JP2006143729A - 非毒性の粘膜アジュバント - Google Patents
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Abstract
【課題】経口または鼻内のような粘膜表面に投与された場合、抗原の免疫原性を増大させるために使用され得る活性な粘膜アジュバントの提供。
【解決手段】非毒性の粘膜アジュバントを第２の抗原とともに混合して含有する薬学的組成物であって、１つの実施形態において、項上述の非毒性の粘膜アジュバントが細菌のADPリボシル化毒素の無毒化された変異体である、組成物であって、別の実施形態においいて、上述の非毒性の粘膜アジュバントがCTまたはLTの無毒化された変異体である、組成物。
【選択図】 なし
【解決手段】非毒性の粘膜アジュバントを第２の抗原とともに混合して含有する薬学的組成物であって、１つの実施形態において、項上述の非毒性の粘膜アジュバントが細菌のADPリボシル化毒素の無毒化された変異体である、組成物であって、別の実施形態においいて、上述の非毒性の粘膜アジュバントがCTまたはLTの無毒化された変異体である、組成物。
【選択図】 なし
Description
発明の分野
本発明は、生物にワクチンを投与するために有用なアジュバントに関する。特に、本発明のアジュバントは、ワクチンを粘膜表面へ送達し、分泌応答および全身的免疫応答を誘起させ得る。
本発明は、生物にワクチンを投与するために有用なアジュバントに関する。特に、本発明のアジュバントは、ワクチンを粘膜表面へ送達し、分泌応答および全身的免疫応答を誘起させ得る。
発明の背景
現在のワクチン接種技術は、大部分が専ら全身的なワクチン接種技術に基づいている。この技術では、ワクチンは、ワクチン接種される被験体に注射される。特定の生／弱毒化ワクチン（例えば、セービンポリオワクチン）が経口服用され得るのみである。
現在のワクチン接種技術は、大部分が専ら全身的なワクチン接種技術に基づいている。この技術では、ワクチンは、ワクチン接種される被験体に注射される。特定の生／弱毒化ワクチン（例えば、セービンポリオワクチン）が経口服用され得るのみである。
経口免疫技術の利点が幾倍かある。例えば、被験体に摂取され得るワクチンが、特に、取り扱うことまたは位置を確認することさえも難しいかもしれない被験体（例えば、家畜および野生動物）にとって、特殊化された装置が存在しなくても大規模に投与することがより容易であることは自明である。発展途上国での注射針の再利用による感染の拡大は、それにより避けられる。さらに、経口ワクチンは、食用固体の形態で提供され得、これは、極端な条件下で取り扱うことがより容易であり、そして現在使用されている液体懸濁物よりも安定である。
さらに、粘膜への免疫原の送達（例えば、経口または鼻内ワクチン接種による）は、分泌免疫応答の誘起を可能にする。
分泌免疫応答は、主にIgAに介され、全身的免疫応答とは実質上区別されるようである。全身的ワクチン接種は、分泌免疫応答の誘起には効果的でない。これは、しばしば被験体に腸または肺などの粘膜表面を横切って侵入する病原体に対する免疫を考慮した場合、無視できない欠点である。
不幸にも、大多数の抗原に対して、このような抗原を粘膜表面に曝すだけでは分泌免疫応答を誘起させ得ない。さらに、所定の抗原に対して分泌免疫応答を誘起し得るアジュバントは現在入手可能ではない。
明らかに困難であるのは、主に経口寛容として既知の現象のためである。腸および肺の内層は、本来、外来抗原に対して寛容であり、これが、摂取または吸入した物質（例えば、食物および空気中の粒子物質）に対する免疫応答を誘起させることを妨げる。
ADPリボシル化細菌毒素、すなわちジフテリア毒素、百日咳毒素(PT)、コレラ毒素(CT)、大腸菌熱不安定性毒素（LT1およびLT2）、Pseudomonasの内毒素Ａ、ボツリヌス菌C2およびC3毒素、ならびにC.perfringens、C.spiriforma、およびC.difficile由来の毒素は、ヒトにおいて強力な毒素である。これらの毒素は、モノマーで、酵素的に活性なＡサブユニット（これは、GTP結合タンパク質のADPリボシル化を招く）、および非毒性のＢサブユニット（これは、標的細胞の表面上のレセプターに結合し、そして細胞膜を横切ってＡサブユニットを送達する）から構成される。CTおよびLTの場合、Ａサブユニットは標的細胞の細胞内cAMPレベルを上昇させることが知られているが、Ｂサブユニットはペンタマーであり、そしてGM1ガングリオシドレセプターに結合する。
1975年および1978年の観察では、CTが、十二指腸に（すなわち粘膜表面に）投与された場合、それ自身に対する粘膜および全身的免疫を誘導し得ることが示された。CTの膜結合機能が、粘膜の免疫原性に必須であることが示されたが、CTのＢサブユニット(CTB)としても公知であるコレラトキソイドは、単離すると不活性であった(PierceおよびGowans,J.Exp.Med 1975; 142: 1550; Pierce, J.Exp Med 1978; 148: 195-206)。
