JP2003512450A - 可溶性ヒトcd23形成阻害剤としてのヒドロキサム酸誘導体 - Google Patents
可溶性ヒトcd23形成阻害剤としてのヒドロキサム酸誘導体Info
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Abstract
Description
およびアレルギーのような可溶性CD23(s−CD23)の過剰生産に伴う症
状の治療における該阻害剤の使用に関する。CD23(低結合性IgE受容体F
reRII、ブラスト2)は、BおよびTリンパ球、マクロファージ、天然キラ
ー細胞、ランゲルハンス細胞、単球および血小板を含む、種々の成熟細胞の表面
で発現する、45kDaの2型内在性蛋白質である(Delespesse et al, Adv Im
munol, 49 [1991] 149-191)。また、好酸球上にはCD23様分子がある(Gran
gette et al, J Immunol, 143 [1989] 3580-3588)。CD23は、免疫応答の調
節に関係している(Delespesse et al, Immunol Rev, 125 [1992] 77-97)。ヒ
トCD23は、細胞内N末端アミノ酸だけが異なる2つの異なって調節されるイ
ソ型、aおよびbとして存在する(Yokota et al, Cell, 55 [1988] 611-618)
。ヒトにおいて、構造a異性体はBリンパ球でのみ見出されるのに対して、IL
4により誘導されるb型はCD23を発現できる全ての細胞で見出される。 完全な細胞定着CD23(i−CD23)は、機構が未だあまり解明されてい
ない、複雑な一連のタンパク質分解性事象の結果として産生される、多数の明確
な可溶性フラグメント(s−CD23)の形成を誘導する、細胞表面からの切断
を受けることが知られている(Bourget et al J Biol Chem, 269 [1994] 6927-6
930)。未だ証明されていないが、蛋白質分解事象の主要な可溶性フラグメント
(分子量37、33、29および25kDa)は、それらの全てがi−CD23
に共通のC末端レクチン領域を保持し、37kDaフラグメントの初期形成を介
して連続的に生じると仮定されている(Letellier et al, J Exp Med, 172 [199
0] 693-700)。代わりの分子内開裂経路は、C末端ドメインでi−CD23とは
異なる安定な16kDaフラグメントを導く(Grenier-Brosette et al, Eur J
Immunol, 22 [1992] 1573-1577)。
は、IgE調節で役割を果たすことが示されている。各々の活性は:a)抗原表
示、b)IgE媒介好酸球細胞毒性、c)リンパ節および脾臓の胚中心に存在す
るB細胞、およびd)IgE合成のダウンレギュレーションを含む(Delespesse
et al, Adv Immunol, 49, [1991] 149-191)。3つの高分子量可溶性CD23
フラグメント(分子量37、33および29kDa)は、多機能性サイトカイン
特性を有し、IgE産生で主な役割を果たすとことは明らかである。したがって
、s−CD23の過剰形成は、IgEの過剰生産、外因性喘息、鼻炎、アレルギ
ー性結膜炎、湿疹、アトピー性皮膚炎およびアナフィラキシーのようなアレルギ
ー疾患の顕著な特徴に関連付けられる(Sutton and Gould, Nature, 366, [1993]
421-428)。s−CD23に帰する他の生物学的活性は、B細胞増殖の刺激、単
球からのメディエーターの放出の誘発を含む。したがって、高レベルのs−CD
23は、B−慢性リンパ球白血病を患っている患者の血清中で(Sarfati et al,
Blood, 71 [1988] 94-98)、およびリウマチ様関節炎を患っている患者の滑液
中で観察される(Chomarat et al, Arthritis and Rheumatism, 36 [1993] 234-
242)。CD23が炎症において一の役割を有することは、多くの供給源で示唆
されている。第1に、sCD23は、活性化された場合、炎症の細胞媒介事象に
関連する細胞外受容体に結合することが報告されている。したがって、sCD2
3は、単球TNF、IL−1およびIL−6放出を直接活性化することが報告さ
れている(Armant et al, vol 180, J.Exp. Med., 1005-1011 (1994))。CD2
3は、単球/マクロファージ上でB2−インテグリン吸着分子、CD11bおよ
びCD11cと相互作用し(S. Lecoanet-Henchoz et al, Immunity, vol 3; 11
9-125 (1995))、NO2 −、過酸化水素およびサイトカイン(IL−1、IL−
6およびTNF)放出を引き起こすと報告されている。最後に、IL−4または
IFNは、CD23の発現およびヒト単球によるsCD23のような放出を誘発
する。膜定着CD23受容体とIgE/抗−IgE免疫錯体または抗CD23m
