JP2000502107A

JP2000502107A - Ｈｙｐｅｒａｂａｓ：８’―メチル又は９’―メチル炭素原子に不飽和炭素置換基を有する生物学的に活性なアブシジン酸類似体

Info

Publication number: JP2000502107A
Application number: JP09523171A
Authority: JP
Inventors: アール．エイブラムス，スザンヌ; ジェイ．バルセビッチ，ジョン; ジェイ．カルター，エイドリアン; レイ，ボー; エー．ローズ，パトリシア
Original assignee: National Research Council of Canada
Current assignee: National Research Council of Canada
Priority date: 1995-12-21
Filing date: 1996-12-20
Publication date: 2000-02-22
Anticipated expiration: 2016-12-20
Also published as: WO1997023441A1; JP3529793B2; AU1089997A; US6004905A; CA2241197C; CA2241197A1

Abstract

(57)【要約】開示されている発明は、Ｒ₁のうちの１方がアルケニル、アルキニル、アリール、シクロアルケニル、重水素含有残基を含むその他のさらに置換された炭素鎖、及びヘテロ原子及びハロゲンを伴う炭素含有置換基であり、もう１方がメチルであり、さらに５成員炭素側鎖がＣ３にメチル基を含み、示されている通りＣ５が環に付着しており、Ｃ４〜Ｃ５位置にトランス２重結合又はこの位置で３重結合そしてＣ２〜Ｃ３位置にシス又はトランスのいずれかの２重結合が含まれており、さらにＲ₂はCH₂OH，CH0，COOH，COOアルキル又はその誘導体であり、シクロヘキサノン環２重結合を還元することもできる、構造式（１）の新しいクラスのアブシジン酸（ＡＢＡ）類似体、及びかかるＡＢＡ類似体を合成するための新規方法に関する。

Description

【発明の詳細な説明】 HYPERABAS ：８’−メチル又は９’−メチル炭素原子に不飽和炭素置換基を有する生物学的に活性なアブシジン酸類似体発明の背景本発明は、８’−又は９’−炭素原子において変性された新しいクラスのアブシジン酸（ＡＢＡ）類似体、及びかかるＡＢＡ類似体を合成するための新規方法に関する。背景アブシジン酸は、種子の発達及び発芽、蒸散及びストレスに対する応答を含む植物の成長のさまざまな面を調整する植物ホルモンである。アブシジン酸、（＋）−ＡＢＡ（炭素原子及び立体配座表示のための番号付けシステムを伴う）。このホルモン自体は、摂取及び安定性の問題及びコストを理由として、外部的に塗布される植物成長調節物質としての限定された用途しか有していなかった。その上、ＡＢＡ作用のメカニズムの検討、受容タンパク質の同定及びホルモンの細胞内位置確認は、植物内のホルモンの急速な代謝回転により制約を受けてきた。同様に、応用ＡＢＡの農業用途は、植物内のホルモンの急速な代謝により制限されてきた。植物の中で、（＋）−ＡＢＡの代謝の支配的な経路（以下参照）には、ファゼイン酸（ＰＡ，３）を産生するエノン系に対する８’−ヒドロキシル基の攻撃により環化を受ける８’−ヒドロキシＡＢＡ（２）を与える８’位置における水酸化が関与する。中間水酸化ＡＢＡ化合物２は、植物抽出物内にめったに発見されたことがなく、これは、操作中にそれが容易に環化するためである確率が最も高い。最も容易に単離可能なＡＢＡ異化代謝産物であるファゼイン酸（３）は、大部分の検定において、ほとんど又は全く活性をもたない。先行技術の説明近年、８’又は９’−炭素原子のいずれかにメトキシ基を支持する新しいＡＢＡ類似体が、日本のヒライ研究班（Ｙ．トドコリ、Ｎ．ヒライ及びＫ．コシムズ、アブシジン酸の代謝拮抗類似体としての８’及び９’−メトキシアブシジン酸、Biosci，Biotech．Biochem 1994，58：707-715）：Ｓ．ナカノ、Ｙ．トドロキ、Ｎ．ヒライ及びＨ．オヒガシ、アブシジン酸の７’−，８’−及び９’−アルキル類似体の合成及び生物活性）によって合成され試験された。