JP2008539747A - 病原微生物から皮膚を保護するための方法および手段 - Google Patents
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- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
- C12N1/205—Bacterial isolates
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/38—Chemical stimulation of growth or activity by addition of chemical compounds which are not essential growth factors; Stimulation of growth by removal of a chemical compound
-
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-
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- C12R2001/225—Lactobacillus
-
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Abstract
Description
1. 常在性生物:常在性生物は、皮膚の表面上、角質層上、表皮の外層内部、ならびに皮膚および毛包の深い割れ目の中に定着した、永続的に皮膚に生息するものである。こうした皮膚常在菌叢の微生物は、皮膚組織に侵入することも、皮膚組織を損傷することもなく、皮膚上で生育し増殖することができる。皮膚の深い領域のこうした生物は洗浄によって容易には除去されない。常在微生物は無害の共生生物である。
- 皮膚常在菌叢の少なくとも1つの微生物を培養し、その(それぞれの)微生物の生育、および好ましくは検出に適した寒天培地を含む調製済み寒天プレート上にそれを均一に塗布する;
- 播種した寒天プレートにホール(穴)を設ける;
- そのホールに、あらかじめ培養した本発明の微生物の細胞を満たす;
- 皮膚常在菌叢の微生物の生育を可能にする条件下で、適当な時間、この寒天プレートをインキュベートする;さらに
- 本発明の微生物を入れたホールの周囲の皮膚常在菌叢の微生物の生育を測定し、それを本発明の微生物を含有しないホールの周囲の皮膚常在菌叢の微生物の生育と比較する。
- 皮膚常在菌叢の少なくとも1つの微生物を培養し、被験個体の皮膚の一定領域にそれを均一に薄く塗る;
- この皮膚常在菌叢の微生物を塗布した区域の中の一定の領域に本発明の微生物の一定量を塗布する;
- 皮膚常在菌叢の微生物の生育を可能にするのに十分な期間、皮膚をインキュベートする;
- 皮膚の上層を、それに含まれる微生物を含めて、適当な生育培地を含有する寒天プレートに移す;
- この寒天プレートを一定期間、皮膚常在菌叢の微生物の生育を可能にする条件下でインキュベートする;
- 本発明の微生物を塗布した領域の周囲の、皮膚常在菌叢の微生物の生育を測定し、それを、本発明の微生物を塗布していない、対照の常在微生物の生育と比較する。
(a)ホモ発酵型乳酸桿菌
(i)グルコースから解糖(Embden-Meyerhof)経路を経て、少なくとも85%の量の乳酸、好ましくは乳酸のL-、D-もしくはDL-異性体を産生する;
(ii)45℃で生育するが、15℃では生育しない;
(iii)長桿状である;ならびに
(iv)細胞壁にグリセロールタイコ酸を有する;
(b)ホモ発酵型乳酸桿菌
(i)解糖経路を経て、乳酸、好ましくは乳酸のL-もしくはDL-異性体を産生する;
(ii) 15℃で生育するが、45℃では変化しやすい生育を示す;
(iii)短桿状もしくはコリネ型である;ならびに
(iv)細胞壁にリビトールおよび/またはグリセロールタイコ酸を有する;
(c)ヘテロ発酵型乳酸桿菌
(i) グルコースからペントースリン酸経路を経て、少なくとも50%の量の乳酸、好ましくは乳酸のDL-異性体を産生する;
(ii)二酸化炭素およびエタノールを生成する;
(iii) 15℃もしくは45℃で変化しやすい生育を示す;
(iv)長桿状もしくは短桿状である;ならびに
(v)細胞壁にグリセロールタイコ酸を有する。
A 1.7 セテアレス-6、ステアリルアルコール
0.7 セテアレス-25
2.0 ジエチルアミノヒドロキシベンゾイル安息香酸ヘキシル
2.0 PEG-14 ジメチコン
3.6 セテアリルアルコール
6.0 メトキシ桂皮酸エチルヘキシル
2.0 アジピン酸ジブチル
B 5.0 グリセロール
0.2 EDTA2ナトリウム
1.0 パンテノール
適量 防腐剤
67.8 水
C 4.0 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル、アクリル酸ナトリウムコポリ
マー
D 0.2 アスコルビルリン酸ナトリウム
1.0 酢酸トコフェリル
0.2 ビサボロール
1.0 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル、アスコルビン酸ナトリウム、
トコフェロール、レチノール
1.0 ラクトバチルス属菌
E 適量 水酸化ナトリウム
フェーズAおよびBを別々に約80℃に加熱する。フェーズBを、その後、かき混ぜながらフェーズAに入れ、ホモジナイズする。フェーズCを、フェーズAおよびBの混合物にかき混ぜながら入れ、ホモジナイズする。この混合物を、撹拌しながら約40℃に冷却する;次に、フェーズDを加え、フェーズEを用いてpHを約6.5に調整する。続いて、その溶液をホモジナイズし、室温に冷却する。
A 1.7 セテアレス-6、ステアリルアルコール
0.7 セテアレス-25
2.0 ジエチルアミノヒドロキシベンゾイル安息香酸ヘキシル
2.0 PEG-14 ジメチコン
3.6 セテアリルアルコール
6.0 メトキシ桂皮酸エチルヘキシル
2.0 アジピン酸ジブチル
B 5.0 グリセロール
0.2 EDTA2ナトリウム
1.0 パンテノール
適量 防腐剤
68.6 水
C 4.0 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル、アクリル酸ナトリウムコポリ
マー
D 1.0 アスコルビルリン酸ナトリウム
1.0 酢酸トコフェリル
0.2 ビサボロール
1.0 ラクトバチルス属菌
E 適量 水酸化ナトリウム
フェーズAおよびBを別々に約80℃に加熱する。フェーズBを、その後、かき混ぜながらフェーズAに入れ、ホモジナイズする。フェーズCを、フェーズAおよびBの混合物に入れ、ホモジナイズする。この混合物を、撹拌しながら約40℃に冷却する;次に、フェーズDを加え、フェーズEを用いてpHを約6.5に調整する。続いて、その溶液をホモジナイズし、室温に冷却する。
