JP2015526510A - 塞栓用のミクロスフェアの製造方法及び薬物含有ナノ輸送体が結合されたミクロスフェアの製造方法 - Google Patents
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Abstract
Description
a)ミクロスフェアの懸濁液にトレハロース(trehalose)を添加してくれるの段階;
b)上記の懸濁液を氷点下50℃ないし氷点下100℃で凍結乾燥させて乾燥ミクロスフェアを製造する段階;及び
c)上記の乾燥ミクロスフェアを、水または緩衝溶液(buffer)に添加し、ボルテックス(vortexing)させる段階;を含む塞栓用のミクロスフェアの製造方法を提供することにその特徴がある。
本発明での用語「ボルテックス(渦、vortex)」とは、ある中心の周りに流体を回転運動させることを意味して、本発明の一実施例では、ボルテックス機(VM-96B、Jeio Tech、Korea)を用いてボルテックスさせたが、上記の機器に限定されるものではない。
a)ナノ輸送体に薬物を導入する段階;
b)上記の薬物が導入されたナノ輸送体をキトサン溶液に入れて混合溶液を作って攪拌させる段階;
c)上記の攪拌させた混合溶液をオイル及び有機溶媒を混合した溶液に入れて、界面活性剤を投入して攪拌する乳化工程;及び
d)上記の乳化された混合溶液に、グルタルアルデヒド飽和トルエンまたはゲニピンを点滴した後、攪拌する架橋段階。
セスキオレイン酸ソルビタン、ステアリン酸グリセリル、ポリソルベート60、ポリソルベート80、ソルビタントリオレホスフェート、ステアリン酸ソルビタン、イソステアリン酸PEG−20グリセリル、セテス−25、PEG-60 水素化ヒマシ油、ノノキシノール15、PEG-6デシルテトラデセス-20、ジメチコンコポリオール、ジイソステアリン酸グリセリル、セテス−24、セテアリルアルコール、ポリオキシエチレンノニルフェニルエーテル、PEG-40 水素化ヒマシ油、セチルジメチルチコンコポリオール、ポリグリセリル-3メチルグルコースジステレート、 PEG-100ステアレート、イソステアリン酸ソルビタン、ラウロイルグルタミン酸ナトリウム、ココアンホジ酢酸2Na、ラウリン酸ジエタノールアミド、ヤシ油脂肪酸ジエタノールアミド、 N,N-ビス(2-ヒドロキシエチル)-コカミド、及びコカミドプロピルベタインなどを用いることができるし、望ましくはセスキオレイン酸ソルビタン、ステアリン酸グリセリルまたはステアリン酸ソルビタンであり、さらに望ましくは本発明の実施例によってセスキオレイン酸ソルビタンであるが、これに限定されるものではない。
1.1.キトサンミクロスフェアの製造及び凍結
本発明の実施例では塞栓施術用のミクロスフェアの材料としてキトサンを使用しており、キトサンミクロスフェアの製造は本発明者が以前開発した方法を利用した(大韓民国登録特許第10-1058196号)。まずキトサン(約85%がジアセチル化された)を5%(v/v)酢酸水溶液に溶解させて4%(w/v)濃度のキトサン溶液を製造しており、粘性のある上記のキトサン溶液にキトサン比ポリエチレングリコール(PEG、分子量20,000 g/mol)を3対7の重量比率(w:w)で混合されるように入れて、室温でポリエチレングリコールが完全に解けるまで60分程度を攪拌して混ぜた。上記の溶液にドキソルビシンを加えてトリポリりん酸塩を加えて、60分間、ゲル化過程を経た。流動パラフィンと石油エーテルを7:5の体積比率で混合した溶液60mlに乳化剤としてセスキオレイン酸ソルビタン(sorbitan sesquioleate)を6ml加えた溶液と上記のゲル化過程を経たキトサン/ポリエチレン・グリコールの溶液を6mlを加えて、10分間、1000rpmで攪拌させて乳化させた。 そして架橋化(cross-linking)のためにグルタルアルデヒド(glutaraldehyde)飽和トルエン(toluene)8mlをゆっくり適加えた後60分間、1000rpmで攪拌させた。架橋されたキトサンミクロスフェアはその後、残った有機溶媒を除去するために、石油エーテルで3回、アセトンで1回洗浄されて、また水で3回洗浄した。上記の洗浄されたミクロスフェアは多孔性の構造になるように室温で維持される振盪恒温水槽で24時間放置して親水性であるポリエチレングリコールを抽出した。その結果、400μm前後の球形のキトサンミクロスフェアが製造された。
