DE10123831A1 - Mikrobizide Folienstacksysteme - Google Patents

Mikrobizide Folienstacksysteme

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DE10123831A1
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Peter Ottersbach
Markus Oles
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Abstract

Die Erfindung betrifft die Herstellung und Verwendung mikrobizider Stacksysteme auf Basis selbstklebender Folien.

Description

Die Erfindung betrifft die Herstellung und die Verwendung mikrobizider Stacksysteme auf Basis selbstklebender Folien.
Die Verwendung von klinisch reinen Räumen gewinnt heute immer mehr an Bedeutung. Mit Hilfe mannigfaltiger Desinfektionsverfahren wird deshalb versucht, aseptische Bedingungen an entsprechend beanspruchten Orten zu erhalten.
Räume, die leicht zugänglich sind, stellen hierbei in der Regel nur ein untergeordnetes Problem dar. Als höchst problematisch erweisen sich aber Räume, die entweder in toto oder aber auch partiell nur sehr schwer zugänglich sind.
Solchermassen beanspruchte Zonen sind unter anderem Laminar-Flows und Sterilbänke, die insbesondere in mikrobilologischen Labors standardmässig Verwendung finden, Operationsräume, Isolierstationen, Inkubatoren, die eine ideale Umgebung für das Wachstum von Zellen und Bakterien darstellen und Innenverkleidungen von Klimaanlagen.
Das Aufbringen von Schutzfolien zur Innenverkleidung von derartigen Räumen ist bereits in DE 198 06 437 A1 beschrieben. Das beschriebene Verfahren dient zur Auskleidung eines Raums mit einer Folie als Schutz gegen Verschmutzung, z. B. während Maler- oder Bauarbeiten. Eine antimikrobielle Wirkung der Folien wird hier aber nicht beschrieben.
DE 197 30 193 A1 beschreibt selbstklebende Schutzfolien für die Außenseite von lackierten Fahrzeugen als Montage- oder Transportschutz. Auch hier wird eine antimikrobielle Wirkung der Schutzfolien nicht offenbart.
Nachteilig ist bei diesem Verfahren, das eine verschmutzte Oberfläche nur durch Austausch der gesamten Folie zu erneuern ist.
Antimikrobielle Folien sind dagegen aus DE 101 02 901.2 bekannt. Diese Folien dienen als Inzisionsfolien bei Operationen und sind daher nur für den einmaligen Gebrauch ausgelegt. Die Folien sind darüber hinaus mit einem Hauthaftkleber ausgestattet, der wasserlöslich ist. Ein Einsatz dieser Folien in einer humiden Umgebung führt daher zur Ablösung der Folien vom Untergrund.
Aus der europäischen Patentanmeldungen 0 862 858 ist bekannt, daß Copolymere von tert.- Butylaminoethylmethacrylat, einem Methacrylsäureester mit sekundärer Aminofunktion, inhärent mikrobizide Eigenschaften besitzen. Die antimikrobielle Wirksamkeit dieser polymeren Systeme ist eng mit ihrer dreidimensionalen Struktur, Konformation und verfügbaren Oberfläche verbunden. Sie eignen sich vor allem in Anwendungsbereichen, in denen es auf einen langanhaltenden, oberflächenaktiven Schutz vor mikrobiellem Angriff ankommt.
Antimikrobielle Polymere, die als Folienbeschichtung dienen könnten, sind z. B. aus den folgenden Patentanmeldungen bekannt: DE 100 24 270, DE 100 22 406, PCT/EP 00/06501, DE 100 14 726, DE 100 08 177, PCT/EP 00/06812, PCT/EP 00/06487, PCT/EP 00/06506, PCT/EP 00/02813, PCT/EP 00/02819, PCT/EP 00/02818, PCT/EP 00/02780, PCT/EP 00/02781, PCT/EP 00/02783, PCT/EP 00/02782, PCT/EP 00/02799, PCT/EP 00/02798, PCT/EP 00/00545, PCT/EP 00/00544.
Diese Polymere enthalten keine niedermolekularen Bestandteile; die antimikrobiellen Eigenschaften sind auf den Kontakt von Bakterien mit der Oberfläche zurückzuführen.
