JP2018512145A - Afpペプチド/mhc複合体を標的化する構築物およびその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本願は、2015年4月3日に出願された米国仮出願第62/142,958号、2015年10月21日に出願された米国仮出願第62/244,653号、および2016年3月7日に出願された米国仮出願第62/304,915号の優先権を主張し、これらすべては、全体において本明細書に参照によって組み込まれる。
本発明は、AFPペプチドと複合体形成したMHC分子を特異的に結合する抗体構築物、ならびに疾患を処置および診断することを含むその使用に関する。
ASCIIテキストファイルでの以下の提出の内容は、その全体が参照によって本明細書に組み込まれる:コンピューター可読形態(CRF)の配列表(ファイル名:750042000140SEQLIST.txt、データ記録:2016年4月1日、サイズ:65KB)。
本明細書で参照される全ての刊行物、特許、特許出願および公開された特許出願の開示は、それらの全体が参照によって本明細書に組み込まれる。
本明細書で使用する場合、「処置」または「処置する」は、臨床結果を含む有益なまたは所望の結果を得るためのアプローチである。本発明の目的のために、有益なまたは所望の臨床結果には、以下のうち1または複数が含まれるがこれらに限定されない:疾患から生じる1もしくは複数の症状を軽減すること、疾患の程度を弱めること、疾患を安定化すること(例えば、疾患の悪化を防止もしくは遅延させること)、疾患の拡散(例えば、転移)を防止もしくは遅延させること、疾患の再発を防止もしくは遅延させること、疾患の進行を遅延もしくは減速させること、疾患状態を緩和すること、疾患の寛解(部分的もしくは全体的)を提供すること、疾患を処置するために必要とされる1もしくは複数の他の薬物療法の用量を減少させること、疾患の進行を遅延させること、生活の質を増加もしくは改善すること、体重増加を増加させること、および/または生存期間を延長させること。がんの病理学的結果(例えば、腫瘍体積など)の低減もまた、「処置」によって包含される。本発明の方法は、処置のこれらの態様のうちいずれか1または複数を企図する。
一態様では、本発明は、AFPペプチドおよびMHCクラスIタンパク質を含む複合体(「AFP/MHCクラスI複合体」または「AMC」)に特異的に結合する抗体部分を含むAFP/MHCクラスI複合体特異的構築物(抗AMC構築物)を提供する。抗AMC構築物の特異性は、AMCに特異的に結合する抗AMC抗体部分、例えば、全長抗体またはその抗原結合断片に由来する。一部の実施形態では、AFPペプチドおよびMHCクラスIタンパク質を含む複合体に特異的に結合する部分(例えば、抗体部分)に対する言及は、a)全長AFP、遊離AFPペプチド、ペプチドに結合していないMHCクラスIタンパク質および非AFPペプチドに結合したMHCクラスIタンパク質の各々についてのその結合親和性の少なくとも約10(例えば、少なくとも約10、20、30、40、50、75、100、200、300、400、500、750、1000またはそれ超のいずれかを含む)倍である親和性;またはb)全長AFP、遊離AFPペプチド、ペプチドに結合していないMHCクラスIタンパク質および非AFPペプチドに結合したMHCクラスIタンパク質の各々への結合についてのそのKdの約1/10倍以下(例えば、約1/10、1/20、1/30、1/40、1/50、1/75、1/100、1/200、1/300、1/400、1/500、1/750、1/1000またはそれ未満のいずれか以下)のKdで、その部分がAMCに結合することを意味する。結合親和性は、当該分野で公知の方法、例えば、ELISA、蛍光活性化細胞分取(FACS)分析または放射性免疫沈降アッセイ(RIA)によって決定され得る。Kdは、当該分野で公知の方法、例えば、Biacore機器を利用する表面プラズモン共鳴(SPR)アッセイまたは、例えば、Sapidyne機器を利用する動的排除(kinetic exclusion)アッセイ(KinExA)などによって決定され得る。
抗AMC構築物は、AFPペプチドおよびMHCクラスIタンパク質を含む複合体に特異的に結合する抗AMC抗体部分を含む。
抗AMC構築物は、一部の実施形態では、抗AMC抗体部分を含む全長抗体(本明細書で「全長抗AMC抗体」とも呼ぶ)である。一部の実施形態では、全長抗体は、モノクローナル抗体である。
抗AMC構築物は、一部の実施形態では、抗AMC抗体部分および第2の結合部分(例えば、第2の抗原結合部分)を含む多特異的抗AMC分子を含む。一部の実施形態では、多特異的抗AMC分子は、抗AMC抗体部分および第2の抗原結合部分を含む。
多特異的抗AMC分子は、一部の実施形態では、抗AMC抗体部分を含む第1のscFvおよび第2のscFvを含むタンデムscFv(本明細書で「タンデムscFv多特異的抗AMC抗体」とも呼ぶ)である。一部の実施形態では、タンデムscFv多特異的抗AMC抗体は、少なくとも1つ(例えば、少なくとも約2、3、4、5またはそれ超のいずれか)のさらなるscFvをさらに含む。
抗AMC構築物は、一部の実施形態では、抗AMC抗体部分を含むキメラ抗原受容体(CAR)(本明細書で「抗AMC CAR」とも呼ぶ)である。抗AMC抗体部分を含むCARを含むCARエフェクター細胞(例えば、T細胞)(本明細書で「抗AMC CARエフェクター細胞」、例えば、「抗AMC CAR T細胞」とも呼ぶ)もまた提供される。
抗AMC構築物は、一部の実施形態では、エフェクター分子に結合された抗AMC抗体部分を含むイムノコンジュゲート(本明細書で「抗AMCイムノコンジュゲート」とも呼ぶ)を含む。一部の実施形態では、エフェクター分子は、細胞傷害性である、細胞増殖抑制性である、または他の方法でいくらかの治療利益を提供する、治療剤、例えば、がん治療剤である。一部の実施形態では、エフェクター分子は、直接的または間接的のいずれかで検出可能なシグナルを生成し得る標識である。
抗AMC構築物または抗AMC抗体部分をコードする核酸分子もまた企図される。一部の実施形態では、全長抗AMC抗体をコードする核酸(または核酸のセット)が提供される。一部の実施形態では、多特異的抗AMC分子(例えば、多特異的抗AMC抗体、二重特異的抗AMC抗体または二重特異的T細胞エンゲージャー抗AMC抗体)またはそのポリペプチドの一部分(polypeptide portion)をコードする核酸(または核酸のセット)が提供される。一部の実施形態では、抗AMC CARをコードする核酸(または核酸のセット)が提供される。一部の実施形態では、抗AMCイムノコンジュゲートまたはそのポリペプチドの一部分をコードする核酸(または核酸のセット)が提供される。
アルファ−フェトプロテイン(AFP、α−フェトプロテイン;アルファ−1−フェトプロテイン、アルファ−フェトグロブリン(alpha−fetoglobulin)またはアルファ胎児タンパク質とも呼ぶ)は、ヒトにおいてAFP遺伝子によってコードされる591アミノ酸の糖タンパク質である。AFP遺伝子は、第4染色体のq腕(4q25)上に位置する。AFPは、胎児発生の間に卵黄嚢および肝臓によって産生される主要な血漿タンパク質である。AFPは、血清アルブミンの胎児形態であると考えられる。AFPは、銅、ニッケル、脂肪酸およびビリルビンに結合し、モノマー、ダイマーおよびトリマー形態で見出される。AFPは、ヒト胎児において見出される最も豊富な血漿タンパク質である。血漿レベルは、出生後に急速に減少するが、第1三半期の最後に始まって出生前に減少し始める。正常な成体レベルは、8〜12カ月齢までに通常は達成される。成体ヒトにおけるAFPの機能は未知である;しかし、げっ歯類では、AFPは、エストラジオールに結合して、胎盤を横切った胎児へのこのホルモンの輸送を防止する。AFPの主な機能は、雌性胎児の男性化を防止することである。ヒトAFPはエストロゲンを結合しないので、ヒトにおけるその機能はあまり明らかではない。
抗AMC抗体および抗AMC抗体部分の調製
