添加する。反応混合物を室温まで加
温し、周期的に静かに攪拌しながら18時間保存する。次
いで反応混合物を0.05M重炭酸アンモニウムに対して
(4回変えて)、その後、水に対して(4回変えて)透
析する。次に、RNA−蛋白質(BSA)結合体(conjugat
e)を凍結乾燥し、バイアル中に秤量して入れ、−77℃
の窒素雰囲気下で保存する。又、BSAの代りにアオガイ
ヘモシアニン(KLH)、オボアルブミン(OA)及びウサ
ギ血清アルブミン(RA)を使うこともできる。これらの
蛋白質は全てカルバイオケム(Calbiochem)から入手で
きる。
クローナル抗体の調製 (A)抗原の調製 冷水(8ml)中に溶解し、0.1N水酸化ナトリウムでpH
6.5に滴定した牛血清アルブミン(BSA)(50mg)の溶液
に、1−シクロヘキシル−3−(2−モルホリノエチ
ル)カルボジイミド メト−p−トルエンスルホネート
(morpho CDI)を添加し、直後にマウス乳腺腫瘍ウイル
ス35SRNA(50mg)を添加する。反応混合物を室温まで加
温し、周期的に静かに攪拌しながら18時間保存する。次
いで反応混合物を0.05M重炭酸アンモニウムに対して
(4回変えて)、その後、水に対して(4回変えて)透
析する。次に、RNA−蛋白質(BSA)結合体(conjugat
e)を凍結乾燥し、バイアル中に秤量して入れ、−77℃
の窒素雰囲気下で保存する。又、BSAの代りにアオガイ
ヘモシアニン(KLH)、オボアルブミン(OA)及びウサ
ギ血清アルブミン(RA)を使うこともできる。これらの
蛋白質は全てカルバイオケム(Calbiochem)から入手で
きる。
(B)モノクローナル抗体の調製 上記(A)で調製したBSA結合35SRNAでBALB/Cマウス
を免疫感作する以外は実施例6の方法に従つてハイブリ
ダイゼーシヨン用脾臓細胞を調製する。実施例7に従つ
て骨髄腫細胞を調製する。次いで、実施例8の方法に従
つて、脾臓細胞と骨髄腫細胞を融合しハイブリドーマ細
胞を得る。
を免疫感作する以外は実施例6の方法に従つてハイブリ
ダイゼーシヨン用脾臓細胞を調製する。実施例7に従つ
て骨髄腫細胞を調製する。次いで、実施例8の方法に従
つて、脾臓細胞と骨髄腫細胞を融合しハイブリドーマ細
胞を得る。
0.9%NaClを含有する0.5Mリン酸バツフア(pH6.1)中
の35SRNAとマイクロタイターウエル内容物のアリコート
とを37℃で種々の時間インキユベートすることにより、
このように得られたハイブリドーマ細胞をスクリーニン
グする。次いで、フエノール抽出によりRNAを精製す
る。抗体開裂により発生したフラグメントの数を2次元
ポリアクリルアミドゲル電気泳動で測定し、各開裂部位
のヌクレオチド配列を解明する。測定はいずれもシユワ
ルツ(Schwartz)らがセル(Cell)32:853−869(198
3)に記載した方法に従つて行う。各マイクロタイター
ウエルの内容物により誘導されたRNA開裂で得たフラグ
メントとEco RIで誘導されたフラグメントとを比較する
ことにより、Eco RI開裂部位でのRNA開裂のみを触媒し
うるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞
が選択される。このように同定したハイブリドーマ細胞
を実施例10の方法に従つて培養し、実施例11の方法に従
つてマウスから得る。
の35SRNAとマイクロタイターウエル内容物のアリコート
とを37℃で種々の時間インキユベートすることにより、
このように得られたハイブリドーマ細胞をスクリーニン
グする。次いで、フエノール抽出によりRNAを精製す
る。抗体開裂により発生したフラグメントの数を2次元
ポリアクリルアミドゲル電気泳動で測定し、各開裂部位
のヌクレオチド配列を解明する。測定はいずれもシユワ
ルツ(Schwartz)らがセル(Cell)32:853−869(198
3)に記載した方法に従つて行う。各マイクロタイター
ウエルの内容物により誘導されたRNA開裂で得たフラグ
メントとEco RIで誘導されたフラグメントとを比較する
ことにより、Eco RI開裂部位でのRNA開裂のみを触媒し
うるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞
が選択される。このように同定したハイブリドーマ細胞
を実施例10の方法に従つて培養し、実施例11の方法に従
つてマウスから得る。
実施例18 Eco RI部位でのRNA開裂を触媒するためのモノクローナ
