JP2003507398A - ネキリムシ害虫の防除方法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明はネキリムシの防除に有用な方法及び材料に関する。一つの好ましい態様において、Cry1Fa蛋白質を黒色ネキリムシの防除に使用する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】関連出願の相互参照 本出願は1999年8月23日に出願した米国特許仮出願第60／150,319号の優先権を
主張する。

【０００２】発明の背景 昆虫及び他の害虫により農家は、作物被害やこれら害虫退治の費用として数十
億ドルの損害を受けている。害虫による農作物環境における被害は、作物生産率
の減少、作物の品質の低下が含まれる。収穫費用も昆虫の出没により上昇してい
る。

【０００３】 昆虫の問題は、輪作および強い根茎の成長を刺激するために高レベルのリンで
肥沃にするなどの植物の栽培方法により部分的に解決されている。しかしながら
、輪作は、例えば、北部ハムシモドキ幼虫（northern corn rootwaorm）におけ
る2年の休暇期をもって出現する習慣（または越冬する習慣）により阻害される
ことがある。化学的な殺虫剤は、防除において望ましいレベルを保証することに
かなり重大に依存する。

【０００４】 化学的な殺虫剤は害虫防除の効果的な方法を提供する。しかしながら、食品、
地下水及び環境中のその他で検出され得る化学品の残存量が公衆の関心事となっ
ている。そのため、合成化学殺虫剤が環境的に重大な不都合な結果をもたらすか
を精細に調べることが行われる傾向にある。いくつかの合成化学殺虫剤は土壌や
その下に存在する帯水層を汚染し、これが流れて表面水域を汚染し、そして標的
としていない生命体まで破壊する。いくつかの合成化学品による駆除因子は、そ
れらが家畜や農場動物又は子供がそれらに接触するかもしれない場所に使用する
場合にはさらに公衆安全上の危険をもたらすという欠点がある。人々がそれらを
使用する際、特に正確な適用方法に従っていない場合には、健康上の危険が懸念
される。世界中の政府機関は、多くの合成殺虫剤、特に環境に分解せずに残存し
つつづけるものや食物連鎖中に入り込むものを制限し又は禁止している。殺虫剤
使用上の新規で厳格な制限および市場から数種の効果的な殺虫剤の排除は、害虫
の防除における経済的および効果的な選択肢を制限することとなっている。

【０００５】 合成化学殺虫剤の使用に関連する問題のため、これら因子の使用上の制限及び
他の殺虫性因子の同定という明確な要求が存在する。合成化学的な殺虫剤の代替
あるいは生物学的な殺虫剤とこれらの因子との組合せは、環境中における毒性化
学物質のレベルを低減させ得る。

【０００６】 その使用頻度が上昇する傾向にある生物学的な殺虫性因子として、土壌微生物
バチルス・チューリンギエンシス（Bacillus thuringiensis） (B.t.)がある。
この土壌微生物バチルス・チューリンギエンシス(B.t.)はグラム陽性であり、胞
子形成性細菌である。B.t.のほとんどの株は殺虫活性を示さない。いくつかのB.
t.株は殺虫作用を有するパラ胞子蛋白質の含有物を産生する。これら蛋白質包含
物は、微視的には特殊な鋭い結晶として出現することがよくある。この結晶性の
包含物の形状および類型はB.t.株の特徴決定に用いられる。この「δ−エンドト
キシン」は結晶性の包含物中に存在する。このエンドトキシンは典型的には特異
的な殺虫作用を有し、エキソトキシンと区別され、非特異的な宿主範囲を持つ。

【０００７】 B.t殺虫剤の商業的な使用は、当初、鱗翅目（毛虫）害虫の狭い範囲に限定さ
れていた。例えば、バチルス・チューリンギエンシス亜種クルスタキ（kurstaki
）の胞子や結晶の調製品は鱗翅目の害虫のための商業的な殺虫剤として長年の間
使用されている。しかしながら、最近、研究者はかなり広い範囲の害虫に特異性
を有するB.t 殺虫剤を発見した。例えば、B.t.イスラエレンシス（israelesis）
およびモリソニ（morrisoni）はそれぞれ双翅目や鞘翅目の昆虫の駆除用として
商業的に用いられている（R. M. Wiilkins著書「作物保護因子の調節された輸送
（Controlled Derivery of Crop Protection Agents）」(Taylor and Francis,
New York and London) (1990) p245〜255におけるGaermer,F.H.[1989] 「殺虫性
蛋白質のための細胞内輸送システム：生存および非生存微生物（Cellular Deliv
ery System for Insecticidal Protein:Living and Non-Living Microorganisms
）」）。

【０００８】 B.tの新たな細分類が同定され、活性のあるδ-エンドトキシン蛋白質を担う遺
伝子が単離され、塩基配列の決定がされた（Hofte, H., H.R. Whiteley [1989]
Microbiological Reviews 52(2):242-255）。ヘフテ（Hofte）及びホワイトリー
（Whiteley）は、B.t結晶蛋白質遺伝子を4つの主要なクラスに分類した。これら
クラスは、cryI（鱗翅目特異的）、cryII（鱗翅目および双翅目特異的）、cryII
I（鞘翅目特異的）およびcryIV（双翅目特異的）であった。他の害虫に対して特
異的に毒性がある株の発見が、報告されている（Feitelson, J.S., J. Payne, L
. Kim [1992] Bio/Technology 10:271-275）。例えば、CryVおよびCryVIは、線
虫に活性がある毒素の二つの新規グループとして提案されている。

【０００９】 多くのバチルス・チューリンギエンシスδ-エンドトキシン蛋白質は二つの機
能的なセグメントから構成されている。これらの「全長」蛋白質は、蛋白質分子
中のおよそ先端側半分（N-末端領域）に対応するプロテアーゼ耐性コア毒素を含
んでいる。CryIIIA B.t δ−エンドトキシンのコアセグメントの三次元構造は既
知であり、すべての関連した毒素が同様の全体構造を有していると提唱されてい
る（Li, J., J. Carroll, D.J. Ellar [1991] Nature 353:815-821）。蛋白質分
子の残りの半分（C末端領域）は、「プロ毒素セグメント（protoxin segment）
」として、よく呼ばれている。このプロ毒素セグメントは、毒素の結晶形成に関
与すると思われている（Arvidson, H., P.E. Dunn, S. Strand, A.I. Aronson [
1989] Molecular Microbiolgy 3:1533-1534; Choma, C.T., W.K. Surewiez, P.R
. Carey, M. Pozsgay, T. Raynor, H. Kaplan [1990] Eur. J. Biochem. 189:52
3-527）。完全な130kDa毒素分子は、通常昆虫の腸のプロテアーゼにより耐性コ
アセグメントに処理される。そのため、プロ毒素セグメントは、毒素分子のプロ
テアーゼ処理を低減させることにより（Haider, M.Z., B.H. Knowles, D.J. Ell
ar [1986] Eur. J. Biochem. 156:531-540）あるいは毒素の可溶性を低減させる
ことにより（Aronson, A.I., E.S. Han, W McGaughcy, D. Johnson [1991] Appl
. Environ. Microbiol. 57:981-986）、昆虫に対するコアセグメントの接近を制
限して、毒素に対する部分的な昆虫特異性を図っているのかもしれない。

【００１０】 ヘフテ（Hofte）およびホワイトリー（Whiteley）による1989命名法および分
類は、推定アミノ酸配列及び毒素の宿主範囲の両方に基づいている。この体系は
、この4つの主要なクラスに分類されていた14の異なる類型の毒素遺伝子全体を
包含するよう適合して構成された。改定された命名法の図式は、アミノ酸の同一
性にのみ基づいたものとして提案されている（Crichmoreら[1996] Society for
Invertebrate Pathology, 29^th Annual Meeting,, IIIrd International Colloq
uim on Bacillus thuringiensis, コルドバ大学、コルドバ、スペイン、9月1〜6
日、1996年、要約）。「cry」は、別のクラスに分類されるcytAおよびcytBを除
き、この毒素遺伝子のすべてに保持されている。このローマ文字は、初期の階級
におけるアラビア文字に換えられ、4段階における括弧は取り除かれている。現
在の分類では、およそ95％（第四の階級）、75％（第二の階級）及び48％（第一
の階級）の配列同一性を示す。初期の名前は多くは残されたが、数字は再分類さ
れた。「バチルス・チューリンギエンシス殺虫性結晶蛋白質の命名法の改訂（Re
visions of the Nomenclature for the Bacillus thuringiensis Pesticidal Cr
ystal Proteins）」N. Crickmore, D.R. Zeigler. J. Feitelson. E. Schnepf,
J.Van Rie, D. Lereclus, J. Baum.及びD.H. Dean, Microbiology and Molecula
r Biology Review (1998) vol62:807-813;及びCrickmore, Zeigler, Feitelson,
Schnepf, Van Rie, Lereclus, Baum及びDean、「バチルス・チューリンギエン
シス毒素命名法（Bacillus thuringiensis toxin nomenclature）」（1999）htt
p://www.biols.susx.ac.uk/Home/Neil_Crickmore/Bt/index.htmlを参照されたい
。このシステムは、自由に入手できるソフトウェアアプリケーションCI，USTAL
W及びPHYLIPを用いる。またPHYLIPパッケージ中のNEIGHBORアプリケーションは
相加平均（UPGMA）アルゴリズムを用いる。

【００１１】 新規なB.t.単離株およびそれらの毒素遺伝子の単離は、毒素の正確な殺虫範囲
を決定することと同様に、実験的にゆっくりと進行した。広範な研究や資源調査
の結果として得られた新たなB.t.単離株、その毒素及びその遺伝子に特許が付与
されている。フェイテルソン（Feitelson）らの総説（前掲）を参照されたい。
しかしながら、新たなB.t.単離株の発見及び既知のB.t.単離株の新たな用途およ
び毒素は実験的に証明すべき技術であり未だ予測できない技術として残されてい
る。