凍結乾燥処理されたキトサンミクロスフェアを再水和するのに最も適切な条件を選定するため振盪恒温水槽(BS-21、Jeio Tech、Korea)とボルテックス(vortexing)(VM-96B、Jeio Tech、Korea)を利用した方法を時間別に評価した。再水和する際には、塞栓用の粒子を注入する際に最も頻繁に使用される溶液である生理食塩水とX-ray造影剤(Iobrix injection、Taejoon Pharm Co.Ltd.Korea)の体積比率で1:1に混合した溶液を凍結乾燥前の体積と同様に3ml加えた後行った。
12時間、24時間の間、振盪恒温水槽を用いてキトサンミクロスフェアに再水和した後、回復性の評価のために篩を用いて粒子サイズ分布を評価して、顕微鏡を通じて粒子の形態を観察し、平均粒子サイズ及び球形性を測定した。この際に、ランダムに50個のキトサンミクロスフェアを選択して、サイズと球形性を測定し、画像解析ソフトウェア(Scopephoto、Hangzhou、China)を使用した。球状性の粒子の最も長い長さと短い長さの比で求められて、球形に近いほど1に近い数字が表現された。凍結乾燥前のミクロスフェアの平均サイズに比べて凍結乾燥した後、振盪恒温水槽を用いて50 rpmで12時間または24時間の間再水和させた粒子の平均サイズは小さくなって、キトサンミクロスフェアの形態が非常に不規則であった。これは、遅い水の浸透速度のために遅い速度で粒子が回復されたと考えられる。
ボルテックスの処理時間による効果及び凍結保護剤の種類による効果を比較して図1に示した。5分間ボルテックスさせたキトサンミクロスフェアのサイズ分布を図1の(A)に示した。200ないし500の間に均等な結果を取得、凍結乾燥前のキトサンミクロスフェアのサイズである400.5±42.0μmとは大きな差を見せた。図1の(b)は、10分間ボルテックスした結果として、300ないし500の結果を示し、ボルテックスさせた後のキトサンミクロスフェアのサイズが凍結乾燥前の元の粒子のサイズである400.5±42.0μmと同様になったということを確認できる。図1の(C)は、15分間ボルテックスした結果で、15分の時間の間ボルテックスされて、十分に回復された粒子の間に過度な衝突を起こすことにより、粒子のサイズが全体的に均一ではなかった。
最も効果的な凍結保護剤を選定し、選定された凍結保護剤を加える方法と、最も適切な濃度を選ぶための評価を実施した。
最も効果的な凍結保護剤を選定するためにグルコース(glucose)、ラクトース(lactose)、スクロース(sucrose)、トレハロース(trehalose)の4種類の糖をキトサンミクロスフェアの懸濁液に最終的に5%(w/v)の濃度になるように加えた後に凍結乾燥して再水和した後、回復性の評価のために篩を利用し、元の粒子のサイズである400.5±42.0μmの範囲である300ないし500μmに回復された粒子の重量分率を測定して図3に示した。また、顕微鏡を通じてミクロスフェアの形態を観察し、平均ミクロスフェアのサイズや球形性を測定した。 図3で見られるように、300ないし500μm範囲内のグルコースは50%に近い値であり、凍結保護剤を加えなかったキトサンミクロスフェアと統計学的に有意な差がない類似したサイズの回復性を示した。ラクトースは53%、スクロースは65%を見せた。トレハロースを加えた粒子は73%に近い値であり、上記の保護剤に比べて明確に優れた回復性を示した。 したがって、表1で確認できるように、凍結乾燥保護剤でトレハロースを使用する際に、キトサンミクロスフェアが最も優れた回復性を示したので、この後の評価ではトレハロースを使用した。
