JP2021500857A - 酵素補充療法用酵素を含む融合タンパク質 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、2017年10月2日に提出された米国特許仮出願第62/566,898号、2017年11月8日に提出された米国特許仮出願第62/583,276号、2018年2月5日に提出された米国特許仮出願第62/626,365号、2018年5月30日に提出された米国特許仮出願第62/678,183号及び2018年8月22日に提出された米国特許仮出願第62/721,396号(それらの開示内容は、参照により、あらゆる目的で、その全体が本明細書に援用される)に基づく優先権を主張するものである。
本願は、ASCII形式で電子的に提出したとともに、参照により、その全体が本明細書に援用される配列表を含む。2018年9月28日に作成した前記ASCIIコピーは、102342−000350PC−1103949_SL.txtという名称であり、580,464バイトのサイズである。
(a)ERT用酵素、ERT用酵素バリアントまたはその触媒活性断片に連結されている第1のFcポリペプチド、及び
(b)第1のFcポリペプチドとFc二量体を形成する第2のFcポリペプチド
を含むタンパク質である。
(a)TfRに特異的に結合する改変Fcポリペプチドを含む第1のポリペプチド鎖、
(b)Fcポリペプチドを含む第2のポリペプチド鎖(第1及び第2のポリペプチド鎖は、Fc二量体を形成する)、ならびに
(c)(a)の改変Fcポリペプチドまたは(b)のFcポリペプチドに連結されているERT用酵素、ERT用酵素バリアントまたはその触媒活性断片
を含むタンパク質である。
(a)上記のようなタンパク質またはポリペプチドを投与された対象に由来する細胞試料もしくは組織試料中の細胞、または流体試料中のマイクロベシクルを破壊して、マイクロベシクルを破壊して開いて、解析対象のグリコサミノグリカン(GAG)溶液を得ることと、
(b)そのGAG溶液を少なくとも1つのヘパリナーゼ(例えば、ヘパリナーゼI、ヘパリナーゼII及びヘパリナーゼIII)、ならびにコンドロイチナーゼBで消化して、GAG由来の二糖を得ることと、
(c)そのGAG由来の二糖を質量分析法(例えばLC−MS/MS)によって解析することと、
(d)ヘパラン硫酸由来及び/またはデルマタン硫酸由来の二糖のレベルを求めることであって、IDS活性が欠損しているコントロールと比べて、ヘパラン硫酸由来及び/またはデルマタン硫酸由来の二糖のレベルが低いことによって、そのコントロールと比べて、その試料中のIDS活性が上昇していることが示される、求めること
を含む方法である。
(a)上記のようなタンパク質またはポリペプチドを投与された対象に由来する細胞試料もしくは組織試料中の細胞、または流体試料中のマイクロベシクルを破壊して、マイクロベシクルを破壊して開いて、解析対象のグリコサミノグリカン(GAG)溶液を得ることと、
(b)そのGAG溶液を少なくとも1つのヘパリナーゼで消化して、GAG由来の二糖を得ることと、
(c)そのGAG由来の二糖を質量分析法(例えばLC−MS/MS)によって解析することと、
(d)ヘパラン硫酸由来の二糖のレベルを求めることであって、SGSH活性が欠損しているコントロールと比べて、ヘパラン硫酸由来の二糖のレベルが低いことによって、そのコントロールと比べて、その試料中のSGSH活性が上昇していることが示される、求めること
を含む方法である。
我々は、Fcポリペプチドに連結されている酵素補充療法(ERT)用酵素を含む融合タンパク質を開発した。これらのタンパク質を用いて、リソソーム蓄積障害(LSD)を治療できる。いくつかのケースでは、そのタンパク質は、二量体のFcポリペプチドを含み、それらのFcポリペプチド単量体のうちの1つは、ERT用酵素に連結されている。それらのFcポリペプチドは、酵素の半減期を延長でき、いくつかのケースでは、そのタンパク質に追加の機能的特性を付与するように改変できる。本明細書には、血液脳関門(BBB)を越えてERT用酵素の送達を促す融合タンパク質も記載されている。これらのタンパク質は、二量体を形成するFcポリペプチド及び改変Fcポリペプチド、ならびにそのFc領域及び/または改変Fc領域に連結されているERT用酵素を含む。その改変Fc領域は、トランスフェリン受容体(TfR)のようなBBB受容体に特異的に結合できる。いくつかの実施形態では、そのERT用酵素は、イズロン酸−2−スルファターゼ(IDS)、または野生型IDS、例えば野生型ヒトIDSの触媒活性バリアントもしくは断片である。別の実施形態では、そのERT用酵素は、N−スルホグルコサミンスルホヒドロラーゼ(SGSH)、酸性スフィンゴミエリナーゼ(ASM)、β−グルコセレブロシダーゼ(GBA)、または野生型SGSH、ASMもしくはGBA、例えば、野生型ヒトSGSH、ASMもしくはGBAの触媒活性バリアントもしくは断片である。
本明細書で使用する場合、「a」、「an」、及び「the」という単数形には、文脈上明らかに別段に示されていない限り、複数の指示対象が含まれる。したがって、例えば、「ポリペプチド」に言及している場合、そのような分子を2つ以上含み得るといった具合である。
リソソーム蓄積障害(LSD)は、消化されないかまたは部分消化された巨大分子の蓄積によって特徴づけられる遺伝性代謝疾患であり、この蓄積によって最終的には、細胞機能障害及び臨床的異常が生じる。古典的には、LSDは、概してその蓄積物質によって分類されるリソソーム機能欠損として定義されており、スフィンゴリピドーシス、オリゴ糖症、ムコリピドーシス、ムコ多糖症、リポタンパク質蓄積障害、神経セロイドリポフスチン症などが挙げられる。これらの障害の分類は最近、巨大分子を蓄積させるタンパク質(リソソーム酵素の正常な翻訳後修飾に必須のタンパク質、または適切なリソソーム輸送に重要なタンパク質など)のその他の欠損または異常を含めるように拡大されている。
いくつかの態様では、本発明で提供するのは、血液脳関門(BBB)を越えて輸送できる融合タンパク質である。このようなタンパク質は、BBB受容体に結合する改変Fcポリペプチドを含む。BBB受容体は、BBB内皮、ならびに他の種類の細胞及び組織で発現する。いくつかの実施形態では、そのBBB受容体は、トランスフェリン受容体(TfR)である。
ある特定の態様では、本明細書に記載されている融合タンパク質に存在する改変(例えば、BBB受容体に結合する)FcポリペプチドまたはBBB受容体に特異的に結合しないFcポリペプチドは、FcRn結合部位も含むことができる。いくつかの実施形態では、そのFcRn結合部位は、Fcポリペプチドまたはその断片内にある。
この節では、本明細書に記載されている改変Fcポリペプチドであって、トランスフェリン受容体(TfR)に結合するとともに、血液脳関門(BBB)を越えて輸送できる改変Fcポリペプチドの作製について記載する。
いくつかの実施形態では、TfRに特異的に結合する改変Fcポリペプチドは、CH3ドメインに置換を含む。いくつかの実施形態では、改変Fcポリペプチドは、TfR結合活性のために改変されているヒトIg CH3ドメイン(IgG CH3ドメインなど)を含む。そのCH3ドメインは、いずれかのIgGサブタイプ、すなわち、IgG1、IgG2、IgG3またはIgG4に由来するものであることができる。IgG抗体に関しては、CH3ドメインとは、EUナンバリングスキームに従って番号付けした場合、約341位〜約447のアミノ酸のセグメントを指す。
いくつかの実施形態では、TfRに特異的に結合する改変Fcポリペプチドは、CH2ドメインに置換を含む。いくつかの実施形態では、改変Fcポリペプチドは、TfR結合活性のために改変されているヒトIg CH2ドメイン(IgG CH2ドメインなど)を含む。そのCH2ドメインは、いずれかのIgGサブタイプ、すなわち、IgG1、IgG2、IgG3またはIgG4に由来するものであることができる。IgG抗体に関しては、CH2ドメインとは、EUナンバリングスキームに従って番号付けした場合、約231位〜約340位のアミノ酸のセグメントを指す。
いくつかの態様では、本明細書に記載されている融合タンパク質はそれぞれ、独立して選択した改変を含み得るか、または野生型Fcポリペプチド、例えばヒトIgG1 Fcポリペプチドであり得る2つのFcポリペプチドを含む。いくつかの実施形態では、一方または両方のFcポリペプチドは、血液脳関門(BBB)受容体、例えばトランスフェリン受容体(TfR)への結合をもたらす1つ以上の改変を含む。一方または両方のFcポリペプチドに導入できる他の変異の非限定的な例としては、例えば、血清中安定性もしくは血清中半減期を向上させるための変異、エフェクター機能を調節するための変異、グリコシル化に影響を及ぼすための変異、ヒトにおいて免疫原性を低下させるための変異、及び/またはそれらのFcポリペプチドのノブとホールをヘテロ二量化させるための変異が挙げられる。
非限定的な例として、本明細書に記載されている融合タンパク質に存在する一方または両方のFcポリペプチドは、ノブ変異(例えば、EUナンバリングスキームに従って番号付けした場合のT366W)、ホール変異(例えば、EUナンバリングスキームに従って番号付けした場合のT366S、L368A及びY407V)、エフェクター機能を調節する変異(例えば、EUナンバリングスキームに従って番号付けした場合のL234A、L235A及び/またはP329G(例えば、L234A及びL235A))、及び/または血清中安定性または血清中半減期を向上させる変異(例えば、(i)EUナンバリングを基準にして番号付けした場合のM252Y、S254T及びT256E、または(ii)EUナンバリングスキームに従って番号付けした場合の、M428Lを伴うかもしくは伴わないN434S)を含む追加の変異を含み得る。
いくつかの態様では、本明細書に記載されている融合タンパク質は、酵素補充療法(ERT)用酵素、ERT用酵素バリアントまたはその触媒活性断片に連結されている第1のFcポリペプチド、及び第1のFcポリペプチドとFc二量体を形成する第2のFcポリペプチドを含む。いくつかの実施形態では、第1のFcポリペプチド及び/または第2のFcポリペプチドは、免疫グロブリン重鎖及び/または軽鎖可変領域配列、あるいはそれらの抗原結合部分を含まない。いくつかの実施形態では、そのERT用酵素は、IDS、SGSH、ASMまたはGBAである。いくつかの実施形態では、第1のFcポリペプチドは、改変Fcポリペプチドであり、及び/または第2のFcポリペプチドは、改変Fcポリペプチドである。いくつかの実施形態では、第2のFcポリペプチドは、改変Fcポリペプチドである。いくつかの実施形態では、その改変Fcポリペプチドは、もう一方のFcポリペプチドとのヘテロ二量化を促す1つ以上の改変を含む。いくつかの実施形態では、その改変Fcポリペプチドは、エフェクター機能を低下させる1つ以上の改変を含む。いくつかの実施形態では、その改変Fcポリペプチドは、血清中半減期を延長する1つ以上の改変を含む。いくつかの実施形態では、その改変Fcポリペプチドは、血液脳関門(BBB)受容体、例えばトランスフェリン受容体(TfR)への結合をもたらす1つ以上の改変を含む。