【００１２】 スミュルビッチ（Smulevitch）ら（[1991] FEBS Lett.293:25-26）、グリーブ
（Gleave）ら([1991] JGM 138:55-62)及びシェベレフ（Shevelev）ら（[1993]FE
BS Lett. 336:79-82）は、鱗翅目に対して活性があるCry9毒素の特徴について記
載している。ランバート（Lambert）ら（Lambert, B., L. Buyses, C. Decock,
S. Jansens, C. Piens, B. Saey, J. Seurinck, K. van Audenhove, J. Van Rie
, A. Van Vliet, M. Peferoen [1996] Appl. Environ. Microbiol 62(1):80-86
）および公開されたPCT出願WO94/05771およびWO94/24264にはまた鱗翅目の害虫
に対してB.t.単離株およびCry9C毒素が記載されている。

【００１３】 米国特許第5,126,133号；同第5,188,960号；同第5,246,852号；および同第5,6
91,308号には、B.t.単離株PS81I由来のCryIFa毒素および遺伝子（81IA）が開示
されている。米国特許第5,527,883号；同第5,508,264号；同第5,827,514号およ
び同第5,840,554号は、CryIFキメラ毒素に関する。WO99/24581は、種々の植物に
最適化されたcry1F遺伝子が開示されている。米国特許第5,686,069号には、B.t.
単離株PS91C2由来のCry1Fb毒素および遺伝子が開示されている。

【００１４】 遺伝子操作技術を利用することにより、農業環境中にB.t.毒素を輸送する種々
のアプローチが開発されている。大腸菌内でのB.t.結晶化蛋白質遺伝子のクロー
ニングおよび発現は、15年以上前に発行された文献に記載されている（Schnepf,
H.E., H.R. Whiteley [1981] Proc. Natl. Acad. Sci. USA 78:2893-2897）。
米国特許第4,448,885号および米国特許第4,467,036号の両文献には、大腸菌内に
おけるB.t.結晶化蛋白質の発現が開示されている。組換えDNAに基づくB.t.産物
が生産され、また使用のために改良されている。この使用には、昆虫耐性として
のB.t.遺伝子で遺伝学的に操作された植物の使用およびB.t.蛋白質の輸送担体と
して安定化された微生物細胞の使用も含まれる。種々の改良は、B.t.毒素および
／またはそれらの遺伝子を改変することにより実行されている。例えば、米国特
許第5,380,831号および同第5,567,862号は、合成された殺虫性結晶化蛋白質遺伝
子であって植物内での発現が改善されている遺伝子の生成に関する。そのため、
単離されたB.t.エンドトキシン遺伝子は、商業的に価値あるものになりつつある
。

【００１５】 B.t.毒素の成功的な農業用途に対する障害には、昆虫におけるB.t.毒素に対す
る耐性の発達が含まれる。加えて、特定の昆虫はB.t.の作用に対して抵抗力を有
している可能性がある。後者の昆虫には、サヤゾウムシおよびネキリムシのよう
な昆虫が含まれ、これらの昆虫は大抵のB.t.δ-エンドトキシンに対して明らか
に感受性がないことが示された。

【００１６】 ネキリムシは幼虫として数齢を経て成長する。後期の幼虫による実生の切断は
、多くの明らかな損傷や経済的な損失を生じさせることになり、一方、葉を蝕む
ことはトウモロコシのような穀物では、一般的に収率の低下を生じる。後期（例
えば、3齢から4齢）に達すると、幼虫は植物そのものおよび植物各部、特に実生
を切断し始める。摂食行動は移動性であることにより、経済的な損害の割合はい
くつかの早期の警告サインとして予測できない形で広がっているのかもしれない
。大きなネキリムシは、一日あたり数株の実生を破壊し得る能力があり、そして
これらが群生すると作物の立ち木を完全に排除することもできる。地中の穴に潜
伏するというネキリムシの夜間の習性や行動が、検出や処理における問題を生じ
させている。

【００１７】 黒色ネキリムシ（アグロティス・イプシロン(Agrotis ipsilon)(Hufnagel)；
鱗翅目：夜蛾科）は、トウモロコシ、ワタ、葉物類（アブラナ、ブロッコリー、
キャベツ、白菜）および芝生を含む多くの作物に対する重大な害虫である。第二
の宿主植物にはアオゲイトウ、トウガラシ、ヒヨコマメ、マメ(faba beans)、レ
タス、ムラサキウマゴヤシ、タマネギ、ジャガイモ、ラディッシュ、セイヨウア
ブラナ（カノーラ）、コメ、ダイズ、イチゴ、テンサイ、タバコ、トマトおよび
森林の木々が含まれる。北米において、アグロティス属（Agrotis）の害虫は、
クローバー、トウモロコシ、タバコ、アサ、タマネギ、イチゴ、ブラックベリー
、ラズベリー、アルファルファ、オオムギ、マメ、キャベツ、オートムギ、エン
ドウマメ、ジャガイモ、サツマイモ、トマト、庭花、芝生、ムラサキウマゴヤシ
、トウモロコシ、アスパラガス、ブドウ、ほとんど種類の葉物類、雑草、および
多くの他の作物および庭園植物を餌にする。アグロティニ族（Agrotini）におけ
る他のネキリムシもまた害虫であり、特に、フェルティア属（Feltia）（例えば
、F. jaculifera(Guenee); ducens subgothicaと同等）およびユークソア（Euxo
a）（例えば、E. messoria (Harris)、E. scandens (Riley)、E. auxiliaries S
mith、E.detersa (Walker)、E. tessellata (Harris)、E.ochrogaster (Guenee)
が害虫として挙げられる。ペリドローマ・サウシア（Peridroma saucia）のよう
なネキリムシもまた、重大な害虫となり得る。例えば、柑橘系植物もまたネキリ
ムシの攻撃の標的となり得る（「柑橘系ネキリムシ」 キシロマイゲス・キュリ
アリス（Xylomyges curialis）が一例である）。

【００１８】 ネキリムシはまた北米周辺でも害を及ぼし、そしてかなり経済的に重大な被害
をおよぼす害虫であって、ヒヨコマメ、コムギ、野菜、テンサイ、ムラサキウマ
ゴヤシ、トウモロコシ、ジャガイモ、カブ、セイヨウアブラナ、レタス、イチゴ
、ローガンベリー、アマ、ワタ、ダイズ、タバコ、アオゲイトウ、白菜、トマト
、ナス、サトウキビ、牧草、キャベツ、アメリカホドイモ、ウリ類、カブ、ヒマ
ワリ、アブラナ科、タマネギ、セイヨウニラネギ、セロリ、ゴマ、アスパラガス
、ルバーブ、チコリ、青物類およびホウレンソウを蝕む。黒色ネキリムシA.イプ
シロン（A. ipsilon）は、米国の中心、ヨーロッパ、アジア、オーストラリア、
アフリカ、インド、台湾、メキシコ、エジプトおよびニュージーランドを含む北
米の周辺の害虫として発生している。

【００１９】 アルゼンチンの主要なネキリムシの種類は、アグロティス・マレフィダ（Agro
tis malefida）、ポロサグロティス・ジパエティアーナ（Porosagrotis gypaeti
ana）およびアグロティス・イプシロン（Agrotis ipsilon）（ypsilonとも表示
される）である。これらネキリムシは、例えば、トウモロコシ、ダイズおよびヒ
マワリの栽培変種を攻撃する。これらの昆虫は、実生の割合をかなり低減させ、
さらに酷く攻撃された場合にはすべての区画を破壊し得る。

【００２０】 周辺の雑草防除のようにA.イプシロンの防除は、害虫が過大に群生することを
防止する助けとなり得るが、このような方法はいつでも実行できるとは限らず、
また効果的であるとも限らない。害虫の群生は非常に散発的であり、そして、従
来、栽培前あるいは栽培中に殺虫剤を使用することは効果的ではなかった。数種
の毒餌が作物中のネキリムシの防除に利用可能である。地面をはっているコヌカ
グサのような芝生を保護するために、化学的な殺虫剤が使用されている。芝生で
覆われた地域（例えば、ゴルフグリーン、アスレチックフィールド、公園および
他のレクリエーション地域、専門的に造園されている場所および家の邸宅の芝地
）での化学的な殺虫剤の使用は、これら地域に公衆が接近することから特有の問
題が生じる。一方、天然の産物（例えば、線虫およびアザジラクチン（azadirac
htin））は、一般にあまり目的を達成しない。

【００２１】 黒色ネキリムシの防除のためのバチルス・チューリンギエンシス産物は、これ
まで説明したように十分な効果を有しないことから近年では広く使用されてはい
ない。ネキリムシの早急な採餌および穴を掘る行為が、近年の生物学を基礎とし
た殺虫剤でそれらを駆除する際の困難さをもたらしている。例えば、Cry1A(b)毒
素は、ネキリムシに対して基本的には効果がない。

【００２２】発明の簡単な概要 本発明は、Cry1F蛋白質が黒色ネキリムシ（アグロティス・イプシロン(Agroti
s ipsilon)）のようなネキリムシに対して活性があるという驚くべき発見に関連
している。そのため、本発明は、これらの害虫を防除するための方法であって、
少なくともCry1F毒素の殺虫性部分を含むバチルス・チューリンギエンシス（Bac
illus thuringiensis）毒素の殺虫量を該害虫に接触させる工程を含む方法を提
供する。そのため、完全長の、切断型の、及びキメラのCry1F蛋白質および遺伝
子の使用は、本発明に含まれる。好ましい態様において、Cry1F毒素は、Cry1Fa
毒素である。野生型および合成Cry1F蛋白質は、本発明に従って使用することが
できる。そのため、既知のcry1F遺伝子とハイブリダイズするポリヌクレオチド
（及び／又はこれらの相補鎖、好ましくはそれらの完全な相補鎖）、好ましくは
コア毒素をコードしている部分の使用が、本発明に含まれる。植物に最適化され
たポリヌクレオチドは、好ましい態様として用いられる。