最適な凍結保護剤として選定されたトレハロースを、製造されたキトサンミクロスフェアの懸濁液に加える方法(method1)とキトサンミクロスフェアを製造する過程で加える方法(method2)を比較するために篩を利用して、元の粒子のサイズに回復された粒子の重量分率を測定して図4に示して、顕微鏡を通じて粒子の形態を観察し、平均直径と球形性を測定した。その結果、製造されたキトサン粒子懸濁液にトレハロースを加える方法(method1)を使用した際に300ないし500μmの値を有するキトサンミクロスフェアが60%ないし75%の重量分率を占めており、著しく優れていることが分かった。製造過程の中にトレハロースを加える方法を使用した際には、むしろ粒子の回復機能が減少する傾向が観察された。したがって、下記の評価では、トレハロースを粒子製造の後の懸濁液に加える方法を使用して評価を行った。
トレハロースの濃度による回復性を評価するために、キトサンミクロスフェアの懸濁液にトレハロースを3、5、10及び15%(w/ v)加えた後、凍結乾燥して再水和した後、ふるいを用いて元の粒子のサイズに回復された粒子の重量分率を測定して、顕微鏡を通じて粒子の形態を観察して、平均粒径と球形性を測定した。元の粒子のサイズに回復された割合を測定した際に、5%以上の濃度では、72%ないし75%にすべて同じような割合を有していることを、図4を通じて確認することができる。しかし、顕微鏡で粒子の形態を観察した際に、10%以上の濃度である場合、5%の場合よりも粒子の表面が非常に滑らかで球形性が良いであることが観察できた。10%と15%の回復能が似ていると測定がされたので、この後の評価では、トレハロース10%の濃度を使用して評価した
薬物を搭載しない塞栓用の粒子を対象とした上記の評価を通じて選定された最適の工程を抗がん剤であるドキソルビシン(doxorubicin)を搭載した粒子にも同様に適用して、同じ回復能を有するのかを評価した。まず、凍結乾燥前の薬物搭載の有無による粒子の物理的性質を比較評価するために顕微鏡を通じて観察した。その結果を図6に示したが、薬物を搭載しない粒子の色は黄色であり、薬物を搭載した粒子の色は、ドキソルビシン固有の色により赤い光を表すことが示されたという点以外の他の物理的性質はすべて同じものと評価された。凍結乾燥後の回復性の評価のために篩を用いて粒子サイズ分布を評価して図5に示した。顕微鏡を通じて粒子の形態を観察し、平均直径と球形性を測定して表2に示した。その結果、薬物搭載してもキトサンミクロスフェアのサイズは、300ないし500μmで、薬物の搭載が凍結乾燥過程及び回復性に影響を与えずに同じ結果を示すことが確認できた。
変形しやすい弾力性のある粒子がより優れた塞栓効果を示すというのは先行研究の結果に基づいて凍結乾燥前後の粒子の弾力性評価を実施した。キトサンミクロスフェアの弾力性の比較のためにテクスチャーアナライザー(TA plus、Lloyd Instrument Ltd.、UK)を用いて圧縮試験を行った。テクスチャーアナライザープローブ(probe)は、断面が平らで直径5mm、長さ50mmのものを使用し、100Nロードセル(load cell)を使用した。粒子のサイズは、マイクロ単位で非常に小さいため、約150個の粒子を単層に広げておいて、空気中の露出による粒子の乾燥を防ぐために生理食塩水に浸している状態で評価を行った。テクスチャーアナライザープローブ(probe)が粒子と接する直前の状態で評価を開始して1μm/ sの速度で圧縮して、ミクロスフェアの直径が30ないし50%変形するまで実験を行った。先行研究に基づいて測定された全圧縮力を全体の粒子の数で割って個々の粒子に加えられる圧縮力を測定した。
