JP2016006410A - クロマトグラフィー担体およびそれを用いたタンパク質精製方法 - Google Patents
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Abstract
【課題】耐塩性、吸着特性等に優れたクロマトグラフィー担体を提供する。【解決手段】本発明のクロマトグラフィー担体は、多孔性粒子を含むベース担体と、前記ベース担体に結合したポリアミンとを含み、前記ポリアミンにおけるアミノ基の２０〜４０％が疎水基で修飾されている。【選択図】 なし
Description
本発明は、クロマトグラフィー担体およびそれを用いたタンパク質精製方法に関する。
クロマトグラフィーを用いてバイオ医薬品の精製を行うことは広く知られており、種々の分子間相互作用を利用して目的物と不純物の分離が行われる。例として、静電的相互作用を利用したイオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用を利用した疎水性クロマトグラフィーおよび抗体に対するアフィニティー相互作用を利用したプロテインＡクロマトグラフィーなどがある。
バイオ医薬品の精製において最も多く用いられているのは、イオン交換クロマトグラフィーである。イオン交換クロマトグラフィーは、処理液の電気伝導度が増加することで吸着性能が減少することが知られている。従って、電気伝導度の高い試料においては、吸着処理を行う前に希釈や脱塩により電気伝導度を下げる必要がある。
このようなイオン交換クロマトグラフィーの欠点を補うため、近年は静電的相互作用に加え、疎水性相互作用、親水性相互作用、キレート相互作用などを併せ持つクロマトグラフィー担体の開発が盛んに行われている。
このように複数の作用を併せ持つクロマトグラフィー担体としては、Ｃａｐｔｏ（登録商標）ａｄｈｅｒｅ、Ｃａｐｔｏ（登録商標）ＭＭＣ（以上、ＧＥヘルスケア社製）、ＭＥＰ ＨｙｐｅｒＣｅｌ、ＨｙｐｅｒＣｅｌ（商標） ＡＸ ＳＴＡＲ（以上、Ｐａｌｌ社製）、Ｅｓｈｕｍｕｎｏ（登録商標）ＨＣＸ（ＥＭＤ Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社製）、ＣＨＴ（登録商標）Ｃｅｒａｍｉｃ Ｈｙｄｒｏｘｙａｐａｔｉｔｅ（バイオ・ラッド社製）、およびＴｏｙｏｐｅａｒｌ（登録商標）ＭＸ Ｔｒｐ−６５０（東ソー社製）などが市販されている。
これらの複数の作用を併せ持つクロマトグラフィー担体は、静電的相互作用を有するリガンドに加え、異なる原理の相互作用を有するリガンドを同一のベース担体に導入することにより得られる。このようにして得られた担体は、静電的相互作用を有するリガンドのみを担持したイオン交換クロマトグラフィー担体とは異なる選択性を有する。また、細胞培養上清に近い条件下（例えば、培養上清と同程度の電気伝導度の条件下）で、良好な吸着特性を示す担体も知られている。
例えば非特許文献１には、モノクローナル抗体の精製において、複数の作用を併せ持つクロマトグラフィー担体が、イオン交換クロマトグラフィー担体よりも不純物の除去、特に凝集体の分離の点で優れていることが示されている。
また、特許文献１には、グラフト重合でリガンドを導入した担体について記されている。本文献には、負電荷を有する部分と疎水性部分とを支持体上でグラフト重合させることにより得られる担体が、より高い塩濃度（例えば、１５０ｍＭの塩化ナトリウム（ＮａＣｌ）溶液下）においても優れた吸着性能を有することが記載されている。
１５０ｍＭのＮａＣｌ濃度を有する溶液の電気伝導度は、細胞培養上清の電気伝導度に相当することが既知である（例えば、特許文献１）。このように培養上清の電気伝導度（およそ１５ｍＳ／ｃｍ）で良好な吸着性能を有する担体は、耐塩性を有する担体であるといわれる。耐塩性を有するクロマトグラフィー担体は、特に、タンパク質などの生物によって生産される物質を含むバイオ医薬品の精製において有益である。上記のように、従来のイオン交換クロマトグラフィーを使用した場合、カラムへの注入の前にサンプル溶液の脱塩や希釈を行う必要があるが、耐塩性のクロマトグラフィー担体を使用すれば、脱塩を行うことなく精製を行うことができる。
特許文献２には、ポリアミンをリガンドとして有するクロマトグラフィー担体およびその血液凝固因子の精製への使用が開示されている。
また、特許文献３には、ポリアリルアミンをリガンドとして使用したクロマトグラフィー担体が開示されている。この担体は、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）等のタンパク質に対して、高濃度の塩化ナトリウム溶液下（例えば０．２５Ｍ以上）においても優れた結合能を有する。
また特許文献４には、ポリアリルアミンの架橋重合体で被覆された表面を有する膜が開示されている。本文献によると、このような膜は、２９ＣＶ／分／ｂａｒの流速かつ２００ｍＭの塩化ナトリウム濃度の溶液中において、６０ｇ／ＬのＢＳＡ結合容量を達成することができると示されている。
さらに、特許文献５には、アリルアミンまたはポリアリルアミンを含み、さらにそれらを他の官能基で修飾したリガンドを有するクロマトグラフィー媒体が開示されている。しかし、特許文献５には、クロマトグラフィー媒体の耐塩性については言及されていない。
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ Ａ １２１７（２０１０），２１６−２２４
上記のような背景のもと、耐塩性を有し、且つ望ましい吸着特性を有するクロマトグラフィー担体が求められている。
本発明者らは上記の課題を解決するため鋭意検討した結果、多孔性粒子を含むベース担体にポリアミンを付加し、その後、ポリアミンにおけるアミノ基の一部を疎水基で修飾して得られたクロマトグラフィー担体が、耐塩性に優れ、且つ優れた吸着特性を有していることを見出し、本発明に至った。すなわち本発明は、例えば以下の通りである。
［１］ 多孔性粒子を含むベース担体と、
前記ベース担体に結合したポリアミンと
を含み、
前記ポリアミンにおけるアミノ基の２０〜４０％が疎水基で修飾されている
クロマトグラフィー担体。
［２］ 前記ポリアミンが、ポリアリルアミン、ポリビニルアミン、キトサン、ポリリジン、ポリグアニジンおよびポリオルニチンからなる群より選択される［１］に記載のクロマトグラフィー担体。
［３］ 前記ポリアミンが、ポリアリルアミンである［２］に記載のクロマトグラフィー担体。
［４］ 前記ポリアリルアミンの重量平均分子量が、５０００〜１５０００である［３］に記載のクロマトグラフィー担体。
［５］ 前記疎水基が、以下の一般式（１）〜（３）のいずれかの構造を有する［１］〜［４］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体：
［式（１）〜（３）中、
ｎは、０〜８の整数であり、
Ｒ１は、ｎが０〜３の整数である場合はフェニル基であり、ｎが４〜８の整数である場合はＨまたはフェニル基であり、
＊は、前記ポリアミンにおけるアミノ基との結合部位である］。
［６］ 前記疎水基が、前記一般式（１）の構造を有する［５］に記載のクロマトグラフィー担体。
［７］ 前記一般式（１）において、ｎが４〜８の整数であり、Ｒ１がＨである、［６］に記載のクロマトグラフィー担体。
［８］ 前記一般式（１）において、ｎが０〜８の整数であり、Ｒ１がフェニル基である、［６］に記載のクロマトグラフィー担体。
［９］ 前記疎水基が、無水吉草酸、無水カプロン酸、無水エナント酸、無水カプリル酸、無水ペラルゴン酸、無水安息香酸、ブチルグリシジルエーテル、およびフェニルグリシジルエーテルからなる群より選ばれる化合物に由来する基である［１］〜［４］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体。
［１０］ 前記疎水基が、無水吉草酸または無水安息香酸に由来する基である［９］に記載のクロマトグラフィー担体。
［１０−１］ 前記疎水基が、以下の一般式（４）または（５）の構造を有する［１］〜［４］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体：
［式（４）および（５）中、
Ｒ１は、複素環基であり、
＊は、ポリアミンにおけるアミノ基との結合部位である］。
［１０−２］ 前記複素環基が、窒素原子を含む［１０−１］に記載のクロマトグラフィー担体。
［１０−３］ 前記複素環基における複素環が、ピリジン、イミダゾール、ベンズイミダゾール、ピラゾール、イミダゾリン、ピラジン、インドール、イソインドール、キノリン、イソキノリンおよびキノキサリンからなる群より選択される［１０−２］に記載のクロマトグラフィー担体。
［１０−４］ 前記多孔性粒子が、架橋セルロース粒子である［１］〜［１０−３］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体。
［１０−５］ 前記多孔性粒子の粒子径が、１０〜５００μｍである［１］〜［１０−４］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体。
