JP2017537624A - 不死化ニワトリ胚線維芽細胞 - Google Patents
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Abstract
Description
a)初代CEF細胞を得るステップ。このステップは当該技術分野において周知であり、特に、Hernandez,RおよびBrown,D.T.によりCurrent protocols in Microbiology 17:A.4i.1−A.4i.8(2010)などに記載されている。それは未だCEFを取得するための好ましい方法である。
a)初代CEF細胞を得るステップ、
b)前記CEFに、1)LTR配列を含まず、トランスポゾン逆位反復配列を含み、適切なプロモーターの制御下でSV40 T抗原をコードする遺伝子を含むDNA分子、2)LTR配列を含まず、トランスポゾン逆位反復配列を含み、適切なプロモーターの制御下でニワトリテロメラーゼ;cTERTをコードする遺伝子を含むDNA分子、および3)LTR配列を含まず、適切なプロモーターの制御下でトランスポザーゼをコードする遺伝子を含むDNA分子、
をトランスフェクトするステップ、
c)少なくとも45細胞周期の間培養されたCEF細胞を選択するステップ、
を含む方法に関する。
a)初代CEF細胞を得るステップ、
b)前記初代CEF細胞に、LTR配列を含まず、トランスポゾン逆位反復配列を含み、適切なプロモーターの制御下でSV40 T抗原をコードする遺伝子と、適切なプロモーターの制御下でニワトリテロメラーゼをコードする遺伝子との両方を含み、ならびに適切なプロモーターの制御下でトランスポザーゼをコードする遺伝子を含む、単一DNA分子をトランスフェクトするステップ、
c)少なくとも45細胞周期の間培養されたCEF細胞を選択するステップ、
を含むことを特徴とする方法に関する。
a)初代CEF細胞を得るステップ、
b)前記初代CEF細胞に、
1)LTR配列を含まず、トランスポゾン逆位反復配列を含み、適切なプロモーターの制御下でSV40 T抗原をコードする遺伝子と、適切なプロモーターの制御下でニワトリテロメラーゼをコードする遺伝子との両方を含むDNA分子、ならびに
2)LTR配列を含まず、適切なプロモーターの制御下でトランスポザーゼをコードする遺伝子を含むDNA分子、
をトランスフェクトするステップ、
c)少なくとも45細胞周期の間培養されたCEF細胞を選択するステップ、
を含むことを特徴とする方法に関する。
a)本発明による不死化CEFを培養するステップ、
b)該不死化CEFを鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターと接触させるステップ
c)鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターを複製させるステップ、ならびに
d)子孫ウイルスを単離するステップ、
を含む方法に関する。
a)本発明によるCEFの細胞培養物を鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターに感染させるステップ、
b)前記鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターを複製するステップ、
c)前記子孫ウイルスを単離するステップ、
d)前記子孫ウイルスを医薬として許容される担体と混合するステップ、
を含む方法に関する。
[実施例1]
ニワトリ胚線維芽細胞の不死化
プラスミド。
培養3日後、CEFを回収し、トランスフェクション前に生存細胞を計数した。トランスフェクション毎に、1×106の生存細胞を、Nucleofector 4D装置(Lonza Cologne AG)のプログラムCA−137を使用して、100μlの初代細胞バッファーP3+補助剤(Lonza Cologne AG)中でトランスフェクトした。細胞に、1.6μgのpPB−CAG−SV40 T Agおよび0.4μgのpPB−CMV−hyPBaseをトランスフェクトし(Yusa et al.,2011)、または対照として、1.6μgのpPB−CAG−EBNXNおよび0.4μgのpPB−CMV−hyPBaseをトランスフェクトした。パルス投与後、細胞をRTにおいて5分間放置した。次に、400μlのRPMI 1640(37℃)を細胞にゆっくり加え、細胞を37℃において5分間インキュベートした。次いで、細胞を慎重に再懸濁し、T25フラスコ中の増殖培地に播種し、40℃および5%CO2においてインキュベートした。CEF+pPB−CAG−SV40 T Ag細胞へのpPB−CAG−cTERTのトランスフェクションを、同じプロトコールを使用して実施した。ここで、pPB−CAG−SV40 T Agを安定にトランスフェクトされたCEFに1.6μgのpPB−CAG−cTERTおよび0.4μgのpPB−CMV−hyPBaseをトランスフェクトし(Yusa et al.,2011)、または対照として1.6μgのpPB−CAG−EBNXNおよび0.4μgのpPB−CMV−hyPBase、または2μgの標準的なGFP発現ベクター(pmaxGFP、Lonza)を一緒にトランスフェクトした。
