JP2002000292A - 微生物培養法による光学活性1,2−ジオール類の製造法 - Google Patents
微生物培養法による光学活性1,2−ジオール類の製造法Info
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Abstract
る光学活性1,2−ジオール類を得るための製法。 【解決手段】 下記式[1] 【化1】 (式中、Rはアルキル基、ヒドロキシ置換アルキル基、
またはアルケニル基である。)で示されるラセミ体1,
2−ジオール類を、アルカリゲネス属に属する微生物を
好気的条件下培養増殖中の該菌体に作用させ、該培養液
より回収することを特徴とする、下記式[2] 【化2】 (式中、Rは前掲と同じ。)で示される光学活性1,2
−ジオール類の製造方法。
Description
性物質および強誘電性液晶などの光学活性化合物の合成
における有用なキラルビルディングブロックおよびその
中間体となりうる光学活性1,2−ジオール類のアルカ
リゲネス属に属する微生物処理による製造法に関するも
のである。
に関しては、化学法として、近年 Jacobsenらによりプ
ロピレンオキサイド等のエポキシド化合物をCo(III)-サ
レーン触媒を利用することにより立体選択的に加水分解
し、残存する光学活性のエポキシド化合物と生成する光
学活性の該ジオール化合物に変換する方法が既に報告さ
れている(M. Tokunaga et al., Science, 277, 936-93
8 (1997))。しかし、用いる基質によっては得られる
1,2−ジオール化合物の光学純度が低く、一方高価な
触媒を利用する点で安価な製法とは言い難い。
よるグリセロールデヒドロゲナーゼを用いた1−ヒドロ
キシ−2−プロパノンおよび1−ヒドロキシ−2−ブタ
ノンからの還元反応による(R)体1,2−プロパンジ
オールおよび(R)体1,2−ブタンジオールの製法
(Journal of Organic Chemistry, Vol. 51, pp.25-36,
(1986))やSuzukiらによる酸化的脱ハロゲン化酵素(ハ
ロヒドリンデハイドロデハロゲナーゼ;HDDase)を用
いた光学活性1,2−ジオール化合物の製法が報告され
ている(Tetrahedron/asymmetry,vol.5,239-246(199
4)、特開平7-147993)。さらに、微生物菌体を触媒とし
た方法として、1−ヒドロキシ−2−ケトン化合物に微
生物菌体(休止菌体)を作用させ、(S)体1,2−ジ
オール化合物に変換する製法(特開平1−320988)が知
られている。また、(R)体1,2−ジオール化合物を
得る方法としては、Nikaidoらによるシュードモナス属
細菌の休止菌体を利用したラセミ体1,2,4−ブタン
トリオールからのR体1,2,4−ブタントリオールの
光学分割法が知られている(特開平6−209781)。
法では、ラセミ体1,2−ジオール化合物に作用させる
酵素や微生物休止菌体を別途調製し、光学分割反応に供
しなければならない。即ち、酵素反応では物理的な破砕
操作等により微生物菌体から酵素を抽出しなければなら
ない。また、微生物休止菌体反応では、微生物培養工程
と光学分割反応工程が別工程であり、余分な時間と手間
を必要とする。さらには酸化還元的な分解反応により分
割反応が進行する場合、反応に補酵素や電子需要体を添
加する必要があり、あるいはその再生利用の面から見て
効率的な反応とは言い難い。
で、且つ簡便で安価な方法による光学活性1,2−ジオ
ール化合物を得るための製法の開発が望まれている
課題を解決すべく光学活性1,2−ジオール類の工業的
生産を目指して、鋭意研究した結果、本発明を完成する
に至った。本発明方法は、上記の酵素法、すなわちハロ
ヒドリンデハイドロデハロゲナーゼ(HDDase)に
よる光学活性1,2−ジオール化合物の製法(Tetrahed
ron/asymmetry,vol.5,239-246(1994)、特開平7-14799