［１０−６］ 前記多孔性粒子のＫａｖ値が、重量平均分子量１．５×１０５Ｄａの標準ポリエチレンオキシドをサンプルとして使用し、純水を移動相として使用した場合に、０．１５〜０．６の範囲である［１］〜［１０−５］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体。
［１１］ ０．２ＭのＮａＣｌ溶液下で、クロマトグラフィー担体１ｍＬ当りのウシ血清アルブミンに対する静的結合容量が６０ｍｇ以上である、［１］〜［１０−６］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体。
［１２］ ［１］〜［１１］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体を用いてタンパク質を含む試料を分離精製することを含む、タンパク質の精製方法。
［１３］ 前記分離精製が、０．１５〜０．４ＭのＮａＣｌ溶液下で行われる［１２］に記載のタンパク質の精製方法。
前記ベース担体に結合したポリアミンと
を含み、
前記ポリアミンにおけるアミノ基の２０〜４０％が疎水基で修飾されている
クロマトグラフィー担体。
［２］ 前記ポリアミンが、ポリアリルアミン、ポリビニルアミン、キトサン、ポリリジン、ポリグアニジンおよびポリオルニチンからなる群より選択される［１］に記載のクロマトグラフィー担体。
［３］ 前記ポリアミンが、ポリアリルアミンである［２］に記載のクロマトグラフィー担体。
［４］ 前記ポリアリルアミンの重量平均分子量が、５０００〜１５０００である［３］に記載のクロマトグラフィー担体。
［５］ 前記疎水基が、以下の一般式（１）〜（３）のいずれかの構造を有する［１］〜［４］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体：
［式（１）〜（３）中、
ｎは、０〜８の整数であり、
Ｒ１は、ｎが０〜３の整数である場合はフェニル基であり、ｎが４〜８の整数である場合はＨまたはフェニル基であり、
＊は、前記ポリアミンにおけるアミノ基との結合部位である］。
［６］ 前記疎水基が、前記一般式（１）の構造を有する［５］に記載のクロマトグラフィー担体。
［７］ 前記一般式（１）において、ｎが４〜８の整数であり、Ｒ１がＨである、［６］に記載のクロマトグラフィー担体。
［８］ 前記一般式（１）において、ｎが０〜８の整数であり、Ｒ１がフェニル基である、［６］に記載のクロマトグラフィー担体。
［９］ 前記疎水基が、無水吉草酸、無水カプロン酸、無水エナント酸、無水カプリル酸、無水ペラルゴン酸、無水安息香酸、ブチルグリシジルエーテル、およびフェニルグリシジルエーテルからなる群より選ばれる化合物に由来する基である［１］〜［４］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体。
［１０］ 前記疎水基が、無水吉草酸または無水安息香酸に由来する基である［９］に記載のクロマトグラフィー担体。
［１０−１］ 前記疎水基が、以下の一般式（４）または（５）の構造を有する［１］〜［４］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体：
［式（４）および（５）中、
Ｒ１は、複素環基であり、
＊は、ポリアミンにおけるアミノ基との結合部位である］。
［１０−２］ 前記複素環基が、窒素原子を含む［１０−１］に記載のクロマトグラフィー担体。
［１０−３］ 前記複素環基における複素環が、ピリジン、イミダゾール、ベンズイミダゾール、ピラゾール、イミダゾリン、ピラジン、インドール、イソインドール、キノリン、イソキノリンおよびキノキサリンからなる群より選択される［１０−２］に記載のクロマトグラフィー担体。
［１０−４］ 前記多孔性粒子が、架橋セルロース粒子である［１］〜［１０−３］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体。
［１０−５］ 前記多孔性粒子の粒子径が、１０〜５００μｍである［１］〜［１０−４］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体。
［１０−６］ 前記多孔性粒子のＫａｖ値が、重量平均分子量１．５×１０５Ｄａの標準ポリエチレンオキシドをサンプルとして使用し、純水を移動相として使用した場合に、０．１５〜０．６の範囲である［１］〜［１０−５］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体。
［１１］ ０．２ＭのＮａＣｌ溶液下で、クロマトグラフィー担体１ｍＬ当りのウシ血清アルブミンに対する静的結合容量が６０ｍｇ以上である、［１］〜［１０−６］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体。
［１２］ ［１］〜［１１］のいずれかに記載のクロマトグラフィー担体を用いてタンパク質を含む試料を分離精製することを含む、タンパク質の精製方法。
［１３］ 前記分離精製が、０．１５〜０．４ＭのＮａＣｌ溶液下で行われる［１２］に記載のタンパク質の精製方法。
本発明によると、耐塩性、吸着特性等に優れたクロマトグラフィー担体を提供することができる。
以下、本発明の実施形態について詳細に説明する。
本発明のクロマトグラフィー担体は、
多孔性粒子を含むベース担体と、
前記ベース担体に結合したポリアミンと
を含み、
前記ポリアミンにおけるアミノ基の２０〜４０％が疎水基で修飾されている。
本発明のクロマトグラフィー担体は、
多孔性粒子を含むベース担体と、
前記ベース担体に結合したポリアミンと
を含み、
前記ポリアミンにおけるアミノ基の２０〜４０％が疎水基で修飾されている。
本発明のクロマトグラフィー担体は、リガンドとしてポリアミンを含み、さらにポリアミンにおけるアミノ基の一部が疎水基で修飾されていることにより、耐塩性に優れる。特に、ポリアミンにおけるアミノ基の疎水基での修飾率を２０〜４０％とすることにより、クロマトグラフィー担体のイオン交換容量を保持しつつ、優れた耐塩性を達成することができる。本発明のクロマトグラフィー担体は、塩濃度が低い条件下のみならず塩濃度が高い条件下においても優れた吸着特性を発揮するため、広範囲の塩濃度において使用可能であると言える。
上記で説明した通り、一般的な細胞培養上清の電気伝導度と同等以上の電気伝導度を示す塩溶液（約０．１５ＭのＮａＣｌ溶液）の存在下で良好な吸着特性を有する担体は、耐塩性を有する担体であるといわれる。本発明のクロマトグラフィー担体は、ＮａＣｌの非存在下ではもちろん、０．１５Ｍ以上のＮａＣｌ溶液下であっても、望ましい吸着特性を発揮することができる。さらに、０．２Ｍ以上のＮａＣｌ溶液下、例えば０．２〜０．４ＭのＮａＣｌ溶液下であっても、望ましい吸着特性が得られる。具体的には、本発明のクロマトグラフィー担体によると、０．２ＭのＮａＣｌ溶液下で、クロマトグラフィー担体１ｍＬ当り６０ｍｇ以上のウシ血清アルブミン吸着量を得ることができる。
本明細書において、「ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）吸着量」は、バッチ式で測定した静的結合容量（すなわち飽和吸着量）の値であり、測定方法の詳細は、後述する実施例において説明する通りである。また、「クロマトグラフィー担体１ｍＬ」とは、湿潤ゲルの状態でカラムに詰めた際に容積１ｍＬを構成する量のクロマトグラフィー担体を意味する。
上記のように、本発明のクロマトグラフィー担体は耐塩性を有するため、培養液中の試料を脱塩あるいは希釈することなく、そのままクロマトグラフィーに適用できる点において優れている。特にタンパク質の分離精製において有用であり、従ってバイオ医薬等の精製に使用することができる。具体的には、ワクチン、抗体、酵素、血液凝固因子等の分離精製において使用することができる。
また、本発明のクロマトグラフィー担体は、リガンドとしてポリアミンおよび疎水基を含むという従来とは異なる構造を有しているため、これまでにない選択性を有することが期待される。
以下、本発明のクロマトグラフィー担体の各構成要素について、順に説明する。
１．ベース担体
クロマトグラフィー担体は、一般的に、ベース担体にリガンドが結合した構成を有する。本発明におけるベース担体は多孔性粒子を含み、多孔性粒子は、リガンドとしてのポリアミンを導入するための官能基（例えば、水酸基、カルバモイル基など）で修飾されている。そのような官能基で修飾され得る限り、使用される多孔性粒子は限定されないが、例えば、アガロース、デキストラン、でんぷん、セルロース、プルラン、キチン、キトサン、三酢酸セルロース、二酢酸セルロースなどの多糖類およびその誘導体；ポリアクリルアミド、ポリメタクリルアミド、ポリアクリレート、ポリメタクリレート、ポリアルキルビニルエーテル、ポリビニルアルコールなどの有機重合体などが好ましく挙げられる。多孔性粒子は、架橋構造を形成していることが、機械的強度を確保できる点から好ましい。これらの中でも、架橋反応によってセルロース粒子の骨格が補強された架橋セルロース粒子を用いることがより好ましい。
１．ベース担体