これらの化合物は、検定に応じて、強い活性をもつことがわかった。それらの結果は、いくつかの例において、一つの原子に１対の原子が結合したジメチル基を修飾することにより分子がＡＢＡ様のものとして感知されることが妨げられることはない。ということを示唆しており、研究者達は、変性が、ＡＢＡを分解する酵素による急速な代謝損傷を妨げるということを仮定している。しかしながら、彼らが使用した合成は実用的なものではない。メトキシ誘導体のための彼らの手順には、２重結合異性体の混合物を与える１つの反応と、１’ 及び６’炭素でジアステレオマを与えるもう１つの反応を伴う、15の段階が必要である。トランス形との混合物、すなわち４つの化合物としてのラセミメチルエーテルの収量は、彼らの実験結果から0.22％として計算されている。アルキル類似体は、類似のルートで全体的に低い効率で合成される。２つの研究班が、強い生物活性をもつ８’でフッ素置換されたＡＢＡ類似体を合成した（Ｙ．トドロキ、Ｎ．ヒライ、Ｋ．コシミズ、アブシジン酸の極めて強く持続性のある類似体としての８，８’−ジフルオロ及び８’，８’，８’−トリフルロアブシジン酸。Phytochem．1995 38：561-568。B．T．Kim．Y．K．Min ．T．Asami．NK．Park．I．H．Jeong，K．Y．Cho及びS．Yoshida．新しいフッ素化アブシジン酸の合成及び生物活性、Bioorganic and Medicinal．Chem．Lett． 1995 5 275-278）。両方のケースにおいて、合成は長時間にわたり、植物成長調節物質としての応用には実用的でない。発明の要約農業及び基礎研究の利用分野のための、植物中のＡＢＡの効果を延長させるのに使用できる強くかつ生物学的に安定したＡＢＡ類似体を開発することが、本発明の目的である。本発明のもう１つの目的は、酵素による酸化（恐らくはチトクロムＰ−450モノオキシゲナーゼが関与するもの）に対する耐性をもつものの天然ホルモンの生物活性を保持するか又はこれに対する増強を提供するような類似体を開発するため、ＡＢＡの８’又は９’−炭素原子を変性させることにある。本発明の１つの形態に従うと、という構造式Ｉの化合物において、Ｒ₁のうちの１方がアルケニル、アルキニル、アリール、シクロアルケニル、重水素含有残基を含むその他のさらに置換された炭素鎖、及びヘテロ原子及びハロゲンを伴う炭素含有置換基であり、もう１方がメチルであり、さらに５成員炭素側鎖がＣ３にメチル基を含み、示されている通りＣ５が環に付着しており、Ｃ４〜Ｃ５位置にトランス２重結合又はこの位置で３重結合そしてＣ２〜Ｃ３位置にシス又はトランスのいずれかの２重結合が含まれており、さらにＲ₂はCH₂OH，CHO，C0OH，COOアルキル又はその誘導体であり、シクロヘキサノン環２重結合を還元することもできる、化合物が提供されている。本発明のもう１つの形態に従うと、という構造式Ｉａをもち、ここでＲ₁がアルケニル、アルキニル、アリール、シクロアルケニル、重水素含有残基を含むその他のさらに置換された炭素鎖、及びヘテロ原子及びハロゲンを伴う炭素含有置換基であり、さらに５成員炭素側鎖がＣ３にメチル基を含み、示されている通りＣ５が環に付着しており、Ｃ４〜Ｃ５位置にトランス２重結合又はこの位置で３重結合、Ｃ２〜Ｃ３位置にシス又はトランスのいずれかの２重結合が含まれており、さらにＲ₂はCH₂OH，CHO，COOH，COOアルキル又はその誘導体であり、シクロヘキサノン環２重結合を還元することもできる、新しいクラスの８’−アブシジン酸（ＡＢＡ）類似体が提供されている。本発明のもう１つの形態に従うと、Ｒ₁及びＲ₂が構造式Ｉａについて以上で定義づけした通りである、という構造式Ｉｂの新しいクラスの９’−アブシジン酸（ＡＢＡ）類似体が提供されている。本発明のもう１つの形態に従うと、８’−ＡＢＡ類似体の合成のための新しい方法が提供されている。８’類似体が求められる場合、全体的プロセスには、２，６−ジメチルシクロヘキサ−２，５−ジエン−１，４−ジオン又はＣ４におけるケタールといった誘導体と、３−メチルペント−２−en−４−yn−１−ol又はヒドロキシ保護された誘導体のジアニオンとの反応が関与する。