JP2008518026A - 副腎皮質刺激ホルモンアナログおよびこれに関連する方法 - Google Patents

Abstract

本発明のＡＣＴＨアナログ化合物としては、ＡＣＴＨペプチド配列を含み、以下に示すＡＣＴＨアナログの好適な生物学的機能の１つ以上をもたらす１以上の構造改変を伴う化合物が挙げられる：（１）ＡＣＴＨアナログの存在下では未改変ＡＣＴＨと比較して副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（２）内在性ＡＣＴＨの存在下での副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（３）ＭＣ−２Ｒメラノコルチンに結合する未改変ＡＣＴＨと比較してＭＣ−２Ｒ結合親和性を増加させ、ＭＣ−２Ｒレセプターの活性化を低下させる。従って、本発明のＡＣＴＨアナログ化合物は、ＡＣＴＨ、ＡＣＴＨレセプターまたはコルチコステロイド分泌に関連する疾患および障害（例えば、早期分娩およびクッシング病）の治療または予防に有用である。

Description

政府の支援
本出願の内容は、米国国立衛生研究所からの研究助成金（認可番号ＮＩＨ：ＤＫ５０８７０）および全米科学財団からの助成金（認可番号ＮＳＦ ＩＢＮ−０１３２２１０）によって支援を受けたものである。従って米国政府は、本発明において一定の権利を有することができる。
関連出願の相互参照
本出願は、２００４年１０月２７日に出願した米国仮特許出願第６０／６２２，４３６号、発明の名称「早期分娩、クッシング症候群および関連障害を治療するための組成物および方法（Compositions and Methods for the Treatment of Premature Labor, Cushing's Syndrome and Related Disorders)」（当該出願の開示内容は全て引用により本明細書に含まれるものとする）の利益を主張するものである。
技術分野
本発明は、ＡＣＴＨアナログ化合物、並びに、これに関連する医薬組成物および治療方法に関する。
背景
副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）としても知られているコルチコトロピンは、脳下垂体から分泌される主なホルモンであり、様々な生体成長（vital growth）ステロイドおよび生理学的制御ステロイドの産生における介在物質であると考えられている。ＡＣＴＨは副腎皮質を刺激する。具体的には、ヒトのコルチゾール（または齧歯類動物のコルチコステロン）等のグルココルチコイドの分泌を刺激するが、他の主要なステロイドホルモンであるアルドステロンの副腎皮質からの分泌については殆ど制御しない。ＡＣＴＨは、副腎で発現するＭＣ−２Ｒ副腎皮質刺激ホルモンレセプターに結合する。

ＡＣＴＨは、視床下部からのコルチコトロピン放出ホルモン（ＣＲＨ）に応答して下垂体前葉から分泌される。脳下垂体内では、特定のペプチダーゼ酵素の作用によって切断される大型の前駆体分子であるプロオピオメラノコルチン（ＰＯＭＣ）からＡＣＴＨが誘導される。ＡＣＴＨのステロイド合成に対する作用としては、コレステロールエステラーゼの増加、コレステロールのミトコンドリア膜への輸送およびミトコンドリア膜中の輸送、Ｐ４５０ＳＣＣへのコレステロール結合、従ってプレグネノロン産生の増加を挙げることができる（Nussey, S. and S. Whitehead, Endocrinology: An Integrated Approach, BIOS Scientific Publishers Ltd. (2001)を参照）。これらに続く作用としては、ステロイド産生酵素の誘発と、過剰血管新生、細胞の肥大および過形成を特徴とする著しい構造変化の誘発とを挙げることができる。これは、過剰のＡＣＴＨが長期間にわたって不必要に分泌されてしまう病態において特に顕著である。

ステロイドグルココルチコイドは、副腎の副腎束状帯細網細胞（adrenal fasciculata-reticula cell）によって産生され、副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）の血漿レベルの増加に応答して分泌される。グルココルチコイドは炭水化物、タンパク質および脂肪の代謝に関与し、抗炎症特性を有することが判っており、ストレス時には過剰に分泌される。過剰のグルココルチコイドは、学習および記憶といった認知機能にとって重要な脳の辺縁系領域である海馬を傷害することが判っている。例えば、Sapolsky, R. M., Ann. N.Y. Acad. Sci. 746:294 (1994);およびMcEwen, B. S., Ann. N.Y. Acad. Sci. 746:134 (1994)を参照されたい。さらにまた、グルココルチコイドの神経毒性および神経に対する危険性（neuroendangerment）は、神経の発達や老化、並びに、海馬傷害に関連する神経疾患において重要であることが判っている。例えば、deKloet, E. R., et al., Ann. N.Y. Acad. Sci. 746:8 (1994)を参照されたい。

コルチコステロイドは、コレステロールに構造上関連するステロイドホルモンである。これらのホルモンは副腎皮質で合成され、グルココルチコイド（例えば、コルチコステロイド）、鉱質コルチコイド（例えば、アルドステロン）、並びに、作用の弱いアンドロゲンおよびエストロゲンが挙げられる。副腎機能は、甲状腺の機能と同様に、視床下部（ＨＰＴ）および脳下垂体（ＰＩＴ）の支配下にある。コルチコステロイド（天然由来のグルココルチコイド）のレベルが設定値を下回ると、副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）の脳下垂体からの放出を刺激するＣＲＨ（コルチコトロピン放出ホルモン）が視床下部から放出される。ＡＣＴＨは、コルチコステロイドの合成・分泌および副腎の成長を刺激する刺激ホルモンである（アルドステロンの合成／分泌に対しては最小限の作用を有する）。

例えばクッシング症候群、コルチコステロイドの分泌過多による免疫反応障害、副腎が関連する早期分娩の特定の原因といったＡＣＴＨ関連病態を治療するために、ＡＣＴＨレセプターに結合してコルチコステロイド分泌の活性化を低下させる化合物が求められている。

クッシング症候群は、コルチコステロイドの副腎皮質からの分泌の増加に起因する障害である。副腎皮質の機能亢進は、ＡＣＴＨ依存性である場合もあり、ＡＣＴＨ調節とは無関係である場合（例えば、副腎皮質腺腫または癌腫によるコルチコステロイドの産生）もある。クッシング症候群の一般的な原因は、脳下垂体からのＡＣＴＨの過剰産生である。この血流中のＡＣＴＨレベルの上昇は、典型的には脳下垂体腺腫によって生じるが（クッシング病）、稀に異なる病因を有する。脳下垂体以外の場所でのＡＣＴＨ産生に起因するクッシング症候群は、異所性クッシング症候群として知られている。異所性部位の例としては、胸腺腫、甲状腺の髄様癌、褐色細胞腫、膵臓の島細胞腫瘍、肺の燕麦細胞癌が挙げられる。しかしながら、ヒトのクッシング症候群の大部分の症例では、その病因は脳下垂体腺腫である。クッシング症候群の症状としては、体重増加、体幹の肥満、ステロイドの分泌過多、コルチゾールの尿中排泄の増加、満月様顔貌、脱力感、疲労、背痛、頭痛、不能症、精神状態の変化、筋萎縮、本疾患に罹患していない哺乳動物と比較した場合の口渇および排尿の増加が挙げられる。クッシング症候群の診断および治療は、依然として難題である（Oldfield, E. W. et al., N. Engl. J. Med., 325:897-905 (1991); Findling, J. W. et al., "Diagnosis and differential diagnosis of Cushing's syndrome," Endocrinol. Metab. Clin. North Am., 30:729-47 (2001); Orth, D. N., "Cushing's syndrome," N Engl J Med., 332:791-803 (1995)を参照）。クッシング症候群に対しては現在利用できる医薬療法は存在しない。経験のある専門のセンターでは、ＡＣＴＨを分泌する脳下垂体ミクロ腺腫の外科的切除によって約７０〜８０％の全治癒率をあげているが、マクロ腺腫の場合には治癒率はおよそ３０％しかなく、広範囲にわたる外科的切除が必要であるため周囲の正常脳下垂体組織へのリスクが著しく上がり、約８０％の症例で下垂体機能の一部低下または完全低下を招いている（Simmons, N. E. et al., "Serum Cortisol response to transphenoidal surgery for Gushing disease," J. Neurosurg., 95:1-8 (2001); Mampalam, T. J. et al., "Transsphenoidal microsurgery for Cushing's disease: A report of 216 cases," Ann. Intern. Med., 109:487-93 (1988);およびTrainer, P. J. et al., "Transsphenoidal resection in Cushing's disease: undetectable serum cortisol as the definition of successful treatment," Clin. Endocrinol., 38:73-8 (1993)）。従って、ＡＣＴＨの起源が、散在する下垂体腫瘍である場合、または、異所性起源である場合のクッシング症候群に対しても、患者にとって有効かつリスクの無い治療が求められている。

ＡＣＴＨレセプターに結合してコルチゾール分泌の活性化を低下させる化合物も、例えば、早期分娩を開始させる視床下部−脳下垂体−副腎系の治療に用いることができる。早期分娩は全出産のおよそ７〜１０％で生じ、かなりの割合の周産期罹患率および死亡率に寄与している（McCormick, M. C, "The contribution of low birth weight to infant mortality and childhood morbidity," N Engl J Med., 312:82-90 (1985)）。ヒトの女性における自然流産・早期分娩および長期在胎を防ぐことは、多くの理由から望ましい。（ｉ）生育可能な生児出生をより確実にし、（ｉｉ）早産児に伴う医療合併症（health complications）の発生を軽減し、また、（ｉｉｉ）未熟児（健康であっても）が、身体の大きさや生育力のため、特別な看護を受けなければならない期間を減らすために、妊娠を延長させるのが望ましい。（ｉ）生児出生、（ｉｉ）健常児、（ｉｉｉ）親の保護下に病院を適時に退院可能な小児の全てのファクターが、両親や親類の幸福と健康に望ましい影響をもたらす。早産には社会に対する影響もあり、例えば、極度の早産児を世話する際には非常に大きな社会経済的影響がある。

農水産業では、生物を高い個体群密度で栽培・養殖することができれば、費用対効果を大きくすることが可能である。しかしながら、哺乳動物、鳥類および魚類の間では、副腎性ストレスホルモンが過剰に産生されてしまい、免疫機能障害や発育不良といった悪い結果を伴うことが多い。長期にわたるストレスによって引き起こされ、望ましくない健康上の変化（例えば、疾患に対する免疫機能や感受性の低下）をもたらすこれらの状態または他の状態において、副腎性ストレスホルモンのレベルを低下させる方法も、同じく望ましい。

各種の組成物および方法を使用して、例えばアルギニンバソプレシン（ＡＶＰ）に対する特定のレセプターを介すなどして、ＡＣＴＨレベルを低下させることができる。米国特許第６，３８０，１５５号（２０００年５月３日出願）は、ＡＣＴＨの放出を調節するための、特定のバソプレシンレセプターアンタゴニスト組成物の使用に関するものである。ＡＣＴＨレベルを調節してＡＣＴＨ関連病態を治療する組成物が望ましく、例えば、ＡＣＴＨ ＭＣ−２Ｒレセプターに結合可能であると同時に、ＡＣＴＨによるコルチコステロイドの産生を減少または回避し、ＡＣＴＨレベルの上昇に伴う望ましくない病態を緩和する組成物が望ましい。
要旨
未改変ＡＣＴＨと比較して、ＡＣＴＨによるコルチコステロイドの分泌を減少または回避する各種の改変副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）ペプチド（「ＡＣＴＨアナログ」）を提供する。好ましくは、当該ＡＣＴＨアナログは、未改変ＡＣＴＨの存在下での副腎膜からのコルチコステロイドの分泌も減少させる。

ＡＣＴＨアナログ化合物は、好ましくは、未改変ＡＣＴＨの少なくともアミノ酸１〜２４を含み、１以上のアミノ酸置換を伴う。ＡＣＴＨアナログ化合物は、未改変のヒトＡＣＴＨアミノ酸配列に対する１以上のアミノ酸置換または末端切断を含むことができる。未改変のヒトＡＣＴＨは、以下に示す配列のアミノ酸残基３９個を有するポリペプチドである：Ｎ−Ｓｅｒ^l−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｍｅｔ−Ｇｌｕ⁵−Ｈｉｓ−Ｐｈｅ−Ａｒｇ−Ｔｒｐ−Ｇｌｙ¹⁰−Ｌｙｓ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ−Ｇｌｙ−Ｌｙｓ¹⁵−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ²⁰−Ｌｙｓ−Ｖａｌ−Ｔｙｒ−Ｐｒｏ−Ａｓｎ²⁵−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｇｌｕ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ³⁰−Ｓｅｒ−Ａｌａ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｐｈｅ³⁵−Ｐｒｏ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ³⁹−Ａｃ（配列番号１）（配列中、ＮおよびＡｃはそれぞれ分子のアミノ末端およびカルボキシ末端を表す）。ＡＣＴＨアナログはまた、以下に示す配列の１以上の置換または改変を有するペプチドを含む化合物を含むこともできる：Ｎ−Ｓｅｒ¹−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｍｅｔ−Ｇｌｕ⁵−Ｈｉｓ−Ｐｈｅ−Ａｒｇ−Ｔｒｐ−Ｇｌｙ¹⁰−Ｌｙｓ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ−Ｇｌｙ−Ｌｙｓ¹⁵−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ²⁰−Ｌｙｓ−Ｖａｌ−Ｔｙｒ−Ｐｒｏ−Ａｃ（配列番号２）（配列中、ＮおよびＡｃはそれぞれ分子のアミノ末端およびカルボキシ末端を表す）。好適なＡＣＴＨアナログ化合物は、ｈＡＣＴＨまたはｍＡＣＴＨの少なくともアミノ酸残基１〜１９、より好ましくはｈＡＣＴＨまたはｍＡＣＴＨのアミノ酸残基１〜２４を含み、１以上のアミノ酸置換を伴う。

ＡＣＴＨアナログ化合物としては、配列番号１または配列番号２のＡＣＴＨ配列を含み、以下に示すＡＣＴＨアナログの好適な生物学的機能の１つ以上をもたらす１以上の構造改変を伴う化合物が挙げられる：（１）ＡＣＴＨアナログの存在下では未改変ＡＣＴＨと比較して副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（２）内在性ＡＣＴＨの存在下での副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（３）未改変ＡＣＴＨと比較してＭＣ−２Ｒ結合親和性を増加させ、ＭＣ−２Ｒレセプターの活性化を低下させる。ＡＣＴＨアナログ化合物を形成する好適なＡＣＴＨアミノ酸置換の例としては、以下に示す置換の１つ以上が挙げられる：（１）１〜１３位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換であって、６〜９位に位置するアミノ酸を保存するか、および／または、ＭＣ−２Ｒ結合を促進もしくは維持する置換、（２）１５〜１８位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換であって、これらの位置における酵素的切断を抑制または拮抗する置換、（３）１５〜１８位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換であって、ＡＣＴＨアナログが１５〜１８位に塩基性側鎖を有するアミノ酸残基を隣接して含まないような置換、（４）２０〜２４位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換または末端切断であって、ＡＣＴＨアナログの血清中半減期を延長させる置換または末端切断、（５）２０〜３６位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換であって、未改変ＡＣＴＨペプチドと比較してＡＣＴＨアナログ化合物の存在下では副腎膜のコルチコステロイド分泌を減少させるＡＣＴＨアナログをもたらす置換、（６）２５〜３９位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換または好ましくは末端切断であって、所望の放出特性を有するＡＣＴＨアナログ化合物をもたらす置換または末端切断、（７）アミノ酸残基２５〜３９の末端切断（２４位に位置するアミノ酸残基により分子のカルボキシ末端を形成）。

ＡＣＴＨアナログ化合物は、好ましくは、副腎膜のメラノコルチン２レセプター（ＭＣ−２Ｒ）等のＡＣＴＨレセプターに結合する。より好ましくは、ＡＣＴＨアナログ化合物は、ＭＣ−２Ｒを発現する細胞を活性化しないか、または、弱く活性化し、かつ、未改変の内在性ＡＣＴＨの作用を阻害または低下させる。

第一の実施態様では、各種のＡＣＴＨアナログ化合物は、未改変のヒトＡＣＴＨアミノ酸配列に対して１以上のアミノ酸置換または末端切断を含むことができる。例えば、単離されたＡＣＴＨアナログペプチドを含む組成物は、以下のアミノ酸置換のうち少なくとも１つを有する配列番号２のペプチドを含むことができる：
ａ．配列番号２の１９位に位置するＰｒｏ残基のアミノ酸Ｔｒｐによる置換；または
ｂ．配列番号２のアミノ酸残基１６〜１８から選択される残基の１以上のアミノ酸置換であって、以下の条件を満たすもの：
ＡＣＴＨアナログのアミノ酸残基１６、１７および１８が、ＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択される２個のアミノ酸残基をいずれも隣接して含まない；かつ
配列番号２の１６、１７または１８位に置換した１以上のアミノ酸残基が、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｇｌｎ、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、アルキル側鎖を有するアミノ酸アナログ（例えばＮｌｅ）からなる群より選択される。場合によっては、ＡＣＴＨアナログペプチドは、配列番号２のアミノ酸位置１５、１６、１７または１８のいずれか２箇所に置換した少なくとも１つのＡｌａ、Ｇｌｙまたはアルキル側鎖を有する別のアミノ酸（即ち、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、アルキル側鎖を含むアミノ酸アナログ（Ｎｌｅ等））と少なくとも１つのＡｒｇ残基とを含むことができる。ＡＣＴＨアナログは、場合によっては、以下のアミノ酸置換を有する配列番号２の配列から本質的になるものであってよい：配列番号２の１９位に位置するＰｒｏ残基をアミノ酸Ｔｒｐで置換する；配列番号２の１５位に位置するアミノ酸が、Ｌｙｓ、ＡｌａおよびＧｌｎからなる群より選択される；かつ、ＡＣＴＨアナログペプチドが、配列番号２のアミノ酸残基１６〜１８から選択される残基の１以上のアミノ酸置換を含むものであって、ＡＣＴＨアナログのアミノ酸残基１６、１７および１８が、ＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択される２個のアミノ酸残基をいずれも隣接して含まない。好ましくは、ＡＣＴＨアナログペプチドのアミノ酸残基６、７、８および９には、配列番号４のアミノ酸配列が含まれる。同じくＡＣＴＨアナログペプチドのアミノ酸残基１５〜１９には、配列番号１２のアミノ酸配列が含有可能である。

第一の実施態様には、配列番号１のペプチドを有するＡＣＴＨアナログも含まれ、少なくとも１つのアミノ酸置換、例えば、配列番号１の１９、２６、３０または３６位に位置するアミノ酸残基の置換を伴う。ＡＣＴＨアナログペプチドとしては、以下のアミノ酸置換のうち少なくとも１つを有する配列番号１のペプチドも挙げることができる：
ａ．配列番号１の１９位に位置するＰｒｏ残基のアミノ酸Ｔｒｐによる置換；または
ｂ．配列番号１のアミノ酸残基１６〜１８から選択される残基の１以上のアミノ酸置換であって、以下の条件を満たすもの：
ＡＣＴＨアナログのアミノ酸残基１６、１７および１８が、ＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択される２個のアミノ酸残基をいずれも隣接して含まない；かつ
配列番号２の１６、１７または１８位に置換した１以上のアミノ酸残基が、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ｇｌｎ、Ｇｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、Ｎｌｅ（またはアルキル側鎖を有する別のアミノ酸アナログ）からなる群より選択される。

他の好適なＡＣＴＨアナログペプチドは、ＡＣＴＨアナログペプチドのアミノ酸残基１５〜１９に配列番号６のアミノ酸配列が含まれるような、配列番号１または配列番号２のペプチドの改変を含む。ＡＣＴＨアナログペプチドには１以上のペプチドの末端切断も含まれ、ＡＣＴＨアナログは配列番号１のアミノ酸残基２５〜３９の末端切断をさらに含む。配列番号２０のＡＣＴＨアナログペプチドが特に好適である。

一部の実施態様では、ＡＣＴＨアナログペプチドの投与により、配列番号２のペプチドと比較して、インビトロでの血清コルチコステロイド誘発アッセイにおいてＡＣＴＨによる副腎膜からのコルチコステロン産生が少なくとも１０％、好ましくは１００％まで減少する。例えば第二の実施態様では、ＡＣＴＨアナログは改変されたＡＣＴＨペプチドであり、未改変ＡＣＴＨと比較してＡＣＴＨアナログの存在下では副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させるように機能する。

一部の実施態様では、インビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイにおいてＡＣＴＨアナログペプチドを投与した場合、ＡＣＴＨによるコルチコステロイドの分泌が少なくとも１０％減少する。第三の実施態様では、ＡＣＴＨアナログは、内在性ＡＣＴＨの存在下での副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させるように機能する、改変ＡＣＴＨペプチドである。

一部の実施態様では、少なくとも１つのアミノ酸置換を有する配列番号２の単離されたＡＣＴＨアナログペプチドを含む組成物を提供する。当該ＡＣＴＨアナログペプチドは、副腎膜に結合して配列番号２のペプチドを副腎膜から退かして置き換わるものである。ペプチド結合は、インビトロでの無血清副腎競合結合アッセイにて測定可能である。例えば第四の実施態様では、ＡＣＴＨアナログは、副腎ＡＣＴＨレセプター（例えば、ＭＣ−２Ｒレセプター）に結合するように機能し、好ましくは未改変ＡＣＴＨと比較してＭＣ−２Ｒ結合親和性を増加させ、ＭＣ−２Ｒレセプターの活性化を低下させる、改変ＡＣＴＨペプチドである。好ましくは、ＡＣＴＨアナログペプチドは、副腎膜に結合して配列番号２のペプチドを副腎膜から退かして置き換わることができ、当該ペプチド結合は、インビトロでの無血清副腎競合結合アッセイにて測定する。最も好ましくは、ＡＣＴＨアナログペプチドが、配列番号２のペプチドの少なくとも２倍の親和性でＭＣ−２Ｒ副腎膜に結合する。