【００２３】 本発明には、トウモロコシ、ワタ、およびヒマワリなどの植物宿主を含むトラ
ンスジェニック宿主の使用が含まれる。好ましい態様において、本発明の少なく
とも一つのポリヌクレオチド配列で形質転換された植物細胞であって、標的害虫
により蝕まれた組織で殺虫性蛋白質を発現する細胞に関する。このような植物の
形質転換は、当業者に周知の技術を用いて実行することができ、また、植物にお
ける該毒素の発現を最適化するための遺伝子の改良も一般的に含まれる。

【００２４】配列の簡単な説明 配列番号：1は1F1AB-POと称される植物に最適化された完全長のcryIF/cryIA(b
)ハイブリッド遺伝子のポリヌクレオチド配列である。

【００２５】 配列番号：2は、植物に最適化された完全長のCryIF/CryIA(b)キメラ毒素のア
ミノ酸配列である。1F1AB-PO遺伝子はこの毒素をコードする。

【００２６】 配列番号：3は、IF-T-POと称される、植物に最適化された切断型のcryIF遺伝
子のポリヌクレオチド配列である。

【００２７】 配列番号：4は、植物に最適化された切断型のCryIF毒素のアミノ酸配列である
。1F-T-PO、1F-7G-POおよび1F-7Z-POと称される遺伝子はこの毒素をコードして
いる。

【００２８】 配列番号：5は、81IA(cryIFa)と称される完全長の野生型B.t.毒素遺伝子の天
然のポリヌクレオチド配列である。

【００２９】 配列番号：6は、81IA（CryIFa）と称される完全長の野生型B.t.毒素のアミノ
酸配列である。

【００３０】 配列番号：7は、ワタにおける発現が最適化された1F-7G-POと称される遺伝子
のポリヌクレオチド配列である。

【００３１】 配列番号：8は、トウモロコシにおける発現が最適化された1F-7Z-POと称され
る遺伝子のポリヌクレオチド配列である。

【００３２】発明の詳細な開示 本発明は、CryIF蛋白質が黒色ネキリムシ（アグロティス・イプシロン）のよ
うなネキリムシに対して活性を有するという驚くべき発見に関連している。特に
驚くべきことは、第3齢で比較的大きな幼虫が本発明の毒素および遺伝子により
防除されるという所見である。第1齢および第2齢のネキリムシ幼虫の防除性は、
後期の幼虫の防除に比してあまり重要でない。上記の発明の背景の欄で詳述した
ように、CryI毒素は一般的に鱗翅目に対して活性であると知られ、ネキリムシは
B.t.毒素に一般的に耐性があると思われていた。

【００３３】 本発明は、組換え宿主の使用を含み、植物に対して最適化されたポリヌクレオ
チド配列を提供する。これらのポリヌクレオチド配列には、1F1AB-PO、1F-T-PO
、1F-7G-POおよび1F-7Z-POと称される、植物に対し最適化された遺伝子が含まれ
る。これらの遺伝子は、WO99/24581において開示されている。好ましい植物宿主
には、トウモロコシ、ダイズ、ワタ、コムギ、カノーラおよびヒマワリが含まれ
る。

【００３４】 本発明のいくつかの態様において、遺伝子は、完全長のCryIF毒素に比べて短
縮されたCryIF毒素をコードする。本発明の切断型の毒素は、典型的にはプロ毒
素セグメントの全部又は一部が欠けている。また、本発明の切断型遺伝子は、キ
メラ遺伝子および蛋白質の産生に使用できる。一例としては、cryIF部分およびc
ryIA（b）部分を含む植物に最適化された遺伝子であり、このハイブリッド遺伝
子はキメラ毒素をコードする。好ましいキメラ遺伝子および毒素は、米国特許第
5,527,883号および同第5,840,554号に開示されている。本発明に従って使用でき
る他のキメラ遺伝子および毒素は、米国特許第5,508,264号および同第5,827,514
号に開示されている。好ましい態様において、キメラ毒素のCryIF部分は、それ
自身殺虫性である。融合毒素は、本発明に従って使用することもできる。

【００３５】 好ましい態様において、本発明は少なくとも一つのポリヌクレオチド配列で形
質転換された植物細胞に関し、この形質転換植物細胞は標的害虫が蝕む組織内で
殺虫性毒素を発現し、これにより標的害虫が殺虫性蛋白質と接触する。このよう
な植物の形質転換は、当業者に周知の技術により実行することができ、またこれ
には一般的に植物において毒素の発現を最適化するための遺伝子の改良が含まれ
る。

【００３６】 本発明の遺伝子は、本明細書に記載の遺伝子配列が与えられていることから、
いくつかの方法を介して得ることができることは当業者に明らかであると思われ
る。好ましい態様において、本発明の遺伝子は、例えば、遺伝子シンセサイザー
を用いて合成により構築されてもよい。本明細書で例示されている特定の遺伝子
はまた、本発明の開示に従って、後述する培養物等の受託所に寄託された特定の
単離株から特定の野生型遺伝子を（例えば、点変異誘発技術により）改変するこ
とにより得ることもできる。例えば、野生型cryIF遺伝子はB.t.単離株PS81Iから
得ることができる。同様に、本発明のハイブリッド遺伝子のcryIA(b)部分は、合
成により産生させることができ、又は野生型遺伝子を改変することにより誘導す
ることもできる。CryIA(b)毒素および遺伝子は、例えば、Hofteら（1986）Eur.
J. Biochem. 16:273、Geiserら(1986) Gene 48:109、およびHaiderら(1988) Nuc
leic Acids Res. 16:10927に開示されている。各クローンおよびさらに別の野生
型単離株は、より詳細に「発明の背景」の欄において上述し、および後述する表
にて説明する。

【００３７】 本出願に記載されている培養株は、ブダペスト条約に基づいて、ノーザンリー
ジョナルリサーチセンター（Northern Regional Research Center）（米国、6
1604イリノイ州、ペオリア、ノースユニバーシティストリート1815）のアグリカ
ルチュラルリサーチサービスパテントコレクション（NRRL）に寄託されている。
次の表に列記された寄託株は「発明の背景」の欄において既に述べたように特許
の参考資料として示されている。

【表】

寄託物を利用できることにより、政府の権限によって与えられる特許権を侵害し
て本発明を実施する許可とはならないことを理解するべきである。

【００３８】遺伝子および毒素 本発明のポリヌクレオチドは、所望の宿主細胞において蛋
白質又はペプチドをコードする完全な遺伝子を形成するために用いることができ
る。例えば、当業者には容易に認識されるように、付属の配列表中のポリヌクレ
オチドのいくつかは終止コドンを除いて示されている。当業者には容易におわか
りのように、本ポリヌクレオチドは目的の宿主におけるプロモータの調節下に適
切に配置させることができる。

【００３９】 当業者は容易に認識されるように、DNAは一般的には二重鎖の形で存在する。
このアレンジメント内では、一方の鎖はもう一方の鎖と互いに相補的である。DN
Aが、例えば、植物でさらに複製される際には、このDNAの相補鎖が産生される。
そのため、本発明は付属の配列表中の例示のポリヌクレオチドおよびその相補鎖
の使用を含む。「コード鎖」はアンチセンス鎖と結合する鎖として当技術分野に
おいてよく用いられる。蛋白質をインビボで発現させるために、DNAの鎖は、一
般的に相補的なmRNA鎖に転写され、このmRNAは蛋白質に翻訳するための鋳型とな
る。mRNAは、実際にはDNAの「アンチセンス」鎖から転写される。「センス」又
は「コード」鎖は、連続したコドン群（コドンは3つのヌクレオチドであり、特
定のアミノ酸を生成するためにこの3つが同時に読まれる）を有し、この連続し
たコドン群は、所望の蛋白質又はペプチドを生成するオープンリーディングフレ
ーム（ORF）として読まれ得る。例示したDNAと機能的に同等なRNAおよびPNA（ペ
プチド核酸）は、本発明に含まれる。

