JP2007509164A - 安定化組成物 - Google Patents
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Abstract
Description
タンパク質治療薬開発の重要な部分は、タンパク質治療薬の用量および活性を慎重に制御できるように、活性を損失することなく長期間にわたって貯蔵することができる安定化された形態でタンパク質を調製することである。
Manningら、Pharm.Res.、1989年、第6巻、p.903−918 WangおよびHanson、J.Parenteral Sci.Tech.、1988年、第42巻、p.S14 Wang、Int.J.Pharm.、1999年、第185巻、p.129−188 WangおよびHanson、J.Parenteral Sci.Tech.、1988年、第42巻、p.S3−S26
本発明は、(i)非解離条件下でbAREタンパク質を分離する方法;(ii)bAREタンパク質の完全性の程度を判断する方法;(iii)bAREタンパク質を安定化できる安定化剤;(iv)bAREタンパク質を安定化する方法;(v)安定化bAREタンパク質を含んでなる組成物;および(vi)実質的に完全なbAREクラスのタンパク質を含んでなる組成物を提供する。
A Ala アラニン
C Cys システイン
D Asp アスパラギン酸
E Glu グルタミン酸
F Phe フェニルアラニン
G Gly グリシン
H His ヒスチジン
I Ile イソロイシン
K Lys リジン
L Leu ロイシン
M Met メチオニン
N Asn アスパラギン
P Pro プロリン
Q Gln グルタミン
R Arg アルギニン
S Ser セリン
T Thr トレオニン
V Val バリン
W Trp トリプトファン
Y Tyr チロシン
本発明を詳細に記載する前に、本発明は、具体的に例示した分子または処理パラメーターに限定されず、当然変化し得ることを理解する必要がある。また、本明細書に用いられている用語は、本発明の特定の実施形態を説明することのみを目的としており、限定の意図はないことも理解する必要がある。また、本発明の実施には、他に示さない限り、ウィルス学、微生物学、分子生物学、組み換えDNA法および免疫学の従来の方法が用いられ、それらは全て通常の当業技術の範囲内にある。これらの方法は、文献において十分に説明されている。例えば、Sambrookら、Molecular Cloning:A Laboratory Manual(第2版、1989);DNA Cloning:A Practical Approach、IおよびII巻(D.Glover編集);Ologonucleotide Synthesis(N.Gait編集、1984);A Practical Guide to Molecular Cloning(1984);およびFundamental Virology,第2版、I&II巻(B.N.FieldsおよびD.M.Knipe編集)を参照されたい。
本明細書に用いられる用語の「bARE」は、関連細菌の外毒素のファミリーであるADP−リボシル化細菌毒素のクラスを言い、ジフテリア毒素(DT)、百日咳毒素(PT)、コレラ毒素(CT)、大腸菌易熱性毒素(LT1およびLT2)、シュードモナス内毒素A、シュードモナス外毒素S、B.セレウス外酵素、B.sphaericus毒素、C.ボツリヌスC2およびC3毒素、C.limosum外酵素、ならびにウェルシュ菌、C.spiriformaおよびC.difficile、黄色ブドウ球菌EDIN、CRM197、非毒性ジフテリア毒素変異菌などの細菌ADPリボシル化毒素変異菌の毒素が挙げられる。(例えば、Bixlerら(1989)Adv.Exp.Med.Biol.251:175頁;およびConstantinoら(1992)Vaccineを参照)多くのADP−リボシル化細菌毒素は、AサブユニットがADP−リボシルトランスフェラーゼ活性と呼ばれる毒性酵素活性を含有し、Bサブユニットが結合部分として働くA:B多量体として構成されている。該毒素は、NAD+から標的タンパク質へのADP−リボースユニットの転移を触媒する。
本発明の組成物に用いられる好ましいADP−リボシル化細菌外毒素(bARE類)としては、コレラ毒素(CT)および大腸菌易熱性毒素(LT)が挙げられる。CTおよびLT外毒素は、Bサブユニットの5分子からなるドーナツ状の環に囲まれたAサブユニットの単一分子からなる六量体である。毒素原性大腸菌(ETEC)の易熱性毒素(LT)は、構造的に、機能的に、および免疫学的にCTと類似しており、これら2つの毒素は、免疫学的に交差反応する。CTおよびLTタンパク質は、慣習的にAB5タンパク質と称されている。完全な天然タンパク質はAB5として示され、部分的に解離したサブユニットをA、および5つの同一のサブユニットからなるB5五量体およびBmと称される単量体のBとして示される。
完全なbAREクラスタンパク質と解離したbAREクラスタンパク質とを識別する非解離条件下で、AB5クラスタンパク質の天然完全AB5分子と部分的に解離したB5形態などのbAREクラスタンパク質を分離できることを、この度予想外に見出した。一般に、AB5分子などの天然の完全bARE分子とその解離サブユニット形態とを分離するために好適な材料は、荷電ポリマー分離材であり、それによって、該分離材に適用されたbARE分子の異なる形態を、イオン性緩衝液によって分離できる。該荷電ポリマーカラム分離材はヒドロゲル分離材であることが好ましい。
AB5クラスタンパク質安定化剤などのbAREタンパク質安定化剤を安定化できる試剤の同定により、元のbAREタンパク質の完全性が治療用最終産物の有効性にとって重要であるワクチンなどの組成物におけるAB5クラスタンパク質の利用が促進される。本発明の分離方法は、安定化剤候補同定のためのアッセイを提供する上で有利であると考えられる。安定化剤候補のスクリーニングは周知の分野であり、スクリーニングアッセイのハイスループットの実施は、ある特定のスクリーニングの方法論が与えられれば、容易に開発できる。本発明は、そのような方法論を提供する。
「アナログ」により、1つ以上の置換、挿入、または欠失を有し得、かつ、bAREタンパク質の解離を最少化し、したがって、ある期間の貯蔵中に、bAREタンパク質の実質的な完全性を維持する所望の効果をもたらす非荷電物質の変異体、相同体、アナログ、誘導体またはそれらの断片が意図される。好適なアナログとしては、限定はしないが、下記の非荷電物質の誘導体が挙げられる。
アミノ酸塩基、またはアミノ酸塩基プラス本明細書に記載された1種以上の追加安定化剤を両性イオン性物質と組み合わせて組み込むことによるbAREタンパク質またはその変異体の安定性増大は、貯蔵時のbAREタンパク質組成物の安定性増大をもたらす。したがって、本発明は、bARE組成物が、貯蔵中に凝集物を形成するbAREタンパク質を含んでなる場合、該bARE組成物の貯蔵安定性を増大させる方法も提供する。