エノンに対する不飽和基の接合体添加は、グリニヤール試薬を用いて行なわれる。機能的誘導体、例えば酸、エステル、酸塩化物などへのＣ１ヒドロキシル基の酸化は、標準的方法を用いて達成される。Ｃ４〜Ｃ５３重結合は、例えば適切な水素化物といった水素化物還元剤を用いてトランス３重結合まで還元され得る。我々の検定は、天然ＡＢＡと比較するべく光学的に純粋な材料に対して行なわれたものの、ラセミ材料が利用される場合、分割段階が必要となることがわかるだろう。Ｃ４〜Ｃ５でのアセチレン類似体の調製は、以下の要領でケタール化されていないキノン（以下の図式Ａ）を用いると最も効果的である。３−メチルペント−２−en−４−yn−１−olのジアニオンは、ｎ−ブチルリチウムを２当量添加することにより−78℃から−20℃まででTHF 内で生成される。これは、テトラメチルエチレンジアミンの存在下で 100℃でTHF 中の１当量のキノン溶液に添加される。この反応は、より干渉を受けたカルボニルに対し選択的に側鎖を加える。この反応に対しさらにグリニャール試薬（R₁MgX 、なお式中Ｘ＝Cl，Br 又はＩ）を加えると、８’位置にＲ₁基が付加され、１つのポット内に８’置換されたケト−ジオールを与えることになる。Ｃ４〜Ｃ５にトランス２重結合を伴う類似体の調製は、以下の条件下でケタール（以下の図式Ｂ）から最もうまく実施される。３−メチルペント−２−en−４ −yn−１−olのジアニオンは、２当量のｎ−ブチルリチウムを添加することによって、−78゜から−20℃でTHF 中で生成される。これに対して１当量のケタール化されたキノンが添加される。反応が完了した後、３重結合の還元を、0℃でRed −Ａｌを添加することによりインサイチュで行うことができる。０℃でTHF 中10 ％のHClを用いて、ケタールを除去することができる。Ｒ基の接合体添加は、銅媒介のグリニャール試薬との反応を通して行なわれる。ケトジオールのジアニオンはまず最初に、メチルリチウム、リチウムジイソプロピルアミド又は水素化ナトリウムのいずれかを用いて−78゜から−20℃で生成され、次に−78゜から−20 ℃でヨウ化銅及びR₁MgX（Ｘ＝Br，Cl又はＩ）の溶液に移される。酸へのＣ１ヒドロキシル基の酸化は、標準的方法を用いて達成される。８’位置のさらなる修飾は、選択的なオゾン分解法及びそれに続く８’−メチレンＡＢＡの形成されたアルデヒド上のWittigタイプの反応を通して実施できる。合成を短縮するためいくつかの反応を組合わせることが可能である。例えば、Ｒ₁＝CH₂CCH，Ｃ≡CH，CH₂CH＝CH₂，CH＝CH₂。以下のより詳細な反応図（ｉ）〜（iv）はさらに図式Ｂのプロセスを例示している。以下のものは、図式Ａのプロセスをさらに詳細に説明する、より詳しい反応図（ｖ）である。構造式Ｉｂの９’−類似体は、ヨウ化アリルでの２，６−ジメチル−４，４エチレンジオキシシクロヘク−２−セノンのアルキル化によって合成できる。その後生成物を３−メチル−ペント−２−en−４−yn−１−olのジアニオンを反応させることにより、８’−及び９’−で置換されたアセチレンＡＢＡ類似体の１：１の混合物が得られる。Ｃ４〜Ｃ５の３重結合をトランス２重結合に還元しＣｌ炭素ヒドロキシル基を適当なレベル（例えば酸）まで酸化する作業は、標準的方法により達成される。８’及び９’−アリルエステルは、キラル支持体(Daicel Chiralcel - OD)を伴うカラムを用いてHPLCにより分離できる。以下に示すのは、９’−類似体の合成のためのより詳細な反応図式Ｃである。図面の簡単な説明図１は、（＋）−ＡＢＡ及び８’メチレンＡＢＡについての成長阻害用量応答を例示するグラフである。図２は、ＢＭＳ細胞懸濁培養の培地のpHに対する（＋）−８’−メチレンＡＢＡ及び（＋）−ＡＢＡの効果を例示するグラフである。図３は、（＋）−ＡＢＡ(100μＭ)及び（＋）−８’−メチレンＡＢＡ(125μ Ｍ)での３時間の処理の後の小麦実生の蒸散量の減少を例示するグラフである。図４は、小麦実生（10μＭの類似体での処理から３時間後）に対する複数のＡＢＡ類似体の蒸散効果を例示するグラフである。図５は、コショウソウの種子の発芽に対する（＋）−８’−メチレンＡＢＡ及び天然ＡＢＡの効果を例示するグラフである。