ル抗体の使用 0.9%NaClを含有する0.5Mリン酸バツフアでpH6.1に緩
衝し、37℃に維持した蒸留水100mlにマウス乳腺腫瘍ウ
イルス35SRNA(50mg)を加える。実施例17に従つて調製
したモノクローナル抗体(5mg)を反応混合物に添加
し、次いで30分間静かに攪拌しながらインキユベートす
る。次にフエノール抽出でRNAを精製し、ポリアクリル
アミドゲル電気泳動でフラグメントを精製する。
ル抗体の使用 0.9%NaClを含有する0.5Mリン酸バツフアでpH6.1に緩
衝し、37℃に維持した蒸留水100mlにマウス乳腺腫瘍ウ
イルス35SRNA(50mg)を加える。実施例17に従つて調製
したモノクローナル抗体(5mg)を反応混合物に添加
し、次いで30分間静かに攪拌しながらインキユベートす
る。次にフエノール抽出でRNAを精製し、ポリアクリル
アミドゲル電気泳動でフラグメントを精製する。
実施例19 β−D−ガラクトシダーゼに対する抗イデイオタイプモ
ノクローナル抗体 (A)酵素活性部位に対するモノクローナル抗体の調製 BALB/Cマウスを酵素β−D−ガラクトシダーゼで免疫
感作する以外は実施例6の方法に従つてハイブリダイゼ
ーシヨン用脾臓細胞を調製する。実施例7に従つて骨髄
腫細胞を調製する。次いで実施例8の方法に従つて脾臓
細胞と骨髄腫細胞を融合しハイブリドーマ細胞を得る。
このようにして得たハイブリドーマ細胞を、酵素の活性
部位と結合するモノクローナル抗体の産生に関してスク
リーニングする。β−D−ガラクトシダーゼ及び放射標
識したo−ニトロフエニル−β−D−ガラクトシドとに
対するマイクロタイターウエル内容物の競合阻害のRIA
アツセイによりスクリーニングすると便利である。次い
で、このように選択したハイブリドーマ細胞を実施例10
の方法に従つて培養し、実施例11の方法に従つてマウス
から大量に得る。
ノクローナル抗体 (A)酵素活性部位に対するモノクローナル抗体の調製 BALB/Cマウスを酵素β−D−ガラクトシダーゼで免疫
感作する以外は実施例6の方法に従つてハイブリダイゼ
ーシヨン用脾臓細胞を調製する。実施例7に従つて骨髄
腫細胞を調製する。次いで実施例8の方法に従つて脾臓
細胞と骨髄腫細胞を融合しハイブリドーマ細胞を得る。
このようにして得たハイブリドーマ細胞を、酵素の活性
部位と結合するモノクローナル抗体の産生に関してスク
リーニングする。β−D−ガラクトシダーゼ及び放射標
識したo−ニトロフエニル−β−D−ガラクトシドとに
対するマイクロタイターウエル内容物の競合阻害のRIA
アツセイによりスクリーニングすると便利である。次い
で、このように選択したハイブリドーマ細胞を実施例10
の方法に従つて培養し、実施例11の方法に従つてマウス
から大量に得る。
(B)抗イデイオタイプモノクローナル抗体の調製 上記(A)に従つて調製し選択したモノクローナル抗
体でBALB/Cマウスを免疫感作する以外は実施例6の方法
に従つてハイブリダイゼーシヨン用脾臓細胞を調製す
る。骨髄腫細胞は又実施例7の方法に従つて調製する。
実施例8の方法に従つて、脾臓細胞と骨髄腫細胞を融合
してハイブリドーマ細胞を得る。このように得たハイブ
リドーマ細胞は先ず実施例9の方法に従つてスクリーニ
ングする。予備的スクリーニングに基いて選択したハイ
ブリドーマ細胞を次いでアロステリズムについてスクリ
ーニングする。これは、実施例9に従い、但し、周期的
に、生成物のうちの1つの存在を測定することによって
行なう。このようにして得たデーターから反応速度を計
算できる。種々の量の反応体の存在下に又、種々の量の
測定するものではない生成物と共にアツセイを繰り返す
と、抗体の動力学的動態の変化を検出できる。この方法
で、アロステリツクな調節を示す抗イデイオタイプモノ
クローナル抗体が排除できる。非アロステリツクな抗イ
デイオタイプモノクローナル抗体を産生するハイブリド
ーマ細胞を、実施例10の方法に従つて培養し、実施例11
の方法に従つてマウス中での増殖により得る。
体でBALB/Cマウスを免疫感作する以外は実施例6の方法
に従つてハイブリダイゼーシヨン用脾臓細胞を調製す
る。骨髄腫細胞は又実施例7の方法に従つて調製する。
実施例8の方法に従つて、脾臓細胞と骨髄腫細胞を融合
してハイブリドーマ細胞を得る。このように得たハイブ
リドーマ細胞は先ず実施例9の方法に従つてスクリーニ
ングする。予備的スクリーニングに基いて選択したハイ
ブリドーマ細胞を次いでアロステリズムについてスクリ