本明細書に用いられる用語の「bAREタンパク質」には、限定はしないが、タンパク質、核酸が含まれる。bAREタンパク質は、個々に、または他の生物学的分子と組み合わせて使用できる。
本発明の好ましい一実施形態において、bARE生物学的分子は免疫原である。
本発明の組成物および/またはbAREタンパク質は、他の免疫調節剤と関連させて投与できる。特に、本発明の組成物は、アジュバントと共に投与できる。アジュバント、特に、遺伝的アジュバントを含めることは、CMI応答のさらなる増強または調整に有用であり得る。アジュバントは、免疫化された対象において、同時投与された抗原の免疫原性を増強することにより、また、同時投与抗原に対するTh1様免疫応答を誘導することによってCMI応答を増強でき、このことは、免疫原性組成物製品において有利である。
(A.無機物含有組成物)
本発明のアジュバントとして使用される好適な無機物含有組成物としては、アルミニウム塩およびカルシウム塩などの無機塩が挙げられる。本発明には、水酸化物(例えば、オキシヒドロキシド類)、リン酸塩(例えば、ヒドロキシホスフェート、オルトホスフェート)、硫酸塩など(例えば、Vaccine Design...(1995)、編集者PowellおよびNewman.ISBNの第8章および9章:030644867X.Plenumを参照)、または種々の無機化合物(例えば、任意でリン酸塩過剰の、リン酸塩および水酸化物のアジュバント混合物)が含まれ、該化合物は、任意の好適な形態をとっており(例えば、ゲル、結晶、非晶質)、また、塩(1種または複数種)に吸着されていることが好ましい。また、無機物含有組成物は、金属塩の粒子として製剤化することもできる(国際公開第00/23105号)。
本発明のアジュバントとしての使用に好適な油乳液組成物としては、MF59(マイクロフリューダイザーを用いて、サブミクロン粒子に製剤化した5%スクアレン、0.5%ツウィーン80、および0.5%スパン85)が挙げられる。国際公開第90/14837号を参照されたい。また、Podda、「The adjuvanted influenza vaccines with novel adjuvants:experience with the MF59−adjuvanted vaccine」、Vaccine(2001)19:2673−2680頁;Freyら、「Comparison of the safety,tolerability,and immunogenicity of a MF59−adjuvanted influenza vaccine and a non−adjuvantyed influenza vaccine in non−elderly adults」、Vaccine(2003)21:4234−4237頁を参照されたい。MF59は、FLUAD(商標)インフルエンザウィルス三価サブユニットワクチンにおけるアジュバントとして用いられる。
サポニン製剤もまた、本発明のアジュバントとして使用できる。サポニンは、広範囲の植物種の樹皮、葉、幹、根そして花にも見られるステロールグリコシド類およびトリテルペノイドグリコシド類の異種グループである。Quillaia saponaria Molina treeの樹皮のサポニンは、アジュバントとして広く研究されてきた。サポニンはまた、Smilax ornata(サルサプリラ)、Gypsophilla paniculata(ブライデス膜)、およびSaponaria officianalis(ソープ根)から商品としても入手できる。サポニンアジュバント製剤としては、QS21などの精製製剤、ならびに、ISCOM類などの液体製剤が挙げられる。
ビロゾームおよびウィルス様粒子(VLPs)もまた、本発明におけるアジュバントとして使用できる。これらの構造は任意にリン脂質と組み合わせた、またはリン脂質と共に製剤化した1種以上のタンパク質を一般に含有する。それらは一般に非病原性であり、非複製性であり、一般に天然のウィルスゲノムを含有しない。ウィルスタンパク質は組み換え製造できるか、ウィルス全体から単離できる。ビロゾーム類またはVLP類における使用に好適なこれらのウィルスタンパク質としては、インフルエンザウィルス(HAまたはNAなど)、B型肝炎ウィルス(コアタンパク質またはカプシドタンパク質など)、E型肝炎ウィルス、はしかウィルス、シンドビスウィルス、ロタウィルス、口蹄病ウィルス、レトロウィルス、ノーウォークウィルス、ヒトパピローマウィルス、HIV、RNAファージ、QBファージ(外殻タンパク質など)、GAファージ、frファージ、AP205ファージ、およびTy(レトロトランスポゾンTyタンパク質p1など)に由来するタンパク質が挙げられる。VLP類は、国際公開第03/024480号、国際公開第03/024481号、およびNiikuraら、「外来エピトープを表す経口ワクチン担体としてのキメラ組み換えE型肝炎ウィルス様粒子」、Virology(2002)293:273−280頁、Lenzら、「Papillomarivurs−Like Particles Induce Acute Activation of Dendric Cells」、Journal of Immunology(2001)5246−5355頁;Pintoら、「Cellular Immune Responses to Human Papillomavirus(HPV)−16L1 Healthy Volunteers Immunized with RecombinantHPV−16L1 Virus−Like Particles」、Journal of Infectious Diseases(2003)188:327−338頁;およびGerberら、「Human Papillomavrisu Virus−Like Particles AreEfficient Oral Immunogens when Coadministered with Escherichia coli Heat−Labile Entertoxin MutantR192G or CpG」、Journal of Virology(2001)75(10):4752−4760頁でさらに検討されている。ビロゾーム類は、例えば、Gluckら、「New Technolog Platforms in the Development of Vaccines for the Future」、Vaccine(2002)20:B10−B16でさらに検討されている。免疫増強再構成インフルエンザビロゾーム類(IRIV)は、鼻腔内三価INFLEXAL(商標)製品{Mischler&Metcalfe(2002)Vaccine20 Suppl5:B17−23}およびINFLUVACPLUS(商標)製品におけるサブユニット抗原送達システムとして使用されている。
