JP2007536261A - 抗微生物性物品 - Google Patents
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Abstract
Description
C=C0、x=0、t>0[境界条件]
およびC=0、x>0、t=0[初期条件]である
δC/δt=D(δ2C/δx2)[フィックの第二法則]
の解は、C=C0(ERFC[x/(4Dt)1/2])である。
式中、Cは拡散する化学種の濃度であり、tは時間であり、xは拡散方向の座標であり、ERFCは付加誤差関数である。「拡散の数学(The Mathematics of Diffusion)」第2版、J.クランク(Crank)、Clarendon Pres、Oxford、1975年を参照されたい。
Rh 1−Y1−W−Y2−Rh 2、(I)
(式中、
Wはポリオキシアルキレン基、好ましくはポリオキシエチレン基を表し、
Y1およびY2は独立して酸素またはイオウ原子、または式−CO−、−COO−、−NH−、−CONH−、または−N(R)−(式中、Rはアルキル基またはアリール基である)の基を表し、
Rh 1はその骨格鎖が直鎖、分枝鎖、または十分に大きければ、環式、またはそれらのあらゆる組み合わせであってもよく、骨格鎖がまた、骨格鎖の炭素原子に結合する1つ以上のカテナリーヘテロ原子(酸素、六価のイオウ、および三価の窒素原子など)も任意に含むことができる2〜約20個の炭素原子を含有する、置換または非置換であってもよいアルキルまたはアリール基、またはそれらの組み合わせを表し、
Rh 2は水素原子を表し、またはその骨格鎖が直鎖、分枝鎖、または十分に大きければ、環式、またはそれらのあらゆる組み合わせであってもよく、骨格鎖がまた、骨格鎖の炭素原子に結合する酸素、六価のイオウ、および三価の窒素原子などの1つ以上のカテナリーヘテロ原子も任意に含むことができる2〜約20個の炭素原子を含有する、置換または非置換であってもよいアルキルまたはアリール基、またはそれらの組み合わせである)
に対応する。
全ての描写されたR基は独立して、置換または非置換の直鎖または分枝鎖、環式または非環式であってもよい1〜約10個の炭素原子を有するアルキルまたはアリール基として選択され、1つ以上のカテナリーヘテロ原子を含有してもよい)
のポリジアルキルシロキサン基を含有してもよい。
各nは独立して2〜約20の数であり、界面活性剤中のポリオキシエチレンの重量%が20〜80%、好ましくは30〜60%になるように選択され、
各Rは骨格鎖が直鎖、分枝鎖、または十分に大きければ、環式、またはそれらのあらゆる組み合わせであってもよく、骨格鎖がまた、骨格鎖の炭素原子に結合する酸素、六価のイオウ、および三価の窒素原子などの1つ以上のカテナリーヘテロ原子も任意に含むことができる2〜約20個の炭素原子を含有する、置換または非置換であってもよいアルキルまたはアリール基として互いに独立して選択される)
によって記述されてもよい。
n、x、y、およびzは描写された界面活性剤中の反復単位の数を示し、界面活性剤中の酸化ポリエチレンの重量%が、20〜80%、好ましくは40〜70%、最も好ましくは40〜60%であるように選択される。描写された式中の反復シロキサン単位は、界面活性剤分子中に無作為に位置してもよいものと理解される。
Qは多価、概して二価の、結合基であり、または描写されたオキシアルキレン基にケイ素原子を結合する手段を提供する共有結合であり、Qは例えば−O−、−CO−、−CnH2nO−、または−OCnH2nO−(式中、nは1〜6の数である)を含有する基であるヘテロ原子含有基を含んでなることができ、
各Rはその骨格鎖が直鎖、分枝鎖、または十分に大きければ、環式、またはそれらのあらゆる組み合わせであってもよく、骨格鎖がまた、骨格鎖の炭素原子に結合する酸素、六価のイオウ、および三価の窒素原子などの1つ以上のカテナリーヘテロ原子も任意に含むことができる1〜約20個の炭素原子を含有する、置換または非置換であってもよいアルキル、アルコキシ、アリールまたはアリールオキシ基として互いに独立して選択される)
で表されてもよいオルガノシロキサン化合物を含む。式によって描写されるタイプの有用なシリコーン界面活性剤としては、ユニオン・カーバイド社(Union Carbide Corp.)から市販されるシルウェット(Silwet)(登録商標)L−77などのエトキシル化ポリジメチルシロキサンが挙げられる。
(Rf−Q)n−Z(II)
(式中、