続いて、CTが、同時に投与した抗原に対する全身的および粘膜免疫を誘導すること、言い換えれば、粘膜アジュバントとして機能するということが示された(Elson,Curr.Top.Microbiol. Immunal, 1989; 146: 29; ElsonおよびEalding,J.Immunol.1984; 133: 2892-2897; ElsonおよびEalding,同上, 1984; 132:2736-2741; Elsonら, J.Immunol.Methods 1984;67:101-118; LyckeおよびHomgren,Immunology 1986;59: 301-338)。
上記の実験はマウスで行った。これは、CTの毒性効果に対して比較的耐性を示す。対照的に、野生型CTは、ヒトに対して非常に毒性であり、何らかの実質的な残存毒性を有するCTを粘膜アジュバントとしてヒトに使用することは、全く問題外である。
従来技術において２つのアプローチが、CTの毒性の問題を提示してきた。第１のアプローチは、粘膜アジュバントとしてのCTBの使用に関する。CTBは、完全に非毒性である。
一連の実験で、CTBは、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)に共有結合しており、そしてマウスの十二指腸内に投与された。これにより、HRPに対する強力な粘膜免疫応答を生じた(McKenzieおよびHalsey,J.Immunol 1984; 133: 1818-1824)。
この結果は、実質的に他の抗原についても部分的に確認された(Liangら, J.Immunol 1988; 141:1495-1501; Czerkinskyら,Infect.Immun.1989; 57: 1072-1077)。同じ原理はまた、CTBをコードする配列に遺伝子融合することにより産生されるキメラ抗原を試験した場合に、効果的であることが確認された(DertzbaughおよびElson,Infect.Immun.1993; 61: 384-390; DertzbaughおよびElson, 同上 1993；61：48-55；Sanchezら,Res.Microbiol 1990; 141:971-979; Holmgrenら, Vaccine 1993; 11:1179-1184)。
しかし、キメラまたは結合した抗原の産生は、適切なワクチンの調製にさらなる工程を導入し、これは、本質的に、特に経口的に使用するためには、CTBに結合した形態で抗原が調製されることを必要とする。アジュバントが、抗原との単純混合物で投与され得る場合、より簡単でありそしてより経済的である。
同時投与されるCTBに対するアジュバントの効果は、多くの出版物で主張されている(Tamuraら,J.Immunol 1992; 149: 981-988; Hirabayashiら, Immunology 1992; 75:493-498; Gizurarsonら, Vaccine 1991; 9: 825-832; Kikutaら, Vaccine 1970; 8:595-599; Hirabayahiら, 同上 1990; 8; 243-248; Tamuraら, 同上 1989; 7:314-32-; Tamuraら, 同上 1989; 7: 257-262; Tamuraら, 同上 1988; 6:409-413; Hirabayashiら, Immunology 1991;72: 329-335; Tamuraら, Vaccine1989; 7: 503-505)。
しかし、上記の報告された観察の多くの局面は、全体的に説得力がない。例えば、CTBに起因するアジュバントの効果が、H-2制限されないことに留意した。しかし、CTBに対する免疫応答が、H-2制限されることが公知である(ElsonおよびEalding,Eur.J.Immunol.1987; 17: 425-428)。さらに、主張されたアジュバント効果は、既にCTBに対して免疫した個体にさえも観察された。
他の群は、CTBに起因し得る何らかの粘膜アジュバント効果を観察し得なかった(LyckeおよびHolmgren,Immunology 1986; 59: 301-308; Lyckeら, Eur.J.Immunol. 1992; 22:2277-2281)。組換えCTBでの実験(Holmgrenら, Vaccine 1993; 11: 1179-1183)は、主張された効果が専らではない場合、主にCTB調製物への低レベルのCTの混入に起因し得ることを確証した。
従って、現在は、CTBが粘膜アジュバントとして有用ではないことが受け入れられている。
CTの毒性を取り除く第２のアプローチは、その毒性を減ずるまたは取り除くためにCTホロトキシンを変異させることであった。CTの毒性は、Ａサブユニット、ならびに、CTおよびそのホモログであるLTの多くの変異体（当該分野で公知のＡサブユニット内の点変異を含む）に存在する。例えば、国際特許公開第WO92/19265号(Amgen)を参照のこと。当該分野では、CTおよびLTが一般に交換可能であり、かなりの相同性を示すことが受け入れられている。