A 10.0 エチルヘキサン酸セテアリル
10.0 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル
1.5 シクロペンタシロキサン、シクロヘキサシロキサン
2.0 PEG-40 水添ヒマシ油
B 3.5 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル、アクリル酸ナトリウムコポ
リマー
C 1.0 酢酸トコフェリル
0.2 ビサボロール
適量 防腐剤
適量 香油
D 3.0 ポリクォータニウム-44
0.5 ココトリモニウムメト硫酸
0.5 セテアレス-25
2.0 パンテノール、プロピレングリコール
4.0 プロピレングリコール
0.1 EDTA2ナトリウム
1.0 ラクトバチルス属菌
60.7 水
最初に、フェーズAを溶解し、続いてフェーズBをフェーズAに撹拌しながら入れる。その後、フェーズCをフェーズAおよびBの混合物に入れる。次の段階で、フェーズDを溶解してフェーズA、BおよびCの混合物に撹拌しながら加える。この混合物をホモジナイズし、15分間撹拌する。
A 3.0 メトキシ桂皮酸エチルヘキシル
2.0 ジエチルアミノヒドロキシベンゾイル安息香酸ヘキシル
1.0 ポリクォータニウム-44
3.0 ポリエチレングリコール
2.0 パンテノール、プロピレングリコール
1.0 シクロペンタシロキサン、シクロヘキサシロキサン
10.0 オクチルドデカノール
0.5 PVP
10.0 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル
3.0 安息香酸アルキル(C12-15)
3.0 グリセロール
1.0 酢酸トコフェリル
0.3 ビサボロール
1.0 ラクトバチルス属菌
59.2 アルコール
フェーズAの成分を秤量し、清澄になるまで溶解する。
A 3.6 PEG-40 水添ヒマシ油
15.0 アルコール
0.1 ビサボロール
0.5 酢酸トコフェリル
適量 香油
B 3.0 パンテノール
0.6 カルボマー
1.0 ラクトバチルス属菌
75.4 水
C 0.8 トリエタノールアミン
はじめに、フェーズAを清澄になるまで溶解する。フェーズBを混合して柔らかくしたのちフェーズCで中和する。次の段階で、フェーズAを、ホモジナイズしたフェーズBに撹拌しながら加え、混合物をホモジナイズする。
A 10.0 エチルヘキサン酸セテアリル
5.0 酢酸トコフェリル
1.0 ビサボロール
0.1 香油
0.3 アクリレート/アクリル酸アルキル(C10-30)クロスポリマー
B 15.0 アルコール
1.0 パンテノール
3.0 グリセロール
1.0 ラクトバチルス属菌
0.1 トリエタノールアミン
63.5 水
フェーズAの成分を混合する。次の段階で、フェーズBを溶解してフェーズAに入れたのち、ホモジナイズする。
1. 常在生物:常在生物は、皮膚表面上、角質層上、ならびに表皮の外層および皮膚や毛包の深い割れ目の内部に定着した、皮膚の永続的な常在物である。皮膚常在菌叢のこうした微生物は、皮膚組織に侵入したりこれを損傷したりすることなく、皮膚上で生育し増殖することができる。皮膚の深い部位にいるこうした生物は、洗浄によって容易に除去されない。常在微生物は無害の共生生物である。
- 一過性病原性皮膚菌叢の少なくとも1つの微生物を培養し、その(それぞれの)微生物の生育、および好ましくは検出に適した寒天培地を含む、調製済み寒天プレート上にそれを均一に塗布する;
- 播種した寒天プレートにホール(穴)を設ける;
- そのホールを、あらかじめ培養した本発明の微生物の細胞で満たす;
- 一過性病原性皮膚菌叢の微生物の生育を可能にする条件下で適当な時間、この寒天プレートをインキュベートする;ならびに、
- 本発明の微生物を入れたホールの周囲の一過性病原性皮膚菌叢の微生物の生育を測定し、それを本発明の微生物を含有しないホールの周囲の微生物の生育と比較する。
- 一過性病原性皮膚菌叢の少なくとも1つの微生物を、液体培養物で培養する;
- 本発明の微生物の液体培養物の一定分量、および一過性病原性皮膚菌叢の微生物の液体培養物の一定量を、一過性病原性皮膚菌叢の微生物の生育を可能にする培地に加える;
- 本発明の微生物、および一過性病原性皮膚菌叢の微生物を、液体培養物で共培養する;
- 共培養した液体培養物の一定量を、適当な生育培地を含有する寒天プレートに移す;
- 一過性病原性皮膚菌叢の微生物の生育を可能にする条件下で適当な時間、この寒天プレートをインキュベートする;
- コロニー形成単位の数値化によって一過性病原性皮膚菌叢の微生物の生育を測定し、それを、本発明の微生物を加えていない対照の微生物の生育と比較する。
- 一過性病原性皮膚菌叢の少なくとも1つの微生物を培養し、被験個体の皮膚の一定領域にそれを均一に薄く塗る;
- この一過性病原性皮膚菌叢の微生物を塗布した区域の中の一定の領域に本発明の微生物の一定量を塗布する;
- 一過性病原性皮膚菌叢の微生物の生育を可能にするのに十分な期間、皮膚をインキュベートする;
- 皮膚の上層を、それに含まれる微生物を含めて、適当な生育培地を含有する寒天プレートに移す;
- この寒天プレートを一定期間、一過性病原性皮膚菌叢の微生物の生育を可能にする条件下でインキュベートする;
- 本発明の微生物を塗布した領域の周囲の、一過性病原性皮膚菌叢の微生物の生育を測定し、それを、本発明の微生物を塗布しなかった対照の微生物の生育と比較する。
- 一過性病原性皮膚菌叢の少なくとも1つの微生物を培養し、その(それぞれの)微生物の生育、および好ましくは検出に適した寒天培地を含む、調製済み寒天プレート上にそれを均一に塗布する;
- 播種した寒天プレートにホール(穴)を設ける;
- ホールのうちあるものは、あらかじめ培養した本発明の微生物の細胞で満たし、またあるものには、さまざまな濃度の抗生物質を満たす;
- 一過性病原性皮膚菌叢の微生物の生育を可能にする条件下で適当な時間、寒天プレートをインキュベートする;
- 本発明の微生物を入れたホールの周囲の一過性病原性皮膚菌叢の微生物の生育を測定し、それをさまざまな濃度の抗生物質を含有するホールの周囲の微生物の生育と比較する;
- ホールの阻害ゾーンの直径を測定し、阻害面積を算出する;ならびに
- 本発明の微生物、ならびに抗生物質によって引き起こされた生育阻害を相互に比較する。
- 皮膚常在菌叢の少なくとも1つの微生物を培養し、その(それぞれの)微生物の生育、および好ましくは検出に適した寒天培地を入れた、調製済み寒天プレート上にそれを均一に塗布する;
- 播種した寒天プレートにホール(穴)を設ける;