一部の実施態様では、ＡＣＴＨアナログペプチドは、インビトロでの無血清副腎阻害アッセイにおいてＡＣＴＨによる副腎膜からのコルチコステロン産生を減少させる。例えば第五の実施態様では、ＡＣＴＨアナログ化合物は、インビトロで外植組織における未改変ＡＣＴＨによるコルチコステロイド誘発を減少させることができる。ＡＣＴＨアナログとしては、インビトロでの無血清副腎阻害アッセイにおいてＡＣＴＨによる副腎膜からのコルチコステロン産生を減少させるペプチドが挙げられる。

第六の実施態様では、半減期が延長されたＡＣＴＨアナログを提供する。半減期が延長されたＡＣＴＨアナログは、インビボで検出される血清コルチコステロイド濃度により測定される第一の活性を有するものと同定することができ、第一の活性は、インビトロ活性として検出される無血清コルチコステロイド濃度により測定される第二の活性よりも高く、ここで、インビボ活性は、実施例２の血清副腎コルチコステロイド阻害アッセイにて測定し、インビトロ活性は、実施例４のインビトロでの無血清副腎コルチコステロイド阻害アッセイにて測定する。

第七の実施態様では、副腎の活動可能な状態（adrenal tone）を維持しながら過剰のＡＣＴＨを阻止するのに有用なＡＣＴＨアナログのスクリーニング方法も提供する。各種のＡＣＴＨアナログを調製し、患者へ投与してインビボでのコルチゾン誘発を評価することができる。

第八の実施態様では、本開示は、ＡＣＴＨアナログを含む医薬組成物、および、ＡＣＴＨ関連病態に伴う症状の治療に見合った方法での当該組成物の被験体への投与に関する。本明細書に開示のＡＣＴＨアナログは、ＡＣＴＨ関連病態（例えば、ヒトまたは動物におけるＡＣＴＨの過剰発現）を治療するための医薬組成物へ配合することができる。ＡＣＴＨアナログおよびＡＣＴＨアナログを含有する関連の医薬組成物の製造方法も提供する。例えば一態様では、副腎の活動可能な状態を維持しながら過剰のＡＣＴＨを阻止するのに有用な化合物について、ＡＣＴＨアナログのクラスをスクリーニングする方法を提供する。

ＡＣＴＨアナログ化合物は、ＡＣＴＨのレベルに関連する疾患、例えば、ＡＣＴＨレセプター（ＭＣ−２Ｒ等）のモジュレーションに応答性の病態を治療する際に有用である。コルチコステロイドの分泌またはコルチコステロイドのレベルを調節するのに有用な化合物も提供する。ＡＣＴＨアナログ化合物を投与することにより、ＡＣＴＨレベルの調節に関連する病態を治療することができ、例えば、副腎機能の活性状態（tonic state）を維持しながら患者における高レベルのＡＣＴＨの作用を軽減することができる。ＡＣＴＨアナログ組成物は、例えば、ＡＣＴＨ関連病態（例えば、クッシング症候群、コルチコステロイドの分泌過多による免疫反応障害、早期分娩の開始（例えば、視床下部−脳下垂体−副腎系によるもの）および関連の病態）を治療する際に有用である。ある態様では、各種のＡＣＴＨアナログを調製し、患者へ投与してインビボでのコルチゾン誘発を評価することができる。別の態様では、家畜被験体の治療方法、例えば、高い個体群密度にて栽培・養殖される農水産種の健康に役立つようストレスホルモンを低下させる方法を提供する。
詳細な説明
特に定義しない限り、本明細書で使用する技術・科学用語は全て、本発明が属する技術の当業者に通常理解されるのと同一の意味を有する。万一矛盾があった場合には、定義を含む本書類を基準とする。好適な方法および材料を以下に記載するが、本明細書に記載のものと類似または等価の方法および材料を本発明の実施または試験に使用することもできる。本明細書に記載する刊行物、特許出願、特許および他の参考文献は全て、引用により全内容が本明細書に含まれるものとする。本明細書に開示する材料、方法および具体例は、例示のみを目的としており、限定を意図したものではない。

本明細書中、「未改変副腎皮質刺激ホルモン」（「未改変ＡＣＴＨ」）とは、下垂体前葉によって産生されるペプチドホルモンを意味し、当該ペプチドホルモンは、副腎皮質を刺激してグルココルチコイドホルモンを分泌させ、グルココルチコイドホルモンは、糖新生の過程を介して細胞のグルコース合成を助け、タンパク質を異化し、遊離脂肪酸を動員し、アレルギー応答時の炎症を抑える。このようなホルモンの一つは、炭水化物、脂肪およびタンパク質の代謝を調節するコルチコステロイドである。

本明細書中、「コルチコステロイド」には、ヒトのコルチコステロイドコルチゾールおよび齧歯類動物のコルチコステロイドコルチコステロンが含まれる。
量に関して使用される「約」には、記載された量と等価の当該量の変動が含まれ、例えば、意図した目的または機能にとって、記載された量と実質的には違わない量が含まれる。

本明細書中、「Ｐ（ｘ−ｙ）」（Ｐはポリペプチドの名前であり、ｘおよびｙは整数である）との表記は、「Ｐ」と呼ばれるポリペプチドの（ｘ）位から（ｙ）位に位置する連続アミノ酸からなるアミノ酸配列を意味する。例えば、「ｈＡＣＴＨ（１−２４）」とは、ヒトＡＣＴＨペプチドのアミノ末端側の残基１〜２４からなる２４個の連続するアミノ酸のポリペプチドを意味する。「ｍＡＣＴＨ」はマウスのＡＣＴＨを意味する。特に、ｈＡＣＴＨ（１−２４）とｍＡＣＴＨ（１−２４）は同一のペプチド配列である。

「ａＸｂ」（ａおよびｂはアミノ酸の１文字略語であり、Ｘは数字である）との表記は、未改変ＡＣＴＨペプチドの「Ｘ」位のアミノ酸「ａ」をアミノ酸「ｂ」で置換したことを意味する。例えば、「（Ｖ２６Ｆ，Ｅ３０Ｋ）ｍＡＣＴＨ」とは、分子のアミノ末端から２６番目に位置するＶａｌアミノ酸の代わりにＰｈｅアミノ酸を置換し、かつ、分子のアミノ末端から３０番目に位置するＧｌｕアミノ酸の代わりにＬｙｓアミノ酸を置換することにより改変された３９アミノ酸のマウスＡＣＴＨ分子を意味する。同様に、「αβχＸ−Ｙδεφ」（α、β、χ、δ、εおよびφはアミノ酸の１文字略語を表し、ＸおよびＹは数字である）との表記は、Ｘ位〜Ｙ位に位置する連続アミノ酸「αβχ」をアミノ酸「δεφ」で置換したことを意味する。

ＡＣＴＨアナログ化合物としては、ＡＣＴＨ配列を含み、以下に示すＡＣＴＨアナログの好適な生物学的機能の１つ以上をもたらす１以上の構造改変を伴う化合物が挙げられる：（１）ＡＣＴＨアナログの存在下では未改変ＡＣＴＨと比較して副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（２）内在性ＡＣＴＨの存在下での副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（３）未改変ＡＣＴＨと比較してＭＣ−２Ｒ結合親和性を増加させ、これに伴ってＭＣ−２Ｒレセプターの活性化を低下させる。ＡＣＴＨアナログ化合物は、メラノコルチン２レセプター（ＭＣ−２Ｒ）に結合し、ＭＣ−２Ｒを発現する細胞を弱く活性化し、内在性ＡＣＴＨのＭＣ−２Ｒレセプターに対する作用を阻止することで作用すると考えられている。

所望の機能の１つ以上を有するＡＣＴＨアナログ化合物を形成するのに使用できる好適なＡＣＴＨアミノ酸置換の例としては、以下のものが挙げられる：（１）１〜１３位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換であって、６〜９位に位置するアミノ酸を保存するか、および／または、ＭＣ−２Ｒ結合を促進もしくは維持する置換、（２）１５〜１８位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換であって、これらの位置における酵素的切断を抑制または拮抗する置換、（３）１５〜１８位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換であって、隣接する二塩基アミノ酸を特徴としない置換、（４）２０〜２４位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換または末端切断であって、ＡＣＴＨアナログの血清中半減期を延長させる置換または末端切断、（５）２５〜３９位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換または好ましくは末端切断であって、所望の放出特性を有するＡＣＴＨアナログ化合物をもたらす置換または末端切断、（６）アミノ酸残基２５〜３９の末端切断（２４位に位置するアミノ酸残基により分子のカルボキシ末端を形成）。
ＡＣＴＨアナログ化合物
第一の実施態様では、各種のＡＣＴＨアナログ化合物は、未改変のヒトＡＣＴＨアミノ酸配列に対して１以上のアミノ酸置換または末端切断を含むことができる。未改変のヒトＡＣＴＨは、以下に示す配列のアミノ酸残基３９個を有するポリペプチドである：Ｎ−Ｓｅｒ¹−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｍｅｔ−Ｇｌｕ⁵−Ｈｉｓ−Ｐｈｅ−Ａｒｇ−Ｔｒｐ−Ｇｌｙ¹⁰−Ｌｙｓ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ−Ｇｌｙ−Ｌｙｓ¹⁵−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ²⁰−Ｌｙｓ−Ｖａｌ−Ｔｙｒ−Ｐｒｏ−Ａｓｎ²⁵−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｇｌｕ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ³⁰−Ｓｅｒ−Ａｌａ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｐｈｅ³⁵−Ｐｒｏ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ³⁹−Ａｃ（配列番号１）（「ｈＡＣＴＨ」）（配列中、ＮおよびＡｃはそれぞれ分子のアミノ末端およびカルボキシ末端を表す）。ＡＣＴＨ（１−２４）は、ヒトＡＣＴＨ（１−２４）をはじめとして多くの脊索動物に見られ、かつ、以下のペプチド配列を有する点で保存されている：Ｎ−Ｓｅｒ¹−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｍｅｔ−Ｇｌｕ⁵−Ｈｉｓ−Ｐｈｅ−Ａｒｇ−Ｔｒｐ−Ｇｌｙ¹⁰−Ｌｙｓ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ−Ｇｌｙ−Ｌｙｓ¹⁵−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ａｒｇ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ²⁰−Ｌｙｓ−Ｖａｌ−Ｔｙｒ−Ｐｒｏ−Ａｃ（配列番号２）（マウスＡＣＴＨの１〜２４部分（「ｍＡＣＴＨ（１−２４）」と同一）（配列中、ＮおよびＡｃはそれぞれ分子のアミノ末端およびカルボキシ末端を表す）。

ＡＣＴＨアナログ化合物は、ｈＡＣＴＨ（配列番号１）の少なくともアミノ酸残基１〜１９、より好ましくはアミノ酸残基１〜２４を含むことができ、１以上のアミノ酸置換を伴う。好適なＡＣＴＨアナログ化合物は、１以上のアミノ酸置換で改変された配列番号２を含む。ＡＣＴＨアナログ化合物としては、ＡＣＴＨ配列を含み、以下に示すＡＣＴＨアナログの好適な生物学的機能の１つ以上をもたらす１以上の構造改変を伴う化合物が挙げられる：（１）ＡＣＴＨアナログの存在下では未改変ＡＣＴＨと比較して副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（２）内在性ＡＣＴＨの存在下での副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（３）未改変ＡＣＴＨと比較してＭＣ−２Ｒ結合親和性を増加させ、ＭＣ−２Ｒレセプターの活性化を低下させる。

特に好適なＡＣＴＨアナログ化合物は、未改変のヒトＡＣＴＨ配列に対して以下に示すアミノ酸置換の１つ以上を有する：（１）１〜１３位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換であって、６〜９位に位置するアミノ酸を保存する置換、（２）１５〜１８位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換であって、これらの位置における酵素的切断を抑制または拮抗する置換、（３）１５〜１８位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換であって、隣接する二塩基アミノ酸を特徴としない置換、（４）２０〜２４位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換または末端切断であって、ＡＣＴＨアナログの血清中半減期を延長させる置換または末端切断、（５）２５〜３９位に位置する１以上のアミノ酸残基の置換または好ましくは末端切断であって、未改変ＡＣＴＨまたは他のＡＣＴＨアナログ化合物と比較して血清中半減期が延長されたＡＣＴＨアナログ化合物をもたらす置換または末端切断。

ＡＣＴＨアナログは、好ましくは、下記の式（Ｉ）で表されるポリペプチドを含む：
（Ｉ） Ｎ−（ＡＡ^1-13）−（ＡＡ¹⁴）−（ＡＡ^15-18）−（ＡＡ¹⁹）−Ａｃ
（式中、Ｎ−およびＡｃ−は、それぞれポリペプチドのアミノ末端およびカルボキシ末端を表し、（ＡＡ^1-13）−は、連続する１３個のアミノ酸またはアミノ酸アナログからなる第一の列を表し、（ＡＡ¹⁴）−は、第一の列のカルボキシ末端に結合したアミノ酸残基を表し、（ＡＡ^15-18）−は、（ＡＡ¹⁴）のカルボキシ末端に結合した連続する４個のアミノ酸からなる第二の列を表し、（ＡＡ¹⁹）−は、第二の列のカルボキシ末端に結合したアミノ酸残基を表す）。

式（Ｉ）のＡＣＴＨアナログは、好ましくは、より大型の分子部分が（ＡＡ¹⁹）−Ａｃ部分のカルボキシ末端にさらに結合している。ＡＣＴＨアナログは、追加のアミノ酸が式（Ｉ）のカルボキシ末端（Ａｃ）にさらに結合可能である。最も好ましくは、ＡＣＴＨアナログは、合計５個の追加アミノ酸が式（Ｉ）のＡｃ部分に結合しており、ＡＣＴＨアナログ中に合計で少なくとも２４個のアミノ酸を有する。

ＡＣＴＨアナログは、式（Ｉ）に相当する未改変ＡＣＴＨのアミノ酸配列を含むことができ、好ましくは１以上のアミノ酸置換を伴う。追加のアミノ酸またはアミノ酸アナログは、好ましくは、式（Ｉ）の（ＡＡ¹⁹）−残基のカルボキシ末端に結合している。

式（Ｉ）の（ＡＡ^1-13）−部分は、式（ＩＩ）に示す１３個のアミノ酸からなる配列を表し：
（ＩＩ） −ＡＡ¹−ＡＡ²−ＡＡ³−ＡＡ⁴−ＡＡ⁵−ＡＡ⁶−ＡＡ⁷−ＡＡ⁸−ＡＡ⁹−ＡＡ¹⁰−ＡＡ¹¹−ＡＡ¹²−ＡＡ¹³−
表１の第二行に記載した未改変ＡＣＴＨアミノ酸配列を有し、場合によっては表１の第三行に示す１以上のアミノ酸置換を伴っていてもよい。未改変のヒトＡＣＴＨの（ＡＡ^1-13）−部分は、Ｓｅｒ−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｍｅｔ−Ｇｌｕ−Ｈｉｓ−Ｐｈｅ−Ａｒｇ−Ｔｒｐ−Ｇｌｙ−Ｌｙｓ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ（配列番号３）の配列を有する。好ましくは、式（ＩＩ）のＡＡ⁶−ＡＡ⁷−ＡＡ⁸−ＡＡ⁹−の部分は、未改変のアミノ酸配列Ｈｉｓ−Ｐｈｅ−Ａｒｇ−Ｔｒｐ−（配列番号４）を有し、場合によっては、その（Ｄ）アミノ酸アナログの１つ以上で置換されていてもよい。

表１中、（Ｄ）は、記載したアミノ酸の（Ｄ）エナンチオマーを意味し；Ｎｌｅは、アミノ酸アナログであるノルロイシンまたはアルキル側鎖を有する別のアミノ酸を意味し；Ｏｒｎは、オルニチンまたは類似の側鎖を有する別の改変アミノ酸を意味し；Ｄａｂは、２，４ジアミノ酪酸または類似のジアミノ酸を意味し；Ｄｐｒは、２，３ジアミノプロピオン酸または別のジアミノ酸を意味し；（Ｄ）ｐ−ｉｏｄｏ−Ｐｈｅは、ｐ−ヨード修飾Ｐｈｅアミノ酸等の立体化学的な基（steric group）を意味し；（Ｄ）−ｌ−ｎａｐｈ−Ａｌａは、ｌ−ｎａｐｈ−修飾（Ｄ）−Ａｌａアミノ酸または別の立体化学的に修飾されたアミノ酸を意味する。未改変ＡＣＴＨの未改変（ＡＡ^1-13）部分に対する置換を含むＡＣＴＨアナログ化合物は、好ましくは、以下に示す任意のＡＣＴＨアナログアミノ酸残基のうちの１つを含む（表１の所定の残基位置）。例えば、未改変ＡＣＴＨはＧｌｕ残基をＡＡ⁵位に有し、場合によっては、ＡＣＴＨアナログを形成する際に（Ｄ）−Ｇｌｕ、ＣｙｓまたはＡｓｐ残基で置換してもよい。式（ＩＩ）のアミノ酸配列はまた、Ｈｒｕｂｙらによって米国特許第４，４８５，０３９号、同第４，４５７，８６４号、同第４，８６６，０３８号、同第５，７３１，４０８号、同第５，７１４，５７６号、同第５，０４９，５４７号、同第４，９１８，０５５号、同第４，６４９，１９１号、同第５，６７４，８３９号（いずれも引用により本明細書に含まれるものとする）に開示されているＭＣ−２Ｒ結合配列に相当する１以上のアミノ酸置換も含むことができる。

式（Ｉ）の（ＡＡ¹⁴）−部分はアミノ酸残基（好ましくはＧｌｙまたは（Ｄ）Ｇｌｙ）を表すが、ＡＣＴＨアナログ化合物の望ましい生物学的機能、例えば、ＡＣＴＨと比較した場合のＡＣＴＨアナログによるコルチコステロイド分泌の減少、内在性ＡＣＴＨおよび／またはＭＣ−２Ｒ結合によるコルチコステロイド分泌の減少等を維持する他のアミノ酸を（ＡＡ¹⁴）−の位置に置換させることも可能である。

式（Ｉ）の（ＡＡ^15-18）−部分は、式（ＩＩＩ）に示す４個のアミノ酸からなる配列を表す。
（ＩＩＩ） −ＡＡ¹⁵−ＡＡ¹⁶−ＡＡ¹⁷−ＡＡ¹⁸−
未改変のヒトＡＣＴＨの（ＡＡ^15-18）−部分には、Ｌｙｓ−Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ａｒｇ（配列番号５）の配列が含まれ、塩基性側鎖を有する４個のアミノ酸を隣接して含む。好ましくは、ＡＣＴＨアナログ化合物は、式（ＩＩＩ）において１以上のアミノ酸残基の置換を含み、これらの位置における酵素的切断を抑制または拮抗する。また、好ましくは、ＡＣＴＨアナログ化合物は、式（ＩＩＩ）において、塩基性側鎖を有するアミノ酸を隣接させない１以上のアミノ酸の置換も含む。ＡＡ¹⁵−およびＡＡ¹⁶−は、好ましくはＬｙｓ、Ａｌａ、ＧｌｙおよびＶａｌからなる群より独立して選択され、ＡＡ¹⁷−ＡＡ¹⁸は、好ましくはＡｒｇ、Ａｌａ、ＧｌｙおよびＶａｌからなる群より独立して選択される。

一態様では、配列番号２または式（ＩＩＩ）の残基ＡＡ¹⁶−ＡＡ¹⁷−ＡＡ¹⁸の１以上のアミノ酸置換を、ＡＣＴＨアナログのアミノ酸残基１６、１７および１８が、ＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択される２個のアミノ酸残基をいずれも隣接して含まないように選択する。言い換えれば、一部のＡＣＴＨアナログでは、ペプチド配列のＡＡ¹⁶−ＡＡ¹⁷−ＡＡ¹⁸部分内では、アミノ酸ＬｙｓおよびＡｒｇが互いに隣接（即ち、アルギニンがリシンに隣接、もしくは、リシンがアルギニンに隣接）しないか、または、同一のアミノ酸同士が隣接（即ち、アルギニンが別のアルギニンに隣接、もしくは、リシンが別のリシンに隣接）しない。その代わり、ＡＡ¹⁶−ＡＡ¹⁷−ＡＡ¹⁸部分内のアミノ酸の１つ以上を、以下に示すＡＣＴＨアナログの好適な生物学的機能の１つ以上をもたらすＬｙｓまたはＡｒｇ以外の任意のアミノ酸またはアミノ酸アナログで置換する：（１）ＡＣＴＨアナログの存在下では未改変ＡＣＴＨと比較して副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（２）内在性ＡＣＴＨの存在下での副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（３）未改変ＡＣＴＨと比較してＭＣ−２Ｒ結合親和性を増加させ、ＭＣ−２Ｒレセプターの活性化を低下させる。例えば、ＡＣＴＨアナログ化合物は、式（ＩＩＩ）において１以上の位置に位置する未改変ＡＣＴＨ残基をＡｌａ残基で置換可能である。ＡＣＴＨアナログ化合物は、式（ＩＩＩ）においてＧｌｙまたはアルキル側鎖を有する任意のアミノ酸（即ち、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、アルキル側鎖を含むアミノ酸アナログ（Ｎｌｅ等））による配列番号５の残基置換を含むことができる。また、好ましくは、ＡＣＴＨアナログは、配列番号２のアミノ酸位置１５、１６、１７または１８のいずれか２箇所に置換した少なくとも１つのＡｌａおよび少なくとも１つのＡｒｇ残基を同様に含むことができる。場合によっては、配列番号２の１５、１６、１７または１８位におけるＡＣＴＨアナログ置換は、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ａｌａ、Ｇｌｙ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、アルキル側鎖を含むアミノ酸アナログ（Ｎｌｅ等）、Ｇｌｎ、Ａｓｎ、ＧｌｕおよびＡｓｐからなる群より選択されるアミノ酸である。最も好ましくは、ＡＣＴＨアナログは、Ｌｙｓ−Ａｒｇ−Ａｌａ−Ａｌａ−（配列番号６）、Ａｌａ−Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ａｒｇ（配列番号７）、Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ａｒｇ（配列番号８）、Ｌｙｓ−Ａｌａ−Ａｒｇ−Ａｌａ−（配列番号９）、Ｇｌｎ−Ｌｙｓ−Ｇｌｎ−Ａｒｇ（配列番号１０）およびＡｌａ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ａｌａ（配列番号１１）からなる群より選択される式（ＩＩＩ）のアミノ酸配列を含む。ＡＣＴＨアナログ化合物はまた、１５、１６、１７または１８位に位置する１以上のアミノ酸残基を、アミノ酸またはアルキル側鎖を有するアミノ酸アナログ、例えばＧｌｙ、Ａｌａ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、ＩｌｅまたはＮｌｅで置換することもできる。ＡＣＴＨアナログでは、ＡＣＴＨアナログ化合物の好適な生物学的機能の１つ以上、例えば、未改変ＡＣＴＨと比較した場合のＡＣＴＨアナログによるコルチコステロイド分泌の減少、内在性ＡＣＴＨおよび／またはＭＣ−２Ｒ結合によるコルチコステロイド分泌の減少等を維持する他のアミノ酸を、ＡＡ¹⁵−ＡＡ¹⁶−ＡＡ¹⁷−ＡＡ¹⁸の位置の１つ以上に置換させる。