再水和方法による粒子の弾力性評価のために10%濃度のトレハロースを粒子懸濁液に加えて凍結乾燥した後、最適の再水和する方法で選ばれた10分間ボルテックスする工程を経た粒子とボルテックス工程なしに10分間生理食塩水に放置しておいた粒子の圧縮力を測定し比較して弾力性を評価した結果を図7に示したが、微細球の直径が20%変形したときの圧縮力を測定した結果、10分間ボルテックス工程を経た粒子の圧縮力は、2.96±0.40(×10-3N)であって、10分間放置して置いた粒子の圧縮力は、6.17±1.04(×10-3 N)で著しく高いことが測定された。圧縮力が高いほど、粒子が堅いことを意味し、これは粒子の弾力性と反比例する。結果として、再水和工程を経ていない粒子は、塞栓施術時に必要な条件である変形能が低いものと思われた。上記の結果は、ボルテックス工程を経た粒子がはるかに柔らかくて弾力性を回復したことを意味する。変位に伴う圧縮力変化の様相にも再水和工程の有無により、粒子の物性が大きく差があり、したがって、10分間ボルテックス工程が、粒子の回復を促進させることをもう一度確認することができる。
上記の評価の目的は、発明した回復性を最適化工程を経た粒子が凍結乾燥する前の粒子と同様の物性に回復がされることを確認するためのもので、その結果を図8に示した。微細球の直径が20%変形された時の圧縮力を測定した結果、凍結乾燥前の粒子は、2.56±0.30(x10-3 N)で測定されて、凍結乾燥の後に回復させた粒子は、2.96±0.40(x10-3N)に圧縮力が僅かに増加したが統計学的に有意な差はなかった。つまり、弾力性の変化がなく、元の状態に回復されたと判断することができる。また、圧縮実験前後の球形性の変化を測定した結果、統計的に有意な変化がなかったし、これは粒子の弾力性によって、圧縮実験の後、粒子が元の形態を回復したからであると思われる。
薬物放出様相を評価するための媒質はリゾチーム(lysozyme)140,000ユニットを含むpH6.0のリン酸緩衝生理食塩水(phosphate buffered saline)を使用して、4日間、薬物放出様相を観察した。150mgの粒子を透析袋(MW cut-off=12-14,000)に入れて、媒質30mlの入ったコニカルチューブ(conical tube)に入れて振盪恒温水槽で37±0.5℃に維持して、80rpmで振盪した。 0.5、1、2、4、6時間、そして1、2、4日間隔で放出媒質0.2mlを取って分析し、取った直後に同じ組成の媒質0.2mlを新たに加えた。放出されたドキソルビシンの分析は、マイクロプレートリーダー(microplate reader)(Synergy H1 Hybrid Reader、Bio Tek、Korea)で行われて、励起 (excitation)波長は480nm、発泡(emission)波長は550nmで測定した。その結果を図9に示した。製造直後にとった凍結乾燥前の粒子と凍結乾燥後の回復させた粒子の薬物放出様相が似ていることが確認できて、最終的に4日間、放出された量も同様に測定された。
2.1.ドキソルビシンリポソームの製造
メタノールとクロロホルムを1:1の割合で混ぜて混合溶液を作って、上記の混合溶液にリン脂質である大豆ホスファチジルコリン(soybean phosphatidylcholine)を入れて溶解させた。回転減圧蒸発器(rotary vacuum evaporator)を使用して溶媒を蒸発させた後に残った薄い脂質薄膜を250mMの硫酸アンモニウム(ammonium sulfate)溶液に水和させた。生成されたリポソームを押出機(extruder)を使用してサイズを調節した後、20%(w/ v)スクロース(sucrose)溶液に4回透析してリポソーム内外の硫酸アンモニウム濃度勾配(transmembrane ammonium sulfate gradient)を構成した。ドキソルビシン水溶液を上記で作ったリポソーム懸濁液に添加してドキソルビシン濃度が1 mg/ mlになるようした後、37±0.5℃で2時間振盪培養機(shaking incubator)を用いてドキソルビシンをリポソームに封入した。その後封入されていないドキソルビシンは遠心分離して分離した(2,000g、30分)。