【００４０】 本発明の遺伝子および毒素は、例えば、オリゴヌクレオチドプローブを使用す
ることにより同定、獲得、および特徴付けを行うことができる。プローブは、検
出可能なヌクレオチド配列である。具体的に示されている本発明のポリヌクレオ
チドおよび活性のある毒素をコードするのに十分なその一部分は、それ自身プロ
ーブとして使用され得る。プローブは、DNA、RNAまたはPNA（ペプチド核酸）の
いずれであってもよい。これらの配列は例えば、国際出願WO93/16094に開示され
ているように、適当な標識を施すことにより検出可能としても、また、本質的に
蛍光を発するようにされていてもよい。当技術分野において周知のように、プロ
ーブ分子と核酸試料とが、この二つの分子間で強い結合を形成することによりハ
イブリダイズする場合、プローブと試料とが実質的に相同性を有することがかな
り高い確率で推測される。好ましくは、ハイブリダイゼーションは、例えば、Ke
ller,G.H., M.M. Manak(1987) DNA probes, Stockton Press(ニューヨーク、ニ
ューヨーク州), pp 169-170に記載されているように、当技術分野において周知
の技術を用いストリンジェントな条件で実施される。例えば、そこに記載されて
いるように、高ストリンジェンシーなハイブリダイゼーション条件は、最初の洗
浄操作を2×SSC（標準的なクエン酸塩生理食塩水(Standard Saline Citrate)）
／0.1％SDS（ドデシル硫酸ナトリウム）溶液を用い、室温にて15分間行うことが
できる。一般的には、洗浄は2回行われる。高ストリンジェンシー条件は、塩濃
度を低下させることにより、および／または温度を上昇させることにより達成さ
れる。例えば、上記ハイブリダイゼーション工程は、続いて0.1×SSC／0.1％SDS
を用い室温で15分間洗浄が行われ、さらに続いて、0.1×SSC／0.1％SDSを用い55
℃にて30分間洗浄が行われる。これらの工程で採用された温度は、当技術分野に
おいて知られているように、本明細書に論じられている他のプロトコル（例えば
、SSPEがSSCに代えて使用されているような場合）でも用いることもできる。2×
SSC／0.1％SDS溶液は、20×SSC（50ml）および10％SDS（5ml）を水（445ml）に
添加することにより調製できる。また、20×SSCはNaCl（175.3g／0.150M）、ク
エン酸ナトリウム（88.2g／0.015M）および水（1L）を混合し、次に10N NaOHでp
Hを7.0に調整することにより生成できる。10％SDSは滅菌水（50ml）にSDS（10g
）を溶解し、100mlに希釈し分注して調製される。

【００４１】 プローブの検出は、ハイブリッドが形成されているかどうかを公知の方法で決
定するための手段を提供する。このようなプローブ分析は本発明の毒素をコード
する遺伝子を同定するための迅速な方法となる。本発明に従いプローブとして使
用されるヌクレオチドセグメントはDNAシンセサイザーおよび標準的な方法を用
いて合成することができる。

【００４２】 本明細書で用いられるハイブリダイゼーションに関する「ストリンジェントな
」条件とは、本出願人らが用いる条件と、ハイブリダイゼーションの特異性の程
度が同一もしくはほぼ同一となる条件を意味する。特に、サザンブロット上で固
定化されたDNAのハイブリダイゼーションは³²P標識された遺伝子特異的プローブ
を用いて標準的な方法（Maniatis, T., E.F. Fritsch, J. Sambrook [1982] Mol
eculer Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory 、ニ
ューヨーク、コールドスプリングハーバー）で実施した。一般的にハイブリダイ
ゼーションおよびその後の洗浄は、標的配列を検出し得るようにストリンジェン
トな条件で行った。二重鎖DNA遺伝子プローブを用いた場合のハイブリダイゼー
ションは、6×SSPE、5×デンハルト(Denhardt)溶液、0.1％SDS、0.1mg/ml変性DN
Aからなる溶液中でDNAハイブリッドの融解温度（Tm）よりも20〜25℃低い温度で
一晩実行した。融解温度は、次の式に（Beltz, G.A., K.A. Jacobs, T.H. Eickb
ush, P.T. CherbasおよびF.C. Kafatos[1983] Methods of Enzymology、R. Wu,
L. GrossmanおよびK. Moldave編、Academic Press（ニューヨーク）100:266-285
）より示される。 Tm=81.5℃+16.6Log[Na+]+0.41(%G+C)-0.61(%ホルムアルデヒド)-600/塩基対にお
ける二重鎖の長さ

【００４３】 洗浄は、一般的には次の通り実行することができる： （1） 1×SSPE、0.1％SDS溶液中、室温で15分間の洗浄（低ストリンジェンシー
での洗浄）を2回 （2） 0.2×SSPE、0.1％SDS溶液中、Tm-20℃で15分間の洗浄（中程度のストリ
ンジェンシーでの洗浄）を1回

【００４４】 オリゴヌクレオチドプローブを用いた場合のハイブリダイゼーションは、6×S
SPE、5×デンハルト溶液、0.1％SDS、0.1mg/ml変性DNAからなる溶液中でハイブ
リッドの融解温度（Tm）よりも10〜20℃低い温度で一晩実行した。オリゴヌクレ
オチドプローブに対するTmは、次の式により決定することができる： Tm（℃）=2(T/A塩基対の数)+4（G/C塩基対の数） （Suggs, S.V., T. Miyake, E.H. Kawashime, M.J. Johnson, K. Itakuraおよび
R.B. Wallace [1981] ICU-UCLA Symp. Dev. Biol. Using Purified Genes, D.D.
Brown編、Academic Press(ニューヨーク) 23:683-693）

【００４５】 一般的には、洗浄は次の通りに実施した： （1） 1×SSPE、0.1％SDS溶液中、室温で15分間（低ストリンジェンシーでの洗
浄）を2回 （2） 1×SSPE、0.1％SDS溶液中、ハイブリダイゼーション温度で15分間（中程
度のストリンジェンシーでの洗浄）を1回

【００４６】遺伝子および毒素の修飾 本発明に係る有用な遺伝子および毒素には、具体的
に例示された配列を有するものだけでなく、本明細書で具体的に例示された蛋白
質の特徴的な殺虫活性を保持する一部および／または断片（完全長の蛋白質と比
較して内部および／または末端に欠失を有するもの）、変種、変異体、置換体（
置換されたアミノ酸を有する蛋白質）、キメラおよび融合蛋白質も含まれる。本
明細書で使用されているように、遺伝子の「変種（variants）」または「異形（
variation）」という用語は、殺虫活性を有する同一の毒素又は同等の毒素をコ
ードするヌクレオチド配列を意味する。本明細書で使用されているように、「同
等の毒素」という用語は、標的害虫に対し、本発明で特許請求される毒素と同一
または本質的に同一の生物学的活性を有する毒素を意味する。

【００４７】 標準的な技術を用いて、遺伝子は改変可能であり、また遺伝子の異形は容易に
構築され得る。例えば、点変異を構築する技術は当技術分野において周知である
。また、米国特許第5,605,793号は、例えば、ランダムに断片化した後にDNAを再
編成させることにより更なる分子の多様化を生成する方法が記載されている。完
全長遺伝子の断片は、市販されているエンドヌクレアーゼを用いて作ることがで
き、このエキソヌクレアーゼは標準的方法に従って使用することができる。例え
ば、Bal31のような酵素または部位特異的変異誘発法を、これらの遺伝子の末端
から系統的にヌクレオチドを切断する目的で用いることができる。また、活性な
断片をコードする遺伝子は種々の制限酵素を用いて得てもよい。プロテアーゼは
これら毒素の活性なフラグメントを直接得るために使用してもよい。

【００４８】 同等な毒素および／またはこれらの同等な毒素をコードしている遺伝子はB.t.
単離株および／またはDNAライブラリーから本明細書に記載される開示を用いて
分離することができる。本発明の殺虫性毒素を得るための方法はいくつかある。
例えば、本明細書で開示および特許請求される殺虫性毒素に対する抗体は、蛋白
質の混合物中から他の毒素を同定し単離するために使用することができる。具体
的には、抗体は、ほぼ定常的であり他のB.t.毒素とほぼ区別し得る毒素の部分に
対するものとして生成することができる。そして、これらの抗体は、免疫沈降、
酵素結合免疫吸着検定（ELISA）またはウエスタンブロッティングによる特徴的
な活性に基づいて同等な毒素を特異的に同定するために使用することができる。
本明細書で開示された毒素、同等な毒素またはこれらの毒素の断片に対する抗体
は、当技術分野において標準的な方法を用いて容易に調製することができる。こ
れらの毒素をコードする遺伝子は、微生物から得ることができる。

【００４９】 遺伝子コードの重複から、様々な異なるDNA配列が同じアミノ酸配列をコード
しうる。同一または本質的に同一の毒素をコードする他のDNA配列を作り出すこ
とは、十分に当業者の技術範囲内である。これらの多様なDNA配列は、本発明の
範囲内に含まれる。本明細書で用いられているように「本質的に同一」という用
語は、実質的に殺虫活性に影響を与えない範囲でアミノ酸の置換、欠失、付加ま
たは挿入を有する配列を意味する。殺虫活性を保持する断片もこの定義に含まれ
る。

【００５０】 等価な毒素は、例示した毒素とアミノ酸の類似性（および／または相同性）を
有すると考えられる。アミノ酸の類似性／同一性は、一般的には、60％以上、好
ましくは75％以上、より好ましくは80％以上、さらに好ましくは90％以上であり
、また、95％以上とすることもできる。本発明の好ましいポリヌクレオチドおよ
び蛋白質は、さらに特定の同一性および／または類似性の幅を定義することもで
きる。例えば、同一性および／または類似性は、本明細書で例示した配列と比べ
49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、
67、68、69、70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、
85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、もしくは99％であ
りうる。別途記載しない限り、本明細書で用いた二つの核酸間における配列の同
一性および／または類似性の割合は、カーリン(Karlin)およびアルツシュル(Alt
schul)((1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:2264-2268) のアルゴリズム、
カーリンおよびアルツシュル((1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:5873-587
7) による改良されたアルゴリズムを用いて決定される。このようなアルゴリズ
ムはアルツシュルら（(1990) J. Mol. Biol. 215:402-410）のNBLASTおよびXBLA
STプログラム内に取り込まれている。所望の配列同一性の割合（％）を有するヌ
クレオチド配列を得るために、BLASTヌクレオチド検索がNBLASTプログラム（ス
コア=100、ワード長=12）を用いて行われる。比較目的でギャップを有するアラ
インメントを得るためには、ギャップBLASTは、アルツシュルら((1997) Nucl. A
cids. Res. 25:3389-3402) に記載されているように用いられる。BLASTおよびギ
ャップBLASTプログラムを用いる場合には、各プログラムに予め設定されたパラ
メーター（NBLASTおよびXBLAST）が用いられる。http://www.ncbi.nih.govを参
照されたい。同一性のスコアは、「発明の背景」の欄に上述されたクリックモア
ら(Crickmore)の方法およびアルゴリズムを用いて計算することもできる。