本明細書に記載されている融合タンパク質及びその他の組成物は、結合親和性が広範であり得る。例えば、いくつかの実施形態では、タンパク質は、血液脳関門(BBB)受容体、例えばトランスフェリン受容体(TfR)に対する親和性が、1pM〜10μMのうちのいずれかの範囲である。いくつかの実施形態では、TfRに対する親和性は、1nM〜5μMまたは10nM〜1μMの範囲である。いくつかの実施形態では、TfRに対する親和性は、約50nM〜約250nMの範囲である。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載されている融合タンパク質は、本明細書に記載されているような2つのFcポリペプチドを含み、そのFcポリペプチドの一方または両方は、ヒンジ領域の一部または全部をさらに含み得る。そのヒンジ領域は、いずれかの免疫グロブリンサブクラスまたはアイソタイプに由来することができる。例示的な免疫グロブリンヒンジは、IgG1ヒンジ領域などのIgGヒンジ領域、例えば、ヒトIgG1ヒンジアミノ酸配列EPKSCDKTHTCPPCP(配列番号95)またはその一部(例えば、DKTHTCPPCP、配列番号113)である。いくつかの実施形態では、そのヒンジ領域は、そのFcポリペプチドのN末端領域にある。
本明細書に記載されている融合タンパク質であって、例えばIDS、SGSH、ASMまたはGBAのようなERT用酵素を含む融合タンパク質の活性は、人工基質を用いてインビトロで活性を測定するアッセイを含む様々なアッセイ(実施例の節に記載されているようなアッセイなど)を用いて評価できる。インビトロでIDS活性を測定するための例示的なプロトコールは、実施例2に示されている。インビトロでASM活性を測定するための例示的なプロトコールは、実施例5に示されている。インビトロでSGSH活性を測定するための例示的なプロトコールは、実施例7及び8に示されている。
本明細書に記載されているような融合タンパク質に含まれるポリペプチド鎖は典型的には、組み換え法を用いて調製する。したがって、いくつかの態様では、本開示は、本明細書に記載されているようなFcポリペプチドを含むポリペプチド鎖のうちのいずれかをコードする核酸配列を含む単離核酸、及びその核酸が導入されている宿主細胞であって、そのポリペプチドコード核酸を複製し、及び/またはそのポリペプチドを発現させるのに使用する宿主細胞を提供する。いくつかの実施形態では、その宿主細胞は、真核細胞、例えばヒト細胞である。
本明細書に記載されている操作されたTfR結合ポリペプチド、TfR結合ペプチドまたはTfR結合抗体に連結されている融合タンパク質または薬剤(例えば療法剤)を治療で用いて、LSDを治療してよい。いくつかの実施形態では、IDSを含む操作されたTfR結合ポリペプチド、TfR結合ペプチドまたはTfR結合抗体に連結されている融合タンパク質または薬剤で、ハンター症候群の患者を治療する。いくつかの実施形態では、SGSHを含む操作されたTfR結合ポリペプチド、TfR結合ペプチドまたはTfR結合抗体に連結されている融合タンパク質または薬剤で、サンフィリポ症候群Aの患者を治療する。いくつかの実施形態では、ASMを含む操作されたTfR結合ポリペプチド、TfR結合ペプチドまたはTfR結合抗体に連結されている融合タンパク質または薬剤で、ニーマンピック病の患者を治療する。いくつかの実施形態では、GBAを含む操作されたTfR結合ポリペプチド、TfR結合ペプチドまたはTfR結合抗体に連結されている融合タンパク質または薬剤で、ゴーシェ病またはパーキンソン病の患者を治療する。
別の態様では、本発明で提供するのは、哺乳動物の血液脳関門(BBB)を越えて、薬剤(例えば、リソソーム蓄積障害(LSD)の治療に有用である薬剤)を輸送する方法である。いくつかの実施形態では、その方法は、約50nM〜約250nMの親和性で、トランスフェリン受容体(TfR)に結合する(例えば特異的に結合する)ポリペプチドまたはタンパク質に、BBBを暴露させることを含む。いくつかの実施形態では、そのポリペプチドまたはタンパク質は、その薬剤に連結されており、BBBを越えて、その連結された薬剤を輸送する。いくつかの実施形態では、その哺乳動物の脳内のその薬剤の最高濃度(Cmax)が改善される(例えば上昇する)。
ポリペプチド(例えば、本明細書にさらに記載されているような改変CH3またはCH2ドメインポリペプチド)は、Fc領域の別のドメインに連結されていてよい。いくつかの実施形態では、改変CH3ドメインポリペプチドは、CH2ドメイン(天然のCH2ドメインであっても、またはバリアントCH2ドメインであってよい)に、典型的にはそのCH2ドメインのC末端で連結されている。いくつかの実施形態では、改変CH2ドメインポリペプチドは、CH3ドメイン(天然のCH3ドメインであっても、またはCH3バリアントドメインであってもよい)に、典型的にはそのCH3ドメインのN末端で連結されている。いくつかの実施形態では、CH3ドメインに連結されている改変CH2ドメインを含むポリペプチド、またはCH2ドメインに連結されている改変CH3ドメインを含むポリペプチドは、抗体のヒンジ領域の一部または全部をさらに含み、その結果、その改変CH3ドメインポリペプチドまたは改変CH2ドメインポリペプチドが、ヒンジ領域の一部または全部を有するFc領域の一部である形態が得られる。そのヒンジ領域は、いずれかの免疫グロブリンサブクラスまたはアイソタイプに由来することができる。例示的な免疫グロブリンヒンジは、IgGヒンジ領域(IgG1ヒンジ領域など)、例えばヒトIgG1ヒンジアミノ酸配列EPKSCDKTHTCPPCP(配列番号95)である。
別の態様では、本明細書に記載されている融合タンパク質を含む医薬組成物及びキットを提供する。
本開示で使用するための製剤を調製するための手引きは、当業者に知られている医薬調製物及び製剤用のいずれかの数のハンドブックに見ることができる。
いくつかの実施形態では、LSD、例えば、ハンター症候群、サンフィリポ症候群A、ニーマンピック病、ゴーシェ病またはパーキンソン病の治療に用いるためのキットであって、本明細書に記載されているような融合タンパク質を含むキットを提供する。
具体的な実施例によって、本開示について、より詳細に説明する。以下の実施例は、例示目的で示されているにすぎず、いかなる形でも、本開示を限定しようとするものではない。当業者には、本質的に同じ結果を生じるように変更または改変できる様々な重要でないパラメーターが容易に認識されよう。用いられている数値(例えば、量、温度など)に関しては、精度を確保すべく努めたが、ある程度の実験的誤差及び偏差は存在し得る。本開示の実施の際には、別段に示されていない限り、当該技術分野の技術の範囲内で、タンパク質化学、生化学、組み換えDNA技術及び薬理学の従来の方法を用いる。このような技法は、文献で充分に説明されている。加えて、特定のライブラリーに適用するような操作方法は、本明細書に記載されている他のライブラリーにも適用できることは、当業者には明らかなはずである。
設計及びクローニング
(i)成熟ヒトIDS酵素が、Fc領域を含むヒトIgG1断片に融合されている融合ポリペプチド(「IDS−Fc融合ポリペプチド」)、及び(ii)トランスフェリン受容体(TfR)への結合をもたらす変異をFc領域に含む改変ヒトIgG1断片(「改変Fcポリペプチド」)を含むIDS−Fc融合タンパク質を設計した。具体的には、IDS断片をヒトIgG1 Fc領域のN末端またはC末端のいずれかに融合したIDS−Fc融合ポリペプチドを作製した。いくつかのケースでは、リンカーをIDSとIgG1断片の間に配置して、その2つの断片間のいずれの立体障害も軽減した。すべてのコンストラクトにおいて、分泌を促進するために、κ鎖V−IIIの1〜20位のアミノ酸(UniProtKB ID−P01661)に由来するシグナルペプチドを融合部の上流に挿入し、IDSをトランケートして、S26〜P550のアミノ酸(UniProtKB ID−P22304)からなるようにした。使用したヒトIgG1 Fc領域の断片は、UniProtKB ID P01857の配列のD104〜K330のアミノ酸(EUナンバリングで221〜447位、ヒンジの10個のアミノ酸(221〜230位)を含む)に対応する。いくつかの実施形態では、1つのIDS酵素を有するヘテロ二量体融合タンパク質(「モノザイム」)を作製するために、ヒトIgG1残基D104〜K330に由来するが、IDSとの融合は含まない第2のFcポリペプチドをIDS−Fc融合ポリペプチドとコトランスフェクションした。いくつかのコンストラクトにおいては、IgG1断片に追加の変異を含めて、2つのFc領域のヘテロ二量化を促した。TfRへの結合をもたらす変異を有さないコントロールIDS−Fc融合タンパク質を、それらのタンパク質が、TfRへの結合をもたらす変異を含まないという相違点以外は同様にして、設計及び構築した。追加のコントロールとして、我々は、検出及び精製を促すためのC末端ヘキサヒスチジンタグ(配列番号241)を含むIDS(アミノ酸S26−P550)を作製した。
Fc領域に融合された組み換えIDS酵素を発現させるために、Expifectamine(商標)CHOトランスフェクションキット(Thermo Fisher Scientific)をメーカーの指示に従って用いて、ExpiCHO細胞(Thermo Fisher Scientific)に、該当するDNAコンストラクトをトランスフェクションした。細胞をExpiCHO(商標)Expression Mediumにおいて、オービタルシェーカー(Infors HT Multitron)で、37℃、6%CO2及び120rpmで増殖させた。簡潔に述べると、対数増殖しているExpiCHO(商標)細胞に、6×106細胞/mlの密度で、培養体積1mL当たり0.8μgのDNAプラスミドをトランスフェクションした。トランスフェクション後、細胞を37℃に戻し、トランスフェクションの18〜22時間後に、トランスフェクションした培養液に、示されているようなフィード液を添加した。トランスフェクションの120時間後に、3,500rpmで20分遠心分離することによって、トランスフェクションした細胞培養液の上清を回収した。清澄化した上清をろ過し(0.22μMの膜)、4℃で保存した。エピトープタグ付きIDS酵素(コントロールとして使用)の発現を、上記に若干の修正を加えて行った。簡潔に述べると、C末端ヘキサヒスチジンタグ(配列番号241)を有するIDS酵素をExpiCHO細胞で発現させた。
操作されたTfR結合部位を有するIDS−Fc融合タンパク質は、ヒトTfRに結合する。
改変FcドメインがヒトTfRと相互作用する能力に、操作されたTfR結合部位を有するIDS−Fc融合タンパク質が影響を及ぼすか判定するために、Biacore(商標)表面プラズモン共鳴アッセイを用いて、このタンパク質のヒトTfRに対する親和性を評価した。Biacore(商標)Series S CM5というセンサーチップに、抗ヒトFabを固定化した(GE HealthcareのヒトFab捕捉キット)。5μg/mLのIDS−Fc融合タンパク質を各フローセル上に1分捕捉させ、ヒトアピカルドメインTfRの3倍段階希釈液を30μL/分の流速で注入した。各試料を3分の結合及び3分の解離で解析した。注入後に毎回、10mMグリシン−HCl(pH2.1)を用いて、チップを再生した。無関係なIgGが同程度の密度で捕捉されているフローセルから得たRUを減ずることによって、結合応答を補正した。Biacore(商標)T200 Evaluation Software v3.1を用いて、平衡状態の結合応答を濃度に対してフィッティングすることによって、定常状態の親和性を得た。図2に示されているように、Biacore(商標)による解析によって、Fc領域に操作されたTfR結合部位を有するIDS−Fc融合タンパク質が、ヒトTfRに結合することが明らかになった。Biacore(商標)による解析によって、IDS−Fc融合タンパク質ETV:IDS35.21が、約200nMの親和性で、ヒトTfRに結合することも明らかになった。