- そのホールに、あらかじめ培養した本発明の微生物の細胞を満たす;
- 皮膚常在菌叢の微生物の生育を可能にする条件下で適当な時間、この寒天プレートをインキュベートする;ならびに、
- 本発明の微生物を入れたホールの周囲の皮膚常在菌叢の微生物の生育を測定し、それを本発明の微生物を含有しないホールの周囲の皮膚常在菌叢の微生物の生育と比較する。
- 皮膚常在菌叢の少なくとも1つの微生物を、液体培養で培養する;
- 本発明の微生物の液体培養物の一定分量、および皮膚常在菌叢の微生物の液体培養物の一定分量を、皮膚常在菌叢の微生物の生育を可能にする培地に加える;
- 本発明の微生物、および皮膚常在菌叢の微生物を、液体培養で共培養する;
- 共培養した液体培養物の一定分量を、適当な生育培地を含有する寒天プレートに移す;
- 皮膚常在菌叢の微生物の生育を可能にする条件下で適当な時間、この寒天プレートをインキュベートする;
- コロニー形成単位の数量化によって皮膚常在菌叢の微生物の生育を測定し、それを、本発明の微生物を加えていない対照の微生物の生育と比較する。
- 皮膚常在菌叢の少なくとも1つの微生物を培養し、被験個体の皮膚の一定領域にそれを均一に薄く塗る;
- この皮膚常在菌叢の微生物を塗布した区域の中の一定の領域に本発明の微生物の一定量を塗布する;
- 皮膚常在菌叢の微生物の生育を可能にするのに十分な期間、皮膚をインキュベートする;
- 皮膚の上層を、それに含まれる微生物を含めて、適当な生育培地を含有する寒天プレートに移す;
- この寒天プレートを一定期間、皮膚常在菌叢の微生物の生育を可能にする条件下でインキュベートする;
- 本発明の微生物を塗布した領域の周囲の、皮膚常在菌叢の微生物の生育を測定し、それを、本発明の微生物を塗布しなかった対照の微生物の生育と比較する。
(a)ホモ発酵型乳酸桿菌
(i)グルコースから解糖(Embden-Meyerhof)経路を経て、少なくとも85%の量の乳酸、好ましくは乳酸のL-、D-もしくはDL-異性体を産生する;
(ii)45℃で生育するが、15℃では生育しない;
(iii)長桿状である;ならびに
(iv)細胞壁にグリセロールタイコ酸を有する;
(b)ホモ発酵型乳酸桿菌
(i)解糖経路を経て、乳酸、好ましくは乳酸のL-もしくはDL-異性体を産生する;
(ii) 15℃で生育するが、45℃では変化しやすい生育を示す;
(iii)短桿状もしくはコリネ型である;ならびに
(iv)細胞壁にリビトールおよび/またはグリセロールタイコ酸を有する;
(c)ヘテロ発酵型乳酸桿菌
(i) グルコースからペントースリン酸経路を経て、少なくとも50%の量の乳酸、好ましくは乳酸のDL-異性体を産生する;
(ii)二酸化炭素およびエタノールを生成する;
(iii) 15℃もしくは45℃で変化しやすい生育を示す;
(iv)長桿状もしくは短桿状である;ならびに
(v)細胞壁にグリセロールタイコ酸を有する。
A 1.7 セテアレス-6、ステアリルアルコール
0.7 セテアレス-25
2.0 ジエチルアミノヒドロキシベンゾイル安息香酸ヘキシル
2.0 PEG-14 ジメチコン
3.6 セテアリルアルコール
6.0 メトキシ桂皮酸エチルヘキシル
2.0 アジピン酸ジブチル
B 5.0 グリセロール
0.2 EDTA2ナトリウム
1.0 パンテノール
適量 防腐剤
67.8 水
C 4.0 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル、アクリル酸ナトリウムコポリ
マー
D 0.2 アスコルビルリン酸ナトリウム
1.0 酢酸トコフェリル
0.2 ビサボロール
1.0 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル、アスコルビン酸ナトリウム、
トコフェロール、レチノール
1.0 ラクトバチルス属菌
E 適量 水酸化ナトリウム
フェーズAおよびBを別々に約80℃に加熱する。フェーズBを、その後、かき混ぜながらフェーズAに入れ、ホモジナイズする。フェーズCを、フェーズAおよびBの混合物にかき混ぜながら入れ、ホモジナイズする。この混合物を、撹拌しながら約40℃に冷却する;次に、フェーズDを加え、フェーズEを用いてpHを約6.5に調整する。続いて、その溶液をホモジナイズし、室温に冷却する。
A 1.7 セテアレス-6、ステアリルアルコール
0.7 セテアレス-25
2.0 ジエチルアミノヒドロキシベンゾイル安息香酸ヘキシル
2.0 PEG-14 ジメチコン
3.6 セテアリルアルコール
6.0 メトキシ桂皮酸エチルヘキシル
2.0 アジピン酸ジブチル
B 5.0 グリセロール
0.2 EDTA2ナトリウム
1.0 パンテノール
適量 防腐剤
68.6 水
C 4.0 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル、アクリル酸ナトリウムコポリ
マー
D 1.0 アスコルビルリン酸ナトリウム
1.0 酢酸トコフェリル
0.2 ビサボロール
1.0 ラクトバチルス属菌
E 適量 水酸化ナトリウム
フェーズAおよびBを別々に約80℃に加熱する。フェーズBを、その後、かき混ぜながらフェーズAに入れ、ホモジナイズする。フェーズCを、フェーズAおよびBの混合物に入れ、ホモジナイズする。この混合物を、撹拌しながら約40℃に冷却する;次に、フェーズDを加え、フェーズEを用いてpHを約6.5に調整する。続いて、その溶液をホモジナイズし、室温に冷却する。
A 10.0 エチルヘキサン酸セテアリル
10.0 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル
1.5 シクロペンタシロキサン、シクロヘキサシロキサン
2.0 PEG-40 水添ヒマシ油
B 3.5 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル、アクリル酸ナトリウムコポ
リマー
C 1.0 酢酸トコフェリル
0.2 ビサボロール
適量 防腐剤
適量 香油
D 3.0 ポリクォータニウム-44
0.5 ココトリモニウムメト硫酸
0.5 セテアレス-25
2.0 パンテノール、プロピレングリコール
4.0 プロピレングリコール
0.1 EDTA2ナトリウム
1.0 ラクトバチルス属菌
60.7 水
最初に、フェーズAを溶解し、続いてフェーズBをフェーズAに撹拌しながら入れる。その後、フェーズCをフェーズAおよびBの混合物に入れる。次の段階で、フェーズDを溶解してフェーズA、BおよびCの混合物に撹拌しながら加える。この混合物をホモジナイズし、15分間撹拌する。
A 3.0 メトキシ桂皮酸エチルヘキシル
2.0 ジエチルアミノヒドロキシベンゾイル安息香酸ヘキシル
1.0 ポリクォータニウム-44
