JP2013158294A - 植物の乾燥耐性付与方法及びそれに用いられる植物乾燥耐性付与剤 - Google Patents

Abstract

【課題】簡易に使用することができ、灌水において気孔の開放を十分に行わせることのできる植物の乾燥耐性付与の方法を提供すること、更にはこれに用いられる植物乾燥耐性付与剤を提供する。
【解決手段】下記式で示される化合物及びその誘導体並びにそれらの塩の少なくともいずれかを散布する植物の乾燥耐性付与方法とする。

【選択図】なし

Description

本発明は、植物の乾燥耐性付与方法及びそれに用いられる植物乾燥耐性付与剤に関する。

最近の不安定な気象変動に伴い、従来から乾燥気候に分布する国々では緑地の減少、砂漠化の進行が進んでいる。

植物の乾燥耐性を付与する技術として、植物体内で乾燥耐性に関わる遺伝子の植物への導入が提案されている。例えば、下記非特許文献１には、シロイヌナズナにおいて、気孔の開閉に関与する植物ホルモンであるアブシシン酸（以下「ＡＢＡ」ともいう。）を合成する鍵酵素であるネオキサンチン酸化開裂酵素（以下「ＮＣＥＤ」ともいう。）の遺伝子発現の促進により乾燥耐性を向上させた技術が開示されている。

Ｓ．Ｉｕｃｈｉら、"Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｄｒｏｕｇｈｔ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｂｙ ｇｅｎｅ ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ９−ｃｉｓ−ｅｐｏｘｙｃａｒｏｔｅｎｏｉｄ ｄｉｘｉｇｅｎａｓｅ， ａ ｋｅｙ ｅｎｚｙｍｅ ｉｎ ａｂｓｃｉｓｉｃ ａｃｉｄ ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｉｎ Ａｂｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ．"、Ｐｌａｎｔ Ｊ．（２００１）、２７：３２５−３３３

しかしながら、上記植物への遺伝子導入は極めて専門的な技術であり、またその遺伝子を導入したことによる他遺伝子への影響及び生理反応の解析など実用まで多くの時間を要し、誰もが使用できる簡易な技術ではない。また、ＡＢＡは気孔の開閉を調節する役割をもち、乾燥及び湿潤の状況に応じて増減するが、遺伝子導入作物での環境条件に応じた反応は一般に一元的であり、例えば遺伝子導入によりＮＣＥＤを過剰発現するよう調節された植物では、乾燥耐性は向上するものの気孔の開放に難を示し、降雨或いは灌水が行われても気孔開放がうまく行われず、水分吸収が十分に行われないと考えられる。

そこで、本発明は、上記課題を鑑み、簡易に使用することができ、灌水において気孔の開放を十分に行わせることのできる植物の乾燥耐性付与の方法を提供すること、更にはこれに用いられる植物乾燥耐性付与剤を提供することを目的とする。

上記課題を解決する本発明の第一の観点に係る植物の乾燥耐性付与方法は、下記式で示される化合物及びその誘導体の少なくともいずれかを散布する方法である。

以上、本発明により、簡易に使用することができ、灌水において気孔の開放を十分に行わせることのできる植物の乾燥耐性付与の方法を提供すること、更にはこれに用いられる植物乾燥耐性付与剤を提供することができる。

ウニコナゾール及びＡｂｚ−Ｅ２Ｂの伸長に及ぼす影響を示す図である。 ウニコナゾール処理区、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区、及び、無処理区の内生ＡＢＡ濃度の変化を示す図である。 ウニコナゾール処理区、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区、及び、無処理区の気孔開度の変化を示す図である。 ウニコナゾール、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区、無処理区の芝の状態を示す写真図である。 ウニコナゾール処理区、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区、及び、無処理区の葉の水ポテンシャルの変化を示す図である。 ウニコナゾール処理区、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区、及び、無処理区の気孔開度の変化を示す図である。

以下、本発明を実施するための最良の形態について図面を用いて詳細に説明する。ただし、本発明は多くの異なる形態による実施が可能であり、以下に示す実施形態の記載、実施の例にのみ限定されるものではない。