クロマトグラフィー担体は、一般的に、ベース担体にリガンドが結合した構成を有する。本発明におけるベース担体は多孔性粒子を含み、多孔性粒子は、リガンドとしてのポリアミンを導入するための官能基（例えば、水酸基、カルバモイル基など）で修飾されている。そのような官能基で修飾され得る限り、使用される多孔性粒子は限定されないが、例えば、アガロース、デキストラン、でんぷん、セルロース、プルラン、キチン、キトサン、三酢酸セルロース、二酢酸セルロースなどの多糖類およびその誘導体；ポリアクリルアミド、ポリメタクリルアミド、ポリアクリレート、ポリメタクリレート、ポリアルキルビニルエーテル、ポリビニルアルコールなどの有機重合体などが好ましく挙げられる。多孔性粒子は、架橋構造を形成していることが、機械的強度を確保できる点から好ましい。これらの中でも、架橋反応によってセルロース粒子の骨格が補強された架橋セルロース粒子を用いることがより好ましい。
架橋セルロース粒子としては、クロマトグラフィー担体のベース担体として使用され得るものであれば特に制限されない。原料となるセルロースは、結晶セルロースであっても非結晶セルロースであってもよいが、強度が高いことから結晶セルロースが好ましい。
本発明において好適に使用できる架橋セルロース粒子としては、例えば、特開２００９−２４２７７０号公報に開示されている多孔性セルロースゲルが挙げられる。同公報に開示されている多孔性セルロースゲルは、未架橋セルロース粒子の懸濁液に、セルロースモノマーのモル数の６〜２０倍量の塩酸塩、硫酸塩、リン酸塩およびホウ酸塩からなる群から選ばれる少なくとも１種の無機塩の存在下、セルロースモノマーのモル数の４〜１２倍量の架橋剤と、架橋剤のモル数の０．１〜１．５倍量のアルカリとを３時間以上かけて連続滴下または分割添加する工程を含む方法で得られる。このようにして得られた架橋セルロース粒子は、機械的強度が高く、流速の速いクロマトグラフィー条件下での使用が可能であり、生産性の高い陽イオン交換クロマトグラフィー担体を与えることができる。ここで、「セルロースモノマー」とは、セルロースの構成単位であるグルコースユニットを意味する。また、セルロースモノマーのモル数（すなわち、重合度）は、グルコース１ユニットから水分を引いた量（すなわちセルロースの乾燥重量）に基づいて計算する（分子量１６２を１モルとする）。
多孔性粒子の形状は特に制限されないが、機械的強度が高く、ゲル沈降性に優れ、均一な充填床を作製できることから、球状のものが好ましい。この場合、多孔性粒子の真球度は０．８〜１．０であることが好ましい。ここで「真球度」とは、多孔性粒子の短径／長径を意味する。
球状セルロース粒子は、例えば、結晶セルロースまたは結晶領域と非結晶領域とからなるセルロースを溶解し再生することで容易に得ることができる。球状セルロース粒子の製造方法としては、例えば、特公昭５５−３９５６５号公報、特公昭５５−４０６１８号公報などに記載される酢酸エステルを経由する方法；特公昭６３−６２２５２号公報などに記載されるチオシアン酸カルシウム塩を含む溶液から製造する方法；特開昭５９−３８２０３号公報などに記載されるパラホルムアルデヒドおよびジメチルスルホキシドを含む溶液から製造する方法；特許第３６６３６６６号公報に記載される、セルロースを塩化リチウム含有アミドに溶解させたセルロース溶液から製造する方法などが挙げられる。また、球状の架橋セルロース粒子は、球状セルロース粒子を架橋することで得ることができる。
本発明に用いる多孔性粒子の粒子径は、１０〜５００μｍが好ましく、３０〜２００μｍがより好ましく、５０〜１５０μｍが特に好ましい。また、平均粒子径は、３０〜１０００μｍが好ましく、４０〜２００μｍがより好ましく、５０〜１００μｍが特に好ましい。ここで、「粒子径」とは、各多孔性粒子の粒子径の実測値を意味し、「平均粒子径」とは、上記粒子径に基づいて算出される平均値を意味する。
本明細書において、多孔性粒子の粒子径および平均粒子径は、例えば、レーザー回折／散乱式の粒子径分布測定装置を用いて測定することができる。この装置では、粒子群にレーザー光を照射し、そこから発せられる回折／散乱光の強度分布パターンから粒度分布を求め、それに基づいて粒子径および平均粒子径を算出する。具体的な測定装置としては、レーザー回折／散乱式の粒子径分布測定装置ＬＡ−９５０（株式会社堀場製作所製）などを用いることができる。
あるいは、光学顕微鏡で撮影した画像を使用して粒子径を測定することもできる。具体的には、ノギスなどを用いて画像上の粒子径を計測し、撮影倍率から元の粒子径を求める。そして、光学顕微鏡画像から求めたそれぞれの粒子径の値から、下記の式によって平均粒子径を算出する。
体積平均粒子径（ＭＶ）＝Σ（ｎｄ４）／Σ（ｎｄ３）
［式中、ｄは光学顕微鏡画像から求めた各粒子の粒子径の値を表し、ｎは測定した粒子の個数を表す。］
体積平均粒子径（ＭＶ）＝Σ（ｎｄ４）／Σ（ｎｄ３）
［式中、ｄは光学顕微鏡画像から求めた各粒子の粒子径の値を表し、ｎは測定した粒子の個数を表す。］
多孔性粒子の多孔性は、細孔サイズ特性をもって特徴づけることができる。細孔サイズ特性を示す指標の一つとして、ゲル分配係数Ｋａｖがある。細孔サイズは、粒子の物理的強度や精製対象となる目的物質の多孔性粒子内での拡散性に影響を及ぼす。従って、細孔サイズによって、多孔性粒子中を通過する液体の流速や多孔性粒子の動的吸着容量に違いが生じる。そのため、目的に応じた細孔サイズとなるような多孔性粒子の設計が必要となる。特に動的吸着容量の観点から、多孔性粒子のゲル分配係数Ｋａｖは、重量平均分子量１．５×１０５Ｄａの標準ポリエチレンオキシドをサンプルとして使用し、純水を移動相として使用した場合に、０．１５〜０．６の範囲であるものが好ましく、より好ましくは０．２〜０．５５であり、特に好ましくは０．３〜０．５である。
本発明においては、上記範囲のゲル分配係数を得られるような細孔サイズを有する多孔性粒子を使用することが、吸着特性の観点から好ましい。多孔性粒子として架橋セルロース粒子を使用する場合、そのゲル分配係数Ｋａｖは、例えば、粒子形成時のセルロースの溶解濃度を制御することにより調整することができる。
ゲル分配係数Ｋａｖは、特定の分子量を有する標準物質（例えば、ポリエチレンオキシド）をサンプルとして使用した場合の保持容量とカラム体積との関係から、次式により求めることができる。
Ｋａｖ＝（Ｖｅ−Ｖ０）／（Ｖｔ−Ｖ０）
［式中、Ｖｅはサンプルの保持容量（ｍＬ）、Ｖｔは空カラム体積（ｍＬ）、Ｖ０はブルーデキストランの保持容量（ｍＬ）を表す。］
ゲル分配係数Ｋａｖの具体的な測定方法は、例えば、Ｌ．Ｆｉｓｃｈｅｒ著生物化学実験法２「ゲルクロマトグラフィー」第１版（東京化学同人）などに記載されている。
Ｋａｖ＝（Ｖｅ−Ｖ０）／（Ｖｔ−Ｖ０）
［式中、Ｖｅはサンプルの保持容量（ｍＬ）、Ｖｔは空カラム体積（ｍＬ）、Ｖ０はブルーデキストランの保持容量（ｍＬ）を表す。］
ゲル分配係数Ｋａｖの具体的な測定方法は、例えば、Ｌ．Ｆｉｓｃｈｅｒ著生物化学実験法２「ゲルクロマトグラフィー」第１版（東京化学同人）などに記載されている。
２．リガンド
本発明のクロマトグラフィー担体は、リガンドとしてポリアミンを含み、さらにポリアミンにおけるアミノ基の２０〜４０％が疎水基で修飾されている。
本発明のクロマトグラフィー担体は、リガンドとしてポリアミンを含み、さらにポリアミンにおけるアミノ基の２０〜４０％が疎水基で修飾されている。
（２−１）ポリアミン
まず、ポリアミンについて説明する。
ポリアミンは、複数の第一級アミノ基が結合した脂肪族炭化水素の総称である。本発明において使用されるポリアミンは、ベース担体上の官能基と結合し得るものであれば、特に限定されない。具体的には、ポリアリルアミン、ポリビニルアミン、キトサン、ポリリジン、ポリグアニジン、ポリオルニチン等が挙げられ、中でもポリアリルアミンおよびポリリジンが好ましく、ポリアリルアミンがより好ましい。
まず、ポリアミンについて説明する。
ポリアミンは、複数の第一級アミノ基が結合した脂肪族炭化水素の総称である。本発明において使用されるポリアミンは、ベース担体上の官能基と結合し得るものであれば、特に限定されない。具体的には、ポリアリルアミン、ポリビニルアミン、キトサン、ポリリジン、ポリグアニジン、ポリオルニチン等が挙げられ、中でもポリアリルアミンおよびポリリジンが好ましく、ポリアリルアミンがより好ましい。
ポリアミンの重量平均分子量は、３００，０００以下であってよく、１，０００〜１００，０００であることが好ましく、３，０００〜５０，０００であることがより好ましく、５，０００〜１５，０００であることが特に好ましい。ポリアリルアミンを使用する場合、重量平均分子量は１５０，０００以下であってよく、１，０００〜１００，０００であることが好ましく、３，０００〜５０，０００であることがより好ましく、５，０００〜１５，０００であることが特に好ましい。
ベース担体へのポリアミンの付加方法は、特に限定されず、公知の方法で行うことができる。例えば、ポリアミンが結合し得る官能基（例えば、水酸基、カルバモイル基など）で修飾された多孔性粒子とポリアミンとを含む溶液を、所定の条件下で撹拌することにより行うことができる。
あるいは、ベース担体上でモノマーをグラフト重合させてポリアミンを形成してもよい。この場合、モノマーとして第一級アミノ基を含む化合物を使用してもよいし、グリシジルメタクリレートのようにアミンに対して反応性の基を有するモノマーをベース担体上でグラフト重合し、その後アンモニアと反応させてポリアミンを得てもよい。