上記のドキソルビシンリポソームで標本を取って分画分子量(molecular weight cut-off、MWCO)が100Kであるフィルターを搭載した容器に入れて30分間2,000gで遠心分離して、封入されていないドキソルビシンを分離した。分離されたドキソルビシンを480nmの励起波長(excitation wavelength)と550nmの発光波長(emission wavelength)で蛍光を測定し、その量を計算した。その後、測定された値に基づいて薬物封入効率と薬物封入量を計算した。その結果、ドキソルビシン結合キトサンミクロスフェアは、薬物封入効率が56.74%、薬物封入量は2.84%であり、ドキソルビシン含有リポソーム10mgと結合したキトサンミクロスフェアは、薬物封入効率が60.73%、薬物封入量は0.19%であって、ドキソルビシン含有リポソーム30mgと結合したキトサンミクロスフェアは、薬物封入効率が91.09%、薬物封入量は1.09%であり、ドキソルビシン含有リポソーム50mgと結合したキトサンミクロスフェアは、薬物封入効率が93.91%、薬物封入量は1.88%であった。
薬物封入効率(%)=((全体ドキソルビシンの質量−封入されないドキソルビシン)/全体ドキソルビシンの質量)×100
薬物封入量(%)=((封入されたドキソルビシン質量)/(リポソーム質量+封入されたドキソルビシン質量))×100
比較のためのドキソルビシン含有キトサンミクロスフェア(Dox-CSMS)とドキソルビシンリポソーム含有ミクロスフェアを乳化架橋法(emulsification-crosslinking method)で製造した。
ガラスバイアルにキトサンを5%酢酸溶液に4%になるように溶かした後、ドキソルビシンとドキソルビシンリポソームを入れて1時間攪拌した。図10で示したように、ドキソルビシンキトサンミクロスフェアの製造の際にドキソルビシンを6mg、キトサンミクロスフェアは、120mgとして製造し、ドキソルビシンリポソームが10mg含有されたキトサンミクロスフェア(LDox10-CSMS)の製造の際にドキソルビシンリポソームを0.5 mg、キトサンミクロスフェアは、120mgとして製造し、ドキソルビシンリポソームが30mg含有されたキトサンミクロスフェア(LDox30-CSMS)の製造の際にドキソルビシンリポソームを1.5mg、キトサンミクロスフェアは、120mgとして製造し、ドキソルビシンリポソームが50mg含有されたキトサンミクロスフェア(LDox50-CSMS)の製造の際にドキソルビシンリポソームを2.5mg、キトサンミクロスフェアは120mgで製造した。
架橋が終わった後、生成されたキトサンミクロスフェアを石油エーテルで3回、アセトンで1回、蒸留水で3回洗浄した。
上記の過程で架橋化まで終えた後、油状を取って封入されていないドキソルビシンの量を蛍光度を測定して計算した。この値を求めた後、上記の数学式1を利用してキトサンミクロスフェアの薬物封入効率を計算して、下記の数学式3を利用して薬物封入量を計算し、その結果を図10に示した。Dox-CSMSの薬物封入効率性は56.74%、 薬物封入量は2.84%であって、LDox10-CSMSの薬物封入効率性は60.73%、薬物封入量は0.19%で、LDox30-CSMSの薬物封入効率性は91.09%、薬物封入量は1.09%であり、LDox50-CSMSの薬物封入効率性は93.91%、 薬物封入量は1.88%であった。上記の結果を通じ、ドキソルビシンリポソームを含有するキトサンミクロスフェアの薬物封入効率が著しく高いことを確認することができた。
薬物封入量(%)=((封入されたドキソルビシン質量)/(キトサンの質量+封入されたドキソルビシン質量 ))×100