Abとのライゲーションは、cAMPおよびIL−6産生およびトロンボキサン
B2形成を活性化し、それにより、炎症におけるCD23の受容体媒介役割が証
明される。 CD23のこれらの種々の特性のため、s−CD23の形成を阻害する化合物
は、a)B細胞の表面でi−CD23のレベルを維持することによりIgE合成
の負のフィードバック阻害を増加する、およびb)s−CD23の高分子量可溶
性フラグメント(分子量37、33および29kDa)の免疫刺激性サイトカイ
ン活性を阻害する、2面的の作用を有するはずである。加えて、CD23切断の
阻害は、sCD23誘導単球活性化およびメディエーター形成を緩和し、したが
って炎症応答は軽減するにちがいない。 国際特許出願番号WO96/02240(Smithkline Beecham plc)は、マト
リックス金属プロテアーゼ(例えば、コラゲナーゼ、ストロメリシンおよびゼラ
チナーゼ)の作用を阻害する化合物は、哺乳類の細胞培養系にトランスフェクト
されるヒト可溶性CD23の効果的な阻害剤であることを開示している。
Limited)は、式(A):
開示している。
I):
可溶性CD23の放出の効果的な阻害剤であることを開示している。
い生物学的利用能を有することを見出した。 したがって、本発明は: nが0であり; Rがイソプロピルであり; R1がナフチルメチルであり; R2がt−ブチルであり;および R3がメチルである 式(I)で示される化合物を提供する。
ー、炎症疾患および自己免疫疾患のような疾患の治療または予防用の医薬の製造
における本発明の化合物の使用を提供する。 さらなる態様において、本発明は、s−CD23の過剰生産が関与するアレル
ギー、炎症疾患および自己免疫疾患のような疾患の治療または予防方法であって
、本発明の化合物を、その治療または予防を必要とするヒトまたは非ヒト哺乳類
に投与することを特徴とする方法を提供する。 また、本発明は、s−CD23の過剰生産が関与するアレルギー、炎症疾患お
よび自己免疫疾患のような疾患の治療または予防用の医薬組成物であって、本発
明の化合物およびそのための任意の医薬上許容される担体を含んでなる医薬組成
物を提供する。 特別な炎症疾患は、アルツハイマー病、多発性硬化症および多梗塞性痴呆症な
どのCNS障害、ならびに発作および頭部外傷の炎症媒介続発症を含む。 本発明の化合物の医薬上許容される塩、溶媒和物および多の医薬上許容される
誘導体もまた、本発明に含まれることが理解できる。 式(I)で示される化合物の塩は、例えば無機または有機酸から導かれる酸付
加塩、例えば塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩、p−トルエンスルホン酸
塩、リン酸塩、硫酸塩、酢酸塩、トリフルオロ酢酸塩、プロピオン酸塩、クエン
酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、マロン酸塩、コハク酸塩、乳酸塩、シュウ酸
塩、酒石酸塩および安息香酸塩を含む。
かれる塩、例えば、カリウム塩のようなアルカリ金属塩、モルホリン、ピペラジ
ン、ジメチルアミンまたはジエチルアミン塩のような有機アミン塩を含む。 意外にも、本発明の化合物は、経口経路を経て、インビボで、有利な吸収特性
を示し、ならびにCD23産生の強力および選択的な阻害剤であることが見出さ
れている。 本発明の化合物は、いずれか適当な従来の方法、例えば、特許公報WO97/
02239(British Biotech Pharmaceuticals Limited)に記載されている方
法と類似の方法を使用することにより製造できる。
造法であって: (a)式(II):
とする方法を提供する。
さらなる態様を形成する。 式(II)で示される化合物は、式(III)で示される化合物から、保護ヒ
ドロキシアミンとの反応により製造できる。1つの保護ヒドロキシ基を有する式
(III)で示される化合物は、加水分解により式(III)で示される非保護
化合物に変換できる。 ヒドロキサム酸に関する適当な保護基は、当該分野に公知のものであり、ベン
ジル、トリメチルシリル、t−ブチルおよびt−ブチルジメチルシリルである。 カルボン酸に関する適当な保護基は、当該分野に公知のものであり、t−ブチ
ル、ベンジルおよびメチルを含む。
の後、ヒドロキシル基をアルキル化する必要がある。
造できる。
エステル(例えば、ジメチルまたはジエチルエステル)とR1がナフチルメチル
、X’が臭素またはヨウ素のような脱離基である式R1X’で示される化合物と
を、リチウムジイソプロピルアミドのような強塩基の存在下で反応させ、ついで
エステル基を除去するために得られた化合物を加水分解することにより製造でき
る。
は個々の異性体として製造できる。個々の異性体は、適当な方法により製造でき
、例えば、個々の立体異性体は、キラル物質から立体特異的化学合成により、ま
たは公知の方法を使用するジアステレオ異性体の混合物の分離により製造できる
。好ましい態様において、本発明は、式(IA):
的特性を有する。好ましくは、活性化合物は、医薬上許容される組成物として投