しかし、これまで粘膜のアジュバント化性について試験した唯一の変異体である、112位でのGlu→Lys変異を有するLT変異体は、粘膜アジュバントとして不活性であることが見出された(Lyckeら,Eur.J.Immunol. 1992;22:2277-2251;Holmgrenら, Vaccine 1993; 11:1179-1183)。これらの出版物の著者らは、CTおよび／またはLTのADPリボシル化活性とアジュバント活性との間に関連があると結論している。それゆえ、これらの出版物からは、CTBまたはCTもしくはLTの非毒性変異体が、粘膜アジュバントとして活性でないようである。
本発明によって以下が提供される：
（項目１）非毒性の粘膜アジュバントを第２の抗原とともに混合して含有する薬学的組成物。
（項目２） 項目１に記載の組成物であって、前記非毒性の粘膜アジュバントが細菌のADPリボシル化毒素の無毒化された変異体である、組成物。
（項目３） 項目２に記載の組成物であって、前記非毒性の粘膜アジュバントがCTまたはLTの無毒化された変異体である、組成物。
（項目４） 項目２または３に記載の組成物であって、前記非毒性の粘膜アジュバントが、１またはそれより多いアミノ酸の付加、欠失、または置換を、ホロトキシンのＡサブユニットに含有する、組成物。
（項目５） 前記非毒性の粘膜アジュバントがLTK7である、項目４に記載の組成物。
（項目６） 項目２から５のいずれかに定義される非毒性の変異体の、粘膜投与のための組成物の調製における粘膜アジュバントとしての使用。
（項目７） 前記組成物がワクチンである、項目６に記載の使用。
（項目８） 前記ワクチンが、予防または治療適用での使用のためである、項目７に記載の使用。
（項目９） 前記組成物がさらに第２の抗原を含有する、項目６から８のいずれかに記載の使用。
（項目１０） 被験体の疾患を防止または処置するための方法であって、該被験体に、項目２から５のいずれかに定義される非毒性の変異体とともにアジュバント化した免疫学的有効量の抗原を、該被験体の粘膜表面と該アジュバント化抗原とを接触させることにより投与する工程を包含する、方法。
（項目１１） 項目１０に記載の方法であって、項目１から５のいずれかに記載の組成物の投与を包含する、方法。
（項目１２） 前記アジュバント化抗原が、経口または鼻内に投与される、項目１０または１１に記載の方法。
（項目１３） 同時に別々に、または連続して投与するための非毒性の粘膜アジュバントおよび第２の抗原。
（項目１４） 単一の媒体、キャリア、または粒子中に組み合わせて同時に投与するための非毒性の粘膜アジュバントおよび第２の抗原。
（項目１５） アジュバント化ワクチンを製造するための方法であって、
a)毒素を無毒化するために、部位特異的変異誘発を、細菌のADPリボシル化毒素のＡサブユニットに行う、工程；および
b)粘膜アジュバントとして機能するように、該無毒化された毒素を、第２の抗原と結合させる工程、
を包含する、方法。
発明の要旨
従って、経口または鼻内のような粘膜表面に投与された場合、抗原の免疫原性を増大させるために使用され得る活性な粘膜アジュバントの必要が残されたままである。
（項目１）非毒性の粘膜アジュバントを第２の抗原とともに混合して含有する薬学的組成物。
（項目２） 項目１に記載の組成物であって、前記非毒性の粘膜アジュバントが細菌のADPリボシル化毒素の無毒化された変異体である、組成物。
（項目３） 項目２に記載の組成物であって、前記非毒性の粘膜アジュバントがCTまたはLTの無毒化された変異体である、組成物。
（項目４） 項目２または３に記載の組成物であって、前記非毒性の粘膜アジュバントが、１またはそれより多いアミノ酸の付加、欠失、または置換を、ホロトキシンのＡサブユニットに含有する、組成物。
（項目５） 前記非毒性の粘膜アジュバントがLTK7である、項目４に記載の組成物。
（項目６） 項目２から５のいずれかに定義される非毒性の変異体の、粘膜投与のための組成物の調製における粘膜アジュバントとしての使用。
（項目７） 前記組成物がワクチンである、項目６に記載の使用。
（項目８） 前記ワクチンが、予防または治療適用での使用のためである、項目７に記載の使用。
（項目９） 前記組成物がさらに第２の抗原を含有する、項目６から８のいずれかに記載の使用。
（項目１０） 被験体の疾患を防止または処置するための方法であって、該被験体に、項目２から５のいずれかに定義される非毒性の変異体とともにアジュバント化した免疫学的有効量の抗原を、該被験体の粘膜表面と該アジュバント化抗原とを接触させることにより投与する工程を包含する、方法。
（項目１１） 項目１０に記載の方法であって、項目１から５のいずれかに記載の組成物の投与を包含する、方法。
（項目１２） 前記アジュバント化抗原が、経口または鼻内に投与される、項目１０または１１に記載の方法。
（項目１３） 同時に別々に、または連続して投与するための非毒性の粘膜アジュバントおよび第２の抗原。