3)をより効率的、且つ実際的に改良した方法である。
se)の酵素化学的な性質から生菌体の補酵素の有効な
再生系を共役させることにより、式[2]に示す光学活
性1,2−ジオール化合物の安価で、簡便な製法を開発
したものである。さらに、基質としてラセミ体1,2,
4−ブタントリオールを用い、これを本発明方法により
光学分割した場合、その反応生成物としてS体2,4−
ジヒドロキシ酪酸を確認することができ、残存するR体
1,2,4−ブタントリオールと同時にS体2,4−ジ
ヒドロキシ酪酸を生産する方法も開発した。既にラクト
イナーゼを用いたラセミ体2−ヒドロキシ−γ−ブチロ
ラクトンの光学分割法に伴う光学活性2,4−ジヒドロ
キシ酪酸の製法は報告されているが(特開平9−308
497)、光学活性1,2−ジオールと同時に光学活性
2,4−ジヒドロキシ酪酸の生産法の報告は初めてであ
る。上記のHDDaseによる酵素法では、ラセミ体
1,2−ジオール化合物から一方の光学活性1,2−ジ
オール化合物を立体選択的な酸化分解反応により分解除
去する際に、補酵素として高価な酸化型ニコチンアミド
アデニンジヌクレオチド(NAD)や酸化型の人工的な
電子需要体を別途反応液に添加する必要がある。そのた
めHDDaseを用いた酵素法では、補酵素の再生反応
が律速反応となり(Tetrahedron/asymmetry,vol.5,239-
246(1994), J. Ferment. Bioeng., vol.78, 194-196 (1
994))、実際的な製法とはいい難い。
NADや酸化型の人工的な電子需要体を別途反応液に添
加することなく、好気的な条件下で増殖中の菌体内のN
ADを繰り返し用いることにより、ラセミ体1,2−ジ
オール化合物より一方の光学活性1,2−ジオール化合
物を酸化分解除去、あるいはカルボン酸に変換し、残存
するもう一方の光学活性1,2−ジオール化合物(式
[2])を回収することによる簡便で安価な、そして実
際的な光学活性1,2−ジオール化合物の製法に関す
る。従って本発明方法は、既に報告されている精製した
HDDaseを用いる酵素法や休止菌体法(Tetrahedro
n/asymmetry,vol.5,239-246(1994), J. Ferment. Bioen
g., vol. 78, 194-196 (1994))である従来技術による製
法とは根本的に異なる製法である。
またはアルケニル基である。)で示されるラセミ体1,
2−ジオール類を、アルカリゲネス属に属する微生物を
好気的条件下培養増殖中の該菌体に作用させ、該培養液
より回収することを特徴とする、下記式[2]
−ジオール類の製造方法に関する。
タントリオールを用いた場合、このラセミ体を、アルカ
リゲネス属に属する微生物を好気的条件下培養増殖中の
該菌体に作用させることことを特徴とする(R)体1,
2,4−ブタントリオールおよび(S)−2,4−ジヒ
ドロキシ酪酸の製造方法にも関する。
トンや酵母エキス、炭素源として3−クロロ−1,2−
プロパンジオールやグルコン酸からなる栄養培地におい
て好気的な条件下で増殖している菌体にラセミ体1,2
−ジオール類を作用させることにより、補酵素である酸
化型NADを効率的に増殖菌体中で再生し、反応液中に
NADを全く添加することなく、安価で、且つ実際的に
ラセミ体1,2−ジオール類から式[2]に記載の光学
活性1,2−ジオール類を得る方法に関する発明をなし
た。
脱ハロゲン化反応を触媒する酵素であるハロヒドリンデ
ハイドロデハロゲナーゼ(HDDase)を産生する微
生物であり、具体的には本発明者らにより土壌から分離
されたアルカリゲネス属に属する微生物Alcaligenes s
p. DS-S-7G株、Alcaligenes sp. DS-S-8S株、Alcaligen
es sp. DS-S-1C株を挙げることができる。これらの微生
物は既に工業技術院微生物工業研究所にそれぞれ微工研