与される。 好ましくは、組成物は経口投与に適応させる。しかし、これらは、気道疾患の
治療用の他の投与形態、例えば、噴霧、エアロゾルまたは吸入用の他の従来の方
法;または心不全を患っている患者の非経口投与形態に適応できる。他の代わり
の投与形態は、舌下または経皮投与を含む。 組成物は、錠剤、カプセル、粉末、顆粒、ロゼンジ、坐剤、還元粉末または経
口または滅菌非経口溶液または懸濁液のような液体製剤の形態であってもよい。 投与の一貫性を得るため、本発明の組成物は単位投与量の形態であることが好
ましい。 経口投与用の単位投与量剤形は、錠剤およびカプセルの形態であってもよく、
従来の賦形剤、例えば、結合剤、例えば、シロップ、アカシア、ゼラチン、ソル
ビトール、トラガカントまたはポリビニルピロリドン;充填剤、例えば、ラクト
ース、糖、トウモロコシデンプン、リン酸カルシウム、ソルビトールまたはグリ
シン;錠剤滑剤、例えば、ステアリン酸マグネシウム;崩壊剤;例えば、スター
チ、ポリビニルピロリドン、スターチグリコール酸ナトリウムまたは微結晶セル
ロース;または医薬上許容される湿剤、例えばラウリル硫酸ナトリウムを含んで
いてもよい。 固体経口組成物は、混合、充填または打錠の従来の方法により製造できる。繰
り返しの混合操作を、活性成分を充填剤を大量に使用する組成物に完全に分布さ
せるために使用できる。このような操作は当該分野では慣習的に行われている。
錠剤は通常の医学的方法でよく知られた方法、特に、腸溶コーティングによりコ
ートできる。
もよく、水または他の適当なビヒクルで、使用前に還元する乾燥粉末であっても
よい。このような液体製剤は、従来の添加剤、例えば、懸濁化剤、例えば、ソル
ビトール、シロップ、メチルセルロース、ゼラチン、ヒドロキシエチルセルロー
ス、ステアリン酸アルミニウムゲル、水素化食用油;乳濁化剤、例えば、レシチ
ン、ソルビタンモノオレエートまたはアカシア;非水性ビヒクル(食用油を含む
)、例えば、アーモンド油、部分ココナッツ油、油性エステル、例えば、グリセ
リン、プロピレングリコールまたはエチルアルコールのエステル;防腐剤、例え
ば、メチルまたはプロピルp−ヒドロキシベンゾエートまたはソルビン酸;およ
び所望により従来のフレーバーまたは着色剤を含んでいてもよい。 非経口投与に関して、流動性単位剤形は、化合物および滅菌ビヒクルを利用し
製造され、使用される濃度に依存して、ビヒクル中に懸濁または溶解できる。溶
液の製造において、化合物を注射用の水に溶かし、適当なビンまたはアンプルに
充填する前に濾過滅菌し、封をする。有利には、局部増井剤、防腐剤および緩衝
剤のような補助剤は、ビヒクルに溶解できる。安定性の増加のため、組成物はビ
ンに充填後冷凍でき、減圧下で水を除去できる。非経口懸濁液は、化合物をビヒ
クルに溶解することの代わりに懸濁し、滅菌が濾過により成されないこと以外は
、実質的に同様の方法で製造できる。化合物は、滅菌ビヒクルに懸濁する前にエ
チレンオキシドに曝すことにより滅菌できる。有利には、界面活性剤または滑剤
は、化合物が均一に分布するように組成物に含まれる。
フ、エアロゾルまたは溶液、または吸入用の微小粉末のように単独またはラクト
ースのような不活性担体と組み合わせて製造できる。この場合、適当には活性化
合物の粒子は50ミクロンより小さい大きさであり、好ましくは、10ミクロン
より小さく、例えば1〜50ミクロン、1〜10ミクロンまたは1〜5ミクロン
の範囲の大きさである。適切な場合には、少量の他の抗喘息剤および気管支拡張
剤、例えば、交感神経興奮剤、例えば、イソプレナリン、イソエタリン、サルブ
タモール、フェニルレフニンおよびエフェドリン;キサンチン誘導体、例えばテ
オフィリンおよびアミノフィリン、およびコルチコステロイド、例えばプレドニ
ゾロンおよび副腎刺激剤、例えば、ACTHを含んでいてもよい。 組成物は、0.1重量%〜99重量%、好ましくは10〜60重量%の活性物
質を、投与方法に依存して含んでいてもよい。吸入投与の好ましい範囲は、10
〜99%、具体的には60〜99%、例えば90、95または99%である。
方法で、エアロゾルで投与できる。 適当な計量した投与量エアロゾル形態は、従来の推進剤、エタノールのような
共存溶質、オレイルアルコールのような界面活性剤、オレイルアルコールのよう
な滑剤、硫酸カルシウムのような乾燥剤および塩化ナトリウムのような密度調整
剤を含む。噴霧器用の適当な溶液は、例えば、pH4〜7に所望により緩衝化さ
れ、20mg/mlまでの化合物、より一般的には0.1〜10mg/mlの化
合物を含む、標準的な噴霧装置で使用される等張性滅菌溶液である。 有効量は、本発明の化合物の相対的な有効性、治療する疾患の重度および患者
の体重に依存する。適当には、本発明の組成物の単位剤形は、本発明の化合物の
0.1〜1000mg(吸入経路では0.001〜10mg)、より好ましくは
1〜500mg、例えば、1〜25または5〜500mgを含む。このような組
成物は、1日に1〜6回、より好ましくは、1日に2〜4回投与でき、1日の投与
量は、70kgの成人に対して1mg〜1g、より好ましくは5〜500mgと
いう意味である。これは、約1.4×10−2mg/kg/日〜14mg/kg