（項目１４） 単一の媒体、キャリア、または粒子中に組み合わせて同時に投与するための非毒性の粘膜アジュバントおよび第２の抗原。
（項目１５） アジュバント化ワクチンを製造するための方法であって、
a)毒素を無毒化するために、部位特異的変異誘発を、細菌のADPリボシル化毒素のＡサブユニットに行う、工程；および
b)粘膜アジュバントとして機能するように、該無毒化された毒素を、第２の抗原と結合させる工程、
を包含する、方法。
発明の要旨
従って、経口または鼻内のような粘膜表面に投与された場合、抗原の免疫原性を増大させるために使用され得る活性な粘膜アジュバントの必要が残されたままである。
現在、当該分野で示される結果および結論とは完全に反対に、ADPリボシル化毒素の毒性とアジュバント活性とは分離し得ることが発見されている。このような毒素の完全に非毒性の変異体が、粘膜アジュバントとして活性であることが示されている。
第１の局面では、本発明は、非毒性の粘膜アジュバントを第２の抗原と混合して含有する薬学的組成物を提供する。
完全に毒性を欠くLT変異体が、粘膜アジュバントとして活性であり、そして致死用量の免疫原でのさらなる抗原投与に対して被験体を保護することが示されている。出願人らは、任意の特定の理論により結びつけられることを望まないが、上で引用したLyckeらおよびHolmgrenらの結果が、少なくとも部分的には反対であり得ると仮定する。なぜなら、作られている変異体の安定性を説明することができないからである。とりわけ、本発明の非毒性変異体が、送達部位で安定であることを確実にすることにより、CTおよび／またはLTのアジュバント効果が、その毒性効果を除去しても維持され得ることが示された。
それゆえ、好ましくは、非毒性の粘膜アジュバントは、細菌のADPリボシル化毒素の無毒化された変異体であり、必要に応じて１またはそれより多いアミノ酸の付加、欠失、または置換を含む。
CTまたはLTの無毒化された変異体が特に適切である。例えば、本発明による変異体LTは、Ａサブユニットの７位でのArg7からLys7への置換を有し得、これはいわゆるLTK7変異体である。
オルタナティブ変異体は、当業者に公知であり、そして本発明に使用するために好ましい分子である。例としては、129位で変異したPT、特に、Glu129→Gly変異を有するPTを包含する。さらなる変異体は、Trp26およびArg9の一方または両方で、必要に応じてGlu129変異と組み合わせて変異させたPTを包含する。
さらに、本発明で使用される変異体は、変異が分子の一部に影響して、その結果、毒素のＡサブユニットのタンパク質分解を妨げて、酵素活性が現れない変異体であり得る。このような変異体は、Grantら, Inf.and Immunity (1994) 62(10) 4270-4278に記載されている。例えば、変異体は、Arg192→Gly変異をLTに、または対応する変異を別のADPリボシル化毒素に含み得る。
本発明の変異体は、好ましくは、変異したＡサブユニットおよびＢサブユニットを含むホロトキシンの形態であり、野生型のホロトキシンのようにオリゴマーであり得る。Ｂサブユニットは、好ましくは変異されない。しかし、変異したＡサブユニットをＢサブユニットと別々に、本質的に純粋な形態または他の薬剤（これは、Ｂサブユニットおよび／またはその機能的寄与物と置換され得る）と複合した形態のいずれかで、使用され得ると考えられる。
CTおよび／またはLTの変異体の設計および作成方法は、当該分野で公知である。適切な方法は、国際特許公開第WO93/13202号(BiocineSclavo)に記載されており、この開示は、同第WO92/19265号(Amgen)とともに本明細書中に参考として援用されている。
本発明のアジュバントは、好ましくは、免疫応答を誘起させることが所望される適切な抗原とともに混合して投与される。抗原とアジュバントが混合されていない場合は、それらが互いに比較的短い時間内に、同じ投与部位に投与されることが好ましい。野生型CTにより提供されるアジュバント効果が、短期間存続することが観察されている(LyckeおよびHomgren, Immunology1986; 59: 301-308を参照のこと)。別の実施態様では、本発明の粘膜アジュバントは、必要に応じて他の抗原とは単独に、ワクチンの全身的な投与または粘膜投与に続いて、ブーストとして投与され得る。
ワクチンの正確な処方物は、免疫原の性質により変化し得る。例えば、抗原が、徐放性のマイクロスフェア中でリポソームに封入されている場合、粘膜アジュバントは同様に封入され得、抗原およびアジュバントは同時に粘膜免疫系と相互作用し得る。あるいは、本発明のアジュバントの別々の粘膜投与は、非経口で投与されたワクチンへの粘膜応答を増強するために使用され得る。
第２の局面では、本発明は、粘膜アジュバントとしての粘膜投与のための組成物の調製における、CTまたはLTの非毒性変異体の使用を提供する。
好ましくは、組成物はワクチンであり、そして疾患に対する被験体の免疫または疾患に罹っている被験体の処置に有用である。