3.0 ポリエチレングリコール
2.0 パンテノール、プロピレングリコール
1.0 シクロペンタシロキサン、シクロヘキサシロキサン
10.0 オクチルドデカノール
0.5 PVP
10.0 トリ(カプリル酸/カプリン酸)グリセリル
3.0 安息香酸アルキル(C12-15)
3.0 グリセロール
1.0 酢酸トコフェリル
0.3 ビサボロール
1.0 ラクトバチルス属菌
59.2 アルコール
フェーズAの成分を秤量し、清澄になるまで溶解する。
A 3.6 PEG-40 水添ヒマシ油
15.0 アルコール
0.1 ビサボロール
0.5 酢酸トコフェリル
適量 香油
B 3.0 パンテノール
0.6 カルボマー
1.0 ラクトバチルス属菌
75.4 水
C 0.8 トリエタノールアミン
はじめに、フェーズAを清澄になるまで溶解する。フェーズBを混合したのちフェーズCで中和する。次の段階で、フェーズAをホモジナイズしたフェーズBに撹拌しながら加え、混合物をホモジナイズする。
A 10.0 エチルヘキサン酸セテアリル
5.0 酢酸トコフェリル
1.0 ビサボロール
0.1 香油
0.3 アクリレーツ/アクリル酸アルキル(C10-30)クロスポリマー
B 15.0 アルコール
1.0 パンテノール
3.0 グリセロール
1.0 ラクトバチルス属菌
0.1 トリエタノールアミン
63.5 水
フェーズAの成分を混合する。次の段階で、フェーズBを溶解してフェーズAに入れたのち、ホモジナイズする。
図1は、in vitroホール/ウェルプレートアッセイにおける表皮ブドウ球菌の生育刺激を示す(実施例1)。ウェルの周りの黒いリングの形成は、指示菌である表皮ブドウ球菌の生育刺激を示す。顕微鏡によって、コロニー数の増加を観察することができる。
図5は、in vitroホール/ウェルプレートアッセイにおける、黄色ブドウ球菌の生育阻害を示す(実施例5)。ウェルの周囲に透明なリングが形成されることは、指示菌である黄色ブドウ球菌の生育阻害を示す。
in vitroホールプレートアッセイにおいて、寒天プレート上の表皮ブドウ球菌の生育を刺激することができる、特定の乳酸菌が同定された。これらの乳酸菌は本明細書に記載されている。上記効果を調べるため、前培養された乳酸菌を、あらかじめくり抜いた穴に入れ、指示菌である表皮ブドウ球菌の生育刺激を観察した。生育刺激の視覚効果を高めるために、亜テルル酸塩を使用した。亜テルル酸塩は、ブドウ球菌を特異的に染色する。刺激は、ピペットで乳酸菌を入れた穴の周りに黒いリングが形成され、コロニー数が増加することとして定義された。データを図1に示す。
乳酸菌は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。この試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物の10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。この培養物を2日間インキュベートした。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を、200μlのK/Naバッファー中に再懸濁した。
指示菌は表皮ブドウ球菌(DSM20044)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、24時間前培養物15μlを接種した。この指示菌を37℃にて24時間培養した。アリコートをBHI培養液中での吸光度OD595nmが0.025〜0.05となるように希釈し、800μlを指示プレート(BHI/亜テルル酸塩)上に塗抹した。コルクボーラーを用いて、この寒天に穴を開けた。穴に前培養した乳酸菌を入れた。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
BHI/亜テルル酸塩-寒天培地 BHI寒天培地と同様、50℃に冷却後、滅菌濾過した1% 亜
テルル酸カリウム1 mlを100 ml BHI培地に入れる;プレ
ート当たり20 ml
MRS液体培地 Difco、150μl/ウェル
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
皮膚上でそのまま表皮ブドウ球菌の生育を刺激することができる、プロバイオティック乳酸菌が同定された。
表皮ブドウ球菌の培養物を希釈し、直接、皮膚に塗布して自然乾燥させた。その後、一定量の乳酸菌を、この皮膚領域に正確に塗布した。指示菌の表皮ブドウ球菌は、乳酸菌によって皮膚上で直接刺激を受けることができる。インキュベーション後、粘着テープを用いて、ブドウ球菌を皮膚から寒天プレートに移した。寒天プレートを37℃で培養した。コロニー数の増加は、皮膚上での指示菌の生育刺激を示す(図2)。本発明のラクトバチルス属菌株、特にDSMZに寄託された菌株は、本明細書に記載のように指示菌の生育刺激を示した。
乳酸菌は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。この試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物の10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を200μlのK/Naバッファー中に再懸濁した。
指示菌は表皮ブドウ球菌(DSM20044)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、24時間前培養物15μlを接種した。この指示菌を37℃にて24時間培養した。一定量を、BHI培養液中での吸光度OD595nmが0.025〜0.05となるように希釈した。この溶液を再度希釈した(1 :100)。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco、150μl/ウェル
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
調製された指示菌、表皮ブドウ球菌の1:100希釈物400μlを一定の皮膚領域(10 cm x 3 cm)に均一に塗り広げ、自然乾燥させた。
調製されたラクトバチルス属菌10μlを、表皮ブドウ球菌があらかじめ接種された皮膚の領域に正確に塗布した。通常の環境で2時間、腕をインキュベートした。
2時間後、粘着テープ片を用いて、4つの上部の皮膚層をBHI寒天プレートに移した。これによって、単離された皮膚細菌は寒天プレートに移された。寒天プレートを37℃にて24時間インキュベートした。