操作されたTfR結合IDS−Fc融合タンパク質のインビトロ活性及び細胞内活性を評価したところ、ヒトIgG断片に融合した場合に、IDSが、その酵素活性を保つことが示された。インビトロ活性は、人工基質を用いる2段階蛍光酵素アッセイによって測定した。具体的には、20μLの1mMの4−メチルウンベリフェリルa−L−イドピラノシドウロン酸2−硫酸エステル2ナトリウム塩基質(Carbosynth Limited、#EM03201)をアッセイ緩衝液(100mM酢酸ナトリウム、10mM酢酸鉛、0.05%Triton X−100、pH5.0)で希釈し、10μLの0.2nMのIDSと混合した。その第1の反応物を4時間、37℃でインキュベートし、60μLの0.2Mリン酸−クエン酸緩衝液(pH5.0)で停止させた。続いて、ヒトα−イズロニダーゼ(IDUA)を一過性にトランスフェクションしたHEK293T細胞から得た細胞溶解液15μgの存在下で、第2の反応を行い、16時間、37℃でインキュベートし、100μLの0.5M炭酸ナトリウム緩衝液(pH10.5)を加えることによって停止させた。続いて、その反応溶液の蛍光(365nmにおける励起及び450nmにおける発光)を測定した。生成物量を算出するために、4−メチルウンベリフェロンによる検量線を線形回帰によってフィッティングして、総基質切断の10%未満として確認した。生成物量を反応時間及びIDSのモル量で除することによって、比活性(生成物量(nmol)/分/IDS 1nmol)を算出した。
上に記載されているとともに、実施例1に従って調製したTfR結合IDS−Fc融合タンパク質(本明細書では、ETV:IDSという)で観察された脳暴露の改善によって、脳における基質の蓄積が、それに対応して低減するか調べるために、マウスTfRにノックインされたヒトTfRアピカルドメインを有するIDS欠損マウスモデルを作製した(本明細書では、IDS KO×TfRms/hu KIマウスという)。簡潔に述べると、TfRms/hu KI雄マウスを雌のIDSヘテロ接合体マウスと交配して、TfRms/hu KIホモ接合体バックグラウンドのIDS KOマウスを作製した。この試験で用いたすべてのマウスは雄であり、12時間の明暗サイクルで、飼料(LabDiet JL irradiated 6F)と水を自由摂取させて飼育した。
この実施例では、マウス血漿における操作されたIDS−Fc融合タンパク質の薬物動態学的(PK)特徴付けについて記載する。
TfR結合IDS−Fc融合タンパク質の血漿中半減期及びクリアランスを求めるために、7〜8週齢の雄C57BL/6マウスに、2つのIDS−Fc融合タンパク質分子(N末端モノザイム及びC末端モノザイム)10mg/kgを尾静脈注射によって投与した。ELISAベースのアッセイを用いて、24時間の期間にわたり、血漿に残ったIDS−Fc融合タンパク質の濃度を測定した。簡潔に述べると、サンドイッチELISAを用いて、マウス血漿中のIDS−Fc融合タンパク質の濃度を定量した。抗Fc捕捉用抗体(Abcam#ab124055)を384ウェルMaxiSorp(商標)プレート(Thermo Scientific#464718)に3μg/mLでコーティングした。そのプレートを5%BSAでブロックしてから、1:1,000または1:10,000のいずれかで希釈した血漿とインキュベートした。次に、ポリクローナル抗IDS検出抗体(R&D Systems#AF2449)を0.5μg/mLで加えてから、抗ヤギHRP抗体を加えた。TMB基質を用いてプレートを発色させ、硫酸で停止させ、BioTekプレートリーダーで、450nmにおける吸光度を測定した。検量線は、4倍希釈系列で200〜0.1ng/mLから個々に構築し、4パラメーターロジスティック回帰を用いてフィッティングした。
設計及びクローニング
成熟ヒトASM酵素が、Fc領域を含むヒトIgG1断片に融合されている融合ポリペプチド(「ASM−Fc融合ポリペプチド」)の二量体として、ASM−Fc融合タンパク質を設計した。いくつかの実施形態では、ASM−Fc融合ポリペプチドは、トランスフェリン受容体(TfR)への結合をもたらす変異を含む改変Fc領域を含む。具体的には、ASM断片が、ヒトIgG1 Fc領域のN末端に融合されているASM−Fc融合ポリペプチドを作製した。いくつかのケースでは、リンカーをそのASMとIgG1断片の間に配置して、その2つの断片間のいずれの立体障害も緩和した。すべてのコンストラクトにおいて、天然型ASMシグナル配列の1〜46位のアミノ酸(UniProtKB ID−P17405)を除去し、κ鎖V−IIIの1〜20位のアミノ酸(UniProtKB ID−P01661)に由来する分泌シグナルと置き換えて、ASMの分泌を向上させた。加えて、その融合タンパク質では、ASMとそのヒトIgG1 Fc領域の間のいずれの不要な切断も阻止するために、ASMをそのC末端でトランケートした(アミノ酸Q620で終端する)。続いて、ヒトIgG1 Fc領域(UniProtKB ID−P01857)の断片をASMのC末端とインフレームで配置し(アミノ酸E99で始まる)、103位のシステインは、セリンに変異させた。いくつかの実施形態では、IgG1断片に、2つのFc領域のヘテロ二量化を促すための追加の変異を含めた。加えて、ASM−Fc融合タンパク質は、ASMの1つまたは2つの分子を含むように作製した。コントロールとして、C末端システインを除去するとともに、酵素活性を促進するようにトランケートした、ASMの1〜628位のアミノ酸をヘキサヒスチジンタグ(配列番号241)にC末端で融合したものからなるASM−ヘキサヒスチジン(配列番号241)融合タンパク質を設計した。
Fc領域に融合された組み換えASM酵素を発現させるために、メーカー(Thermo Fisher Scientific)の指示に従って、ExpiCHO−S細胞(Thermo Fisher)に、6×106細胞/mlの密度で、Expifectamine CHO/プラスミドDNA複合体をトランスフェクションした。トランスフェクション後、オービタルシェーカー(Infors HT Multitron)で、細胞を32℃で、6〜8%CO2の加湿雰囲気においてインキュベートした。トランスフェクションから1日後に、Expifectamineエンハンサー及びExpifectamineフィード液を培養物に加えた。48〜72時間の発現時間後に、培地上清を遠心分離によって回収した。清澄化したその上清に、EDTA非含有プロテアーゼ阻害剤(Roche)を添加し、−80℃で保存した。
ASM−Fc融合タンパク質は、インビトロ及び細胞において活性を有する。
ASMが、ヒトIgG重鎖に融合されたときに、その酵素活性を保持することを示すために、ASM−Fc融合タンパク質のインビトロ活性及び細胞内活性を評価した。組み換えASM酵素または組み換えASM−Fc融合タンパク質のインビトロ活性を、スフィンゴミエリンの合成発色類似体を用いて測定した。具体的には、100mM酢酸ナトリウム緩衝液(pH5.3、100μLの反応体積における終濃度)において、2.5mMの2−(N−ヘキサデカノイルアミノ)−4−ニトロフェニルホスホリルコリン(EMD Millipore)と0.75nMのASMを混合した。その反応物を16時間、37℃でインキュベートし、等量の0.2MのNaOHを加えることによって停止させた。続いて、その反応溶液の吸光度を410nmにおいて測定した。生成物の量を算出するために、p−ニトロフェノールによる検量線を線形回帰によってフィッティングして、総基質切断の10%未満として確認した。生成物量を反応時間及びIDSのモル量で除することによって、比活性(生成物量(nmol)/分/IDS 1nmol)を算出した。そのインビトロ酵素活性アッセイによって、ASM−Fc融合タンパク質が活性を有することが示されたとともに、Fc領域のASMへの融合によって、その酵素活性が損なわれないことが示された(図12)。
設計及びクローニング
(i)成熟ヒトSGSH酵素が、Fc領域を含むヒトIgG1断片に融合されている融合ポリペプチド(「SGSH−Fc融合ポリペプチド」)、及び(ii)Fc領域に、トランスフェリン受容体(TfR)への結合をもたらす変異を含む改変ヒトIgG1断片(「改変Fcポリペプチド」)を含むSGSH−Fc融合タンパク質を設計した。具体的には、SGSH断片をヒトIgG1 Fc領域のN末端またはC末端のいずれかに融合したSGSH−Fc融合ポリペプチドを作製した。いくつかのケースでは、リンカーをそのSGSHとIgG1断片の間に配置して、その2つの断片間のいずれの立体障害も緩和した。すべてのコンストラクトにおいて、κ鎖V−IIIの1〜20位のアミノ酸(UniProtKB ID−P01661)に由来するシグナルペプチドをその融合物の上流に挿入して、分泌を促し、SGSHをトランケートして、R21〜L502のアミノ酸(UniProtKB ID−P51688)からなるようにした。使用したヒトIgG1 Fc領域の断片は、UniProtKB ID P01857における配列のD104〜K330のアミノ酸(EUインデックス番号で221〜447位、そのヒンジの10個のアミノ酸(221〜230位)を含む)に対応する。いくつかの実施形態では、1つのSGSH酵素を有するヘテロ二量体の融合タンパク質(「モノザイム」)を作製するために、ヒトIgG1の残基D104〜K330に由来する第2のFcポリペプチドであって、そのFc領域に、TfRへの結合をもたらす変異を含むが、SGSHへの融合を含まない第2のFcポリペプチドをSGSH−Fc融合ポリペプチドとコトランスフェクションした。別の実施形態では、2つのSGSH酵素を有するヘテロ二量体の融合タンパク質(「バイザイム」)を作製するために、ヒトIgG1残基D104〜K330に由来する第2のFcポリペプチドであって、そのFc領域に、TfRへの結合をもたらす変異を含み、SGSHに融合した第2のFcポリペプチドをSGSH−Fc融合ポリペプチドとコトランスフェクションした。いくつかのコンストラクトでは、IgG1断片に追加の変異を含めて、2つのFc領域のヘテロ二量化を促した。TfRへの結合をもたらす変異を含まないコントロールのSGSH−Fc融合タンパク質を同様にして設計及び構築した。追加のコントロールとして、検出及び精製を促すために、C末端ヘキサヒスチジンタグ(配列番号241)を有するSGSH(アミノ酸R21〜L502)を作製した。