図６は、遺伝子導入タバコ植物内のβ−グルクロニダーゼ(GUS)活性の誘発を例示するグラフである。図７は、（＋）−ＡＢＡ及び９’誘導体の成長阻害を例示するグラフである。図８は、（＋）−メチルＡＢＡ(100μＭ)及び（＋）−９’−エチレンメチルＡＢＡ(100μＭ)での３時間の処理後の小麦実生の蒸散量の減少を例示するグラフである。図９は、ＡＢＡ及び８’アセチレンＡＢＡのコーン（トウモロコシ）成長阻害を例示するグラフである。図10は、メイズ（トウモロコシ）細胞懸濁培養の培地中の（＋）−ＡＢＡ、（＋）−８’−メチレンＡＢＡ及び（＋）−８’−メチルＡＢＡの残存率の経緯を例示するグラフである。図11は、コーン細胞成長に対する（＋）−ＡＢＡ及び（＋）−８−メチルＡＢＡの効果を例示するグラフである。図12は、切除された小麦胚芽の発芽阻害物質としての（＋）−ＡＢＡ及び（＋）−８’−メチレンＡＢＡの生物活性を例示するグラフである。図13は、切除された小麦胚芽の発芽阻害物質としての（＋）−ＡＢＡ、（＋） −８’−メチレンＡＢＡ、（−）−８’−メチレンＡＢＡ及び（＋）−８’−メチルＡＢＡの生物活性を例示するグラフである。図14は、トランスジーンPror６，６−GUSを含有する同型接合のタバコ実生からの子葉ホモジネート内のGUS特異的活性に対する（＋）−ＡＢＡ及び（＋）− ８’−メチレンＡＢＡの効果を例示するグラフである。そして、図15は、トランスジーンPror６，６−GUSを含有する同型接合のタバコ実生からの子葉ホモジネート内のGUS特異的活性に対する（＋）−ＡＢＡ及び（＋）− ８’−メチルＡＢＡの効果を例示するグラフである。図16は、Canola種子の出芽に対するPBI-365 の効果を例示するグラフである。図17は、メチル−８’−メチレンＡＢＡでの処理の後の干ばつ条件に対する移植されたトウヒ実生の耐久生存を例示するグラフである。図18及び21は、移植されたトウヒ実生に対する、異なる濃度のメチル−８’− メチレンＡＢＡの効果を例示するグラフである。好ましい実施形態の説明新規ＡＢＡ類似体は、８’−又は９’−炭素原子において、不飽和を含む炭素鎖で変性される。例えば、Ｃ−８’又は９’メチル基は、CH₂＝CH（メチレン）、CH₂CH＝CH₂（アリル）、Ｃ≡CH（アセチレン）、CH₂CCH（プロパルギル）又は不飽和を伴うより長い炭素鎖で置換され得、環式化合物及びヘテロ原子を伴う置換基を内含する。我々は同様に、実用的かつ経済的でしかも容易に入手可能な前駆物質から数多くの生物活性化合物を効率良く提供するような合成方法も開発した。以下の例中で記述する一定数の異なる検定における結果は、新しい８’−又は９’−変性類似体が、天然ホルモンのものと比較できる又はそれ以上の活性をもつことを示している。従って、これらの類似体は、ＡＢＡが関与する植物内のあらゆる生物学的プロセスを変性するのに利用できる可能性がある。ここで請求されている８’置換されたＡＢＡ類似体は、ＡＢＡの異化においてファゼイン酸へと酸化される炭素原子において、ＡＢＡ分子に対する変性を有する。この要領でＡＢＡ分子を変性すると、ホルモン類似体は、生物分解に対しより耐性の高いものとなる。８’−及び９’−炭素原子に不飽和鎖をもつ類似体は、飽和したものに比べより活性が強いことがわかった。作物改良に対する８’−及び９’−炭素不飽和置換ＡＢＡ類似体の潜在的利用について、以下で箇条書きで概略的に示す。 − 抗蒸散剤：移植中又は土壌の水分が少ないか又は利用できない場合の水分損失の削減。 − 干ばつ条件下または実生樹立中の根の成長及び／又は根−苗条比の増大の促進。 − 特に温度及びその他の非生物的ストレスに起因する、最適以下の成長条件下での耐久生存の増大と損傷の削減。 − 例えば以下のことによる発芽／休眠の調節・休眠を維持することにより収穫前の軟白を防止すること、・早すぎる発芽を阻害することにより春作物の秋実生を可能にすること、・作物が株立ちするまでの雑草成長の予防又はホルモン毒性のいずれかによる潜在的な除草力。 − ＡＢＡ依存型トランスジーンの発現の増加を含む、胚芽発達中の種子タンパク質及び脂質の産生を増大させることによる、種子産物の産生、 − 微小繁殖のための人工的種子の産生。体細胞胚芽の乾燥及び培地中の正常な発達を容易にする。 − ＡＢＡ活動及び代謝に関与するタンパク質を同定するための親和性標識付け試薬。新しい８’−不飽和ＡＢＡの合成方法及び生物活性の一例を以下に示す。すなわち、類似体８’−メチレンＡＢＡは、以下で一般的に示されるように、側鎖Ｒを含有する炭素を伴う対称シクロヘキサジエノンに対しグリニャール試薬（R₁MgBr）を銅を触媒として１，４−接合体添加することにより合成される。関与する反応のさらなる詳細は、上述の反応図（ｖ）に示されている。ここで記述される類似体の合成において使用される出発材料については、我々が以前に報告した（本書にその開示が参考として内含されている、B．Lei．S．R．Abrams．B．Ewan.及びL．V．Gusta．1994，Phytoch em．37：289-96、アブシジン酸のアキラル性シクロヘキサジエノン類似体：その合成と生物活性）。一般的実験条件：融点（mp）は補正されず、Ernst Leitz Weltzler高温段融点装置上で記録される。Bruker AMX-500分光計（500MHz）上で陽子核磁気共鳴(¹Ｈ NMR)を記録した。炭素−13（¹³ＣNMR）スペクトルをBvuker AMX-500分光計（125 MHz）上で記録した。 CHCl₃を基準とするすべてのNMR 実験においてCDCl₃を溶剤として使用した。化学シフト（δ）及びカップリング定数（Ｊ）は、あたかもそれらが一次的なものであるかのように報告される。デジタルPDP 11／73データシステムを伴うVG70-2 50SEQ-２重集束ハイブリッド分光計を用いて電子衝撃モードで高分解能質量スペクトル（HRMS）を記録した。Merck シリカゲル60(230〜400メッシュ)を用いて、フラッシュカラムクロマトグラフィを実施した。ナトリウム及びベンゾフェノンから蒸留により溶剤テトラヒドロフラン(THF)を乾燥させた。相反する指示のないかぎり、全ての反応は、乾燥アルゴンの雰囲気下で行なわれた。（±）メチル８’−アブシジン酸メチレン０℃で CuI（摩砕粉末、0.38ｇ，２mmol）に対し臭化ビニルマグネシウム（Al drich．THF中 1.0Ｍ，34ml，34mmol）を加えることにより、グリニャール／CuI 溶液を調製した。混合物を10分間０℃で撹拌し、いつでも使用できる状態にした。乾燥THF（300ml）の中にメチル−（２Ｚ，４Ｅ）−５−（２，６−ジメチル− １−ヒドロキシ−４−オキソシクロヘキサ−２，５−ジエニル）−３−メチルペント−２，４−ジエノエートPBI-252(3.60ｇ，13.7mmol）（Lei et al．1994；上記参照）を溶解させ、外部ドライアイス／アセトン浴を用いて−78℃まで冷却した。MeLi( Aldrich．THF中 1.4Ｍ，9.7ml，13.7mmol)を添加し、赤色溶液を形成させた。溶液を15分間撹拌し、次に調製済みのグリニャール／CuI 溶液をそれに移した。結果として得た暗色溶液を20分間−78℃で撹拌し、ドライアイス／アセトン浴を除去した後エーテル(200ml)で希釈し、次に、 200mlの10：１の飽和 NH₄Cl／20％ NH₄OH溶液を用いて急冷した。混合物を20分間撹拌し、分離した。有機層を塩水（100ml）で洗浄した。組合わされた水性層をエーテル（２×100ml）で抽出した。有機層を組合せ、無水MgSO₄上で乾燥させ、濃縮した。カラムクロマトグラフィ（25％の酢酸エチル／ヘキサン）により残渣を精製し、固体として2.74ｇ（69 ％）の生成物を得た。エーテル／ヘキサンからの再結晶により、白色結晶が得られた。mp 116-117℃；¹Ｈ NMR：δ7.846（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝１6.0Hz，Ｈ−４），6 .058（dd，１Ｈ，Ｊ＝10.8，17.6Hz，Ｈ−８’），6.056（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝16.0H z，Ｈ−５），5.961（ｓ，１Ｈ，Ｈ−３’），5.73４（ｓ，１Ｈ，Ｈ−２），5. 