式（Ｉ）の（ＡＡ¹⁹）−部分はアミノ酸残基を表し、Ｐｒｏ、ＴｒｐまたはＡｌａであってよいが、好ましくはＴｒｐ、Ａｌａ、または、ＡＣＴＨアナログ化合物の好適な生物学的機能の１つ以上、例えば、未改変ＡＣＴＨと比較した場合のＡＣＴＨアナログによるコルチコステロイド分泌の減少、内在性ＡＣＴＨおよび／またはＭＣ−２Ｒ結合によるコルチコステロイド分泌の減少等を維持しながら（ＡＡ¹⁹）−の位置に置換可能な他のアミノ酸である。好ましくは、ＡＣＴＨアナログ化合物では、プロリン以外のアミノ酸を（ＡＡ¹⁹）−の位置に置換させる。より好ましくは、ＡＣＴＨアナログでは、Ｐｒｏの代わりにアミノ酸Ｔｒｐを（ＡＡ¹⁹）−の位置に置換させる。未改変ＡＣＴＨペプチド配列（例えば、ｈＡＣＴＨやｍＡＣＴＨ）は、（ＡＡ¹⁹）−の位置にプロリン残基を含む。プロリンは以下の化学構造を有する：

プロリンの化学構造には、環構造を形成する側鎖が含まれる。プロリンは、αヘリックスの末端またはターンもしくはループ中に見られることが多い。ポリペプチド中にほぼトランス形でのみ存在する他のアミノ酸とは異なり、プロリンはペプチド中にシス配置で存在可能である。シス形とトランス形はほぼ等エネルギーである。好ましくは、（ＡＡ¹⁹）−は、式（ＩＩＩ）において配列番号６〜１０を含むＡＣＴＨアナログではＴｒｐであるが、ＡＣＴＨアナログ中（ＡＡ¹⁹）−がＰｒｏである化合物も提供する。

従って、特に好適なＡＣＴＨアナログは、（ＡＡ¹⁴）−（ＡＡ^15-18）−（ＡＡ¹⁹）−が、−Ｇｌｙ¹⁴−Ｌｙｓ¹⁵−Ａｒｇ¹⁶−Ａｌａ¹⁷−Ａｌａ¹⁸−Ｔｒｐ¹⁹−（配列番号１２）、−Ｇｌｙ¹⁴−Ａｌａ¹⁵−Ｌｙｓ¹⁶−Ａｌａ¹⁷−Ａｒｇ¹⁸−Ｐｒｏ¹⁹−（配列番号１３）、−Ｇｌｙ¹⁴−Ｌｙｓ¹⁵−Ａｌａ¹⁶−Ａｌａ¹⁷−Ａｒｇ¹⁸−Ｐｒｏ¹⁹−（配列番号１４）、−Ｇｌｙ¹⁴−Ｌｙｓ¹⁵−Ａｌａ¹⁶−Ａｒｇ¹⁷−Ａｌａ¹⁸−Ｐｒｏ¹⁹−（配列番号１５）、−Ｇｌｙ¹⁴−Ｇｌｎ¹⁵−Ｌｙｓ¹⁶−Ｇｌｎ¹⁷−Ａｒｇ¹⁸−Ｐｒｏ¹⁹−（配列番号１６）および−Ｇｌｙ¹⁴−Ｌｙｓ¹⁵−Ａｒｇ¹⁶−Ａｌａ¹⁷−Ａｌａ¹⁸−Ｐｒｏ¹⁹−（配列番号１７）からなる群より選択される、改変されたｈＡＣＴＨ、ｍＡＣＴＨまたはｈＡＣＴＨ（１−２４）ペプチド配列である。

ＡＣＴＨアナログは、下記の式（ＩＶａ）または式（ＩＶｂ）で表されるポリペプチドを含む：
（ＩＶａ） Ｎ−（ＡＡ^1-13）−（ＡＡ¹⁴）−（ＡＡ^15-18）−（ＡＡ¹⁹）−（ＡＡ^20-24）−
（ＩＶｂ） Ｎ−（ＡＡ^1-13）−（ＡＡ¹⁴）−（ＡＡ^15-18）−（ＡＡ¹⁹）−（ＡＡ^20-24）−Ａｃ
（式中、Ｎ−はポリペプチドのＮ末端を表し、Ａｃはポリペプチドのカルボキシ末端を表す）。式（ＶＩａ）または（ＶＩｂ）のＡＣＴＨアナログには、式（Ｉ）について上述したようなＮ−（ＡＡ^1-13）−（ＡＡ¹⁴）−（ＡＡ^15-18）−（ＡＡ¹⁹）−が含まれ、さらに（ＡＡ^20-24）−の部分が式（Ｉ）のアミノ酸配列のカルボキシ末端に結合している。式（ＶＩａ）および（ＶＩｂ）の（ＡＡ^20-24）−部分は、式（Ｖ）に示す５個のアミノ酸からなる配列を表す。

（Ｖ） −ＡＡ²⁰−ＡＡ²¹ＡＡ²²ＡＡ²³−ＡＡ²⁴−
未改変のヒトＡＣＴＨの（ＡＡ^20-24）−部分には、Ｖａｌ−Ｌｙｓ−Ｖａｌ−Ｔｙｒ−Ｐｒｏ（配列番号１８）の配列が含まれる。好ましくは、ＡＣＴＨアナログ化合物は、式（Ｖ）において１以上のアミノ酸残基の置換を含み、ＡＣＴＨアナログの血清中半減期を延長させる。例えば、ＡＣＴＨアナログは、式（Ｖ）に相当する配列である−Ａｌａ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ａｌａ−（配列番号１９）を含むことができる。

式（ＩＶａ）で表される特に好適なＡＣＴＨアナログは、ｈＡＣＴＨ（１−２４）の配列を含み、式（ＩＩＩ）の−ＡＡ¹⁵−ＡＡ¹⁶−ＡＡ¹⁷−ＡＡ¹⁸−の部分が配列番号６で置換されている。式（ＩＶａ）で表される特に好適な化合物の一つは、ＡＣＴＨアナログである（ＫＫＲＲＰ１５−１９ＫＲＡＡＷ）ｍＡＣＴＨ（１−２４）であり、以下の配列を有する：Ｎ−Ｓｅｒ¹−Ｔｙｒ−Ｓｅｒ−Ｍｅｔ−Ｇｌｕ⁵−Ｈｉｓ−Ｐｈｅ−Ａｒｇ−Ｔｒｐ−Ｇｌｙ¹⁰−Ｌｙｓ−Ｐｒｏ−Ｖａｌ−Ｇｌｙ−Ｌｙｓ¹⁵−Ａｒｇ−Ａｌａ−Ａｌａ−Ｔｒｐ−Ｖａｌ²⁰−Ｌｙｓ−Ｖａｌ−Ｔｙｒ−Ｐｒｏ−Ａｃ（配列番号２０）（「ＡＴ８１４」とも称する）。特に好適な他のＡＣＴＨアナログ化合物は、１５、１６、１７または１８位に位置するアミノ酸残基の１つ以上をアラニンまたはグルタミンで置換した、および／または、２０、２１、２２、２３または２４位に位置するアミノ酸残基をアラニンで置換した配列番号２のペプチドから本質的になり、例えば、Costa, JL et al., "Mutational analysis of evolutionarily conserved ACTH residues," Gen Comp Endocrinol. Mar; 136(1):12-6 (2004)（引用により全内容が本明細書に含まれるものとする）に記載されているものが挙げられる。

第一の実施態様の第三の態様では、ＡＣＴＨアナログは、式（ＶＩａ）または式（ＶＩｂ）で表されるポリペプチドを含む：
（ＶＩａ） Ｎ−（ＡＡ^1-13）−（ＡＡ¹⁴）−（ＡＡ^15-18）−（ＡＡ¹⁹）−（ＡＡ^20-24）−（ＡＡ^25-39）−
（ＶＩｂ） Ｎ−（ＡＡ^1-13）−（ＡＡ¹⁴）−（ＡＡ^15-18）−（ＡＡ¹⁹）−（ＡＡ^20-24）−（ＡＡ^25-39）−Ａｃ
（式中、Ｎ−はポリペプチドのアミノ末端を表し、Ａｃはポリペプチドのカルボキシ末端を表す）。式（ＩＶａ）または（ＩＶｂ）のＡＣＴＨアナログには、式（ＩＶａ）について上述したようなＮ−（ＡＡ^1-13）−（ＡＡ¹⁴）−（ＡＡ^15-18）−（ＡＡ¹⁹）−（ＡＡ^20-24）−が含まれ、さらに（ＡＡ^25-39）−の部分が式（ＩＶａ）のアミノ酸配列のカルボキシ末端に結合している。式（ＶＩａ）は、場合によっては、追加の化学構造がＡＡ³⁹残基に結合していてもよく、あるいは、ＡＡ³⁹残基が式（ＶＩｂ）の構造のカルボキシ末端を形成する。式（ＶＩａ）および（ＶＩｂ）の（ＡＡ^25-39）−部分は、式（ＶＩＩ）に示す１５個のアミノ酸からなる配列を表す。

（ＶＩＩ） −ＡＡ²⁵−ＡＡ²⁶−ＡＡ²⁷−ＡＡ²⁸−ＡＡ²⁹−ＡＡ³⁰−ＡＡ³¹ＡＡ³²−ＡＡ³³−ＡＡ³⁴−ＡＡ³⁵−ＡＡ³⁶−ＡＡ³⁷−ＡＡ³⁸−ＡＡ³⁹
未改変のヒトＡＣＴＨの（ＡＡ^25-39）−部分には、Ａｓｎ−Ｇｌｙ−Ａｌａ−Ｇｌｕ−Ａｓｐ−Ｇｌｕ−Ｓｅｒ−Ａｌａ−Ｇｌｕ−Ａｌａ−Ｐｈｅ−Ｐｒｏ−Ｌｅｕ−Ｇｌｕ−Ｐｈｅ（配列番号２１）の配列が含まれる。好ましくは、ＡＣＴＨアナログ化合物は、式（ＶＩＩ）において１以上のアミノ酸残基の置換を含むか、または、式（ＶＩＩ）のカルボキシ末端から１以上のアミノ酸残基の末端切断を含み、ＡＣＴＨアナログ化合物に所望の徐放特性を与える。例えば、ＡＣＴＨアナログは、配列番号１０の未改変ＡＣＴＨ配列を有する式（ＶＩＩ）に相当する配列を含むことができ、場合によっては、ＡＡ³⁰をＬｙｓで置換および／またはＡＡ³⁶をＡｒｇで置換することで改変されていてもよい。

置換変異体は、アミノ酸配列中の少なくとも１つの残基が除去され、代わりに異なる残基が挿入されているものである。このような置換は、タンパク質の特徴を細かくモジュレートするのが望ましい場合には、以下の表２に従って行うことが可能である。表２は、タンパク質中の元のアミノ酸と置き換えることのできるアミノ酸を示し、このようなアミノ酸は当該技術分野では保存的置換として認められている。ＡＣＴＨアナログ化合物としては、以下に示すＡＣＴＨアナログの好適な生物学的機能の１つ以上を保持する１以上の保存的置換を有する化合物が挙げられる：（１）ＡＣＴＨアナログの存在下では未改変ＡＣＴＨと比較して副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（２）内在性ＡＣＴＨの存在下での副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させる、（３）未改変ＡＣＴＨと比較してＭＣ−２Ｒ結合親和性を増加させ、ＭＣ−２Ｒレセプターの活性化を低下させる。

機能または免疫学的同一性の実質的な変化は、表２よりも保存的でない置換を選択することでもたらされる。即ち、（ａ）置換領域におけるポリペプチド主鎖の構造を、例えばシートまたはヘリックス構造として維持する上で、（ｂ）標的部位における分子の荷電または疎水性を維持する上で、あるいは、（ｃ）側鎖の嵩高さを維持する上で著しく効果の異なる残基を選択することでもたらされる。通常タンパク質の特性に最も大きな変化をもたらすと予想される置換は、以下のものが考えられる：（ａ）親水性の残基（例えば、セリルまたはスレオニル）と疎水性残基（例えば、ロイシル、イソロイシル、フェニルアラニル、バリルまたはアラニル）との置換；（ｂ）システインまたはプロリンと他の任意の残基との置換；（ｃ）電気陽性の側鎖を有する残基（例えば、リシル、アルギニルまたはヒスタジル（histadyl））と電気陰性の残基（例えば、グルタミルまたはアスパルチル）との置換；（ｄ）嵩高い側鎖を有する残基（例えば、フェニルアラニン）と側鎖を持たない残基（例えば、グリシン）との置換。

ＡＣＴＨアナログ化合物の好適なＡＣＴＨアナログ生物学的機能は、任意の適切な方法で測定可能であるが、好ましくは後述するアッセイの１つ以上を行うことで評価する。
ＡＣＴＨ機能の低下をもたらすＡＣＴＨアナログ化合物
第二の実施態様では、ＡＣＴＨアナログは改変されたＡＣＴＨペプチドであり、未改変ＡＣＴＨと比較してＡＣＴＨアナログの存在下では副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させるように機能する。ＡＣＴＨアナログの構造は、好ましくは上述の構造式の１つ以上に従って選択する。ＡＣＴＨアナログ化合物は、例えば、ＡＣＴＨアナログ投与後の被験体血液中におけるコルチコステロイドレベルの低下により測定した場合に、ＡＣＴＨによる血中コルチコステロン分泌を減少させることができる。ＡＣＴＨアナログは好ましくは、インビボでの血清コルチコステロイド誘発アッセイにより測定した場合に、同等の未改変ＡＣＴＨペプチドの投与と比較して、血清コルチコステロンレベルを少なくとも１０％、１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％または１００％減少させる。

インビボでの血清コルチコステロイド誘発アッセイでは、被験体の血流中におけるコルチコステロイドまたはコルチコステロンのレベルを測定する。より詳しくは、インビボでの血清コルチコステロイド誘発アッセイには以下の工程が含まれる：第一に、内在性ＡＣＴＨの産生を抑制する薬剤をマウス被験体へ投与（例えば、デキサメタゾンを腹腔内注射）し；第二に、内在性ＡＣＴＨの産生を抑制するのに適した時間（例えば、１．５〜２．０時間）待った後、適切な方法（例えば、腹腔内または皮下注射）によって被験化合物をマウスへ投与し；第三に、注射した被験化合物が作用するのに適した時間（例えば、１時間）待った後、血液サンプルを被験体から採取し、血清コルチコステロンのレベルを適切な方法（例えば、¹²⁵Ｉ ＲＩＡキット（ＩＣＮ，Ｃｏｓｔａ Ｍｅｓａ，ＣＡ）を使用した競合ラジオイムノアッセイ）で判定する。実施例１では、マウスのインビボでの血清コルチコステロイド誘発アッセイを詳細に記載する。

ＡＣＴＨまたはＡＣＴＨアナログのいずれかを被験化合物として投与後、血中の血清コルチコステロイドを測定することで、インビボでＡＣＴＨアナログ化合物によって誘導されるコルチコステロイドまたはコルチコステロンの分泌を、未改変ＡＣＴＨ化合物によって産生されるコルチコステロイド分泌のレベルと比較した。図１は、ｍＡＣＴＨ（１−２４）と各種ＡＣＴＨアナログ被験化合物とを実施例１の方法に従って用いて行ったマウスのインビボでのコルチコステロイド副腎誘発アッセイの結果を示す。標準的なラジオイムノアッセイ（ＲＩＡ）分析を用い、ｍＡＣＴＨ（１−２４）またはＡＣＴＨアナログ化合物をデキサメタゾン抑制マウスへ投与した１時間後に回収した血液サンプルついてコルチコステロンレベルを測定することで、機能低下をもたらすＡＣＴＨアナログ組成物を同定した。図１では、各種ＡＣＴＨアナログペプチドの効力をコルチコステロンの誘発率（％）として表す（マウスＡＣＴＨの場合を１００％とする）。グラフ（１０）は、ＡＣＴＨと９種類のＡＣＴＨアナログ化合物サンプル（１４）についてコルチコステロン誘発率（１２）を示したものである。インビボでの血清コルチコステロイド副腎誘発アッセイにおいて未改変ｍＡＣＴＨ（１−２４）について測定した血清コルチコステロン濃度（２０）に対する割合（％）として、サンプル２〜１０におけるＡＣＴＨアナログ化合物のコルチコステロン誘発率（１２）を示す。図１のサンプル２〜１０について、構造改変および血清中における減少率（測定値）を下記の表３に示す。

内在性ＡＣＴＨによるコルチコステロン誘発の減少
第三の実施態様では、ＡＣＴＨアナログは、内在性ＡＣＴＨの存在下での副腎膜からのコルチコステロイド分泌を減少させるように機能する、改変ＡＣＴＨペプチドである。ＡＣＴＨに先立ってまたは同時に投与した場合、ＡＣＴＨアナログ化合物は、血清コルチコステロイドレベルを１０〜１００％減少させることができる。好ましくは、ＡＣＴＨアナログ化合物は、インビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイ（例えば、実施例２に記載のアッセイ）により測定したＡＣＴＨ単独投与の場合と比較して、インビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイにより測定した血清コルチコステロイドレベルを約１０％、１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％または１００％減少させる。一連のインビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイを行うことで、内在性ＡＣＴＨによる副腎ホルモン産生を阻害する代表的なＡＣＴＨアナログ化合物を同定した。ＡＣＴＨアナログは単独でも投与可能であり、ＡＣＴＨと併用してＡＣＴＨの投与に先立ってまたは同時に投与することもできる。

インビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイでは、第一のコルチコステロイド産生生物活性を有する化合物と被験化合物とを投与した後、被験体の血流中におけるコルチコステロイドまたはコルチコステロンのレベルを測定する。コルチコステロイド産生生物活性を有する化合物は、コルチコステロイド産生を検出可能なレベルで増加させることが知られている化合物であればいずれの化合物でもよい。被験化合物は、コルチコステロイド産生化合物に先立って、コルチコステロイド産生化合物と併用して、および／または、コルチコステロイド産生化合物の後に投与可能である。コルチコステロイド産生化合物は、好ましくはＡＣＴＨであるが、コルチコステロイド産生生物活性が知られているＡＣＴＨアナログであってもよい。一連のインビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイをＡＣＴＨアナログ被験化合物を用いて行うことにより、使用したコルチコステロイド産生化合物に比べてコルチコステロイドの産生を阻害するＡＣＴＨアナログを同定することができる。好ましくは、このようにして同定したＡＣＴＨアナログは、内在性の未改変ＡＣＴＨの存在下でのコルチコステロイドの産生を阻害するものである。

インビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイでは、以下の工程により被験化合物とコルチコステロイド産生化合物とを順次投与することができる：第一に、内在性ＡＣＴＨの産生を抑制する薬剤をマウス被験体へ投与（例えば、デキサメタゾンを腹腔内注射）し；第二に、内在性ＡＣＴＨの産生を抑制するのに適した時間（例えば、１．５〜２．０時間）待った後、適切な方法（例えば、腹腔内注射）によって被験化合物をマウスへ投与し；第三に、被験化合物が作用するのに適した時間（例えば、１時間）待った後、適切な方法（例えば、腹腔内注射）によってコルチコステロイド産生活性を有する化合物をマウスへ投与し、；第四に、両投与化合物の生物活性が生じるのに適した時間（例えば、１時間）待った後、血液サンプルを被験体から採取し、血清コルチコステロンのレベルを適切な方法（例えば、¹²⁵Ｉ ＲＩＡキット（ＩＣＮ，Ｃｏｓｔａ Ｍｅｓａ，ＣＡ）を使用した競合ラジオイムノアッセイ）で判定する。場合によっては、工程２と３を逆にすることもできる（コルチコステロイド産生化合物を最初に投与し、その後被験化合物を投与）。インビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイでは、以下の工程により被験化合物とコルチコステロイド産生化合物とを同時投与することも可能である：第一に、内在性ＡＣＴＨの産生を抑制する薬剤をマウス被験体へ投与（例えば、デキサメタゾンを腹腔内注射）し；第二に、内在性ＡＣＴＨの産生を抑制するのに適した時間（例えば、１．５〜２．０時間）待った後、適切な方法（例えば、腹腔内注射）によってコルチコステロイド産生化合物と被験化合物とをマウスへ同時投与し；第三に、両投与化合物の生物活性が生じるのに適した時間（例えば、１時間）待った後、血液サンプルを被験体から採取し、血清コルチコステロンのレベルを適切な方法（例えば、¹²⁵Ｉ ＲＩＡキット（ＩＣＮ，Ｃｏｓｔａ Ｍｅｓａ，ＣＡ）を使用した競合ラジオイムノアッセイ）で判定する。また、一部の実施態様では、いずれのインビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイにおいても、第一の工程を、ＡＣＴＨの産生を抑制する薬剤の投与に代えて、工程４の方法による被験体の血中における内在性コルチコステロイドまたはコルチコステロイドの初期レベルの測定に置き換えることが可能である。実施例２では、マウスのインビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイを詳細に記載する。