製造したドキソルビシン含有キトサンミクロスフェアとドキソルビシンリポソーム含有キトサンミクロスフェアをそれぞれ20mgずつ透析ビニールバックに入れてPBS buffer(pH=6.0、lysozyme 50,000units含有)が30mlずつ浸しているコニカルチューブ(conical tube)に上の透析ビニールバックを入れた。各コニカルチューブを振盪培養器に入れて37±0.5℃、80rpmに放出試験条件を設定した後、放出試験を施行して、各30分、1時間、2時間、4時間、6時間、24時間、及び48時間に0.2mlずつ溶液を採取した後、蛍光度を測定して放出されたドキソルビシンの量を測定した。0.2mlの溶液を採取した後には、すぐ同じ条件の溶媒を0.2mlずつコニカルのチューブに入れた。その結果を図12に示した。ドキソルビシンキトサンミクロスフェア(Dox-CSMS)の場合、24時間経過時140μgの放出量、ドキソルビシンリポソームが10mg含まれたキトサンミクロスフェア(LDox10-CSMS)の場合24時間経過時3μg、ドキソルビシンリポソームが30mg含まれたキトサンミクロスフェア(LDox30-CSMS)の場合24時間経過時18μg、ドキソルビシンリポソームが50mg含まれたキトサンミクロスフェア(LDox50-CSMS)の場合24時間経過時44μgの結果を見せた。ドキソルビシンリポソームの添加量によって薬物放出量が調節されることを見ることができて、結果的に、薬物を含有したナノ輸送体の添加量によって薬物放出が調節できることを確認した。
Claims (20)
- a)ミクロスフェア懸濁液にトレハロース(trehalose)を添加する段階;
b)上記の懸濁液を氷点下50℃ないし氷点下100℃で凍結乾燥させて、乾燥ミクロスフェアを製造する段階;及び
c)上記の乾燥ミクロスフェアを、水または緩衝溶液(buffer)に添加して、ボルテックス(vortexing)させる段階;を含む塞栓用のミクロスフェアの製造方法。 - 上記のミクロスフェアの材料は、キトサン、アルギン酸塩、キチン、ポリN-イソプロピルアクリルアミド(PNIPam)、ポリエチレングリコール(PEG)、ポリ乳酸(PLLA)、ポリDL-乳酸(PDLLA)、ポリグリコール酸(PGA)、ポリカプロラクトン(PCL)、ポリヒドロキシアルカノエート、ポリジオキサノン(PDS)、ポリトリメチレンカーボネート、 ポリ乳酸・グリコール酸(PLGA)、ポリL-乳酸-co-カプロラクトン(PLCL)、 ポリグリコール酸−co−カプロラクトン(PGCL)、ヒアルロン酸、コンドロイチン硫酸、デルマタン(dermatan)硫酸、カルボキシメチルセルロース、ヘパラン硫酸、ヘパリン、ケラタン硫酸、カルボキシメチルヒドロキシエチルセルロース、セルロース硫酸、セルロースホスフェート、カルボキシメチルグアル、カルボキシメチルヒドロキシプロピルグアル、カルボキシメチルヒドロキシエチルグアル、キサンタンガム、ゲランガム(gellan gum)、ウェランガム(welan gum)、ラムサンガム(rhamsan gum)、アガロース、 ファーセレラン(furcellaran)、ペクチン、アラビアガム、タラカントガム(gum tragacanth)、カラギーナン(carrageenans)、スターチホスフェート、デンプンコハク酸、グリコサミノグリカン、ポリサッカライド、ポリペプチド、アクリルアミド、N-ビニルピロリドン、ジメチルアクリルアミド、アクリル酸、メタクリル酸、無水マレイン酸、ビニルスルホン酸、スチレンカルボン酸2-アクリルアミド-2-メチル-プロパンスルホン酸、ビニルホスホン酸、2-メチルアクリロイルオキシエチルスルホン酸、ゼラチン、及びコラーゲンよりなる群から選択されることを特徴とする、請求項1に記載の塞栓用のミクロスフェアの製造方法。