あるいは、ベース担体上でモノマーをグラフト重合させてポリアミンを形成してもよい。この場合、モノマーとして第一級アミノ基を含む化合物を使用してもよいし、グリシジルメタクリレートのようにアミンに対して反応性の基を有するモノマーをベース担体上でグラフト重合し、その後アンモニアと反応させてポリアミンを得てもよい。
（２−２）疎水基
疎水基としては、ポリアミンにおけるアミノ基に結合し、疎水性を有する限り特に限定されることはないが、疎水性クロマトグラフィー担体において通常用いられる疎水基が好ましい。そのような疎水基としては、飽和アルキル基および／またはフェニル基を含む基が挙げられる。飽和アルキル基は、直鎖状の飽和アルキル基であることが好ましく、Ｃ４〜Ｃ８の直鎖状飽和アルキル基であることがより好ましく、ｎ−ブチル基であることが特に好ましい。
疎水基としては、ポリアミンにおけるアミノ基に結合し、疎水性を有する限り特に限定されることはないが、疎水性クロマトグラフィー担体において通常用いられる疎水基が好ましい。そのような疎水基としては、飽和アルキル基および／またはフェニル基を含む基が挙げられる。飽和アルキル基は、直鎖状の飽和アルキル基であることが好ましく、Ｃ４〜Ｃ８の直鎖状飽和アルキル基であることがより好ましく、ｎ−ブチル基であることが特に好ましい。
好ましい疎水基の構造として、以下の一般式（１）〜（３）のいずれかの構造が挙げられる。
［式（１）〜（３）中、
ｎは、０〜８の整数であり、
Ｒ１は、ｎが０〜３の整数である場合はフェニル基であり、ｎが４〜８の整数である場合はＨまたはフェニル基であり、
＊は、ポリアミンにおけるアミノ基との結合部位である］。
ｎは、０〜８の整数であり、
Ｒ１は、ｎが０〜３の整数である場合はフェニル基であり、ｎが４〜８の整数である場合はＨまたはフェニル基であり、
＊は、ポリアミンにおけるアミノ基との結合部位である］。
言い換えると、ｎは、Ｒ１がフェニル基の場合に０〜８の整数であり、Ｒ１がＨである場合に４〜８の整数である。
上記式（１）〜（３）で表される構造における炭素原子は、アルキル基やアルコキシ基等の置換基を有していてもよい。
上記一般式（１）〜（３）の構造のうち、一般式（１）の構造がより好ましい。
上記式（１）〜（３）で表される構造における炭素原子は、アルキル基やアルコキシ基等の置換基を有していてもよい。
上記一般式（１）〜（３）の構造のうち、一般式（１）の構造がより好ましい。
疎水基のアミノ基への結合方式は、共有結合であれば特に制限されない。具体的には、例えば、酸無水物、酸塩化物、または活性エステルとアミノ基との反応によって形成されるアミド結合、あるいはエポキシ化合物またはハロゲン化物とアミノ基との反応によって形成される炭素−窒素結合であってよい。
上記のような疎水基を導入するための化合物としては、無水吉草酸、無水カプロン酸、無水エナント酸、無水カプリル酸、無水ペラルゴン酸、無水安息香酸、ブチルグリシジルエーテル、フェニルグリシジルエーテルなどが挙げられる。すなわち、本発明における疎水基はこれらの化合物由来の基が好都合である。ここで、これらの化合物とポリアミンとを反応させることにより、疎水基をポリアミンのアミノ基に結合させることができる。上記化合物の中で、無水吉草酸および無水安息香酸がより好ましい。酸無水物は、ポリアミンとの反応が温和な条件で収率よく進行する点から好ましい。
ポリアミンにおけるアミノ基を疎水基で修飾する際の方法は、特に限定されず、公知の方法で行うことができる。例えば、ポリアミンと疎水基を導入するための化合物とを含む溶液を、所定の条件下で撹拌することにより行うことができる。
疎水基の構造は、以下の一般式（４）または（５）の構造であってもよい。
［式（４）および（５）中、
Ｒ１は、複素環基であり、
＊は、ポリアミンにおけるアミノ基との結合部位である］。
Ｒ１は、複素環基であり、
＊は、ポリアミンにおけるアミノ基との結合部位である］。
Ｒ１の複素環基としては、特に限定されないが、窒素原子を含む複素環基が好ましく、窒素原子を有する芳香族複素環基がより好ましい。複素環基における複素環として、具体的には、ピリジン、イミダゾール、ベンズイミダゾール、ピラゾール、イミダゾリン、ピラジン、インドール、イソインドール、キノリン、イソキノリン、キノキサリン等が挙げられ、ピリジン、イミダゾール、およびベンズイミダゾールが好ましい。
複素環基における炭素原子は、置換基を有していてもよい。置換基としては、アルキル基やアルコキシ基が挙げられ、メチル基およびメトシキ基であることが好ましい。
複素環基における炭素原子は、置換基を有していてもよい。置換基としては、アルキル基やアルコキシ基が挙げられ、メチル基およびメトシキ基であることが好ましい。
上記式（４）で表される疎水基をポリアミンに導入するには、例えば、ポリアミンにおけるアミノ基にメタクリル基を結合させ、さらにメタクリル基に複素環含有基を結合させる。メタクリル基は、ポリアミンにおけるアミノ基と無水メタクリル酸、メタクリル酸の酸塩化物、またはメタクリル酸から誘導される活性エステル化合物などとを反応させることにより導入することができる。また、複素環含有基は、複素環基含有化合物をアミノ基に結合したメタクリル基と反応させることにより導入することができる。複素環基含有化合物は、例えば複素環基およびチオール基を含んでおり、この場合、チオール基がメタクリル基と反応する。
上記式（５）で表される疎水基をポリアミンに導入するには、例えば、ポリアミンにおけるアミノ基にアリル基を結合させ、さらにアリル基に複素環含有基を結合させる。アリル基は、ポリアミンにおけるアミノ基と、アミノ基と結合する官能基およびアリル基を併せ持つ化合物（例えば、アリルグリシジルエーテル）とを反応させることにより導入することができる。また、複素環含有基は、複素環基含有化合物をアミノ基に結合したアリル基と反応させることにより導入することができる。複素環基含有化合物は、例えば複素環基およびチオール基を含んでおり、この場合、チオール基がアリル基またはアリル基から誘導される官能基と反応する。
上記式（４）および（５）で表される疎水基の導入において使用される複素環基含有化合物は、複素環基を導入できる限り特に限定されないが、複素環基およびチオール基を含む化合物が好ましい。そのような化合物として、例えば、２−メルカプトエチルピリジン、２−メルカプトベンズイミダゾール、２−メルカプト−４−メチルイミダゾール、２−メルカプト−４，５−メチルイミダゾール等が挙げられる。
本発明においては、ポリアミンにおけるアミノ基の２０〜４０％が疎水基で修飾されている、すなわちアミノ基の修飾率が２０〜４０％である。このアミノ基の修飾率は、ポリアミン中に存在する第一級アミノ基の全数に基づく値であり、例えばポリアミンに１００個の第一級アミノ基が存在する場合、そのうちの２０〜４０個が疎水基で修飾されていることを意味する。アミノ基の修飾率は、２０〜４０％であることが好ましく、２０〜３０％であることがより好ましい。ポリアミンと疎水基を導入するための化合物とを反応させる際に、疎水基を導入するための化合物の量を調節することにより、アミノ基の修飾率が上記範囲になるように調節することができる。アミノ基の修飾率は、疎水基を導入する前後でクロマトグラフィー担体のイオン交換容量をそれぞれ測定し、その値を比較することにより算出することができる。
本発明の他の実施形態によると、０．２ＭのＮａＣｌ溶液下で、クロマトグラフィー担体１ｍＬ当りのウシ血清アルブミンに対する静的結合容量が６０ｍｇ以上であるクロマトグラフィー担体が提供される。このような要件を満たすクロマトグラフィー担体は、十分な耐塩性を有すると評価でき、バイオ医薬品の精製において有利に使用することができる。
本発明の他の実施形態によると、上述したクロマトグラフィー担体を用いてタンパク質を含む試料を分離精製することを含む、タンパク質の精製方法が提供される。この分離精製は、０．１５Ｍ以上のＮａＣｌ溶液下においても問題なく行うことができる。
本発明の他の実施形態によると、上述したクロマトグラフィー担体を用いてタンパク質を含む試料を分離精製することを含む、タンパク質の精製方法が提供される。この分離精製は、０．１５Ｍ以上のＮａＣｌ溶液下においても問題なく行うことができる。
以下、本発明を実施例により詳細に説明するが、本発明の内容がこれにより限定されるものではない。
＜実施例１＞
〔６％球状セルロース粒子（含水）の製造〕
６％球状セルロース粒子を、以下の手順に従って製造した。ここで、以下の（１）の工程で結晶性セルロースの濃度が６重量％である場合に、製造されるセルロース粒子を「６％球状セルロース粒子」と呼ぶ。
（１）１００ｇのチオシアン酸カルシウム６０重量％水溶液に、６．４ｇの結晶性セルロース（旭化成ケミカルズ株式会社製、商品名：セオラスＰＨ１０１）を加え、１１０〜１２０℃に加熱して溶解した。
（２）この溶液に、界面活性剤としてソルビタンモノオレエート６ｇを添加した。それを、１３０〜１４０℃に予め加熱したｏ−ジクロロベンゼン４８０ｍＬ中に滴下し、２００〜３００ｒｐｍにて撹拌して分散液を得た。
（３）次いで、上記分散液を４０℃まで冷却した。それをメタノール１９０ｍＬ中に注ぎ、粒子の懸濁液を得た。
（４）得られた懸濁液を濾過分別して粒子を回収し、その粒子をメタノール１９０ｍＬで洗浄した。この洗浄操作を数回行った。
（５）さらに大量の水で粒子を洗浄し、球状セルロース粒子を得た。