抗AMC抗体または抗体部分は、ヒト化抗体またはヒト抗体であり得る。非ヒト(例えば、マウス)抗体のヒト化形態は、典型的には非ヒト免疫グロブリンに由来する最小配列を含む、キメラ免疫グロブリン、免疫グロブリン鎖、またはそれらの断片(例えば、Fv、Fab、Fab’、F(ab’)2、scFvまたは抗体の他の抗原結合サブ配列)である。ヒト化抗体は、レシピエントのCDR由来の残基が、所望の特異性、親和性および能力を有する非ヒト種(ドナー抗体)、例えば、マウス、ラットまたはウサギのCDR由来の残基によって置き換えられた、ヒト免疫グロブリン(レシピエント抗体)を含む。一部の例では、ヒト免疫グロブリンのFvフレームワーク残基は、対応する非ヒト残基によって置き換えられる。ヒト化抗体は、レシピエント抗体中またはインポートされたCDRもしくはフレームワーク配列中のいずれにも見出されない残基もまた含み得る。一般に、ヒト化抗体は、少なくとも1つ、典型的には2つの可変ドメインの実質的に全てを含み得、ここで、CDR領域の全てまたは実質的に全ては、非ヒト免疫グロブリンのものと対応し、FR領域の全てまたは実質的に全ては、ヒト免疫グロブリンコンセンサス配列のものである。一部の実施形態では、ヒト化抗体は、免疫グロブリン定常領域の少なくとも一部分(Fc)、典型的にはヒト免疫グロブリンのものを含む。例えば、Jonesら、Nature、321巻:522〜525頁(1986年);Riechmannら、Nature、332巻:323〜329頁(1988年);Presta、Curr. Op. Struct. Biol.、2巻:593〜596頁(1992年)を参照のこと。
一部の実施形態では、抗AMC構築物は、多特異的抗体である。多特異的(例えば、二重特異的)抗体を作製するための適切な方法は、当該分野で周知である。例えば、二重特異的抗体の産生は、2つの免疫グロブリン重鎖/軽鎖対の共発現に基づき得、このとき、これら2つの対は各々、異なる特異性を有し、会合によりヘテロダイマー抗体を生じる(例えば、MilsteinおよびCuello、Nature、305巻:537〜539頁(1983年);WO93/08829、ならびにTrauneckerら、EMBO J. 10巻:3655頁(1991年)を参照のこと)。免疫グロブリン重鎖および軽鎖のランダムな仕分けに起因して、これらのハイブリドーマ(クアドローマ)は、10種の異なる抗体分子の潜在的な混合物を産生するが、そのうち1つだけが正しい二重特異的構造を有する。正しい分子の精製は、アフィニティクロマトグラフィーステップによって通常達成される。類似の手順は、WO93/08829およびTrauneckerら、EMBO、10巻:3655〜3659頁(1991年)中に開示されている。あるいは、重鎖および軽鎖の組み合わせは、種限定的な対形成を利用することによって方向づけされ得(can be directed)(例えば、Lindhoferら、J. Immunol.、155巻:219〜225頁(1995年)を参照のこと)、重鎖の対形成は、CH3ドメインの「ノブ−イントゥ−ホール」操作の使用によって方向づけされ得る(例えば、米国特許第5,731,168号;Ridgwayら、Protein Eng.、9巻(7号):617〜621頁(1996年)を参照のこと)。多特異的抗体は、抗体Fcヘテロダイマー分子を作製するために静電ステアリング効果(electrostatic steering effect)を操作することによっても作製され得る(例えば、WO2009/089004A1を参照のこと)。さらに別の方法では、安定な二重特異的抗体は、制御されたFab腕交換によって生成され得、このとき、別個の抗原特異性およびCH3ドメイン中の一致した点変異を有する2つの親抗体が、還元条件において混合され、高度に純粋な二重特異的抗体を形成するための、分離、再アセンブリおよび再酸化が可能となる。Labriginら、Proc. Natl. Acad. Sci.、110巻(13号):5145〜5150頁(2013年)。重鎖/軽鎖対の混合物を含むかかる抗体は、本明細書で「ヘテロマルチマー抗体」とも呼ばれる。
一部の実施形態では、本明細書で提供される抗体のアミノ酸配列バリアントが企図される。例えば、抗体の結合親和性および/または他の生物学的特性を改善することが望まれ得る。抗体のアミノ酸配列バリアントは、抗体をコードするヌクレオチド配列中に適切な改変を導入することによって、またはペプチド合成によって調製され得る。かかる改変には、例えば、抗体のアミノ酸配列からの欠失、および/またはかかるアミノ酸配列中への挿入、および/またはかかるアミノ酸配列内の残基の置換が含まれる。最終構築物が所望の特徴、例えば、抗原結合性を有することを条件として、欠失、挿入および置換の任意の組合せが、最終構築物に到達するために作製され得る。
a.疎水性:ノルロイシン、Met、Ala、Val、Leu、Ile;
b.中性親水性:Cys、Ser、Thr、Asn、Gln;
c.酸性:Asp、Glu;
d.塩基性:His、Lys、Arg;
e.鎖配向に影響を与える残基:Gly、Pro;
f.芳香族:Trp、Tyr、Phe。
一部の実施形態では、1または複数のアミノ酸改変が、本明細書で提供される全長抗AMC抗体のFc領域中に導入され得、それによってFc領域バリアントを生成する。一部の実施形態では、Fc領域バリアントは、Fc受容体(FcR)への結合と関連する場合が多い、増強された抗体依存性細胞性細胞傷害(ADCC)エフェクター機能を有する。一部の実施形態では、Fc領域バリアントは、減少したADCCエフェクター機能を有する。エフェクター機能を変更し得る、Fc配列に対する変化または変異の多くの例が存在する。例えば、WO00/42072およびShieldsら J Biol. Chem. 9巻(2号):6591〜6604頁(2001年)は、FcRへの改善されたまたは弱められた結合を有する抗体バリアントを記載している。これらの刊行物の内容は、参照によって本明細書に具体的に組み込まれる。
一部の実施形態では、本明細書で提供される抗AMC構築物は、抗AMC構築物がグリコシル化される程度を増加または減少させるように変更される。抗AMC構築物へのグリコシル化部位の付加または欠失は、1または複数のグリコシル化部位が作り出されるまたは除去されるように、抗AMC構築物またはそのポリペプチドの一部分のアミノ酸配列を変更させることによって簡便に達成され得る。
一部の実施形態では、1または複数のアミノ酸残基がシステイン残基で置換されたシステイン操作された抗AMC構築物(例えば、全長抗AMC抗体)を作り出すことが望まれ得る。一部の実施形態では、置換された残基は、抗AMC構築物のアクセス可能な部位に存在する。これらの残基をシステインで置換することによって、反応性チオール基が、抗AMC構築物のアクセス可能な部位に置かれ、本明細書にさらに記載される抗AMCイムノコンジュゲートを作り出すために、抗AMC構築物を他の部分、例えば、薬物部分またはリンカー−薬物部分に結合体化するために使用され得る。システイン操作された抗AMC構築物(例えば、全長抗AMC抗体)は、例えば米国特許第7,521,541号に記載されるように生成され得る。
一部の実施形態では、本明細書で提供される抗AMC構築物は、当該分野で公知であり容易に入手可能なさらなる非タンパク質性部分を含むように、さらに改変され得る。抗AMC構築物の誘導体化に適切な部分には、水溶性ポリマーが含まれるがこれらに限定されない。水溶性ポリマーの非限定的な例には、ポリエチレングリコール(PEG)、エチレングリコール/プロピレングリコールのコポリマー、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリ−1,3−ジオキソラン、ポリ−1,3,6−トリオキサン、エチレン/無水マレイン酸コポリマー、ポリアミノ酸(ホモポリマーまたはランダムコポリマーのいずれか)、およびデキストランまたはポリ(n−ビニルピロリドン)ポリエチレングリコール、プロプロピレングリコール(propropylene glycol)ホモポリマー、ポリプロピレンオキシド(prolypropylene oxide)/エチレンオキシドコポリマー、ポリオキシエチル化ポリオール(例えば、グリセロール)、ポリビニルアルコール、ならびにそれらの混合物が含まれるがこれらに限定されない。ポリエチレングリコールプロピオンアルデヒドは、水中でのその安定性に起因して、製造における利点を有し得る。ポリマーは、任意の分子量のものであり得、分岐鎖または非分岐鎖であり得る。抗AMC構築物に結合したポリマーの数は変動し得、1よりも多いポリマーが結合される場合、それらは同じまたは異なる分子であり得る。一般に、誘導体化に使用されるポリマーの数および/または型は、改善すべき抗AMC構築物の特定の特性または機能、抗AMC構築物誘導体が規定された条件下で治療に使用されるかどうかなどが含まれるがこれらに限定されない考慮事項に基づいて決定され得る。