菌寄第3098号 ((FERM BP−3098)、微
工研菌寄第3099号(FERM BP−3099)、
微工研菌寄第3100号 (FERM BP−310
0)として寄託されている。上記の菌株は、いずれも
(R)体3−クロロ−1,2−プロパンジオールを分解
資化する能力を指標に土壌より分離された微生物で、硫
安などの無機的な窒素源を含む、微量のリン酸塩と硫酸
マグネシウム塩、および微量の金属塩からなる基本培地
に単一炭素源としてR体3−クロロ−1,2−プロパン
ジオールを含む最少培地において増殖することができる
(特公平4−73999、Bioorg. Med. Chem.Lett., 1, 343-
346 (1991))。
ては、通常これらの微生物が成育する培地ならいかなる
培地でもよい。例えば炭素源としてグリセロール、ラセ
ミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオール、(R)
体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオール等のアルコ
ール類、酢酸、クエン酸、リンゴ酸、マレイン酸、フマ
ル酸、グルコン酸とその塩類などの有機酸、またはそれ
らの混合物を、窒素源として硫酸アンモニウム、硝酸ア
ンモニウム、リン酸アンモニウム等の無機窒素化合物お
よび尿素、ペプトン、カゼイン、酵母エキス、肉エキ
ス、コーンスチープリカー等の有機窒素化合物とそれら
の混合物を挙げることができる。その他、無機塩として
リン酸塩、マグネシウム塩、カリウム塩、マンガン塩、
鉄塩亜鉛塩、銅塩等、さらに必要に応じてビタミン類を
加えてもよい。また、HDDase活性を高誘導するた
めに、上記菌株を培養する際に、上記培地およびペプト
ン培地、ブイヨン培地等の栄養培地にラセミ体3−ハロ
ゲノ−1,2−プロパンジオール、(R)体3−ハロゲ
ノ−1,2−プロパンジオールを添加してもよい。ラセ
ミ体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールまたは
(R)体3−ハロゲノ−1,2−プロパンジオールを単
一炭素源とする完全合成培地で培養するのも好ましい態
様の1つである。
えばpHを4〜9、好ましくは4.5〜8.5、培養温
度は20〜45℃、好ましくは25〜37℃の範囲で好
気的に10〜96時間行なうことが好ましい。好適な基
質としては、1,2,4−ブタントリオール、1,2−
プロパンジオール、1,2−ブタンジオール、1,2−
ペンタンジオール、1,2−ヘキサンジオール、1,2
−ジヒドロキシ−3−ブテン、1,2−ジヒドロキシ−
5−ヘキセン等のラセミ体が挙げられる。基質としてラ
セミ体1,2,4−ブタントリオールを用い、本発明に
係る培養法により光学分割した場合、残存するR体1,
2,4−ブタントリオールと同時にS体2,4−ジヒド
ロキシ酪酸を生産することができる。両者の分離はイオ
ン交換樹脂やシリカゲルなどによるカラムクロマトグラ
フィー法や培養反応液を中性条件下で濃縮した後、アル
コールを添加することにより溶媒置換し、2,4−ジヒ
ドロキシ酪酸と1,2,4−ブタントリオールをそれぞ
れカルボン酸塩の沈殿と上清とに分離する方法などによ
り行うことができる。
さらに好ましくは25〜37℃である。反応培養pHは
pHを4〜9、好ましくは4.5〜8.5で行なうのが
好ましい。反応液中の基質濃度は0.1〜15%(v/
v)が好ましく、基質は初期に一括していれてもよい
し、分割添加してもよい。反応は好気的な条件下で通気
攪拌あるいは振とうしながら行ない、基質濃度,生育菌
体量により異なるが24〜120時間で終了するのがよ
い。好ましくはガスクロマトグラフィー等の分析により
残存基質量が初期基質濃度に比して50%で反応を終了
するのがよい。なお、反応中に基質が酸化的に分解され
生成する酸により反応pHが低下する場合、水酸化ナト
リウム、アンモニア水や炭酸カルシウム等の炭酸アルカ