- 上記のトレハロースは、ミクロスフェア懸濁液の体積比3%ないし20%に添加することを特徴とする、請求項1に記載の塞栓のミクロスフェアの製造方法。
- 上記のc)の段階は、造影剤をさらに含むことを特徴とする、請求項1に記載の塞栓用のミクロスフェアの製造方法。
- 上記の造影剤は、MRI(magnetic resonance imaging)造影剤、CT(computed tomography)造影剤、SPECT(single photon emission computed tomography)造影剤、PET(positron emission tomography)、BL(bioluminescence)造影剤、光学造影剤、X-ray造影剤、及び超音波造影剤よりなる群から選択されることを特徴とする、請求項4に記載の塞栓用のミクロスフェアの製造方法。
- 上記のボルテックスは5分〜20分の間に実行されることを特徴とする、請求項4に記載の塞栓用のミクロスフェアの製造方法。
- 上記の方法で製造されるミクロスフェアは、薬物放出が可能であることを特徴とする、請求項1に記載の塞栓用のミクロスフェアの製造方法。
- 上記の薬物は、癌治療用の薬物であることを特徴とする、請求項7に記載の塞栓用のミクロスフェアの製造方法。
- 上記の癌治療用の薬物は、ドキソルビシンであることを特徴とする、請求項8に記載の塞栓用のミクロスフェアの製造方法。
- a)ナノ輸送体に薬物を導入するの段階;
b)上記の薬物が導入されたナノ輸送体をキトサン溶液に入れて混合溶液を作って攪拌させる段階;
c)上記の攪拌させた混合溶液を、オイル及び有機溶媒を混合した溶液に入れて、界面活性剤を投入して攪拌する乳化の段階;及び
d)上記の乳化された混合溶液に、グルタルアルデヒド飽和トルエンまたはゲニピンを点滴した後、攪拌する架橋の段階;を含むキトサンミクロスフェアの製造方法。 - 上記のナノ輸送体は、リポソーム、脂質ナノ粒子、ナノカプセル、ナノエマルジョン及びナノ構造体よりなる群から選択されることを特徴とする、請求項10に記載のキトサンミクロスフェアの製造方法。
- 上記のナノ輸送体は、リポソームであることを特徴とする、請求項11の記載のキトサンミクロスフェアの製造方法。
- 上記の薬物は、癌治療用の薬物であることを特徴とする、請求項10の記載のキトサンミクロスフェアの製造方法。
- 上記の癌治療用の薬物は、ドキソルビシンであることを特徴とする、請求項13の記載のキトサンミクロスフェアの製造方法。
- 上記のオイルはパラフィンオイル(paraffin oil)、α-ビサボロール(α-bisabolol)、グリチルレチン酸ステアリル (stearyl glycyrrhetinate)、サリチル酸(salicylic acid)、トコフェリル酢酸 (tocopheryl acetate)、パンテノール(panthenol)、ステアリン酸グリセリル(glyceryl stearate)、 オクタン酸セチル(cetyl octanoate)、イソプロピルミリステート(isopropyl myristate)、 ペラルゴン酸エチル(ethyl pelargonate)、ジ−C12−13リンゴ酸ジアルキル(di-c12-13 alkyl malate)、オクタン酸セテアリル(cetearyl octanoate)、ジ(カプリル/カプリン酸)BG (butylene glycol dicaptylate/dicaprate)、イソノニル・イソステアリン酸(isononyl isostearate)、イソステアリル・イソステアリン酸(isostearyl isostearate)、オクタン酸セチル(cetyl octanoate)、ミリスチン酸2-オクチルドデシル(octyldodecyl myristate)、セチルエステル(cetyl esters)、 脂肪酸(C10−30)(コレステロール/ラノステロール)エステル(c10-30 cholesterol/lanosterol ester)、 