本発明は、一態様では、抗AMC CARを発現するエフェクター細胞(例えば、リンパ球、例えば、T細胞)を提供する。抗AMC CARを発現するエフェクター細胞(例えば、T細胞)(抗AMC CARエフェクター細胞、例えば、抗AMC CAR T細胞)を調製する例示的な方法は、本明細書に提供される。
抗AMCイムノコンジュゲートは、当該分野で公知の任意の方法を使用して調製され得る。例えば、それらの全体が本明細書に参照によって組み込まれるWO2009/067800、WO2011/133886および米国特許出願公開第2014322129号を参照のこと。
抗AMC構築物を含む組成物(例えば、医薬組成物、本明細書で製剤とも呼ぶ)もまた、本明細書で提供される。一部の実施形態では、組成物は、抗AMC構築物と会合した細胞(例えば、エフェクター細胞、例えば、T細胞)をさらに含む。一部の実施形態では、抗AMC構築物および薬学的に許容されるキャリアを含む医薬組成物が提供される。一部の実施形態では、医薬組成物は、抗AMC構築物と会合した細胞(例えば、エフェクター細胞、例えば、T細胞)をさらに含む。
本発明の抗AMC構築物および/または組成物は、例えば、がん(例えば、肝細胞癌、胚細胞腫瘍、および乳がん)を含む、異常に高いAFP発現を伴う疾患および/または障害(本明細書では「AFP陽性」疾患または障害とも称される)を処置するために、個体(例えば、ヒトなどの哺乳動物)に投与することができる。したがって、本出願は、一部の実施形態では、個体におけるAFP陽性疾患(例えばがん)を処置する方法であって、個体に、有効量の、本明細書に記載の抗AMC構築物のいずれか1つなどの、抗AMC抗体部分を含む抗AMC構築物を含む組成物(例えば、医薬組成物)を投与するステップを含む方法を提供する。一部の実施形態では、組成物は、抗AMC構築物と会合した細胞(例えば、エフェクター細胞)をさらに含む。一部の実施形態では、がんは、例えば、肝細胞癌、胚細胞腫瘍、および乳がんからなる群から選択される。一部の実施形態では、がんは、肝細胞癌である。一部の実施形態では、がんは、肝細胞癌であり、処置は、がんの拡散を防止すること、例えば、がんの転移を阻害すること(例えば、防止すること)を含む。一部の実施形態では、がんは、転移性肝細胞癌である。一部の実施形態では、個体は、ヒトである。
個体(例えば、ヒト)に投与される抗AMC構築物組成物の用量は、特定の組成物、投与形式、および処置される疾患の型によって変動し得る。一部の実施形態では、組成物の量は、目的の応答(例えば、部分奏効または完全奏効)をもたらすために有効な量である。一部の実施形態では、抗AMC構築物組成物の量は、個体における完全奏効をもたらすために十分である。一部の実施形態では、抗AMC構築物組成物の量は、個体における部分奏効をもたらすために十分である。一部の実施形態では、投与される抗AMC構築物組成物の量(例えば単独で投与した場合)は、抗AMC構築物組成物を用いて処置された個体の集団の中で、約20%、約25%、約30%、約35%、約40%、約45%、約50%、約55%、約60%、約64%、約65%、約70%、約75%、約80%、約85%、または約90%のいずれかを超える全体の奏効率をもたらすために十分である。本明細書に記載の方法の処置に対する個体の応答は、例えば、RECISTレベルに基づいて決定することができる。
本出願は、エフェクター細胞(例えば、一次T細胞)の特異性を、AFPペプチドおよびMHCクラスIタンパク質を含む複合体に再指向するための、抗AMC CARの使用方法も提供する。したがって、本発明は、哺乳動物においてAMCを提示している細胞を含む標的細胞集団または組織に対するエフェクター細胞媒介性応答(例えば、T細胞性免疫応答)を刺激する方法であって、哺乳動物に、抗AMC CARを発現するエフェクター細胞(例えば、T細胞)を投与するステップを含む方法も提供する。
一部の実施形態では、抗AMC構築物および抗AMC CAR細胞は、がんを処置するために有用であり得る。本明細書に記載の方法のいずれかを使用して処置することができるがんは、血管化していないまたはまだ実質的には血管化していない腫瘍、ならびに血管化した腫瘍を含む。がんは、非固形腫瘍(例えば、血液腫瘍、例えば、白血病およびリンパ腫)を含み得る、または固形腫瘍を含み得る。本発明の抗AMC構築物および抗AMC CAR細胞を用いて処置されるがんの型としては、これらに限定されないが、癌(carcinoma)、芽細胞腫、および肉腫、ならびにある特定の白血病またはリンパ系悪性腫瘍、良性腫瘍および悪性腫瘍(malignant tumor)、ならびに悪性腫瘍(malignancy)、例えば、肉腫、癌、および黒色腫が挙げられる。成人腫瘍/がんおよび小児腫瘍/がんも含まれる。
抗AMC構築物を使用した診断および画像化のための方法
本発明の一部の実施形態では、その表面上にAMCを提示する細胞に抗AMC構築物を送達するため、または個体におけるAMCを提示する細胞を単離または検出するための、がん(例えば、肝細胞癌、胚細胞腫瘍、または乳がん)などのAFP陽性疾患の処置に有用な材料を含有する製造物品が提供される。製造物品は、容器、および、容器上のまたは容器に付随する標識または添付文書を含み得る。適切な容器としては、例えば、ビン、バイアル、シリンジなどが挙げられる。容器は、ガラスまたはプラスチックなどの種々の材料から形成されたものであってよい。一般に、容器は、本明細書に記載の疾患または障害の処置に有効である組成物を保持し、滅菌アクセスポートを有し得る(例えば、容器は、静脈内溶液バッグまたは皮下注射針で穴をあけることができる止め栓を有するバイアルであってよい)。組成物中の少なくとも1つの活性剤は、本発明の抗AMC構築物である。標識または添付文書は、組成物が特定の状態を処置するために使用されるものであることを示す。標識または添付文書は、抗AMC構築物組成物の患者への投与に関する指示をさらに含む。本明細書に記載のコンビナトリアル治療を含む製造物品およびキットも意図される。
実施形態1.一部の実施形態では、アルファ−フェトプロテイン(AFP)ペプチドおよび主要組織適合(major histocompatibility)(MHC)クラスIタンパク質を含む複合体(AFP/MHCクラスI複合体またはAMC)に特異的に結合する抗体部分を含む、単離された抗AMC構築物が提供される。
i)G−F/Y−S/T−F−D/S/T−D/N/S−Y/A−A/G/W(配列番号87)のアミノ酸配列を含む重鎖相補性決定領域(HC−CDR)1、または最大で約3アミノ酸の置換を含むそのバリアント、I/S−K/S−X−H/Y−X−G−X−T(配列番号88)のアミノ酸配列を含むHC−CDR2、または最大で約3アミノ酸の置換を含むそのバリアント、およびA/G−X−W/Y−Y−X−X−X−F/Y−D(配列番号89)のアミノ酸配列を含むHC−CDR3;または最大で約3アミノ酸の置換を含むそのバリアントを含む重鎖可変ドメイン;ならびに
ii)S/T−G/S−D/N−I/V−A/G−A/S/V−X−H/Y(配列番号120)のアミノ酸配列を含む軽鎖相補性決定領域(LC−CDR)1、または最大で約3アミノ酸の置換を含むそのバリアント、およびQ−S/T−Y/W−D/T−S/T−A/S(配列番号121)のアミノ酸配列を含むLC−CDR3;または最大で3アミノ酸の置換を含むそのバリアントを含む軽鎖可変ドメイン
を含み、Xは任意のアミノ酸であり得る。