Um unerwünschten Anpassungsvorgängen der mikrobiellen Lebensformen, gerade auch in Anbetracht der aus der Antibiotikaforschung bekannten Resistenzentwicklungen von Keimen, wirksam entgegenzutreten, müssen auch zukünftig Systeme auf Basis neuartiger Zusammensetzungen und verbesserter Wirksamkeit entwickelt werden. Daneben spielen anwendungstechnische und ökonomische Fragestellungen eine ebenso bedeutende Rolle, da einerseits die antimikrobiellen Polymere oftmals mit anderen Kunststoffen zusammen verarbeitet werden, um deren Resistenz gegenüber mikrobiologischen Angriffen zu stärken bzw. diese im Idealfall gänzlich zu inertisieren, andererseits die Kosten zur antimikrobiellen Ausrüstung von Oberflächen noch wettbewerbsfähig sein müssen.
In den oben genannten Patentanmeldungen versucht man das Problem durch Herstellung antimikrobieller Polymere zu lösen, die nachträglich auf Kunststoffoberflächen aufgebracht und fixiert werden.
Diese Systeme haben den Nachteil, dass sie bei längerer Anwendung durch abgetötete Bakterien belegt werden und so ihre kontaktmikrobizide Wirkung verlieren bzw. diese nicht mehr in ausreichendem Maße zur Verfügung steht.
Aufgabe der vorliegenden Erfindung war es daher, ein System bereitzustellen, das eine antimikrobielle Wirkung über einen längeren Zeitraum gewährleisten kann.
Es wurde gefunden, dass dies durch Einsatz antimkrobieller Polymere zur Herstellung von antimikrobiellen Stacksystemen auf Folienbasis in ökonomisch attraktiver und toxikologisch unbedenklicher Weise möglich ist.
Gegenstand der vorliegenden Erfindung sind daher antimikrobielle Stacksysteme auf Basis von Folien, wobei mindestens zwei Folien, die jeweils eine antimikrobielle Vorderseite und eine klebfähige Rückseite aufweisen, aufeinander geklebt werden.
Die Zahl der aufeinander geklebten Folien beträgt zweckmäßigerweise 2-10, bevorzugt 3-8. Bei einem antimikrobiellen Folienstack handelt es sich im Prinzip um eine Aufbringung mehrerer Folienschichten übereinander. Jede einzelne Folie dieses Stacks besitzt zwei sehr unterschiedliche Seiten. Auf der Oberseite befindet sich die Wirkkomponente, in diesem Fall das antimikrobielle Polymer, durch welches die Funktionalität der Folie aus mikrobiologischer Sicht charakterisiert wird. Auf der Rückseite befindet sich ein Adhäsivkleber, der einerseits die Rückseite der Folie mit der darunterliegenden Folie sicher verbindet, der sich andererseits aber beim Abziehen der obenliegenden Folie rückstandsfrei von der Oberseite der darunterliegenden Folie trennen lässt, wodurch die dann frische Fläche wieder eine nativ wirksame antimikrobielle Oberfläche darstellt. Entsprechende Adhäsivkleber sind in weitem Umfang kommerziell erhältlich, z. B. entsprechende Kleber für Firma Neschen, wie das Neschenprodukt Gudy 804. Das Auftragen erfolgt im Allgemeinen über Abziehen, Aufsprühen oder Aufrakeln.
Durch das Aufbringen der erfindungsgemäßen Stacksysteme wird zum einen verhindert, das sich in Kanten und Ritzen Bakterien oder Pilze festsetzen können und dort ungehindert weiterwachsen, und zum anderen wird die Besiedelung solcher Oberflächen aktiv verhindert. Der Folienstack bietet darüber hinaus den Vorteil, kontaminierte Flächen durch einfaches Abziehen der obersten Folie elegant und effizient jederzeit erneuern zu können.
Der Anteil des antimikrobiellen Polymeren in den einzelnen Folien kann in weiten Grenzen schwanken, ohne das der antimikrobielle Effekt zu gering wird, so z. B. von 0,5 bis 95 Gew.- %, bevorzugt 1 bis 20 Gew.-%.
Hierbei kann das antimikrobielle Polymer entweder unmittelbar bei der Herstellung der Folien, z. B. bei der Extrusion bzw. der Blasformung, mit eingearbeitet oder aber nachträglich in Form einer Beschichtung, z. B. als Teil eines Lackes oder Harzes, auf diese aufgebracht werden. Hierdurch erhält man als Ergebnis eine mit antimikrobiellem Polymer imprägnierte Oberfläche der Folie.