トランスフェクション後、培養物を増殖培地(5%ウシ胎児血清(Moregate)、1%ニワトリ血清(Sigma)、2mMグルタミン、1mMピルビン酸ナトリウムを含有するDMEM)中で増殖させ、80〜90%の集密度で日常的に継代させた。培地を除去した後、細胞をPBSで2回洗浄し、トリプシン/EDTA溶液を使用してトリプシン処理した。細胞を増殖培地に再懸濁し、ペレット化した。ペレット化した細胞を増殖培地に再懸濁し、Burker−Turk計数チャンバーを使用して計数した。細胞をCellbind組織培養フラスコ(Corning)中の新鮮な培地にプレーティングし、40℃および5%CO2においてインキュベートした。CEF+pPB−CAG−SV40細胞を、42.5%FCSおよび10%DMSOを含有する標準培地中で異なる継代において液体窒素保存用に凍結した。p−PB−CAG−cTERTまたは対照プラスミドをトランスフェクトしたCEF+pPB−CAG−SV40 T Ag細胞を、表面をI型コラーゲンでコーティング(Biocoat、Corning)した、通常の増殖培地または動物成分非含有培地+1%のウシ新生仔血清(Hyclone、ThermoFisher)にプレーティングした。集団倍加の数を、以下の方程式を使用して計算した:
感染の24時間前に、細胞を、0.25%のウシ新生仔血清を添加した、または添加しない、動物成分非含有培地に1×105細胞/cm2の密度で播種し、40℃および5%CO2においてインキュベートした。MOI 0.05プラーク形成単位(PFU)で細胞を感染させた。使用したウイルスは、HVT(FC126)、NDV FおよびIBDV VP2抗原の両方を発現する組換えHVT(HVT−NDV−IBDV)ならびにILT gD/gI抗原を発現する組換えHVT(HVT−ILT)であった。感染後、細胞を38.5℃および5%CO2においてインキュベートした。細胞を72時間以上インキュベートした場合、72時間後に培地を完全に補充した。実験に応じて、滴定用試料を感染の72、96、120または144時間後に回収し、液体窒素保存のために凍結させた。培地を除去した後、細胞をPBSで2回洗浄し、トリプシン/EDTA溶液を用いてトリプシン処理した。細胞を増殖培地に再懸濁し、ペレット化した。上清を除去した後、細胞を新鮮な増殖培地に再懸濁し、計数した。次に、最終濃度10%DMSOおよび20%ウシ胎児血清を含有する増殖培地中で1×107/mlの細胞を凍結し、液体窒素中で保存した。
凍結したHVT感染細胞のアンプルを解凍し、CEFのHVT感染細胞を滴定することによって、PFU数/mlを決定した。プラークを、HVTを認識するモノクローナル抗体またはポリクローナルニワトリ血清を用いた免疫蛍光アッセイで可視化した。ヤギ抗ニワトリAlexa 488抗体またはヤギ抗マウスAlexa 488抗体をそれぞれ二次抗体として使用した。すべての滴定は二重に行った。
SV40 T抗原の発現は、初代CEFの寿命を延ばす。
不死化CEFを得るために、本発明者らは、CEF+pPB−SV細胞にpPB−CAG−cTERT(pPB−cTERT)発現ベクターをトランスフェクトした。CEF+pPB−SVの第13継代のアンプルを解凍し、細胞を培養液に入れ、継代させ、第18継代においてpPB−cTERTおよびトランスポザーゼ発現ベクターをトランスフェクトした。第18継代におけるCEF+pPB−SV細胞の総数は低かった。したがって、本発明者らは、標準的なGFP発現ベクター(EV)をトランスフェクトしたCEF+pPB−SV細胞を使用して、継代中の対照としての空ベクターのトランスフェクション効率も決定した。トランスフェクション後、細胞を播種し、コロニーの増殖および成長について毎日検査した。CEF+pPB−SV+EV培養物に増殖は観察されず、最終的にすべての細胞は死亡した(データ非掲載)。しかし、CEF+pPB−SV+pPB−cTERT培養物では、10日後に急速に増殖するコロニーをはっきりと見ることができた。これらのコロニーをトリプシン処理し、細胞を計数し、組織培養フラスコに播種した。これらの細胞は、本発明者らの標準的な増殖培地よりも動物成分非含有培地(ACF)においてより増殖することが見出され(データ非掲載)、したがって、ACF培地においてこれらの細胞の増殖を続けた。これらのCEF+pPB−SV+pPB−cTERT細胞は激しく増殖し続け、100回以上の集団倍加(PD)を行うまで継代した(図3)。
CEF ST−1は、第18継代のCEF+pPB−SV細胞にcTERT発現ベクターをトランスフェクトすることによって作製した。この時点では、限られた数の細胞が依然として増殖しており、培養中の多くの細胞は既に死亡していた。cTERTのトランスフェクション後に少数の不死化コロニーのみが増殖し、CEF ST−1細胞系を生じたので、本発明者らはCEF ST−1がオリゴクローナル細胞系であると結論づけた。
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Claims (16)
- SV40 T抗原を発現し、異種プロモーターの制御下でニワトリテロメラーゼ(cTERT)を発現し、外因性レトロウイルス長鎖末端反復DNAを含まないことを特徴とする、安定にトランスフェクトされた不死化ニワトリ胚線維芽細胞(CEF)。
- 請求項1に記載の不死化CEFを含む細胞培養物。
- 鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターに感染していることを特徴とする、請求項2に記載の細胞培養物。
- 前記鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターが、マレック病ウイルス(MDV)、MDV関連七面鳥ヘルペスウイルス(HVT)、ニューカッスル病ウイルス(NDV)、感染性気管支炎ウイルス(IBV)、感染性ファブリキウス嚢病ウイルス(IBDV)、産卵低下症候群ウイルス(EDSV)、七面鳥鼻気管炎ウイルス(TRT)、レオウイルス(RV)ならびにIBDV VP2遺伝子、IBVスパイクタンパク質遺伝子、鳥インフルエンザHA遺伝子、ILT gD/gIタンパク質遺伝子またはNDV F遺伝子を含むHVTベクターからなる群から選択されることを特徴とする、請求項3に記載の細胞培養物。