i)配列番号57〜66のいずれか1つのアミノ酸配列を含むHC−CDR1、または最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアント、配列番号67〜76のいずれか1つのアミノ酸配列を含むHC−CDR2、または最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアント、および配列番号77〜86のいずれか1つのアミノ酸配列を含むHC−CDR3;または最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアントを含む重鎖可変ドメイン;ならびに
ii)配列番号90〜99のいずれか1つのアミノ酸配列を含むLC−CDR1、または最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアント、配列番号100〜109のいずれか1つのアミノ酸配列を含むLC−CDR2、または最大で約3アミノ酸の置換を含むそのバリアント、および配列番号110〜119のいずれか1つのアミノ酸配列を含むLC−CDR3;または最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアントを含む軽鎖可変ドメイン
を含む。
i)配列番号57〜66のいずれか1つのアミノ酸配列を含むHC−CDR1、配列番号67〜76のいずれか1つのアミノ酸配列を含むHC−CDR2、および配列番号77〜86のいずれか1つのアミノ酸配列を含むHC−CDR3;またはHC−CDR領域内に最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアントを含む重鎖(HC)可変ドメイン;ならびに
ii)配列番号90〜99のいずれか1つのアミノ酸配列を含むLC−CDR1、配列番号100〜109のいずれか1つのアミノ酸配列を含むLC−CDR2、および配列番号110〜119のいずれか1つのアミノ酸配列を含むLC−CDR3;またはLC−CDR領域内に最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアントを含む軽鎖(LC)可変ドメイン
を含む。
a)有効量の実施形態40に記載の単離された抗AMC構築物を個体に投与するステップ;および
b)個体における標識のレベルを決定するステップであって、閾値レベルを上回る標識のレベルは、個体がAFP陽性疾患を有することを示す、ステップ
を含む方法が提供される。
a)個体に由来する試料を、実施形態40に記載の単離された抗AMC構築物と接触させるステップ;および
b)試料中の、単離された抗AMC構築物と結合した細胞の数を決定するステップであって、閾値レベルを上回る、単離された抗AMC構築物と結合した細胞の数の値は、個体がAFP陽性疾患を有することを示す、ステップ
を含む方法が提供される。
細胞試料、細胞株、および抗体
細胞株HepG2、SK−Hep1、MCF7、Malme−3M、CA46、THP−1、Colo205、ASPC1、OVCAR3、LnCAP、A498およびHelaは、American Type Culture Collectionから入手した。SK−Hep1−MiniG(またはSK−Hep1 AFP MG)、MCF7−MiniGおよびHela−MiniG(またはHela−MG)は、それぞれの親細胞株に、SK−Hep1細胞およびMCF7細胞におけるAFP158/HLA−A*02:01複合体の高レベルの細胞表面発現をもたらすAFP158ペプチド発現ミニ遺伝子カセットを形質導入することによって生成した。Helaは、HLA−A03陽性およびHLA−A68陽性ならびにHLA*A02:01陰性であり、したがって、Hela−MiniGは、AFP158ミニ遺伝子発現性であるが、AFP158/HLA*A02:01陰性である対照細胞株としての機能を果たした。細胞株を、10%FBS、2mMのグルタミンを補充したRPMI1640中、37℃/5%CO2で培養した。
ビオチン化AFP158/HLA−A*02:01複合体単量体の作製
ビオチン化AFP158/HLA−A*02:01複合体単量体を標準のプロトコールに従って調製した(Altman, J.D.およびDavis、M.M.、Current Protocols in Immunology、17.3.1〜17.3.33、2003年)。簡単に述べると、全長ヒトβ−2ミクログロブリン(β2M)をコードするDNAをGenewizで合成し、ベクターpET−27bにクローニングした。BirA基質ペプチド(BSP)をHLA−A*02:01細胞外ドメイン(ECD)のC末端に付加した。HLA−A*02:01 ECD−BSPをコードするDNAも同様にGenewizで合成し、ベクターpET−27bにクローニングした。ヒトβ2Mを発現するベクターおよびHLA−A*02:01 ECD−BSPを発現するベクターを別々にE.coli BL21細胞中に形質転換し、細菌培養物から封入体として単離した。ペプチドリガンドAFP158を、ヒトβ2MおよびHLA−A*02:01 ECD−BSPを用いてリフォールディングして、AFP158/HLA−A*02:01複合体単量体を形成した。フォールディングされたペプチド/HLA−A*02:01単量体を限外濾過によって濃縮し、サイズ排除クロマトグラフィーによってさらに精製した。HiPrep26/60 Sephacryl S−300HRを、1.5カラム体積のHyclone Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline solution(Thermo Scientific、カタログ番号.SH3002802)を用いて平衡化した。未精製の試料をローディングし、1カラム体積を用いて溶出した。ミスフォールディングされた凝集体に対応する第1のピークは、およそ111.3mLにおいて溶出し、適正にフォールディングされたMHC複合体に対応するピークは212.5mLにおいて観察され、遊離のβ2Mに対応するピークは267.2mLにおいて観察された(図1)。精製されたAFP158/MHC複合体のSDS−PAGEを実施してタンパク質の純度を決定した。簡単に述べると、タンパク質複合体1μgをNuPAGE LDS Sample Buffer(Life Technologies、NP0008)2.5μLと混合し、脱イオン水を用いて10μLまでにした。試料を70℃で10分間加熱し、次いで、ゲル上にローディングした。ゲル電気泳動を180Vで1時間実施した。HLA−A*02:01サブユニットおよびβ2Mサブユニットがゲル上の主要なバンドとして観察された(図2)。ペプチド/HLA−A*02:01単量体をBirA媒介性酵素反応によってビオチン化し、その後、高分解能陰イオン交換クロマトグラフィーによって精製した。ビオチン化ペプチド/HLA−A*02:01単量体をPBS中、−80℃で保管した。
AFP158/HLA−A*02:01複合体に特異的なscFvの選択および特徴付け。
Eureka Therapeuticsにより構築されたヒトscFv抗体ファージディスプレイライブラリー(多様性=10×1010)のコレクションを、AFP158/HLA−A*02:01に特異的なヒトmAbの選択に使用した。15種の完全ヒトファージscFvライブラリーを使用してAFP158/HLA−A*02:01複合体に対してパニングした。タンパク質複合体をプラスチック表面上に固定することによって導入したMHC1複合体のコンフォメーションの変化を低減させるために、従来のプレートパニングの代わりに溶液パニングおよび細胞パニングを使用した。溶液パニングでは、まず、ビオチン化抗原を、PBS緩衝液での広範な洗浄後にヒトscFvファージライブラリーと混合し、次いで、抗原−scFv抗体ファージ複合体を、ストレプトアビジンとコンジュゲートしたDynabeads M−280により、磁気ラックを通じてプルダウンした。次いで、結合したクローンを溶出させ、E.coli XL1−Blue細胞への感染に使用した。細胞パニングでは、まず、AFP158ペプチドを負荷したT2細胞をヒトscFvファージライブラリーと混合した。T2細胞は、TAP欠損HLA−A*02:01+リンパ芽球細胞株である。ペプチドを負荷するために、T2細胞を、無血清RPMI1640培地中ペプチド(50μg/ml)用い、20μg/mlのβ2Mの存在下で一晩パルスした。PBSを用いて広範に洗浄した後、scFv抗体ファージが結合した、ペプチドを負荷したT2細胞を遠心沈澱させた。次いで、結合したクローンを溶出させ、E.coli XL1−Blue細胞への感染に使用した。次いで、細菌において発現させたファージクローンを精製した。溶液パニング、細胞パニングまたは溶液パニングと細胞パニングとの組合せのいずれかを用いてパニングを3〜4ラウンド実施して、AFP158/HLA−A*02:01を特異的に結合したscFvファージクローンを富化させた。