【００５１】 アミノ酸の相同性は、毒素の生物活性を担うかまたは3次元構造の決定に関与
することにより最終的に生物活性を担う重要な領域で最も高くなると思われる。
アミノ酸の置換が活性に重要でない領域内である場合もしくは分子の3次元構造
に影響を与えないような保存的アミノ酸置換である場合には、特定のアミノ酸の
置換は許容可能であり、またこのような置換は予想され得る。例えば、アミノ酸
は、非極性、非電荷極性、塩基性および酸性のクラスに分類され得る。それによ
って一つのクラスのアミノ酸が同じタイプの別のアミノ酸に置換される保存的置
換は、置換が化合物の生物活性を実質的に変化させない限り、本発明の範囲内に
入る。表１に、各クラスに属するアミノ酸の例の一覧を示す。

【表１】

【００５２】 幾つかの例において、非保存的置換を行うことができる。重要な要因は、これ
らの置換が植物の本DNA配列の発現能力または毒素の生物活性を有意に減損して
はならないという点である。

【００５３】 本明細書で用いられる「単離された」ポリヌクレオチドおよび／または「精製
された」毒素とは、これらの分子が、自然界で見出される際に付随している他の
分子と結合していない場合を意味する；これには植物での使用が含まれる。した
がって、「単離された」および／または「精製された」という用語は本明細書に
記載のように「人の手」による改良を意味する。

【００５４】 本発明は、合成遺伝子の具体的な態様を提供するとともに、本明細書で例示し
た遺伝子と機能的に等価な他の遺伝子が宿主、好ましくは植物宿主を形質転換す
るために使用され得る。合成遺伝子の生成に関する更なる手引きは、例えば米国
特許第5,380,831号に見出すことができる。

【００５５】組換え宿主 本発明に係る毒素コード遺伝子は、広範な種類の微生物または植
物宿主に導入され得る。好ましい態様において、毒素遺伝子の発現により、直接
的にまたは間接的に細胞内で殺虫剤を産生させ維持させることが可能となる。ト
ランスジェニック／組換え／形質転換宿主細胞は害虫に摂取され、これにより害
虫は毒素を摂取することになる。これは害虫を毒素と接触させる好ましい方法で
ある。この方法により害虫が防除（死滅または病気を引き起こす）される。

【００５６】 本発明のいくつかの態様において、形質転換された微生物宿主は前駆体を調製
するための初期の過程に使用され得る。例えば、ここで調製された前駆体は、好
ましい態様において、本発明の遺伝子によりコードされた遺伝子を発現させるた
めに植物細胞および植物を形質転換するために使用される。形質転換およびこの
方法において使用された微生物は本発明の範囲に含まれる。組換え微生物は、例
えば、B.t.、大腸菌又はシュードモナスである。

【００５７】 種々の組換え生物の産生は、当業者によって標準的な技術を用いて行うことが
できる。これら形質転換に必須な材料は、本明細書に開示されているか、または
その他の方法で当業者には容易に入手することができる。かなり多くの方法が、
毒素をコードするB.t.遺伝子を安定的に維持および発現できるような条件下で該
遺伝子を標的宿主内へ導入するために利用することができる。これらの方法は当
業者に周知であり、例えば、米国特許第5,135,867号に記載されており、これは
参照として本明細書に組み入れられる。

【００５８】 本発明の毒素コード遺伝子は、適切なベクターを用いて広範な種類の微生物お
よび植物宿主に導入することができる。トウモロコシ、コムギ、コメ、ワタ、ダ
イズおよびヒマワリのような多くの重要な作物がある。本発明の特定の遺伝子は
、形質転換植物内でポリペプチド殺虫剤を発現する遺伝子を安定的に維持および
発現するのに特に非常に適切であり、また、所望により環境的な変性や不活性化
から殺虫剤を改良保護する。毒素遺伝子の発現により、結果として直接または間
接的に殺虫性蛋白質が細胞内で産生され及び維持される。このように害虫に対し
毒性をもつ殺虫性蛋白質を含む植物組織を標的害虫に摂取させることにより標的
害虫を殺虫性蛋白質と接触させることができる。この結果、害虫は防除される。
または、適切な微生物宿主、例えば、シュードモナス・フルオレセンス（Psudom
onous fluorescens）は、害虫の生息場所に適用することができる。この場合、
ある割合の微生物宿主が増殖し、標的害虫により摂取される。毒素遺伝子の宿主
微生物は、毒素活性が延長され細胞を安定化するような条件下で処理することが
できる。毒素活性を保持する処理細胞は、標的害虫の生息環境に適用することが
できる。

【００５９】 B.t.毒素遺伝子は適切なベクターを介して微生物宿主に導入され、この宿主が
生存している状態で環境に適用される場合には、特定の宿主微生物を使用するべ
きである。微生物宿主は、一種もしくは複数種の目的とする作物の「植物域(phy
tosphere)」（葉面、葉域、根域および／または根面）に繁殖することが知られ
ているものを選択する。これらの微生物は、特定の環境で野生型の微生物と十分
に競合し、これら微生物はポリペプチド殺虫剤を発現する遺伝子の安定な維持お
よび発現ができ、さらには環境による変性や不活性化から本殺虫剤の改良された
保護を可能にし得るように選択される。

【００６０】 数多くの微生物は、広範な種類の重要な作物の葉面（植物の葉の表面）および
／または根域（植物の根を取り囲む土壌）に生息していることが知られている。
これらの微生物には細菌、藻および真菌が含まれる。特に重要な微生物は、細菌
、例えば、シュードモナス属(Pseudomonas)、エルウィニア属(Erwinia)、セラチ
ア属(Serratia)、クレブシエラ属(Klebsiella)、キサントモナス属(Xanthomonas
)、ストレプトマイセス属(Streptomyces)、リゾビウム属(Rhizobium)、路度シュ
ードモナス属(Rhodopseudomonas)、メチロフィルス属(Methylophillus)、アグロ
バクテリウム属(Agrobacterium)、アセトバクター属(Acetobacter)、ラクトバチ
ルス属(Lactobacillus)、アルスロバクター属(Arthrobacter)、アゾトバクター
属(Azotobacter)、ロイコノストック属(Leuconostoc)およびアルカリゲネス属(A
lcaligenes)；真菌、特に酵母、例えば、サッカロマイセス属(Saccharomyces)、
クリプトコッカス属(Cryptococcus)、クリュイベロマイセス属(Kluyveromyces)
、スポロボロマイセス属(Sporobolomyces)、ロドトルラ属(Rhodotorula)および
アウレオバシディウム属(Aureobasidium)である。このような植物域の細菌種、
例えば、シュードモナス・シリンガエ(Psudomonas syringae)、シュードモナス
・フルオレセンス(Pseudomous fluorescens)、セラチア・マルセセンス(Serrati
a marcescens)、アセトバクター・キシリナム(Acetobacter xylinum)、アグロバ
クテリウム・ツメファシエンス(Agrobacterium tumefaciens)、ロドシュードモ
ナス・スフェロイデス(Rhodopseudomonas spheroids)、キサントモナス・カンペ
ストリス(Xantomonas campestris)、リゾビウム・メリオチ(Rhizobium melioti)
、アルカリゲネス・エントロファス(Alcaligenes entrophus)およびアゾトバク
ター・ヴィンランディイ(Azotobacter vinlandii)；ならびに植物域の酵母種、
例えば、ロドトルラ・ルブラ(Rhodotorula rubra)、R.グルティニス(R. glutini
s)、R.マリナ(R. marina)、R.オーランティアカ(R. aurantiaca)、クリプトコッ
カス・アルビダス(Cryptococcus albidus)、C.ディフルエンス(C. diffluens)、
C.ラウレンティイ(C. laurentii)、サッカロマイセス・ロゼイ(Saccharomyces r
osei)、S.プレトリエンシス(S. pretoriensis)、S.セレビシエ(S. cerevisiae)
、スポロボロマイセス・ロゼウス(Sporobolomyces roseus)、S.オドルス(S. odo
rus)、クリュイベロマイセス・ベロネ(Kluyveromyces veronae)、およびアウレ
オバシディウム・ポルランス(Aureobasidium pollulans)などが特に重要である
。着色性の微生物は特に重要である。

【００６１】 遺伝子が安定に維持および発現される条件下で標的宿主に毒素コードB.t.遺伝
子を導入するために、広範な種類の方法が利用可能である。これらの方法は当業
者に良く知られており、また、参照として本明細書に組み入れられる米国特許第
5,135,867号にも記載されている。

【００６２】細胞の処理 上述したように、B.t.毒素を発現するB.t.細胞又は組換え細胞は
毒素活性が延長され、細胞が安定化するように処理することができる。形成され
る殺虫剤マイクロカプセルは、安定化された細胞構造内にB.t.毒素を包含し、マ
イクロカプセルを標的害虫の生息環境に適用した場合に毒素を保護し得る。適切
な宿主細胞には原核細胞または真核細胞のいずれも含まれるが、通常、これらの
細胞のうち哺乳類などの高等生物に対して毒性の物質を産生しないものに限られ
る。しかしながら、高等生物に対して毒性の物質を産生する生物であっても、毒
性物質が不安定であるか又は使用の程度が哺乳類宿主に対して毒性を示す可能性
を回避するよう十分に低い程度である場合には使用することができる。宿主とし
ては原核細胞および下等真核細胞、例えば、真菌が特に重要であると思われる。

【００６３】 細胞は、通常、完全な状態であり、処理の際には胞子形成期よりも実質的に増
殖期にあるものが使用されるが、ある場合には胞子形成しているものが使用され
てもよい。