本発明における使用に好適なアジュバントとしては、以下のような細菌または微生物誘導体が挙げられる。
このような誘導体としては、モノホスホリル脂質A(MPL)および3−O−脱アセチル化MPL(3dMPL)が挙げられる。3dMPLは、4つ、5つまたは6つのアセチル化鎖を有する3De−O−アセチル化モノホスホリル脂質Aの混合物である。3De−O−アセチル化モノホスホリル脂質Aの好ましい「小型粒子」形態は、欧州特許第0689454号、欧州特許第0689454号、欧州特許第0689454号に開示されている。3dMPLのこのような「小型粒子」は、0.22ミクロン膜を通してろ過滅菌する上で十分小さい(欧州特許第0689454号を参照)。他の非毒性LPS誘導体としては、リン酸アミノアルキルグルコサミド、例えばRC−529などのモノホスホリル脂質A模擬物が挙げられる。Johnsonら、(1999)Bioorg Med Chem Lett9:2273−2278頁を参照されたい。
脂質A誘導体としては、OM−174などの大腸菌の脂質A誘導体がが挙げられる。OM−174は、例えば、Meraldiら、「OM−174,a New Adjuvant with a Potential for Human Use ,Induces a Protective Response with Administered with the Synthetic C−Terminal Fragment242−310 from the circumsporozoite protein of Plasmodium berghei」、Vaccine(2003)21:2485−2491頁;およびPajakら、「The Adjuvant OM−174 induces both the migration and maturation of murine dendritic cells in vivo」、Vaccine(2003)21:836−842頁に記載されている。
本発明におけるアジュバントとしての使用に好適な免疫刺激性オリゴヌクレオチドとしては、CpGモチーフ(非メチル化シトシンに続いてグアノシンを含有し、リン酸結合で結合されている配列)を含有するヌクレオチド配列が挙げられる。細菌の二本鎖RNAまたは反復性またはポリ(dG)配列を含有するオリゴヌクレオチドもまた、免疫刺激性であることが示されている。
上記のとおり、細菌のADP−リボシル化毒素およびそれらの解毒誘導体は、本発明におけるアジュバントとして使用できる。該タンパク質は、大腸菌(すなわち、大腸菌易熱性腸毒素「LT)、コレラ(「CT」)または百日咳(「PT」)由来であることが好ましい。解毒ADP−リボシル化毒素の使用は、粘膜アジュバントとしては、国際公開第95/17211号に、また、非経口アジュバントとしては、国際公開第98/42375号に記載されている。該アジュバントは、LT−K63、LT−R72、およびLTR192Gなどの解毒LT変異体であることが好ましい。ADP−リボシル化毒素およびそれらの解毒誘導体、特に、LT−K63およびLT−R72のアジュバントとしての使用は、各々が参照として、それらの全体が本明細書に具体的に組み込まれている以下の文献において見ることができる:Beignonら、「The LTR72 Mutant of Heat−Labile Enterotoxin of Escherichia coli Enhances the Ability of Peptide Antigens to Elicit CD4+TCells and Secrete Gamma Interferon after Coapplication onto Bare Skin」、Interferon and Immunity(2002)70(6):3012−3019頁;Pizzaら、「Mucosal vaccines:nontoxic derivatives of LT and CT as mucosal adjuvants」、Vaccine(2001)19:2534−2541頁;Pizzaら、「LTK63 and LTR72,two mucosal adjuvants ready for clinical trials」Int.J.Med.Microbiol(2000)290(4−5):455−461頁;Scharton−Kerstenら、「Transcutaneous Immunization with Bacterial ADP−Ribosylating Exotoxins,Subunits,and Unrelated Adjuvants」、Infection and Immunity(2000)68(9):5306−5313;Ryanら、「Mutants of Escherichia coli Heat−Labile Toxin Act as Effective Mucosal Adjuvants for Nasal Delivery of an Acellular Pertussis Vaccine:Differential Effects of the Nontoxic AB Complex and Enzyme Activity on Th1 and Th2 Cells」Infection and Immunity(1999)67(12):6270−6280頁;Partidosら、「Heat−Labile enterotoxin of Escherichia coli and its site−directed mutant LTK63 enhance the proliferative and cytotoxic T−cell responses to intranasally co−immunized synthetic peptides」、Immunol.Lett.(1999)67(3):209−216頁;Peppoloniら、「Mutants of the Escherichia coli heat−labile enterotoxin as safe and strong adjuvants for intranasal delivery of vaccines」、Vaccines(2003)2(2):285−293頁;およびPineら、(2002)「Intranasal immunization with influenza vaccine and a detoxified mutant of heat labile enterotoxin from Escherichia coli(LTK63)」J.Control Release(2002)85(1−3):263−270。アミノ酸置換に関する数値基準は、参照として、その全体が本明細書に具体的に組み込まれているDomenighiniら、Mol.Microbiol(1995)15(6):1165−1167頁に記載されているADP−リボシル化毒素のAおよびBサブユニットの整列に基づくことが好ましい。