Rfは直鎖、分枝鎖、または十分に大きければ、環式、またはそれらのあらゆる組み合わせであってもよい、少なくとも3個、好ましくは少なくとも4個、最も好ましくは4〜7個の完全にフッ素化された炭素原子を有するフルオロ脂肪族基である)で表されるものを含む。フルオロ脂肪族基中の骨格鎖は、骨格鎖の炭素原子に結合する酸素、六価のイオウ、および三価の窒素原子などの1つ以上のカテナリーヘテロ原子を含むことができる。完全にフッ素化されたフルオロ脂肪族基が好ましいが、各2個の炭素原子に対して1つ以下のいずれかの原子が存在するならば、置換基として水素または塩素原子が存在してもよい。Rfは多数の炭素原子を含有できるが、より大きなラジカルは、通常、より短い鎖で可能なよりもフッ素のより低効率の利用を意味するので、Rfが20個以下の炭素原子である化合物が適切であり好ましい。約4〜約7個の炭素原子を含有するフルオロ脂肪族ラジカルが最も好ましい。概してRfは、約40〜約78重量%のフッ素を含有する。Rf基の末端部分は、好ましくは例えばC3F7−などの少なくとも3個の完全にフッ素化された炭素原子を含有し、特に好ましい化合物は、例えばCF3(CF2)n−のようにRfがペルフルオロアルキルである場合のように、その中でRf基が完全にまたは実質的に完全にフッ素化されたものである。適切なRf基としては、例えばC4F9−、C6F13CH2CH2−、およびC10F21CH2CH2−が挙げられる。
上の式II中のZはポリ(オキシアルキレン)基である(OR’)x、(式中、R’は−CH2CH2−、−CH2CH2CH2−、−CH(CH3)CH2−、および−CH(CH3)CH(CH3)−などの2〜約4個の炭素原子を有するアルキレン基であり、xは約4〜約25の数である)を含んでなる非イオン性の親水性基であり、Zは好ましくはポリ(オキシエチレン)基を含有する。前記ポリ(オキシアルキレン)中のオキシアルキレン単位はポリ(オキシプロピレン)中などのように同一であり、または無作為に分布するオキシエチレンおよびオキシプロピレン単位、すなわちポリ(オキシエチレン−コ−オキシプロピレン)のヘテリックな直鎖または分枝鎖中などのように、またはオキシプロピレン単位の直鎖または分枝鎖ブロック中のように混合物として存在する。ポリ(オキシアルキレン)鎖は、このような連鎖がポリ(オキシアルキレン)鎖の水溶化を実質的に変化させないならば、Zが式−O−CH2−CH(O)−CH2−O−の基を含む場合のように、1つ以上のカテナリー連鎖によって中断でき、またはそれを含むことができる。Z基は例えば−OCH3、−OCH2CH3、−OC6H4C(CH3)2CH2C(CH3)2CH3、−OC6H4(C9H19)2、−OC12H25、−OC14H29、−OC16H33、または−O−QRf(式中、QおよびRf前出で定義されたとおり)などのヒドロキシル、アルキルエーテル(C1〜C20アルキルエーテルなど)、アルカリールエーテル、またはフルオロアルキルエーテルで終結してもよく、
nは1〜6の数である。
表面濡れスクリーニング試験
この試験は、表面の表面濡れ能力の定性的測定である。10μLの設定容量の脱イオン水を緩慢にシリンジから試験材料上面に直接のせて、約15分間にわたり水滴が表面を濡らすか、または丸まってビーズになるかどうかを観察した。結果は、水滴が表面を濡らせば「濡れる」と示し、または水滴が表面で丸まってビーズになれば「ビーズになる」と示した。
この試験は、表面が微生物の生育を阻害する能力の半定性的測定である。これはリン酸緩衝食塩水(PBS)中1mLあたりおよそ1×108のコロニー形成単位(cfu)の濃度で、黄色ブドウ球菌(Staphylococcus aureus)(S.aureus、米国微生物系統保存機関(ATCC)番号25923)、大腸菌(Escherichia coli)(E.coli、ATCC番号12229)およびカンジダ・アルビカンス(Candida albicans)(C.albicans、ATCC番号10231)の別個の溶液を調製して実施された。これらの懸濁液を使用して、滅菌綿アプリケータを溶液に浸し、別個のトリプチケースソイ寒天(TSA)プレートの乾燥した表面に、異なる3方向に塗って微生物のローンを調製する。各サンプルからの3個の7−ミリメートルディスクを接種済みプレートにのせて、滅菌ピンセットで寒天表面にしっかり押しつけて、確実に完全に接触させる。次にプレートを28℃±1℃で24時間インキュベートする。サンプルの直下とそれを取り囲む領域を微生物の生育について調べる。阻害アッセイの結果は、サンプルあたり3個のディスクの平均である。阻害ゾーンは、7−mmサンプルディスクを含めたゾーンの直径として報告される。一次ゾーン(1°)はその中に可視生育を示さない。二次ゾーン(2°)はその中に阻害された生育を示す。いくつかのサンプルは1タイプのゾーンのみを有するのに対し、その他は双方を有するかもしれない。
この試験は、表面が微生物の生育を阻害する能力の半定性的測定である。プラスミド遺伝子挿入によって「lux」遺伝子が中に挿入された細菌を光強度測定カメラで分析する。抗微生物剤が効くと、サンプルの光度は低下する。使用した細菌株はLB Amp寒天上の大腸菌(E.coli)DH5α「lux」であった。大腸菌(E.coli)はグラム陰性細菌である。異なる濃度の細菌を使用した。これらの濃度は、1mLあたり109個の細菌の存在で1.0(可視)の吸光度を基準とするUV−Vis分光計での光学濃度試験に基づいた。これらの試験を通じて、最も明白な結果が109細菌の濃度で現れた。各フィルターに0.1mLのサンプルを添加し、次にそれを吸引して寒天プレートにのせた。1個の覆われていない対照を残しながら、その他のフィルターを負の対照と抗微生物剤混合物双方の接着剤ディスクで覆った。これらのディスクを概して2、4、6時間の異なる時間置いたままにして、その後それらを除去した。曝露時間1分間、識別レベル50、および時間間隔1時間で光強度カメラにより読み取りを行った。