【００６４】 微生物細胞、例えば、B.t.毒素遺伝子を有する微生物の処理は、毒素の特性に
影響を与えず又毒素を保護する細胞の能力を減少させない技術である限り、化学
的もしくは物理的な手段又は化学的及び／もしくは物理的な手段の組合せを用い
て行うことができる。化学的な試薬の例は、ハロゲン化剤、特に原子番号17-80
のハロゲンである。さらに具体的には、ヨウ素は、緩和な条件下で所望の結果を
もたらすのに十分な時間をかけて使用される。他の適した技術は、グルタルアル
デヒドなどのアルデヒドによる処理；塩化ゼフィランおよび塩化セチルピリジニ
ウムなどの抗感染剤による処理；イソプロパノール及びエタノールなどのアルコ
ール処理；ルゴールヨウ素、ブアン固定液、種々の酸及びヘリー固定液などの様
々な組織学的な固定剤（Humason, Gretchen L., Animal Tissue Techniques, W.
H. Freeman and Company, 1967）又は物理的（加熱）および細胞が宿主環境に
適用された際に細胞内で産生される毒素の活性を維持および延長させる化学的因
子の組合せによる処理が含まれる。物理的な手段の例としては、ガンマ線やX線
などの短波長の放射線照射、凍結、UV照射、凍結乾燥およびその他の手段が含ま
れる。微生物細胞の処理方法は、米国特許第4,695,455号及び同第4,695,462号に
開示されており、またこれらは参照として本明細書に組み入れられる。

【００６５】 一般的に、細胞は構造的に安定性が向上され、これにより環境条件に対して耐
性が向上される。殺虫剤が前駆体の場合には、細胞の処理方法は前駆体から標的
害虫病原体による殺虫剤としての成熟した形体への処理を阻害しないようなもの
を選択する必要がある。例えば、ホルムアルデヒドは蛋白質を架橋し、ポリペプ
チド殺虫剤の前駆体の処理を阻害することになる。処理方法は、少なくとも毒素
における生物学的な有効性や生物活性を担う実質的な部分を保持可能なものであ
る必要がある。

【００６６】 殺虫剤産生用の宿主細胞の選択において特に重要な性質は、B.t.遺伝子の宿主
への導入の容易さ、発現系の有効性、発現効率、宿主における殺虫剤の安定性、
補助的な遺伝学的能力の存在が含まれる。殺虫剤マイクロカプセルとしての使用
において重要な性質は、例えば厚い細胞壁、色素形成および細胞内パッケージン
グもしくは包含体の形成などのような殺虫剤を保護し得る質、水性環境における
生存性、哺乳動物に対して毒性がないこと、害虫による摂取を誘引できること、
死滅させ易いことおよび毒素に損傷を与えること、固定化し易いことなどの性質
である。その他考慮すべき点は形成および取扱い易さ、経済性、保存における安
定性などの性質である。

【００６７】細胞の増殖 B.t.殺虫性遺伝子を保持した細胞宿主は適当な栄養培地中で増殖
させることができる。また、好ましくはDNAの構成により選択の便宜が与えられ
ている場合には、実質的に全ての細胞またはB.t.遺伝子を保持する全細胞を維持
し得るような選択培地中で増殖させることができる。これらの細胞は通常の方法
で集菌することができる。または、細胞を集菌する前に処理してもよい。

【００６８】 本発明のB.t.細胞は、標準の培地および発酵技術を用いて培養することもでき
る。発酵サイクルが完了したら、細菌は、当業者に周知の方法を用いて発酵液か
らB.t.胞子と結晶を分離することにより集菌される。回収されたB.t.胞子および
結晶は、取扱いや特定の標的害虫に適用を行い易くするために界面活性剤、分散
剤、不活性な賦形剤および他の成分を添加して、湿潤性の粉末、液体濃縮液、顆
粒剤もしくは他の組成として処方することができる。これらの組成および適用方
法はすべて当業者に周知である。

【００６９】組成 誘引剤やB.t.単離株の胞子および結晶または本出願に開示されたB.t.単
離株から得られる遺伝子を保持した組換え微生物を含むおびき寄せ用の組成粒子
を、土壌に使用することができる。処方生成物は、種のコーティングや根の処理
あるいは作物のサイクルの後期の段階において植物全体を処理するために使用す
ることもできる。B.t.細胞による植物および土壌処理は、種々の不活性な材料、
例えば、無機物（フィロ珪酸塩類、炭酸塩類、硫酸塩類、リン酸塩類、その他の
塩類）または植物材料（粉末化されたトウモロコシの穂軸、米殻、くるみの殻、
その他）などと混合して、湿潤性粉末、顆粒剤または粉末として用いてもよい。
組成物には、流布−固着補助剤、安定化剤、他の殺虫作用を有する添加剤又は表
面活性剤を含めることができる。液体組成物は水性基材または非水性基材として
もよく、また、泡剤、ゲル剤、懸濁剤、乳化可能な濃縮剤またはその他剤形にし
て用いることができる。成分は、流動剤、表面活性剤、乳化剤、分散剤またはポ
リマー剤を含めてもよい。

【００７０】 当業者により認識されているように、殺虫剤の濃度は特定の組成の性状に広く
依存し、特にそれが濃縮であるかそれとも直接使用し得るかにより変更し得る。
殺虫剤は少なくとも重量で1％含有していてもよく、また重量で100％であっても
よい。乾燥組成物は殺虫剤中、重量で約1〜95％含み、一方、液体組成物は一般
的には液相中の固相として重量で約1〜60％含めることができる。組成物は一般
的には10²〜10⁴細胞／mgを含み得る。これら組成物はヘクタール（一万平方メー
トル）あたり50mg（液体または乾燥）から1kg以上が使用される。

【００７１】 製剤は害虫の居場所、例えば、土壌や葉全体に噴霧、振りまき、散布またはそ
の他の方法で適用され得る。

【００７２】変異体 本発明の単離株の変異体は当業者によく知られた方法により作出でき
る。例えば、無胞子性変異株は単離株をエチルメタンスルホン酸塩（EMS）によ
り変異誘発することによって得ることができる。この変異株は当業者に周知の方
法により紫外線およびニトロソグアニジンを用いて創生され得る。

【００７３】 比較的少ない割合の無胞子性変異株は、完全な状態で残り、延長された発酵期
の間溶菌されないかもしれない。これらの株は、溶菌マイナス（−）と認定され
る。溶菌マイナス株は、振盪フラスコ培地中での無胞子変異株のスクリーニング
により、および依然として完全な状態であり発酵の最終で毒素結晶を含むような
変異株を選択することにより同定され得る。溶菌マイナス株はカプセル化された
毒素蛋白質を産生する細胞処理操作に適している。

【００７４】 前記無胞子変異株のファージ耐性変種を調製するために、ファージ溶菌液の一
部を栄養培地に塗りひろげ乾燥させる。ファージ感受性細菌株の一部を乾燥させ
た溶菌液の上に直接ひろげ、乾燥させる。培養プレートは30℃でインキュベート
される。プレートは2日間インキュベートされ、その2日間経過時に数多くのコロ
ニーが寒天上に生育していることを観察することが可能となる。これらのうちい
くつかのコロニーを拾い上げ、栄養寒天プレート状にサブクローニングする。明
らかな耐性株は、ファージ溶菌液とクロスストリークすることによりファージ耐
性を試験する。ファージ溶菌液の線をプレート上に引き、その後乾燥させる。耐
性株と推定された株はそれぞれファージの線上をクロスするように筋が引かれる
。耐性細菌株の場合には、30℃で一晩インキュベートした後、ファージの線上を
クロスして引かれたいずれの場所でも溶菌は見られない。ファージに対する耐性
は、その後、栄養培地プレート上に耐性株のローン（芝生）をプレーティングす
ることにより確認される。感受性株は、同様の方法でプレーティングすることに
より、陽性対照として使用することができる。これらのプレートを乾燥させた後
、ファージ溶菌液の一滴が、これらのプレートの中央に落とされる。30℃、24時
間インキュベート後、耐性株であればファージ溶菌液が滴下された場所に溶菌は
見られない。

【００７５】 本明細書で言及または記載している全ての特許、特許出願、特許仮出願および
刊行物は、それらが本明細書の明示的な開示内容と矛盾しない限りにおいて、全
体が参照として本明細書に組み込まれる。