一連の独立したインビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイを行い、ＡＣＴＨ副腎ホルモン産生をインビボで阻害するＡＣＴＨアナログを同定した。デキサメタゾン抑制マウスの血清コルチコステロンレベルは、（１）ＡＣＴＨ（コルチコステロイド産生化合物）を投与、（２）ＡＣＴＨアナログ（被験化合物）を投与した後にＡＣＴＨを投与、（３）ＡＣＴＨをＡＣＴＨアナログと組み合わせて投与、（４）ＡＣＴＨアナログを単独で投与した後に、実施例２に記載の通り測定した。表４に、マウスで測定した血清コルチコステロイドのレベルを投与時間の関数として示す。

表４を参照すると、実施例２に記載の通り、５回の独立したインビボでの血清コルチコステロイドアッセイにおいて、デキサメタゾンをまず時間＝０分でマウスへ投与した。「ビヒクル」サンプルでは、液体ビヒクルのみをデキサメタゾン注射１２０分後に投与したところ、１時間後に採取した血液サンプルで測定した場合にはコルチコステロンのレベルは検出不可であった。「ＡＣＴＨ」サンプルでは、ＡＣＴＨをデキサメタゾン注射１２０分後に投与したところ、１時間後に採取した血液サンプルでは５００±７６ｎｇ／ｍＬのコルチコステロンレベルが検出された。「ＡＴ９０−ＡＣＴＨ１２０」サンプルでは、ＡＣＴＨアナログである（ＫＫＲＲＰ１５−１９ＫＲＡＡＷ）ｍＡＣＴＨ（１−２４）をデキサメタゾン注射１．５時間後に投与し、ＡＣＴＨ（１−２４）を３０分後に投与したところ、１時間後に採取した血中レベルで１７５±２７ｎｇ／ｍＬの血清コルチコステロンレベルを測定した。「（ＡＴ＋ＡＣＴＨ）１２０」サンプルでは、ＡＣＴＨアナログである（ＫＫＲＲＰ１５−１９ＫＲＡＡＷ）ｍＡＣＴＨ（１−２４）（「ＡＴ８１４」）をｍＡＣＴＨ（１−２４）と共にデキサメタゾン注射１２０分後に投与したところ、１時間後に採取した血中レベルで５１±８ｎｇ／ｍＬの血清コルチコステロンレベルを測定した。「ＡＴ」サンプルでは、ＡＣＴＨアナログである（ＫＫＲＲＰ１５−１９ＫＲＡＡＷ）ｍＡＣＴＨ（１−２４）をデキサメタゾン注射１２０分後に投与したところ、無視できる程度の約７±７ｎｇ／ｍＬの血清コルチコステロンレベルが得られた。

図２には、表２の結果を、実施例２に記載の通りデキサメタゾン注射１８０分後に測定したコルチコステロンレベルの割合（％）として示す。グラフ（１００）は、ＡＣＴＨと表２に記載の４種類のサンプル（１１４）についてコルチコステロン誘発率（１１２）を示したものである（ＡＣＴＨ（１２０）の投与について測定したコルチコステロンのレベルを１００％に正規化）。サンプル「ＡＴ９０−ＡＣＴＨ１２０」（１４０）は、ＡＣＴＨの投与３０分前にＡＣＴＨアナログを投与した場合を表し、ＡＣＴＨ投与１時間後に採取した血液サンプル中における血清コルチコステロンレベルは約６５％減少した。サンプル「（ＡＴ＋ＡＣＴＨ）１２０」（１６０）は、ＡＣＴＨアナログとＡＣＴＨとを同時投与した場合を表し、１時間後に採取した血液サンプル中における血清コルチコステロンレベルは約９０％減少した。「ＡＴ」サンプル（１８０）並びに表１のサンプル１０に見られるように、ＡＣＴＨアナログの単独投与では、１時間後に採取した血液サンプル中における血清コルチコステロンレベルは、またしても約９９％〜１００％減少した。「ビヒクル」単独サンプルは図２には示していない。
副腎ＡＣＴＨレセプター結合アッセイ
第四の実施態様では、ＡＣＴＨアナログは、副腎ＡＣＴＨレセプター（例えば、ＭＣ−２Ｒレセプター）に結合するように機能し、好ましくは未改変ＡＣＴＨと比較してＭＣ−２Ｒ結合親和性を増加させ、ＭＣ−２Ｒレセプターの活性化を低下させる、改変ＡＣＴＨペプチドである。

好適なＡＣＴＨアナログ化合物は、内在性の未改変ＡＣＴＨよりも高い親和性で副腎膜に結合し、インビトロでの無血清副腎競合結合アッセイにおいて未改変ＡＣＴＨを退かして置き換わることができる（実施例３）。ＡＣＴＨアナログ化合物は、好ましくは、副腎膜調製物に結合するＡＣＴＨの少なくとも２０％と置き換わる（インビトロでの無血清副腎競合結合アッセイにより測定）。より好ましくは、ＡＣＴＨアナログ化合物は、未改変ＡＣＴＨと比較して、外植副腎膜に対して２倍、３倍、４倍、５倍、１０倍、２０倍、３０倍、４０倍、５０倍、６０倍、７０倍、８０倍、９０倍、１００倍の親和性を有する。

内在性の未改変ＡＣＴＨよりも高い親和性で副腎膜に結合し、未改変ＡＣＴＨを退かして置き換わることのできるＡＣＴＨアナログ化合物は、インビトロでの無血清副腎競合結合アッセイを用いて同定可能である（実施例３）。図３には、実施例３に記載の方法により、代表的なＡＣＴＨアナログである配列番号２０を有するＡＴ８１４（「ＡＴ８１４」）を用いて行ったインビトロでの無血清副腎競合結合アッセイの結果を示す。グラフ（２００）は、放射性ＡＣＴＨと共にインキュベートした副腎膜調製物についてガンマカウンターにより測定した１分当たりのカウント数（ＣＰＭ）（２１２）を示したものである。ＣＰＭレベルが高いほど、放射標識化合物が多く存在することを意味する。カラム（２１０）は、副腎膜不在下でのバックグラウンド測定を示す。カラム（２２０）は、外植副腎膜を放射標識されたｍＡＣＴＨ（１−２４）とのみ２時間合わせた後検出した、放射標識された未改変ｍＡＣＴＨ（１−２４）のレベルを示す（競合結合なし）。カラム（２３０）、（２４０）および（２５０）は、副腎膜上のレセプター（例えば、ＭＣ−２Ｒ）への競合結合による競合結合アッセイの結果を示しており、放射標識されていない（「ｃｏｌｄ」）ｍＡＣＴＨ（１−２４）を結合させて、放射標識されたｍＡＣＴＨ（１−２４）を外植副腎膜（カラム（２２０）で測定）から退かした。具体的には、カラム（２３０）は、放射標識された外植副腎膜を１０ｎＭの「ｃｏｌｄ」ｍＡＣＴＨ（１−２４）と合わせた後に検出したところ、放射標識ｍＡＣＴＨ（１−２４）のレベルが低下したことを示しており；カラム（２４０）は、１００ｎＭの「ｃｏｌｄ」ｍＡＣＴＨ（１−２４）を添加した後では、放射標識された外植副腎膜に結合した放射標識ｍＡＣＴＨ（１−２４）のレベルがさらに低下したことを示しており；カラム（２５０）は、外植副腎膜調製物を１０００ｎＭの「ｃｏｌｄ」ｍＡＣＴＨ（１−２４）と合わせた後では、放射標識された外植副腎膜に結合した放射標識ｍＡＣＴＨ（１−２４）のレベルが一層低下したことを示している。「ｃｏｌｄ」ｍＡＣＴＨ（１−２４）の濃度が上昇するにつれて放射標識されたｍＡＣＴＨ（１−２４）のレベル低下が検出されたことから、放射標識されたｍＡＣＴＨ（１−２４）が「ｃｏｌｄ」ｍＡＣＴＨ（１−２４）によってＭＣ−２Ｒレセプターから退かされたことが明らかである。

ｍＡＣＴＨ（１−２４）の代わりに配列番号２０で表される「ｃｏｌｄ」（放射標識されていない）ＡＴ８１４ ＡＣＴＨアナログ化合物を用いて、インビトロでの無血清副腎競合結合アッセイを繰り返した。カラム（２３５）、（２４５）および（２５５）は、「ｃｏｌｄ」ＡＴ８１４を１０ｎＭ（カラム（２３５））、１００ｎＭ（カラム（２４５））および１０００ｎＭ（カラム（２５５））の濃度にて競合結合させた競合結合アッセイの結果を示しており、放射標識されていないＡＴ８１４を結合させて、放射標識されたｍＡＣＴＨ（１−２４）を外植副腎膜（カラム（２２０）で測定）から退かした。「ｃｏｌｄ」ＡＴ８１４の濃度が上昇するにつれて放射標識されたＡＴ８１４のレベル低下が検出されたことから、放射標識されたｍＡＣＴＨ（１−２４）が「ｃｏｌｄ」ＡＴ８１４によって退かされたことが明らかである。具体的には、グラフ（２００）の結果より、ＡＴ８１４の副腎膜に対する結合親和性が、放射標識されたｍＡＣＴＨ（１−２４）よりも約３〜約４倍高いことが明らかである。ＡＴ８１４の副腎膜に対する結合親和性の増加は、ＭＣ−２Ｒレセプター結合親和性の増加の指標となり得る。
ＡＣＴＨアナログ化合物のインビトロでの試験
第五の実施態様では、ＡＣＴＨアナログ化合物は、インビトロで外植組織における未改変ＡＣＴＨによるコルチコステロン誘発を減少させることができる。外植副腎膜と合わせた場合、ＡＣＴＨアナログ化合物は、好ましくは無血清培地中のコルチコステロイドレベルを１０〜１００％減少させる。好ましくは、ＡＣＴＨアナログ化合物は、未改変ＡＣＴＨの単独投与と比較して、インビトロでの無血清副腎コルチコステロイド阻害アッセイにより測定した血清コルチコステロイドレベルを約１０％，１５％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、９９％または１００％減少させる（実施例４）。一連のインビトロでの無血清副腎コルチコステロン阻害アッセイを行うことで、外植副腎膜を未改変ＡＣＴＨへ接触させた際に誘導される副腎ホルモン産生を阻害する代表的なＡＣＴＨアナログ化合物を同定したところ、副腎コルチコステロン産生に対するＡＣＴＨアナログ化合物の直接的な作用が示唆された。

一連の独立したインビトロでの無血清副腎コルチコステロイド阻害アッセイを行い、ＡＣＴＨによる副腎ホルモンの産生をインビトロで阻害するＡＣＴＨアナログを同定した。実施例４の手順に従って、外植副腎膜および未改変ＡＣＴＨ、ＡＴ８１４ ＡＣＴＨアナログ（配列番号２０）、または、ＡＣＴＨとＡＴ８１４との組み合わせ（各１００ｎｇ／ｍＬ）を含有する無血清培養培地中で、コルチコステロンの濃度を測定した。一連のインビトロでの無血清副腎コルチコステロン阻害アッセイを外植マウス副腎膜を用いて行い、無血清培地中で測定したコルチコステロイドのレベルを表３に示す。コルチコステロンレベルは副腎膜を無血清Ｍ１９９培地に入れてから２．０時間後に測定し、表５の各コルチコステロンレベルは５つのサンプルの平均である。

表５を参照すると、実施例４に記載の通り、外植マウス副腎半球をＭ１９９無血清培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）へ３０分間入れた。「Ｍ１９９培地」サンプルでは、最初に３０分間浸した後、副腎膜をＭ１９９無血清培地中に合計で２．０時間浸漬（合わせて２．５時間浸漬）させてから標準的なＲＩＡラジオアッセイ技術を利用して培養物のコルチコステロンレベルを測定した。「ＡＣＴＨ」サンプルでは、未改変ＡＣＴＨをＭ１９９培地へ添加したところ、２時間後に培養培地中で約６００ｍｇ／ｍＬのコルチコステロンレベルが検出された。「ＡＴ−８１４」サンプルでは、ＡＣＴＨアナログである（ＫＫＲＲＰ１５−１９ＫＲＡＡＷ）ｍＡＣＴＨ（１−２４）（配列番号２０）をＭ１９９培地へ添加したところ、２時間後に培養培地中で約２９０ｍｇ／ｍＬのコルチコステロンレベルが検出された。「ＡＣＴＨ＋ＡＴ−８１４」サンプルでは、１００ｎｇ／ｍＬのＡＴ８１４ ＡＣＴＨアナログ（配列番号２０）と１００ｎｇ／ｍＬの未改変ＡＣＴＨとをＭ１９９培地へ同時に添加したところ、２時間後に培養培地中で約３９６ｍｇ／ｍＬのコルチコステロンレベルが検出された。図４は、上述の通りおよび実施例４に記載の通り、「ＡＣＴＨ」サンプル（３１０）、「ＡＴ−８１４」サンプル（３２０）および「ＡＣＴＨ＋ＡＴ−８１４」サンプル（３３０）について、表３のコルチコステロン誘発率（３０２）を、Ｍ１９９培養培地中で測定したＡＣＴＨ（３１０）の量に対する割合（％）として示したグラフ（３００）である。「Ｍ１９９培地」サンプルは図２には示していない。再び図４を参照すると、ＡＴ８１４をＭ１９９無血清培地中の副腎膜へ添加した場合には、コルチコステロン誘発は無視できる量にとどまり、等量のＡＴ８１４ ＡＣＴＨアナログと未改変ＡＣＴＨとの組み合わせを添加した場合には、未改変ＡＣＴＨの単独添加と比較してコルチコステロンの誘発量が約６５％減少した。
ＡＣＴＨアナログ化合物のインビボでの試験
血清中半減期が延長されたＡＣＴＨアナログ化合物は、特定の用途にとって好適である。ＡＣＴＨアナログ化合物は、場合によっては、未改変ＡＣＴＨまたは別のＡＣＴＨアナログに比べてＡＣＴＨアナログの血清中半減期を延長可能な１以上のアミノ酸置換または末端切断を含んでいてもよい。例えば、ＡＣＴＨアナログ化合物は、ＡＣＴＨ配列に比べて化合物の血清中半減期を延長させる、未改変ＡＣＴＨ配列のアミノ酸位置２５〜３９のうちの１以上のアミノ酸置換を含むことができる。好適なＡＣＴＨアナログ化合物は、未改変ＡＣＴＨよりも長い血清中半減期を有することができる。ＡＣＴＨの血中における半減期は約２０分未満である。従って、特に好適なＡＣＴＨアナログ化合物は、約２０分、３０分、４０分、または、５０分以上の血清中半減期を有する。

第六の実施態様では、半減期が延長されたＡＣＴＨアナログを提供する。半減期が延長されたＡＣＴＨアナログは、インビボで検出される血清コルチコステロイド濃度により測定される第一の活性を有するものと同定することができ、第一の活性は、インビトロ活性として検出される無血清コルチコステロイド濃度により測定される第二の活性よりも高く、ここで、インビボ活性は、実施例１の血清副腎コルチコステロイド阻害アッセイにて測定し、インビトロ活性は、実施例４のインビトロでの無血清副腎コルチコステロイド阻害アッセイにて測定する。

他の位置におけるアミノ酸置換でも、場合によってはＡＣＴＨアナログの血清中半減期を高めることが可能であるが、特定の実施態様では、ｈＡＣＴＨやｍＡＣＴＨといったＡＣＴＨ分子の２０〜２４位に位置する１以上のアミノ酸を改変することにより、ＡＣＴＨアナログの血清中半減期が延長される。図５は、７種類のＡＣＴＨアナログ化合物（４１０）、（４２０）、（４３０）、（４４０）、（４５０）、（４６０）および（４７０）のインビボ活性（灰色のバー）とインビトロ活性（白色のバー）を比較したグラフである。７種類全てのＡＣＴＨアナログ化合物について、インビボ活性は実施例１の方法を用いて、インビトロ活性は実施例４の方法を用いて測定した。結果を、ｍＡＣＴＨ（１−２４）配列（配列番号２）に対する割合（％）として測定した「コルチコステロン誘発率（％）」（４０２）の棒グラフとして表す。図５に見られるように、「Ａｌａ１９−２４」と命名したサンプル（４６０）は、ＡＣＴＨアナログである（ＡＡＡＡＡ２０−２４ＶＫＶＹＰ）ＡＣＴＨ（１−２４）であり、ｍＡＣＴＨのアミノ酸位置１９〜２４の各々をＡｌａ残基で置換したものである。サンプル（４６０）では、本化合物について測定したインビトロ活性（４６４）に比べてインビボ（４６２）で測定した血清中半減期が増加しており、未改変ｍＡＣＴＨのインビトロ活性よりも約５０％高かった。さらにまた、（ＡＡＡＡＡ２０−２４ＶＫＶＹＰ）ＡＣＴＨ（１−２４）のＡＣＴＨアナログ（４６０）のインビボ活性は、ｍＡＣＴＨと他のＡＣＴＨアナログ（４１０）、（４２０）、（４３０）、（４４０）、（４５０）および（４７０）の双方に比べて高かった。これらの結果より、２０〜２４位に位置するアミノ酸残基が、ＡＣＴＨアナログ化合物の血清中半減期を決定する上で役割を果たす可能性が示唆される。ＡＣＴＨの２０〜２４位に１以上のアミノ酸置換を有するＡＣＴＨアナログ化合物は、ＡＣＴＨに比べて血清中半減期を延長させるのに特に好適である。

同様に望ましくは、ＡＣＴＨアナログ化合物は、インビボアッセイ（実施例１）またはインビトロアッセイ（実施例４）で測定した際に、ＡＣＴＨアナログのコルチコステロン誘発を明らかに増加させることなく（または、より好ましくは低下させながら）血清中半減期を延長させるアミノ酸置換を含むことができる。例えば、ＡＣＴＨアナログ（４１０）、（４２０）、（４３０）、（４４０）、（４５０）および（４７０）における１５〜１９位の置換に由来するコルチコステロン誘発は、未改変ｍＡＣＴＨ（１−２４）と比較して、インビボおよびインビトロ双方におけるＡＣＴＨアナログのコルチコステロン誘発活性を低下させた。具体的には、ＡＣＴＨアナログ（４１０）は（Ｋ１５Ａ、Ｒ１７Ａ）ｍＡＣＴＨ（１−２４）のＡＣＴＨアナログであって、インビボ活性（４１２）よりも高いインビトロ活性（４１４）を示し；ＡＣＴＨアナログ（４２０）は（Ｋ１６Ａ、Ｒ１７Ａ）ｍＡＣＴＨ（１−２４）のＡＣＴＨアナログであって、インビボ活性（４２２）よりも高いインビトロ活性（４２４）を示し；ＡＣＴＨアナログ（４３０）は（Ｋ１６Ａ、Ｒ１８Ａ）ｍＡＣＴＨ（１−２４）のＡＣＴＨアナログであって、インビボ活性（４３２）よりも高いインビトロ活性（４３４）を示し；ＡＣＴＨアナログ（４４０）は（Ｋ１５Ｑ、Ｒ１７Ｑ）ｍＡＣＴＨ（１−２４）のＡＣＴＨアナログであって、インビボ活性（４４２）よりも高いインビトロ活性（４４４）を示し；ＡＣＴＨアナログ（４７０）は（Ｐ１９Ｗ、Ｋ２１Ａ）ｍＡＣＴＨ（１−２４）のＡＣＴＨアナログであって、インビボ活性よりも高いインビトロ活性（４７４）を示した。
スクリーニング方法
第七の実施態様では、副腎の活動可能な状態を維持しながら過剰のＡＣＴＨを阻止するのに有用なＡＣＴＨアナログのスクリーニング方法も提供する。各種のＡＣＴＨアナログを調製し、患者へ投与してインビボでのコルチゾン誘発を評価することができる。

安定な複合体を形成するための特定化合物の分子認識（即ち、抗体による抗原の認識）の特異性は、溶液中における分析用イムノアッセイおよび固相界面における免疫センサー双方の基礎となり得る。これらの分析方法は、標的検体（即ち、ＭＣ２Ｒレセプターに結合する化合物）と非常に特異的な結合試薬との間のリガンド結合反応の産物を観察することに基づくリガンド結合アッセイであってよい。

特定の場合には、別の（alternative）検体結合化合物（例えば、アプタマー）をリガンド結合アッセイに適用して特に感度の高いスクリーニングを行う。アプタマーは、高い親和性と特異性で各種の標的分子を認識する能力を有する一本鎖ＤＮＡまたはＲＮＡオリゴヌクレオチド配列である。これらのリガンド結合オリゴヌクレオチドは、様々な診断方式において抗体の特性を模倣するものである。全体として特有の形状に折り畳まれ、標的構造に対して複雑な結合溝を形成する。アプタマーは、ＳＥＬＥＸ（systematic evolution of ligands by exponential enrichment）として知られるインビトロセレクション法によって同定する。アプタマーは検出表面に付着し易い点で抗体よりも有利であると考えられる。また、どのような量であっても再現性の高い合成法であるため、親和定数が抗体よりも一貫して低く、かつ、これらの化合物の安定性に依然として問題があるにも拘らず、複雑な生物学的マトリックスにおけるスクリーニング用途にとって（即ち、ＭＣ２Ｒと結合する際に特に活性な、ＡＣＴＨ−（１５−１９）位および／またはＡＣＴＨ−（２１）位をアミノ酸残基で置換したＡＣＴＨアナログを同定する際に）特に有用であると考えられる。