- 請求項1に記載の不死化CEFの調製方法であって、
a)初代CEF細胞を得るステップ、
b)前記初代CEFに、1)LTR配列を含まず、トランスポゾン逆位反復配列を含み、適切なプロモーターの制御下で前記SV40 T抗原をコードする遺伝子を含むDNA分子、2)LTR配列を含まず、トランスポゾン逆位反復配列を含み、適切なプロモーターの制御下でニワトリテロメラーゼ;cTERTをコードする遺伝子を含むDNA分子、および3)適切なプロモーターの制御下でトランスポザーゼをコードする遺伝子を含むDNA分子、
をトランスフェクトするステップ、
c)少なくとも45細胞周期の間培養されたCEF細胞を選択するステップ、
を含むことを特徴とする方法。 - 請求項1に記載の不死化CEFの調製方法であって、
a)初代CEF細胞を得るステップ、
b)前記初代CEF細胞に、LTR配列を含まず、トランスポゾン逆位反復配列を含み、適切なプロモーターの制御下で前記SV40 T抗原をコードする遺伝子と、適切なプロモーターの制御下でニワトリテロメラーゼをコードする遺伝子との両方を含み、ならびに適切なプロモーターの制御下でトランスポザーゼをコードする遺伝子を含む、単一DNA分子をトランスフェクトするステップ、
c)少なくとも45細胞周期の間培養されたCEF細胞を選択するステップ、
を含むことを特徴とする方法。 - 請求項1に記載の不死化CEFの調製方法であって、
a)初代CEF細胞を得るステップ、
b)前記初代CEF細胞に、1)LTR配列を含まず、トランスポゾン逆位反復配列を含み、適切なプロモーターの制御下で前記SV40 T抗原をコードする遺伝子と、適切なプロモーターの制御下でニワトリテロメラーゼをコードする遺伝子との両方を含むDNA分子、ならびに2)適切なプロモーターの制御下でトランスポザーゼをコードする遺伝子を含むDNA分子、をトランスフェクトするステップ、
c)少なくとも45細胞周期の間培養されたCEF細胞を選択するステップ、
を含むことを特徴とする方法。 - ステップc)において、少なくとも100細胞周期の間培養された細胞が選択されることを特徴とする、請求項5から7のいずれかに記載の方法。
- 鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターの複製方法であって、
a)請求項1に記載の不死化CEFを培養するステップ、
b)前記不死化CEFを前記鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターと接触させるステップ
c)前記鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターを複製させるステップ、ならびに
d)子孫ウイルスを単離するステップ、
を含む方法。 - 前記鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターが、マレック病ウイルス(MDV)、MDV関連七面鳥ヘルペスウイルス(HVT)、ニューカッスル病ウイルス(NDV)、感染性気管支炎ウイルス(IBV)、感染性ファブリキウス嚢病ウイルス(IBDV)、産卵低下症候群ウイルス(EDSV)、七面鳥鼻気管炎ウイルス(TRT)、レオウイルス(RV)からなる鳥ウイルスならびにIBDV VP2遺伝子、IBVスパイクタンパク質遺伝子、鳥インフルエンザHA遺伝子、ILT gD/gIタンパク質遺伝子またはNDV F遺伝子を含むHVTベクターの群から選択されることを特徴とする、請求項9に記載の方法。
- 前記鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターが、MDVおよびMDVベクターウイルスからなる鳥ウイルスの群から選択されることを特徴とする、請求項9に記載の方法。
- 鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターを含むワクチンの調製方法であって、請求項3または4に記載の細胞培養物を医薬として許容される担体と混合するステップを含むことを特徴とする方法。
- 前記鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターがMDVであることを特徴とする、請求項12に記載の方法。
- 前記ワクチン中の前記MDVまたはMDVウイルスベクターが生の弱毒化形態であることを特徴とする、請求項12に記載の方法。
- 請求項3または4に記載の細胞培養物および医薬として許容される担体を含むワクチン。
- 鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターを含むワクチンの調製方法であって、
a)請求項2に記載の細胞培養物を鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターに感染させるステップ、
b)前記鳥ウイルスまたは鳥ウイルスベクターを複製するステップ、
c)前記子孫ウイルスを単離するステップ、
d)前記子孫ウイルスを医薬として許容される担体と混合するステップ、
を含むことを特徴とする方法。
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