1片の1インチ(2.5cm)幅の試験テープを光輝焼鈍仕上げを有する2インチ×5インチ×1/16インチ(5×12.7×0.15センチメートル)寸法の304号ステンレス鋼の清潔なプレートに被着した。4.5kgのローラーを2回通過させて、テープをロールダウンした。引張り試験機を使用して、180度の角度および12インチ/分(300ミリメートル/分)の速度でテープを剥離した。剥離力をオンス/インチで記録して、ニュートン/2.5センチメートルに変換した。平均値を報告した。
パートI:接着剤サンプルの調製
接着剤−1および10重量%の添加剤−1の混合物を調製し、ドクターナイフによってライナー−1上に6ミルの厚さで被覆して室温で3日間乾燥させ、およそ2.4ミルの乾燥接着剤厚を得た。乾燥させた接着剤中の添加剤−1の最終濃度は、およそ21.7重量%であった。
布帛−1の2個のサンプルに接着剤サンプルをラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルの2本のテープを調製した。剥離ライナーをこれらの各テープから除去し、各テープの接着剤面をガラススライドにラミネートして3層ラミネートを形成した。1個のラミネートを85℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、サンプルラミネートを27日間に至るまで毎日試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
添加剤のない接着剤−1を上の実施例1パートIで述べられるようにして被覆した。
布帛−1の2個のサンプルに接着剤サンプルをラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルの2本のテープを調製した。剥離ライナーをこれらの各テープから除去し、各テープの接着剤面をガラススライドにラミネートして3層ラミネートを形成した。1個のラミネートを85℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、サンプルラミネートを27日間に至るまで毎日試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例1パートIで述べられるようにして、添加剤−1を添加した接着剤−1を被覆した。
布帛−2の3個のサンプルに接着剤サンプルをラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルの2本のテープを調製した。剥離ライナーをこれらの各テープから除去し、各テープの接着剤面をガラススライドにラミネートして3層ラミネートを形成した。1個のラミネートを85℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、サンプルラミネートを27日間に至るまで毎日試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例1パートIで述べられるようにして、添加剤のない接着剤−1を被覆した。
布帛−2の3個のサンプルに接着剤サンプルをラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルの2本のテープを調製した。剥離ライナーをこれらの各テープから除去し、各テープの接着剤面をガラススライドにラミネートして3層ラミネートを形成した。1個のラミネートを85℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、サンプルラミネートを27日間に至るまで毎日試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例1パートIで述べられるようにして、添加剤−1を添加した接着剤−1を被覆した。
布帛−3の2個のサンプルに接着剤サンプルをラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルの2本のテープを調製した。剥離ライナーをこれらの各テープから除去し、各テープの接着剤面をガラススライドにラミネートして3層ラミネートを形成した。1個のラミネートを85℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、サンプルラミネートを27日間に至るまで毎日試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例1パートIで述べられるようにして、添加剤のない接着剤−1を被覆した。