Fc領域に融合された組み換えSGSH酵素を発現させるために、Expifectamine(商標)CHOトランスフェクションキット(Thermo Fisher Scientific)をメーカーの指示に従って用いて、ExpiCHO細胞(Thermo Fisher Scientific)に、該当するDNAコンストラクトをトランスフェクションした。オービタルシェーカー(Infors HT Multitron)で、細胞をExpiCHO(商標)Expression Mediumにおいて、37℃、6%CO2及び120rpmで増殖させた。簡潔に述べると、対数増殖しているExpiCHO(商標)細胞に、6×106細胞/mlの密度で、培養体積1mL当たり0.8μgのDNAプラスミドをトランスフェクションした。トランスフェクション後、細胞を37℃に戻し、トランスフェクションの18〜22時間後に、トランスフェクションした培養液に、示されているようなフィード液を添加した。トランスフェクションの120時間後に、3,500rpmで20分遠心分離することによって、トランスフェクションした細胞培養液の上清を回収した。清澄化した上清をろ過し(0.22μMの膜)、4℃で保存した。エピトープタグ付きSGSH酵素(コントロールとして使用)の発現を、上記に若干の修正を加えて行った。簡潔に述べると、C末端ヘキサヒスチジンタグ(配列番号241)を有するSGSH酵素をExpiCHO細胞で発現させた。
操作されたTfR結合部位を有するSGSH−Fc融合タンパク質は、ヒトTfRに結合する。
改変FcドメインがヒトTfRと相互作用する能力に、操作されたTfR結合部位を有するSGSH−Fc融合タンパク質が影響を及ぼすか判定するために、Biacore(商標)表面プラズモン共鳴アッセイを用いて、このタンパク質のヒトTfRに対する親和性を評価できる。Biacore(商標)Series S CM5センサーチップに、抗ヒトFabを固定化する(GE HealthcareのヒトFab捕捉キット)。5μg/mLのSGSH−Fc融合タンパク質を各フローセル上に1分捕捉させ、ヒトアピカルドメインTfRの3倍段階希釈液を30μL/分の流速で注入する。各試料を3分の結合及び3分の解離で解析する。注入後に毎回、10mMグリシン−HCl(pH 2.1)を用いて、チップを再生する。無関係なIgGが同程度の密度で捕捉されているフローセルから得たRUを減ずることによって、結合応答を補正する。Biacore(商標)T200 Evaluation Software v3.1を用いて、平衡状態の結合応答を濃度に対してフィッティングすることによって、定常状態の親和性を得る。Biacore(商標)による解析によって、Fc領域に操作したTfR結合部位を有するSGSH−Fc融合タンパク質が、ヒトTfRに結合することが明らかになる。
操作されたTfR結合SGSH−Fc融合タンパク質のインビトロ活性及び細胞内活性を評価して、ヒトIgG断片に融合した場合に、SGSHが、その酵素活性を保つことを示した。組み換えSGSHのインビトロ活性は、人工基質を用いる2段階蛍光酵素アッセイによって測定した。具体的には、アッセイ緩衝液(0.03M酢酸ナトリウム、0.12MのNaCl、pH6.5)で希釈した20μLの1mMの4−メチルウンベリフェリル2−デオキシ−2−スルファミノ−a−D−グルコピラノシドナトリウム塩基質(Carbosynth Limited、#EM06602)を10μLの40nMのSGSHと混合した。その第1の反応物を17時間、37℃でインキュベートしてから、10μLの0.2Mリン酸−クエン酸緩衝液(pH6.7)で停止させた。次に、10μL(0.5U)の酵母α−グルコシダーゼ(Sigma、#G0660−750UN)を加えることによって、第2の反応を開始し、24時間、37℃でインキュベートし、100μLの0.5M炭酸ナトリウム緩衝液(pH10.3)を加えることによって停止させた。続いて、その反応溶液の蛍光(365nmにおける励起及び450nmにおける発光)を測定した。生成物量を算出するために、4−メチルウンベリフェロンによる検量線を線形回帰によってフィッティングして、総基質切断の10%未満として確認した。生成物量を反応時間及びSGSHのモル量で除することによって、比活性(生成物量(フェモトモル)/分/SGSH 1ピコモル)を算出した。
この実施例には、SGSH−Fc融合タンパク質に関する代替的なインビトロ活性アッセイが示されている。そのアッセイは、Karpova et al.,J.Inherit.Metab.Dis.,19:278−285(1996)から改変したものである。
この実施例では、Fcポリペプチドに対する改変であって、トランスフェリン受容体(TfR)への結合をもたらし、血液脳関門(BBB)を越えて輸送するための改変について記載する。
384位、386位、387位、388位、389位、390位、413位、416位及び421位のアミノ酸位置を含む位置に改変が導入されているFc領域を含む酵母ライブラリーを下記のように作製した。TfRに結合する例示的なクローンは、表4及び5に示されている。
ソフトランダム化のアプローチを用いて、ヒトTfRに対する最初のヒットの親和性を向上させるために、追加のライブラリーを作製した(その際には、DNAオリゴを作製して、最初の4つのヒットのそれぞれに基づき、ソフト変異誘発を導入した)。TfRに結合した追加のクローンを特定し、選択した。選択したクローンは、2つの大まかな配列グループに分かれた。グループ1のクローン(すなわち、クローンCH3C.18、CH3C.21、CH3C.25及びCH3C.34)は、384位に半保存的なLeu、386位にLeuまたはHis、387位に保存的なVal、389位に半保存的なVal、413位、416位及び421位にそれぞれ半保存的なP−T−Wモチーフを有していた。グループ2のクローンは、384位に保存的なTyr、386〜390位にモチーフTXWSX、ならびに413位、416位及び421位に保存的なモチーフS/T−E−Fを有していた。追加の試験では、クローンCH3C.18及びCH3C.35を各配列グループの代表的なメンバーとして使用した。
操作されたFc領域が、TfRのアピカルドメインに結合するか判定するために、TfRアピカルドメインをファージの表面で発現させた。アピカルドメインを適正にフォールディングして提示させるには、そのループの1つをトランケートする必要があったとともに、その配列を環状に並び替える必要があった。クローンCH3C.18及びCH3C.35をELISAプレートにコーティングし、ファージELISAプロトコールに従った。簡潔に述べると、1%PBSAで洗浄及びブロックした後、ファージディスプレイの希釈液を加え、室温で1時間インキュベートした。次いで、そのプレートを洗浄し、抗M13−HRPを加え、さらに洗浄後、そのプレートをTMB基質で発色させ、2N N2SO4でクエンチした。このアッセイでは、クローンCH3C.18及びCH3C.35のいずれも、アピカルドメインに結合した。
TfRへの結合には、Fcドメイン内のどの残基が最も重要であるのかを把握するために、各変異体のTfR結合レジスター内の1つの位置を変異させて野生型に戻した一連の変異体クローンCH3C.18及びクローンCH3C.35Fc領域を作製した。得られたバリアントをFc−Fab融合物として組み換え発現させ、ヒトTfRまたはカニクイザルTfRへの結合について試験した。クローンCH3C.35では、結合のためには、388位及び421位が重要であり、これらの位置のいずれかを野生型に戻すと、ヒトTfRへの結合が完全に消失した。
上記のように、精製Fc−Fab融合バリアントと、プレートにコーティングしたヒトTfRまたはカニクイザルTfRによって、結合ELISAを行った。クローンCH3C.18成熟ライブラリー、クローンCH3C.3.2−1、クローンCH3C.3.2−5及びクローンCH3C.3.2−19に由来するバリアントは、同程度のEC50値で、ヒトTfR及びカニクイザルTfRに結合したが、親クローンCH3C.18及びCH3C.35では、ヒトTfRへの結合性は、カニクイザルTfRと比べて10倍高かった。
さらなる親和性成熟クローンCH3C.18及びCH3C.35に対する追加の操作には、直接的な相互作用、第2殻相互作用または構造安定化を通じて結合を向上させる位置に、追加の変異を加えることを含めた。これは、「NNKウォーク」または「NNKパッチ」ライブラリーから作製及び選択することを介して行った。そのNNKウォークライブラリーでは、パラトープに近い残基に1つずつNNK変異を導入した。FcγRIに結合したFc(PDB ID:4W4O)の構造を調べることにより、元の改変位置の近くの44個の残基が調査候補として特定された。具体的には、K248、R255、Q342、R344、E345、Q347、T359、K360、N361、Q362、S364、K370、E380、E382、S383、G385、Y391、K392、T393、D399、S400、D401、S403、K409、L410、T411、V412、K414、S415、Q418、Q419、G420、V422、F423、S424、S426、Q438、S440、S442、L443、S444、P4458、G446及びK447という残基をNNK変異誘発の標的とした。Kunkelの変異誘発法を用いて、これらの44個の一点NNKライブラリーを作製し、その生成物をプールし、他の酵母ライブラリーについて上で説明したように、エレクトロポレーションによって酵母に導入した。
NNKウォークライブラリーから変異の組み合わせを特定する一方で、これらの周辺に、いくつかの追加の位置を追加するための追加のライブラリーを、上記の酵母ライブラリーについて述べたようにして作製した。このライブラリーでは、YxTEWSS(配列番号242)及びTxxExxxxFモチーフを一定に保ち、E380、K392、K414、S415、S424及びS426という6つの位置を完全にランダム化した。E380及びS415の位置は、NNKウォークライブラリーにおいて「ホットスポット」であったので、これらの位置を含めた。K392、S424及びS426という位置は、結合領域の位置を決定し得るコアの部分を構成するので、これらの位置を含め、K414は、415位に隣接するので、選択した。
380位:Trp、LeuまたはGlu
384位:TyrまたはPhe
386位:Thrのみ
387位:Gluのみ
388位:Trpのみ
389位:Ser、AlaまたはVal(野生型のAsn残基では、結合が若干維持されるようであるが、ライブラリーの選別後には認められなかった。)
390位:SerまたはAsn
413位:ThrまたはSer
415位:GluまたはSer
416位:Gluのみ
421位:Pheのみ
トランスフェリン受容体(TfR)に結合する追加の改変Fcポリペプチドであって、Fc領域内の代替的な部位、例えば、
274位、276位、283位、285位、286位、287位、288位及び290位(CH2A2クローン)、
266位、267位、268位、269位、270位、271位、295位、297位、298位及び299位(CH2Cクローン)、
268位、269位、270位、271位、272位、292位、293位、294位及び300位(CH2Dクローン)、
272位、274位、276位、322位、324位、326位、329位、330位及び331位(CH2E3クローン)または
345位、346位、347位、349位、437位、438位、439位及び440位(CH3Bクローン)
の位置に改変を有する追加の改変Fcポリペプチドを作製した。
ファージディスプレイライブラリーの作製
野生型ヒトFc配列をコードする鋳型DNAを合成し、ファージミドベクターに組み込んだ。そのファージミドベクターは、ompAまたはpelBリーダー配列、c−Myc及び6xHis(配列番号241)エピトープタグに融合されたFcインサート、ならびにアンバー終止コドンに続いて、M13コートタンパク質pIIIを含むものであった。