好ましくは、変異体は１またはそれより多いアミノ酸の付加、置換、または欠失を、CTまたはLTのＡサブユニットのアミノ酸配列中に含み、これは、毒素の毒性をなくすために効果的である。
本発明の第３の局面によれば、被験体の疾患の予防または処置のための方法が提供され、これは、被験体の粘膜表面をアジュバント化した抗原と接触させることにより、免疫学的有効量の抗原を、非毒性のCTまたはLT変異体でアジュバント化して被験体に投与する工程を包含する。
粘膜表面は、被験体の任意の適切な粘膜表面であり得る。例えば、投与は、吸入により、直腸または膣の坐剤あるいはペッサリー、摂食または他の口腔投与により、エアロゾルにより、鼻内送達または粘膜表面への直接適用により行われ得る。
被験体は、免疫可能な任意の生物であり得る。特に、ヒトおよび他の哺乳動物（例えば、家畜、ペット、および野生動物）が示される。
被験体が免疫され得る疾患は、免疫により処置または防止され得る全ての疾患を包含し、これには、ウイルス性疾患、アレルギーの発現、粘膜表面を通過するまたは粘膜表面に定住する細菌または他の病原体により引き起こされる疾患、AIDS、自己免疫疾患（例えば、全身性紅斑性狼瘡）、アルツハイマー症およびガンが挙げられる。本発明を使用して処置または予防され得るウイルス性感染の例は、EBVおよびVZVのようなDNAウイルス、および特にヘルペスウイルス（例えば、HSVおよびHCMV）、アデノウイルス、パポーバウイルス(papovaviridae)（例えば、HPV）、ヘパドナウイルス(hepadnaviridae)（例えば、HBV）による感染、ピコルナウイルス(picorvaviridae)などのRNAウイルス、特にポリオウイルス(polivirus)およびHAV、ライノウイルス(rhinovirus)およびFMDV、トガウイルス(togaviridae)、フラビウイルス(flaviviridae)、コロナウイルス(coronaviridae)、パラミクソウイルス(paramyxoviridae)（例えば、RSV）、オルトミクソウイルス(orthomyoxoviridae)（例えば、インフルエンザウイルス）、およびレトロウイルス（特にHIV）による感染を包含する。HCVおよびHDVに対するワクチン接種もまた考えられる。
本発明により処置または予防するに適切な細菌感染の例は、Helicobacter pylori、連鎖球菌(streptococci)、髄膜炎菌(meningococcus)Ａ、Ｂ、およびＣ、百日咳菌(bordetellapertussis)、およびクラミジア(chlamydia)、およびトラコーマ(trachomatis)による感染を包含する。
粘膜表面での送達に適切なワクチン処方物は、以下に記載のように調製され得るが、さらなる処方物は当業者に明らかである。適切な投与法は、同様に以下に記載したが、例示した値の改変は当業者には明らかである。
さらに、本発明は、非毒性の粘膜アジュバントであるCTまたはLTの変異体、および同時に別々にまたは続けて投与するための第２の抗原を提供する。以下に例示したように、単一の媒体、キャリア、または粒子と組み合わせる場合、アジュバントと第２の抗原との同時投与は、特に好ましい。
第２の抗原は、任意の抗原であり得、これに対して、被験体で免疫応答を誘起させることが所望される。適切な抗原は、病原性生物に由来する細菌、ウイルス、および原生動物の抗原、ならびに、アレルゲン、アロゲン(allogen)、および腫瘍に由来する抗原、および自己抗原を包含する。代表的には、抗原は、タンパク質、ポリペプチド、またはペプチド抗原であるが、他の抗原性構造（例えば、核酸抗原、炭水化物抗原、および全体または弱毒化または不活化生物（例えば、細菌、ウイルス、または原生動物）)は、除外されない。本発明はさらに、以下の工程を包含するアジュバント化ワクチンの製造方法を提供する：
a)毒素を無毒化するために、細菌のADPリボシル化毒素のＡサブユニットにおいて、部位特異的変異誘発を行う工程；および
b)粘膜アジュバントとして機能させるように、無毒化した毒素を第２の抗原と結合させる工程。
a)毒素を無毒化するために、細菌のADPリボシル化毒素のＡサブユニットにおいて、部位特異的変異誘発を行う工程；および
b)粘膜アジュバントとして機能させるように、無毒化した毒素を第２の抗原と結合させる工程。
本発明で有用な抗原の特定の例は、HSV gD、gBおよび他の糖タンパク質；HIV gp120および他のタンパク質；CMV gBまたはgH；HCV抗原；HDVδ抗原；HAV抗原；EBVおよびVZV抗原；B.pertussis抗原およびH.pylori抗原を包含する。
一般に、第２の抗原は、注射を意図したワクチンの免疫原性成分であり得る。このようなワクチンおよびその免疫原性成分は、サブユニットワクチン、不活化または弱毒化された生物全体、あるいはポリヌクレオチドワクチンであり得る。
本発明によるワクチンは、予防（感染を防止する）または治療（感染後に疾患を処置する）のいずれかであり得る。
これらのワクチンは、予防（感染を防止する）または治療（感染後に疾患を処置する）のいずれかであり得る。