/日の範囲であり、より好ましくは7×10−2mg/kg/日〜7mg/kg
/日である。 以下の実施例は本明細書を説明するものであって、何ら限定するものではない
。
用して調査した。 RPMI8866細胞膜CD23切断活性分析: 高レベルのCD23を発現するRPMI8866細胞、ヒトEpstein−
Barrウイルス形質転換B−細胞株(Sarfati et al., Immunology 60 [1987
] 539-547)からの原形質膜を、水性抽出法を用いて精製する。均質化緩衝液(
20mM HEPES pH7.4、150mM NaCl、1.5mM MgCl2、1
mM DTT)に再懸濁した細胞をParrボンベでのN2キャビテーションに
より破壊し、他の膜と混合している原形質膜フラクションを10,000Xgで
遠心分離に付すことにより回収する。軽質ペレットを1〜3gの湿った細胞当た
り2mlの0.2Mリン酸カリウム(pH7.2)に再懸濁し、核ペレットを捨
てる。その膜を、膜タンパク質10〜15mg当たり合計16gの0.25Mシ
ュークロースでのデキストラン500(6.4%w/w)とポリエチレングリコ
ール(PEG)5000(6.4%w/w)(ref)の間に分配することによ
りさらに分画する[Morre and Morre, BioTechniques 7, 946-957 (1989)]。相
を、1000Xgで短時間遠心分離することにより分離し、PEG相(上部)を
収集し、pH7.4の20mMリン酸カリウム緩衝液で3〜5倍に希釈し、10
0,000Xgで遠心分離し、その相中の膜を回収する。ペレットを、リン酸緩
衝化生理食塩水に再懸濁させ、3〜4倍豊富な原形質膜、同様に他の細胞膜(例
えば、リソソーム、ゴルジ(Golgi))を含む。膜を分取し、−80℃で貯蔵す
る。6.6%デキストラン/PEGで分画し、10倍豊富な原形質膜を得る。
を得、その分析物をP30994の調製例1の化合物(5μM)でクエンチした
後、それを0.2ミクロンのDuraporeフィルタープレート(Millpore)での濾過
により膜から分離する。膜から放出されたsCD23を、The Binding Site(バ
ーミンガム、UK)からのEIAキットまたはMHM6抗−CD23 mAb[R
owe et al., Int. J. Cancer, 29, 373-382 (1982)]またはサンドウィッチEI
Aの捕獲抗体としての他の抗−CD23 mAbを利用する同様のキットを使用
して測定する。総容量50μlのリン酸塩緩衝化生理食塩水中、0.5μg膜蛋
白質で製造された可溶性CD23の量を、EIAにより測定し、種々の濃度の阻
害剤の存在下で得られた量と比較する。阻害剤を水またはジメチルスルホキシド
(DMSO)の溶液に製造し、最終のDMSO濃度は2%を超えることはない。
IC50を、sCD23の産生の50%阻害が、阻害剤なしでインキュベートさ
れた対照との間でsCD23の相違に関連して観察される濃度として曲線適合に
より測定する。 結果:N’−[4−(N−ヒドロキシアミノ)−3S−イソプロポキシ−2R
−(2−ナフチルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンメチルアミド
は、上記分析において、60nmのIC50を与えた。
験した。 コラゲナーゼ阻害分析: コラゲナーゼ阻害剤として作用する化合物の強度を、出典明示により本明細書
に組み入れられるCawstonおよびBarrett(Anal. Biochem. 99, 340-345, 1979)
の方法により測定し、試験する阻害剤の1mM溶液または希釈液を、コラーゲン
およびイー・コリからクローン化し、発現し、精製した滑液繊維芽細胞からのヒ
ト組換えコラゲナーゼを37℃で18時間インキュベートした(15mM塩化カ
ルシウム、0.05%Brij35、200mM塩化ナトリウムおよび0.02
%ナトリウムアジドを含む150mMのトリス、pH7.6で緩衝化した)。コ
ラーゲンはCawstonおよびMurphyの方法(Enzymology 80,711,1981の
方法)により製造される3H1型ウシコラーゲンでアセチル化した。試料を遠心
分離し、未消化コラーゲンおよび加水分解の測定としてシンチレーションカウン
ターでの分析用に取り出される放射活性な上清の分取を沈殿させた。1mM阻害
剤またはその希釈液の存在下のコラゲナーゼ活性を、阻害剤を欠く対照の活性と
比較し、結果をコラゲナーゼの50%に影響する濃度(IC50)として報告し
た。
した。 TNFαの、リポ多糖類(LPS)エンドトキシンにより刺激されたヒト単球
からの放出の阻害に関する分析。 10%ウシ胎児血清を補足したRPMI1640培地中で培養したヒト単球を
1000Xgで5分間遠心分離し、ついで培地に2×106細胞/mlで再懸濁
させる。その細胞懸濁液を24ウェルプレ−トに1ml/ウェルに分取する。試
験すべき化合物を、純粋なジメチルスルホキシド(DMSO)に溶解し、0.1
%の最終DMSO濃度の培養液に加える。化合物を反復して3つのウェルの細胞