野生型ヒトFc配列をコードする鋳型DNAを合成し、酵母ディスプレイベクターに組み込んだ。CH2及びCH3ライブラリーでは、FcポリペプチドをAga2p細胞壁タンパク質上に提示させた。いずれのベクターも、Kex2切断配列を有するプレプロリーダーペプチド、及びFcの末端に融合されたc−Mycエピトープタグを含むものであった。
ファージ法は、Phage Display:A Laboratory Manual(Barbas,2001)から改変した。追加のプロトコールの詳細は、この参照文献から入手できる。
抗原をMaxiSorp(登録商標)マイクロタイタープレートに一晩、4℃でコーティングした(典型的には1〜10μg/mL)。ファージライブラリーを各ウェルに加え、結合のために、一晩インキュベートした。0.05%Tween(登録商標)20(PBST)を含むPBSで、マイクロタイターウェルを広範囲に洗浄し、ウェルを酸(典型的には、500mMのKClまたは100mMのグリシンを含む50mMのHCl(pH2.7))と30分インキュベートすることによって、結合したファージを溶出した。溶出されたファージを1MのTris(pH8)で中和し、TG1細胞及びM13/KO7ヘルパーファージを用いて増幅し、50μg/mLのカルベニシリン及び50μg/mLのカナマイシンを含む2YT培地において一晩、37℃で増殖させた。標的の入ったウェルから溶出されたファージの力価と、標的の入っていないウェルから回収されたファージの力価を比較して、濃縮度を評価した。次に、結合の際のインキュベーション時間を短縮し、洗浄時間及び洗浄の回数を増やすことによって、選択のストリンジェンシーを向上させた。
NHS−PEG4−ビオチン(Pierce(商標)から入手したもの)を用いて、遊離アミンを介して、抗原をビオチン化した。ビオチン化反応では、3〜5倍モル過剰のビオチン試薬をPBS中で用いた。反応をTrisでクエンチした後、PBS中で充分に透析した。ビオチン化された抗原をストレプトアビジンコート磁気ビーズ(すなわち、Thermo Fisherから入手したM280ストレプトアビジンビーズ)上に固定化した。ファージディスプレイライブラリーを抗原コートビーズと室温で1時間インキュベートした。続いて、結合しなかったファージを除去し、ビーズをPBSTで洗浄した。結合したファージを除去し、ビーズをPBSTで洗浄した。500mMのKCl(または0.1Mグリシン、pH2.7)を含む50mMのHClと30分インキュベートすることによって、結合したファージを溶出した後、プレートの選別について上記に述べたようにして、中和し、増殖させた。
ビーズの選別(磁気細胞選別(MACS))の方法
Ackerman,et al.2009 Biotechnol.Prog.25(3),774(2009)に記載されているのと同様にして、MACS及びFACSによる選択を行った。ストレプトアビジン磁気ビーズ(例えば、ThermoFisherのストレプトアビジンビーズM−280)をビオチン化抗原で標識し、酵母とインキュベートした(典型的には、5〜10倍のライブラリー多様性)。結合しなかった酵母を除去し、ビーズを洗浄し、結合した酵母を選択培地中で増殖させ、後の選択ラウンド用に誘導した。
発現及びビオチン化抗原(選別ラウンドに応じて、濃度が変動する)をモニタリングするために、酵母を抗c−Myc抗体で標識した。一部の実験では、相互作用のアビディティを高めるために、抗原をストレプトアビジン−Alexa Fluor(登録商標)647と予め混合した。他の実験では、結合後、ビオチン化抗原を検出し、ストレプトアビジン−Alexa Fluor(登録商標)647で洗浄した。セルソーターFACS Aria IIIを用いて、結合を有するシングレットの酵母を選別した。選別した酵母を選択培地中で増殖させてから、後の選択ラウンド用に誘導した。
ELISAによるスクリーニング
パニングの結果からクローンを選択し、96ウェルディープウェルプレートの個々のウェル中で増殖させた。そのクローンに、オートインダクション培地(EMD Milliporeから入手したもの)を用いてペリプラズム発現を誘導するか、またはファージ上に個々のFcバリアントをファージディスプレイさせるために、ヘルパーファージを感染させた。ELISAプレートを、典型的には0.5mg/mLの抗原で一晩コーティングしてから、1%BSAでブロックした後、ファージまたはペリプラズム抽出物を加えた。1時間インキュベートし、未結合のタンパク質を洗い落とした後、HRPコンジュゲート二次抗体(すなわち、可溶性Fcでは抗Fc、またはファージに提示させたFcでは抗M13)を加え、30分インキュベートした。そのプレートを再度洗浄してから、TMB試薬で発色させ、2N硫酸でクエンチした。プレートリーダー(BioTek(登録商標))を用いて、450nmにおける吸光度を定量し、適用可能である場合には、Prismというソフトウェアを用いて、結合曲線をプロットした。一部のアッセイでは、結合ステップの際に、可溶性トランスフェリンまたはその他の競合物質を、典型的には大幅なモル過剰量で加えた。
96ウェルV底プレート中で、Fcバリアントポリペプチド(ファージ上で、ペリプラズム抽出物中で、またはFab断片への融合物として可溶性に発現させたもの)を細胞に加え(PBS+1%BSA(PBSA)中、1ウェル当たり約100,000細胞)、4℃で1時間インキュベートした。この後、そのプレートを回転させ、培地を除去してから、細胞をPBSAで1回洗浄した。二次抗体(典型的には、ヤギ抗ヒトIgG−Alexa Fluor(登録商標)647(Thermo Fisherから入手したもの))を含むPBSAに、その細胞を再懸濁した。30分後、プレートを回転させ、培地を除去し、細胞をPBSAで1〜2回洗浄した後、そのプレートをフローサイトメーター(すなわち、フローサイトメーターFACSCanto(商標)II)で読み取った。FlowJoというソフトウェアを用いて、条件ごとに、蛍光の中央値を算出し、Prismというソフトウェアで、結合曲線をプロットした。
この実施例では、トランスフェリン受容体(TfR)に対するTfR結合ポリペプチドの親和性と、そのTfR結合ポリペプチドに連結されている療法剤への脳暴露の結果との関係について記載する。
TfRms/hu KIの作製
ノックインマウス/ノックアウトマウスを作製する方法は、文献に公開されており、当業者には周知である。要約すると、TfRms/hu KIマウスは、マウスTfrc遺伝子内でヒトTfrcアピカルドメインを発現させるように、CRISPR/Cas9技術を用いて作製し、得られたキメラTfRをインビボにおいて、内因性プロモーターの制御下で発現させた。国際公開第2018/152285号(参照により、その全体が本明細書に援用される)に記載されているように、C57Bl6マウスを用いて、単一細胞胚への前核マイクロインジェクションによって、ヒトアピカルTfRマウス株のノックインを行ってから、胚を偽妊娠雌マウスに移した。具体的には、Cas9、シングルガイドRNA及びドナーDNAを胚に導入した。そのドナーDNAは、マウスでの発現に合わせてコドン最適化したヒトアピカルドメインコード配列を含むものであった。そのアピカルドメインコード配列は、左右のホモロジーアームに挟まれていた。そのドナー配列は、アピカルドメインが第4マウスエキソンの後に挿入されるとともに、3’末端で、第9マウスエキソンに直接隣接するように設計した。胚を移植されたその雌の子孫に由来する雄ファウンダーを野生型の雌と交配して、F1ヘテロ接合体マウスを得た。その後、F1世代のヘテロ接合体マウスの交配によって、ホモ接合体マウスを得た。
PK/PD評価の際には、TfRms/hu KIマウスに1回、尾静脈注射によって50mg/kgで全身投与した。灌流前に、心臓穿刺によって、血液をEDTA血漿チューブに採取し、14,000rpmで5分回転させた。続いて、後のPK及びPD解析用に、血漿を単離した。灌流後、脳を摘出し、脳半球を分離して、PBSにおける、組織重量の10倍の1%NP−40(PK用)または5MのGuHCl(PD用)中でホモジナイズした。
Biacore(商標)T200という計器を用いた表面プラズモン共鳴によって、組換えTfRのアピカルドメインに対するクローンバリアントの親和性を求めた。Biacore(商標)Series S CM5というセンサーチップに、抗ヒトFabを固定化した(GE HealthcareのヒトFab捕捉キット)。5μg/mLのポリペプチド−Fab融合物を各フローセル上に1分捕捉させ、30μL/分の流速で、ヒトアピカルドメインまたはカニクイザルアピカルドメインの3倍段階希釈液を室温で注入した。各試料を45秒の結合及び3分の解離で解析した。注入後に毎回、10mMのグリシン−HCl(pH2.1)を用いて、チップを再生した。無関係なIgGが同程度の密度で捕捉されているフローセルから得たRUを減ずることによって、結合応答を補正した。Biacore(商標)T200 Evaluation Software v3.1を用いて、平衡状態の結合応答を濃度に対してフィッティングすることによって、定常状態の親和性を得た。
PK及び脳への取り込みに対するTfR結合親和性の影響を評価するために、Biacore(商標)によって測定した場合、アピカルヒトTfRに対する結合親和性の異なる抗BACE1 Ab153及びTfR結合ポリペプチド融合物(CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153、CH3C.35:Ab153という融合物)を作製した。ヒトTfRに対するCH3C.35.21:Ab153融合物の結合親和性は100nM、CH3C.35.20:Ab153融合物の結合親和性は170nM、CH3C.35:Ab153融合物の結合親和性は620nMである。TfRms/huノックインマウスに、Ab153またはポリペプチド−Fab融合物のいずれかを50mg/kgで全身投与し、投与から1日後、3日後及び7日後に、血漿中PK及び脳内PKPDを評価した。脳内及び血漿中PKPDの解析は、上記のようにして行った。末梢組織でのTfRの発現により、CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153及びCH3C.35:Ab153の融合物では、血漿中のクリアランスが、Ab153単独と比べて速かったが、これは、標的介在性のクリアランスと一致し、インビボでのTfRへの結合を示すものである(図21A)。印象的なことに、CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153及びCH3C.35:Ab153の融合物の脳内濃度は、Ab153と比べて有意に上昇し、投与から1日目に、最高脳内濃度が30nm超であったのに対し、Ab153では、同じ時点に、約3nMに過ぎなかった(図21B)。CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153及びCH3C.35:Ab153の融合物の脳曝露の増大により、マウスの脳内の内因性マウスAβレベルは、Ab153を投与されたマウスにおけるAβレベルと比べて、約55〜60%低かった(図21C)。このようにより低い脳内Aβレベルが維持されたと同時に、CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153及びCH3C.35:Ab153の融合物の濃度は、脳内で高い状態に保たれ、7日目までに曝露が低下したときには、Ab153で処置したマウスと同様のレベルまで戻った。経時的な脳曝露の低下は、CH3C.35.21:Ab153、CH3C.35.20:Ab153及びCH3C.35:Ab153の融合物の末梢曝露の低下と相関しており、インビボでの明らかなPK/PDの関係が示された(図21Aと図21Cを比較)。加えて、この単回の高用量投与後、全体の脳内TfRレベルは、Ab153で処置したマウスと、ポリペプチド−Fab融合物で処置したマウスで同程度であったことから、ポリペプチド−Fab融合物の脳曝露の増加が、脳内でのTfRの発現に対して有意な影響を及ぼさないことが示された(図21D)。