このようなワクチンは、１つの抗原または複数の抗原を、通常は「薬学的に受容可能なキャリア」と組み合わせて含有し、これは、それ自身が、この組成物を受ける個体に有害な抗体の産生を誘導しない任意のキャリアを含有する。
適切なキャリアは、代表的には大きくて、ゆっくり代謝される巨大分子であり、例えば、タンパク質、多糖、ポリ酪酸、ポリグリコール酸、ポリマーアミノ酸、アミノ酸コポリマー、脂質凝集体（例えば、油滴乳濁物またはリポソーム）、および不活化ウイルス粒子である。このようなキャリアは、当業者に周知である。本発明の好ましい局面では、これらのキャリアは免疫刺激剤（「アジュバント」）として機能し得る。さらに、抗原は、細菌のトキソイド（例えば、ジフテリア菌、破傷風菌、コレラ菌、H.pyloriなどの病原体由来のトキソイド）に結合させ得る。
組成物の効果を増大させる好ましいアジュバントは、以下を包含するがそれに限定されない：(1)アルミニウム塩（ミョウバン）（例えば、水酸化アルミニウム、リン酸アルミニウム、硫酸アルミニウムなど）；(2)水中油型乳剤処方物（ムラミルペプチドのような他の特異的な免疫刺激剤（以下参照）または細菌の細胞壁成分を含むまたは含まない）、例えば、(a)Model110Yマイクロフルイダイザー(Microfluidics,Newton,MA)のようなマイクロフルイダイザーを使用してミクロン以下の粒子に処方された、５％スクアレン、0.5％Tween 80、および0.5％ Span 85（必要とされないが、適宜種々の量のMTP-PE（以下参照）を含有する）を含有するMF59（PCT公開第WO90/14837号）、(b)ミクロン以下の乳濁液にマイクロ流動化された(microfluidized)か、またはより大きな粒子サイズの乳濁物を生成するためにボルテックスされたかのいずれかの、10％スクアレン、0.4％Tween 80、５％プルロニックブロックされたポリマーL121、およびthr-MDP（以下参照）を含有するSAF、および(c)２％スクアレン、0.2％Tween 80、ならびに、モノホスホリリピッド(monophosphorylipid)Ａ(MPL)、トレハロースジミコレート(TDM)、および細胞壁骨格(CWS)、好ましくはMPL+CWS(DetoxTM)よりなる群からの１またはそれより多い細菌細胞壁成分を含有するRibiTMアジュバントシステム(RAS)、(RibiImmunochem,Hamilton,MT)；(3)サポニンアジュバント（例えば、StimulonTM(CambridgeBioscience,Worcester,MA)が使用され得、またはそれらから生成した粒子（例えば、ISCOM(免疫刺激複合体)；(4)完全フロイントアジュバント(CFA)および不完全フロイントアジュバント(IFA)；(5)インターロイキン（例えば、IL-1、IL-2、IL-4、IL-5、IL-6、IL-7、IL-12など）、インターフェロン（例えば、γインターフェロン）、マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF)、腫瘍壊死因子(TNF)などのサイトカイン；および(6)組成物の効果を増強する免疫刺激剤として作用する他の物質である。ミョウバンおよびMF59が好ましい。
上述のように、ムラミルペプチドは、N-アセチル-ムラミル-L-スレオニル-D-イソグルタミン(thr-MDP)、N-アセチル-ノルムラミル-l-アラニル-d-イソグルタミン(nor-MDP)、N-アセチルムラミル-l-アラニル-d-イソグルタミニル-l-アラニン-2-(1'-2'-ジパルミトイル-sn-グリセロ-3-ヒドロキシホスホリルオキシ)-エチルアミン(MTP-PE)などを包含するが、これらに限定されない。
免疫原性組成物（例えば、抗原、薬学的に受容可能なキャリア、およびアジュバント)は、代表的には、希釈剤（例えば、水、生理食塩水、グリセロール、エタノールなど）を含有する。
さらに、補助的物質（例えば、湿潤剤または乳化剤、pH緩衝物質など）は、このような媒体中に存在し得る。
代表的には、免疫原性組成物は、液体溶液または懸濁液のいずれかの注射可能なものとして調製され；注射前に液体媒体中に溶解または懸濁するのに適切な固体形態もまた調製され得る。調製物はまた、アジュバントの効果を増強するために、上記のように薬学的に受容可能なキャリア下に、リポソームに乳濁または封入され得る。
ワクチンとして使用される免疫原性組成物は、免疫学的有効量の抗原ポリペプチド、および必要に応じて任意の他の上記の成分を含有する。「免疫学的有効量」とは、その量の個体への投与が、単回の用量でまたは一連の投与の一部としてのいずれかでなされると、処置または予防に効果的であることを意味する。この量は、処置される個体の健康および身体条件、処置される個体の分類学的群（例えば、非ヒト霊長類、霊長類など）、個体の免疫系の抗体合成能力、所望される防御の程度、ワクチンの処方、処置する医者による治療状況の評価、および他の関連因子に依存して変化する。この量が、通常の試験を通して決定し得る比較的広範な範囲に入ることが期待される。