（６）次いで、この球状セルロース粒子をＪＩＳ標準ふるい規格５３μｍ〜１２５μｍのふるいにかけて、所望の粒子径（粒子径：５０〜１５０μｍ、平均粒子径：約１００μｍ）を有する６％球状セルロース粒子（含水、セルロース溶解濃度：６重量％）を得た。
＜実施例１＞
〔６％球状セルロース粒子（含水）の製造〕
６％球状セルロース粒子を、以下の手順に従って製造した。ここで、以下の（１）の工程で結晶性セルロースの濃度が６重量％である場合に、製造されるセルロース粒子を「６％球状セルロース粒子」と呼ぶ。
（１）１００ｇのチオシアン酸カルシウム６０重量％水溶液に、６．４ｇの結晶性セルロース（旭化成ケミカルズ株式会社製、商品名：セオラスＰＨ１０１）を加え、１１０〜１２０℃に加熱して溶解した。
（２）この溶液に、界面活性剤としてソルビタンモノオレエート６ｇを添加した。それを、１３０〜１４０℃に予め加熱したｏ−ジクロロベンゼン４８０ｍＬ中に滴下し、２００〜３００ｒｐｍにて撹拌して分散液を得た。
（３）次いで、上記分散液を４０℃まで冷却した。それをメタノール１９０ｍＬ中に注ぎ、粒子の懸濁液を得た。
（４）得られた懸濁液を濾過分別して粒子を回収し、その粒子をメタノール１９０ｍＬで洗浄した。この洗浄操作を数回行った。
（５）さらに大量の水で粒子を洗浄し、球状セルロース粒子を得た。
（６）次いで、この球状セルロース粒子をＪＩＳ標準ふるい規格５３μｍ〜１２５μｍのふるいにかけて、所望の粒子径（粒子径：５０〜１５０μｍ、平均粒子径：約１００μｍ）を有する６％球状セルロース粒子（含水、セルロース溶解濃度：６重量％）を得た。
なお、ここでの平均粒子径は、光学顕微鏡で撮影した画像を使用して測定した。具体的には、ノギスを用いて画像上の粒子径を計測し、撮影倍率から元の粒子径を求めた。そして、光学顕微鏡画像から求めたそれぞれの粒子径の値から、下記の式によって平均粒子径を算出した。
体積平均粒子径（ＭＶ）＝Σ（ｎｄ４）／Σ（ｎｄ３）
［式中、ｄは光学顕微鏡画像から求めた各粒子の粒子径の値を表し、ｎは測定した粒子の個数を表す。］
体積平均粒子径（ＭＶ）＝Σ（ｎｄ４）／Σ（ｎｄ３）
［式中、ｄは光学顕微鏡画像から求めた各粒子の粒子径の値を表し、ｎは測定した粒子の個数を表す。］
〔架橋６％セルロース粒子の製造〕
上記で製造した６％球状セルロース粒子を架橋反応させ、架橋６％セルロース粒子を製造した。その手順は以下の通りである。
（１）上記で得られた６％球状セルロース粒子（含水）１００ｇに１２１ｇの純水を加え、撹拌しながら加温した。３０℃に到達したところで、４５重量％のＮａＯＨ水溶液３．３ｇおよびＮａＢＨ４０．５ｇを加え、さらに加温および撹拌した。ここでの初期アルカリ濃度は、０．６９％（ｗ／ｗ）であった。
（２）３０分後、４５℃に加温された反応液に６０ｇのＮａ２ＳＯ４を加え、溶解させた。混合物の温度が５０℃に到達した時点から、温度を５０℃に維持しながらさらに２時間撹拌を継続した。
（３）５０℃で混合物の撹拌を継続しながら、４５重量％のＮａＯＨ水溶液４８ｇと、エピクロロヒドリン５０ｇとをそれぞれ２５等分した量を、１５分おきにおよそ６時間かけて添加した。
（４）添加終了後、この混合物を温度５０℃で１６時間反応させた。
（５）反応混合物を４０℃に冷却した後、酢酸２．６ｇを加えて中和した。
（６）反応混合物を濾過してセルロース粒子を回収し、セルロース粒子を純水で濾過洗浄して架橋６％セルロース粒子を得た。
上記で製造した６％球状セルロース粒子を架橋反応させ、架橋６％セルロース粒子を製造した。その手順は以下の通りである。
（１）上記で得られた６％球状セルロース粒子（含水）１００ｇに１２１ｇの純水を加え、撹拌しながら加温した。３０℃に到達したところで、４５重量％のＮａＯＨ水溶液３．３ｇおよびＮａＢＨ４０．５ｇを加え、さらに加温および撹拌した。ここでの初期アルカリ濃度は、０．６９％（ｗ／ｗ）であった。
（２）３０分後、４５℃に加温された反応液に６０ｇのＮａ２ＳＯ４を加え、溶解させた。混合物の温度が５０℃に到達した時点から、温度を５０℃に維持しながらさらに２時間撹拌を継続した。
（３）５０℃で混合物の撹拌を継続しながら、４５重量％のＮａＯＨ水溶液４８ｇと、エピクロロヒドリン５０ｇとをそれぞれ２５等分した量を、１５分おきにおよそ６時間かけて添加した。
（４）添加終了後、この混合物を温度５０℃で１６時間反応させた。
（５）反応混合物を４０℃に冷却した後、酢酸２．６ｇを加えて中和した。
（６）反応混合物を濾過してセルロース粒子を回収し、セルロース粒子を純水で濾過洗浄して架橋６％セルロース粒子を得た。
得られた架橋６％セルロース粒子の平均粒子径およびＫａｖ値を、以下の通り測定した。
（平均粒子径の測定）
レーザー回折／散乱式の粒子径分布測定装置ＬＡ−９５０（株式会社堀場製作所製）を用いて平均粒子径を測定したところ、８５μｍであった。
（平均粒子径の測定）
レーザー回折／散乱式の粒子径分布測定装置ＬＡ−９５０（株式会社堀場製作所製）を用いて平均粒子径を測定したところ、８５μｍであった。
（Ｋａｖ値の測定）
ゲル分配係数Ｋａｖは、重量平均分子量１．５×１０５Ｄａの標準ポリエチレンオキシドをサンプルとして用い、その保持容量とカラム体積との関係から、次式により算出した。なお、移動相としては純水を使用した。
Ｋａｖ＝（Ｖｅ−Ｖ０）／（Ｖｔ−Ｖ０）
［式中、Ｖｅはサンプルの保持容量（ｍＬ）、Ｖｔは空カラム体積（ｍＬ）、Ｖ０はブルーデキストランの保持容量（ｍＬ）を表す。］
上記で得られた架橋６％セルロース粒子のゲル分配係数Ｋａｖは、０．３８であった。
ゲル分配係数Ｋａｖは、重量平均分子量１．５×１０５Ｄａの標準ポリエチレンオキシドをサンプルとして用い、その保持容量とカラム体積との関係から、次式により算出した。なお、移動相としては純水を使用した。
Ｋａｖ＝（Ｖｅ−Ｖ０）／（Ｖｔ−Ｖ０）
［式中、Ｖｅはサンプルの保持容量（ｍＬ）、Ｖｔは空カラム体積（ｍＬ）、Ｖ０はブルーデキストランの保持容量（ｍＬ）を表す。］
上記で得られた架橋６％セルロース粒子のゲル分配係数Ｋａｖは、０．３８であった。
〔架橋６％セルロース粒子のエポキシ化〕
上記で得られた架橋６％セルロース粒子５００ｇを２Ｌセパラブルフラスコに入れ、純水７４５ｇを加えてスラリーとした。温浴で液温を２６℃まで上げ、４８．７重量％水酸化ナトリウム水溶液を液温が３０℃を超えないように時間をかけて加えた。その後、エピクロロヒドリン３４３ｇを加え、液温３０℃で２時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過により回収し、回収したセルロース粒子を１Ｌの純水で１０回洗浄してエポキシ化セルロース粒子を得た。
上記で得られた架橋６％セルロース粒子５００ｇを２Ｌセパラブルフラスコに入れ、純水７４５ｇを加えてスラリーとした。温浴で液温を２６℃まで上げ、４８．７重量％水酸化ナトリウム水溶液を液温が３０℃を超えないように時間をかけて加えた。その後、エピクロロヒドリン３４３ｇを加え、液温３０℃で２時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過により回収し、回収したセルロース粒子を１Ｌの純水で１０回洗浄してエポキシ化セルロース粒子を得た。
〔ポリアリルアミン付加〕
上記で得られたエポキシ化セルロース粒子１５０ｇを１Ｌセパラブルフラスコに入れ、重量平均分子量５０００のポリアリルアミン２０％（ｗ/ｗ）水溶液ＰＡＡ−０５（ニットーボーメディカル株式会社製）３８５ｇを加えて、４５℃で１８時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を３００ｍＬの純水で１０回洗浄して、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。このポリアリルアミン付加セルロース粒子のイオン交換容量は、０．２２ｍｍｏｌ／ｍＬであった。イオン交換容量の測定方法は、後述する通りである。
〔疎水基による修飾〕
上記で得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子１５ｇを、４５ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を５０ｍＬ遠沈管に入れ、そこにメタノール１５ｍＬを加えてスラリーとした。その後、無水吉草酸０．３０ｇおよびトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．３０ｇを加え、２５℃で２４時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を１００ｍＬのメタノールで１回、１００ｍＬの純水で５回洗浄して、疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
上記で得られたエポキシ化セルロース粒子１５０ｇを１Ｌセパラブルフラスコに入れ、重量平均分子量５０００のポリアリルアミン２０％（ｗ/ｗ）水溶液ＰＡＡ−０５（ニットーボーメディカル株式会社製）３８５ｇを加えて、４５℃で１８時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を３００ｍＬの純水で１０回洗浄して、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。このポリアリルアミン付加セルロース粒子のイオン交換容量は、０．２２ｍｍｏｌ／ｍＬであった。イオン交換容量の測定方法は、後述する通りである。