Claims (142)
- (a)酵素補充療法(ERT)用酵素、ERT用酵素バリアントまたはその触媒活性断片に連結されている第1のFcポリペプチドと、
(b)前記第1のFcポリペプチドとFc二量体を形成する第2のFcポリペプチドと、
を含むタンパク質であって、
前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、免疫グロブリン重鎖及び/または軽鎖可変領域配列、あるいはそれらの抗原結合部分を含まない前記タンパク質。 - 前記ERT用酵素が、イズロン酸−2−スルファターゼ(IDS)、IDSバリアントまたはその触媒活性断片である、請求項1に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、配列番号91、92、114、230及び234のうちのいずれか1つのアミノ酸配列と、少なくとも80%、85%、90%または95%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項2に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、配列番号91、92、114、230及び234のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項3に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、N−スルホグルコサミンスルホヒドロラーゼ(SGSH)、SGSHバリアントまたはその触媒活性断片である、請求項1に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、配列番号119及び120のうちのいずれか1つのアミノ酸配列と、少なくとも80%、85%、90%または95%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項5に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、配列番号119及び120のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項6に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、酸性スフィンゴミエリナーゼ(ASM)、ASMバリアントまたはその触媒活性断片である、請求項1に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、配列番号121、122及び123のうちのいずれか1つのアミノ酸配列と、少なくとも80%、85%、90%または95%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項8に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、配列番号121、122及び123のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項9に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、β−グルコセレブロシダーゼ(GBA)、GBAバリアントまたはその触媒活性断片である、請求項1に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、配列番号93及び94のうちのいずれか1つのアミノ酸配列と、少なくとも80%、85%、90%または95%の同一性を有するアミノ酸配列を含む、請求項11に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素が、配列番号93及び94のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項12に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、前記ERT用酵素、前記ERT用酵素バリアントまたは前記その触媒活性断片に、ペプチド結合またはポリペプチドリンカーによって連結されている融合ポリペプチドである、請求項1〜13のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記ポリペプチドリンカーが、フレキシブルポリペプチドリンカーである、請求項14に記載のタンパク質。
- 前記フレキシブルポリペプチドリンカーが、グリシンリッチリンカーである、請求項15に記載のタンパク質。
- 前記グリシンリッチリンカーが、G4S(配列番号239)または(G4S)2(配列番号240)である、請求項16に記載のタンパク質。
- 前記第2のFcポリペプチドが、ERT用酵素、ERT用酵素バリアントまたはその触媒活性断片に連結されている、請求項1〜17のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第2のFcポリペプチドが、前記ERT用酵素、前記ERT用酵素バリアントまたは前記その触媒活性断片に、ペプチド結合またはポリペプチドリンカーによって連結されている融合ポリペプチドである、請求項18に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドのN末端及び/または前記第2のFcポリペプチドのN末端が、前記ERT用酵素に連結されている、請求項18または19に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドのN末端が、一方のERT用酵素に連結されており、前記第2のFcポリペプチドのN末端が、もう一方のERT用酵素に連結されている、請求項20に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドのC末端及び/または前記第2のFcポリペプチドのC末端が、前記ERT用酵素に連結されている、請求項18または19に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドのC末端が、一方のERT用酵素に連結されており、前記第2のFcポリペプチドのC末端が、もう一方のERT用酵素に連結されている、請求項22に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドのN末端が、一方のERT用酵素に連結されており、前記第2のFcポリペプチドのC末端が、もう一方のERT用酵素に連結されている、請求項18または19に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドのC末端が、一方のERT用酵素に連結されており、前記第2のFcポリペプチドのN末端が、もう一方のERT用酵素に連結されている、請求項18または19に記載のタンパク質。
- 前記タンパク質が、1つのERT用酵素を含み、前記第1のFcポリペプチドのN末端またはC末端が、前記ERT用酵素に連結されている、請求項1〜17のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 2つのERT用酵素を含む、請求項18〜25のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記融合ポリペプチドが、N末端からC末端の順に、前記ERT用酵素、前記ERT用酵素バリアントまたは前記その触媒活性断片、前記ポリペプチドリンカー、及び前記第1のFcポリペプチドを含む、請求項14〜17のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、改変Fcポリペプチドであり、及び/または前記第2のFcポリペプチドが、改変Fcポリペプチドである、請求項1〜28のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び前記第2のFcポリペプチドがそれぞれ、ヘテロ二量化を促す改変を含む、請求項29に記載のタンパク質。
- 前記Fc二量体が、Fcヘテロ二量体である、請求項30に記載のタンパク質。
- EUナンバリングによれば、前記Fcポリペプチドのうちの一方が、T366Wという置換を有し、もう一方のFcポリペプチドが、T366S、L368A及びY407Vという置換を有する、請求項30または31に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、前記T366S、L368A及びY407Vという置換を有し、前記第2のFcポリペプチドが、前記T366Wという置換を含む、請求項32に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、前記ERT用酵素に連結されており、配列番号117、232及び236のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項33に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、前記T366Wという置換を含み、前記第2のFcポリペプチドが、前記T366S、L368A及びY407Vという置換を含む、請求項32に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、前記ERT用酵素に連結されており、配列番号118、233及び237のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項35に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、天然型FcRn結合部位を含む、請求項29〜36のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び前記第2のFcポリペプチドが、エフェクター機能を有さない、請求項29〜37のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、エフェクター機能を低下させる改変を含む、請求項29〜37のいずれか1項に記載のタンパク質。