生体接着剤および粘膜接着剤もまた、本明細書におけるアジュバントとして使用できる。好適な生体接着剤としては、エステル化ヒアルロン酸ミクロスフェア類(Singhら(2001)J.Contl.Rele70:267−276頁)またはポリ(アクリル酸)、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、多糖類およびカルボキシメチルセルロースの架橋誘導体などの粘膜接着剤が挙げられる。キトサンおよびその誘導体もまた、本発明におけるアジュバントとしても使用できる。例えば、国際公開第99/27960号。
微粒子もまた、本明細書におけるアジュバントとして使用できる。ポリ(ラクチド−コ−グリコリド)を有する生分解性かつ非毒性(例えば、ポリ(α−ヒドロキシ酸)、ポリヒドロキシ酪酸、ポリオルトエステル、ポリアンヒドリド、ポリカプロラクトンなど)である材料から形成された微粒子(すなわち、直径が約100nmから約150μm、より好ましくは直径が約200nmから約30μm、最も好ましくは直径が約500nmから約10μm)が好ましく、負に荷電した表面(例えば、SDSによる)または正に荷電した表面(例えば、CTABなどのカチオン性界面活性剤による)を有するように任意に処理される。
アジュバントとしての使用に好適なリポソーム製剤の例は、米国特許第6,090,406号、米国特許第5,916,588号、および欧州特許出願第0 626 169号に記載されている。
本発明の使用に好適なアジュバントとしては、ポリオキシエチレンエーテル類およびポリオキシエチレンエステル類が挙げられる。国際公開第99/52549号。このような製剤としては、さらにオクトキシノールと組み合せたポリオキシエチレンソルビタンエステル界面活性剤(国際公開第01/21207号)ならびにオクトキシノールなどの少なくとも1種のさらなる非イオン性界面活性剤と組み合せたポリオキシエチレンアルキルエーテル類またはエステル界面活性剤(国際公開第01/21152号)が挙げられる。
PCPP製剤は、例えば、Andrianovら、「Preparation of hydrogel microspheres by coacervation of aqueous polyphophazene solutions」、Biomaterials(1998)19(1−3):109−115頁およびPayneら、「Protein Release from polyphosphazene Materials」、Adv.Drug.Delivery Review(1998)31(3):185−196頁に記載されている。
本発明におけるアジュバントとしての使用に好適なムラミルペプチド類の例としては、N−アセチル−ムラミル−L−トレオニル−D−イソグルタミン(thr−MDP)、N−アセチル−ノルムラミル−L−アラニル−d−イソグルタミン(nor−MDP)、およびN−アセチルムラミル−l−アラニル−d−イソグルタミニル−l−アラニン−2−(1’−2’−ジパルミトイル−sn−グリセロ−3−ヒドロキシホスホリルオキシ)−エチルアミンMTP−PE)が挙げられる。
本発明におけるアジュバントとしての使用に好適なイミダゾキノロン化合物の例としては、Stanley、「Imiquimod and the imidazoquinolones:mechanism of action and therapeutic potential」Clin Exp Dermatol(2002)27(7):571−577頁およびJones、「Resiquimod 3M」、Curr Opin Investig Drugs(2003)4(2):214−218頁にさらに記載されたイミカモドおよびその同族体が挙げられる。
(1) サポニンと水中油乳濁液(国際公開第99/11241号);
(2) サポニン(例えば、QS21)+非毒性LPS誘導体(例えば、3dMPL)(国際公開第94/00153号を参照);
(3) サポニン(例えば、QS21)+非毒性LPS誘導体(例えば、3dMPL)+コレステロール;
(4) サポニン(例えば、QS21)+3dMPL+IL−12(任意に+ステロール)(国際公開第98/57659号);
(5) 2dMPLと、例えば、QS21および/または水中油乳濁液との組合せ(欧州特許出願公開第0835318号、欧州特許出願公開第0735898号および欧州特許出願公開第0761231号を参照);
(6) より大きな粒径乳濁液を生成するためにサブミクロン乳濁液にマイクロ流動化されたか、または渦巻かせた、10%スクワレン、0.4%ツウィーン80、5%プルロニック−ブロックポリマーL121、およびthr−MDPを含有するSAF;
(7) 2%スクワレン、0.2%ツウィーン80、およびモノホスホリリピドA(MPL)、トレハロースジミコレート(TDM)、および細胞壁骨格(CWS)好ましくはMPL+CWS(Detox(商標))よりなる群から1種以上の細胞壁成分を含有するRibi(商標)アジュバントシステム(RAS)(Ribi Immunochem);
(8) 1種以上の無機塩(アルミニウム塩など)+LPSの非毒性誘導体(3dPMLなど);および/または
(9) 1種以上の無機塩(アルミニウム塩など)+免疫刺激性オリゴヌクレオチド(CpGモチーフを含むヌクレオチド配列など)。
本発明におけるアジュバントとしての使用に好適なヒト免疫調節剤としては、インターロイキン類(例えば、IL−1、IL−2、IL−4、IL−5、IL−6、IL−7、IL−12など)などのサイトカイン類、インターフェロン類(例えば、インターフェロン−γ)、マクロファージコロニー刺激因子、および腫瘍壊死因子が挙げられる。
本発明の組成物は、種々の形態で調製できる。例えば、該組成物は、液体溶液などの注射剤として調製できる。注射前の液体媒体中の溶液または懸濁液に好適な固形形態もまた調製できる(例えば、凍結乾燥組成物)。該組成物は、例えば、軟膏、クリームまたは粉剤として局所投与用に調製できる。該組成物は、例えば、錠剤またはカプセル剤、スプレー剤、またはシロップ剤(任意に風味付けされた)として経口投与用に調製できる。該組成物は、例えば、微粉末またはスプレーを用いて吸入剤として肺投与用に調製できる。該組成物は、座薬またはペッサリーとして調製できる。該組成物は、例えばドロップ剤として、鼻投与、耳投与または眼投与用に調製できる。該組成物は、組合せ組成物が、患者への投与直前に再構成されるようにデザインされたキット形態であり得る。このようなキットには、液体形態で1種以上の抗原および1種以上の凍結乾燥抗原を含んでなり得る。
本発明の組成物は、一般に患者に直接投与される。直接送達は、非経口的注射(例えば、皮下、腹腔内、静脈内、または組織の間質空間に)により、あるいは直腸、経口(例えば、錠剤、スプレー)、膣、局所、経皮(例えば、国際公開第99/27961号を参照)または経皮的(例えば、国際公開第02/074244号および国際公開第02/064162号)鼻腔内(例えば、国際公開第03/028760号を参照)眼球、耳、肺または他の粘膜投与により達成できる。本発明は、全身および/または粘膜免疫性を誘発するために使用できる。