このアッセイによって、一過性病原性菌叢の望ましくない細菌が、保護的な皮膚常在菌叢の細菌を刺激することができる乳酸菌によって刺激されないかを調べることができる。この目的のために、指示菌である黄色ブドウ球菌を高度に希釈して、表皮ブドウ球菌と同様に皮膚に塗布した(実施例2を参照されたい)。この場合も同様に、乳酸菌の刺激活性を調べた。記載の乳酸菌による黄色ブドウ球菌の刺激は、観察されなかった。本発明のラクトバチルス属菌、特にDSMZに寄託された菌株は、黄色ブドウ球菌の刺激を示さなかった。データを図3に示す。
乳酸菌は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。この試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物の10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を200μlのK/Naバッファー中に再懸濁した。
指示菌は黄色ブドウ球菌(DSM346)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、24時間前培養物15μlを接種した。この指示菌を37℃にて24時間培養した。一定量を、BHI培養液中での吸光度OD595nmが0.025〜0.05となるように希釈した。この溶液を再度希釈した(1 :100)。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco、150μl/ウェル
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
調製された指示菌、黄色ブドウ球菌の1:100希釈物400μlを一定の皮膚領域(10 cm x 3 cm)に均一に塗り広げ、自然乾燥させた。
調製されたラクトバチルス属菌10μlを、黄色ブドウ球菌があらかじめ接種された皮膚の領域に正確に塗布した。通常の環境で2時間、腕をインキュベートした。
2時間後、粘着テープ片を用いて、4つの上部の皮膚層をBHI寒天プレートに移した。これによって、単離された皮膚細菌は寒天プレートに移された。寒天プレートを37℃にて24時間インキュベートした。データを図3に示す。
in vitroホールプレートアッセイにおいて寒天プレート上で、表皮ブドウ球菌の生育を刺激することができるが、一過性病原性皮膚菌叢の代表的な菌である黄色ブドウ球菌は刺激しない、特定の乳酸菌が同定された。この効果を調べるために、表皮ブドウ球菌を刺激することができる、前培養された乳酸菌をあらかじめくり抜いた穴に入れ、指示菌である黄色ブドウ球菌の生育刺激のないことを観察した。生育刺激の視覚効果を高めるために、亜テルル酸塩を使用した。亜テルル酸塩はブドウ球菌を特異的に染色する。刺激は、乳酸菌を入れた穴の周りに黒いリングの形成、およびコロニー数の増加として定義された。本発明のラクトバチルス属菌株、特にDSMZに寄託された菌株は、黄色ブドウ球菌の刺激を示さなかった。データを図4に示す。
乳酸菌は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物の10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を200μlのK/Naバッファー中に再懸濁した。
指示菌は黄色ブドウ球菌(DSM346)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、15μlの24時間前培養物を接種した。この指示菌を37℃にて24時間培養した。一定量を、BHI培養液中での吸光度OD595nmが0.025〜0.05となるように希釈し、800μlを指示プレート(BHI/亜テルル酸塩)上に塗抹した。コルクボーラーを用いて、この寒天に穴を開けた。穴に前培養した乳酸菌を入れた。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
BHI/亜テルル酸塩-寒天培地 BHI寒天培地と同様、50℃に冷却後、滅菌濾過した1% 亜
テルル酸カリウム1 mlを100 ml BHI培地に入れる;プレ
ート当たり20 mlを分注する
MRS液体培地 Difco、150μl/ウェル
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
in vitroホールプレートアッセイにおいて寒天プレート上で、黄色ブドウ球菌の生育を特異的に阻害することができる、特定の乳酸菌が同定された。この効果を調べるために、前培養された乳酸菌をあらかじめくり抜いた穴に入れ、指示菌である黄色ブドウ球菌の生育阻害を観察した。データを図5に示す。
乳酸菌(OB-LB-Sa3; DSM 18006)は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物の10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を200μlのK/Naバッファー中に再懸濁した。
指示菌は黄色ブドウ球菌(DSM346)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、15μlの24時間前培養物を接種した。この指示菌を37℃にて24時間培養した。一定量を、BHI培養液中での吸光度OD595nmが0.025〜0.05となるように希釈し、800μlを指示プレート(BHI)上に塗抹した。コルクボーラーを用いて、この寒天に穴を開けた。穴に前培養した乳酸菌を5μlまたは10μl入れた。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
in vitro液体アッセイにおいて液体培地中で、黄色ブドウ球菌の生育を特異的に阻害することができる、特定の乳酸菌が同定された。この効果を調べるために、前培養された乳酸菌を、指示菌である黄色ブドウ球菌とともに、ブドウ球菌の生育に最適化した液体培地中で共培養した。阻害の程度は、乳酸菌なしの対照と比較して、指示菌のコロニー形成単位を計数することによって定量した。データは図6に示す。
乳酸菌(OB-LB-Sa3; DSM 18006)は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物の10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を、250 mMグリセロールを含有する200μlのK/Naバッファー中に再懸濁し、17時間インキュベートした。
指示菌は黄色ブドウ球菌(DSM346)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、24時間前培養の凍結培養物15μlを接種した。この培養物を、2.5 x 108細胞/mlの細胞濃度となるように、新鮮なBHI液体培地で希釈した。