ーニングする。これは、実施例9に従い、但し、周期的
に、生成物のうちの1つの存在を測定することによって
行なう。このようにして得たデーターから反応速度を計
算できる。種々の量の反応体の存在下に又、種々の量の
測定するものではない生成物と共にアツセイを繰り返す
と、抗体の動力学的動態の変化を検出できる。この方法
で、アロステリツクな調節を示す抗イデイオタイプモノ
クローナル抗体が排除できる。非アロステリツクな抗イ
デイオタイプモノクローナル抗体を産生するハイブリド
ーマ細胞を、実施例10の方法に従つて培養し、実施例11
の方法に従つてマウス中での増殖により得る。
(C)抗イデイオタイプモノクローナル抗体の使用 (B)で得た抗イデイオタイプモノクローナル抗体を
実施例12の方法に従つて用いることができる。
実施例12の方法に従つて用いることができる。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12P 19/02 C12P 19/02 19/34 19/34 Z (72)発明者 マセイ,リチヤード・ジエイ アメリカ合衆国、メアリ−ランド・ 20852、ロツクヴイル、ヴアレリアン・ コート・5
Claims (29)
- 【請求項1】少なくとも1種の反応体が少なくとも1種
の生成物へ変換する化学反応を触媒する方法であって、 該化学反応における反応体から生成物への変換速度を触
媒的に上昇させることのできる少なくとも1つのモノク
ローナル抗体と該反応体とを、該反応体とモノクローナ
ル抗体とが複合体を形成し該反応体が触媒的に該生成物
へ変換し次いで該生成物が該複合体から遊離する条件下
で、接触させることからなる上記方法。 - 【請求項2】モノクローナル抗体が、 (a)化学反応を触媒するモノクローナル抗体を調製
し;次いで (b)かくして調製されたモノクローナル抗体を大量に
製造する、 工程から製造されたものである請求項1の方法。 - 【請求項3】モノクローナル抗体が、 (a)(i)反応体、(ii)ペプチドまたは他の担体分
子に結合した反応体、(iii)反応中間体、(iv)反応
体の類似体、(v)生成物の類似体であって、この類似
体を抗原として得られるモノクローナル抗体が反応体ま
たは反応中間体に結合できるような該類似体、及び(v
i)反応中間体の類似体、からなる群より選ばれる抗原
に対する複数のモノクローナル抗体を誘導し;次いで (b)該複数のモノクローナル抗体をスクリーニングし
て化学反応を触媒するモノクローナル抗体を同定する、 工程から製造されたものである請求項1または2の方
法。 - 【請求項4】1つの反応体が1つもしくはそれ以上の生
成物へ変換される請求項1から3のいずれかの方法。 - 【請求項5】反応体がポリサッカライドであり、生成物
がそれから得られるサッカライドである請求項1から4
のいずれかの方法。 - 【請求項6】反応体がポリヌクレオチドであり、生成物
がそれから得られるヌクレオチド断片である請求項1か
ら4のいずれかの方法。 - 【請求項7】反応体がβ−ガラクトシドであり、2つの
生成物の少なくとも1つがガラクトースである請求項1
から4のいずれかの方法。 - 【請求項8】2つの反応体が1つもしくはそれ以上の生
成物へ変換される請求項1から3のいずれかの方法。 - 【請求項9】化学反応が、非タンパク性有機分子によっ
ても触媒され得る反応である請求項1から3のいずれか
の方法。 - 【請求項10】非タンパク性有機分子がコファクターで
あって、該コファクターの有効量が反応中に存在する請
求項9の方法。 - 【請求項11】コファクターがピリドキサルホスフェー
トである請求項10の方法。 - 【請求項12】化学反応が酵素によっても触媒され得る
反応である請求項1から3のいずれかの方法。 - 【請求項13】酵素の有効量が反応中に存在する請求項
12の方法。 - 【請求項14】化学反応が反応体から生成物へのアミノ
基の交換を含んでおり、酵素がトランスアミナーゼ酵素
である請求項13の方法。 - 【請求項15】化学反応がポリリボヌクレオチド内のホ
スホジエステル結合の開裂を含んでおり、酵素が制限酵
素である請求項13の方法。 - 【請求項16】化学反応がガラクトシル結合の開裂を含
んでおり、酵素がβ−ガラクトシダーゼである請求項13
の方法。 - 【請求項17】反応体が環状ポリヌクレオチドであり、
生成物が線状ポリヌクレオチドである請求項13の方法。 - 【請求項18】反応体上の異なる抗原決定基に対するそ