本発明の組成物を送達する粒子媒介法は、当業界に公知である。したがって、調製および好適に精製されたら、同じくコードする上記抗原またはNOIは、当業界に公知の種々の技法を用いてコア担体粒子上にコーティングできる。担体粒子は、遺伝子銃装置からの細胞内送達に典型的に用いられる粒径範囲内で好適な密度を有する材料から選択される。最適の担体粒径は、もちろん、標的細胞の直径に依存する。
宿主哺乳動物対象
本明細書に用いられる用語の「宿主哺乳動物対象」とは、限定することなく、ヒトおよびチンパンジーおよび他の類人猿などの非ヒト霊長類ならびにサル種などの他の霊長類;ウシ、ヒツジ、ブタ、ヤギおよびウマなどの家畜;イヌおよびネコなどのペット;マウス、ラットおよびモルモットなどのげっ歯類を含む実験室動物;ニワトリ、七面鳥および他のキジ鳥類、アヒル、雌ガチョウなどの家畜鳥、野生鳥およびゲーム鳥を含む鳥類などの亜門コルデータ(cordata)を意味する。この用語は、特定の年齢を意味しない。したがって、成人および新生児双方の個体を包含するように意図されている。全てこれらの脊椎動物の免疫系が同様に操作されることから、本明細書に記載された方法は、上記のいずれの脊椎動物種の使用が意図されている。哺乳動物の場合、対象は、ヒトであることが好ましいが、家畜類、実験室対象またはペット動物もまたあり得る。
本発明はまた、薬剤(例えば、ワクチン類などの免疫原性組成物)または診断試薬としての使用のために本発明の組成物を提供する。本発明はまた:(i)免疫原性疾患を治療または予防するための薬剤、の製造に該組成物の使用を提供する。本発明はまた、本発明による治療的有効量の組成物を患者に投与することを含んでなる、患者を治療する方法を提供する。
予防または治療は、単回時点または複数回時点における単独の直接投与により達成できる。点眼を経る粘膜投与などの幾つかの投与経路は、より高い用量を必要とし得る。当業者は、特定の送達経路に適合させるために投与量と濃度を調整できる。
本発明による安定化bAREタンパク質および安定化AB5タンパク質は、ヒトにおける感染症および/または疾患の予防または治療に用いることができる。LTK63などの変異体AB5分子はまた、ヒトにおける感染症および/または疾患の予防または治療に用いることができる。特に、安定化LTK63は、第2の抗原との混合物における非毒性粘膜アジュバントとして有用である。LTK63変異体の調製および粘膜アジュバントとしてこれらの変異体のワクチン類への製剤化は、Tierneyら、J Infect Dis 188(2003)753−8頁;およびBaudnerら、Vaccine 21(2003)3837−3844頁;およびビオシンSpA(現在キロンSpA)の国際特許出願国際公開第93/13202号および国際公開第97/02348号などの出願者の先の刊行物および特許出願に詳細に記載されており、これらの開示は、それらの全体および全ての目的のために、参照としてその全体が本明細書に組み込まれている。
本発明の組成物は、限定はしないが、肺炎、心臓血管病、アテローム性動脈硬化症、気管支炎、咽頭炎、喉頭炎、静脈洞炎、閉塞性肺疾患、喘息、慢性閉塞性肺疾患、反応性関節炎、中耳炎、腹大動脈瘤、結節性紅斑、ライター症候群、類肉腫、アルツハイマー病、多発性硬化症、性病性リンパ肉芽種、眼トラコーマ、骨盤炎症性疾患、封入体結膜炎、性器トラコーマ、乳児肺炎、初発性トラコーマ、角膜炎、乳頭肥大、角膜浸潤、外陰部膣炎、粘液膿性鼻炎、耳管炎、子宮頚炎、子宮頚部濾胞、前立腺炎、直腸炎、尿道炎、鼠径リンパ肉芽腫、気候性横痃、熱帯性横痃、および/またはエスチオメーヌなどの疾患を予防および/または治療するために使用できる。
本発明のbARE組成物を含んでなるキットもまた、本発明に含まれる。キットはまた、アジュバントを含むことができ、生体分子を投与する使用説明書により遺伝子アジュバントは、bARE組成物と、またはその一部と共に投与されることが好ましい。キットの他の好ましい成分は、bARE組成物を投与するためのアプリケーターを含む。本明細書に用いられる用語の「アプリケーター」とは、限定はしないが、皮下注射器、遺伝子銃、粒子加速装置、ネブライザー、ドロッパー、気管支鏡、座薬、タンポンなどの含浸またはコーティングされた膣挿入可能な材料、圧注剤、膣洗浄液、滞留浣腸製剤、座薬、または全身的または粘膜的または経皮的にbARE組成物を宿主対象に適用するための直腸または結腸洗浄液などの任意の医療用具を称す。
LTK63、約82KDaのオリゴマータンパク質は、天然分子の構造的構成を保持するサブユニットA上の部位特異的変異誘発により得られる、LT(易熱性腸毒素)の非毒性変異体である。LTK63のサブユニットAは、27KDaのMWを有する240のアミノ酸のポリペプチド単鎖により構成される。サブユニットBは、55KDaのMWを有する各々103のアミノ酸の5つの同一モノマーにより形成されるペンタマーである。両サブユニットは、正荷電アミノ酸を高いパーセントで含有する(サブユニットA IP=6.3;サブユニットB5、IP=9.1;完全AB5IP=8.5)。
TSK G3000SWxlに対する従来のGF−HPLC分析
装置:Alliance 2695 Waters
緩衝液:KPi 100nM+Na2SO4 100mM pH7.2
流量:0.5ml/分
検出:PDA996(登録商標)214nmおよび280nm
カラム:TSK G3000SWxl Tosoh
材料:シリカゲル
表面修飾:残りの−OH基
粒径:5μm
多孔度:250A。
装置:Alliance 2695 Waters
緩衝液:KPi 100nM+Na2SO4 100mM pH7.2
流量:0.5ml/分
検出:PDA996(登録商標)214nmおよび280nm
カラム:Ultrahydrogel 250 Waters
材料:ヒドロキシル化ポリメタクリレート
表面修飾:残りの−COOH基
粒径:6μm
多孔度:250A。
表1は、部分的に解離されたAB5サンプル(AB5体およびB5体の双方を含有する)を、実施例1に記載されたUltrahydrogelカラム分離システムから溶出するために使用される4種の緩衝液の組成物を示している。
(分画およびSDS−PAGE)