液体アッセイのために、新調製の乳酸菌(200μlから)5μl、および前培養された指示菌の黄色ブドウ球菌10μlを、共培養するために、BHI液体培地10mlに接種した。培養は7時間行った。その後、コロニー形成単位を定量するために、1:10000希釈物のうち100μlをBHI寒天プレートに塗抹した。プレートを24時間インキュベートし、コロニー形成単位を計数した。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
このアッセイによって、病原微生物黄色ブドウ球菌の生育を阻害することができる選抜された乳酸菌が、in vitro液体アッセイにおいて、皮膚の共生菌叢の主要な菌である表皮ブドウ球菌を阻害しないかを調べることができる。
乳酸菌(OB-LB-Sa3; DSM 18006)は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物のうち10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を、250 mMグリセロールを含有する200μl K/Naバッファー中に再懸濁し、17時間インキュベートした。
指示菌は表皮ブドウ球菌(DSM20044)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、24時間前培養の凍結培養物15μlを接種した。
液体アッセイのために、新調製の乳酸菌(200μlから)5μl、および前培養された指示菌の表皮ブドウ球菌10μlを、共培養するために、BHI液体培地10mlに接種した。培養は7時間行った。その後、コロニー形成単位を定量するために、1:10000希釈物のうち100μlをBHI寒天プレートに塗抹した。プレートを24時間インキュベートし、コロニー形成単位を計数した。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
皮膚上でそのまま黄色ブドウ球菌の生育を阻害することができる乳酸菌が同定された。この効果を調べるために、黄色ブドウ球菌の培養物を希釈し、直接、皮膚に塗布して自然乾燥させた。その後、一定量の乳酸菌を、この皮膚領域に塗布した。このようにして、指示菌の黄色ブドウ球菌は、乳酸菌によって皮膚上で直接、阻害された。インキュベーション後、粘着テープを用いて、ブドウ球菌を皮膚から寒天プレートに移した。寒天プレートを37℃で培養した。乳酸菌なしの対照と比較して減少したコロニー数は、皮膚上での指示菌の生育阻害を示す。
乳酸菌(OB-LB-Sa3; DSM 18006)は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物のうち10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を、200μlのK/Naバッファー中に再懸濁した。
指示菌は黄色ブドウ球菌(DSM346)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、15μlの24時間前培養物を接種した。この指示菌を37℃にて24時間培養した。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
調製された指示菌、黄色ブドウ球菌の1:100希釈物400μlを一定の皮膚領域(10 cm x 3 cm)に均一に塗り広げ、自然乾燥させた。
調製されたラクトバチルス属菌10μlを、黄色ブドウ球菌があらかじめ接種された皮膚の領域に塗布した。通常の環境で6時間、腕をインキュベートした。
6時間後、粘着テープ片を用いて、4つの上部の皮膚層をBHI寒天プレートに移した。これによって、単離された皮膚細菌は寒天プレートに移された。寒天プレートを37℃にて24時間インキュベートした。
黄色ブドウ球菌の生育は阻害するが、表皮ブドウ球菌の生育は、皮膚上で直接的に影響されない、乳酸菌が同定された。
このアッセイによって、健康で正常な皮膚菌叢の共生微生物である表皮ブドウ球菌が、黄色ブドウ球菌を阻害できる乳酸菌によって阻害されないかを調べることができる。したがって、指示菌である表皮ブドウ球菌は、黄色ブドウ球菌と同様に、高度に希釈して皮膚に塗布された。この場合も同様に、乳酸菌の阻害活性を調べた。記載の乳酸菌による表皮ブドウ球菌の阻害は観察されなかった。
乳酸菌(OB-LB-Sa3; DSM 18006)は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物のうち10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を、200μlのK/Naバッファー中に再懸濁した。
指示菌は表皮ブドウ球菌(DSM20044)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、24時間前培養物15μlを接種した。この指示菌を37℃にて24時間培養した。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
調製された指示菌、表皮ブドウ球菌の1:100希釈物400μlを一定の皮膚領域(10 cm x 3 cm)に均一に塗り広げ、自然乾燥させた。
調製されたラクトバチルス属菌10μlを、表皮ブドウ球菌があらかじめ接種された皮膚の領域に塗布した。通常の環境で6時間、腕をインキュベートした。
6時間後、粘着テープ片を用いて、4つの上部の皮膚層をBHI寒天プレートに移した。これによって、単離された皮膚細菌は寒天プレートに移された。寒天プレートを37℃にて24時間インキュベートした。
病原微生物黄色ブドウ球菌の生育を阻害することができる、選抜された乳酸菌は、皮膚の共生菌叢の関連菌であるミクロコッカス・ルテウスを、in vitro液体アッセイにおいて阻害しない。この効果を調べるために、前培養された乳酸菌を、指示菌とともに、液体培地で共培養した。阻害の程度は、乳酸菌なしの対照と比較して、2つの指示菌のコロニー形成単位を計数することによって定量した。データは図8に示す。
乳酸菌(OB-LB-Sa3; DSM 18006およびOB-LB-Sa16; DSM 18007)は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物のうち10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を、250 mMグリセロールを含有する200μlのK/Naバッファー中に再懸濁し、17時間インキュベートした。