布帛−3の2個のサンプルに接着剤サンプルをラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルの2本のテープを調製した。剥離ライナーをこれらの各テープから除去し、各テープの接着剤面をガラススライドにラミネートして3層ラミネートを形成した。1個のラミネートを85℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、サンプルラミネートを27日間に至るまで毎日試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
接着剤−1および10重量%の添加剤−1の混合物を調製し、ドクターナイフによってライナー−1上に8ミルの厚さで被覆し、室温で1日間乾燥させて、およそ4ミル厚さの乾燥接着剤を得た。乾燥させた接着剤中の添加剤−1の最終濃度は、およそ21.7重量%であった。
膜−1の3個のサンプルに接着剤サンプルをラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルの3本のテープを調製した。剥離ライナーをこれらテープの内2本から除去し、各テープの接着剤面をガラススライドにラミネートして3層ラミネートを形成した。1個のラミネートを80℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、サンプルラミネートを3日間毎日試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例4パートIで述べられるようにして、添加剤のない接着剤−1を被覆した。
膜−1の3個のサンプルに接着剤サンプルをラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルの3本のテープを調製した。剥離ライナーをこれらテープの内2本から除去し、各テープの接着剤面をガラススライドにラミネートして3層ラミネートを形成した。1個のラミネートを80℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、サンプルラミネートを3日間毎日試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
接着剤−1、5重量%の添加剤−2、および5重量%の添加剤−3の混合物を調製し、ドクターナイフによってライナー−2上に8ミルの厚さで被覆し、室温で1日間乾燥させて、およそ4ミル厚さの乾燥接着剤を得た。乾燥させた接着剤中の添加剤−2および添加剤−3の最終濃度は、それぞれおよそ10.8重量%であった。
膜−1の3個のサンプルに接着剤サンプルをラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルの3本のテープを調製した。1個のラミネートを80℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、これらのサンプルラミネートを1日後に試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例5パートIで述べられるようにして、添加剤のない接着剤−1を被覆した。
接着剤サンプルを膜−1の2個のサンプルにラミネートして、上のパートIで調製された接着剤サンプルの2本のテープを調製した。1個のラミネートを80℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、これらのサンプルラミネートを1日後に試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
接着剤−1、10重量%の添加剤−2、および10重量%の添加剤−4の混合物を調製し、ドクターナイフによってライナー−2上に8ミルの厚さで被覆し、室温で1日間乾燥させて、およそ4ミル厚さの乾燥接着剤を得た。乾燥させた接着剤中の添加剤−2および添加剤−4の最終濃度は、それぞれおよそ23.3重量%および2.3重量%であった。
膜−1の2個のサンプルに接着剤サンプルをラミネートして、上の実施例6のパートIで調製した接着剤サンプルの2本のテープを調製した。1個のラミネートを室温で老化させ、上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって3日間にわたり試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例6パートIで述べられるようにして、添加剤のない接着剤−1を被覆した。
接着剤サンプルを膜−1のサンプルにラミネートして、上のパートIで調製された接着剤サンプルのテープを調製した。ラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、サンプルラミネートを3日間毎日試験した。結果を表1に示す。