本実施形態に係る植物の乾燥耐性付与方法（以下「本方法」ともいう。）は、下記式で示される化合物及びその誘導体並びにその塩の少なくともいずれかを散布することを特徴の一つとする。

本方法は、特に限定されることなく種々の植物に適用可能であるが、イネ科の植物により好適でありその中でも芝であることは更に好ましい。

本法は、極めて簡単で、植物上部から上記化合物又はこれを含む溶液を散布するだけで実現できる。具体的には、乾燥耐性を付与したい時期に上記化合物又はこれを含む溶液を散布し、一定期間後再び散布するだけでよい。特に、水に上記化合物を溶解させたものを用いることで、灌水処理と同時に行うことができ、別途乾燥耐性付与のための処理を行う必要がなくなるといった効果がある。本法を用いると、灌水の間隔を大幅に伸ばすことが可能となる。

上記の記載から明らかなように、本方法は、上記式で示される化合物を用いており、上記化合物及びこの誘導体並びにそれらの塩は、植物乾燥耐性付与剤（以下「本植物乾燥耐性付与剤」という。）である。

なお上記化合物は、様々な方法によって合成することができ、合成できる限りにおいて限定されるわけではないが、例えば、ウニコナゾールのフェニル基の４位塩素をアジド基に改変した４’−アジドウニコナゾールを合成し、別にアルキン化合物２−（２−プロプ−２−イニルオキシ）エチル）４−メチルベンゼンスルホネートとクリック反応で結合してＡｂｚ−Ｅ１を得て、更にナトリウムブトキシドを作用させることで合成することができる。なお、４’−アジドウニコナゾールの合成については、例えばＤａｖｉｄ，Ｌ，Ｈ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌ．，１９８８，８８，１４２５−１４２９を参照することができ、Ａｂｚ−Ｅ１については、Ｏｋａｚａｋｉ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．，２０１１，１，４０６−４１３に記載がある。

またここで、「誘導体」とは、上記化合物の一部を変化させることによって得られる化合物であって、上記化合物と同様の効果を奏することのできるものをいう。例えばエチレングリコール鎖末端のブトキシ基をメトキシ基、エトキシ基、プロボキシ基、ベントキシ基、ヘキソキシ基などのアルコキシ基に置換した誘導体を例示することができるがこれに限定されない。

また上記化合物及び誘導体は、その水酸基とアルカリとを作用させて塩とすることも可能である。

また本方法では、上記化合物及びその誘導体並びにこれらの塩の少なくともいずれか（以下「化合物等」という。）を合計量で１ｍ^２当たり５μモル以上５０μモル以下の範囲で散布することが好ましい。５μモル以上とすることで乾燥耐性の効果を得ることができ、５０μモル以下とすることで薬害を生じないといった効果を得ることができる。

本方法では、溶媒に上記化合物等を溶解させて散布することが好ましい。ここで「溶媒」とは、化合物を溶解することができる限りにおいて限定されるわけではないが例えば水、アルコールが好ましく、特に好ましくは水である。もちろん、少量アルコールで溶解した後水で希釈することも好ましい。上記化合物を溶解させる濃度としては、上記望ましい範囲で上記化合物等を分散させることができる限りにおいて限定されるわけではないが、１０ｍＭ以上２０ｍＭ以下の範囲で含ませておくことが好ましい。この範囲とすることで化合物が効率的に水に溶解されるといった効果がある。

また本法では、上記化合物及びその誘導体並びにこれらの塩の少なくともいずれかを、５日以上１０日以下の間隔をおいて散布することが好ましい。５日以上とすることで必要以上に散布することを防止し、灌水間隔を長く確保することができる一方で、１５日以下とすることで細胞障害を防止することができるといった効果があり、１０日以下とすることでこの効果がより顕著となる。

本乾燥耐性付与剤は、ＡＢＡ８’−ヒドロキシラーゼを特異的に抑制して内生アブシシン酸濃度を高めることができる一方、植物の発育を抑制するおそれが極めて低い。この結果、簡易に使用することができ、灌水において気孔の開放を十分に行わせることのできる植物の乾燥耐性付与の方法を提供すること、更にはこれに用いられる植物乾燥耐性付与剤を提供することができる。