指示菌はミクロコッカス・ルテウスとした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、24時間前培養の凍結培養物15μlを接種した。
液体アッセイのために、新調製の乳酸菌(200μlから)5μl、および前培養された指示菌のミクロコッカス・ルテウス10μlを、共培養するために、BHI液体培地10mlに接種した。培養は7時間行った。その後、コロニー形成単位を定量するために、1:1000希釈物のうち100μlをBHI寒天プレートに塗抹した。プレートを24時間インキュベートし、コロニー形成単位を計数した。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
病原微生物黄色ブドウ球菌の生育を阻害することができる、選抜された乳酸菌は、他のヒト関連微生物、たとえば大腸菌を、in vitro液体アッセイにおいて阻害しない。この効果を調べるために、前培養された乳酸菌を、指示菌とともに、液体培養で共培養した。阻害の程度は、乳酸菌なしの対照と比較して、2つの指示菌のコロニー形成単位を計数することによって定量した。データは図9に示す。
乳酸菌(OB-LB-Sa3; DSM 18006およびOB-LB-Sa16; DSM 18007)は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物のうち10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を、250 mMグリセロールを含有する200μlのK/Naバッファー中に再懸濁し、17時間インキュベートした。
指示菌は大腸菌とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、24時間前培養の凍結培養物15μlを接種した。
液体アッセイのために、新調製の乳酸菌(200μlから)5μl、および前培養された指示菌の大腸菌10μlを、共培養するために、BHI液体培地10mlに接種した。培養は7時間行った。その後、コロニー形成単位を定量するために、1:1000希釈物のうち100μlをBHI寒天プレートに塗抹した。プレートを24時間インキュベートし、コロニー形成単位を計数した。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
in vitroホールプレートアッセイにおいて寒天プレート上で黄色ブドウ球菌の生育を特異的に阻害することができる、特定の乳酸菌が同定された。この効果を、市販のバシトラシンおよびエリスロマイシンの抗菌クリーム製品と比較した。この効果を比較するために、2つの抗生物質をさまざまな濃度として、あらかじめくり抜いた穴に入れ、指示菌の黄色ブドウ球菌の生育阻害を観察した(図10Aの検量線)。阻害ゾーンの直径を測定し、その阻害面積を計算した。その後、この面積を、一定の細胞数の前培養されたラクトバチルス属菌株OB-LB-Sa3 (DSM 18006)による黄色ブドウ球菌の生育阻害に、相互に関連づけた(図10Bを参照されたい)。
乳酸菌(OB-LB-Sa3; DSM 18006)は、エッペンドルフ試験管内の1 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物のうち10μlをファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各1 ml)。細胞を、200μlのK/Naバッファー中に再懸濁した。
指示菌は黄色ブドウ球菌(DSM346)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、15μlの24時間前培養物を接種した。この指示菌を37℃にて24時間培養した。一定量を、BHI培養液中での吸光度OD595nmが0.025〜0.05となるように希釈し、800μlを指示プレート(BHI)上に塗抹した。コルクボーラーを用いて、この寒天に穴を開けた。穴に前培養した乳酸菌を5μlまたは10μl、または対応する量の市販の抗菌製品を入れた。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
in vitroホールプレートアッセイにおいて寒天プレート上で黄色ブドウ球菌の生育を特異的に阻害することができる、特定の乳酸菌が同定された。選抜されたラクトバチルスの抗菌活性は、プロテイナーゼK、ストレプトミセス・グリセウス由来プロテアーゼ、キモトリプシンおよびトリプシンによる消化可能性について性質を検討した。ラクトバチルス上清の無細胞調製物を調製し、さまざまなプロテアーゼとともに37℃にて1時間インキュベートした。その後これらの調製物が指示菌黄色ブドウ球菌の生育を阻害する能力を調べた。阻害ゾーンの直径を測定し、阻害面積を測定した(図11を参照されたい)。
乳酸菌(OB-LB-Sa3; DSM 18006)は、ファルコンチューブ内の7 ml MRS液体培地で、−80℃凍結培養物から培養した。試験管を閉じ、37℃で2日間培養した。この前培養物7 mlをフラスコ内の40 ml MRS液体培地からなる主培養に移した。培養は2日間行った。培養後、遠心(15分、4000 x g)によって集菌した。細胞ペレットをK/Naバッファーで2回洗浄した(各2 ml)。細胞を、10 ml BHI培地中に再懸濁し、37℃にて6時間インキュベートした。遠心(15分、4000 x g)によって細胞を集め、上清をプロテアーゼとのインキュベーションに使用した。具体的には、上清150μlを10 mg/mlプロテアーゼ溶液15μlとともに、37℃にてインキュベートした。
指示菌は黄色ブドウ球菌(DSM346)とした。ガラス製振盪フラスコ内の20ml BHI液体培地に、15μlの24時間前培養物を接種した。この指示菌を37℃にて24時間培養した。一定量を、BHI培養液中での吸光度OD595nmが0.025〜0.05となるように希釈し、800μlを指示プレート(BHI)上に塗抹した。コルクボーラーを用いて、この寒天に穴を開けた。穴に前培養した細胞を5μlまたは10μl入れ、10 mg/mlプロテアーゼ溶液15μlとともに、37℃にて1時間インキュベートした。その後、プロテアーゼ処理されたラクトバチルス上清5μlもしくは10μlを、阻害アッセイに使用した。
BHI寒天培地 Difco寒天1.8%;プレート当たり20 ml
BHI培地 Difco
MRS液体培地 Difco
K/Naバッファー Kuester Thiel、pH 7.0、オートクレーブ滅菌済み
- 0.066M Na2HPO4 x 2H2O 61.2 ml
- 0.066M KH2PO4 38.8 ml
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Claims (37)