あるいは、分子インプリンティング技術を利用してＭＣ２Ｒ活性に影響を及ぼす化合物または方法をスクリーニングしてもよい。これは、特定の物質または構造アナログ群に対して予め選択的に決定した高分子吸着剤を調製することに基づく技術である。プラスチック材料の機能性および架橋性モノマー（例えば、メタクリルおよびスチレン）を鋳型となるリガンドと相互作用させて低エネルギー相互作用を作り出す。続いて重合を誘導する。この過程では、非共有結合的な自己集合法または可逆的な共有結合法のいずれかによって、目的の分子をポリマー内に捕捉する。重合を停止した後、鋳型分子を洗い流す。得られた鋳型のインプリントは硬質ポリマー中に維持され、鋳型についての立体化学的（サイズ、形状）および化学的（相補的な官能性の特別な配置）な記憶を持つ。分子的にインプリントされたポリマー（ＭＩＰ）は、抗原−抗体相互作用と類似の特異性で鋳型（＝検体）に結合可能である。

固相抽出およびクロマトグラフィーにおける主要な用途以外にも、分子的にインプリントされたポリマーは、競合結合アッセイにおいて抗体の非生物学的な代替として利用可能である。典型的な生物学的細胞の増殖時には、グルコース等の炭素含有栄養源を取り込み、乳酸等の酸性代謝産物を放出する。ミクロ生体機能解析（microphysiometry）では、代謝率におけるこれらの変化を、細胞周囲の培地の酸性化率の変化として記録する（即ち、Raley-Susman, K.M. et al., "Effects of excitotoxin exposure on metabolic rate of primary hippocampal cultures: application of silicon microphysiometry to neurobiology," J Neurosci., 12(3):773-780 (1992); Baxter, G.T. et al., "PKCε is involved in granulocyte-macrophage colony-stimulating factor signal transduction: evidence from microphysiometry and antisense oligonucleotide experiments," Biochemistry, 31:19050-10954 (1992); Bouvier, C. etal., "Dopaminergic activity measured in D₁- and D₂-transfected fibroblasts by silicon microphysiometry," J. Recept. Res., 13(1-4):559-571 (1993)；およびMcConnell, H. M. et al., "The cytosensor microphysiometer: biological applications of silicon technology," Science, 257:1906-1912 (1992)）。ミクロ生体機能解析を利用して細胞に影響を与える分子を検出することができる。このような分子としては、神経伝達物質、成長因子、サイトカイン、レセプター等が挙げられる。従って、ミクロ生体機能解析法では、ＭＣ２Ｒレセプター活性に影響を与えるＡＣＴＨアナログについての貴重な情報を得ることができる。

合成コンビナトリアルライブラリーは、大規模な生化学的スクリーニングに有用である多様な構造の供給源である（即ち、Sastry, L. et al., "Screening combinatorial antibody libraries for catalytic acyl transfer reactions," Ciba Found Symp., 159:145-155 (1991); Persson, M.A.A. et al., "Generation of diverse high-affinity monoclonal antibodies by repertoire cloning," Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 33:2432-2436 (1991);およびHoughten, R. A., "Generation and use of synthetic peptide combinatorial libraries for basic research and drug discovery," Nature, 354:84-86 (1991)）。このようなライブラリーは、溶液化学と固相化学を組み合わせることで作成され、スクリーニング用の固相支持体から切り離される。

液体クロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィー、キャピラリー電気泳動といった分離技術を質量分析またはタンデム質量分析と組み合わせることで、構造評価に利用可能な分析システムが作成される（即ち、Hsieh, S. et al., "Separation and identification of peptides in single neurons by microcolumn liquid chromatography − Matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry and postsource decay analysis," Anal Chem., 70(9):1847-1852 (1998); Tretyakova, N.Y. etal., "Quantitative analysis of 1,3-butadene-induced DNA adducts in vivo and in vitro using liquid chromatography electrospray ionization tandem mass spectrometry," J. Mass Spectrom., 33:363-376 (1998);およびTaylor, G.W. et al., "Excursions in biomedical mass spectrometry," Br. J. Clin. Pharmacol., 41:119-126 (1996)）。化合物／分子の分子量についての情報が得られる点で、質量分析が特に有用である。大型の分子を精製および制御しながら断片化すれば、配列に関する情報を抽出することも可能である。

副腎膜からのコルチコステロイド分泌を配列番号２または配列番号１の未改変ＡＣＴＨよりも抑えるＡＣＴＨアナログ化合物を同定するためのＡＣＴＨアナログ化合物のスクリーニング方法は、副腎膜とＡＣＴＨアナログとを接触させる工程を含むことができる。ＡＣＴＨによるコルチコステロイドの分泌を減少させる化合物を同定するためのＡＣＴＨアナログ化合物のスクリーニング方法は、以下に示す工程の１つ以上を含むことができる：
ａ．第一の副腎膜と第二の副腎膜を用意し；
ｂ．第一の副腎膜を、未改変ＡＣＴＨペプチドを含む未改変ペプチドを含む第一の組成物と接触させ、続いて、未改変ＡＣＴＨペプチドとの接触後に第一の副腎膜から分泌される第一のコルチコステロイド濃度を測定し；
ｃ．第二の副腎膜を、ＡＣＴＨアナログを含む第二の組成物と接触させ、続いて、ＡＣＴＨアナログとの接触後に第二の副腎膜から分泌される第二のコルチコステロイド濃度を測定し；
ｄ．分泌された第一のコルチコステロイド濃度と、分泌された第二のコルチコステロイド濃度とを比較し；
ｅ．第二の化合物が第一の化合物よりもコルチコステロイド分泌を抑えるか否かを判定する。
未改変ＡＣＴＨペプチドは、好ましくは配列番号２または配列番号１のペプチドである。

第一の副腎膜と第二の副腎膜は被験体の体内に存在することができ、コルチコステロイドの濃度は被験体の血液中で測定することができる（インビボアッセイ）。あるいは、第一の副腎膜と第二の副腎膜は被験体から外植したものであり、コルチコステロイドの濃度を無血清培地中で測定する（インビトロアッセイ）。インビボ阻害アッセイの工程またはインビトロ競合結合アッセイの工程を含むスクリーニングアッセイは、以下の工程を含むこともでき、好ましくは、工程（ｄ）の前であって、工程（ｃ）の代わりまたは工程（ｃ）の後のいずれかで行う：
ａ．第二の副腎膜を、ＡＣＴＨペプチドを含む第一の組成物およびＡＣＴＨアナログを含む第二の組成物と同時に接触させ、続いて、第二の副腎膜から分泌される第二のコルチコステロイド濃度を測定する。

スクリーニングアッセイは、１以上の他のアッセイ、例えば、血清コルチコステロイド誘発アッセイ、血清コルチコステロイド阻害アッセイ、副腎結合アッセイまたは無血清副腎阻害アッセイとして記載されるアッセイを行う工程を含むことができる。工程は、特にことわらない限り、いずれの順番で行ってもよい。
ＡＣＴＨアナログ組成物および投与
ＡＣＴＨアナログは、各種のＡＣＴＨ関連病態（例えば、患者におけるＡＣＴＨの過剰発現に関連する病態）を治療するための医薬組成物に配合することができる。

「薬学的に許容される」または「薬理学的に許容される」とは、健全な医療判断の範囲内で、過剰の毒性、刺激、アレルギー応答、または、他の問題もしくは合併症を伴わずにヒトおよび動物の組織との接触使用に適しており、かつ、妥当な利益／リスク比に見合ったリガンド、材料、組成物および／または剤形を同義的に意味する。

治療での使用に関する「治療上有効量」の化合物（例えば、ＡＣＴＨアナログペプチド）とは、所望の用法の一部として（哺乳動物または魚類等の脊索動物へ）投与した場合に、治療対象の障害もしくは病態または化粧品に対する臨床上許容可能な基準に従って（例えば、いずれの医療にも適用可能な妥当な利益／リスク比で）症状を緩和する、病態を改善する、または、疾患病態の発症を遅らせる量の、調製物中のポリペプチドまたはペプチドを意味する。

本明細書中「治療」とは、以下のことを意味し、かつ、含む：１）高レベルのＡＣＴＨに伴う疾患または病態が、このような疾患または病態の素因を持ち得るが、まだ持っていると診断されていない患者において起こることを予防する；２）高レベルのＡＣＴＨに伴う疾患または病態を阻害する、例えば、その進行を阻止する；３）高レベルのＡＣＴＨに伴う疾患または病態を緩和する、例えば、疾患または病態の後退を引き起こす。

本明細書中で同義的に使用される「患者」または「被験体」とは、本発明に従って治療を施す生物を意味し、好ましくは、哺乳動物種、魚類種または鳥類種等の脊索動物を意味する。開示のＡＣＴＨアナログおよび治療方法の恩恵を受ける哺乳動物種としては、類人猿、チンパンジー、オランウータン、ヒト、サル、並びに、ペット等の家畜動物、例えば、イヌ、ネコ、マウス、ラット、モルモット、ハムスターが挙げられるが、これらに限定されない。魚類種としては、サケおよび水産養殖に使用される他の種が挙げられる。

「ＡＣＴＨ関連病態」とは、本明細書中では、ＡＣＴＨによるコルチコステロイドまたはコルチコステロイドレベルの調節、副腎膜に対するＡＣＴＨ結合の調節、ＡＣＴＨレセプター（例えば、ＭＣ−２Ｒ）の調節により治療可能であるか、または、これらに応答性である病態、障害、症状または疾患の意味で使用し、例えば、特定のメラノコルチンレセプターに伴う病態が挙げられる。

「メラノコルチンレセプターに伴う病態」とは、本明細書中では、ＡＣＴＨに結合するレセプターの調節、および／または、被験体におけるコルチコステロイドレベルの低下により治療可能な病態、障害または疾患の意味で使用する。ＡＣＴＨ関連病態としては、「ＭＣ−２Ｒに伴う病態」、あるいは、ＭＣ−２Ｒレセプターの調節により治療可能な病態、障害または疾患を挙げることができる。好ましくは、ＭＣ−２Ｒに伴う病態は、ＭＣ−２Ｒレセプターと、内在性ＡＣＴＨによるコルチコステロイド分泌のレベルと比較してコルチコステロイド分泌のレベルを低下させるＡＣＴＨアナログとを結合させることで治療可能である。

本発明の方法を使用して同定される化合物の立体異性体（エナンチオマー形およびジアステレオマー形を含む）は全て、本発明の範囲内に含まれるものとする。本発明の化合物の個々の立体異性体は、例えば、他の異性体を実質的に含まないか、あるいは、例えば、ラセミ体として混在してもよく、また、他の全てのもしくは他の選択した立体異性体との混合物であってもよい。本発明によって同定される化合物のキラル中心は、ＩＵＰＡＣ １９７４ Ｒｅｃｏｍｍｅｎｄａｔｉｏｎｓによって規定される通り、ＳもしくはＲ、または、ＤもしくはＬの配置を有することができる。

第八の実施態様では、本開示は、ＡＣＴＨアナログを含む医薬組成物、および、ＡＣＴＨ関連病態に伴う症状の治療に見合った方法での当該組成物の被験体への投与に関する。投与経路は公知の方法に従って選択可能である。ＡＣＴＨアナログは、薬学的に許容される担体を含む医薬組成物の一部として使用することができる。ＡＣＴＨレベルの上昇に伴う疾患または病態を治療するための、少なくとも１種類の本発明のＡＣＴＨアナログを含む医薬組成物は、例えば、医薬製剤の分野で周知の技術等に従って、従来の固体もしくは液体のビヒクルまたは希釈剤、並びに、所望の投与様式に適したタイプの医薬用添加剤（例えば、賦形剤、結合剤、保存剤、安定化剤、着香剤等）を用いることで製剤化が可能である。

ＡＣＴＨアナログを含む医薬組成物は、任意の適切な手段によって投与できる。例えば、ＡＣＴＨアナログを含む組成物は、皮下、静脈内、筋肉内もしくは槽内への注射または輸液技術による注射投与（例えば、滅菌された注射用の水性もしくは非水性の液剤または懸濁剤として）；吸入噴霧等による経鼻投与；クリーム剤または軟膏剤等の形態での局所投与；非毒性の薬学的に許容されるビヒクルまたは希釈剤を含有する投与単位製剤での投与が可能である。本発明のＡＣＴＨアナログは、例えば、即時放出または持続放出に適した形態で投与可能である。即時放出または持続放出は、本発明のＡＣＴＨアナログを含む適切な医薬組成物を使用することで達成可能であり、特に持続放出の場合には、皮下インプラントもしくは浸透圧ポンプ等のデバイスを使用することで達成可能である。本発明のＡＣＴＨアナログは、リポソームの形態で投与することも可能である。

本発明のＡＣＴＨアナログポリペプチドを含む医薬組成物は公知の方法に従って製剤化することができ、これにより、そのＡＣＴＨアナログ生成物と薬学的に許容される担体ビヒクルとを混合物の状態で組み合わせる。予防および治療処置に使用可能な組成物には、１種以上のＡＣＴＨアナログ化合物と適用手段（例えば、注射用担体系、鼻腔内または経皮様式）とが含まれる。

本明細書中「担体」としては、使用する投与量および濃度で接触対象の細胞または被験体に対して非毒性である、薬学的に許容される担体、賦形剤または安定化剤が挙げられる。本明細書中「薬学的に許容される担体」とは、対象の化学物質を、ある臓器または身体のある部分から別の臓器または身体の別の部分へ運搬または輸送するのに要する、薬学的に許容される材料、組成物またはビヒクルを意味し、例えば、液体もしくは固体の充填剤、希釈剤、賦形剤、溶剤またはカプセル化材料等を意味する。各担体は、製剤の残りの成分と適合性があり、患者に対して有害でなはなく、かつ、実質的に非発熱原性であるという意味で「許容される」ものでなければならない。薬学的に許容される担体として機能し得る材料の一部の例を以下に挙げる：（１）ラクトース、グルコース、スクロース等の糖類；（２）トウモロコシデンプン、ジャガイモデンプン等のデンプン類；（３）セルロースおよびその誘導体、例えば、ナトリウムカルボキシメチルセルロース、エチルセルロース、セルロースアセテート；（４）カガカント（kagacanth）末；（５）麦芽；（６）ゼラチン；（７）タルク；（８）カカオ脂、坐剤用ワックス等の賦形剤；（９）落花生油、綿実油、ベニバナ油、ゴマ油、オリーブ油、トウモロコシ油、大豆油等の油類；（１０）プロピレングリコール等のグリコール類；（１１）グリセリン、ソルビトール、マンニトール、ポリエチレングリコール等のポリオール類；（１２）オレイン酸エチル、ラウリン酸エチル等のエステル類；（１３）寒天；（１４）水酸化マグネシウム、水酸化アルミニウム等の緩衝剤；（１５）アルギン酸；（１６）発熱性物質を含まない水；（１７）等張生理食塩水；（１８）リンゲル液；（１９）エチルアルコール；（２０）リン酸緩衝液；（２１）医薬製剤に使用される他の非毒性の適合性物質。ある実施態様では、本発明の医薬組成物は非発熱原性である、即ち、患者へ投与した際に著しい体温上昇を起こさないものである。多くの場合、生理学的に許容される担体は水性のｐＨ緩衝化溶液である。許容される担体、賦形剤または安定化剤は、使用する投与量および濃度ではレシピエントに対して非毒性であり、リン酸、クエン酸および他の有機酸等の緩衝液；アスコルビン酸等の酸化防止剤；低分子量（約１０残基未満）のポリペプチド；血清アルブミン、ゼラチン、免疫グロブリン等のタンパク質；ポリビニルピロリドン等の親水性ポリマー、アミノ酸またはアミノ酸誘導体（例えば、ノルロイシンまたはオルニチン）；単糖類、二糖類および他の炭水化物、例えば、グルコース、マンノースまたはデキストリン；ＥＤＴＡ等のキレート剤；マンニトール、ソルビトール等の糖アルコール；ナトリウム等の塩形成対イオン；および／またはＴＷＥＥＮ（商標）、ＰＬＵＲＯＮＩＣＳ（商標）、ＰＥＧ等の非イオン性界面活性剤。ＡＣＴＨアナログ用の担体はいずれも従来の手段で製造可能である。しかしながら、アルコールを担体に用いる場合には、ＡＣＴＨアナログの変性を防ぐため、ＡＣＴＨアナログをミセル、リポソームまたは「逆相（reverse）」リポソームの状態にすべきである。同様に、ＡＣＴＨアナログを担体中に配置し、かつ、担体を加熱する場合には、ＡＣＴＨアナログの熱変性を回避するため、このような配置は担体をある程度冷却した後に行うべきである。担体は好ましくは滅菌されている。１種以上のＡＣＴＨアナログを液体形態または凍結乾燥状態でこれらの物質へ添加してもよく、その結果、液体と接触すると溶解する。

改変ＡＣＴＨアナログは担体系と組み合わせることができ、これに先立ってまたは同時に、薬理学的に適切なｐＨ範囲（例えば、約４．０〜約９．０）を維持する安定化緩衝剤の環境にＡＣＴＨアナログを置いてもよく、例えば、ｐＨ約５．０、６．０、７．０、８．０、またはこれらの間の０．０５刻みの任意のｐＨ、例えば、５．２、６．５、７．４、７．５および８．５のｐＨ値が挙げられる。所望の純度を有するＡＣＴＨアナログの有効成分を、場合によって生理学的に許容される担体、賦形剤または安定化剤（Remington's Pharmaceutical Sciences第１６版，Osol, A. Ed. (1980)）と混合することにより、凍結乾燥製剤または水溶液の形態で保存用に治療製剤を調製する。安定化緩衝剤は、ＡＣＴＨアナログの最適な活性を可能にするものでなければならない。当該緩衝剤は、ジチオトレイトール等の還元試薬を含有していてもよい。安定化緩衝剤はまた、エチレンジアミン四酢酸ニナトリウム塩等の金属キレート試薬であるか、または、このような試薬を含んでいてもよく、あるいは、リン酸緩衝液、クエン酸リン酸緩衝液、または、他の任意の緩衝液を含有していてもよい。

本発明に用いる化合物の有効量は、当業者であれば決定可能である。ＡＣＴＨアナログの有効投薬率（effective dosage rate）または有効投与量は、ＡＣＴＨアナログが治療または予防のいずれに使用されるか、レシピエントと感染性細菌との接触期間、個体の身長および体重、医療判断の範囲内で他に考慮すべき事項にある程度依存する。ＡＣＴＨアナログ含有組成物を使用する期間も、その使用が短期間の予防目的（毎時、毎日または毎週であってよい）なのか、あるいは、組成物の使用に関してさらに徹底した用法が必要となる可能性のある治療目的（何時間、何日または何週にもわたって使用、および／または、毎日もしくは一日のうちに時間間隔を決めて使用）なのかに依存する。使用するいずれの剤形も、最小限の単位を最低限の時間で供給しなければならない。本発明の医薬組成物の投与量および所望の薬物濃度は、想定される個々の用途に応じて変動する。例えば、本発明のＡＣＴＨアナログを患者へ投与してクッシング症候群または早期分娩を治療する場合には、成人に対する代表的な投与量としては、一日当たり約０．００１〜１００ｍｇ／ｋｇ体重の活性化合物が挙げられ、単回投与または複数回投与のいずれも可能である（例えば、一日当たり１〜４回）。いずれの化合物に対しても、特定の用量レベルや投与頻度が変動し、かつ、使用する特定の化合物の活性、その化合物の代謝安定性や作用の長さ、患者の種、年齢、体重、全身の健康状態、性別や食事の内容、投与様式・投与時間、排泄速度、薬物の組み合わせ、個々の病態の重篤度等の様々な要因に依存することは理解されるであろう。

適当な投与量または投与経路の決定は、十分に通常の治療者の能力の範囲内である。動物実験からは、ヒトでの療法に有効な用量の決定について信頼できる指針が得られる。有効用量の種間スケーリングは、Mordenti, J.およびChappell, W.（"The use of interspecies scaling in toxicokinetics", Toxicokinetics and New Drug Development, Yacobi et al., Eds., Pergamon Press, New York 1989, pp. 42-96）によって定められた原則に従って行うことができる。有効量または有効投与量のＡＣＴＨアナログを規定するＡＣＴＨアナログの活性単位の濃度は、経鼻および経口経路の湿潤環境や局所の場合には、液体中約１０単位／ｍｌ〜約５００，０００単位／ｍｌの範囲であればよく、可能であれば、約１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０または１００単位／ｍｌ〜約５０，０００単位／ｍｌの範囲である。従って、代表的な値としては、約２００単位／ｍｌ、３００単位／ｍｌ、５００単位／ｍｌ、１，０００単位／ｍｌ、２，５００単位／ｍｌ、５，０００単位／ｍｌ、１０，０００単位／ｍｌ、２０，０００単位／ｍｌ、３０，０００単位／ｍｌ、４０，０００単位／ｍｌが挙げられる。より詳しくは、活性ＡＣＴＨアナログ単位との接触時間に応じて、１ｍｌ当たりの活性ＡＣＴＨアナログ単位の所望濃度が左右される。インビボ投与に使用する製剤は、好ましくは滅菌されている。これは、凍結乾燥および再構成の前後に滅菌濾過膜を通して濾過することで容易に行える。通常本明細書における治療用組成物は、滅菌済みの入口を有する容器、例えば、静脈注射用液剤バッグまたは皮下注射針によって貫通可能な栓を有するバイアルへ入れる。