〔疎水基による修飾〕
上記で得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子１５ｇを、４５ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を５０ｍＬ遠沈管に入れ、そこにメタノール１５ｍＬを加えてスラリーとした。その後、無水吉草酸０．３０ｇおよびトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．３０ｇを加え、２５℃で２４時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を１００ｍＬのメタノールで１回、１００ｍＬの純水で５回洗浄して、疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例１＞
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水吉草酸の量を０．６０ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を０．６０ｇとしたことを除き、実施例１と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水吉草酸の量を０．６０ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を０．６０ｇとしたことを除き、実施例１と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例２＞
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水吉草酸の量を１．４０ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を１．４１ｇとしたことを除き、実施例１と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水吉草酸の量を１．４０ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を１．４１ｇとしたことを除き、実施例１と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜実施例２＞
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子１５ｇを、４５ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を５０ｍＬ遠沈管に入れ、そこにメタノール１５ｍＬを加えてスラリーとした。その後、無水安息香酸０．３５ｇおよびトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．３５ｇを加え、２５℃で２４時間回転撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を１００ｍＬのメタノールで１回、１００ｍＬの純水で５回洗浄して、疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子１５ｇを、４５ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を５０ｍＬ遠沈管に入れ、そこにメタノール１５ｍＬを加えてスラリーとした。その後、無水安息香酸０．３５ｇおよびトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．３５ｇを加え、２５℃で２４時間回転撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を１００ｍＬのメタノールで１回、１００ｍＬの純水で５回洗浄して、疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例３＞
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水安息香酸の量を０．７２ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を０．７３ｇとしたことを除き、実施例２と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水安息香酸の量を０．７２ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を０．７３ｇとしたことを除き、実施例２と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例４＞
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水安息香酸の量を１．６６ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を１．６７ｇとしたことを除き、実施例２と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水安息香酸の量を１．６６ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を１．６７ｇとしたことを除き、実施例２と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例５＞
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子１５ｇを、４５ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を５０ｍＬ遠沈管に入れ、そこにメタノール１５ｍＬを加えてスラリーとした。その後、無水酢酸０．２０ｇおよびトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．１５ｇを加え、２５℃で２４時間回転撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を１００ｍＬのメタノールで１回、１００ｍＬの純水で５回洗浄して、疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子１５ｇを、４５ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を５０ｍＬ遠沈管に入れ、そこにメタノール１５ｍＬを加えてスラリーとした。その後、無水酢酸０．２０ｇおよびトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．１５ｇを加え、２５℃で２４時間回転撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を１００ｍＬのメタノールで１回、１００ｍＬの純水で５回洗浄して、疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例６＞
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水酢酸の量を０．３５ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を０．３５ｇとしたことを除き、比較例５と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水酢酸の量を０．３５ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を０．３５ｇとしたことを除き、比較例５と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例７＞
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水酢酸の量を０．８０ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を０．８１ｇとしたことを除き、比較例５と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例１と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水酢酸の量を０．８０ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を０．８１ｇとしたことを除き、比較例５と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜実施例３＞
実施例１と同様に、エポキシ化セルロース粒子を製造した。