- 皮膚常在菌叢の1つもしくは複数の微生物の生育を刺激することができるが、一過性病原性菌叢の微生物の生育は刺激しない、微生物。
- 表皮ブドウ球菌(Staphylococcus epidermidis)の生育を刺激することができる、請求項1に記載の微生物。
- in vitroで表皮ブドウ球菌の生育を刺激することができる、請求項2に記載の微生物。
- in situ皮膚アッセイで表皮ブドウ球菌の生育を刺激することができる、請求項2または3に記載の微生物。
- 黄色ブドウ球菌の生育を刺激しない、請求項1〜4のいずれか1つに記載の微生物。
- ラクトバチルス(Lactobacillus)属に属する微生物である、請求項1〜5のいずれか1つに記載の微生物。
- 前記ラクトバチルスが、ラクトバチルス・パラカゼイ(Lactobacillus paracasei)、ラクトバチルス・ブレビス(Lactobacillus brevis)、またはラクトバチルス・ファーメンタム(Lactobacillus fermentum)である、請求項6に記載の微生物。
- 前記ラクトバチルス・パラカゼイが、亜種ラクトバチルス・パラカゼイssp.パラカゼイ(Lactobacillus paracasei ssp. paracasei)である、請求項7に記載の微生物。
- DSMZ受託番号DSM 17248、受託番号DSM 17247、受託番号DSM 17250および受託番号DSM 17249を有するラクトバチルス・パラカゼイ、ラクトバチルス・ブレビス、もしくはラクトバチルス・ファーメンタム、またはそれらの変異体もしくは誘導体からなる一群から選択される微生物であって、前記変異体もしくは誘導体が、皮膚常在菌叢の少なくとも1つの微生物の生育を刺激する能力を保持し、一過性病原性菌叢の微生物の生育は刺激しない、請求項7または8に記載の微生物。
- 皮膚常在菌叢の1つもしくは複数の微生物の生育を刺激することができるが、一過性病原性菌叢の微生物の生育は刺激しない、請求項1〜9のいずれか1つに記載の微生物の不活性型。
- 熱失活または凍結乾燥した、請求項10に記載の不活性型。
- 請求項1〜9のいずれか1つに記載の微生物、または請求項10もしくは11に記載の不活性型を含んでなる、組成物。
- 化粧品として許容される担体もしくは添加剤を必要に応じて含んでなる化粧品組成物である、請求項12に記載の組成物。
- 製薬上許容される担体もしくは添加剤を必要に応じて含んでなる医薬組成物である、請求項12に記載の組成物。
- 病原菌から皮膚を保護するための化粧品もしくは医薬組成物の調製における、請求項1〜9のいずれか1つに記載の微生物、または請求項10もしくは11に記載の不活性型の使用。
- 皮膚炎の予防または治療のための医薬組成物の調製における、請求項1〜9のいずれか1つに記載の微生物、または請求項10もしくは11に記載の不活性型の使用。
- 前記皮膚炎が、アトピー性皮膚炎、乾癬、ツタウルシ皮膚炎、ヘルペス性湿疹、禿瘡、または疥癬である、請求項16に記載の使用。
- 請求項1〜9のいずれか1つに記載の微生物、または請求項10もしくは11に記載の不活性型を、化粧品または医薬品として許容される担体もしくは添加剤とともに製剤化するステップを含んでなる、組成物の製造方法。
- 一過性病原性皮膚菌叢の1つもしくは複数の微生物の生育を阻害することができるが、健康で正常な皮膚常在菌叢の微生物の生育は阻害しない、微生物。
- 黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)の生育を阻害することができる、請求項19に記載の微生物。
- in vitroで黄色ブドウ球菌の生育を阻害することができる、請求項20に記載の微生物。
- in vitro液体アッセイで黄色ブドウ球菌の生育を阻害することができる、請求項21に記載の微生物。
- in situ皮膚アッセイで黄色ブドウ球菌の生育を阻害することができる、請求項20〜22のいずれか1つに記載の微生物。
- 表皮ブドウ球菌の生育を阻害しない、請求項19〜23のいずれか1つに記載の微生物。
- ラクトバチルス属に属する微生物である、請求項19〜24のいずれか1つに記載の微生物。
- 前記ラクトバチルスが、ラクトバチルス・ブーケンライ(Lactobacillus buchneri)またはラクトバチルス・デルブリュッキ(Lactobacillus delbrueckii)である、請求項25に記載の微生物。
- 前記ラクトバチルス・デルブリュッキが、亜種ラクトバチルス・デルブリュッキssp.デルブリュッキ(Lactobacillus delbrueckii ssp. delbrueckii)である、請求項26に記載の微生物。
- DSMZ受託番号DSM 18007および受託番号DSM 18006を有するラクトバチルス・ブーケンライおよびラクトバチルス・デルブリュッキssp.デルブリュッキ、またはそれらの変異体もしくは誘導体からなる一群から選択される微生物であって、前記変異体もしくは誘導体が、一過性病原性皮膚菌叢の1つもしくは複数の微生物の生育を阻害する能力を保持し、健康で正常な皮膚常在菌叢の微生物の生育は阻害しない、請求項26または27に記載の微生物。
- 一過性病原性皮膚菌叢の1つもしくは複数の微生物の生育を阻害することができるが、健康で正常な皮膚常在菌叢の微生物の生育は阻害しない、請求項19〜28のいずれか1つに記載の微生物の不活性型。
- 熱失活または凍結乾燥した、請求項29に記載の不活性型。
- 請求項19〜28のいずれか1つに記載の微生物、または請求項29もしくは30に記載の不活性型を含んでなる、組成物。
- 化粧品として許容される担体もしくは添加剤を必要に応じて含んでなる化粧品組成物である、請求項31に記載の組成物。
- 製薬上許容される担体もしくは添加剤を必要に応じて含んでなる医薬組成物である、請求項31に記載の組成物。
- 病原菌から皮膚を保護するための化粧品もしくは医薬組成物の調製における、請求項19〜28のいずれか1つに記載の微生物、または請求項29もしくは30に記載の不活性型の使用。
- 皮膚炎の予防または治療のための医薬組成物の調製における、請求項19〜28のいずれか1つに記載の微生物、または請求項29もしくは30に記載の不活性型の使用。
- 前記皮膚炎が、アトピー性皮膚炎、乾癬、ツタウルシ皮膚炎、ヘルペス性湿疹、禿瘡、または疥癬である、請求項35に記載の使用。
- 請求項19〜28のいずれか1つに記載の微生物、または請求項29もしくは30に記載の不活性型を、化粧品または医薬品として許容される担体もしくは添加剤とともに製剤化するステップを含んでなる、組成物の製造方法。
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