FACS陽性AFP158特異的ファージクローンの特徴付け
マウスAFP158ペプチドに対する交差反応性
AFP158を負荷したT2細胞に対するFACS結合分析から選択されたクローンを、生細胞表面上のマウスAFP158ペプチド/HLA−A*02:01複合体に対する交差反応性について、マウスAFP158を負荷した生T2細胞を使用したFACS分析によってさらに特徴付けた。マウスAFP158ペプチドは、ヒトAFP158ペプチドとは、4位および9位の2つのアミノ酸により異なる。マウスAFP158ペプチド配列はFMNRFIYEV(配列番号16)であり、一方、ヒトAFP158ペプチド配列はFMNKFIYEI(配列番号4)である。ヒトAFP158ペプチド/MHC複合体およびマウスAFP158ペプチド/MHC複合体の両方と交差反応性の抗体は、HLA−A*02:01トランスジェニックマウスにおける抗体薬物毒性の評価に有用である。試験したファージクローンの中で、4種のクローン(番号17、番号33、番号48および番号76)がヒトAFP158を負荷したT2細胞およびマウスAFP158を負荷したT2細胞の両方を認識した(図5)。クローン番号52および番号79もマウスAFP158を負荷したT2細胞に結合したが、程度がより劣った。
mAb認識に関するエピトープを正確に調査するために、1位、3位、4位、5位、6位、7位および8位にアラニン置換を伴うヒトAFP158ペプチド(配列番号7〜13)をT2細胞上にパルスした。次いで、抗体ファージクローンを、これらのペプチドを負荷したT2細胞への結合についてFACS分析によって試験した。全ての抗体が、AFP158ペプチドおよびその周囲のMHCα鎖残基によって形成される小さなコンフォメーショナルエピトープを認識したが、異なる抗体と相互作用する重要なペプチド残基は全く異なった。例えば、クローン番号52は、1位または3位におけるアラニン置換によりペプチドを負荷したT2細胞への結合が劇的に低減し、4位におけるアラニン置換によりクローン番号52の結合が完全に抑止されたので、AFP158ペプチドのN末端側半分に結合することが予測される。対照的に、5位、6位、7位または8位におけるアラニン置換によってクローン番号52の結合は変化しなかった。他方では、クローン番号17−13は、4位におけるアラニン置換に対しては非感受性であったが、3位、5位および7位における変化に対しては感受性であった。図6は、種々のAFPペプチドを負荷したT2細胞へのファージクローン番号52の結合を示す、FACS分析の例を提供する。表6は、いくつかのAFP158/HLA−A*02:01特異的抗体クローンの、アラニン置換された、ヒトAFP158ペプチドを負荷したT2細胞への結合を要約するものである。
平均して、ヒトの体内の有核細胞はそれぞれ、50万種の異なるペプチド/MHCクラスI複合体を発現する。抗ペプチド/MHCI−複合体抗体を高い特異性および治療指数を有する抗がん薬に発展させるためには、抗体が標的ペプチド/MHCI複合体を特異的に認識するが、MHCI分子自体または細胞表面上に提示された他のペプチドと結合したMHCI分子は認識しないことが必須である。本研究に関して、関連するMHCI分子は、HLA−A*02:01である。本発明者らのファージパニングおよびスクリーニングの初期段階の間に、本発明者らは、HLA−A*02:01分子単体に結合した抗体を排除した(例えば、図3および4を参照されたい)。上位のファージクローンは、例えばグロビンα鎖、β鎖、核タンパク質p68などの、複数の型の有核ヒト細胞において通常発現するタンパク質に由来するものである19種の内在性HLA−A*02:01ペプチドに対してもスクリーニングした。内在性ペプチド(P19、配列番号122〜140)のプールをT2細胞に負荷し、抗体結合をFACS分析によって決定した。図7に示されている通り、AFP158/HLA−A*02:01特異的抗体ファージクローンは、AFP158ペプチドを負荷したT2細胞を結合したが、内在性ペプチドを負荷したT2細胞を結合しなかった。本発明者らは、同定された抗体はAFP158ペプチド/HLA−A*02:01複合体に特異的であり、試験した他のHLA−A*02:01ペプチドに結合したHLA−A*02:01分子は認識しないと結論づけた。
二重特異的抗体の工学的作製
二重特異的抗体(BsAb)を、AFP158/HLA−A*02:01特異的ファージクローンのscFv配列を使用して生成した。BsAbは、N末端にAFP158/HLA−A*02:01特異的ファージクローンのscFv配列を含み、C末端に抗ヒトCD3εマウスモノクローナルscFvを含む単鎖二重特異的抗体である(Brischwein, K.ら、Mol. Immunol.、43巻:1129〜1143頁、2006年)。AFP158 scFvをコードするDNA断片および抗ヒトCD3ε scFvをコードするDNA断片を、Genewizで合成し、標準のDNA技術を使用してEurekaの哺乳動物発現ベクターpGSN−Hygにサブクローニングした。抗体の精製および検出のためにヘキサヒスタミンタグ(hexhistamine tag)をC末端に挿入した。チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞にBsAb発現ベクターをトランスフェクトし、次いで、BsAb抗体産生のために7日間培養した。分泌されたAFP158 BsAb分子を含有するCHO細胞上清を収集した。BsAb抗体を、HisTrap HPカラム(GE Healthcare)を使用し、FPLC AKTAシステムによって精製した。簡単に述べると、CHO細胞培養物を清澄化し、低イミダゾール濃度(20mM)を有するカラムにローディングし、次いで、均一溶媒の(isocratic)高イミダゾール濃度溶出緩衝液(500mM)を使用して、結合したBsAbタンパク質を溶出した。精製されたAFP158 BsAb抗体の分子量を非還元条件下でゲル電気泳動によって測定した。タンパク質4μgをNuPAGE LDS Sample Buffer(Life Technologies、NP0008)2.5μLと混合し、脱イオン水を用いて10μLまでにした。試料を70℃で10分間加熱し、次いで、ゲル上にローディングした。ゲル電気泳動を180Vで1時間実施した。約50KDのバンドがゲル上の主要なバンドとして観察される(図8)。抗体凝集をサイズ排除クロマトグラフィー(SEC)によって評価した。試料50μLをSECカラム(Agilent、BioSEC−3,300A、4.6x300mm)に注入し、それと同時に、pH7.0に調整した、ダルベッコリン酸緩衝食塩水(Fisher Scientific、SH30028.FS)および0.2Mのアルギニンからなる緩衝液を流した。BsAbが保持時間約15.8mLにおいて主要なピークとして観察された(図9)。高分子量凝集が10%未満のBsAbをさらなる特徴付けに使用した。
AFP158 BsAb抗体の特徴付け
AFP158 BsAb抗体の結合親和性
組換えAFP158/HLA−A*02:01複合体に対するAFP158 BsAb抗体の結合親和性をSurface Plasma Resonance(BiaCore)によって測定した。AFP158 BsAbとAFP158/HLA−A*02:01複合体との間の結合パラメーターを、Biacore X100(GE Healthcare)においてHis Capture Kit(GE Healthcare、カタログ番号28995056)を使用し、多サイクルカイネティクス測定に関する製造者のプロトコールに従って測定した。アッセイに使用したタンパク質は全てHBS−E緩衝液を使用して希釈した。簡単に述べると、1μg/mLのAFP158 BsAbを、抗ヒスチジン抗体を用いて予め官能性をもたせたセンサーチップ上に、溶液をフローセル2を通して毎分2μLで2分間流すことによって固定した。AFP158/A*02:01複合体に対する結合を0.19μg/mL、0.38μg/mL、7.5μg/mL、15μg/mL、および30μg/mLにおいて分析し、各実行は毎分30μLで3分間の会合と3分間の解離からなった。サイクルの最後に、His Capture Kitからの再生緩衝液を使用して表面を再生した。カイネティクス測定の後に、キットからの再生溶液を使用して表面を再生した。BiaCore X−100評価ソフトウェアを用い、1:1結合部位モードを使用してデータを解析した。結合パラメーター(会合速度定数ka、解離定数kd、および平衡解離定数Kd)を算出した。一価scFv形式でのAFP158抗体の結合親和性は、10〜500nMの範囲に入る(例が表7に提供される)。