得られたエポキシ化セルロース粒子１５０ｇを１Ｌセパラブルフラスコに入れ、重量平均分子量１５０００のポリアリルアミン１５％（ｗ/ｗ）水溶液ＰＡＡ−１５Ｃ（ニットーボーメディカル株式会社製）２８０ｇを加えて、４５℃で１８時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収した湿潤粒子を３００ｍＬの純水で１０回洗浄して、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。このポリアリルアミン付加セルロース粒子のイオン交換容量は、０．２９ｍｍｏｌ／ｍＬであった。イオン交換容量の測定方法は、後述する通りである。
実施例１と同様に、エポキシ化セルロース粒子を製造した。
得られたエポキシ化セルロース粒子１５０ｇを１Ｌセパラブルフラスコに入れ、重量平均分子量１５０００のポリアリルアミン１５％（ｗ/ｗ）水溶液ＰＡＡ−１５Ｃ（ニットーボーメディカル株式会社製）２８０ｇを加えて、４５℃で１８時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収した湿潤粒子を３００ｍＬの純水で１０回洗浄して、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。このポリアリルアミン付加セルロース粒子のイオン交換容量は、０．２９ｍｍｏｌ／ｍＬであった。イオン交換容量の測定方法は、後述する通りである。
〔疎水基による修飾〕
上記で得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子１５ｇを、４５ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を５０ｍＬ遠沈管に入れ、そこにメタノール１５ｍＬを加えてスラリーとした。その後、無水吉草酸０．３７ｇおよびトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．３７ｇを加え、２５℃で２４時間回転撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を１００ｍＬのメタノールで１回、１００ｍＬの純水で５回洗浄して、疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
上記で得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子１５ｇを、４５ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を５０ｍＬ遠沈管に入れ、そこにメタノール１５ｍＬを加えてスラリーとした。その後、無水吉草酸０．３７ｇおよびトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．３７ｇを加え、２５℃で２４時間回転撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を１００ｍＬのメタノールで１回、１００ｍＬの純水で５回洗浄して、疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例８＞
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水吉草酸の量を０．８７ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を０．８８ｇとしたことを除き、実施例３と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水吉草酸の量を０．８７ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を０．８８ｇとしたことを除き、実施例３と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例９＞
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水吉草酸の量を２．５０ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を２．５２ｇとしたことを除き、実施例３と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水吉草酸の量を２．５０ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を２．５２ｇとしたことを除き、実施例３と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜実施例４＞
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子１５ｇを、４５ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を５０ｍＬ遠沈管に入れ、そこにメタノール１５ｍＬを加えてスラリーとした。その後、無水安息香酸０．５０ｇおよびトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．５０ｇを加え、２５℃で２４時間回転撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を１００ｍＬのメタノールで１回、１００ｍＬの純水で５回洗浄して、疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子１５ｇを、４５ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を５０ｍＬ遠沈管に入れ、そこにメタノール１５ｍＬを加えてスラリーとした。その後、無水安息香酸０．５０ｇおよびトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．５０ｇを加え、２５℃で２４時間回転撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を１００ｍＬのメタノールで１回、１００ｍＬの純水で５回洗浄して、疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例１０＞
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水安息香酸の量を１．００ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を１．０１ｇとしたことを除き、実施例４と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水安息香酸の量を１．００ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を１．０１ｇとしたことを除き、実施例４と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
＜比較例１１＞
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水安息香酸の量を３．００ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を３．０２ｇとしたことを除き、実施例４と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
添加する無水安息香酸の量を３．００ｇ、トリスヒドロキシメチルアミノメタンの量を３．０２ｇとしたことを除き、実施例４と同様に疎水基で修飾されたポリアリルアミン付加セルロース粒子を得た。
上記実施例および比較例で作製したクロマトグラフィー担体について、イオン交換容量、アミノ基の修飾率およびＢＳＡ吸着量を測定した。測定方法は以下の通りであり、測定結果を表１に示す。
＜測定方法＞
（１）イオン交換容量
１ｍＬのクロマトグラフィー担体（湿潤ゲルの状態でカラムに詰めた際に容積１ｍＬを構成する量のクロマトグラフィー担体）を、５０ｍＬ三角フラスコに加えた。そこに０．０１ｍｏｌ／Ｌの塩酸水溶液５０ｍＬを加えて軽く振とうした。１時間室温で静置後、上澄み１０ｍＬをホールピペットで５０ｍＬビーカーに量りとった。そこにフェノールフタレイン溶液を加え、０．０１ｍｏｌ／Ｌの水酸化ナトリウム水溶液で滴定した。滴定量から塩酸の吸着量を計算し、クロマトグラフィー担体１ｍＬ当たりのイオン交換容量を求めた。
（１）イオン交換容量
１ｍＬのクロマトグラフィー担体（湿潤ゲルの状態でカラムに詰めた際に容積１ｍＬを構成する量のクロマトグラフィー担体）を、５０ｍＬ三角フラスコに加えた。そこに０．０１ｍｏｌ／Ｌの塩酸水溶液５０ｍＬを加えて軽く振とうした。１時間室温で静置後、上澄み１０ｍＬをホールピペットで５０ｍＬビーカーに量りとった。そこにフェノールフタレイン溶液を加え、０．０１ｍｏｌ／Ｌの水酸化ナトリウム水溶液で滴定した。滴定量から塩酸の吸着量を計算し、クロマトグラフィー担体１ｍＬ当たりのイオン交換容量を求めた。
（２）アミノ基の修飾率
ベース担体に結合したポリアミンのアミノ基を疎水基で修飾する前および後（以下、「疎水基での修飾前」および「疎水基での修飾後」とも称する）のクロマトグラフィー担体について、それぞれイオン交換容量を上記の方法で測定した。測定したイオン交換容量の値を用い、下式よりポリアミンにおけるアミノ基の修飾率を計算した。