に加える。TNFα放出を、LPSを200ng/mlの最終濃度で細胞に添加
することにより刺激する。また、適当な対照培養液も反復して3つのウェルに設
定する。プレ−トを37℃、5%CO2で18〜20時間インキュベートし、つ
いで1000Xgで5分間遠心分離する。ヒトTNFαに特異的なELISA(
SmithKline Beecham)を、無細胞培養上澄中のTNFレベルを測定するために使
用する。 結果:N’−[4−(N−ヒドロキシアミノ)−3S−イソプロポキシ−2R
−(2−ナフチルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンメチルアミド
は、10μMでTNF放出に対する効果を示さなかった。
を調査した。 雄のスプレーグ・ドーリー・ラット(Sprague dawley rat)における、静脈内
薬物動力学パラメータおよび経口生物学的利用能の評価の研究。 本研究は、4回の別々の研究日に、クロスオーバーする設計方式を使用して行
った。3匹のラットに、研究の開始の少なくとも3日前に、試験分子の注入用の
大腿骨血管カテーテルを外科的に埋めこんだ。本研究の全ての投与は、結晶性試
験化合物を使用して処方した。 研究の初日に、動物(肥育された)に、試験化合物を4.0μmol/kg(
4.0mL/kg)の標的投与量で、30分の静脈内注射で投与した。投与溶液
を、20%の水性エンカプシン(Encapsin(登録商標))(pH=8.0)中、
1%のDMSOを含ませて製造した。エンカプシン(Cerestar USA Inc., Hammo
nd, IN)は、別に非水性溶媒を使用して形成される必要がある化合物の溶解性を
増加させるために使用されるヒドロキシプロピル−ベータ−シクロデキストリン
、環状オリゴ糖類である。 研究の2日目に、動物(絶食した)に、8μmol/kg(16mL/kg)
の試験投与量で、経口投与により、溶液として試験化合物を投与した。1%のD
MSO含有の5%の水性コハク酸処理したブタゼラチン(pH=7.5)の投与
用溶液を調製した。 血液試料を尾の側脈から収集した。各々の全体の血液試料の標本25−μLを
、25μLの水に加え、約5分間氷上におき、完全な溶血を促進し;ついで試料
を分析まで冷凍して保存した。試験化合物の血中濃度を、LC/MS/MS(L
LQ=10.0ng/mL)により定量した。非コンパートメントおよびコンパ
ートメント薬物動力学分析の両方はWinNolinを使用するこれらのデータで行い、
適当な静脈内薬物動力学パラメータを得た。種々のコンパートメント実験および
秤量パラダイムを利用した。中央のコンパートメントからの1次エリミネーショ
ンを用いる2つのコンパートメント実験および1/Y2の重量で秤量する反復最
小自乗法に付し、標準モデル選択基準(すなわち、Akaike's Information Crite
rion Schwartz Criterion, and sum of squared residuals)に従って観察デー
タに最も適合するデータを得た。薬物動力学パラメータを、最も適合したコンパ
ートメント実験を使用して計算し;AUC値(生物学的利用能を含む)の使用を
必要とする全ての計算は、非コンパートメント分析から得たAUCを使用して行
った。
よび経口生物学的利用能を評価するための研究。 本研究は、7日を分けて、2回の別々の研究日に、クロスオーバーする設計方
式を使用して行った。3匹の雄のビーグル・イヌを本研究に使用した。各々の研
究日で、血液採取用のカテーテルを一時的に頭部の静脈に設置し;研究日の初日
だけ、また、カテーテルを一時的に、静脈内注射のために、伏在静脈に設置した
。 研究の初日に、各々の動物に、試験化合物を(2.0μmol/kg標的投与
)の試験投与量で、1時間の静脈内注射(4.0mL/kg)で投与した。投与
溶液を、20%の水性エンカプシン(Encapsin(登録商標))(pH=8.0)
中、1%のDMSOを含ませて製造した。エンカプシン(Cerestar USA Inc., H
ammond, IN)は、別に非水性溶媒を使用して形成される必要がある投与溶液の調
製において、溶解性を増加させるために使用されるヒドロキシプロピル−ベータ
−シクロデキストリン、環状オリゴ糖類(7グルコース単位)である。 研究の2日目に、各々の動物に、試験化合物(6.0μmol/kg標的投与
)を、経口投与(8.0mL/kg)により投与した。投与溶液を、5%の水性
コハク酸処理したブタゼラチン(pH=7.5)中に、1%のDMSOを含ませ
て製造した。 試験化合物の血漿中濃度を、LC/MS/MS(LLQ=10ng/mL)に
より定量した。非コンパートメント法を、血漿中濃度の種々の時間データの分析
に使用した。
ータおよび経口生物学的利用能を評価するための研究。 本研究は、7日を分けて、2回の別々の研究日に、クロスオーバーする設計方
式を使用して行った。3匹の雄のカニクイザルを本研究に使用した。各々の研究
日で、血液採取用のカテーテルを頭部の静脈に設置し;研究日の初日に、また、