ここで、上記実施形態に係る化合物について実際に作成を行い、その効果を確認した。以下具体的に説明する。

（Ａｂｚ−Ｅ２Ｂの合成）
まず、下記式で示される化合物（Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ）を合成した。Ａｂｚ−Ｅ２Ｂの合成はウニコナゾールのフェニル基４位塩素をアジド基に改変した４’−アジドウニコナゾールを合成し、別に合成したアルキン化合物２−（２−プロプ−２−イニルオキシ）エチル４−メチルベンゼンスルホネートとクリック反応で結合してＡｂｚ−Ｅ１を得て、このＡｂｚ−Ｅ１にナトリウムブトキシドを作用させてＡｂｚ−Ｅ２Ｂを得た。以下具体的に説明する。なお下記に、本合成の概略について示しておく。

＜４’−アジドウニコナゾールの合成＞
“Ｄａｖｉｄ，Ｌ，Ｈ．ｅｔ ａｌ．、Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌ．、１９８８，、８８， １４２５−１４２９．”を参照して４’−アジドウニコナゾールを合成した。

＜３，３−ジメチル−１−（１Ｈ−１，２，４−トリアゾール−ｌ−イル）ブタン−２−オンの合成＞
炭酸カリウム（１９．５ｇ）にアセトン（ｃａ．８０ｍｌ）を加え、室温で攪拌した。この溶液に１，２，４−１Ｈ−トリアゾール（９．５７ｇ）添加し、３０分撹拌した。氷冷し、滴下ロートにて１−ブロモ−３，３−ジメチル−２−ブタノン（１８．９ｍｌ）を加えた。室温にて２．５時間撹拌後，水（４０ ｍｌ）を加えて反応を停止し、さらに水（３００ｍｌ）を加えて炭酸カリウムを溶解させた。エバポレーターにてアセトンを溜去した後，酢酸エチル（２５０ｍｌ×３）にて抽出し，有機層を飽和食塩水（６０ｍｌ×３）で洗浄し、無水硫酸ナトリウムを加えて脱水した。これを綿ろ過し、減圧濃縮することによって得た生成物をヘキサン−酢酸エチル（７：３）を用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製し、化合物１（１８．１ｇ，１０７ｍｍｏｌ，収率７７％）を無色結晶として得た。

＜ジメチル−１−（４−ニトロフェニル）−２−（１Ｈ−１，２，４−トリアゾール−１−イル）ペント−１−エン−３−オンの合成＞
化合物１（１．８０ｇ，１０．８ｍｍｏｌ）に無水酢酸（１０ｍｌ）を滴下して１００℃に昇温し、炭酸カリウム（２．１４ｇ，１５．５ｍｍｏｌ）および４−ニトロベンズアルデヒド（１．７３ｇ，９．３５ｍｍｏｌ）を加えて３．５時間攪拌した。反応液を室温に戻し，水（５０ｍｌ）を加えて反応を停止し、酢酸エチル（３０ｍｌ）を加えて生成物を溶解させた。酢酸エチル（３０ｍｌ×３）にて抽出し，有機層を水（３０ｍｌ×３）で洗浄し、無水硫酸ナトリウムを加えて脱水した。これを綿ろ過し、減圧濃縮して得た黄色油状物質を、ヘキサン−酢酸エチル（４：１）を用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製し，（Ｚ）−２（１．３３ｇ，４．４３ｍｍｏｌ）を黄色油状物質として得た。化合物（Ｚ）−２を酢酸エチル（１０ｍｌ）に溶解し、３６５ｎｍの紫外線を５．５時間照射した。反応液を減圧濃縮し，化合物２の２Ｚ／２Ｅ混合物（１．２４ｇ，４．１３ｍｍｏｌ、２Ｚ：２Ｅ＝１：１）を淡黄色粒状物質として得た。これをヘキサン−酢酸エチル（８：２）を用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製し、（Ｅ）−２（５４６ ｍｇ，１．８２ｍｍｏｌ，収率４１％）を無色針状物質として得た。