腫瘍細胞傷害性をLDH Cytotoxicity Assay(Promega)によってアッセイした。AllCellsから購入したヒトT細胞を、CD3/CD28 Dynabeads(Invitrogen)を用い、製造者のプロトコールに従って活性化し、拡大増殖させた。活性化T細胞(ATC)を、10%FBSプラス100U/mlのIL−2を伴うRPMI1640培地中で培養し、維持し、7〜14日目に使用した。T細胞は、FACS分析により、99%超がCD3+であった。活性化T細胞(エフェクター細胞)および標的細胞を5:1の比で、種々の濃度のBsAb抗体とともに16時間共培養した。次いで、細胞傷害性を、培養上清におけるLDH活性を測定することによって決定した。
ヒトMHCI分子は、6種のクラスのアイソフォーム、HLA−A、HLA−B、HLA−C、HLA−E、HLA−F、およびHLA−Gからなる。HLA−A、HLA−B、およびHLA−Cの重鎖遺伝子は高度に多型である。各アイソフォームについて、HLA遺伝子は、重鎖配列の類似性に応じてさらに群分けされる。例えば、HLA−Aは、例えばHLA−A01、HLA−A02、HLA−A03などの異なる対立遺伝子に分けられる。HLA−A02対立遺伝子に関しては、例えばHLA−A02:01、HLA−A*02:02などの複数のサブタイプが存在する。HLA−A02群の異なるサブタイプの間で、配列の差異は、ほんの数アミノ酸に限られている。したがって、多くの場合、HLA−A*02:01分子に結合するペプチドは、HLA−A02対立遺伝子の複数のサブタイプとも複合体を形成し得る。表8(http://www.allelefrequencies.net/)に示されている通り、HLA−A*02:01は、白人の集団の間では優性HLA−A02サブタイプであるが、アジアおよびアフリカでは、A*02:03、A*02:05、A*02:06、A*02:07、およびA*02:11も一般的なHLA−A02サブタイプである。AFP158抗体の、HLA−A*02:01との関連でAFP158ペプチドだけでなく、HLA−A02の他のサブタイプも認識する能力により、AFP158抗体薬による処置が有益になり得る患者集団が広がる。したがって、本発明者らは、HLA−A02対立遺伝子の他のサブタイプを用いた組み換えAFP158/MHCI複合体を生成し、これらの他の複合体に対するAFP158/HLA−A*02:01特異的抗体の結合親和性を試験した。結合親和性は、ForteBio Octet QKを使用して決定した。5μg/mLの、ビオチン化した、種々のサブタイプのHLA−A02 MHC複合体をストレプトアビジンバイオセンサー上にローディングした。余剰の抗原を洗い流した後、BsAb抗体を10μg/mLで会合および解離について試験した。結合パラメーターを、1:1結合部位、部分的フィッティングモデルを使用して算出した。表9は、いくつかのAFP158 BsAbの、異なるサブタイプを用いた複数のAFP158/HLA−A02複合体についての結合親和性を示す。試験した抗体の全てが、HLA−A02対立遺伝子の複数のサブタイプと結合したAFP158を認識することが見出された。
AFP158/HLA−A*02:01特異的キメラ抗原受容体を提示するT細胞(CAR−T)の生成
キメラ抗原受容体療法(CAR−T療法)は、標的化免疫療法の新しい形態である。これは、モノクローナル抗体の精巧な標的化特異性を、細胞傷害性T細胞によりもたらされる強力な細胞傷害性および長期間持続と合体させる。この技術により、T細胞が内在性TCRとは独立して長期的な新規の抗原特異性を獲得することが可能になる。臨床試験により、神経芽細胞腫(Louis, C.U.ら、Blood、118巻(23号):6050〜6頁、2011年)、B−ALL(Maude, S.L.ら、N Engl J Med.、371巻(16号):1507〜1517頁、2014年)、CLL(Brentjens, R.J.ら、Blood.、118巻(18号):4817〜4828頁、2011年)、およびB細胞リンパ腫(Kochenderfer, J.N.ら、Blood.、116巻(20号):4099〜4102頁、2010年)におけるCAR−T療法の臨床的に有意な抗腫瘍活性が示されている。1つの研究では、CD19−CAR T療法を用いて処置されたB−ALLの患者30名において90%の完全寛解率が報告された(Maudeら、上記)。
AFP158 CAR−T細胞の特徴付け
CD4+およびCD8+一次T細胞において発現させたAFP158 CAR
末梢血リンパ球を健康なドナーから単離し、抗AFP158/HLA−A*02:01結合部分をコードするAFP158 CAR構築物を用いて形質導入した。形質導入の5日後、AFP158 CAR−T細胞および偽形質導入細胞を、AFP158四量体、およびCD3抗体、CD4抗体またはCD8抗体のうちの1つと共染色し、フローサイトメトリーによって分析した。図24は、AFP158 CARトランスフェクト細胞および偽トランスフェクト細胞についてのフローサイトメトリーの結果を示し、このことは、AFP158 CARがCD4+一次T細胞およびCD8+一次T細胞の両方で発現し得ることを示している。
CARの細胞表面分布が一様であるCAR−T細胞は、in vitroおよびin vivoにおいて、CARの細胞表面分布が一様でないCAR−T細胞よりも腫瘍細胞を効率的に死滅させ、殺滅後にそれほど消耗しないことが実証されている。CARの一様でない分布、例えば凝集などにより、抗原に依存しないCAR活性化、早発のT細胞消耗、およびin vivoにおける抗腫瘍活性なしがもたらされ得る。したがって、T細胞表面上でのCARの一様な分布が望ましい。T細胞膜上での抗AFP158/HLA−A*02:01 scFvを発現するCARの分布を決定するために、AFP158ペプチド−HLA−A2四量体−PEのコンジュゲートを使用して、上記のAFP158 CARを形質導入したT細胞を染色した。まず、一次ヒトCD3+T細胞を抗CD3およびCD28ビーズで活性化し、次いで、AFP158 CARレンチウイルスを用いて形質導入した。ウイルスによる形質導入の8日後に、AFP158 CARを形質導入したT細胞を、AFP158ペプチド−HLA−A2四量体−PEを2ng/mlで用い、タンパク質輸送阻害剤の存在下、室温で30分にわたって染色した。Olympus蛍光顕微鏡を使用して画像を取得した。本発明者らは、T細胞膜上でのAFP158 CARの分布が一様で滑らかであることを見出した。点状のCAR分布は認められなかった。代表的な画像を図26に示す。
AFP158/HLA−A*02:01特異的キメラ抗原受容体を含有するレンチウイルスを、293T細胞にCARベクターをトランスフェクトすることによって作製した。ヒトT細胞を、100U/mlのインターロイキン2の存在下、CD3/CD28ビーズ(Dynabeads(登録商標)、Invitrogen)を用いて1日刺激した後に、形質導入のために使用した。Retronectin(Takara)をコーティングした6ウェルプレートにおいて、72時間にわたり、濃縮したレンチウイルスをT細胞に適用した。形質導入T細胞(AFP158 CAR−T細胞)の機能的評価を、LDH Cytotoxicity Assayを使用して実施した。使用したエフェクターと標的との比は5:1であった。