本発明によるGF−HPLC分離で得られたピークのタンパク質のAB5体およびB5体への帰属を立証するために、部分的解離のLTK63サンプルを、図4のクロマトグラムに示されたとおり分離した。さらなる調査のためにサンプルを分画した。分画のために、サンプルを、実施例1に記載された新規クロマトグラフィシステムに3回注入し、500μl容量の6つのフラクションを、13.8分から19.8分の各操作において採取した。次いで各操作の同じフラクションを集めて1.5ml/フラクションの最終容量を得た。次にフラクション0〜5を、HPLCシステムに再注入し、SDS−PAGEにより分析した。この結果は、図5Aと図5Bに示され、LTK63サンプルの分離が図4に示されるフラクションについて、それぞれのクロマトグラムおよびSDS−PAGEプロフィルを示している。フラクション1および2に存在するより短い保持時間(RT)を有するピークは、B5のみを含有するが、フラクション3および4に存在するより長いRTを有するピークは、SDS−PAGEにおいてAB5を表すAおよびBmの2本の明瞭なバンドとして移動する。
Ultrahydrogelカラムの検量線を、公知のMWの標準タンパク質により作成した。対応するR2は0.95であった(図5C)。
GF−HPLCピークのさらなる特性決定は、GF−HPLC:18度Dawn EOS Wyatt(図5Eを参照)に連結されたオンライン光散乱(MALLS)検出器の使用により得られた。このインタセプトは、MWを得る。初発スロープは、各スライスに関する半径値を得る。
天然のLTK63およびGF−HPLC分画により得られた3種のサンプルを、ピーク帰属を確認するためにLC−ESI−MS上で分析した。使用される装置の詳細は以下のとおりである:
装置:Alliance 2695 Waters
検出: PDA 996 Waters
MS ZQ 4000 Micromass
RPカラム:Jupiter Phenomenex C4
300Å。
(新旧HPLC技法間の比較実施例)
AB5タンパク質など、bAREタンパク質の機能的完全性は、その完全多量体構造を損失することなく評価できるため、当業界への貢献が重要となる新規GF−HPLC法が開発された。
本発明の分析法および安定化剤の同定ならびに物理的および/またはbAREタンパク質の機能的安定性の開発前に、安定性の問題は、種々の緩衝液中、種々の貯蔵温度で変異体LT K63など、bAREタンパク質の純粋濃縮バルクの長期保存中に見られた。
沈殿/結晶化を避けてLT K63を安定化させる第1の試みは、タンパク質安定性に影響を及ぼす幾つかのパラメータの変動と共に4℃で実施された。酢酸、クエン酸、リン酸およびトリス緩衝液などの種々の緩衝液が選択された。NaCl濃度は、0〜0.5Mの範囲で変化させ;pHは、5.5〜7.5の範囲で変化させ;糖類、界面活性剤、キレート化剤およびアミノ酸などの種々の添加物が使用された。タンパク質濃度は、用いられる貯蔵用緩衝液の全てにおいて0.8〜1.2mg/mlの範囲で維持された。この実験は、静止条件下および4℃でロータ撹拌機でサンプルを振とうすることにより実施された。振とう実験は、貯蔵条件に応力をかけ、LT K63の沈殿を促進するように設定された。
振とう1日目および6日目におけるペレット(示されていない)および上澄液(図6を参照)のSDS−PAGEによる分析が実施された。静止サンプルとは異なり、振とう条件において、貯蔵緩衝液に依ってAB5の部分解離が生じ、この上澄液は、Bモノマー(Bm)またはBサブユニット(BX)のオリゴマー体に富んでいる。
実施例4(b)のSDS−PAGE結果により、振とう条件下のLT K63タンパク質は不安定であり、AとBのサブユニットは、解離することを示した。LTK63タンパク質の安定性に対する2種の貯蔵用緩衝液、CHAPSおよびL−アルギニンの効果を調べた。2種の貯蔵用緩衝液は:pH7.7の20mMリン酸とCHAPSおよびpH7.7の20mMリン酸とL−アルギニンが選択された。
図7は、静止条件および振とう条件の双方において、1.5〜2.0mg/mlまでタンパク質濃度を増加させることは、LT K63の沈殿に影響を及ぼし;一方、0.05%〜0.5%範囲のCHAPS濃度は、LT K63挙動に有意に影響を及ぼさず;CHAPS沈殿サンプルのSDS−PAGEは、静止条件および振とう条件の双方においてLT K63解離を示さなかったことを示している。
1.5mg/ml以上のタンパク質濃度に関して、CHAPSの包含は、LT K63の沈殿に対して保護効果を有するとは思われない。しかしながら、CHAPSの包含は、AB5タンパク質をそのサブユニット体への解離から保護するように思われる。
図8は、静止条件下で、17mg/mlまでタンパク質濃度を増加させても、タンパク質沈殿に影響を及ぼさなかったが、一方、振とう条件下では、LT K63の沈殿が、2.0mg/mlの濃度でさえも生じ;50mM〜400mMの範囲のL−アルギニン濃度は、有意にLT K63沈殿に影響を及ぼさず;一方、振とう条件下でL−アルギニン沈殿サンプルのSDS−PAGEは、LT K63解離を示しているように思えることが示されている。
L−アルギニンは、極めて高いタンパク質濃度までタンパク質沈殿を防止できたが、L−アルギニンは、LT K63解離に対する効果を有するように思われる。
(結果6)
旧HPLC法(図9(a)では、天然の多量体AB5タンパク質とその解離B5サブユニット形態とを識別できないが、一方、新規HPLC法では、種々の濃度のアルギニン(0.2M、0.3Mおよび0.4M)を使用し、本発明の分析方法を用いて得られたピーク下の面積パーセントを算出することによって、AB5形態とB5形態との分離だけでなく、解離形態と非解離形態との相対量の定量化が可能になることが、図9(a)および9(b)の解析により示される。
LT K63の解離の程度により、非沈殿サンプルでも生じるB5サブユニット体の出現が判断され、これはL−アルギニン濃度に依存していると考えられる。
L−アルギニン濃度に対するLT K63解離の依存性を、種々のLT K63濃度(1.4mg/mlと4.0mg/ml)における静止サンプル下で本発明の新規なHPLC分析法を用いて検討された。
B5の増加は、静止サンプルにおいてさえも生じ、L−アルギニン濃度に依存することが、図10(a)および図10(b)の分析により示される。直線回帰分析のスロープは、AB5タンパク質の解離の程度が、AB5タンパク質濃度に依存しないことを示している。
(方法論)
静止条件下でのLT K63解離に対するCHAPS効果を、本発明の新規なHPLC法を用いて評価した。CHAPSの包含により、LT K63(図11(a))に対する解離作用が示されないこと;L−アルギニン処理サンプルにおけるB5の増加が、0.05%CHAPSの添加により部分的に阻止される(図11(b))ことが、図11(a)と11(b)の解析により示された。
LT K63の不安定性は、2つの異なる現象に依る:結晶化/沈殿。2種の添加物、CHAPSおよびL−アルギニンが、LT K63タンパク質を相乗的に安定化させるために選択された。CHAPSは、高いLT K63濃度(約2mg/ml)でLT K63沈殿を防止することができないが、解離作用は見られなかった。L−アルギニンは、極めて高いLT K63濃度(約17mg/ml)でタンパク質沈殿を防止するが、L−アルギニンは、AB5解離作用を有し得る。