ＡＣＴＨアナログを含む医薬組成物の例としては、注射用組成物、ＡＣＴＨアナログを所望の時間にわたって徐放させる組成物、皮膚投与用組成物、注射用ゲル、インプラント用医療デバイス用のコーティング、粘膜接着性組成物、または、鼻用組成物もしくは他の吸入用組成物が挙げられる。

一部の例では、ＡＣＴＨアナログは、筋肉内注射または静脈注射によって投与可能である。例えば、ＡＣＴＨアナログは筋肉内、静脈内、皮下、皮下、皮内へ投与でき、または、これらを組み合わせても投与できる。

注射用組成物は、好ましくは適切な担体と１種以上のＡＣＴＨアナログ化合物とを含む。担体は、蒸留水、生理食塩水、アルブミン、血清またはこれらの任意の組み合わせから構成可能である。筋肉内注射を投与様式として選択した場合は、等張製剤を使用すればよい。通常、等張性のための添加剤としては、塩化ナトリウム、デキストロース、マンニトール、ソルビトールおよびラクトースを挙げることができる。場合によっては、リン酸緩衝生理食塩水等の等張液を使用する。安定化剤としては、ゼラチンおよびアルブミンが挙げられる。一部の例では、血管収縮剤を製剤へ添加する。医薬は、滅菌済みかつ発熱性物質を含まないものを提供する。通常は、上述したように静脈注射が最も適している。非経口投与用の代表的な組成物としては注射用液剤または懸濁剤が挙げられ、例えば、マンニトール、１，３−ブタンジオール、水、リンゲル液、等張塩化ナトリウム溶液といった適切な非毒性の非経口的に許容される希釈剤または溶剤、あるいは、他の適切な分散剤または湿潤剤および懸濁化剤、例えば、合成モノまたはジグリセリドや脂肪酸（オレイン酸等）を含有していてもよい。グリセリンまたはグリセロール（１，２，３プロパントリオール）は製薬用の市販の担体である。注射または塩化ナトリウム注射または他の薬学的に許容される水性注射液用に、グリセリンまたはグリセロールを滅菌水で希釈して０．１〜１００％（ｖ／ｖ）、１．０〜５０％または約２０％の濃度で使用してもよい。ＤＭＳＯは、局所適用される多くの薬物の浸透を高めることのできる非プロトン性溶剤である。注射または塩化ナトリウム注射または他の薬学的に許容される水性注射液用に、ＤＭＳＯを滅菌水で希釈して０．１〜１００％（ｖ／ｖ）の濃度で使用してもよい。特に静脈注射用液剤を調製する場合には、ビヒクルにもリンゲル液、緩衝化溶液およびデキストロース溶液が含まれていてもよい。

ＡＣＴＨアナログを担体系に配合するのに先立って、または、これと同時に、適切なｐＨ範囲を維持する安定化緩衝剤の環境にＡＣＴＨアナログを置くのが望ましい場合がある。安定化緩衝剤は、ＡＣＴＨアナログの最適な活性を可能にするものでなければならない。当該緩衝剤は、ジチオトレイトール等の還元試薬であってよい。安定化緩衝剤はまた、エチレンジアミン四酢酸ニナトリウム塩等の金属キレート試薬であるか、または、このような試薬を含んでいてもよく、あるいは、リン酸緩衝液またはクエン酸リン酸緩衝液を含有していてもよい。担体中に見られる緩衝剤は、ＡＣＴＨアナログの環境を安定化させる役割を果たすことができる。

担体は、場合によっては、少量の添加剤、例えば、等張性および化学的安定性を高める物質を含有可能である。このような材料は、使用する投与量および濃度ではレシピエントに対して非毒性であり、リン酸、クエン酸、コハク酸、酢酸および他の有機酸またはその塩等の緩衝液；アスコルビン酸等の酸化防止剤；低分子量（約１０残基未満）のポリペプチド、例えば、ポリアルギニンまたはトリペプチド；血清アルブミン、ゼラチン、免疫グロブリン等のタンパク質；ポリビニルピロリドン等の親水性ポリマー；グリシン；グルタミン酸、アスパラギン酸、ヒスチジン、アルギニン等のアミノ酸；単糖類、二糖類および他の炭水化物、例えば、セルロースまたはその誘導体、グルコース、マンノース、トレハロースまたはデキストリン；ＥＤＴＡ等のキレート剤；マンニトール、ソルビトール等の糖アルコール；ナトリウム等の対イオン；ポリソルベート、ポロキサマー、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の非イオン性界面活性剤；および／または薬学的に許容される塩、例えば、ＮａＣｌ、ＫＣｌ、ＭｇＣｌ₂、ＣａＣｌ₂等が挙げられる。

「薬学的に許容される塩」とは、阻害剤の比較的毒性のない無機および有機酸付加塩を意味する。これらの塩は、阻害剤の最終単離・精製の際にインシチュで調製してもよく、または、精製後の阻害剤を遊離塩基の形態で適切な有機または無機酸と別途反応させ、このようにして形成した塩を単離することにより調製してもよい。代表的な塩としては、１４臭化水素酸塩、塩酸塩、硫酸塩、硫酸水素塩、リン酸塩、硝酸塩、酢酸塩、吉草酸塩、オレイン酸塩、パルミチン酸塩、ステアリン酸塩、ラウリン酸塩、安息香酸塩、乳酸塩、；リン酸塩、トシル酸塩（tosylate）、クエン酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、コハク酸塩、酒石酸塩、ナフチル酸塩（naphthylate）、メシル酸塩、グルコヘプトン酸塩、ラクトビオン酸塩、ラウリルスルホン酸塩等が挙げられる（例えば、Berge et al. (1977) "Pharmaceutical Salts", J. Pharm. Sci. 66:1-19を参照）。他の場合には、本発明の方法に有用な阻害剤は１つ以上の酸性官能基を含有していてもよく、従って、薬学的に許容される塩基との間に薬学的に許容される塩を形成可能である。これらの場合における「薬学的に許容される塩」とは、阻害剤の比較的毒性のない無機および有機塩基付加塩を意味する。これらの塩は、同様に、阻害剤の最終単離・精製の際にインシチュで調製してもよく、または、精製後の阻害剤を遊離酸の形態で適切な塩基（例えば、薬学的に許容される金属カチオンの水酸化物、炭酸塩もしくは炭酸水素塩）、アンモニア、または、薬学的に許容される１級、２級もしくは３級有機アミンと別途反応させることにより調製してもよい。代表的なアルカリ塩またはアルカリ土類塩としては、リチウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩、アルミニウム塩等が挙げられる。塩基付加塩の形成に有用な代表的な有機アミンとしては、エチルアミン、ジエチルアミン、エチレンジアミン、エタノールアミン、ジエタノールアミン、ピペラジン等が挙げられる（例えば、前出のBerge et al.を参照）。

ＡＣＴＨアナログを含む注射用医薬製剤は、場合によっては、抗菌剤、抗炎症剤、抗ウイルス剤、局所麻酔薬といった他の治療薬を含むことができる。局所麻酔薬としては、テトラカイン、塩酸テトラカイン、リドカイン、塩酸リドカイン、ジクロニン、塩酸ジクロニン、塩酸ジメチソキン、ジブカイン、塩酸ジブカイン、ピクリン酸ブタンベン (butambenpictate)、塩酸プラモキシンが挙げられる。局所麻酔薬の代表的な濃度は、全組成物の約０．０２５重量％〜約５重量％である。ベンゾカイン等の麻酔薬も、約２重量％〜約２５重量％の好適な濃度で使用可能である。

医薬組成物はまた、場合によっては、様々なレベルにおいてステロイドホルモンの合成を抑制する１種以上の追加の生物活性物質（即ち、ステロイドホルモンの合成の各段階を触媒する酵素の阻害剤）を含むことができ、このような物質としては、J.Steroid Biochem.、vol. 5、p. 501 (1974)に概説されている生物活性物質が挙げられ、例えば、以下に記載のものが挙げられる：ａ）ジフェニルメタンの誘導体、例えば、アンフェノンＢ（ステロイドホルモンの合成をヒドロキシラーゼの１１−β−、１７−および２１−の段階で抑制）；ｂ）ピリジンの誘導体（ＳＵ−ｃシリーズ）、例えば、メチラポン（metirapon）（ヒドロキシラーゼの１１−βの段階で合成を抑制）；ｃ）置換α，α−グルタルアミド、例えば、アミノグルテチミド（２０−α−ヒドロキシラーゼおよびＣ２０、Ｃ２２−リアーゼ（liase）の抑制を介したコレステロールからのプレグネノロンの合成を妨害）；ｄ）ステロイド物質、例えば、トリロスタン（３β−置換ステロイド−３β−ヒドロキシ−５−アンドロステン−１７−オン；３β−デスオキシステロイドヒドロゲナーゼ−５，４−イソメラーゼを抑制（Steroids, vol.32, p.257））；ｅ）スピロノラクトンファミリーのステロイド（抗鉱質コルチコイドの速やかな解離に使用（PNAS USA 71 (4) p.1431-1435 (1974)））；ｆ）腎臓（Z. Naturforsch., 45b, p.711-715 (1990)）および海馬Ｉ型ＭＲ（Life Science, 59, p.511-21 (1996)）に対して特異的な結合特性を示すが、ＩＩ型ＧＲに対しては示さない、抗鉱質コルチコイドＺＫ９１５８７として記載される合成ステロイド。従って、好都合なことに、両レセプター系を含む組織でのＭＲ機能の研究においてツールとして有用である。

ＡＣＴＨアナログは、場合によっては、グルココルチコイドホルモンとホルモンレセプターとの相互作用を特異的に抑制する生物活性物質と共に投与することができ、このような物質の例としては以下のものが挙げられる：ａ）ミフェプリストン（１１β，１７β）−１１−［４−（ジメチルアミノ）フェニル］−１７−ヒドロキシ−１７−（１−プロピニル）エストラ−４，９−ジエン−３−オン（グルココルチコイドホルモンのレセプターに作用して、グルココルチコイドの作用に至るメカニズムを開始できない複合体を形成（Annals of New-York Academy of Science, vol. 761, p.296-310 (1995)）；前記化合物は中絶薬（contragestive agent）（ＲＵ３８４８６またはＲＵ４８６）としても知られている）；ｂ）非ステロイド物質（J:Steroid Biochem., vol. 31, p.481-492 (1988)）、例えば、塩酸ドロタベリン(drotaverina hydrochloride) （イソキノリン−１−（３，４−ジエトキシベンジリデン）−６，７−ジエトキシ−１，２，３，４−テトラヒドリゾキノリンの誘導体）またはアセチルサリチル酸（V. P. GolikovによるMoskovskava Meditsina, 1990, "Receptor mechanisms of the glucocorticoid effect"）。抗グルココルチコイド（例えば、ミフェプリストン）が臨床現場で使用されてきたのは、非下垂体性クッシング症候群の手術不能な症例を治療するためである。ミフェプリストン（抗プロゲステロンおよび抗グルココルチコイドの双方）の場合には、高用量（一日当たり８００ｍｇまで）が必要である。活性を増加させ、かつ、交差反応性および望ましくない副作用を軽減する方策を体系的に用いることにより、効力および選択性が向上した新たな抗ホルモン剤の開発において、特に抗エストロゲンおよび抗アンドロゲンの分野において、素晴らしい進展が報告されている。

非経口投与する際のＡＣＴＨアナログの有効投薬率または有効投与量、および、治療期間は、感染の深刻さ、患者の体重、レシピエントと感染性細菌との接触期間、感染の深刻さ、その他様々な複数の変動要素にある程度依存する。組成物は、一日当たり１回〜複数回でどこへ適用してもよく、短期間または長期間の適用が可能である。数日または数週間続けて使用してもよい。使用するいずれの剤形も、最小限の単位を最低限の時間で供給しなければならない。ＡＣＴＨアナログの有効量または有効投与量をもたらすと考えられるＡＣＴＨアナログの活性単位の濃度は、組成物中約１０、２０、３０、４０、５０、６０、７０、８０、９０または１００単位／ｍｌ〜約１０，０００，０００単位／ｍｌの範囲、約１０００単位／ｍｌ〜約１０，０００，０００単位／ｍｌの範囲、約１０，０００〜１０，０００，０００単位／ｍｌの範囲であればよい。１ｍｌ当たりの活性単位の量および接触期間は、感染の性質、および、担体によってＡＣＴＨアナログが持ち得る接触量に依存する。液体環境にある時ＡＣＴＨアナログが最も良好に作用することは覚えておかなくてはならない。従って、ＡＣＴＨアナログの有効性は、担体に捕捉された水分量にある程度関連する。治療の際のＡＣＴＨアナログの濃度は、血液および血液量中の細菌数に依存する。

ＡＣＴＨアナログをインビボ投与する場合には、通常の投与量は、投与経路に応じて、被験体の体重に対して一日当たり約１０ｎｇ／ｋｇ〜１００ｍｇ／ｋｇ以上または約１μｇ／ｋｇ／日〜１０ｍｇ／ｋｇ／日の範囲で変動する。個々の投与量および送達方法に関する指針を以下に示すが、文献にも記載されている。治療化合物や障害が異なれば有効となる製剤も異なること、ある臓器または組織を標的とする投与は、例えば、別の臓器または組織に対する送達とは異なる方法での送達が必要となる場合があること、が予想される。

輸液または注射用の液剤は、従来の方法で調製可能であり、例えば、ｐ−ヒドロキシ安息香酸等の保存剤またはエチレンジアミン四酢酸のアルカリ金属塩等の安定化剤を添加し、次いで輸液容器（fusion vessel）、注射用バイアルまたはアンプルへ移してもよい。あるいは、注射用化合物を他の成分と共にまたは単独で凍結乾燥し、使用時に緩衝化溶液または蒸留水中へ適宜可溶化させてもよい。不揮発性油、リポソームおよびオレイン酸エチル等の非水性ビヒクルも、本発明で有用である。

また、複数の方法を使用してＡＣＴＨアナログの細胞膜輸送を助けることができる。ＡＣＴＨアナログは、公知の技術によりＡＣＴＨアナログをリポソームへ「挿入」すれば、リポソームの状態で輸送できる。同様に、ＡＣＴＨアナログを逆相ミセルとしてもよい。ＡＣＴＨアナログは、ポリエチレングリコールをＡＣＴＨアナログの非活性部分へ結合させてＰＥＧ化することもできる。あるいは、疎水性分子を使用してＡＣＴＨアナログの細胞膜輸送を行うこともできる。最終的には、ＡＣＴＨアナログのグルコシル化を利用して、細胞膜上の特異的なインターナリゼーションレセプターを標的とすることができる。

特定の治療方法に対しては、制御放出能を有する材料が特に望ましい。ＡＣＴＨアナログは、ＡＣＴＨアナログ化合物を所望の期間にわたって徐放させるポリマー等の担体系と組み合わせることができる。他にもこのような製剤に含まれるのは、セルロース（アビセル）またはポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の高分子量賦形剤が挙げられる。このような製剤には、粘膜への付着を助ける賦形剤、例えば、ヒドロキシプロピルセルロース（ＨＰＣ）、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）、ナトリウムカルボキシメチルセルロース（ＳＣＭＣ）、無水マレイン酸共重合体（例えば、Ｇａｎｔｒｅｚ）、および、ポリアクリル酸共重合体（例えば、Ｃａｒｂｏｐｏｌ ９３４）等の放出制御剤も含まれていてもよい。滑沢剤、流動促進剤、着香剤、着色剤および安定化剤も、製造および使用を容易にするため添加してもよい。

ＡＣＴＨアナログ化合物は、Ｌｏｕｇｈｍａｎ記載の徐放性担体組成物（米国特許第６，８９３，６４５号、２００２年７月１５日出願、２００５年５月１７日付与；本特許は引用により本明細書に含まれるものとする）と組み合わせることができる。ＡＣＴＨアナログと組み合わせ可能な徐放または制御放出製剤および方法の他の例としては、公開米国特許出願第ＵＳ２００５／０１６４９２７Ａ１号（２００４年８月１８日出願、Ｃｈｅｕｎｇら）、同第ＵＳ２００３／０１２５５２８Ａ１号（２００２年９月２７日出願、Ｈａｙら）、同第ＵＳ２００３／０２１１９６６Ａ１号（２００２年１０月２１日出願、Ｋｕｂｅｋら）、同第ＵＳ２００３／０１４８９３８Ａ１号（２００１年１１月７日出願、Ｓｈａｒｍａら）、同第ＵＳ２００３／０１８１３６１Ａ１号（２００３年３月３１日出願、Ｓｈａｒｍａら）が挙げられる（いずれの出願も、その開示内容は全て引用により本明細書に含まれるものとする）。一部の実施態様では、制御放出治療組成物は、制御放出ポリマーと有効量のＡＣＴＨアナログとを含むことができる。制御放出ポリマーは水膨潤性ポリマーであってよく、場合によっては、架橋部分を所望なだけ含んでいてもよい。制御放出ポリマーは、所望ましいレベルの水溶解性または最小限の水溶解性を有することができる。

使用可能なポリマー増粘剤としては、当業者に公知のもの、例えば、化粧品工業および製薬工業に使用されることの多い親水性ゲル化剤や水性アルコールゲル化剤が挙げられる。親水性ゲル化剤または水性アルコールゲル化剤は、例えば、「ＣＡＲＢＯＰＯＬ（登録商標）」（Ｂ．Ｆ．Ｇｏｏｄｒｉｃｈ，Ｃｌｅｖｅｌａｎｄ，Ｏｈｉｏ）、「ＨＹＰＡＮ（登録商標）」（Ｋｉｎｇｓｔｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｄａｙｔｏｎ，Ｎ．Ｊ．）、「ＮＡＴＲＯＳＯＬ（登録商標）」（Ａｑｕａｌｏｎ，Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ，Ｄｅｌ．）、「ＫＬＵＣＥＬ（登録商標）」（Ａｑｕａｌｏｎ，Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ，Ｄｅｌ．）または「ＳＴＡＢＩＬＥＺＥ（登録商標）」（ＩＳＰ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｗａｙｎｅ，Ｎ．Ｊ．）を含むことができる。ゲル化剤は、組成物の約０．２重量％〜約４重量％とすることができる。特に、「ＣＡＲＢＯＰＯＬ（登録商標）」の組成重量％の範囲例は、約０．５％〜約２％であり、「ＮＡＴＲＯＳＯＬ（登録商標）」および「ＫＬＵＣＥＬ（登録商標）」の重量％範囲は約０．５％〜約４％であってよい。「ＨＹＰＡＮ（登録商標）」および「ＳＴＡＢＩＬＥＺＥ（登録商標）」の組成重量％の範囲は約０．５％〜約４％であってよい。

「ＣＡＲＢＯＰＯＬ（登録商標）」は、カルボマーの一般名を与えられている多数の架橋アクリル酸ポリマーのうちの一つである。これらのポリマーは水に溶け、苛性材料（例えば、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム）、トリエタノールアミンまたは他のアミン塩基で中和すると透明またはわずかに濁ったゲルを形成する。「ＫＬＵＣＥＬ（登録商標）」は、水に懸濁し、完全に水和すると均一なゲルを形成するセルロースポリマーである。他のゲル化ポリマーとしては、ヒドロキシエチルセルロース、セルロースゴム、ＭＶＥ／ＭＡデカジエンクロスポリマー、ＰＶＭ／ＭＡ共重合体、または、これらの組み合わせが挙げられる。

保存剤も本発明に使用することができ、例えば、全組成物の約０．０５〜０．５重量％とすることができる。保存剤の使用により、製品が微生物に汚染されても、製剤としては微生物の増殖を抑制または弱めることが確実となる。本発明に有用な保存剤をいくつか挙げると、メチルパラベン、プロピルパラベン、ブチルパラベン、クロロキシレノール、安息香酸ナトリウム、ＤＭＤＭヒダントイン、３−ヨード−２−プロピルブチルカルバメート、ソルビン酸カリウム、グルコン酸クロルヘキシジン、または、これらの組み合わせが挙げられる。

ＡＣＴＨアナログの投与を必要とする疾患または障害のいずれの治療にも適した放出特性を有する製剤において、ＡＣＴＨアナログの徐放投与が望ましい場合には、ＡＣＴＨアナログのマイクロカプセル化を考慮する。ＡＣＴＨアナログとの使用に適した好適なマイクロカプセル化組成物としては、米国特許第６，４７５，５０７号（２０００年１１月６日出願、Ｐｅｌｌｅｔら）および同第６，９１１，２１８号（１９９９年４月２０日出願、Ｉｇｎａｔｉｏｕｓら）に記載されているものが挙げられる（いずれの特許も引用により全内容が本明細書に含まれるものとする）。徐放用組換えタンパク質のマイクロカプセル化は、ヒト成長ホルモン（ｒｈＧＨ）、インターフェロン−（ｒｈＩＦＮ−）、インターロイキン−２およびＭＮ ｒｇｐ１２０を用いた場合で成功している。Johnson et al., Nat. Med., 2:795-799 (1996); Yasuda, Biomed. Ther., 27:1221-1223 (1993); Hora et al., Bio/Technology. 8:755-758 (1990); Cleland, "Design and Production of Single Immunization Vaccines Using Polylactide Polyglycolide Microsphere Systems." in Vaccine Design: The Subunit and Adjuvant Approach, Powell and Newman, eds, (Plenum Press: New York, 1995), pp. 439462；ＷＯ９７／０３６９２、ＷＯ９６／４００７２、ＷＯ９６／０７３９９；および米国特許第５，６５４，０１０号。