カテーテルを一時的に、静脈内注射のために、伏在静脈に設置した。 研究の初日に、各々の動物(絶食)に、試験化合物を(2.0μmol/kg
標的投与)の試験投与量で、1時間の静脈内注射(4.0mL/kg)で投与し
た。投与溶液を、20%の水性エンカプシン(Encapsin(登録商標))(pH=
8.0)中、1%のDMSOを含ませて製造した。エンカプシン(Cerestar USA
Inc., Hammond, IN)は、別に非水性溶媒を使用して形成される必要がある投与
溶液の調製において、溶解性を増加させるために使用されるヒドロキシプロピル
−ベータ−シクロデキストリン、環状オリゴ糖類(7グルコース単位)である。 研究の2日目に、各々の動物(絶食)に、試験化合物(6.0μmol/kg
標的投与)を、経口投与(8.0mL/kg)により投与した。投与溶液を、5
%の水性コハク酸処理したブタゼラチン(pH=7.5)中に、1%のDMSO
を含ませて製造した。 血液試料を大腿骨血管のカテーテルから得;血漿を遠心分離により単離した。
試験化合物の血漿中濃度を、LC/MS/MS(LLQ=10ng/mL)によ
り定量した。非区画法を、血漿中濃度の種々の時間データの分析に使用した。
−(2−ナフチルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンメチルアミド
の結果を、N’−[4−(N−ヒドロキシアミノ)−3S−プロポキシ−2R−
(2−ナフチルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンメトキシアミド
の結果(WO99/67201(SmithKline Beecham)に開示されている)と比
較する。
T−試験分子の平均滞留時間;CL−全身血漿間隔;Vdss−分配体積の定常
状態;F−生物活性パーセントa 生物活性は、投与量規格化AUC0−t(tは(ラットでの実験の場合に)経
口切片から視察可能な試験化合物の濃度での最終時点または(イヌおよびサルの
実験の場合に)実験の機構または十二指腸内工程にて測定可能な薬物濃度での最
終時点をいう)の分割により、i.v.セグメントからの投与量規格化AUC0 −t に100で割り掛けることにより計算できる。b 各々の値は大きな変化で表記した;動物は、常に同じ順で表記した。
ラクトース
2−ナフチル)ブチレート(10g、31.9mmol)を−70℃でアルゴン
雰囲気化で撹拌し、リチウムビス(トリメチルシリル)アミド(1MのTHF中
溶液の63.7ml、63.7mmol)を滴下した。混合物を−60℃〜−7
0℃で1時間撹拌し、ついで−80℃に冷却し、THF(20ml)中のN−ヨ
ウドスクシニミド(7.17g、31.9mmol)をカニューレを通して加え
た。混合物を−30℃まで1時間にわたってか音し、ついで飽和塩化アンモニウ
ム溶液でクエンチした。酢酸エチル(2×)を加え、2相混合物を室温で1.5
時間急速に撹拌した。層を分割し、水層を5%のチオ硫酸ナトリウムおよび食塩
水で洗浄し、ついで乾燥(Na2SO4)し蒸発した。シリカゲルのクロマトグ
ラフィー(ヘキサン中の10%の酢酸エチルで溶出した)および回収したヘキサ
ンを有する生成物をトリチュレーションし、白色固体(63%)5.70gを得
た。 MS (AP +ve ) M+Na = 335 1H NMR (CDCl3): 1.31 (9H, s), 3.29 (1H, dd, J = 8.5, 14.6 Hz), 3.38 (1H
, dd, J = 6.1, 14.6 Hz), 4.06(1H, m), 4.45 (1H, d, J = 4.4 Hz), 7.34 (1H
, dd, J = 1.7, 8.5 Hz), 7.48 (2H, m), 7.68 (1H, s), 7.82 (3H, m)
−ナフチルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンメチルアミド a)N'−[4−(t−ブトキシ)−3S−ヒドロキシ−2R−(2−ナフチ
ルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンベンジルエステル
ウム(2.89g)とTHF(100mL)中で20分間撹拌した。HOAT(
2.24g)および3S−t−ブトキシ−カルボニル−2R−(2−ナフチルメ
チル)プロピオラクトン(4.66g、14.94mmol)を加え、混合物を
72時間撹拌した(付加的なHOAT(1.02g)を48時間後に加えた)。
固体を濾過し、THFでよく洗浄した。合した濾液を蒸発し泡沫体を得、EtO
Ac中に溶解し、0.5MのHCl、飽和NaHCO3水溶液(2×)、水およ
び食塩水;で洗浄し、乾燥(MgSO4)し、蒸発してゴムを得、ヘキサン/E
t2Oから結晶化させ、白色固体6.35g(80%)として生成物を得た。1 H NMR (DMSO-d6): 0.88 (9H, s), 1.40 (9H, s), 2.88 (1H, dd, J = 13.5, 6
Hz), 3.00 (1H, dd, J = 13.5, 8.5 Hz), 3.19 (1H, m), 3.92 (1H, t, J ≒ 6.