1.3mg/mlのタンパク質濃度のLTK 63を、L−アルギニンおよびCHAPSの種々の濃度を含有する貯蔵用緩衝液中2〜8℃に維持してタンパク質解離および沈殿に対するこれら2種の安定化剤の効果をチェックした。サンプル中のB5パーセンテージを、貯蔵8ヵ月までHPLC分析により測定した。
表4(a)および図12は、ある期間に亘る1.3mg/mlのタンパク質濃度でのLTK 63の安定性に対するL−アルギニン(50mM〜400mM)およびCHAPS(0.25%)の効果を示す。タンパク質沈殿(ppt)は、対照サンプルおよび約4ヵ月に相当する118日後の振とうサンプルに見られた。118日後の静止サンプルのいずれにも沈殿は見られなかった。しかしながら、約8〜9ヵ月に相当する246日後の5つの静止サンプルのうち2つに沈殿が見られた。
(方法論)
タンパク質解離と沈殿に対するCHAPS(0.25%)およびL−アルギニン(50mM〜400mM)の効果を、経時的(0日、2日、5日、12日、27日、55日、118日および256日)に調べた。
LTK 63の安定性に対するL−アルギニンの効果が、L−アルギニンが、タンパク質沈殿に対して保護する意味で確かめられた。50mM以上のL−アルギニン濃度が含まれた場合、LTK63沈殿に対する保護は、LTK63貯蔵の8ヵ月間まで得られた(表4と表5)。一方、L−アルギニンは、LTK 63に対して僅かな解離作用を有する(図12と図13を参照)。時間経過のB5パーセンテージにより得られた線形フィッティングのスロープ比較により、その解離はL−アルギニン濃度に依存していることを示している。すなわち、L−アルギニン濃度が高くなるほど、その解離が速くなる(表4および表5を参照)。しかしながら、B5パーセンテージの増加は、1ヵ月当たり約0.1%から約0.27%の間の範囲であるので、その解離作用は許容できるものである。LTK 63の解離に対するCHAPSの効果もまた確認されたが(表4(b)および表5(b))、CHAPSは、タンパク質沈殿に対して完全には保護しない(表4(a)を参照)。LTK 63の濃度は、タンパク質解離および/または沈殿に対して影響が少ないと考えられる。
2.0mg/mlのタンパク質濃度でのLTK 63を、種々の濃度のCHAPSと組み合わせた200mML−アルギニンを含有する貯蔵用緩衝液中、2〜8℃で静止条件および振とう条件で維持した。サンプル中のB5パーセンテージを、貯蔵8ヵ月間までHPLC分析により測定した。B5パーセンテージの時間経過を実施し、線形フィッティングをプロットした。幾つかのサンプルにおいて、LTK 63の沈殿(ppt)が見られた。
L−アルギニンおよびCHAPSの存在下でもLTK 63は、長期振とう貯蔵、すなわち8ヵ月後に沈殿する(表6(a)を参照)。しかしながら、振とうによるタンパク質解離作用はなく(図14)、CHAPS濃度(0.05%〜0.25%の範囲で)の包含は、線形フィッティングのスロープにより測定されたとおり(表6(b))、解離に対するLTK 63の主要な保護効果を有さない。
2.0mg/mlのタンパク質濃度でLTK 63を、200mML−アルギニン単独を含有する貯蔵用緩衝液中、または0.05%CHAPSと組み合わせて、2〜8℃で静止条件および振とう条件で維持した。サンプル中のB5パーセンテージを、貯蔵7ヵ月間までHPLC分析により測定した。B5パーセンテージの時間経過をプロットし、線形フィッティングを実施した。
タンパク質解離に対するCHAPSの保護効果は、スロープの比較により示される(表6(b))。しかしながら、ダイアフィルトレーションステップ時のCHAPSの存在は、LTK 63の解離に対して負の効果を示しているように思われる(表6(b))。
我々の安定性試験により、LTK 63の純粋濃縮バルクは、2〜8℃での沈殿および−20℃での解離が貯蔵数ヵ月後に生じたという意味で長期不安定性(1年以上の期間に亘る)を示すことが立証された。50mM以上の濃度での貯蔵用緩衝液中のL−アルギニンの包含により、8ヵ月間に亘り2〜8℃の範囲の貯蔵温度でLTK 63の沈殿が防止された。L−アルギニン自体から生じる解離作用は、極めて僅かであると思われ、L−アルギニン濃度(1ヵ月当たり約0.1%から約0.27%の間の範囲でB5パーセンテージの増加)に依存する。CHAPSの包含により、長期貯蔵に亘るLTK 63の沈殿は防止されない。しかしながら、少なくとも0.05%のCHAPSの包含により、回帰分析スロープの比較により測定された約60〜80%のL−アルギニンによって生じた解離作用を減じることができる(表5(b)および7(b))。LTK 63の解離に対するCHAPSの保護作用は、0.05%と0.25%との間の範囲のCHAPS濃度に依存するようには思われない。2種の安定化剤の組合せにより、タンパク質沈殿の防止(物理的安定化)およびタンパク質解離の防止(機能的安定化)に関して相乗効果が提供されると考えられる。
新規分析法は、完全bAREクラスタンパク質と解離bAREクラスタンパク質との間を識別する非解離条件下でbAREタンパク質サンプルを分析するために開発された。この分析法は:
(i)AB5タンパク質などのbAREタンパク質の機能的完全性は、完全多量体構造の損失なしで評価でき;
(ii)AB5タンパク質などのbAREタンパク質の機能的安定性は、AB5タンパク質の非解離形態および解離形態について測定でき;
(iii)AB5タンパク質などのbAREタンパク質の機能的安定性に対する候補安定化剤の影響を測定できることから、当業界への貢献が重要となり得る。特にAB5タンパク質などのbAREタンパク質の機能的安定性に対する物理的安定化剤の影響を測定できる。
Claims (60)
- 実質的に完全なbAREクラスのタンパク質を含有する、組成物。
- 前記組成物が、安定化剤を含有する、請求項1に記載の組成物。
- 前記安定化剤が、荷電アミノ酸またはそのアナログである、請求項2に記載の組成物。
- 前記安定化剤が、アルギニンまたはリン酸アルギニンである、請求項3に記載の組成物。
- 前記アルギニンまたはリン酸アルギニンが、約100mM〜約400mMの量で存在する、請求項4に記載の組成物。
- 前記組成物が、非荷電物質またはそのアナログを含有する、請求項2に記載の組成物。
- 前記組成物が、両性イオン性物質を含有する、請求項6に記載の組成物。
- 前記両性イオン性物質が、両性イオン性界面活性剤である、請求項7に記載の組成物。
- 前記両性イオン性界面活性剤が、3−(3−コールアミドプロピル)−ジメチルアンモニオ−1−プロパンスルホネート(CHAPS)である、請求項8に記載の組成物。
- 前記両性イオン性界面活性剤が、約0.05重量体積(w/v)%〜約0.5重量体積(w/v)%の量で存在する、請求項9に記載の組成物。
- 前記組成物が、請求項3〜5のいずれか一項に記載の荷電アミノ酸またはアナログおよび請求項6〜9のいずれか一項に記載の非荷電物質を含有する、請求項2に記載の組成物。