接着剤サンプルを膜−1の2個のサンプルにラミネートして、上のパートIで調製された接着剤サンプルの2本のテープを調製した。1個のラミネートを80℃のオーブンに入れて老化させ、第2のラミネートを室温で老化させた。上述の試験方法を使用して、表面濡れスクリーニング試験によって、これらのサンプルラミネートを3日間毎日試験した。結果を表1に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例7パートIで述べられるようにして、添加剤のない接着剤−1を被覆した。
接着剤サンプルをフィルム−1のサンプルにラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルのテープを調製した。ラミネートを室温で8日間老化させた。次にラミネートのフィルム表面を表を下にして、接種済み寒天表面に注意深くのせ、上述の阻害ゾーンのアッセイを通じて試験した。結果を表2に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例5パートIで述べられるのと同一様式で、接着剤−1、添加剤−2、および添加剤−3を含有する接着剤サンプルを調製した。
接着剤サンプルをフィルム−1のサンプルにラミネートして、上の実施例8パートIで調製した接着剤サンプルのテープを調製した。ラミネートを室温で老化させた。ラミネートを室温で8日間老化させた。次にラミネートのフィルム表面を表を下にして、接種済み寒天表面に注意深くのせ、上述の阻害ゾーンのアッセイを通じて試験した。結果を表2に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例5パートIで述べられるのと同一様式で、接着剤−1、添加剤−2、および添加剤−3を含有する接着剤サンプルを調製した。
接着剤サンプルをフィルム−2のサンプルにラミネートして、上の実施例9パートIで調製した接着剤サンプルのテープを調製した。ラミネートを室温で老化させた。ラミネートを室温で8日間老化させた。次にラミネートのフィルム表面を表を下にして、接種済み寒天表面に注意深くのせ、上述の阻害ゾーンのアッセイを通じて試験した。結果を表2に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例5パートIで述べられるようにして、添加剤のない接着剤−1を被覆した。
接着剤サンプルをフィルム−2のサンプルにラミネートして、上のパートIで調製した接着剤サンプルのテープを調製した。ラミネートを室温で8日間老化させた。次にラミネートのフィルム表面を表を下にして、接種済み寒天表面に注意深くのせ、上述の阻害ゾーンのアッセイを通じて試験した。結果を表2に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
接着剤−2(酢酸エチル中に溶解して40%溶液を得る)および5重量%の添加剤−7の混合物を調製して、ドクターナイフでライナー−1の上に被覆し、93℃(200°F)の循環空気オーブン内で15分間乾燥させて、およそ30μm(1.2ミル)の乾燥接着剤厚さを得た。
接着剤サンプルをフィルム1のサンプルにラミネートして、上のパートIで調製された接着剤サンプルのテープを調製した。テープから剥離ライナーを除去し、鋼に対する接着性を上述のように試験した。結果を表3に示す。試験方法で述べられるフィルター上にディスクをのせて、テープのバイオルミネセンス試験を上述のように行った。結果を表3に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例10パートIで述べられるようにして、添加剤のない接着剤−2を被覆した。
上の実施例10パートIIで述べられるのと同一手順に従った。結果を表3に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
接着剤−3と2重量%(実施例11A)および0.2重量%(実施例11B)の添加剤−8との混合物を調製して、ドクターナイフでライナー−1の上に被覆し、93℃(200°F)の循環空気オーブン内で15分間乾燥させて、およそ30μm(1.2ミル)の乾燥接着剤厚さを得た。
接着剤サンプルをフィルム−1のサンプルにラミネートして、上のパートIで調製された接着剤サンプルのテープを調製した。次にテープのフィルム表面を表を下にして、接種済み寒天表面に注意深くのせ、(大腸菌(E.coli)を使用して)上述の阻害ゾーンのアッセイを通じて試験した。結果を表4に示す。
パートI:接着剤サンプルの調製
上の実施例11パートIで述べられるようにして、添加剤のない接着剤−3を被覆した。
上の実施例11パートIIで述べられるのと同一手順に従った。結果を表4に示す。
Claims (40)
- 第1の表面、および第2の表面に結合する接着剤層を有する第2の表面を有する熱可塑性ポリマー層を含んでなる抗微生物性物品であって、前記接着剤層が前記ポリマー層の前記第1の表面に移動する抗微生物剤を含んでなる、抗微生物性物品。
- 前記ポリマー層が、フィルム、多孔質膜、微多孔質膜、および繊維ポリマー層を含んでなる、請求項1に記載の抗微生物性物品。