免疫原性組成物は、便宜上、非経口で投与される（例えば、皮下注射または筋肉内注射のいずれかによる）。他の投与様式に適切なさらなる処方物は、経口処方物および経肺処方物、坐剤、および経皮適用を包含する。用量処置は、単回用量スケジュール、または複数回用量スケジュールであり得る。ワクチンは、他の免疫制御剤とともに投与され得る。
適切な免疫刺激剤の例は、インターロイキン（例えば、インターロイキン１、２、４〜７および12）、およびインターフェロン（特に、γインターフェロン）を包含する。
本発明は、以下に例示するためだけに、以下の図を参照して記載されている：
発明の詳細な説明
細胞結合活性を有するホロトキシンとしてなおも組み合わせ得る、非毒性のLT変異体を構築するために、部位特異的変異誘発を用いて、LTのＡサブユニットの７位のアルギニン残基をリジンで置換した。LTK7と名付けた、変異タンパク質を精製し、そしていくつかのアッセイでADP-リボシルトランスフェラーゼおよび毒性活性について試験した。LTK7は、なおもGM1ガングリオシドレセプターを結合し得たが、出版されたデータと一致して、酵素活性の完全な消失を示した(Lobetら,Infect.Immun. 1991; 59: 2870-2879)。さらに、LTK7は、野生型のLTの107毒性単位と同等の用量を試験した場合でさえ、マウスの回腸係蹄アッセイおよびY1細胞におけるインビトロで不活性であった（表１）。
細胞結合活性を有するホロトキシンとしてなおも組み合わせ得る、非毒性のLT変異体を構築するために、部位特異的変異誘発を用いて、LTのＡサブユニットの７位のアルギニン残基をリジンで置換した。LTK7と名付けた、変異タンパク質を精製し、そしていくつかのアッセイでADP-リボシルトランスフェラーゼおよび毒性活性について試験した。LTK7は、なおもGM1ガングリオシドレセプターを結合し得たが、出版されたデータと一致して、酵素活性の完全な消失を示した(Lobetら,Infect.Immun. 1991; 59: 2870-2879)。さらに、LTK7は、野生型のLTの107毒性単位と同等の用量を試験した場合でさえ、マウスの回腸係蹄アッセイおよびY1細胞におけるインビトロで不活性であった（表１）。
LTおよびLTK-7変異体のインビボおよびインビトロ特性
表１
表１
＊ データは、Lobetらにより出版され、そしてこの研究で確証された。
＊＊ この研究
>> 表に示す最高濃度で試験した場合に、LT-K7がなおも酵素学的に非活性または非毒性であったことを意味する。
<< 実際の差違は、示した数よりも大きいことを示し、この数は試験した差違を表す。
＊＊ この研究
>> 表に示す最高濃度で試験した場合に、LT-K7がなおも酵素学的に非活性または非毒性であったことを意味する。
<< 実際の差違は、示した数よりも大きいことを示し、この数は試験した差違を表す。
粘膜アジュバントとして作用するLTK7の能力を、マウスで評価した。マウスを群に分けて、そしてレポーター抗原としてオボアルブミンを使用して免疫した。動物を、鼻から(i/n)または皮下から(s/c)、10μgのオボアルブミン単独またはオボアルブミンを１μgのCT、LT、またはLT7のいずれかと混合して使用して免疫した。マウスを、６匹のマウスの４つの群に分けた。各グループからの４匹のマウスを軽く麻酔して、そして10μgのオボアルブミン、または１μgの毒素とともに10μgのオボアルブミンを、総容量で30μl送達して免疫した。残った２匹のマウスを、同量のタンパク質をs/cにより総容量100μlで免疫した。皮下(subcut)に与えられるタンパク質を、まず、２％Al(OH)3に吸収させた。
動物を、１、22、36、および61日目に免疫した。100μlのサンプル血液を、０、21、35、および56日目に収集し、そして76日目に動物を、心臓穿刺によって屠殺した。
抗体の定量を、ELISAによって評価した。オボアルブミン特異的抗体の評価のために、96ウェルのEIAプレート(costar)を、60μg/mlのオボアルブミンで一晩コートした。毒素特異的抗体の測定を、GM1捕獲ELISAを使用して行った。毒素特異的抗体を、免疫に使用した抗原に対して測定した。単一の毒素は、各群由来の毒素特異的抗体の測定に全く使用されず、そしてこれらの群間の力価それ自体を、直接比較し得ない。
各群由来の血清を、それぞれ４匹のマウスおよび２匹のマウスからプールした。サンプルを１：50の希釈で２つずつ調製した。吸光度を、450nmで、kineticalcの2.13版のプログラム(Biotekinstruments)を使用して読み取った。このプログラムは、10秒毎の30時点にわたる基質の変化速度を計算する。