ベース担体に結合したポリアミンのアミノ基を疎水基で修飾する前および後（以下、「疎水基での修飾前」および「疎水基での修飾後」とも称する）のクロマトグラフィー担体について、それぞれイオン交換容量を上記の方法で測定した。測定したイオン交換容量の値を用い、下式よりポリアミンにおけるアミノ基の修飾率を計算した。
（３）ＢＳＡ吸着量（静的結合容量）
クロマトグラフィー担体０．１ｇを１５ｍＬ遠沈管に入れ、そこに５０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌバッファー（ｐＨ８．５）に溶解した３ｍｇ／ｍＬのＢＳＡ溶液を１０ｍＬ加えて、２４時間室温で回転撹拌した。その後、遠心分離で固液を分離し、上澄みの吸光度（２８０ｎｍ）を測定した。予め測定しておいたＢＳＡ溶液の吸光度（２８０ｎｍ）と上記で測定した上澄みの吸光度との差から、ＢＳＡ吸着量を求めた。最後に、クロマトグラフィー担体の重量および体積を考慮して、クロマトグラフィー担体１ｍＬ当たりのＢＳＡ吸着量を計算した。
クロマトグラフィー担体０．１ｇを１５ｍＬ遠沈管に入れ、そこに５０ｍＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌバッファー（ｐＨ８．５）に溶解した３ｍｇ／ｍＬのＢＳＡ溶液を１０ｍＬ加えて、２４時間室温で回転撹拌した。その後、遠心分離で固液を分離し、上澄みの吸光度（２８０ｎｍ）を測定した。予め測定しておいたＢＳＡ溶液の吸光度（２８０ｎｍ）と上記で測定した上澄みの吸光度との差から、ＢＳＡ吸着量を求めた。最後に、クロマトグラフィー担体の重量および体積を考慮して、クロマトグラフィー担体１ｍＬ当たりのＢＳＡ吸着量を計算した。
上記において、ＢＳＡ溶液は各実施例および比較例につき以下に示す３種類を用意し、それぞれについて試験を行った。
・ＢＳＡ溶液におけるＮａＣｌ濃度＝０Ｍ（電気伝導度：１．５ｍＳ／ｃｍ）
・ＢＳＡ溶液におけるＮａＣｌ濃度＝０．１Ｍ（電気伝導度：１１．７ｍＳ／ｃｍ）
・ＢＳＡ溶液におけるＮａＣｌ濃度＝０．２Ｍ（電気伝導度：２１．１ｍＳ／ｃｍ）
・ＢＳＡ溶液におけるＮａＣｌ濃度＝０Ｍ（電気伝導度：１．５ｍＳ／ｃｍ）
・ＢＳＡ溶液におけるＮａＣｌ濃度＝０．１Ｍ（電気伝導度：１１．７ｍＳ／ｃｍ）
・ＢＳＡ溶液におけるＮａＣｌ濃度＝０．２Ｍ（電気伝導度：２１．１ｍＳ／ｃｍ）
表１に示すように、実施例１〜４のクロマトグラフィー担体は、イオン交換容量を保持しながら、０．２ＭのＮａＣｌ溶液下で、クロマトグラフィー担体１ｍＬ当り６０ｍｇ以上のＢＳＡ吸着量を有している。従って、実施例１〜４のクロマトグラフィー担体は、耐塩性を有すると言える。このようなクロマトグラフィー担体は、タンパク質の精製において特に有用である。
＜比較例１２＞
アリルグリシジルエーテル付加
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子３０ｇを、１５０ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を１５０ｍＬフラスコに入れそこにメタノール６０ｍＬを加えてスラリーとした。その後メタノール１．０ｍＬに溶解させたアリルグリシジルエーテル１．５０ｇを加え２５℃で２４時間、その後４０℃に昇温しさらに２４時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を５０ｍＬのメタノールで３回、１００ｍＬの純水で５回洗浄してアリルグリシジルエーテル付加セルロース粒子を得た。
アリルグリシジルエーテル付加
実施例３と同様に、ポリアリルアミン付加セルロース粒子を製造した。
得られたポリアリルアミン付加セルロース粒子３０ｇを、１５０ｍＬのメタノールで５回洗浄した。メタノール洗浄した粒子を１５０ｍＬフラスコに入れそこにメタノール６０ｍＬを加えてスラリーとした。その後メタノール１．０ｍＬに溶解させたアリルグリシジルエーテル１．５０ｇを加え２５℃で２４時間、その後４０℃に昇温しさらに２４時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を５０ｍＬのメタノールで３回、１００ｍＬの純水で５回洗浄してアリルグリシジルエーテル付加セルロース粒子を得た。
４−ピリジンエタンチオール付加
得られたアリルグリシジルエーテル付加セルロース粒子８ｇを１５０ｍＬフラスコに入れそこに純水５０ｍＬを加えスラリーとした。その後フラスコ内を減圧と窒素置換を三回繰り返すことで窒素置換した。次に純水５．０ｍＬに溶解させた４−ピリジンエタンチオール塩酸塩０．８ｇを窒素気流化でフラスコ内に加えた。次に純水５．０ｍＬに溶解させたＶ−５０（ラジカル開始剤）０．３１ｇを窒素気流化でフラスコ内に加えた。その後６０℃に昇温し窒素雰囲気下で１８時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を３０ｍＬの純水で４回、３０ｍＬの１Ｍ食塩水で３回、５０ｍＬの純水で５回洗浄して４−ピリジンエタンチオール付加セルロース粒子を得た。得られた粒子のＮ含量は４．０％、Ｓ含量は３．２％だった。
得られたアリルグリシジルエーテル付加セルロース粒子８ｇを１５０ｍＬフラスコに入れそこに純水５０ｍＬを加えスラリーとした。その後フラスコ内を減圧と窒素置換を三回繰り返すことで窒素置換した。次に純水５．０ｍＬに溶解させた４−ピリジンエタンチオール塩酸塩０．８ｇを窒素気流化でフラスコ内に加えた。次に純水５．０ｍＬに溶解させたＶ−５０（ラジカル開始剤）０．３１ｇを窒素気流化でフラスコ内に加えた。その後６０℃に昇温し窒素雰囲気下で１８時間撹拌した。反応終了後、セルロース粒子を濾過し、回収したセルロース粒子を３０ｍＬの純水で４回、３０ｍＬの１Ｍ食塩水で３回、５０ｍＬの純水で５回洗浄して４−ピリジンエタンチオール付加セルロース粒子を得た。得られた粒子のＮ含量は４．０％、Ｓ含量は３．２％だった。
〈測定方法〉
（４）Ｎ含量測定方法
比較例１２，１３のＮ含量測定は全自動元素分析装置ＪＭ１０（ジェイ・サイエンス社）を用いて測定した。
（４）Ｎ含量測定方法
比較例１２，１３のＮ含量測定は全自動元素分析装置ＪＭ１０（ジェイ・サイエンス社）を用いて測定した。
（５）Ｓ含量測定方法
比較例１２、１３のＳ含量測定はＩＣＰ発光分光分析装置ｉＣＡＰ６０００（サーモフィッシャー製）を用いて測定した。測定の際の前処理として測定試料０．０２ｇを硝酸１５ｍＬ、過塩素酸２ｍＬで分解後、塩酸を加え５０ｍＬに定容した。
比較例１２、１３のＳ含量測定はＩＣＰ発光分光分析装置ｉＣＡＰ６０００（サーモフィッシャー製）を用いて測定した。測定の際の前処理として測定試料０．０２ｇを硝酸１５ｍＬ、過塩素酸２ｍＬで分解後、塩酸を加え５０ｍＬに定容した。
Claims (13)
- 多孔性粒子を含むベース担体と、
前記ベース担体に結合したポリアミンと
を含み、
前記ポリアミンにおけるアミノ基の２０〜４０％が疎水基で修飾されている
クロマトグラフィー担体。 - 前記ポリアミンが、ポリアリルアミン、ポリビニルアミン、キトサン、ポリリジン、ポリグアニジンおよびポリオルニチンからなる群より選択される請求項１に記載のクロマトグラフィー担体。
- 前記ポリアミンが、ポリアリルアミンである請求項２に記載のクロマトグラフィー担体。
- 前記ポリアリルアミンの重量平均分子量が、５０００〜１５０００である請求項３に記載のクロマトグラフィー担体。
- 前記疎水基が、以下の一般式（１）〜（３）のいずれかの構造を有する請求項１〜４のいずれか１項に記載のクロマトグラフィー担体：
ｎは、０〜８の整数であり、
Ｒ１は、ｎが０〜３の整数である場合はフェニル基であり、ｎが４〜８の整数である場合はＨまたはフェニル基であり、
＊は、前記ポリアミンにおけるアミノ基との結合部位である］。 - 前記疎水基が、前記一般式（１）の構造を有する請求項５に記載のクロマトグラフィー担体。
- 前記一般式（１）において、ｎが４〜８の整数であり、Ｒ１がＨである、請求項６に記載のクロマトグラフィー担体。
- 前記一般式（１）において、ｎが０〜８の整数であり、Ｒ１がフェニル基である、請求項６に記載のクロマトグラフィー担体。
- 前記疎水基が、無水吉草酸、無水カプロン酸、無水エナント酸、無水カプリル酸、無水ペラルゴン酸、無水安息香酸、ブチルグリシジルエーテル、およびフェニルグリシジルエーテルからなる群より選ばれる化合物に由来する基である請求項１〜４のいずれか１項に記載のクロマトグラフィー担体。
- 前記疎水基が、無水吉草酸または無水安息香酸に由来する基である請求項９に記載のクロマトグラフィー担体。
- ０．２ＭのＮａＣｌ溶液下で、クロマトグラフィー担体１ｍＬ当りのウシ血清アルブミンに対する静的結合容量が６０ｍｇ以上である、請求項１〜１０のいずれか１項に記載のクロマトグラフィー担体。
- 請求項１〜１１のいずれか１項に記載のクロマトグラフィー担体を用いてタンパク質を含む試料を分離精製することを含む、タンパク質の精製方法。
- 前記分離精製が、０．１５〜０．４ＭのＮａＣｌ溶液下で行われる請求項１２に記載のタンパク質の精製方法。
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