リ塩水溶液を添加して、反応至適pHの範囲に制御して
もよい。かくして得られる反応液中に残存する光学活性
1,2−ジオール類は、一般的な方法で回収および精製
できる。例えば反応液から菌体を遠心分離で除いた後、
上清をエバポレーターにより濃縮し、酢酸エチル等の溶
媒で抽出し、抽出液を無水硫酸マグネシウムにより脱水
した後、減圧下で溶媒を除去し、光学活性1,2−ジオ
ール類のシロップを得ることができる。さらに蒸留やシ
リカゲルを用いたカラムクロマトグラフィーにより精製
してもよい。
するが本発明はこれら実施例に限定されるものではな
い。なお、実施例中の%は特に記載のない限り(W/
V)を表す。
v)からなる組成の培地1リッターを入れた2リッター
ジャーファーメンター(培養器)を121℃、15分間
滅菌した。その培地に別途121℃、15分間滅菌した
ラセミ体1,2,4−ブタントリオールを5%(w/
v)になるように添加した栄養培地を作成した。次に、
Alcaligenes sp. DS-S-7G株の一白金耳を予めペプト
ン、酵母エキス、ラセミ体3−クロロ−1,2−プロパ
ンジオールをそれぞれ1.0%含む100mlの半合成
培地(pH7.2)で30℃、20時間振とう培養し、
その培養菌体液を上記栄養培地に2%(v/v)量無菌
的に接種した。そして温度30℃、通気量500mL/
min,回転数500rpmの条件で約24時間、通気
攪拌培養を行なった。pHの測定および制御は連動させ
たpHメーターで行ない、5Nの水酸化ナトリウムによ
りpH6.5に制御した。
2,4−ブタントリオールをガスクロマトグラフィー
(カラム担体:PEG20M,60−80メッシュ)で
分析した結果、その残存率は49.2%であった。ま
た、同時に2,4−ジヒドロキシ酪酸の生成が確認でき
た。ついで培養液を遠心分離操作により菌体を除去した
後、約40mlまで濃縮し、3倍量のエタノール(12
0ml)を添加し、抽出した。そのとき、(1,2,4
−ブタントリオール)のエタノール溶液と(2,4−ジ
ヒドロキシ酪酸のナトリウム塩)の沈殿とに分離した。
さらにそのエタノール溶液を無水硫酸マグネシウムで脱
水後、溶媒を減圧下で除去し、21.6gの粗1,2,
4−ブタントリオールのシロップを得た。一方、沈殿は
エタノールで再度洗浄した後、溶媒を減圧下で除去し、
5.6gの粗2,4−ジヒドロキシ酪酸のナトリウム塩
を得た。生成物の同定はGC/MSにより行ない、培養
反応終了液中の1,2,4−ブタントリオールと2,4
−ジヒドロキシ酪酸をそれぞれ確認した。また、得られ
た1,2,4−ブタントリオールの光学純度は、上記シ
ロップ中の1,2,4−ブタントリオールを無水トリフ
ルオロ酢酸によりトリフルオロアセチル化した後、アス
テック社製のキャピラリーカラムG−TA(0.25m
m x 30m)を用いたガスクロマトグラフィーによ
り光学異性体の分析を行なった。その結果、回収した
1,2,4−ブタントリオールは光学純度98%ee以
上の(R)体であることが判明した。この分析により
(R)体の保持時間は39.3分,(S)体は40.6
分であった。なお、上記のガスクロマトグラフィーによ
る光学異性体の分析条件は以下の通りである。 分析条件:カラム温度,100℃;検出器温度,200
℃;キャリアーガス,窒素;流速,1ml/min;検
出器,FID;スプリット比,100/1。
シ酪酸は、0.5M−塩酸、100℃の条件下で2時間
還流し、相当する2−ヒドロキシ−γ−ブチロラクトン
に変換した(JP 09308497)。酢酸エチルで
抽出後、溶媒留去し、2−ヒドロキシ−γ−ブチロラク
トンの粗標品を得た。その化学純度はガスクロマトグラ
フィー(カラム担体:PEG20M,60−80メッシ
ュ)により分析したところ80%であった。得られた2
−ヒドロキシ−γ−ブチロラクトンの旋光度を測定した
ところ、[α]D=−51.9°(25℃、c=1.132,C
HCl3)を示し、その立体配置は(S)体であることが判
