JP2008136450A - 2−ヒドロキシ−4−置換ピリジンの製造方法 - Google Patents
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Abstract
Description
で表される4−置換ピリジンに、その2位にヒドロキシル基を導入する能力を有するクレブトレラ属の微生物又はその処理物を作用させることを特徴とする、一般式(2):
で表される2−ヒドロキシ−4−置換ピリジンを製造する方法に関する。
1.形態的・培養的性質(+は陽性、−は陰性を表す。)
(1)細胞形態:桿菌
(2)幅:0.7〜0.8μm
(3)長さ:1.5〜2.0μm
(4)胞子形成:−
(5)運動性:+
(6)コロニー形態:円形、周縁全縁、隆起状態レンズ状、表面形状スムーズ、不透明、クリーム色
(1)グラム染色:−
(2)各培養温度での生育:37℃ +、45℃ −
(3)カタラーゼ:+
(4)オキシダーゼ:+
(5)酸/ガス産生(グルコース):−/−
(6)O/Fテスト(グルコース):+/−
(7)硝酸塩還元:+
(8)インドール産生:−
(9)ブドウ糖 酸性化:−
(10)アルギニンジヒドロラーゼ:−
(11)ウレアーゼ:−
(12)エスクリン加水分解:+
(13)ゼラチン加水分解:−
(14)β−ガラクトシダーゼ:+
(15)各種化合物の資化性
ブドウ糖:+
L−アラビノース:+
D−マンノース:+
D−マンニトール:+
N−アセチル−D−グルコサミン:+
マルトース:+
グルコン酸カリウム:−
n−カプリン酸:−
アジピン酸:−
dl−リンゴ酸:−
クエン酸ナトリウム:−
酢酸フェニル:−
(16)チトクロームオキシダーゼ:+
本菌株よりゲノムDNAを抽出し、16S rRNA遺伝子(16S rDNA)の配列を解析した。決定された塩基配列を配列表の配列番号1に示す。こうして得られた本菌株の16S rDNA塩基配列(配列番号1)を用いて、DNA塩基配列データベース(GenBank/DDBJ/EMBL)に対して相同性を検索し、近縁菌群と系統樹を作製した結果、本菌株はクラブトレラ属に属すると推定された。最も近縁であった基準株はクラブトレラ・サッカロフィラ(Crabtreella saccharophila) IAM12669[Accession No.238789]であり、相同率は99.0%であった。
蓄積反応に用いる前記微生物の培養液の調整方法としては、(ア)炭素源及び窒素源を適宜添加した培地に微生物の菌体を接種して同一の該培地中で増殖させて培養液を得る方法、(イ)培養を段階的に行なって培養液を得る方法、すなわち、前培養と本培養を組み合わせて培養液を得る方法が挙げられるが、好ましくは(イ)の方法である。(イ)の方法は、まず、前培養として、炭素源及び窒素源を適宜添加した培地に前記微生物の菌株を接種して微生物を増殖させて、本培養で使用する微生物の確保を目的として第一段階の培養液(以下、前培養液という。)を得た後、次に、本培養として、容量を増大させた培地に前培養液を加えて、炭素源及び窒素源を適宜添加して微生物を培養することで蓄積反応に十分な酵素の産生を目的として第二段階の培養液(以下、本培養液という。)を得る方法である。
[i]得られた培養液はそのまま以下に述べる蓄積反応に使用してもよいし、
[ii]微生物を培養液から回収して反応に使用したり、更に
[iii]回収した微生物の処理物、例えば、破砕物、粗酵素、精製酵素などを反応に使用することもできる。
(1)培地[A]
脱塩水1.0L中に、酵母エキス1.0g、リン酸水素二ナトリウム十二水和物4.3g、リン酸二水素カリウム4.2g、硫酸鉄(II)七水和物0.3g、モリブデン(VI)酸二ナトリウム二水和物0.3g、塩化マンガン(II)四水和物0.3g、硫酸マグネシウム七水和物0.5g及びイソニコチン酸3.0gを含み、水酸化ナトリウム水溶液によりpHを7.5に調整した培地。
(1)前培養
培地[A]100mLを500mL容の三角フラスコに入れ、121℃で20分間、オートクレーブ滅菌を実施した後、フィルター滅菌したスクロース10%溶液2.5mLを添加した。この三角フラスコに、栄養寒天培地に維持したクラブトレラ・スピーシーズ YGK−A443の菌体を1白金耳接種し、27℃で27時間振とう培養して、前培養液を得た。
一方、撹拌、通気、温度及びpH調整が可能な2L容のジャーファーメンターに培地[A]1Lを入れ、121℃で20分間、オートクレーブ滅菌を実施した後、フィルター滅菌したスクロース10%溶液25mLを添加した。このジャーファーメンターに、上述の前培養液20mLを加え、撹拌及び通気を実施しながら27℃及びpH7.5で19時間培養を行った。