抗体のELISA力価を、450nmでの最大吸光度の半分の吸光度を与える血清の希釈として任意に測定した。同等の免疫前血清で観察されたよりも2.5倍よりも大きい450nmでの吸光度を示さなかった血清を、ネガティブであると考えた。図1aおよび1bに示す結果は、１回の実験の２つのウェルの平均力価の値を表す。バックグランドを越える有意なレベルのオボアルブミンに対する抗体は、オボアルブミン単独でi/nで免疫したマウスの血清には、s/cで免疫したマウスが効果的に血清転換したにもかかわらず、検出されなかった。オボアルブミンとCTまたはLTのいずれかとをi/nで受けたマウスは、非常に高いレベルの抗オボアルブミン抗体をその血清中に含んでいた。これらは、マウスをs/cで免疫した場合に観察されたのと同等であった。オボアルブミンとLTK7とを受けたマウスもまた、非常に高いレベルのオボアルブミンに対する抗体を示した。
これらの同じ群の抗トキソイド応答のレベルを図1bに示す。変異体毒素で免疫したマウスを含む全てのマウスは、その血清中にこれらの毒素に対する高レベルの抗体を発現した。
オボアルブミンに対する局所的な分泌抗体のレベルを、肺洗浄および鼻洗浄の両方を使用して測定した（図２）。簡単に述べると、動物を心臓穿刺によって屠殺し、そして気管が露出するように切開した。次いで、超薄ピペットを気管の小さな切開部に挿入した。肺洗浄物を、1.5mlのPBS中の0.1％ウシ血清アルブミン(Sigma)の肺への流水洗浄および吸引を繰り返すことにより収集した。鼻洗浄物を、１mlのPBS中の0.1％BSAの鼻腔を通しての流水洗浄により収集した。
オボアルブミン特異的IgA抗体を、抗マウスα鎖特異的結合抗体(Serotec)を使用するELISAにより測定した。サンプルを、個々の動物から調製し、そしてこの図中のカラムは、kineticalcを使用した、それぞれi/nおよびs/cで免疫した４匹および２匹のマウスについての基質の変化速度の平均を表す。図は、肺洗浄物に関する１：３希釈での吸光度の生データを使用して構築されている。これらは、鼻洗浄物の１：２と１：６との間の力価、および肺洗浄物の１：70と１：120との間の力価に対応する。これらの力価を、上記の方法を使用して計算した。s/cまたはi/nによりオボアルブミン単独で免疫したマウスは、検出可能なオボアルブミン特異的IgAをサンプルした洗浄物中に全く含有しなかった。オボアルブミンをCT、LT、またはLTK7と組み合わせて免疫した全ての個々のマウスは、検出可能なレベルの抗オボアルブミンIgAを示した。従って、局所的または全身的な抗オボアルブミン応答は、これらの動物で検出可能である。
オボアルブミンでのこれらの奨励実験にもかかわらず、免疫を破傷風菌毒素の非毒性部分である50,000ダルトンのフラグメントＣ（これは、酵母Pichia pastorisで発現させて、そして精製した）を使用して繰り返した。マウスを、s/cまたはi/nのいずれかで、フラグメントＣ単独またはLTまたはLTK7のいずれかの個々のサンプルと混合して免疫した。マウスを10匹のマウスの４群と５匹のマウスの４群に分けた。10匹のマウスを、i/nで、a)10μgのフラグメントＣ単独；b)10μgのフラグメントＣ＋１μgのLT；c)10μgのフラグメントＣ＋１μgのLTK7、およびd)PBSのみ、全て30μlの最終容量で免疫した。５匹のマウスを、i/nにより、a)１μgのLT、およびb)１μgのLTK7で免疫した。残りの２群のマウスを、s/cにより、タンパク質なし、または10μgのフラグメントＣのいずれかで、100μlの投与容量で免疫した。これらのワクチンを、図１に記載のように調製した。動物を１および22日目に免疫した。100μlのサンプル血液を０、21および35日目に収集した。フラグメントＣ特異的抗体を、ELISAにより破傷風菌毒素(10μg/ml）をコーティング抗原として使用して測定した。各群由来の血清をプールした。サンプルを、１：50希釈により２つずつ調製した。ELISA力価を上記のように計算した。s/cによりフラグメントＣで免疫したマウスは、高レベルの抗フラグメントＣ抗体を産生して効果的に血清転換した（図３）。i/nによりフラグメントＣ単独で免疫したマウスは、顕著な血清転換を示さなかった。しかし、フラグメントＣをLTまたはLTK7と組み合わせて免疫したマウスは、その血清中に高レベルの抗フラグメントＣ抗体を示した（図３）。フラグメントＣに血清転換するマウスは、毒素の抗原投与に対して保護され得るので、これらの群を、活性な破傷風菌毒素を用いて抗原投与した。s/cによりフラグメントＣ単独で免疫したマウスは全て保護されたが、i/nにより免疫した全てのマウスは非常に感受性であった。i/nによりフラグメントＣとLTまたはLTK7のいずれかとの組み合わせで免疫した全てのマウスは、抗原投与で生存していた（表２）。
マウス血清中の抗フラグメントＣ抗体の力価は、K7変異体＋フラグメントＣでワクチン接種したマウスで平均約1/3,000、およびLT＋フラグメントＣでワクチン接種したマウスで平均約1/12,000であった。
これらの実験は、破傷風菌に対する保護免疫が、アジュバントとして非毒性LT変異体を使用することにより達成され得、そしてこの分子による粘膜免疫が、毒素および同時投与されたバイスタンダー抗原に対する局所的分泌免疫応答または全身的免疫応答の両方を生じ得ることを示す。
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