Es ist auch möglich, das die Folien aus einem Polymerblend, von antimikrobiellen Polymeren mit mindestens einem weiteren Polymeren oder aus einem Copolymerisat der jeweiligen Monomeren besteht.
Im Falle der Beschichtung sind neben Polymerfolien auch Metallfolien, z. B. für Anwendungen bei erhöhten Temperaturen, anwendbar.
Die so behandelten Oberflächen zeigen eine antimikrobielle Wirksamkeit die dauerhaft, und gegen physikalische Beanspruchungen widerstandsfähig ist. Diese Beschichtungen enthalten keine niedermolekularen Biozide, was eine Migration toxikologisch problematischer Stoffe über den gesamten Nutzungszeitraum hinweg effektiv ausschließt.
Bevorzugt werden zur Herstellung der antimikrobiellen Polymere Stickstoff und Phosphorfunktionalisierte Monomere eingesetzt, insbesondere eines oder mehrere der folgenden Monomere:
Methacrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, Meth­ acrylsäure-2-diethylaminomethylester, Acrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester, Acrylsäure-3- dimethylaminopropylester, Acrylsäure-2-diethylaminoethylester, Acrylsäure-2-dimethylamino­ ethylester, Dimethylaminopropylmethacrylamid, Diethylaminopropylmethacrylamid, Acryl­ säure-3-dimethylaminopropylamid, 2-Methacryloyloxyethyltrimethylammoniummethosulfat, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, 2-Methacryloyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 3-Methacryloylaminopropyltrimethylammoniumchlorid, 2-Methacryloyloxyethyltrimethyl­ ammoniumchlorid, 2-Acryloyloxyethyl-4-benzoyldimethylammoniumbromid, 2-Meth­ acryloyloxyethyl-4-benzoyldimethylammoniumbromid, Allyltriphenylphosphoniumbromid, Allyltriphenylphosphoniumchlorid, 2-Acrylamido-2-methyl-1-propansulfonsäure, 2-Diethylami­ noethylvinylether und/oder 3-Aminopropylvinylether.
Sofern die Folie aus Polymeren besteht oder enthält, können dies Polypropylen, Polyamide, Polysulfoxide, Polysiloxane, Polyurethane, Polystyrol, Polyvinylchlorid, Polymethylmethacrylat, Polyethylen, Polyethylenterephthalat, Cellulose, Cellulosederivate, Polyacrylsäure, Polysilikone oder Polyurethane deren Blends oder Copolymere sein.
Wird als Folie ein Copolymerisat aus den Monomeren der antimikrobiellen Polymeren und Monomeren von einem oder mehreren weiteren Polymeren eingesetzt, so werden bevorzugt Monomere oder Oligomere der o. g. Polymeren verwendet.
Verwendung der antimikrobiellen Stacksysteme
Weitere Gegenstände der vorliegenden Erfindung sind die Verwendung der erfindungsgemäßen Stacksysteme als antimikrobielle Schutzfolien in Laminar-Flows, Sterilbänken, Operationsräumen, Isolierstationen, Inkubatoren, Bodenbelag und Innenverkleidungen von Klimaanlagen.
Zur weiteren Beschreibung der vorliegenden Erfindung werden die folgenden Beispiele gege­ ben, die die Erfindung weiter erläutern, nicht aber ihren Umfang begrenzen sollen, wie er in den Patentansprüchen dargelegt ist.
Beispiel 1
50 ml Dimethylaminopropylmethacrylamid (Fa. Aldrich) und 250 ml Ethanol werden in einem Dreihalskolben vorgelegt und unter Argonzustrom auf 65°C erhitzt. Danach werden 0,6 g Azobisisobutyronitril gelöst in 20 ml Ethylmethylketon unter Rühren langsam zugetropft. Das Gemisch wird auf 70°C erhitzt und 72 Stunden bei dieser Temperatur gerührt. Nach Ablauf dieser Zeit wird die Reaktionsmischung in 1,5 l VE-Wasser eingerührt, wobei das polymere Produkt ausfällt. Nach Abfiltrieren des Produktes wird der Filterrückstand mit 100 ml einer Mischung aus Ethanol/VE-Wasser im Verhältnis 1 : 1 gespült, um noch vorhandene Rest­ monomere zu entfernen. Im Anschluß wird das Produkt für 24 Stunden bei 50°C im Vakuum getrocknet. 2 g des Produktes werden in 10 g Ethanol gelöst und mit einem 100 Mikrometer Rakel auf eine 4 mal 6 cm große Polyethylenfolie aufgetragen. Die Folie wird im Anschluß bei 50°C für 24 Stunden getrocknet.