＜ジメチル−１−（４−ニトロフェニル）−２−（１Ｈ−１，２，４−トリアゾール−１−イル）ペント−１−エン−３−オールの合成＞
化合物（Ｅ）−２（５４６ｍｇ，１．８２ｍｍｏｌ）をメタノール（１１ｍｌ）に溶解し、水素化ホウ素ナトリウム（８９．５ｇ，２．３７ｍｍｏｌ）を加えた後，０℃に冷却して１時間攪拌した。室温に戻し、１Ｍ 塩酸（５ｍｌ）を加えて反応を停止し、エバポレーターにてメタノールを溜去した。酢酸エチル（２０ｍｌ×３）で抽出した後、有機層を水（１５ｍｌ×３）で洗浄し、無水硫酸ナトリウムを加えて脱水した。綿ろ過して減圧濃縮後、ヘキサン−酢酸エチル（７：３）を用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、化合物３の２Ｚ／２Ｅ混合物（３１６ｍｇ，１．０５ｍｍｏｌ，２Ｚ：２Ｅ＝１０：３，収率５８％）を無色粉状物質として得た。

＜１−（４−アミノフェニル）−４，４−ジメチル−２−（１Ｈ−１，２，４−トリアゾール−１−イル）ペント−１−エン−３−オールの合成＞
パラジウム炭素（１４４ｍｇ）に水（１５ｍｌ）を加え、アルゴンガス気流下で化合物３のメタノール（１４ｍｌ）溶液を加えた。水素化ホウ素ナトリウム（８４ｍｇ，２．２ ｍｍｏｌ）を加え、３０分攪拌した。ろ紙ろ過後、減圧濃縮して得られた物質を酢酸エチル（４０ｍｌ）を加えて溶解し、さらに酢酸エチル（３０ｍｌ×３）にて抽出した。有機層を水（５ｍｌ×３）で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで脱水した。綿ろ過後、減圧濃縮して得た残渣をヘキサン−酢酸エチル（６：４）を用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、化合物４の２Ｚ／２Ｅ混合物（９４ｍｇ，０．３５ｍｍｏｌ，２Ｚ：２Ｅ＝１０：３，収率３７％）を無色油状物質として得た。

＜（Ｅ）−１−（４−アジドフェニル）−４，４−ジメチル−２−（１Ｈ−１，２，４−トリアゾール−１−イル）ペント−１−エン−３−オール（４'−アジドウニコナゾール）の合成＞
化合物４（３９．６ｍｇ，０．１４５ｍｍｏｌ）に０．１５ｍＭ 塩酸（２ｍｌ）を滴下し、亜硝酸ナトリウム（１０．９ｍｇ，０．１５８ ｍｍｏｌ）、尿素（５．０ｍｇ，８３μｍｏｌ）、アジ化ナトリウム（１０．５ｍｇ，０．１６２ｍｍｏｌ）を加え、５℃で暗所下３０分間攪拌した。攪拌後、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を数滴加えて反応を停止した。有機層を水（２ｍｌ×３）で洗浄し，無水硫酸ナトリウムで脱水した。綿ろ過後、減圧濃縮することで得た淡黄色粉状物質をヘキサン−酢酸エチル（１１：９）を用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーにて精製し、化合物５（１７．９ｍｇ，０．０６００ ｍｍｏｌ，収率４１％）を無色粉状物質として得た。

＜Ａｂｚ−Ｅ１の合成＞
“Ｏｋａｚａｋｉ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．２０１１，１， ４０６−４１３．”に記載の方法を用いてＡｂｚ−Ｅ１を合成した。