得られた本培養液1L(菌体濃度:濁度(660nm)=24)に、25℃で撹拌及び通気を実施しながら、培養液中のイソニコチン酸アミド濃度が0.2〜1.0%の範囲に保たれるようにイソニコチン酸アミドを固体で適宜添加し、2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドの蓄積反応を行ったところ、ほぼ一定の速度で2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドが蓄積した。2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドの濃度が約0.1%に達した時点で、2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドが析出した。
カラム;CAPCELL PAK C18 MGII (SHISEIDO) 4.6×250mm
移動相;5v/v%アセトニトリル(85%リン酸を加えてpHを2.5に調整)
流速;1mL/分
カラム温度;40℃
検出波長;210nm
保持時間;イソニコチン酸アミド=2.7分、2−ヒドロキシイソニコチン酸アミド=3.7分
実施例1の(1)及び(2)と同様の方法でクラブトレラ・スピーシーズ YGK−A443を培養して、得られた本培養液1L(菌体濃度:濁度(660nm)=19)に、25℃で撹拌及び通気を実施しながら、培養液中のイソニコチン酸アミド濃度が0.2〜1.0%の範囲に保たれるようにイソニコチン酸アミドを固体又は5%水溶液で適宜添加して、2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドの蓄積反応を10日間(240時間)行った。2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドの濃度が約0.1%に達した時点で、2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドが析出した。反応液に含まれる2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドを実施例1記載の条件でHPLC分析して、2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドの蓄積速度(1時間当たりの2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドの蓄積濃度の増加量)を求めたところ、10日間ほぼ一定であり、イソニコチン酸アミドを2−ヒドロキシイソニコチン酸アミドに変換する酵素が長時間安定であることを確認した。
実施例1の(1)及び(2)と同様の方法でクラブトレラ・スピーシーズ YGK−A443を培養して得られた本培養液10mL(菌体濃度:濁度(660nm)=28.5)を遠心分離により集菌し、静止菌体を得た。これに、4−ピリジンアルドキシム0.5%を含む0.1Mリン酸カリウム緩衝液(pH7.0)を10mL加え、懸濁した。この懸濁液を50mL三角フラスコに入れ、撹拌を行いながら、27℃にて反応を開始した。その後、懸濁液の4−ピリジンアルドキシム濃度が0.2〜0.6%の範囲に保たれるように4−ピリジンアルドキシムを適宜添加し、2−ヒドロキシ−4−ピリジンアルドキシムの蓄積反応を行った。2−ヒドロキシ−4−ピリジンアルドキシムの濃度が約0.2%に達した時点で、2−ヒドロキシ−4−ピリジンアルドキシムが析出した。反応95時間目で懸濁液を下記の条件でHPLC分析したところ、2−ヒドロキシ−4−ピリジンアルドキシムの蓄積濃度は2.3%となり、前記蓄積反応中に消費した4−ピリジンアルドキシムに対して、2−ヒドロキシ−4−ピリジンアルドキシムのモル変換率は100%に相当した。反応生成物は、HPLC−MS、1H−NMR、及び13C−NMR分析により確認した。
カラム;CAPCELL PAK C18 MGII (SHISEIDO) 4.6×250mm
移動相;5v/v%アセトニトリル(85%リン酸を加えてpHを2.5に調整)
流速;1mL/分
カラム温度;40℃
検出波長;210nm
保持時間;4−ピリジンアルドキシム=2.7分、2−ヒドロキシ−4−ピリジンアルドキシム=6.6分
Claims (3)
- 前記微生物がクラブトレラ・スピーシーズ YGK−A443(FERM P−20939)である、請求項1記載の2−ヒドロキシ−4−置換ピリジンの製造方法。
- 受託番号FERM P−20939である、クラブトレラ・スピーシーズ YGK−A443。
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