5 Hz), 4.18 (1H, d, J = 8.5 Hz), 4.77 (1H, d, J = 12.5 Hz), 4.84 (1H, d,
J = 12.5 Hz), 5.53 (1H, d, J = 7.5), 7.24 (2H, m), 7.30-7.37 (4H, m), 7
.45 (2H, m), 7.65 (1H, s), 7.77-7.87 (3H, m), 8.09 (1H, d, J ≒ 9Hz).
フチルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンベンジルエステル
3S−ヒドロキシ−2R−(2−ナフチルメチル)スクシニル]−S−tert
−ロイシンベンジルエステル(3.0g、5.62mmol)の溶液に、2〜3
分撹拌後、NaH(60%のパラフィン中の懸濁液;0.27g)を加え、ペン
タン中のiPrOTf溶液(〜30%w/w;6mL)を加えた。混合物を25
分間室温で撹拌し、さらにNaH(0.054g)およびiPrOTf溶液(3
mL)を加えた。さらに25分間撹拌後、付加的なNaH(0.054g)およ
びiPrOTf(3mL)を加えた。さらに20分間撹拌後、0.5MHClを
加え、混合物をEtOAc(2×)で抽出した。合した抽出物を飽和NaHCO 3 水溶液水および食塩水で洗浄し、乾燥(MgSO4)し、蒸発してガムを得、
これをシリカゲルのクロマトグラフィー(ヘキサン/Et2O)により精製し、
ほとんど無色のガム1.33g(41%)として生成物を得た。 MS (ES +ve) M+H = 576, M+Na = 598.1 H NMR (CDCl3): 0.87 (9H, s), 1.09 (3H, d, J = 6.0 Hz), 1.21 (3H, d, J =
6.0 Hz), 1.49 (9H, s), 2.87-3.00 (2H, m), 3.10-3.22 (1H, m), 3.69 (1H,
7-tet, J = 6.0 Hz), 4.00 (1H, d, J = 6.5 Hz), 4.36 (1H, d, J = 9Hz), 4.5
7 (1H, d, 見た目にはJ = 12.5 Hz), 4.63 (1H, d, 見た目にはJ = 12.5 Hz) (A
bqの1/2), 6.50 (1H, d, J = 9 Hz), 7.15-7.19 (2H, m), 7.27-7.40 (4H, m
), 7.40-7.45 (2H, m), 7.60 (1H, s), 7.72-7.80 (3H, m).
フチルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシン
ルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンベンジルエステル(1.33
g、2.31mmol)を、MeOH(38mL)中大気圧下で、Pd−BaS
O4触媒(0.67g)で1時間水素化した。触媒を濾過しMeOHでよく洗浄
した。合した濾液を蒸発し泡沫体1.09g(97%)として生成物を得た。 MS (ES +ve) M+H = 486, M+Na = 508.1 H NMR (DMSO-d6): 0.92 (9H, s), 1.02 (3H, d, J = 6.0 Hz), 1.08 (3H, d, J
= 6.0 Hz), 1,42 (9H, s), 2.75 (1H, dd, J = 14, 4 Hz), 3.00 (1H, dd, J =
14, 9.5 Hz), 3.21 (1H, m), 3.57 (1H, 7-tet, J = 6.0 Hz), 3.93 (1H, d, J
= 8.5 Hz), 4.10 (1H, d, J = 9 Hz), 7.29 (1H, m), 7.44 2H, m), 7.62 (1H,
s), 7.74-7.84 (3H, m), 7.90 (1H, d, J ≒ 9Hz), 12.35 (1H, v. br.).
フチルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンメチルアミド
ルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシン(1.09g、2.24mm
ol)をDMF(29mL)中に溶解し、HOAT(0.61g)およびDEC
(0.86g)で処理した。混合物を室温で20分間撹拌し、ついで、メチルア
ミン塩酸塩(0.61g)およびN−メチルモルホリン(0.74mL)を加え
た。混合物をさらに2時間撹拌し、ついで減圧下で濃縮した。残鎖をEtOAc
中に溶解し、連続的に0.5MのHCl、飽和NaHCO3水溶液、水および食
塩水で洗浄し、乾燥(MgSO4)し、蒸発してガムを得、これをシリカゲルの
クロマトグラフィー(ヘキサン/EtOAc)により精製した。生成物をガム0
.77g(69%)として得た。 MS (ES +ve) M+H = 499, M+Na = 521.1 H NMR (DMSO-d6): 0.84 (9H, s), 1.02 (3H, d, J = 6.0 Hz), 1.09 (3H, d, J
= 6.0 Hz), 1.45 (9H, s), 2.16 (3H, d, J = 4.5 Hz), 2.74 (1H, dd, J = 13
.5, 4.5 Hz), 2.93 (1H, dd, J = 13.5, 10 Hz), 3.17 (1H, m), 3.56 (1H, 7-t
et, J = 6 Hz), 3.94 (1H, d, J = 8.5 Hz), 4.06 (1H, d, J = 9.5 Hz), 7.25
(1H, br. m), 7.28 (1H, dd, J = 8.5, 1.5 Hz), 7.44 (2H, m), 7.59 (1H, m),
7.67 (1H, d, J = 8.5 Hz), 7.74-7.86 (3H, m).
メチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンメチルアミド
ルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンメチルアミド(0.77g、
1.544mmol)をTFA(11mL)およびDCM(22mL)中に溶解
し、室温で2.5時間撹拌した。溶液を減圧下で蒸発し、トルエンで再蒸発した
。残渣をエーテル/ヘキサンからトリチュレーションし、灰白色固体0.67g
(98%)として生成物を得た。 MS (ES +ve) M+H = 443, M+Na = 465.1 H NMR (DMSO-d6): 0.85 (9H, s), 1.02 (3H, d, J = 6.0 Hz), 1.09 (3H, d, J
= 6.0 Hz), 2.16 (3H, d, J = 4.5 Hz), 2.78 (1H, dd, J = 14, 5 Hz), 2.95
(1H, dd, J = 14, 10.5 Hz), 3.18 (1H, m), 3.58 (1H, 7-tet, J = 6 Hz), 4.0
0 (1H, d, J = 8.5 Hz), 4.05 (1H, d, J = 9.5 Hz), 7.20 (1H, q, J = 4.5 Hz
), 7.29 (1H, dd, J = 8.5, 1.5 Hz), 7.42-7.46 (2H, m), 7.59 (1H, d, J =
9 Hz), 7.60 (1H, s), 7.74-7.84 (3H, m), 12.87 (1H, br. s).
(2−ナフチルメチル)スクシニル]−S−tert−ロイシンメチルアミド
ル)スクシニル]−S−tert−ロイシンメチルアミド(0.67g、1.5
14mmol)をDMF(20mL)中に溶解し、HOAT(0.41g)およ
びDEC(0.58g)で処理した。溶液を室温で5分間撹拌し、ヒドロキシル
アミン塩酸塩(0.32g)およびN−メチルモルホリン(0.5mL)を加え
た。混合物を室温で2時間撹拌し、ついで減圧下で濃縮した。残渣をEtOAc
と飽和NaHCO3水溶液(2×)、水(2×)および食塩水間で分離し、乾燥
(MgSO4)し、蒸発して固体を得、これをエーテルでトリチュレーションし
、白色固体0.51g(74%)として生成物を得た。 MS (ES +ve) M+H = 458, M+Na = 480.1 H NMR (DMSO-d6): 0.84 (9H, s), 1.00 (3H, d, J = 6.0 Hz), 1.04 (3H, d, J
= 6.0 Hz), 2.02 (3H, d, J = 5 Hz), 2.65 (1H, dd, J = 14, 4 Hz), 2.83 (1
H, dd, J = 14, 11.5 Hz), 3.18 (1H, m), 3.52 (1H, 7-tet, J = 6.0 Hz), 3.9
0 (1H, d, J = 9 Hz), 4.01 (1H, d, J = 9 Hz), 6.93 (1H, q, J = 5 Hz), 7.
25 (1H, dd, J = 8.5, 1.5 Hz), 7.44 (2H, m), 7.53 (1H, d, J = 9 Hz), 7.57
(1H, s), 7.75-7.85 (3H, m), 9.08 (1H, s), 10.89 (1H, br. s).
とする方法。
Claims (8)
- 【請求項1】 式(I): 【化1】 (I) [式中: Rはイソプロピルであり; nは0であり; R1はナフチルメチルであり; R2はt−ブチルであり;および R3はメチルである] で示される化合物。
- 【請求項2】 式(IA): 【化2】 (IA) で示される請求項1記載の化合物。
- 【請求項3】 s−CD23の過剰生産が関与するアレルギー、炎症疾患お
よび自己免疫疾患のような疾患の治療または予防用の医薬の製造における請求項
1または請求項2記載の化合物の使用。 - 【請求項4】 s−CD23の過剰生産が関与するアレルギー、炎症疾患お
よび自己免疫疾患のような疾患の治療または予防方法であって、請求項1または
請求項2記載の化合物を、その治療または予防を必要とするヒトまたは非ヒト哺
乳類に投与することを特徴とする方法。 - 【請求項5】 s−CD23の過剰生産が関与するアレルギー、炎症疾患お
よび自己免疫疾患のような疾患の治療または予防用の医薬組成物であって、請求
項1または請求項2記載の化合物およびそのための任意の医薬上許容される担体
を含んでなる医薬組成物。 - 【請求項6】 請求項1または請求項2記載の化合物の製造法であって: (a)式(II): 【化3】 (II) [式中、Xはベンジルまたはトリメチルシリルのような保護基である] で示される化合物を脱保護するか、または (b)式(III) 【化4】 (III) [式中、ヒドロキシ基は保護されていてもよい] で示される化合物とヒドロキシルアミンまたはその塩とを反応させることを特徴
とする方法。 - 【請求項7】 請求項6の記載と同意義である式(II)で示される化合物
。 - 【請求項8】 請求項6の記載と同意義である式(III)で示される化合
物。
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