Beispiel 1a
Die Rückseiten von jeweils vier Folien aus Beispiel 1 werden dem Folienkleber Gudy 804 der Firma Neschen beschichtet. Im Anschluss werden die so mit Kleber beschichteten Folienrückseiten auf die jeweiligen Folienvorderseiten aufgesetzt, so dass sich letztlich ein Stack aus vier miteinander verbundenen Folien ergibt. Die noch frei gebliebene Kleberückseite wird nun auf den Boden einer Petrischale geklebt.
Auf diesen Folienstack wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung konnten keine Keime von mehr Pseudomonas aeruginosa nachgewiesen werden.
Beispiel 1b
Von dem Folienstack aus Beispiel 1a wird die oberste Folie abgezogen. Diese frische Oberfläche wird mit einem Gemisch aus 100 Millimolarer Magnesiumsulfatlösung und 10% iger Seifenlauge bestrichen. Auf diesen so vorbereiteten Stack wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung ergab sich eine Keimzahl von 106 Keime pro mL
Beispiel 1c
Von dem Folienstack aus Beispiel 1b wird die oberste Folie abgezogen. Auf diese frische Oberfläche wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37 °C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung konnten keine Keime von mehr Pseudomonas aeruginosa nachgewiesen werden.
Beispiel 2
50 ml tert.-Butylaminoethylmethacrylat (Fa. Aldrich) und 250 ml Ethanol werden in einem Dreihalskolben vorgelegt und unter Argonzustrom auf 65°C erhitzt. Danach werden 0,6 g Azobisisobutyronitril gelöst in 20 ml Ethylmethylketon unter Rühren langsam zugetropft. Das Gemisch wird auf 70°C erhitzt und 72 Stunden bei dieser Temperatur gerührt. Nach Ablauf dieser Zeit wird die Reaktionsmischung in 1,5 l VE-Wasser eingerührt, wobei das polymere Produkt ausfällt. Nach Abfiltrieren des Produktes wird der Filterrückstand mit 100 ml einer Mischung aus Ethanol/VE-Wasser im Verhältnis 1 : 1 gespült, um noch vorhandene Rest­ monomere zu entfernen. Im Anschluß wird das Produkt für 24 Stunden bei 50°C im Vakuum getrocknet. 2 g des Produktes werden in 10 g Ethanol gelöst und mit einem 100 Mikrometer Rakel auf eine 4 mal 6 cm große Polyethylenfolie aufgetragen. Die Folie wird im Anschluß bei 50°C für 24 Stunden getrocknet.
Beispiel 2a
Die Rückseiten von jeweils vier Folien aus Beispiel 2 werden dem Folienkleber Gudy 804 der Firma Neschen beschichtet. Im Anschluss werden die so mit Kleber beschichteten Folienrückseiten auf die jeweiligen Folienvorderseiten aufgesetzt, so dass sich letztlich ein Stack aus vier miteinander verbundenen Folien ergibt. Die noch frei gebliebene Kleberückseite wird nun auf den Boden einer Petrischale geklebt.
Auf diesen Folienstack wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung konnten keine Keime von mehr Pseudomonas aeruginosa nachgewiesen werden.
Beispiel 2b
Von dem Folienstack aus Beispiel 2a wird die oberste Folie abgezogen. Diese frische Oberfläche wird mit einem Gemisch aus 100 Millimolarer Magnesiumsulfatlösung und 10% iger Seifenlauge bestrichen. Auf diesen so vorbereiteten Stack wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung ergab sich eine Keimzahl von 105 Keime pro mL.
Beispiel 2c
Von dem Folienstack aus Beispiel 2b wird die oberste Folie abgezogen. Auf diese frische Oberfläche wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37 °C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung konnten keine Keime von mehr Pseudomonas aeruginosa nachgewiesen werden.
Beispiel 3
90 ml Methacrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester (Fa. Aldrich) und 180 ml Ethanol werden in einem Dreihalskolben vorgelegt und unter Argonzustrom auf 65°C erhitzt. Danach werden 0,745 g Azobisisobutyronitril gelöst in 20 ml Ethylmethylketon unter Rühren langsam zugetropft. Das Gemisch wird auf 70°C erhitzt und 72 Stunden bei dieser Temperatur gerührt.