- 前記bAREクラスタンパク質の完全性が、完全性比を参照して決定される、請求項1〜11のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記bAREタンパク質が、AB5タンパク質である、請求項1〜12のいずれか一項に記載の組成物。
- 前記bAREタンパク質が、LTK63タンパク質またはLTK72タンパク質である、請求項13に記載の組成物。
- bAREタンパク質を安定化する方法であって、bAREクラスタンパク質を提供する工程、および該bAREクラスタンパク質を安定化剤と合わせる工程を包含する、方法。
- 前記安定化剤が、荷電アミノ酸またはそのアナログである、請求項15に記載の方法。
- 前記安定化剤が、アルギニンまたはリン酸アルギニンである、請求項16に記載の方法。
- 前記アルギニンまたはリン酸アルギニンが、約100mM〜約400mMの量で存在する、請求項17に記載の方法。
- 前記安定化剤が、非荷電物質である、請求項15に記載の方法。
- 前記非荷電物質が、両性イオン性物質である、請求項19に記載の方法。
- 前記両性イオン性物質が、両性イオン性界面活性剤である、請求項20に記載の方法。
- 前記両性イオン性界面活性剤が、3−(3−コールアミドプロピル)−ジメチルアンモニオ−1−プロパンスルホネート(CHAPS)である、請求項21に記載の方法。
- 前記両性イオン性界面活性剤が、約0.05重量体積(w/v)%〜約0.5重量体積(w/v)%の量で存在する、請求項22に記載の方法。
- 前記安定化剤が、請求項16〜18のいずれか一項に記載の荷電アミノ酸、および請求項19〜23のいずれか一項に記載の非荷電物質を含む、請求項15に記載の方法。
- 前記bAREクラスタンパク質の安定化が、完全性比を参照して決定される、請求項15〜24のいずれか一項に記載の方法。
- 前記bAREタンパク質が、AB5タンパク質である、請求項15〜25のいずれか一項に記載の方法。
- 前記AB5タンパク質が、LTK63タンパク質またはLTK72タンパク質である、請求項26に記載の方法。
- 完全bAREクラスタンパク質と解離bAREクラスタンパク質とを識別する非解離条件下で、bAREクラスタンパク質を分析する、方法。
- 前記方法が、荷電ポリマー分離材上での分離工程を包含する、請求項28に記載の方法。
- 前記ポリマー分離材が、ヒドロゲルモノマーである、請求項29に記載の方法。
- 前記ヒドロゲルモノマーが、ヒドロキシル化ポリメタクリレート(HEMA)モノマーである、請求項30に記載の方法。
- 前記HEMAが、約6ミクロンの粒径を有する、請求項31に記載の方法。
- 前記HEMAが、約250Aの多孔度を有する、請求項31または32に記載の方法。
- bAREクラスタンパク質を分析する方法であって、該方法は、以下:
(i)解離bAREクラスタンパク質から完全bAREクラスタンパク質を分離するように構成された装置において、bAREクラスタンパク質を荷電ポリマー分離材に添加する工程;
(ii)該添加されたbAREクラスタンパク質を含む分離材を、イオン性緩衝液で処理する工程;および
(iii)1種以上の完全または解離bAREクラスタンパク質を検出する工程、
包含する、方法。 - 前記分離材が、請求項30〜33のいずれか一項に定義されるとおりである、請求項34に記載の方法。
- 前記イオン性緩衝液が、約7.0〜約8.0のpHを有する生理学的に受容可能な緩衝液である、請求項34または35に記載の方法。
- bAREクラスタンパク質の安定化剤を同定するための方法であって、該方法は、以下:
(i)bAREクラスタンパク質を、候補安定化剤と合わせて、bAREタンパク質サンプルを形成する工程;
(ii)解離bAREクラスタンパク質から完全bAREクラスタンパク質を分離するように構成された装置において、該bAREタンパク質サンプルを荷電ポリマー分離材に添加する工程;
(iii)該添加されたbAREクラスタンパク質を含む分離材を、イオン性緩衝液で処理する工程;
(iv)1種以上の完全または解離bAREクラスタンパク質を検出する工程;および
(v)該候補安定化剤が、bAREタンパク質の安定化剤であるか否かを決定する工程、
を包含する、方法。 - 前記bAREタンパク質サンプルの完全性比を計算する工程を包含する、請求項37に記載の方法。
- 前記bAREタンパク質サンプルの前記完全性比を、候補安定化剤を含まないコントロールの完全性比と比較する工程をさらに包含する、請求項38に記載の方法。
- 請求項37〜39のいずれか一項に記載の方法により同定される、安定化剤。
- 機能的安定化剤である、請求項40に記載の安定化剤。
- 物理的安定化剤である、請求項40に記載の安定化剤。
- 請求項1〜14のいずれか一項に記載の組成物を含有する、免疫原性組成物。
- アジュバントをさらに含有し、該アジュバントが前記bAREタンパク質ではない、請求項43に記載の免疫原性組成物。
- 前記アジュバントが、粘膜アジュバントである、請求項44に記載の免疫原性組成物。
- 免疫疾患を予防および/または治療するための医薬の調製における、請求項1〜14のいずれか一項に記載の組成物の使用。
- 請求項43〜45のいずれか一項に記載の組成物を投与する工程を包含する、免疫疾患を予防および/または治療するために哺乳動物を処置する方法。
- 前記哺乳動物が、ヒトである、請求項47に記載の方法。
- bAREタンパク質を物理的に安定化させるための荷電物質の使用。
- 前記荷電物質が、荷電アミノ酸塩基である、請求項49に記載の使用。
- 前記荷電アミノ酸が、正に荷電したアミノ酸である、請求項50に記載の使用。
- 前記正に荷電したアミノ酸が、アルギニンもしくはリン酸アルギニンまたはそれらのアナログである、請求項51に記載の使用。
- bAREタンパク質を機能的に安定化するための、非荷電物質またはそのアナログの使用。
- 前記非荷電物質が、両性イオン性物質である、請求項53に記載の使用。
- 前記両性イオン性物質が、両性イオン性界面活性剤である、請求項54に記載の使用。
- 前記両性イオン性界面活性剤が、3−(3−コールアミドプロピル)−ジメチルアンモニオ−1−プロパンスルホネート(CHAPS)である、請求項55に記載の使用。
- bAREタンパク質を安定化するための、荷電物質および非荷電物質またはそれらのアナログの組合せの使用。
- 前記荷電物質が、請求項50〜52のいずれか一項に定義されており、前記非荷電物質が、請求項53〜56のいずれか一項に定義されている、請求項57に記載の使用。
- 前記bAREタンパク質が、AB5タンパク質である、請求項49〜58のいずれか一項に記載の使用。
- 前記AB5タンパク質が、LTK63またはLTK72である、請求項60に記載の使用。
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