【００７６】 次の実施例において本発明を実施するための操作を例をあげて説明する。ただ
し、これらの実施例は本発明を限定するものではない。

【００７７】実施例1−クロクツワムシ（Agrotis ipsillon: 鱗翅目:夜蛾科）幼虫に対するCr y1Fの生物学的分析 クロクツワムシ（BCW）幼虫に対するCry1Fの生物学的活性は、MR872（米国特
許第5,840,554号に開示されたcry1F/cry1Abキメラ遺伝子を発現するシュードモ
ナス・フルオレセンス・クローン）の凍結乾燥粉末調製品を用い標準的な生物分
析方法により決定した。BCWの生物学的解析は、試験試料を人工的な食餌に含ま
せ、そして処理および非処理の食餌を幼虫に食べさせることにより実施した。全
ての解析は、BCW人工食餌（BioSev Corporation、フレンチタウン、ニュージャ
ージー州）を用いて実施した。食餌への試料の取り込みは、6mL懸濁液に54mLの
食餌を添加する割合で試料と人工的な食餌（最初は55℃又はそれ以下に冷却され
た食餌）とを混合することにより実施した。何段階かの処置濃度は、段階的な希
釈により作られた。激しく混合した後、混合物を3mL毎に区分けされたプラスチ
ックトレイ（Nutrend Container Corporation、ジャクソンビル、フロリダ州）
に24ウェルトレイに約30mlの割合（各ウェル半分程度満たされる割合）で注入し
た。第3齢もしくはそれ以上の昆虫を用いた生物学的解析では、比較的大きなウ
ェルのNutrendトレイが使用された。この場合にも、ウェルは人工食餌で半分程
度満たされた。試験材料を含まない水のブランク試料が対照として使用された。
食餌を冷却しセットさせるために少なくとも30分空けた後、ウェルあたり1匹の
割合で幼虫（French Ag resources、ランバートン、ミネソタ州）が食餌混合物
上に置かれた。ウェルは、マイラーシーティング（Mylar sheeting: ClearLam P
achaging、イリノイ州）を用い、取付け用のアイロンで密封され、ガス交換を可
能にするために各ウェルにいくつかのピン穴が開けられた。幼虫は、14時間：10
時間（昼：夜）の割合が保たれた部屋内で6日間25℃で保持された。およそ6日間
後、死亡率および発育阻止率が記録された。LC₅₀生物分析のために、少なくとも
3回の反復実験が、5〜7段階の投与量で、各投与量に対しおよそ24の昆虫を用い
て行われた。結果は、表2に示されている（第1齢および第3齢のアグロティス・
イプシロン昆虫に対するMR872Cry1F凍結乾燥粉末調製品を用いた生物学的解析）
。

【表２】

【００７８】実施例2−アグロティス・イプシロンに対するCry1F餌の有効性 Cry1Fを餌に処方し、クロクツワムシ幼虫に対する活性について試験した。MR8
72クローンを、市販の餌（SoilServ, サリナス、カリフォルニア州）に混合し
、得られた混合物を、鉢植えにされたコムギ実生（フィークス（Feekes）成長段
階1.5）の土の表面に50パウンド（50×約453g）餌重量／エーカー（約4046.8平
方メートル）の割合で播いた。Cry1F毒素の異なる量を餌に添加し、2段階の濃度
を調製して試験した。ここで作られた濃度は6.25gおよび12.5gのCry1F毒素重量
を1エーカー（約4046.8平方メートル）に播く割合に相当する。植物は、第3齢又
は第4齢の幼虫を用い、5植物体あたり約1昆虫の割合で感染させた。そして24〜4
8時間経過後に植物の損傷を測定した。損傷割合の階級を0〜4とし、0は植物が完
全に地面に切り倒された場合、そして、4は損傷が観察できない場合とした。対
照群には、餌を与えていない植物（「餌なし」）、餌は与えたが毒素が含まれて
いない植物（「空餌」）および餌なし又は昆虫なしの植物（「対照」）を含めた
。結果は、図1及び図2に示されている。

【００７９】実施例3−昆虫の成長および死亡率および植物の損傷により測定されるトランス
ジェニックCry1Fヒマワリ植物のアグロティス・イプシロンに対する効果 植物の処理： ・ V2段階における対照実生 ・ V2段階におけるB.t.実生（固定化された遺伝子パターンを持ったドナー）；
配列番号：3に示されているような本質的な遺伝子を発現する植物 昆虫： アグロティス・イプシロン 第2齢幼虫（第3齢の実験上の齢） 試験： B.t.実生： 5回反復、1回につき5実生使用、1実生あたり1幼虫。 対照： 5回反復、1回につき5実生使用、1実生あたり1幼虫。 プロトコル： ・ 各反復実験で5つの種を使用し、この種を透明な長四角のトレイ（15cm×25c
m）に植え、幼虫が出ないようにカバーをかけた。 ・ 各反復実験において5匹の幼虫を用いて感染させた。トレイは25℃、75％湿
度に保持されたチャンバーに入れた。評価は、感染後24、48、72、96時間後に行
った。 ・ 評価 1． 植物−未損傷、損傷（茎、子葉又は葉が蝕まれた）、又は子葉よりも下
方が切られた、というようにカテゴリーを分けた。1（非損傷植物又は茎がわず
かに蝕まれた植物）から9（全ての植物が切断及び80％以上の組織が蝕まれた）
までの損傷の等級が各反復実験で付与された。 2． 昆虫−感染後96時間で死んだ幼虫を数え、生存している幼虫の重量を計
測した。 3． データは、相関表解析により解析された。 結果：図は利用可能であり、第4の反復実験（感染後48及び96時間目）を示し
ている。データは次の表で示され、これらの表には各反復実験におけるアグロテ
ィス・イプシロンで感染後、24、48、72及び96時間目の評価を示している。

【表３】 感染後24時間

【表４】 感染後48時間

【表５】 感染後72時間

【表６】 感染後96時間

【表７】 感染後96時間の幼虫の重量（mg） ＊4回分の反復結果を示した理由は、1回の反復実験において幼虫が死んでしまっ
たためである。

【００８０】 結論：B.t.実生は、アグロティス・イプシロンに対し高い感染レベル（1幼虫
／実生）の活性を示す。この活性は駆除が実行できるようにネキリムシを成長さ
せないよう作用するのに十分である。

【００８１】実施例4−新たなCry1Fトウモロコシ産物を用いた黒色ネキリムシ（BCW）の防除 概要 野外の条件下におけるCry1Fトウモロコシ産物（配列番号：3のポリヌク
レオチドを実質的に発現している）の黒色ネキリムシ防除活性を、2つの非B.t.
ハイブリッド、Cry1Abを発現するハイブリッドおよび比較のためのCry9C蛋白質
を発現するハイブリッドと比較した。全てのCry1F産物は非B.t.ハイブリッドと
比較して鎖損失に対して優れた保護を付与した。

【００８２】材料および方法 試験に供する各植物の25の種子を、アルマココーン（Almaco
cone）プランターを用いて第一日目に植えた。4回の反復実験を行い、これらは
それぞれ別々に無作為に行った。列は対で形成され、これら対の列の間に種が植
えられていない歩道が形成されている。各区画は亜鉛メッキ鋼の障壁（高さ8イ
ンチ（8×2.54cm）、幅2.5フィート（2.5×30.48cm）および長さ6フィート（6×
30.48cm））で囲まれている。障壁は第13日目および14日目に地面に約2インチ（
2×2.54cm）の深さで打ち込まれた。障壁の縁は、幼虫が逃げ出さないようにワ
セリンで処理した。小麦のワラはネキリムシの住処になるようにバリア内にまい
た。植物が発生した後すぐに、試験に供するCry1Fを保持する植物をELISAで試験
し、このうち発現していない植物や過剰に発現している植物を除去して、立ち木
は10本までに縮小された。各区画内の3区画では、最終的な立ち木が、8又は9本
であった。非Cry1F植物も10本に制限された。植物が消失した場合にその消失が
明らかとなるように、小さなプラスチックの棒が各植物の背後に立てられた。第
15日目、植物が後期V1又は前期V2に達したときに第3齢の黒色ネキリムシ幼虫が
各植物に配置された。第19日目に、植物あたり2匹の第4齢BCW幼虫を用いた2回目
の感染を行った。

【００８３】 各区画では第16日目から第26日目までの毎日、調査を行った。さらなる評価は
第29日目に行い、最終的な評価を第34日目に行った。損傷を受けた植物のいずれ
も、その前に立つ小さなプラスチックの棒にマークし、損傷の類型をデータシー
トに記録した。調査の最後に、最終的な立ち木を計数した。

【００８４】結果 試験では黒色ネキリムシの中程度の攻撃により、非B.t.植物のいくつか
で立ち木が減少した。予期せぬ結果として、試験ではBCWは立ち木を切断するか
わりに植物を枯死状態にさせる傾向があった。これらの理由に対し、損傷した植
物におけるデータも比較した。

【００８５】 表8は植物の型、立ち木の減少割合（％SR）および植物の各型に対する損傷植
物の割合（％Dam）を示す。立ち木の減少は植物の死を意味する。損傷植物は明
らかに蝕みによる損傷であったが、成長点を失ってはいなかった。

【表８】

【００８６】 これらの結果は、図3および図4に図面として示されている。

【００８７】 被試験植物のうち損傷を受けていないものはなかったが、これは、毛虫が植物
を食べる必要があることという理由から、驚くべき結果ではない。しかしながら
、要するに、写真は、完全に切断された対照と並び、わずかに影響を受けたCry1
F植物を明瞭に示すために利用価値がある。

【００８８】実施例5−毒素遺伝子の植物への導入 本発明の一局面としては、植物を本発明の殺虫毒素をコードしたポリヌクレオ
チド配列で形質転換することである。形質転換植物は標的害虫による攻撃に対し
て耐性を有する。本発明において使用上好ましい遺伝子は、植物内で使用するた
めに最適化されているものである。本発明において、使用上黒色ネキリムシに活
性がある毒素および遺伝子の具体例は、配列番号：1〜8に示されている。配列番
号：1および2の蛋白質および遺伝子が好適である。

【００８９】 植物内で遺伝子を発現させることが可能なプロモータ領域は明らかに必要であ
る。そのため、植物内での発現のために、本発明のDNAは適当なプロモータ領域
の調節下におかれ、そして操作可能に連結されている。このような構成を用いて
植物内発現を可能にするための技術は当業者に既知である。

【００９０】 本出願で開示されているような殺虫剤毒素をコードした遺伝子は、当業者に周
知の種々の技術を用いて植物細胞内に導入され得る。例えば、大腸菌における複
製系および形質転換細胞の選択を可能にするためのマーカーを備えた数多くのク
ローニングベクターが、高等植物に外来遺伝子を導入するための調製品として入
手可能である。ベクターとしては、例えば、pBR322、pUCシリーズ、M13mpシリー
ズ、pACYC184などが含まれる。従って、B.t.毒素をコードしている配列は、ベク
ターの適切な制限酵素部位に挿入され得る。得られたプラスミドは、大腸菌の形
質転換に使用される。大腸菌細胞は適切な栄養培地中で培養され、その後、集菌
され、溶菌される。そしてプラスミドが回収される。分析方法として、塩基配列
の解析、制限酵素解析、電気泳動、およびその他の生化学的−分子生物学的な方
法が一般的に実施される。各操作後、使用されたDNA配列は切断され、次のDNA配
列と連結される。各プラスミド配列は同じ又は他のプラスミド内にクローニング
される。