＜２−（２−（プロプ−２−イニロキシ）エトキシ）エチル ４−メチルベンゼンスルホネートの合成＞
プロパルギルアルコール（１００ ｍｇ，１．８ｍｍｏｌ）を３０ｍｌのジメチルホルムアミドに溶解させた。アルゴンガス気流下０℃で水素化ナトリウム（６０％ ｉｎ ｏｉｌ，９００ｍｇ，２２．４ｍｍｏｌ）を加えた。室温まで昇温後に３０分撹拌した。再び０℃まで冷却し、ジエチレングリコール ビス（ｐ−トルエンスルホネート）（２．８ｇ，６．７ｍｍｏｌ）を加えた後、室温まで昇温した。１時間撹拌後０℃に冷却してから２００ｍｌの飽和塩化アンモニウム水溶液を加え、１Ｍ塩酸によって中和した後、酢酸エチル（２５０ｍｌ×３）で抽出し、有機層を飽和食塩水（２０ｍｌ×３）で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで脱水した。綿ろ過後に減圧濃縮し、ヘキサン−酢酸エチル（４：１）を用いたシリカゲルクロマトグラフィーにより精製し、化合物６（４１０ｍｇ，収率７７．５Ｒ％）を無色オイル状物質として得た。

＜（Ｅ）−２−（２−（（１−（４−（３−ヒドロキシ−４，４−ジメチル−２−（１Ｈ−１，２，４−トリアゾール−１−イル）ペント−１−エン−１−イル）フェニル）−１Ｈ−１，２，３−トリアゾール−４−イル）メトキシ）エトキシ）エチル ４−メチルベンゼンスルホネート （Ａｂｚ−Ｅ１）の合成＞
４’−アジドウニコナゾール（５）（１．４ｇ，４．６ｍｍｏｌ）と化合物６（２．５ｇ，８．５ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン（２８０ｍｌ）に溶解し、硫酸銅水溶液（１０ｍｇ／ｍｌ，３８０ｍｌ，１４ｍｍｏｌ）とアスコルビン酸ナトリウム水溶液（１０ｍｇ／ｍｌ，３４０ｍｌ，１７ｍｍｏｌ）を添加した。室温で１時間撹拌し，ジクロロメタン（６００ｍｌ×３）で抽出後、有機層を飽和食塩水（８０ｍｌ×３）で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで脱水した。綿ろ過後に減圧濃縮し、ヘキサン−酢酸エチル（１：４）を用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製し、Ａｂｚ−Ｅ１（７）（２．６ｇ，収率９５．５％）を淡黄色オイル状物質として得た。

＜Ａｂｚ−Ｅ２Ｂの合成＞
＜（Ｅ）−１−（４−（４−（（２−（２−ブトキシエトキシ）エトキシ）メチル）−１Ｈ−１，２，３−トリアゾール−１−イル）フェニル）−４，４−ジメチル−２−（１Ｈ−１，２，４−トリアゾール−１−イル）ペント−１−エン−３−オール （Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ）の合成＞
１−ブタノール（４ｍｌ）をアルゴンガス気流下０℃に冷却し、水素化ナトリウム（６０％ ｉｎ ｏｉｌ，１７０．５ｍｇ，４．３ｍｍｏｌ）を添加した。室温に昇温して２０分撹拌後、１−ブタノール（６ｍｌ）に溶解した化合物７（２００ｍｇ，３３５μｍｏｌ）を添加した。室温で３６時間撹拌し、飽和塩化アンモニウム水溶液を加えて反応を停止した。酢酸エチル（３０ｍｌ×３）で抽出後、有機層を飽和食塩水（５ｍｌ×３）で洗浄し、無水硫酸ナトリウムで脱水した。綿ろ過後に減圧濃縮し、ジクロロメタン−メタノール（９７：３）を用いたシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製し、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ（８）（１３５．２ｍｇ，収率８０．９％）を無色オイル状物質として得た。なお、このＮＭＲデータについて下記に示しておく。