Nach Ablauf dieser Zeit wird die Reaktionsmischung in 1 l entmineralisiertes Wasser eingerührt, wobei das polymere Produkt ausfällt. Nach Abfiltrieren des Produktes wird der Filterrückstand mit 100 ml einer 10%igen Lösung von Ethanol in Wasser gespült, um noch vorhandene Restmonomere zu entfernen. Im Anschluß wird das Produkt für 24 Stunden bei 50 °C im Vakuum getrocknet. 4 g des Produktes werden in 32 g Di-isononylphthalat gelöst. Anschließend werden dieser Mischung 64 g Polyvinylchloridgranulat zugegeben, wobei die Mischung innig verrührt bis sie pastös wird. 20 g der erhaltenen Paste werden mit einem Rakel so auf eine Metallplatte aufgestrichen, daß sich eine Schichtdicke von 0,7 mm Dicke einstellt. Die Platte mit der daraufliegenden Paste wird dann für 2 Minuten auf 200°C erhitzt, wobei die Paste geliert und eine Weich-PVC-Folie entsteht.
Beispiel 3a
Die Rückseiten von jeweils vier Folien aus Beispiel 3 werden dem Folienkleber Gudy 804 der Firma Neschen beschichtet. Im Anschluss werden die so mit Kleber beschichteten Folienrückseiten auf die jeweiligen Folienvorderseiten aufgesetzt, so dass sich letztlich ein Stack aus vier miteinander verbundenen Folien ergibt. Die noch frei gebliebene Kleberückseite wird nun auf den Boden einer Petrischale geklebt.
Auf diesen Folienstack wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung konnten keine Keime von mehr Pseudomonas aeruginosa nachgewiesen werden.
Beispiel 3b
Von dem Folienstack aus Beispiel 3a wird die oberste Folie abgezogen. Diese frische Oberfläche wird mit einem Gemisch aus 100 Millimolarer Magnesiumsulfatlösung und 10% iger Seifenlauge bestrichen. Auf diesen so vorbereiteten Stack wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung ergab sich eine Keimzahl von 107 Keime pro mL.
Beispiel 3c
Von dem Folienstack aus Beispiel 3b wird die oberste Folie abgezogen. Auf diese frische Oberfläche wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37 °C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung konnten keine Keime von mehr Pseudomonas aeruginosa nachgewiesen werden.
Beispiel 4
50 ml tert.-Butylaminoethylmethacrylat (Fa. Aldrich) und 250 ml Ethanol werden in einem Dreihalskolben vorgelegt und unter Argonzustrom auf 65°C erhitzt. Danach werden 0,6 g Azobisisobutyronitril gelöst in 20 ml Ethylmethylketon unter Rühren langsam zugetropft. Das Gemisch wird auf 70°C erhitzt und 72 Stunden bei dieser Temperatur gerührt. Nach Ablauf dieser Zeit wird die Reaktionsmischung in 1,5 l VE-Wasser eingerührt, wobei das polymere Produkt ausfällt. Nach Abfiltrieren des Produktes wird der Filterrückstand mit 100 ml einer Mischung aus Ethanol/VE-Wasser im Verhältnis 1 : 1 gespült, um noch vorhandene Rest­ monomere zu entfernen. Im Anschluß wird das Produkt für 24 Stunden bei 50°C im Vakuum getrocknet. 30 g des Produktes werden zusammen mit 1000 g PVC-Granulat compundiert. Im Anschluß wird das Compound mittels eines Laborextruders zu einer 4 cm breiten Folie extrudiert.
Beispiel 4a
Die Rückseiten von jeweils vier Folien aus Beispiel 4 werden dem Folienkleber Gudy 804 der Firma Neschen beschichtet. Im Anschluss werden die so mit Kleber beschichteten Folienrückseiten auf die jeweiligen Folienvorderseiten aufgesetzt, so dass sich letztlich ein Stack aus vier miteinander verbundenen Folien ergibt. Die noch frei gebliebene Kleberückseite wird nun auf den Boden einer Petrischale geklebt.
Auf diesen Folienstack wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung konnten keine Keime von mehr Pseudomonas aeruginosa nachgewiesen werden.