徐放または制御放出担体は、「長期」または「低速」放出担体（例えば、特定の鼻内噴霧剤、ポリマー剤またはカプセル剤等）であってよく、１ｍｌ当たりより低濃度の活性（ＡＣＴＨアナログ）単位をより長期にわたって保持または供給可能である。これに対し、「短期」または「高速」放出担体（例えば、含嗽剤等）は、１ｍｌ当たり高濃度の活性（ＡＣＴＨアナログ）単位をより短期間に保持または供給可能である。１ｍｌ当たりの活性単位の量と接触期間は、感染の性質、処置が予防または治療のいずれであるか、および、他の変動要素に依存する。従って、投与回数は状況に応じて変わり、一日当たり１〜４回またはそれ以上であってよく、期間も１日〜数週間であってよい。感染は皮膚で起こる場合もあるため、このような組成物は局所適用の用途にも製剤化可能であり、周知のビヒクル、例えば、米国特許第６，０５６，９５４号および同第６，０５６，９５５号に記載されているビヒクルを用いて製剤化すればよい。ミセルや多重膜ミセルもＡＣＴＨアナログの放出を制御するのに利用可能である。

これらのタンパク質の徐放製剤は、生体適合性および広範囲の生分解性特性の点から乳酸・グリコール酸共重合体（ＰＬＧＡ）等の生体吸収性ポリマーを利用できる。ＰＬＧＡの分解産物、即ち、乳酸とグリコール酸は、人体内では速やかに排出され得る。また、このポリマーの分解性は、その分子量や組成に応じて数ヶ月〜数年に調節可能である。Lewis, "Controlled release of bioactive agents from lactide/glycolide polymer," M. Chasin and R. Langer (Eds.), Biodegradable Polymers as Drul: Delivery Systems (Marcel Dekker: New York, 1990), pp. 1-41。

一部の例では、治療用組成物は、粘膜付着性の徐放性製剤とＡＣＴＨアナログとを含む。粘膜の内層としては、開示および記載の通り、例えば、上下気道、眼、口腔前庭、鼻、直腸、膣、歯周ポケット、小腸および結腸が挙げられる。Ｅ．Ｒ．Ｓｑｕｉｂｂ＆Ｃｏ社のＯｒａｈｅｓｉｖｅ（登録商標）は、口腔粘膜に付着させる目的でペクチン、ゼラチンおよびナトリウムカルボキシメチルセルロースを粘着性の炭化水素ポリマー中で組み合わせた接着剤である。しかしながら、親水性および疎水性の成分を物理的に混合したこのような混合物は、最終的にはバラバラになってしまう。これに対し、本開示における親水性および疎水性のドメインは不溶性の共重合体を生成する。米国特許第４，９４８，５８０号（同じく引用により本明細書に含まれるものとする）には、生体接着性の経口ドラッグデリバリーシステムが記載されている。その組成は、共重合体であるポリ（メチルビニルエーテル／無水マレイン酸）とゼラチンとで形成される凍結乾燥ポリマー混合物を含み、軟膏基剤（例えば、ポリエチレンを分散させた鉱油）中に分散されている。米国特許第５，４１３，７９２号（引用により本明細書に含まれるものとする）には、（Ａ）ポリオルガノシロキサンと水溶性の高分子材料とを３：６〜６：３の重量比で含むペースト様基剤と、（Ｂ）有効成分とを含むペースト様調製物が開示されている。米国特許第５，５５４，３８０号では、少なくとも２つの相を有する油中水系を含有する固体または半固体の生体付着性の経口摂取可能なドラッグデリバリーシステムを特許請求している。一方の相には約２５体積％〜約７５体積％の親水性の内相が含まれ、もう一方の相には約２３体積％〜約７５体積％の疎水性の外相が含まれ、疎水性の外相は（ａ）乳化剤、（ｂ）グリセリドエステル、（ｃ）ワックス材料の３種類の成分から構成されている。米国特許第５，９４２，２４３号には、抗菌剤の投与に有用な代表的な放出材料がいくつか記載されている（当該特許の開示内容は引用により本明細書に含まれるものとする）。本開示の組成物の剤形は、従来の方法により調製可能である。

ＡＣＴＨアナログを含む組成物は、鼻内噴霧剤、点鼻剤、鼻軟膏剤、洗鼻剤、鼻内注射剤、鼻タンポン、気管支噴霧剤および吸入器によって投与可能である。鼻内噴霧剤、点鼻剤、鼻軟膏剤、洗鼻剤、鼻内注射剤、鼻タンポン、気管支噴霧剤、口腔内噴霧剤および吸入器の使用によってＡＣＴＨアナログを直接導入する場合には、ＡＣＴＨアナログは液体またはゲル環境下にあってよく、液体は担体として作用する。改変ＡＣＴＨアナログの乾燥無水物を吸入器および気管支噴霧剤によって投与してもよいが、液体形態の送達を利用することも可能である。鼻内噴霧剤は、長時間作用性または持効性の噴霧剤であってよく、当該技術分野で周知の手段によって製造できる。吸入剤も使用可能であり、その場合、ＡＣＴＨアナログは気管支道のさらに奥（例えば、肺）まで到達可能となる。鼻エーロゾルまたは吸入投与用の代表的な組成物には、ベンジルアルコールまたは他の適切な保存剤等を含んでいてもよい液剤（生理食塩水中）、バイオアべイラビリティを高める吸収促進剤、および／または、他の可溶化剤もしくは分散剤（例えば、当該技術分野で公知のもの）が含まれる。

ＡＣＴＨアナログの皮膚投与用の組成物は、少なくとも１種のＡＣＴＨアナログを皮膚へまたは皮膚を介して送達するための担体を用いて製剤化できる。ＡＣＴＨアナログの適用様式としては、複数の異なる種類の担体や担体の組み合わせが挙げられ、当該担体としては、水性液体、アルコール液体基剤、水溶性ゲル、ローション剤、軟膏剤、非水性液体基剤、鉱油基剤、鉱油とワセリンとの配合物、ラノリン、リポソーム、タンパク質担体（例えば、血清アルブミンまたはゼラチン）、セルロースカラメル末、および、これらの組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。治療薬を含有する担体の送達様式としては、スミア、噴霧、持効性ｐＡＣＴＨ、液体を吸収させたワイプ、および、これらの組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。ＡＣＴＨアナログは、直接または残りの担体のうちの１つに含ませた状態で包帯へ適用してもよい。包帯は湿潤または乾燥状態で販売可能であり、ＡＣＴＨアナログは包帯上では凍結乾燥状態である。この適用方法が感染皮膚の治療には最も有効である。局所用組成物の担体には、ポリマー増粘剤、水、保存剤、活性な界面活性剤または乳化剤、酸化防止剤、日焼け止め、および、溶剤または混合溶剤系を含む半固体およびゲル様ビヒクルが含まれていてもよい。米国特許第５，８６３，５６０号（Ｏｓｂｏｒｎｅ）には、皮膚と医薬との接触を助けることのできる複数の異なる担体の組み合わせが記載されている。局所投与用の別の組成物には、プラスティベース（ポリエチレンでゲル化した鉱油）等の局所用担体が含まれる。

一例として、本発明は、約０．５〜１０％のカルボマーと約０．５〜１０％の薬剤（溶解状態および微粒子状態のいずれでも存在）とを有する皮膚用組成物を含む。溶解状態の薬剤は角質層を通過する能力を有するが、微粒子状態の薬剤にはその能力はない。アミン塩基、水酸化カリウムの溶液または水酸化ナトリウムの溶液を添加することで、ゲルの形成が完了する。特に薬剤としては、ダプソン（抗炎症特性を有する抗菌剤）を挙げることができる。ダプソンの溶解状態に対する微粒子状態の代表的な比率の一つは５以下である。

別の例では、本発明は、約１％のカルボマー、約８０〜９０％の水、約１０％のエトキシジグリコール、約０．２％のメチルパラベン、約０．３〜３．０％のダプソン（微粒子状態のダプソンおよび溶解状態のダプソンの双方を含む）および約２％の苛性材料を含む。特に、カルボマーとしては「ＣＡＲＢＯＰＯＬ（登録商標）９８０」を、苛性材料としては水酸化ナトリウム溶液を挙げることができる。
治療方法
ＡＣＴＨアナログ化合物を使用して様々なＡＣＴＨ関連病態を治療することができる。治療方法には、１種以上のＡＣＴＨアナログ化合物を投与して、ＡＣＴＨによる副腎ホルモン分泌の速度を低下させ、患者における高レベルのＡＣＴＨの作用を緩和し、または、副腎機能の活性状態を維持しながら過剰のＡＣＴＨを阻止することが含まれる。ＡＣＴＨアナログ化合物は、ＡＣＴＨのレベルに関連する疾患、例えば、ＡＣＴＨレセプター（ＭＣ−２Ｒ等）のモジュレーションに応答性の病態を治療する際に有用である。ＡＣＴＨアナログ化合物を投与することにより、ＡＣＴＨレベルの調節に関連する病態を治療することができ、例えば、副腎機能の活性状態を維持しながら患者における高レベルのＡＣＴＨの作用を軽減することができる。

ＡＣＴＨアナログ組成物は、例えば、ＡＣＴＨ関連病態（例えば、クッシング症候群、コルチコステロイドの分泌過多による免疫反応障害、早期分娩の開始（例えば、視床下部−脳下垂体−副腎系によるもの）および関連の病態）を治療する際に有用である。一態様では、各種のＡＣＴＨアナログを調製し、患者へ投与してインビボでのコルチゾン誘発を評価することができる。

高分解能ＭＲ脳下垂体イメージングと組み合わせれば、ＡＣＴＨアナログ化合物を投与して脳下垂体のＡＣＴＨ産生腫瘍を治療することができる。同じく、錐体静脈洞サンプリングと組み合わせれば、ＡＣＴＨアナログ化合物を投与して脳下垂体由来のＡＣＴＨ分泌過多、術前の下垂体腫瘍の局在化と偏り（lateralization）を突き止めることもできる（Oldfield, E. W. et al., "Petrosal sinus sampling with and without corticotrophin-releasing hormone for the differential diagnosis of Cushing's syndrome," N Engl J Med., 325:897-905 (1991);およびFindling, J. W. et al., Endocrinol Metab Clin North Am., 30:729-47 (2001)を参照）。脳下垂体ミクロ腺腫の７０％が経蝶形骨法による切除に成功しているが、マクロ腺腫の場合の外科的な「治癒」率は、専門のセンターでも患者の約３分の１にしかならない（Mampalam, T. J. et al., Ann Intern Med., 109:487-93 (1988)）。

ＡＣＴＨ分泌過多の治療と併用したり、脳下垂体への放射線照射と組み合わせるなどすれば、ＡＣＴＨアナログ化合物は腫瘍の治療にも投与でき、腫瘍の増殖やホルモンレベルを抑制することができる。放射線照射の影響は数年間は現れない可能性があるが、最終的には、大部分の患者で脳下垂体の傷害および機能不全を伴う（Brada, M. et al., "The long-term efficacy of conservative surgery and radiotherapy in the control of pituitary adenomas," Clin Endocrinol., 38:571-8 (1993)）。副腎皮質機能亢進症、即ちコルチゾール分泌過多は、副腎摘出術（副腎の一方または双方を外科的に除去）によって完全に解決可能であるが、この方法では下垂体腫瘍の増殖は抑えられず、また、他の疾病の罹患も同時に招いてしまう（Trainer, P. J. et al., "Cushing's syndrome: Therapy directed at the adrenal glands," Endocrinol Metab Clin North Am., 23:571-584 (1994)を参照）。

ＡＣＴＨアナログ化合物は、医薬療法、例えば、シプロヘプタジン（抗セロトニン剤；ＡＣＴＨ分泌を抑制するのに用いられるが、最終的な効力が弱く、その使用が中断されていた（Krieger, D. T. et al., "Cyproheptadine-induced remission of Cushings disease," N Engl J Med. 293:893-6 (1975)））の同時投与と組み合わせて投与できる。抗真菌剤であるケトコナゾールは副腎コルチゾール生合成を抑制するが、当該薬物は下垂体腫瘍の増殖またはＡＣＴＨ分泌は阻害せず、特異体質性の肝臓障害によりその長期使用が制限されている（Sonino, N., "The use of ketoconazole as an inhibitor of steroid production," N Engl J Med., 317:812-8 (1987)を参照）。

妊娠時には、第三妊娠三半期に胎盤および胎膜から相当量のＣＲＨが産生され（Frim, D. M. et al., "Characterization and gestational regulation of corticotrophin-releasing hormone messenger RNA in human placenta," J Clin Invest., 82:287-292 (1988)を参照）、特に妊娠３０週以降に母体の末梢血漿においてＣＲＨ濃度の増加を引き起こすおそれがある（Sasaki, A. et al., "Immunoreactive corticotropin-releasing hormone in human plasma during pregnancy, labor, and delivery," J Clin Endocrinol Metab., 64:224-229 (1987);およびGoland, R.S. et al., "High levels of corticotropin-releasing hormone immunoreactivity in maternal and fetal plasma during pregnancy," J Clin Endocrinol Metab., 63:119-1204 (1986)を参照）。最近の研究からは、早期分娩の女性では母体のＣＲＨ血漿レベルが上昇しており（Wolfe, C.D.A. et al., "Plasma corticotrophin releasing factor (CRF) in abnormal pregnancy," Br J Obstet Gynaecol., 95:1003-1006 (1988); Warren, W.B. et al, "Elevated maternal plasma corticotropin-releasing hormone levels in pregnancies complicated by preterm labor," Am J Obstet Gynecol., 166:1198-1207 (1992);およびMcLean, M. et al., "A placental clock controlling the length of human pregnancy," Nat Med., 1:460-463 (1995)を参照）、ＣＲＨ血漿レベルが低下すると過期産となる（前出のMcLean et al.）ことが示唆されている。

ＡＣＴＨアナログは、子宮収縮抑制薬（即ち、分娩抑制薬）と組み合わせて分娩を遅らせることも可能である。子宮収縮抑制薬の例としてはリトドリンおよびテルブタリンが挙げられ、いずれもβ−交感神経様作用性である。しかしながら、有効であるためには、これらの薬物を通常は分娩が完全に始まる前に投与しなければならず、分娩が始まった後に投与した場合には、効力または安全性が不確かである。子宮収縮抑制薬は、時として、妊娠の高リスク期間（通常は妊娠約２８〜３４週）に通常は輸液によって低レベルで妊婦へ連続投与されるが、当該薬物は、腎機能、呼吸機能、心拍数、全身筋系の活動可能な状態（general body musculature tone）に望ましくない副作用を及ぼすおそれがある。投与量は多くの場合低く維持されなければならず、例えば１ｍｇ／ｃｃのテルブタリン溶液なら約０．１ｃｃ／時間までである。分娩の開始を回避させる際、これらの低投与量の有効性は一貫しておらず、十分に定量がなされていない。従って、早期分娩の治療に対して新たな処置および方法が必要とされている。さらに重要なことには、早期分娩に対する新たな処置および方法は、望ましくない副作用を示さないことが必要である。

一実施態様では、ＡＣＴＨアナログ組成物を投与してＡＣＴＨの生合成を減少させることができる。この治療方法は、薬剤（例えば、メチラポン）の投与と併用することができ、好ましくは薬剤の投与の代わりに行うことができる。好ましくは、ＡＣＴＨアナログ組成物を投与して、例えばJ. R. Lindsay and L.K. Nieman (2005) "The Hypothalamic-Pituitary-Adrenal Axis in Pregnancy: Challenges in Disease Detection and Treatment," Endocrine Reviews 26:775-800に記載されているような妊娠中に発症するクッシング病の発病を治療することができる。この病態の治療は、通常は妊娠の延長または出産の準備を目的としており、ＡＣＴＨポリペプチドおよび／またはメチラポン（母体の肝機能または胎児の発育に悪影響を及ぼすことなく十分に許容されることが観察されている）の投与が含まれる。メチラポンを投与するとＡＣＴＨの生合成を減速させることができる。ＡＣＴＨアナログ組成物は、コルチコステロイドの分泌過多の原因がＡＣＴＨレベルの上昇の結果であると考えられる場合には（このような女性では、おそらく下垂体腫瘍から分泌）、例えばコルチコステロイドの合成を減少させる方策の一部として特に好適である。

別の態様では、家畜被験体の治療方法、例えば、高い個体群密度にて栽培・養殖される農水産種の健康に役立つようストレスホルモンを低下させる方法を提供する。１種以上のＡＣＴＨアナログ化合物を含む組成物は、高い個体群密度にて栽培・養殖される農水産種の健康に役立つようストレスホルモンを低下させる方法においても投与できる。
実施例
以下実施例を挙げて本発明の好適な実施態様を実際に説明する。以下の実施例に開示する材料および技術は、本発明の実施において十分に機能することが発明者によって明らかとなった材料・技術を示すものであり、従って、発明の実施にとって好ましい態様を構成すると考えられることは、当業者であれば分かる筈である。しかしながら、当業者であれば、本明細書の開示から、開示された特定の実施態様において多くの変更が可能であり、発明の概念および範囲を逸脱することなく依然として同様または類似の結果が得られることは明らかな筈である。
実施例１ 血清コルチコステロイド誘発アッセイ（インビボ）
ＡＣＴＨによる血中コルチコステロイド分泌を減少させるＡＣＴＨアナログは、インビボでの血清コルチコステロイド誘発アッセイを行ってＡＣＴＨアナログ投与後の被験体における血中コルチコステロイドレベルを測定することで同定できる。

インビボでの血清コルチコステロイド誘発アッセイは、以下の方法に従って行った。第一に、本発明者の繁殖集団からの２〜３ヶ月齢の雄ＦＶＢ／Ｎマウスに、１群当たり５匹でデキサメタゾン（０．４ｍｇ／０．１ｍｌ ＰＢＳ／マウス；Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を腹腔内注射し、内在性ＡＣＴＨの産生を抑制した。Hajos, GT et al., "Studies of the potency of polypeptides with ACTH action by a new method based on continuous measurement of plasma corticosterone," Steroids Lipids Res 3:225-228 (1972), Costa, JL, et al., "Mutational analysis of evolutionarily conserved ACTH residues," Gen Comp Endocrinol, 136:12-16 (2004)およびKarpac, J, et al., "Development, Maintenance, and Function of the Adrenal Gland in Early Postnatal Pro-opiomelanocortin Null Mutant Mice," Endocrinology (2005)（印刷に先立って２００５年２月２４日オンラインにて公表）を参照されたい（いずれも引用により本明細書に含まれるものとする）。

第二に、９０〜１２０分後、デキサメタゾン抑制マウスの肩甲骨間皮下に、未改変ｍＡＣＴＨ（１−２４）または複数のＡＣＴＨアナログペプチド化合物のうちの１つ（１μｇ／０．１ｍｌ ＰＢＳ／０．５％ＢＳＡ）のいずれか、あるいは、ビヒクル単独（対照）（０．１ｍｌ ＰＢＳ／０．５％ＢＳＡ）を注射した。以下のＡＣＴＨアナログペプチド化合物を別々のマウスへ投与した：１：マウスＡＣＴＨ１−２４；２：Ｖ２６Ｆ，Ｅ３０Ｋ；３：Ｐ１９Ｗ，Ｋ２１Ｅ，Ｙ２３Ｒ；４：Ｅ３０Ｋ，Ｐ３６Ｒ；５：ＡＬＡ１９−２４；６：Ｖ２６Ｆ，Ｐ３６Ｒ；７：Ｐ１９Ｗ，Ｋ２１Ｅ；８：Ｐ１９Ｗ，Ｋ２１Ａ，ｄｅｌＹ２３；９：Ｐ１９Ｗ，Ｋ２１Ａ；１０：ＫＲＲＰ１６−１９ＲＡＡＷ（ＡＴ８１４）（配列番号２０）。

第三に、１時間後、尾を少しだけ切開して１分未満以内に血液を回収し、血清をフラッシュ凍結してアッセイまで−８０℃で保存した。競合ラジオイムノアッセイ（¹²⁵Ｉ ＲＩＡキット；ＩＣＮ，Ｃｏｓｔａ Ｍｅｓａ，ＣＡ）により製造業者の推奨に従って血清コルチコステロンを判定した。アッセイサンプル１つ当たり血清を１μｌ使用した。サンプルは２回ずつ測定した。上述のＡＣＴＨアナログペプチドの結果を図１のグラフに示す（ＡＣＴＨ活性の割合（％）として活性を表示）。これらのＡＣＴＨアナログは天然型のＡＣＴＨよりも低い活性を示した。
実施例２ 血清コルチコステロイド阻害アッセイ（インビボ）
ＡＣＴＨによる血中コルチコステロイド分泌を減少させるＡＣＴＨアナログは、インビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイを行って未改変ＡＣＴＨによる副腎ホルモン産生を阻害する能力を試験することで同定できる。ＡＣＴＨアナログ被験化合物をコルチコステロイド誘発活性が知られている化合物（例えば、ＡＣＴＨまたは別のＡＣＴＨアナログ）と組み合わせて投与した後、被験体における血中コルチコステロイドレベルを測定した。ＡＣＴＨアナログ被験化合物は、コルチコステロイド産生化合物の投与前、投与と同時に、または、投与後に投与できる。

インビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイは、以下の方法に従って行った。ＡＣＴＨアナログ被験化合物（例えば、実施例１において低い活性を示したもの）を、未改変ＡＣＴＨによる副腎ホルモン産生を阻害する能力について試験した。

第一に、本発明者の繁殖集団からの２〜３ヶ月齢の雄ＦＶＢ／Ｎマウスに、１群当たり５匹でデキサメタゾン（０．４ｍｇ／０．１ｍｌ ＰＢＳ／マウス；Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を腹腔内注射し、内在性ＡＣＴＨの産生を抑制した。