- 前記抗微生物剤が、ヨウ素およびヨードフォア、クロルヘキシジン塩、パラクロロメタキシレノール、トリクロサン、ヘキサクロロフェン、グリセロール及びプロピレングリコールの脂肪酸モノエステル、フェノール、ポリ四級アミン、四級シラン、過酸化水素、銀および銀塩、酸化銀およびスルファジアジン銀から選択される、請求項1に記載の抗微生物性物品。
- 前記脂肪酸モノエステルが、グリセロールモノラウレート、グリセロールモノカプリレート、グリセロールモノカプレート、プロピレングリコールモノラウレート、プロピレングリコールモノカプリレート、プロピレングリコールモノカプロエートから選択される、請求項3に記載の抗微生物性物品。
- 前記接着剤層が、前記抗微生物剤の漸進的な放出のためのレザバーを提供する、請求項1に記載の抗微生物性物品。
- 前記接着剤層が、少なくとも0.25重量%の前記抗微生物剤を含んでなる、請求項5に記載の抗微生物性物品。
- 前記接着剤層が、0.25〜40重量%の前記抗微生物剤を含んでなる、請求項6に記載の抗微生物性物品。
- 前記ポリマー層が、ポリエステル、ポリウレタン、ポリアミド、およびポリオレフィンから選択される、請求項1に記載の抗微生物性物品。
- 前記ポリマー層が、脂肪族モノ−αオレフィンのホモポリマーおよびコポリマーから選択される、請求項1に記載の抗微生物性物品。
- 前記ポリマー層が、エチレンおよびプロピレンのホモ−、コ−およびターポリマーから選択される、請求項1に記載の抗微生物性物品。
- 前記接着剤層が感圧接着剤層である、請求項1に記載の抗微生物性物品。
- 剥離ライナーをさらに含んでなる、請求項1に記載の抗微生物性物品。
- 前記熱可塑性ポリマー層がパターン化されている、請求項1に記載の抗微生物性物品。
- 前記接着剤層がパターン化されている、請求項1に記載の抗微生物性物品。
- 前記熱可塑性ポリマー層が非延性ポリマー層である、請求項1に記載の物品。
- 前記接着剤層が再配置できる接着剤層である、請求項1に記載の物品。
- 前記熱可塑性ポリマー層が、25℃で10×10-10cm2/sを超える拡散定数を有する、請求項1に記載の物品。
- 前記熱可塑性ポリマー層が、25℃で100×10-10cm2/sを超える拡散定数を有する、請求項1に記載の物品。
- 前記接着剤層が、前記接着剤層中に分散した界面活性剤をさらに含んでなる、請求項1に記載の物品。
- 前記界面活性剤が、非イオン性、両性、およびアニオン性界面活性剤から選択される、請求項19に記載の物品。
- 前記界面活性剤が、接着剤層の重量に対して少なくとも0.05重量%の量で存在する、請求項19に記載の物品。
- 請求項1に記載の複数の抗微生物性物品を含んでなる多層物品。
- スタックの形態の請求項22に記載の多層物品。
- 前記接着剤中に分散する前記抗微生物剤がデリバリシステムを含んで、このような抗微生物剤の接着剤層から隣接する熱可塑性ポリマー層中への移行を容易にし、抗微生物剤の補充を提供する、請求項1に記載の物品。
- 前記熱可塑性ポリマー層が約0℃未満のTgを有する、請求項1に記載の物品。
- (a)接着剤層中に少なくとも1つの抗微生物剤を分散するステップと、(b)接着剤層を熱可塑性ポリマー層に接着するステップと、を含んでなり、接着剤層がポリマー層に抗微生物剤レザバーを提供する、熱可塑性ポリマー層および接着剤層を含んでなる抗微生物性物品を提供する方法。
- 前記熱可塑性ポリマー層が、フィルム、膜、または繊維ポリマー層を含んでなる、請求項26に記載の方法。
- 前記抗微生物剤が、前記熱可塑性ポリマー層を抗微生物性にするのに十分な量で存在する、請求項26に記載の方法。
- 前記接着剤層が、少なくとも0.25重量%の前記抗微生物剤を含んでなる、請求項26に記載の方法。
- 前記熱可塑性ポリマー層が、25℃で10×10-10cm2/sを超える浸透係数を有する、請求項26に記載の方法。
- 前記接着剤層が前記熱可塑性ポリマー層上に被覆される、請求項26に記載の方法。
- 前記熱可塑性ポリマー層および前記接着剤層が同時押出しされる、請求項26に記載の方法。
- 前記ポリマー層が、ポリエステル、ポリウレタン、ポリアミド、およびポリオレフィンから選択される、請求項26に記載の方法。
- 前記ポリマー層が、脂肪族モノ−αオレフィンのホモ−、コ−、およびターポリマーから選択される、請求項26に記載の方法。
- 前記ポリマー層が、エチレンおよびプロピレンのホモ−、コ−、およびターポリマーから選択される、請求項26に記載の方法。
- 前記接着剤層が感圧接着剤層である、請求項26に記載の方法。
- 前記接着剤層が再配置できる接着剤層である、請求項26に記載の方法。
- 請求項1に記載の抗微生物性物品を含んでなる創傷包帯。
- 熱可塑性ポリマー表層、前記表層の少なくとも一部の上の接着剤層、バッキング層、および前記表層とバッキング層の間に配置されたゲル層を含んでなる創傷包帯であって、前記接着剤層が抗微生物剤を含有する、請求項38に記載の創傷包帯。
- 請求項1に記載の抗微生物性物品を含んでなる食品調製表面。
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