- EUナンバリングによれば、エフェクター機能を低下させる前記改変が、234位のAla及び235位のAlaへの置換である、請求項39に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、前記ERT用酵素に連結されており、配列番号115、231及び235のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項40に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、前記ERT用酵素に連結されており、配列番号149、150、152及び153のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項40に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、天然型Fc配列に対するアミノ酸変化であって、血清中半減期を延長するアミノ酸変化を含む、請求項29〜42のいずれか1項に記載のタンパク質。
- EUナンバリングによれば、前記アミノ酸変化が、252位のTyr、254位のThr及び256位のGluへの置換を含む、請求項43に記載のタンパク質。
- EUナンバリングによれば、前記アミノ酸変化が、428位のLeu及び434位のSerへの置換を含む、請求項43に記載のタンパク質。
- EUナンバリングによれば、前記アミノ酸変化が、434位のSerまたはAlaの置換を含む、請求項43に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、トランスフェリン受容体(TfR)に特異的に結合する、請求項29〜46のいずれか1項に記載のタンパク質。
- EUナンバリングによれば、前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、384位、386位、387位、388位、389位、390位、413位、416位及び421位からなる群から選択した位置に、少なくとも2つの置換を含む、請求項47に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、前記位置に、少なくとも3個、4個、5個、6個、7個、8個または9個の置換を含む、請求項48に記載のタンパク質。
- EUナンバリングによれば、前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、380位、391位、392位及び415位を含む位置に、1個、2個、3個または4個の置換をさらに含む、請求項48または49に記載のタンパク質。
- EUナンバリングによれば、前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、414位、424位及び426位を含む位置に、1個、2個または3個の置換をさらに含む、請求項48〜50のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、388位にTrpを含む、請求項48〜51のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、421位に芳香族アミノ酸を含む、請求項48〜52のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 421位の前記芳香族アミノ酸が、TrpまたはPheである、請求項53に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、Trp、LeuまたはGluである380位、TyrまたはPheである384位、Thrである386位、Gluである387位、Trpである388位、Ser、Ala、ValまたはAsnである389位、SerまたはAsnである390位、ThrまたはSerである413位、GluまたはSerである415位、Gluである416位、及びPheである421位から選択した少なくとも1つの位置を含む、請求項48〜54のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、Trp、LeuまたはGluである380位、TyrまたはPheである384位、Thrである386位、Gluである387位、Trpである388位、Ser、Ala、ValまたはAsnである389位、SerまたはAsnである390位、ThrまたはSerである413位、GluまたはSerである415位、Gluである416位、及びPheである421位から選択した2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個または11個の位置を含む、請求項55に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、Trp、LeuまたはGluである380位、TyrまたはPheである384位、Thrである386位、Gluである387位、Trpである388位、Ser、Ala、ValまたはAsnである389位、SerまたはAsnである390位、ThrまたはSerである413位、GluまたはSerである415位、Gluである416位、及びPheである421位という11個の位置を含む、請求項56に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、配列番号34〜38、58、60〜90、151及び156〜229のうちのいずれか1つの111〜217位のアミノ酸と、少なくとも85%の同一性、少なくとも90%の同一性または少なくとも95%の同一性を有するCH3ドメインを有する、請求項56または57に記載のタンパク質。
- 配列番号34〜38、58、60〜90、151及び156〜229のうちのいずれか1つの、EUインデックスで380位、384位、386位、387位、388位、389位、390位、391位、392位、413位、414位、415位、416位、421位、424位及び426位に対応する位置のうちの少なくとも5個、6個、7個、8個、9個、10個、11個、12個、13個、14個、15個または16個の残基が、欠失または置換されていない、請求項58に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、配列番号156〜229のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項58または59に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、配列番号157、169、181、193、205及び217のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項60に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、配列番号115、231及び235のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含み、前記第2のFcポリペプチドが、配列番号205及び228のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項60に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、配列番号115、231及び235のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含み、前記第2のFcポリペプチドが、配列番号169及び229のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項60に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドが、前記TfRのアピカルドメインに結合する、請求項47〜63のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記タンパク質の前記TfRへの前記結合によって、トランスフェリンの前記TfRへの結合が実質的に阻害されない、請求項47〜64のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドの、対応する野生型Fcポリペプチドに対するアミノ酸配列同一性が、少なくとも75%、または少なくとも80%、85%、90%、92%もしくは95%である、請求項47〜65のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記対応する野生型Fcポリペプチドが、ヒトIgGl、IgG2、IgG3またはIgG4のFcポリペプチドである、請求項66に記載のタンパク質。
- 前記ERT用酵素の脳への取り込みが、前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドの非存在下における前記ERT用酵素の取り込みと比べて、あるいは前記第1のFcポリペプチド及び/または前記第2のFcポリペプチドへの前記改変であって、TfRへの結合をもたらす前記改変を行わなかった場合の前記ERT用酵素の取り込みと比べて、少なくとも10倍多い、請求項47〜67のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、血液脳関門(BBB)受容体に結合するように改変されておらず、前記第2のFcポリペプチドが、TfRに特異的に結合するように改変されている、請求項1〜68のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 前記第1のFcポリペプチドが、TfRに特異的に結合するように改変されており、前記第2のFcポリペプチドが、BBB受容体に結合するように改変されていない、請求項1〜68のいずれか1項に記載のタンパク質。
- 免疫グロブリンの重鎖及び/または軽鎖可変領域配列、あるいはそれらの抗原結合部分を含まない、請求項1〜70のいずれか1項に記載のタンパク質。
- ERT用酵素、ERT用酵素バリアントまたはその触媒活性断片に連結されているFcポリペプチドを含むポリペプチドであって、前記Fcポリペプチドが、別のFcポリペプチドとのヘテロ二量化を促す1つ以上の改変を含む前記ポリぺプチド。
- 前記ERT用酵素が、イズロン酸−2−スルファターゼ(IDS)、IDSバリアントまたはその触媒活性断片である、請求項72に記載のポリペプチド。
- 前記ERT用酵素が、N−スルホグルコサミンスルホヒドロラーゼ(SGSH)、SGSHバリアントまたはその触媒活性断片である、請求項72に記載のポリペプチド。
- 前記ERT用酵素が、酸性スフィンゴミエリナーゼ(ASM)、ASMバリアントまたはその触媒活性断片である、請求項72に記載のポリペプチド。
- 前記ERT用酵素が、β−グルコセレブロシダーゼ(GBA)、GBAバリアントまたはその触媒活性断片である、請求項72に記載のポリペプチド。
- 前記Fcポリペプチドが、前記ERT用酵素、前記ERT用酵素バリアントまたは前記その触媒活性断片に、ペプチド結合またはポリペプチドリンカーによって連結されている融合ポリペプチドである、請求項72〜76のいずれか1項に記載のポリペプチド。
- 前記融合ポリペプチドが、N末端からC末端の順に、前記ERT用酵素、前記ERT用酵素バリアントまたは前記その触媒活性断片、前記ポリペプチドリンカー、及び前記第1のFcポリペプチドを含む、請求項77に記載のポリペプチド。