AFP158 CARを形質導入したT細胞における生物学的活性をさらに特徴付けるために、本発明者らは、フローサイトメトリーアッセイを使用して、脱顆粒活性の評価基準としてCD107a表面発現を検出した。AFP158 CARを形質導入したT細胞を、HepG2、SK−Hep1、およびSK−Hep1−MiniG細胞と、抗CD107a抗体およびタンパク質輸送阻害剤カクテルの1:200希釈物(eBioscience)の存在下で4時間、共インキュベートした。標的細胞と共インキュベートした後、形質導入T細胞をAFP158/HLA四量体および抗CD8で染色した。四量体陽性CD8陽性T細胞における脱顆粒を図25に示す。Sk−Hep1−MiniG、その後HepG2と共インキュベートした際には、CD107a発現により測定される最高レベルの脱顆粒が観察されたが、親抗原陰性SK−HEP−1を用いた場合には脱顆粒は観察されなかった。これは、上記のT細胞媒介性細胞溶解のデータと一致する。
活性化AFP158 CAR−T細胞を用いて処置した際のサイトカイン放出プロファイルも試験した。T細胞を、偽形質導入するかまたは代表的なAFP158 CARを用いて形質導入し、示されている標的細胞と共インキュベートした。16時間後に、培地中へのIL−2、IL−4、IL−6、IL−8、IL−10、GM−CSF、IFN−γ、およびTNF−αの放出をMagpix multiplex system(Luminex)をBio−plex Pro Human Cytokine 8−plex Assay(BioRad)と共に使用して測定した。サイトカイン濃度を、検量線から、培地、標的細胞単独、およびAFP158 CARを形質導入したT細胞単独からの値を差し引いた後に決定した。図14Aおよび14Bに示されている通り、サイトカイン放出は、AFP158 CAR−T細胞をAFP158/HLA−A*02:01陽性細胞:SK−Hep1−MiniG、MCF7−MiniGおよびHepG2と共インキュベートした場合にのみ検出され、AFP158/HLA*A02:01陰性細胞:SK−Hep1およびMCF7と共インキュベートした場合には検出されなかった。AFP158 CAR−T細胞をSK−Hep1−MiniGに曝露した場合およびMCF7−MiniGに曝露した場合に、AFP158 CAR−T細胞は、はるかに高レベルのサイトカインを放出した。これは、AFP158ミニ遺伝子を形質導入したがん細胞が、HepG2よりもはるかに高レベルのAFP158/HLA*A02:01を細胞表面上に発現することと一致する。偽形質導入したT細胞では、AFP158/HLA*A02:01陽性がん細胞の存在下でのサイトカインの放出は、あったとしても痕跡量のみであった。偽形質導入(AFP陰性)SK−Hep1と共インキュベートした後のIL−6の放出は、それらの細胞における内在性IL−6発現に起因するものである(提示していないデータに基づく)。
AFP158 CAR−T細胞のin vivoにおける抗腫瘍活性を、SCID−beige免疫無防備マウスにおけるいくつかの確立されたヒトHCC異種移植モデルにおいて試験した。HepG2をマウス当たり細胞2.5×106個で右側腹部に皮下(s.c.)移植した。腫瘍体積が平均100mm3に達したら、マウスを、腫瘍体積に基づいて4つの群にランダム化した:1)無処置、2)偽形質導入した、ドナー適合T細胞を用いた静脈内(i.v.)処置(偽)、3)代表的なAFP158 CARを形質導入したT細胞を用いた静脈内(i.v.)処置、および4)AFP158 CARを形質導入したT細胞の腫瘍内(i.t.)注射。全ての処置を、マウス当たり細胞107個の用量で投与し、2週間ごとに繰り返して合計3用量投与した。
全長IgG1 AFP158抗体の生成および特徴付け
選択されたファージクローンの全長ヒトIgG1を、記載の通りHEK293細胞株およびチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞株において産生させた(Tomimatsu, K.ら、Biosci. Biotechnol. Biochem.、73巻(7号):1465〜1469頁、2009年)(データは示していない)。簡単に述べると、抗体可変領域を、適合するヒトラムダまたはカッパ軽鎖定常領域およびヒトIgG1定常領域配列と共に哺乳動物発現ベクターにサブクローニングした。同じクローニング戦略を適用して、本発明者らは、マウスIgG1重鎖および軽鎖定常領域を有するキメラAFP158全長抗体も生成した。精製された全長IgG抗体の分子量を還元条件下および非還元条件下の両方で電気泳動によって測定した。精製されたAFP158マウスキメラIgG1抗体のSDS−PAGEを実施してタンパク質の純度を決定した。簡単に述べると、タンパク質2μgをNuPAGE LDS Sample Buffer(Life Technologies、NP0008)2.5μLと混合し、脱イオン水を用いて10μLまでにした。試料を70℃で10分間加熱し、次いで、ゲル上にローディングした。ゲル電気泳動を180Vで1時間実施した。SDS−PAGEの例を図18に示す。
遠位SK−Hep1−MiniG s.c.異種移植モデルにおけるAFP158−CARTの有効性
実施例7では、AFP158 CAR T細胞を皮下(s.c.)肝腫瘍モデルに腫瘍内投与することにより、複数の異種移植モデルにおける処置された腫瘍の成長が有意に阻害されることが示された。この実施例において記載される研究の目的は、腫瘍内処置が遠位s.c.腫瘍の成長にも影響を与えるかを評価することであった。
AFP158−CARTは、本用量/スケジュールで安全である
図22に示されている通り、右側腹部のみに注射したAFP158−CARTの単回i.t.投薬により、右側腹部および左側腹部(AFP158−CAR T細胞を直接注射していない側)の両方に移植した腫瘍の有意な阻害がもたらされた。腫瘍の全体的な成長カイネティクスを反映する曲線下面積による分析から、AFP158−CARTを単独でi.t.注射することにより、右側腹部において42%の腫瘍成長阻害がもたらされ(ダネット検定、p<0.01)、左側腹部において33%の腫瘍成長阻害がもたらされる(p>0.05)ことが示された。
図22に示されている通り、AFP158−CARTプラスAPCをi.t.注射することにより、右側腹部腫瘍の退縮が引き起こされ、全体的な腫瘍阻害は、ビヒクル処置群と比較して68%であった(p<0.001)。それぞれのビヒクル処置群と比較して、遠位の左側腹部腫瘍のより強力な阻害も観察された(47%、p<0.01)。これにより、右側の腫瘍および左側の腫瘍の両方の追加的な阻害における、T細胞による交差プライミングの関与の可能性が示唆される。
研究終了のとき(投薬の34日後)に、腫瘍を回収し、CD3(T細胞マーカー)の組織学的染色を実施した。図23に示されている通り、AFP158−CARTプラスAPC細胞のi.t.注射から、右側の腫瘍および左側の腫瘍の両方においてCD3陽性細胞が見出された。これにより、腫瘍成長阻害におけるヒトT細胞の関与が示唆される。
Claims (34)
- アルファ−フェトプロテイン(AFP)ペプチドおよび主要組織適合(MHC)クラスIタンパク質を含む複合体(AFP/MHCクラスI複合体またはAMC)に特異的に結合する抗体部分を含む、単離された抗AMC構築物。
- 前記MHCクラスIタンパク質が、HLA−A02対立遺伝子のHLA−A*02:01サブタイプである、請求項1に記載の単離された抗AMC構築物。
- 前記AFPペプチドが、配列番号3〜13および16からなる群から選択されるアミノ酸配列を有する、請求項1または2に記載の単離された抗AMC構築物。
- 前記AFPペプチドが、FMNKFIYEI(配列番号4)のアミノ酸配列を有する、請求項3に記載の単離された抗AMC構築物。
- 前記抗体部分が、全長抗体、Fab、Fab’、(Fab’)2、Fvまたは単鎖Fv(scFv)である、請求項1から4のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物。
- 約0.1pM〜約500nMのKdで前記AFP/MHCクラスI複合体に結合する、請求項1から5のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物。