１Ｈ−ＮＭＲ （２７０ＭＨｚ，ＣＤＣｌ３）：δ ０．６８（９Ｈ，ｓ，ｔ−ｂｕｔｙｌ）， ０．９０（３Ｈ，ｔ，Ｊ＝７．３Ｈｚ，−ＣＨ_２−ＣＨ_２−ＣＨ_２−ＣＨ_３），１．３５（２Ｈ， ｍ，−ＣＨ_２−ＣＨ_２−ＣＨ_２−ＣＨ_３），１．５６（２Ｈ，ｍ，−ＣＨ_２−ＣＨ_２−ＣＨ_２−ＣＨ_３），３．４６（２Ｈ，ｔ，Ｊ＝６．６Ｈｚ，−ＣＨ_２−ＣＨ_２−ＣＨ_２−ＣＨ_３），３．６０−３．７８（８Ｈ，ｍ，−Ｏ−（ＣＨ_２−ＣＨ_２−Ｏ）_２−），４．３５（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，ＨＯ−３），４．６０（１Ｈ，ｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ，Ｈ−３），４．８０（２Ｈ，ｓ，Ｈ_２−１２’），７．００（１Ｈ，ｓ，Ｈ−１），７．５６（２Ｈ，ｄ，Ｊ＝８．２ Ｈｚ，Ｈ−２’ａｎｄＨ−６’），７．８２（２Ｈ，ｄ，Ｊ＝８．２Ｈｚ，Ｈ−３’ａｎｄ Ｈ−５’），８．０８（２Ｈ，ｍ，Ｈ−１１’ ａｎｄ Ｈ−３’’），８．５４（１Ｈ，ｓ，Ｈ−５’’）；
ＵＶ λｍａｘ（ＭｅＯＨ）ｎｍ（ε）：２６９．２（２１０００）；
ＨＲＭＳ （ＥＳＩ−ＴＯＦ，ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｍｏｄｅ）： ｃａｌｃｄ ｆｏｒ Ｃ_２５Ｈ_３６Ｎ_６Ｎａ_１Ｏ_４ ［Ｍ＋Ｎａ］＋ ５０７．２６９６， ｆｏｕｎｄ ５０７．２６９８．

（イネ第２葉梢の伸長に及ぼす影響の確認）
上記合成したＡｂｚ−Ｅ２Ｂとウニコナゾールを用い、それぞれ水に溶かし、その濃度を異ならせたものを散布しイネの成長に対する影響を確認した。この結果を図１に示す。

この結果、ウニコナゾールにおいては、濃度の増加に伴い、成長が抑えられている傾向が確認されたが、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂにおいては、１００μＭ程度にしても大きな成長阻害は確認できなかった。すなわち、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂは植物の発育を抑制するおそれが極めて少ないものであるということを確認した。

（内生ＡＢＡ濃度の測定）
次に、芝生における植物中の内生ＡＢＡ濃度について測定を行った。以下説明する。

まず、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂを少量のエタノールに溶解させた後、水で希釈することで５０μＭのＡｂｚ−Ｅ２Ｂ溶液を作製した。一方、比較例として、ウニコナゾールを少量のエタノールに溶解させた後、水で希釈して５０μＭのウニコナゾール溶液を作製した。

そして、芝生（品種：ベントグラス、播種後６０日）の区分けされた範囲（処理区）の茎葉に対し、それぞれ上記溶液を１平方メートル当たり１リットル散布し、９日間乾燥させ、１０日目に潅水処理を行い、各日における芝の内生ＡＢＡ濃度について測定を行った。この結果を図２に示しておく。なお、更に比較のため、水以外何も散布しなかった処理区（無処理区）についても内生ＡＢＡ濃度の測定を行っている。

この結果、散布後９日には、いずれも内生ＡＢＡの増加がみられたが、無処理区における内生ＡＢＡ濃度の値は他の２種に比べ低く、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂを散布した処理区が最も高いことが確認できた。この結果は、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ及びウニコナゾール両処理区におけるＡＢＡ８’水酸化酵素活性の抑制効果を示すものであり、更に、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂがより優れていることを示す。

また、本実施例では１０日に潅水を行っており、この灌水によりいずれも内生ＡＢＡ濃度の値が急速に低下したことを確認した。これは気孔が開口し、植物体内に水が吸収されたことを示していると考えられる。