【００９１】 所望の遺伝子を植物内に挿入する方法に依存して、他のDNA配列が必要になる
場合がある。たとえば、Ti又はRiプラスミドは、植物細胞の形質転換に使用され
た場合には、Ti又はRiプラスミドT−DNAの少なくとも右端、ただし、しばしば右
および左端が、挿入される遺伝子のフランキング領域に連結させる必要がある。
植物細胞の形質転換にT−DNAを使用することは、集中的に研究され、またEP120
516、ホエケマ（Hoekema）(1985) による二元（バイナリ−）植物ベクターシス
テム(Offset-durkkerji Kanters B.V., Albasserdam)の第5章、フレイリー（Fra
ley）らによるCrit. Rev. Plant Sci. 4:1-46およびアン（An）らによる(1985)
EMBO J. 4:277-287に十分に開示されている。

【００９２】 一旦導入されたDNAがゲノム内に組み込まれると、比較的安定に保持され、一
般に再び欠落することはない。殺菌剤または抗菌剤、特にカナマイシン、G418、
ブレオマイシン、ハイグロマイシンまたはクロラムフェニコールなどに対する耐
性を形質転換植物細胞に与える選択マーカーが、通常、備えられている。それぞ
れ使用されたマーカーは、これにより挿入されたDNAを保持していない細胞より
もむしろ形質転換細胞の選択を可能する。

【００９３】 DNAを植物に挿入するための数多くの技術が、利用可能である。それらの技術
には、形質転換因子としてアグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacter
ium tumefaciens）またはアグロティス・リゾゲネス（Agrobacterium rhizogene
s）を用いT-DNAにより形質転換すること、融合、注入、バイオリスティクス（bi
olistics）（微粒子衝撃）またはエレクトロポレーション、その他同様に使用可
能な方法が含まれる。形質転換にアグロバクテリウム（Agrobacterium）は使用
された場合には、挿入するDNAは特定のプラスミド内にクローニングされる必要
がある。このプラスミドは中間ベクターでもまたはバイナリーベクターであって
もよい。 この中間ベクターは、自らが保持するT-DNA中の塩基配列と相同な配列
との間での相同組換えによりTi又はRiプラスミド内に組み込まれ得る。Ti又はRi
プラスミドは、T-DNAの転移に必要なvir領域をも備えている。中間のベクターは
、それ自身ではアグロバクテリウム内で複製することはできない。中間のベクタ
ーは、ヘルパープラスミドを用いた手段（接合）によりアグロバクテリウム・ツ
メファシエンスに導入され得る。バイナリ−ベクターは、それ自身で大腸菌およ
びアグロバクテリウム内で複製することができる。それらは、選択マーカー遺伝
子およびT-DNAの右および左端領域が側部に備えられたリンカーまたはポリリン
カーを備える。それらはアグロバクテリウムに直接形質転換され得る（Hoisters
ら [1978] Mol. Gen. Genet. 163:181-187）。宿主細胞として用いられたアグロ
バクテリウムはvir領域を保持したプラスミドを包含しているはずである。vir領
域は、T-DNAを植物細胞に導入するために必須である。追加のT-DNAを含めてもよ
い。このように形質転換された細菌は、植物細胞の形質転換に使用し得る。植物
の外植片は、DNAの植物細胞への導入のためにアグロバクテリウム・ツメファシ
エンス又はアグロバクテリウム・リゾゲネスで有利に培養され得る。全植物は、
適切な培地（選択用の抗菌剤、殺菌剤を含んでいてもよい）中に入れられた感染
植物材料（例えば、葉、茎の切片、これだけでなくプロトプラスト又は懸濁状の
培養細胞）から再生され得る。このようにして得られた植物は、挿入されたDNA
を安定に存在させ得る。注入およびエレクトロポレーションを行う際にプラスミ
ドに特別な損傷はない。例えばpUC誘導体のような通常のプラスミドを用いるこ
とができる。

【００９４】 形質転換細胞は、通常の方法により植物内で成長する。それらは、生殖細胞を
形成させることができ、そして形質転換の特性を子孫植物に伝えることができる
。このような植物は通常の方法で生育させ、同一の形質転換遺伝因子あるいは他
の遺伝因子を備えた植物と交配させることができる。得られたハイブリッド個体
は対応する表現型を有する。

【００９５】 本明細書に記載の実施例および態様は、例示目的のためだけに示されるもので
あり、それらを鑑みて様々な修正または変更が当業者には想起されるであろうが
、それらもまた、本出願の趣旨および範囲ならびに添付の特許請求の範囲内に包
含されるものであることを理解すべきである。

【配列表】

【図面の簡単な説明】

【図１】 図１は、第４齢の黒色ネキリムシが群生した後および種々の処理
を行った後、24時間目における完全なコムギ実生の質量とそれに対応する損傷の
評価を示す。

【図２】 図２は、郡生後および種々の処理を行った後、48時間目における
第３齢黒色ネキリムシ昆虫が群生したコムギ実生の新鮮な状態の重量を示してい
る。

【図３および４】 図３および４は、実施例４で検討した結果を示す。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＭＺ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ， ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＧ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ， ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＢＺ，Ｃ Ａ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＲ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＤＭ ，ＤＺ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ， ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，Ｋ Ｅ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＡ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ， ＭＷ，ＭＸ，ＭＺ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，Ｒ Ｕ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ ，ＴＲ，ＴＴ，ＴＺ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ， ＺＡ，ＺＷ

Claims (29)

【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】 ネキリムシ害虫にCry1F毒素を接触させる段階を含む、ネキ
   リムシ害虫の防除方法。
2. 【請求項２】 前記毒素がCry1Fa毒素である、請求項１記載の方法。
3. 【請求項３】 前記毒素が切断型の毒素である、請求項１記載の方法。
4. 【請求項４】 前記毒素が該毒素を産生した植物細胞内に存在し、前記害虫
   が該植物細胞を摂食することにより該毒素と接触する、請求項１記載の方法。
5. 【請求項５】 ネキリムシ害虫がアグロティス属（Agrotis）である、請求
   項１記載の方法。
6. 【請求項６】 ネキリムシ害虫がアグロティス・イプシロン（Agrotis ipsi
   lon）である、請求項１記載の方法。
7. 【請求項７】 ネキリムシ害虫がアグロティス・マレフィダ（Agrotis male
   fida）である、請求項１記載の方法。
8. 【請求項８】 ネキリムシ害虫がポロサグロティス属（Porosagrotis）であ
   る、請求項１記載の方法。
9. 【請求項９】 ネキリムシ害虫がポロサグロティス・ジパエティアーナ（Po
   rosagrotis gypaetiana）である、請求項１記載の方法。
10. 【請求項１０】 ネキリムシ害虫がキシロマイゲス属（Xylomyges）である
    、請求項１記載の方法。
11. 【請求項１１】 ネキリムシ害虫がキシロマイゲス・キュリアリス（Xylomy
    ges curialis）である、請求項１記載の方法。
12. 【請求項１２】 ネキリムシ害虫がアグロティニ属（Agrotini）である、請
    求項１記載の方法。
13. 【請求項１３】 ネキリムシ害虫がフェルティア属（Feltia）である、請求
    項１記載の方法。
14. 【請求項１４】 ネキリムシ害虫がフェルティア・ジャクリフェラ（Feltia jaculifera）である、請求項１記載の方法。
15. 【請求項１５】 ネキリムシ害虫がユークソア属（Euxoa）である、請求項
    １記載の方法。
16. 【請求項１６】 ネキリムシ害虫がユークソア・メッソリア（Euxoa messor
    ia）である、請求項１記載の方法。
17. 【請求項１７】 ネキリムシ害虫がユークソア・スカンデンス（Euxoa scan
    dens）である、請求項１記載の方法。
18. 【請求項１８】 ネキリムシ害虫がユークソア・アウクシリアリス（Euxoa
    auxiliaris）である、請求項１記載の方法。
19. 【請求項１９】 ネキリムシ害虫がユークソア・デテルサ（Euxoa detersa
    ）である、請求項１記載の方法。
20. 【請求項２０】 ネキリムシ害虫がユークソア・テッセラータ（Euxoa tess
    ellata）である、請求項１記載の方法。
21. 【請求項２１】 ネキリムシ害虫がユークソア・オクロガスター（Euxoa oc
    hrogaster）である、請求項１記載の方法。
22. 【請求項２２】 ネキリムシ害虫がペリドローマ属（Peridroma）である、
    請求項１記載の方法。
23. 【請求項２３】 ネキリムシ害虫がペリドローマ・サウシア（Peridroma sa
    ucia）である、請求項１記載の方法。
24. 【請求項２４】 前記植物がトウモロコシである、請求項４記載の方法。
25. 【請求項２５】 前記植物がヒマワリである、請求項４記載の方法。
26. 【請求項２６】 前記植物がダイズである、請求項４記載の方法。
27. 【請求項２７】 前記植物がカノーラである、請求項４記載の方法。
28. 【請求項２８】 前記植物がワタである、請求項４記載の方法。
29. 【請求項２９】 接触する段階が、毒素をコードするポリヌクレオチドを含
    む植物の種子を植える段階に続いて行われる、請求項４記載の方法。