第二に、９０〜１２０分後、動物の肩甲骨間皮下に野生型ＡＣＴＨおよび／または被験ＡＣＴＨアナログペプチド（１μｇ／０．１ｍｌ ＰＢＳ／０．５％ＢＳＡ）またはビヒクル単独（０．１ｍＬ ＰＢＳ／０．５％ＢＳＡ）を投与した。

第三に、１時間後、尾を少しだけ切開して１分未満以内に血液を回収し、血清をフラッシュ凍結してアッセイまで−８０℃で保存した。競合ラジオイムノアッセイ（¹²⁵Ｉ ＲＩＡキット；ＩＣＮ，Ｃｏｓｔａ Ｍｅｓａ，ＣＡ）により製造業者の推奨に従って血清コルチコステロンを判定した。アッセイサンプル１つ当たり血清を１μｌ使用した。サンプルは２回ずつ測定した。

上述の通り、アナログＡＴ８１４（配列番号２０）について、結果をグラフとして図２に示す。ペプチドの効力をコルチコステロンの誘発率（％）として表す（天然型のマウスＡＣＴＨの場合を１００％とする）。最後にペプチドを注射してから１時間後のコルチコステロン誘発を比較したところ、ＡＴ８１４は、ＡＣＴＨ注射の３０分前に適用した場合には、コルチコステロン誘発を野生型ＡＣＴＨの３５％まで減少させ、ＡＣＴＨ注射と同時に適用した場合には、野生型ＡＣＴＨの１０％まで減少させることが判明した。
実施例３ 副腎結合アッセイ（インビトロ）
副腎レセプターに結合する能力を有するＡＣＴＨアナログは、インビトロでの副腎結合アッセイを行うことで同定できる。外植副腎膜に結合する放射標識されたＡＣＴＨアナログ被験化合物の量を測定し、副腎レセプター結合活性を有するＡＣＴＨアナログを同定できる。好ましくは無血清培地中で行う（インビトロでの無血清副腎結合アッセイ）。

副腎結合活性が知られている化合物（好ましくはＡＣＴＨ）よりも高い親和性で副腎レセプターに結合する能力を有するＡＣＴＨアナログも、インビトロでの副腎競合結合アッセイ（放射標識された副腎結合性化合物（例えば、ＡＣＴＨ）の量の減少を、様々な濃度の放射標識されていないＡＣＴＨアナログ被験化合物について、外植副腎膜を含む培地中で測定）を行うことで同定できる。放射標識された副腎結合性化合物の副腎膜結合の減少を利用すれば、ＡＣＴＨアナログ被験化合物の結合活性を同定および特性決定することができる。一連のインビトロでの副腎競合結合アッセイでは、放射標識されたＡＣＴＨの結合の減少を、ＡＣＴＨアナログ被験化合物の副腎膜培地中への添加と組み合わせて測定した。

インビトロでの無血清副腎競合結合アッセイは、以下の方法に従って行った。第一に、副腎をマウスから摘出して脂肪を切り離し、半分に切り分けた。Costa, JL, et al., "Mutational analysis of evolutionarily conserved ACTH residues," Gen Comp Endocrinol. 136:12-16 (2004);およびWeber, MM, et al., "Postnatal overexpression of insulin-like growth factor II in transgenic mice is associated with adrenocortical hyperplasia and enhanced steroidogenesis," Endocrinology 140:1537-1543 (1999)を参照されたい（いずれも引用により本明細書に含まれるものとする）。

第二に、各副腎半球を４ウェルディッシュの個々のウェルへ入れ、マウス１匹当たり１ディッシュとした。副腎半球を５％ＣＯ₂、３７℃にて、０．５ｍｌ無血清培地（Ｍ１９９；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中３０分間インキュベートして平衡化させた。

第三に、副腎半球をほぐすか、そうでなければダンス型ホモジナイザーを用いて解離させ、膜画分を形成した。画分を適切な緩衝液（トリスまたはＨＥＰＥＳ）中に再懸濁させた。次いで、¹²⁵Ｉ放射標識ＡＣＴＨ（２００ｍｌ）と放射標識されていない被験化合物（例えば、ＡＣＴＨまたはＡＴ８１４（配列番号２０）等のＡＣＴＨアナログ）とを、被験化合物の総濃度が０ｎＭ、１０ｎＭ、１００ｎＭおよび１０００ｎＭとなるような量で再懸濁膜画分へ添加し、対照にはペプチドを添加しなかった。膜画分を回収し、放射線シグナルをガンマ検出器用いて検出した。放射標識されていない被験化合物の添加後に検出される放射線シグナルの低下は、各種被験化合物の結合親和性と相関可能である。ＡＣＴＨアナログペプチド被験化合物の添加後に見られる放射線シグナルの低下は、副腎ＡＣＴＨレセプター（例えば、ＭＣ−２Ｒ）への結合親和性の増加と、副腎ＭＣ−２ＲレセプターにおいてＡＣＴＨを退かして置き換わる能力の指標となり得る。

図３に、一連のインビトロでの無血清副腎競合結合アッセイの結果を示す。
実施例４ 副腎阻害アッセイ（インビトロ）
ＡＣＴＨによる副腎膜からのコルチコステロイドの分泌を減少または阻止するＡＣＴＨアナログは、インビトロでの無血清コルチコステロイド阻害アッセイを行って未改変ＡＣＴＨによる副腎ホルモン産生を阻害する能力を試験することで同定できる。ＡＣＴＨアナログ被験化合物をコルチコステロイド誘発活性が知られている化合物（例えば、ＡＣＴＨまたは別のＡＣＴＨアナログ）と組み合わせて添加した後、無血清培地中のコルチコステロイドレベルを測定した。ＡＣＴＨアナログ被験化合物は、コルチコステロイド産生化合物の添加前、添加と同時に、または添加後に添加できる。

インビトロでの無血清副腎阻害アッセイは、以下の方法に従って行った。第一に、副腎をマウスから摘出して脂肪を切り離し、半分に切り分けた。Costa, JL, et al., "Mutational analysis of evolutionarily conserved ACTH residues," Gen Comp Endocrinol. 136:12-16 (2004);およびWeber, MM, et al., "Postnatal overexpression of insulin-like growth factor II in transgenic mice is associated with adrenocortical hyperplasia and enhanced steroidogenesis," Endocrinology 140:1537-1543 (1999)を参照されたい（いずれも引用により本明細書に含まれるものとする）。

第二に、各副腎半球を４ウェルディッシュの個々のウェルへ入れ、マウス１匹当たり１ディッシュとした。副腎半球を５％ＣＯ₂、３７℃にて、０．５ｍｌ無血清培地（Ｍ１９９；Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）中３０分間インキュベートして平衡化させた。

第三に、培地を除去し、ＡＣＴＨ、ＡＴ８１４または両者（各１００ｎｇ／ｍｌ）を含有するＭ１９９（０．５ｍｌ）と置換し、対照にはペプチドを添加しなかった。
第四に、２時間インキュベーションした後、培地を取り除けて各マウスからの４つ全ての半球についてプールし、標準的なＲＩＡ法を用いてコルチコステロンによるアッセイを行った。競合ラジオイムノアッセイ（¹²⁵Ｉ ＲＩＡキット；ＩＣＮ，Ｃｏｓｔａ Ｍｅｓａ，ＣＡ）により製造業者の推奨に従ってコルチコステロンを判定した。アッセイサンプル１つ当たり血清を１μｌ使用した。サンプルは２回ずつ測定した。図４に結果を示す。
実施例５ （推定）家畜への治療投与
魚の養殖場では、混雑の影響と感染の拡大によって商業目的での魚の総トン数を最大にする目標が停滞するにつれ、いくつかの難題に直面するようになる。このような環境では、魚は、視床下部／脳下垂体／間腎（ＨＰＩ）系を介して慢性的なストレス発作を処理しようとする。このような状況では、通常コルチコステロイドの上昇に続いて死亡率がある程度のレベルに達し、コルチコステロイドに対する感受性が鈍くなり、次いで個体群密度に関して新たな定常状態を出現させる。皮肉にも、このような「調節」サイクル時にはコルチコステロイドレベルの上昇が継続しており、感染に対する抵抗性を低下させている。

養殖魚のＨＰＩは、本発明のＡＣＴＨアナログを徐放投与、例えば、このような魚ではシラスチックカプセルインプラントから徐放投与することでモジュレート可能である。このＨＰＩ系の緩衝手法は、生存を改善する筈であり、また、養殖魚の体重増加を容易にする可能性がある。

本発明のＡＣＴＨアナログまたはＡＣＴＨ単独のいずれかをインプラントした魚を、ＨＰＩ系を活性化させる環境条件（即ち、混雑、ｐＨのシフト、アンモニアやニトレートの蓄積）の下に置く。これらの典型例で分析可能な２つのパラメータは、死亡率と体重変化である。このようなパラメータから、本発明のＡＣＴＨアナログが魚のコルチコステロンレベルを低下させる際に有効であるか否かが明らかとなる。

図１は、各種ＡＣＴＨアナログ化合物を注射した後インビボで測定したコルチコステロンのレベルを、未改変ＡＣＴＨの投与後に測定したコルチコステロンのレベルと比較して示したグラフである。 図２は、未改変ＡＣＴＨを投与、ＡＣＴＨアナログを未改変ＡＣＴＨと組み合わせて投与、ＡＣＴＨアナログに続いて未改変ＡＣＴＨを別途投与、および、ＡＣＴＨアナログを単独で投与した際に誘導された、インビボでのコルチコステロンを比較したグラフである。 図３は、未改変ＡＣＴＨとＡＣＴＨアナログ化合物に対する副腎ＡＣＴＨレセプターの競合結合アッセイの結果を比較したグラフである。 図４は、未改変ＡＣＴＨを添加、ＡＣＴＨアナログを未改変ＡＣＴＨと組み合わせて添加、および、ＡＣＴＨアナログを単独で添加した際に外植副腎膜において誘導された、インビトロでのコルチコステロンを比較したグラフである。 図５は、コルチコステロンを誘導する際の各種ＡＣＴＨアゴニスト化合物のインビボおよびインビトロ活性を、未改変ＡＣＴＨの活性を基準（即ち１００％）にして比較したグラフである。

Claims (42)

1. 単離されたＡＣＴＨアナログペプチドを含む組成物であって、前記ＡＣＴＨアナログペプチドは、以下のアミノ酸置換のうち少なくとも１つを有する配列番号２のペプチドを含むものである、前記組成物：
   ａ．配列番号２の１９位に位置するＰｒｏ残基のアミノ酸Ｔｒｐによる置換；または
   ｂ．配列番号２のアミノ酸残基１６〜１８から選択される残基の１以上のアミノ酸置換であって、以下の条件を満たすもの：
   ｉ．前記ＡＣＴＨアナログのアミノ酸残基１６、１７および１８が、ＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択される２個のアミノ酸残基をいずれも隣接して含まない；かつ
   ｉｉ．配列番号２の１６、１７または１８位に置換した１以上のアミノ酸残基が、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ａｌａ、Ｇｌｙ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、アルキル側鎖を含むアミノ酸アナログ、Ｇｌｎ、Ａｓｎ、ＧｌｕおよびＡｓｐからなる群より選択される。
2. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドが、配列番号２のアミノ酸位置１５、１６、１７または１８のいずれか２箇所に置換した少なくとも１つのＡｌａおよび少なくとも１つのＡｒｇ残基を含む、請求項１記載の組成物。
3. 前記ＡＣＴＨアナログが、以下のアミノ酸置換を有する配列番号２の配列から本質的になる、請求項１または２記載の組成物：
   配列番号２の１９位に位置するＰｒｏ残基をアミノ酸Ｔｒｐで置換する；
   配列番号２の１５位に位置するアミノ酸が、Ｌｙｓ、ＡｌａおよびＧｌｎからなる群より選択される；かつ
   前記ＡＣＴＨアナログペプチドが、配列番号２のアミノ酸残基１６〜１８から選択される残基の１以上のアミノ酸置換を含むものであって、前記ＡＣＴＨアナログのアミノ酸残基１６、１７および１８が、ＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択される２個のアミノ酸残基をいずれも隣接して含まない。
4. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドのアミノ酸残基６〜９に、アミノ酸配列−Ｈｉｓ⁶−Ｐｈｅ⁷−Ａｒｇ⁸−Ｔｒｐ⁹−が含まれる、請求項１、２または３記載の組成物。
5. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドのアミノ酸残基１５〜１９に、アミノ酸配列−Ｌｙｓ¹⁵−Ａｒｇ¹⁶−Ａｌａ¹⁷−Ａｌａ¹⁸−Ｔｒｐ¹⁹−が含まれる、請求項１、２または３記載の組成物。
6. インビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイにおいて前記ＡＣＴＨアナログペプチドを投与した場合、ＡＣＴＨによるコルチコステロイド分泌が少なくとも１０％減少する、請求項１、２、３、４または５記載の組成物。
7. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドが、副腎膜に結合して配列番号２のペプチドを副腎膜から退かして置き換わるものであって、ここで当該ペプチド結合は、インビトロでの無血清副腎競合結合アッセイにて測定する、請求項１、２、３、４、５または６記載の組成物。
8. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドが、配列番号２のペプチドの少なくとも２倍の親和性でＭＣ−２Ｒ副腎膜に結合する、請求項７記載の組成物。
9. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドが、インビトロでの無血清副腎阻害アッセイにおいてＡＣＴＨによる副腎膜からのコルチコステロン産生を減少させる、請求項１、７または８記載の組成物。
10. 単離されたＡＣＴＨアナログペプチドを含む組成物であって、前記ＡＣＴＨアナログペプチドは、少なくとも１つのアミノ酸置換を有する配列番号２のペプチドを含み、副腎膜に結合して配列番号２のペプチドを副腎膜から退かして置き換わるものであって、ここで当該ペプチド結合は、インビトロでの無血清副腎競合結合アッセイにて測定する、前記組成物。
11. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドが、以下のアミノ酸置換のうち少なくとも１つを有する、請求項１０記載の組成物：
    （ａ）配列番号２の１９位に位置するＰｒｏ残基のアミノ酸Ｔｒｐによる置換；または
    （ｂ）配列番号２のアミノ酸残基１６〜１８から選択される残基の１以上のアミノ酸置換であって、以下の条件を満たすもの：
    前記ＡＣＴＨアナログのアミノ酸残基１６、１７および１８が、ＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択される２個のアミノ酸残基をいずれも隣接して含まない；かつ
    配列番号２の１６、１７または１８位に置換した１以上のアミノ酸残基が、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ａｌａ、Ｇｌｙ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、アルキル側鎖を含むアミノ酸アナログ、Ｇｌｎ、Ａｓｎ、ＧｌｕおよびＡｓｐからなる群より選択される。
12. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドのアミノ酸残基１５〜１９に、アミノ酸配列−Ｌｙｓ¹⁵−Ａｒｇ¹⁶−Ａｌａ¹⁷−Ａｌａ¹⁸−Ｔｒｐ¹⁹−が含まれる、請求項１０または１１記載の組成物。
13. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドが、インビトロでの無血清副腎阻害アッセイにおいてＡＣＴＨによる副腎膜からのコルチコステロン産生を減少させる、請求項１０、１１または１２記載の組成物。
14. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドを投与した場合、ＡＣＴＨによるコルチコステロイド誘発が少なくとも１０％減少し、ここでコルチコステロン誘発は、インビボでの血清コルチコステロイド阻害アッセイにて測定する、請求項１０、１１、１２または１３記載の組成物。
15. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドが、配列番号２のペプチドと比較して、インビトロでの血清コルチコステロイド誘発アッセイにおいてＡＣＴＨによる副腎膜からのコルチコステロン産生を少なくとも１０％減少させる、請求項１０、１１、１２、１３または１４記載の組成物。
16. 少なくとも１つのアミノ酸置換を有する配列番号１のペプチドを含む単離されたＡＣＴＨアナログペプチドを含む組成物であって、前記ＡＣＴＨアナログペプチドは、配列番号２のペプチドと比較して、インビトロでの血清コルチコステロイド誘発アッセイにおいてＡＣＴＨによる副腎膜からのコルチコステロン産生を少なくとも１０％減少させるものであり、前記少なくとも１つのアミノ酸置換には、配列番号１の１９、２６、３０または３６位に位置するアミノ酸残基の置換が含まれる、前記組成物。
17. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドが、以下のアミノ酸置換のうち少なくとも１つを有する、請求項１６記載の組成物：
    （ａ）配列番号１の１９位に位置するＰｒｏ残基のアミノ酸Ｔｒｐによる置換；または
    （ｂ）配列番号１のアミノ酸残基１６〜１８から選択される残基の１以上のアミノ酸置換であって、以下の条件を満たすもの：
    前記ＡＣＴＨアナログのアミノ酸残基１６、１７および１８が、ＬｙｓおよびＡｒｇからなる群より選択される２個のアミノ酸残基をいずれも隣接して含まない；かつ
    配列番号２の１６、１７または１８位に置換した１以上のアミノ酸残基が、Ｌｙｓ、Ａｒｇ、Ａｌａ、Ｇｌｙ、Ｖａｌ、Ｌｅｕ、Ｉｌｅ、アルキル側鎖を含むアミノ酸アナログ、Ｇｌｎ、Ａｓｎ、ＧｌｕおよびＡｓｐからなる群より選択される。
18. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドのアミノ酸残基１５〜１９に、アミノ酸配列−Ｌｙｓ¹⁵−Ａｒｇ¹⁶−Ａｌａ¹⁷−Ａｌａ¹⁸−Ｔｒｐ¹⁹−が含まれる、請求項１６または１７記載の組成物。
19. 前記ＡＣＴＨアナログが、配列番号１のアミノ酸残基２５〜３９の末端切断をさらに含む、請求項１６、１７または１８記載の組成物。
20. 前記ＡＣＴＨアナログペプチドが配列番号２０のペプチドを含む、請求項１６、１７、１８または１９記載の組成物。
21. ＡＣＴＨ関連病態を治療するための医薬の製造におけるＡＣＴＨアナログの使用であって、請求項１、１０または１６記載のＡＣＴＨアナログを適切な担体と組み合わせる工程を含む、前記使用。
22. 血中コルチコステロイド濃度の上昇が前記ＡＣＴＨ関連病態の症状である、請求項２１記載の使用。
23. 前記ＡＣＴＨ関連病態が、クッシング病、早期分娩、下垂体腫瘍および視床下部／脳下垂体／間腎（ＨＰＩ）系の病理からなる群より選択される、請求項２１記載の使用。
24. 前記医薬が、注射、吸入または経皮吸収による投与用に製剤化される、請求項２１記載の使用。
25. 前記医薬が配列番号２０のＡＣＴＨアナログを含む、請求項２１、２２、２３または２４記載の使用。
26. 請求項１、１０または１６記載のＡＣＴＨアナログを含む医薬組成物を被験体へ投与することを含む、ＡＣＴＨ関連病態の治療方法。
27. 前記医薬組成物を、被験体へ注射、吸入または経皮吸収によって投与するために製剤化する、請求項２６記載の方法。
28. 前記医薬組成物を注射用に製剤化し、前記医薬組成物を被験体へ注射する工程をさらに含む、請求項２７記載の方法。
29. 前記医薬組成物の投与前に被験体の血中コルチコステロイドレベルを測定する工程をさらに含む、請求項２６記載の方法。
30. 前記医薬組成物を皮下または静脈内に注射する、請求項２８記載の方法。
31. 前記医薬組成物を被験体へ注射する前に、被験体の血中コルチコステロイドレベルを低下させる薬剤を投与する工程をさらに含む、請求項２８記載の方法。
32. 前記血中コルチコステロイドレベルを低下させる薬剤がデキサメタゾンを含む、請求項３１記載の方法。
33. 前記被験体がヒトである、請求項２６記載の方法。
34. 前記医薬組成物が徐放性組成物を含む、請求項２６記載の方法。
35. 前記医薬組成物が配列番号２０のＡＣＴＨアナログを含む、請求項２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３または３４記載の方法。
36. 副腎膜からのコルチコステロイド分泌を配列番号２の未改変ＡＣＴＨよりも抑えるＡＣＴＨアナログ化合物を同定するための、ＡＣＴＨアナログ化合物のスクリーニング方法であって、副腎膜とＡＣＴＨアナログとを接触させる工程を含む、前記方法。
37. 前記スクリーニング方法が以下の工程をさらに含む、請求項３６記載の方法：
    ａ．第一の副腎膜と第二の副腎膜を用意し；
    ｂ．第一の副腎膜を、配列番号２を含む未改変ペプチドを含む第一の組成物と接触させ、続いて、配列番号２を含む未改変ペプチドとの接触後に第一の副腎膜から分泌される第一のコルチコステロイド濃度を測定し；
    ｃ．第二の副腎膜を、ＡＣＴＨアナログを含む第二の組成物と接触させ、続いて、ＡＣＴＨアナログとの接触後に第二の副腎膜から分泌される第二のコルチコステロイド濃度を測定する。
38. 分泌された第一のコルチコステロイド濃度と、分泌された第二のコルチコステロイド濃度とを比較する工程をさらに含む、請求項３７記載の方法。
39. 第二の化合物が第一の化合物よりもコルチコステロイド分泌を抑えるか否かを判定する工程をさらに含む、請求項３８記載の方法。
40. 前記ＡＣＴＨアナログが請求項１、１０または１６記載のＡＣＴＨアナログである、請求項３６、３７、３８または３９記載の方法。
41. 前記第一の副腎膜と第二の副腎膜が被験体の体内に存在し、コルチコステロイドの濃度を被験体の血液中で測定する、請求項３６、３７、３８または３９記載の方法。
42. 前記第一の副腎膜と第二の副腎膜が被験体から外植したものであり、コルチコステロイドの濃度を無血清培地中で測定する、請求項３６、３７、３８または３９記載の方法。

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