Beispiel 4b
Von dem Folienstack aus Beispiel 4a wird die oberste Folie abgezogen. Diese frische Oberfläche wird mit einem Gemisch aus 100 Millimolarer Magnesiumsulfatlösung und 10% iger Seifenlauge bestrichen. Auf diesen so vorbereiteten Stack wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung ergab sich eine Keimzahl von 106 Keime pro mL.
Beispiel 4c
Von dem Folienstack aus Beispiel 4b wird die oberste Folie abgezogen. Auf diese frische Oberfläche wird ein Tropfen einer Keimsuspension von Pseudomonas aeruginosa, welche eine Keimzahl von 107 Keime pro mL enthält, aufgebracht. Anschließend wird für 1 Stunde bei 37°C inkubiert. Nach Ablauf der Zeit wird der ursprüngliche Tropfen mit Wasser standardisierter Härte aufgenommen und einer Keimzahlbestimmung zugeführt. Als Ergebnis der Bestimmung konnten keine Keime von mehr Pseudomonas aeruginosa nachgewiesen werden.

Claims (9)

1. Antimikrobielle Stacksysteme auf Basis von Folien, dadurch gekennzeichnet, dass mindestens zwei Folien, die jeweils eine antimikrobielle Vorderseite und eine klebfähige Rückseite aufweisen, aufeinander geklebt werden.
2. Antimikrobielle Stacksysteme nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die Folien zu 0,5 bis 95 Gew.-% aus antimikrobiellen Polymeren bestehen.
3. Antimikrobielle Stacksysteme nach Anspruch 1 und 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Folien mit den antimikrobiellen Polymeren beschichtet sind.
4. Antimikrobielle Stacksysteme nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Folien aus einem Polymerblend aus den antimikrobiellen Polymeren und mindestens einem weiteren Polymeren bestehen.
5. Antimikrobielle Stacksysteme nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Folien aus einem Copolymerisat der Monomeren der antimikrobiellen Polymeren und den Monomeren mindestens eines weiteren Polymeren, bestehen.
6. Antimikrobielle Stacksysteme nach den Ansprüche 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet, dass die antimikrobiellen Polymere aus Stickstoff- und phosphorfunktionalisierten Monomeren hergestellt werden.
7. Antimikrobielle Stacksysteme nach den Ansprüchen 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, dass die antimikrobiellen Polymere aus einem oder mehreren Monomeren aus der Gruppe: Methacrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, Methacrylsäure-2-diethylaminomethylester, Acrylsäure-2-tert.-butylaminoethylester, Acrylsäure-3-dimethylaminopropylester, Acrylsäure-2-diethylaminoethylester, Acrylsäure- 2-dimethylaminoethylester, Dimethylaminopropylmethacrylamid, Diethylaminopropyl­ methacrylamid, Acrylsäure-3-dimethylaminopropylamid, 2-Methacryloyloxyethyltrimethyl­ ammoniummethosulfat, Methacrylsäure-2-diethylaminoethylester, 2-Methacryl­ oyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 3-Methacryloylaminopropyltrimethylammonium­ chlorid, 2-Methacryloyloxyethyltrimethylammoniumchlorid, 2-Acryloyloxyethyl-4- benzoyldimethylammoniumbromid, 2-Methacryloyloxyethyl-4-benzoyldimethyl­ ammoniumbromid, Allyltriphenylphosphoniumbromid, Allyltriphenylphosphoniumchlorid, 2-Acrylamido-2-methyl-1-propansulfonsäure, 2-Diethylaminoethylvinylether und/oder 3- Aminopropylvinylether hergestellt wurden.
8. Antimikrobielle Stacksysteme nach den Ansprüchen 1 bis 7, dadurch gekennzeichnet, dass die weiteren Polymere aus der Gruppe Polypropylen, Polyamide, Polysulfoxide, Polysiloxane, Polyurethane, Polystyrol, Polyvinylchlorid, Polymethylmethacrylat, Polyethylen, Polyethylenterephthalat, Cellulose, Cellulosederivate, Polyacrylsäure, Polysilikone, oder Polyurethane deren Blends oder Copolymere ausgewählt sind.
9. Verwendung der antimikrobiellen Stacksysteme gemäß Anspruch 1 bis 8 in Laminar- Flows, Sterilbänken, Operationsräumen, Isolierstationen, Inkubatoren, als Bodenbelag und als Innenverkleidungen von Klimaanlagen.
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