- EUナンバリングによれば、前記Fcポリペプチドが、T366S、L368A及びY407Vという置換を含む、請求項72〜78のいずれか1項に記載のポリペプチド。
- 配列番号115、117、231、232、235及び236のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項79に記載のポリペプチド。
- 配列番号149及び150のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項79に記載のポリペプチド。
- 前記Fcポリペプチドが、T366Wという置換を含む、請求項72〜78のいずれか1項に記載のポリペプチド。
- 配列番号118、233及び237のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項82に記載のポリペプチド。
- 配列番号152〜155のうちのいずれか1つのアミノ酸配列を含む、請求項82に記載のポリペプチド。
- 前記もう1つのFcポリペプチドをさらに含む、請求項72〜84のいずれか1項に記載のポリペプチド。
- 請求項72〜84のいずれか1項に記載のポリペプチドをコードする核酸配列を含むポリヌクレオチド。
- 請求項86に記載のポリヌクレオチドを含むベクター。
- 請求項86に記載のポリヌクレオチドまたは請求項87に記載のベクターを含む宿主細胞。
- 前記もう1つのFcポリペプチドをコードする核酸配列を含むポリヌクレオチドをさらに含む、請求項88に記載の宿主細胞。
- ERT用酵素、ERT用酵素バリアントまたはその触媒活性断片に連結されているFcポリペプチドを含むポリペプチドの作製方法であって、請求項86に記載のポリヌクレオチドによってコードされる前記ポリペプチドを発現させる条件で、宿主細胞を培養することを含む前記方法。
- リソソーム蓄積障害(LSD)の治療方法であって、治療が必要な患者に、請求項1〜71のいずれか1項に記載のタンパク質、または請求項72〜85のいずれか1項に記載のポリペプチドを投与することを含む前記方法。
- LSD患者における毒性代謝産物の蓄積の低減方法であって、前記患者に、請求項1〜71のいずれか1項に記載のタンパク質、または請求項72〜85のいずれか1項に記載のポリペプチドを投与することを含む前記方法。
- 前記LSDが、ハンター症候群であり、前記ERT用酵素が、IDSである、請求項91または92に記載の方法。
- 前記毒性代謝産物が、ヘパラン硫酸由来の二糖及び/またはデルマタン硫酸由来の二糖を含む、請求項93に記載の方法。
- 前記LSDが、サンフィリポ症候群Aであり、前記ERT用酵素が、SGSHである、請求項91または92に記載の方法。
- 前記毒性代謝産物が、ヘパラン硫酸由来のオリゴ糖を含む、請求項95に記載の方法。
- 前記LSDが、ニーマンピック病であり、前記ERT用酵素が、ASMである、請求項91または92に記載の方法。
- 前記毒性代謝産物が、スフィンゴミエリンを含む、請求項97に記載の方法。
- 前記LSDが、ゴーシェ病またはパーキンソン病であり、前記ERT用酵素が、GBAである、請求項91または92に記載の方法。
- 前記毒性代謝産物が、グルコシルセラミドを含む、請求項99に記載の方法。
- 請求項1〜71のいずれか1項に記載のタンパク質、または請求項72〜85のいずれか1項に記載のポリペプチド、及び製薬学的に許容可能な担体を含む医薬組成物。
- 基質の蓄積をモニタリングして、IDS活性を評価する方法であって、
(a)請求項2〜4、14〜41及び43〜71のいずれか1項に記載のタンパク質、または請求項72〜73、77〜80、82〜83及び85のいずれか1項に記載のポリペプチドを投与された対象に由来する細胞試料または組織試料中の細胞を破壊して、マイクロベシクルを破壊して開いて、解析対象のグリコサミノグリカン(GAG)溶液を得ること、
(b)前記GAG溶液を少なくとも1つのヘパリナーゼ及びコンドロイチナーゼBで消化して、GAG由来の二糖を得ること、
(c)前記GAG由来の二糖を質量分析法によって解析すること、ならびに
(d)ヘパラン硫酸由来及び/またはデルマタン硫酸由来の二糖のレベルを求めることであって、IDS活性が欠損しているコントロールと比べて、ヘパラン硫酸由来及び/またはデルマタン硫酸由来の二糖のレベルが低いことによって、前記コントロールと比べて、前記試料中のIDS活性が上昇していることが示される、前記求めること
を含む前記方法。 - 前記細胞を破壊するステップが、少なくとも1回の凍結融解サイクル及び少なくとも1回の超音波処理ステップを含む、請求項102に記載の方法。
- 前記細胞が、組織試料に由来するものであり、前記方法が、少なくとも3回、4回または5回の凍結融解サイクルを含む、請求項103に記載の方法。
- 前記対象が、IDS活性の欠損したマウスである、請求項102〜104のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が、ヒト以外の霊長類動物である、請求項102〜104のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が、ハンター症候群であるヒト患者である、請求項102〜104のいずれか1項に記載の方法。
- 基質の蓄積をモニタリングして、SGSH活性を評価する方法であって、
(a)請求項5〜7、14〜33、35、37〜40及び42〜71のいずれか1項に記載のタンパク質または請求項72、74、77〜79、81〜82及び84〜85のいずれか1項に記載のポリペプチドを投与された対象に由来する細胞試料または組織試料中の細胞を破壊して、マイクロベシクルを破壊して開いて、解析対象のグリコサミノグリカン(GAG)溶液を得ること、
(b)前記GAG溶液を少なくとも1つのヘパリナーゼで消化して、GAG由来の二糖を得ること、
(c)前記GAG由来の二糖を質量分析法によって解析すること、ならびに
(d)ヘパラン硫酸由来の二糖のレベルを求めることであって、SGSH活性が欠損しているコントロールと比べて、ヘパラン硫酸由来の二糖のレベルが低いことによって、前記コントロールと比べて、前記試料中のSGSH活性が上昇していることが示される、前記求めること
を含む前記方法。 - 前記細胞を破壊するステップが、少なくとも1回の凍結融解サイクル及び少なくとも1回の超音波処理ステップを含む、請求項108に記載の方法。
- 前記細胞が、組織試料に由来しており、前記方法が、少なくとも3回、4回または5回の凍結融解サイクルを含む、請求項109に記載の方法。
- 前記対象が、SGSH活性の欠損したマウスである、請求項108〜110のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が、ヒト以外の霊長類動物である、請求項108〜110のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が、サンフィリポ症候群Aであるヒト患者である、請求項108〜110のいずれか1項に記載の方法。
- 哺乳動物のBBBを越えて、薬剤を輸送する方法であって、約50nM〜約250nMの親和性で、TfRに結合するタンパク質に前記BBBを暴露させることを含み、前記タンパク質が、前記薬剤に連結されており、前記BBBを越えて、前記連結された薬剤を輸送する前記方法。
- 前記哺乳動物の脳内の前記薬剤の最高濃度(Cmax)を向上させる、請求項114に記載の方法。
- 前記薬剤が、LSDを治療するのに有用である、請求項114または115に記載の方法。
- LSDの治療方法であって、約50nM〜約250nMの親和性で、TfRに結合するタンパク質を哺乳動物に投与することを含み、前記タンパク質が、LSDを治療するための薬剤に連結されており、それによって、前記哺乳動物の脳を前記薬剤に暴露する前記方法。
- 前記タンパク質が、前記よりも弱い親和性で、TfRに結合する参照タンパク質に連結されている前記薬剤と比べて、前記脳内の前記薬剤のCmaxを向上させる、請求項114〜117のいずれか1項に記載の方法。
- 前記タンパク質が、前記よりも弱い親和性で、TfRに結合する参照タンパク質に連結されている薬剤と比べて、前記哺乳動物において、治療上有効な濃度で、前記薬剤のCmaxを向上させる、請求項114〜118のいずれか1項に記載の方法。
- 前記参照タンパク質が、約600nMの、またはそれより弱い親和性で、前記TfRに結合する、請求項118〜119のいずれか1項に記載の方法。
- 前記TfRが、霊長類動物のTfRである、請求項114〜120のいずれか1項に記載の方法。
- 前記霊長類動物TfRが、ヒトTfRである、請求項121に記載の方法。
- 前記タンパク質が、TfRアピカルドメインに結合する、請求項114〜122のいずれか1項に記載の方法。
- 前記タンパク質が、約100nM〜約200nMの親和性で、前記TfRに結合する、請求項114〜123のいずれか1項に記載の方法。
- 前記タンパク質が、約110nM〜約150nMの親和性で、前記TfRに結合する、請求項114〜124のいずれか1項に記載の方法。
- 前記薬剤の前記治療上有効な濃度が、前記哺乳動物におけるLSDの1つ以上の症状を治療する濃度である、請求項119〜125のいずれか1項に記載の方法。
- 前記薬剤が、タンパク質補充療法剤である、請求項114〜126のいずれか1項に記載の方法。
- 前記薬剤またはタンパク質補充療法剤が、酵素である、請求項114〜127のいずれか1項に記載の方法。
- 前記酵素が、前記タンパク質に連結されていると、前記酵素が前記参照タンパク質に連結されている場合と比べて、前記LSDである前記哺乳動物の前記脳における毒性代謝産物の蓄積を低減する度合いが高くなる、請求項128に記載の方法。
- 前記酵素が、IDSであり、前記LSDが、ハンター症候群である、請求項128または129に記載の方法。
- 前記毒性代謝産物が、ヘパラン硫酸由来の二糖及び/またはデルマタン硫酸由来の二糖を含む、請求項130に記載の方法。
- 前記酵素が、SGSHであり、前記LSDが、サンフィリポ症候群Aである、請求項128または129に記載の方法。
- 前記酵素が、ASMであり、前記LSDが、ニーマンピック病である、請求項128または129に記載の方法。
- 前記酵素が、GBAであり、前記LSDが、ゴーシェ病である、請求項128または129に記載の方法。
- 前記薬剤が、抗体可変領域を含む、請求項114〜126のいずれか1項に記載の方法。
- 前記薬剤が、抗体断片を含む、請求項135に記載の方法。
- 前記薬剤が、FabまたはscFvを含む、請求項136に記載の方法。
- 前記タンパク質が、TfRと結合できる非天然型結合部位を含む改変Fcポリペプチドである、請求項114〜137のいずれか1項に記載の方法。
- 前記タンパク質が、TfRと特異的に結合する抗体可変領域を含む、請求項114〜137のいずれか1項に記載の方法。
- 前記タンパク質が、抗体断片を含む、請求項139に記載の方法。
- 前記タンパク質が、FabまたはscFvを含む、請求項140に記載の方法。
- 前記薬剤に連結されている前記タンパク質を、製薬学的に許容可能な担体の一部として投与する、請求項114〜141のいずれか1項に記載の方法。
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