れぞれのモノクローナル抗体の2種以上と反応体とが複
合体を形成する請求項1から3のいずれかの方法。 - 【請求項19】反応体がポリヌクレオチドであり、モノ
クローナル抗体がポリヌクレオチド内部の異なるヌクレ
オチド配列に対するものである請求項18の方法。 - 【請求項20】モノクローナル抗体存在下での反応速度
が、モノクローナル抗体非存在下での反応速度の100倍
以上である請求項1から3のいずれかの方法。 - 【請求項21】pH6.0から8.0の水性溶液中で、大気圧下
で、4℃から50℃の温度で、2.0モル/l未満のイオン強
度で反応を実施する請求項1から3のいずれかの方法。 - 【請求項22】モノクローナル抗体の特徴がK>1(但
しK=kr/kpであり、krは反応体に対するモノクローナ
ル抗体のアフィニティー定数であり、kpは生成物に対す
るモノクローナル抗体のアフィニティー定数である)で
あり;化学反応の特徴が、r1>r0(ただし、r1は抗体と
反応体との複合体の形成速度であり、r0はモノクローナ
ル抗体が存在しないときの化学反応の速度である)、r2
>r0(ただし、r2は複合体を形成した反応体から複合体
を形成している生成物への変換速度である)、およびr3
>r0(ただし、r3は生成物の複合体からの遊離速度であ
る)であって、 モノクローナル抗体が (a)(i)反応体、(ii)ペプチドまたは他の担体分
子に結合した反応体、(iii)反応中間体、(iv)反応
体の類似体、(v)生成物の類似体であって、この類似
体を抗原として得られるモノクローナル抗体が反応体ま
たは反応中間体に結合できるものであるような該類似
体、及び(vi)反応中間体の類似体からなる群より選ば
れる抗原に対する複数のモノクローナル抗体を誘導し;
次いで (b)該複数のモノクローナル抗体をスクリーニングし
て化学反応を触媒するモノクローナル抗体を同定する、 工程から製造されたものである請求項1の方法。 - 【請求項23】化学反応がコファクターまたは酵素によ
っても触媒され得る反応であり、コファクターまたは酵
素が反応中に存在する請求項22の方法。 - 【請求項24】抗原が反応体の類似体である請求項1か
ら3のいずれかの方法。 - 【請求項25】化学反応がコファクターまたは酵素によ
っても触媒され得る反応であり、コファクターまたは酵
素が反応中に存在する請求項1から3のいずれかの方
法。 - 【請求項26】抗原が反応中間体の類似体である請求項
1から3のいずれかの方法。 - 【請求項27】工程(b)によって同定されたモノクロ
ーナル抗体を、モノクローナル抗体を産生するハイブリ
ドーマ細胞を培養することによって大量に製造する請求
項3の方法。 - 【請求項28】モノクローナル抗体が、 (a)反応体の類似体で動物を免疫して、抗体産生リン
パ球を誘導し; (b)動物から抗体産生リンパ球を採取し; (c)抗体産生リンパ球とミエローマ細胞とを融合し
て、モノクローナル抗体を産生する複数のハイブリドー
マ細胞を調製し; (d)複数のモノクローナル抗体をスクリーニングして
化学反応を触媒するモノクローナル抗体を同定し;次い
で (e)モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細
胞を培養して、工程(d)で同定されたモノクローナル
抗体を大量に製造する、 工程から得られたものである請求項1の方法。 - 【請求項29】化学反応が酵素によって触媒されること
が知られた反応であって、 モノクローナル抗体が、 (a)酵素に対する複数のモノクローナル抗体を誘導
し; (b)複数のモノクローナル抗体をスクリーニングし
て、酵素への反応体の結合を阻止する第1のモノクロー
ナル抗体を同定し; (c)該第1のモノクローナル抗体を回収し; (d)工程(c)で回収された第1のモノクローナル抗
体に対する複数の抗イディオタイプモノクローナル抗体
を誘導し; (e)工程(d)で誘導された複数の抗イディオタイプ
モノクローナル抗体をスクリーニングして、反応体に結
合し反応を触媒する第2のモノクローナル抗体を同定
し; (f)該モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ
細胞を培養することによって大量にモノクローナル抗体
を製造する、 工程から製造されるものである請求項1の方法。
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