明した。 文献値:[α]D=−65.2°(25℃、c=1.15,CH
Cl3)
の基質に、そして使用する微生物をDS-S-7G株からDS-S-
8S株あるいはDS-S-1C株に変えた以外は実施例1と同様
の方法で光学分割反応を行なった。
属する微生物Alcaligenes sp. DS-S-7G株、Alcaligenes
sp. DS-S-8S株、Alcaligenes sp. DS-S-1C株の好気的
増殖菌体を利用してラセミ体1,2−ジオール類から一
方の光学異性体を酸化的に分解除去し、原料的に安価
で、且つ工業的に簡便な方法によって(R)体1,2−
ジオール類を製造することができる。またラセミ体1,
2,4−ブタントリオールを基質として用いたときに
は、(R)体1,2,4−ブタントリオールと(S)体
2,4−ジハイドロキシ酪酸を製造することができる。
Claims (10)
- 【請求項1】 下記式[1] 【化1】 (式中、Rはアルキル基、ヒドロキシ置換アルキル基、
またはアルケニル基である。)で示されるラセミ体1,
2−ジオール類を、アルカリゲネス属に属する微生物を
好気的条件下培養増殖中の該菌体に作用させ、該培養液
より回収することを特徴とする、下記式[2] 【化2】 (式中、Rは前掲と同じ。)で示される光学活性1,2
−ジオール類の製造方法。 - 【請求項2】 式[1]、[2]のRがヒドロキシ置換
アルキル基である請求項1記載の光学活性1,2−ジオ
ール類の製造方法。 - 【請求項3】 式[1]、[2]のRがアルキル基であ
る請求項1記載の光学活性1,2−ジオール類の製造方
法。 - 【請求項4】 式[1]、[2]のRがアルケニル基で
ある請求項1記載の光学活性1,2−ジオール類の製造
方法。 - 【請求項5】 式[1]の化合物がラセミ体1,2,4
−ブタントリオールである請求項1記載の光学活性1,
2,4−ブタントリオールの製造方法。 - 【請求項6】 基質として、1,2−プロパンジオー
ル、1,2−ブタンジオール、1,2−ペンタンジオー
ル、1,2−ヘキサンジオール、1,2−ジヒドロキシ
−3−ブテンおよび1,2−ジヒドロキシ−5−ヘキセ
ンから選ばれる1種のラセミ体を用い、それに対応する
光学活性体を製造する請求項1の1,2−ジオール類の
製造方法。 - 【請求項7】 ラセミ体1,2,4−ブタントリオール
を、アルカリゲネス属に属する微生物を好気的条件下培
養増殖中の該菌体に作用させることことを特徴とする
(R)体1,2,4−ブタントリオールおよび(S)−
2,4−ジヒドロキシ酪酸の製造方法。 - 【請求項8】 ラセミ体1,2,4−ブタントリオール
をアルカリゲネス属に属する微生物を好気的条件下培養
増殖中の該菌体に作用させ、該培養液から単離すること
を特徴とする(S)−2,4−ジヒドロキシ酪酸の製造
方法。 - 【請求項9】 使用する微生物がAlcaligenes(アルカ
リゲネス属) sp. DS-S-7G株(FERM BP−309
8)、Alcaligenes(アルカリゲネス属) sp.DS-S-8S株
(FERM BP−3099)、または Alcaligenes
(アルカリゲネス属) sp. DS-S-1C株(FERM BP
−3100)である請求項1〜6のいずれかに記載の光
学活性1,2−ジオール類の製造方法。 - 【請求項10】 使用する微生物がAlcaligenes(アル
カリゲネス属) sp.DS-S-7G株(FERM BP−30
98)、Alcaligenes(アルカリゲネス属) sp. DS-S-8
S株(FERM BP−3099)、または Alcaligene
s(アルカリゲネス属) sp. DS-S-1C株(FERM B
P−3100)である請求項7または8に記載の(R)
体1,2,4−ブタントリオールおよび/または(S)
−2,4−ジヒドロキシ酪酸の製造方法。
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