- 前記抗体部分が、
i)G−F/Y−S/T−F−D/S/T−D/N/S−Y/A−A/G/W(配列番号87)のアミノ酸配列を含む重鎖相補性決定領域(HC−CDR)1、または最大で約3アミノ酸の置換を含むそのバリアント、I/S−K/S−X−H/Y−X−G−X−T(配列番号88)のアミノ酸配列を含むHC−CDR2、または最大で約3アミノ酸の置換を含むそのバリアント、およびA/G−X−W/Y−Y−X−X−X−F/Y−D(配列番号89)のアミノ酸配列を含むHC−CDR3、または最大で約3アミノ酸の置換を含むそのバリアントを含む重鎖可変ドメイン;ならびに
ii)S/T−G/S−D/N−I/V−A/G−A/S/V−X−H/Y(配列番号120)のアミノ酸配列を含む軽鎖相補性決定領域(LC−CDR)1、または最大で約3アミノ酸の置換を含むそのバリアント、およびQ−S/T−Y/W−D/T−S/T−A/S(配列番号121)のアミノ酸配列を含むLC−CDR3、または最大で3アミノ酸の置換を含むそのバリアントを含む軽鎖可変ドメイン
を含み、Xは任意のアミノ酸であり得る、請求項1から6のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物。 - 前記抗体部分が、
i)配列番号57〜66のいずれか1つのアミノ酸配列を含むHC−CDR1、または最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアント、配列番号67〜76のいずれか1つのアミノ酸配列を含むHC−CDR2、または最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアント、および配列番号77〜86のいずれか1つのアミノ酸配列を含むHC−CDR3;または最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアントを含む重鎖可変ドメイン;ならびに
ii)配列番号90〜99のいずれか1つのアミノ酸配列を含むLC−CDR1、または最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアント、配列番号100〜109のいずれか1つのアミノ酸配列を含むLC−CDR2、または最大で約3アミノ酸の置換を含むそのバリアント、および配列番号110〜119のいずれか1つのアミノ酸配列を含むLC−CDR3;または最大で約5アミノ酸の置換を含むそのバリアントを含む軽鎖可変ドメイン
を含む、請求項1から6のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物。 - 前記抗体部分が、a)配列番号17〜26のいずれか1つのアミノ酸配列を含む重鎖可変ドメイン、または配列番号17〜26のいずれか1つに対して少なくとも約95%の配列同一性を有するそのバリアント;およびb)配列番号27〜36のいずれか1つのアミノ酸配列を含む軽鎖可変ドメイン、または配列番号27〜36のいずれか1つに対して少なくとも約95%の配列同一性を有するそのバリアントを含む、請求項8に記載の単離された抗AMC構築物。
- 多特異的である、請求項1から9のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物。
- タンデムscFv、ダイアボディ(Db)、単鎖ダイアボディ(scDb)、二重親和性再標的化(DART)抗体、二重可変ドメイン(DVD)抗体、ノブ−イントゥ−ホール(KiH)抗体、ドックアンドロック(DNL)抗体、化学架橋抗体、ヘテロマルチマー抗体またはヘテロコンジュゲート抗体である、請求項10に記載の単離された抗AMC構築物。
- ペプチドリンカーによって連結された2つのscFvを含むタンデムscFvである、請求項11に記載の単離された抗AMC構築物。
- 第2の抗原に特異的に結合する第2の抗体部分をさらに含む、請求項10〜12のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物。
- 前記第2の抗原が、CD3γ、CD3δ、CD3ε、CD3ζ、CD28、OX40、GITR、CD137、CD27、CD40LおよびHVEMからなる群から選択される、請求項13に記載の単離された抗AMC構築物。
- 前記第2の抗原がCD3εであり、前記単離された抗AMC構築物が、前記AFP/MHCクラスI複合体に特異的なN末端scFvおよびCD3εに特異的なC末端scFvを含むタンデムscFvである、請求項13に記載の単離された抗AMC構築物。
- 前記抗体部分を含む細胞外ドメイン、膜貫通ドメイン、ならびにCD3ζ細胞内シグナル伝達配列およびCD28細胞内シグナル伝達配列を含む細胞内シグナル伝達ドメインを含むキメラ抗原受容体である、請求項1から9のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物。
- 前記単離された抗AMC構築物が、前記抗体部分およびエフェクター分子を含むイムノコンジュゲートであり、該エフェクター分子が、薬物、毒素、放射性同位体、タンパク質、ペプチドおよび核酸からなる群から選択される治療剤である、請求項1から9のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物。
- 前記抗体部分および標識を含むイムノコンジュゲートである、請求項1から9のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物。
- 請求項1から17のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物を含む医薬組成物。
- 請求項1から18のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物を発現する宿主細胞。
- 請求項1から18のいずれか一項に記載の単離された抗AMC構築物のポリペプチド成分をコードする核酸。
- 請求項16に記載の単離された抗AMC構築物を発現するエフェクター細胞。
- T細胞である、請求項22に記載のエフェクター細胞。
- AFPペプチドおよびMHCクラスIタンパク質を含む複合体をその表面上に提示する細胞を検出する方法であって、該細胞を、請求項18に記載の単離された抗AMC構築物と接触させるステップ、および該細胞上の前記標識の存在を検出するステップを含む方法。
- AFP陽性疾患を有する個体を処置する方法であって、該個体に、
a)有効量の請求項19に記載の医薬組成物、または
b)有効量の請求項22もしくは23に記載のエフェクター細胞
を投与するステップを含む方法。 - 前記投与が、静脈内経路または腫瘍内経路を介した投与である、請求項25に記載の方法。
- 前記投与が、第1の疾患部位に対して遠位の注射部位への投与である、請求項25に記載の方法。
- AFP陽性疾患を有する個体を診断する方法であって、
a)有効量の請求項18に記載の単離された抗AMC構築物を該個体に投与するステップ;および
b)該個体における前記標識のレベルを決定するステップであって、閾値レベルを上回る該標識のレベルは、該個体が該AFP陽性疾患を有することを示す、ステップ
を含む方法。 - AFP陽性疾患を有する個体を診断する方法であって、
a)該個体に由来する試料を、請求項18に記載の単離された抗AMC構築物と接触させるステップ;および
b)該試料中の、該単離された抗AMC構築物と結合した細胞の数を決定するステップであって、閾値レベルを上回る、該単離された抗AMC構築物と結合した細胞の数の値は、該個体が該AFP陽性疾患を有することを示す、ステップ
を含む方法。 - 前記AFP陽性疾患ががんである、請求項25から29のいずれか一項に記載の方法。
- 前記がんが、肝細胞癌、胚細胞腫瘍または乳がんである、請求項30に記載の方法。
- 前記がんが肝細胞癌である、請求項31に記載の方法。
- 前記がんが転移性肝細胞癌である、請求項32に記載の方法。
- 前記AFP陽性疾患が肝細胞癌であり、転移が阻害される、請求項25から27のいずれか一項に記載の方法。
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