水素化ヒマシ油 (hydrogenated castor oil)、モノグリセリド(mono-glycerides)、ジグリセリド(diglycerides)、トリグリセリド(triglycerides)、 ビーズワックス(beeswax)、カルナウバ・ワックス(carnauba wax)、 ジステアリン酸スクロース(sucrose distearate)、PEG−8ビーズワックス(PEG-8 beeswax)、 キャンデリラワックス(candelilla(euphorbia cerifera)wax)、ミネラルオイル、スクアレン(squalene)、スクアルラン(squalane)、モノグリセリド、ジグリセリド、トリグリセライド、中鎖グリセリド、ミグリオール(miglyol)、及びクレモフォール (cremophor)よりなる群から一つ以上選択されることを特徴とする、請求項10に記載のキトサンミクロスフェアの製造方法。
- 上記の有機溶媒は石油エーテル、エチルエーテル、酢酸イソプロピル、n-プロピルアセテート、イソブチルアセテート、n-酢酸ブチル、イソ酪酸イソブチル、2-エチルヘキシルアセテート、エチレングリコールジアセテート、C-9 アセテート、 C-10 アセテート、メチルエチルケトン、メチルイソブチルケトン、イソアミルメチルケトン、メチルn-アミルケトン、ジブチルケトン、シクロヘキサノン、イソホロン、アセトアルデヒド、n-ブチルアルデヒド、クロトンアルデヒド、2-エチルヘキサアルデヒド、イソブチルアルデヒド、プロピオンアルデヒド、エチル3-エトキシプロピオネート、トルエン、キシレン、トリクロロエタン、プロピレングリコールモノメチルエーテルアセタート、エチレングリコールモノエチルエーテルアセテート、エチレングリコールモノブチルエーテル、ジエチレングリコールモノブチルエーテルアセテート、フタル酸ジブチル、フタル酸2−エチル、フタル酸ジメチル、フタル酸ジオクチル、テレフタル酸ジオクチル、フタル酸ブチルオクチル、フタル酸ブチルベンゼン、ジオクチルアジペート、トリエチレングリコールジ-2‐エチルヘキサノアート、トリオクチルトリメチラート、グリセリルトリアセテート、グリセリル・トリプロピオニン、及び2,2,4-トリメチル-1 3-ペンタンジオールジイソブチレートよりなる群から一つ以上選択されることを特徴とする、請求項10に記載のキトサンミクロスフェアの製造方法。
- 上記の界面活性剤は、セスキオレイン酸ソルビタン、ステアリン酸グリセリル、ポリソルベート60、ポリソルベート80、ソルビタントリオレホスフェート、ステアリン酸ソルビタン、イソステアリン酸PEG−20グリセリル、セテス−25、PEG-60 水素化ヒマシ油、ノノキシノール15、PEG-6デシルテトラデセス-20、ジメチコンコポリオール、ジイソステアリン酸グリセリル、セテス−24、セテアリルアルコール、ポリオキシエチレンノニルフェニルエーテル、PEG-40 水素化ヒマシ油、セチルジメチルチコンコポリオール、ポリグリセリル-3メチルグルコースジステレート、 PEG-100ステアレート、イソステアリン酸ソルビタン、ラウロイルグルタミン酸ナトリウム、ココアンホジ酢酸2Na、ラウリン酸ジエタノールアミド、ヤシ油脂肪酸ジエタノールアミド、 N,N-ビス(2-ヒドロキシエチル)-コカミド、及びコカミドプロピルベタインより構成される群から1つ以上選択されることを特徴とする、請求項10に記載のキトサンミクロスフェアの製造方法。
- 薬物含有のナノ輸送体に乳化架橋法により付着されたキトサンミクロスフェアを有効成分として含む塞栓施術用の組成物。
- 上記の薬物は、癌治療のための薬物であることを特徴とする、請求項18に記載の塞栓施術用組成物
- 上記の癌治療のための薬物は、ドキソルビシンであることを特徴とする、請求項19に記載の塞栓施術用組成物。
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