（気孔開度の測定（１））
次に、上記と同様の散布処理を行い、その際の気孔開度の変化について測定を行った。この結果を図３に示しておく。

まず、無処理区では、散布後１日は気孔開度の低下は見られなかったが、３日から９日にかけて気孔開度の低下が確認できた。なお、本処理区では、１０日目に潅水処理を行ったが、気孔開度の上昇はほとんど見られなかった。

一方、ウニコナゾール処理区では、散布後１日及び２日において気孔開度が有意に低下し、３日から７日までは大きく変化しなかったが、７日以降において再び気孔開度が低下していた。また本処理区でも１０日目に潅水処理を行ったが、気孔開度の上昇は見られなかった。

またＡｂｚ−Ｅ２処理区では、散布後１日において有意に気孔開度が低下していることが確認できたが、その後９日まで気孔開度の大きな低下は見られなかった。一方、本処理区でも１０日目に潅水処理を行ったところ、１２日目において気孔開度の上昇がみられた。

以上の結果を踏まえると、無処理区及びウニコナゾール処理区では、１０日目に灌水したにもかかわらず気孔開度の上昇がみられなかったのは、芝が枯死してしまったためと考えられる。図４は、灌水後２日目（散布処理後１２日目）の芝の状態を示す写真図である。この図からわかるように、無処理区及びウニコナゾール処理区の芝は枯死していることが確認できた。一方、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区では、灌水後気孔開度が上昇しており、芝が長期の乾燥処理に耐え、成育維持できていることが確認できた。これは、乾燥初期での迅速な気孔閉鎖が乾燥による細胞障害の軽減に大きな要因となることを示唆し、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区以外では、迅速な気孔閉鎖がなされなかったため細胞障害が起こり、その後の潅水処理にもかかわらず気孔が開放しなかったものと考えられる。

（水ポテンシャルの測定）
ここでも、上記と同様の散布処理を行い、その際の気孔開度の変化について測定を行った。この結果を図５に示しておく。なお本処理では、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂの濃度、ウニコナゾールの濃度については上記測定と同じとし、散布後１２０時間乾燥処理を行い、その後灌水を行った点のみが異なる。

この結果によると、乾燥後２４時間以降はＡｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区において水ポテンシャル値が最も高くなり、次いでウニコナゾール処理区、無処理区の順となった。また散布後１２０時間後に潅水処理を行ったところ、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区での水ポテンシャル値の増加が最も大きかった。これは、Ａｂｚ−Ｅ２Ｂ処理の芝生では、散布後５日以降、灌水により速やかに水分が吸収されたことを示す。このようにＡｂｚ−Ｅ２Ｂ処理による芝生は、芝生内の水ポテンシャルが高く維持されたのみならず、処理５日後の潅水によって速やかに給水がなされ、可逆性に優れていることを意味する。

（気孔開度の測定（２））
なお、上記水ポテンシャルの測定と同様の処理で、気孔開度の変化について、再び測定を行った。この結果を図６に示しておく。

この結果においても、上記図３の場合と同様、無処理区では散布処理直後における気孔開度の低下は見られなかった一方、ウニコナゾール処理区及びＡｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区では速やかな低下がみられ、特にＡｂｚ−Ｅ２Ｂ処理区の低下が優れていることを確認した。

以上、本実施例により、本発明の効果を確認することができた。

Claims (6)

1. 下記式で示される化合物及びその誘導体並びにそれらの塩の少なくともいずれかを散布する植物の乾燥耐性付与方法。
   
2. ＡＢＡ８’−ヒドロキシラーゼを特異的に抑制して内生アブシシン酸濃度を高める請求項１記載の植物の乾燥耐性付与方法。
3. 植物の発育を抑制することなく内生アブシシン酸濃度を高める請求項１記載の植物の乾燥耐性付与方法。
4. 前記植物はイネ科植物である請求項１記載の乾燥耐性付与方法。
5. 前記化合物を、１ｍ^２当たり５μモル以上５０μモル以下の範囲で散布する請求項１記載の植物の乾燥耐性付与方法。
6. 前記化合物を、５日以上１５日以下の間隔をおいて散布する請求項１記載の植物の乾燥耐性付与方法。