291（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝10.8Hz，Ｈ−10’，Ｈ−８に対するシス）、5.231（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝17.6Hz，Ｈ−10’，Ｈ−８に対するトランス）、3.679（ｓ，３Ｈ，OMe ），2.49３（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝17.2Hz，Ｈ−５’），2.411（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝17.2H z，Ｈ−５’），2.000（ｓ，３Ｈ，Ｃ−６，Me），1.892（ｄ，３Ｈ，Ｊ＝0.9 H z，Ｃ−７’，Me），1.124（ｓ，３Ｈ，Ｃ−９’，Me）ppm。¹³Ｃ NMR：δ197.0 ，166.3，163.0，149.2，140.7，134.9，129.1，127.3，118.5，118.0，78.2，5 1.2，47.7，47.５，21.1，20.6，19.2ppm。HRMS：C₁₇H₂₂O₄（Ｍ⁺）の理論値290. 1518，実際値290.1522。（±）メチル８’−アブシジン酸メチレンの分割前処理用キラル高圧液体クロマトグラフィ（HPLC）により分割を行なった。１：４の２−プロパノール／ヘキサン（１ml約20mg／ml ）中のラセミメチルエステル溶液をChiralcel ODカラム（Daicel,250mm ×10mm IDをこれに先行するWhatman CSK1 HC Pellosil保護カラム）の中に注入し、１：４の２プロパノール／ヘキサンで２ml／分で溶出させ、 262nmでUV検出した。４回の注入は、14分で溶出する（＋）メチル８’−アブシジン酸メチル（55mg）及び23分で溶出する（−）メチル８’−アブシジン酸メチレン（44mg）を提供した。各々の異性体は分析用HPLC（Daicel Chiralcel OD 250mm ×4.6mm ID）により決定されるように、99％以上の光学純度を有していた。（＋）メチル８’−アブシジン酸メチレン。〔α〕Ｄ²⁴＋386.6゜（CHCl₃中ｃ＝1.3％）；mp（エーテル／ヘキサン） 124-125℃；¹Ｈ NMR：δ7.802（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝16.1Hz，Ｈ−４），6.019（dd，１Ｈ，Ｊ＝11.0，17.5Hz，Ｈ−８’），6.018（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝16.1Hz，Ｈ−５），5.918 （ｄ，１Ｈ，Ｊ＝0.8Hz，Ｈ−３’），5.692（ｓ，１Ｈ，Ｈ−２），5.245（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝11.0Hz，Ｈ− 10’，Ｈ−８に対するシス）、5.185（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝17.５Hz，Ｈ−10’，Ｈ− ８に対するトランス）、3.635(ｓ，３Ｈ，OMe)，2.493（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝17.2Hz ，Ｈ−５’），2.411（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝17.2Hz，Ｈ−５’），1.958（ｓ，３Ｈ，Ｃ−６，Me），1.851（ｓ，３Ｈ，Ｃ−７’，Me），1.081（ｓ，３Ｈ，Ｃ−９’ ，Me）ppm。¹³Ｃ NMR：δ196.9，166.3，163.0，149.2，140.7，134.9，129.1， 127.3，118.5，118.0，78.2，51.2，47.7，47.5，21.1，20.6，19.2 ppm。（−）メチル８’−アブシジン酸メチレン、〔α〕Ｄ²⁴−386.5゜（CHCl₃中ｃ＝1.7％）；mp（エーテル／ヘキサン）124-125℃；¹Ｈ及び¹³Ｃ NMRスペクトルは（＋）鏡像異性体のものと同一。（＋）８’−メチレンアブシジン酸メタノール（７ml）中で（＋）メチル−８’−メチレンＡＢＡ（23mg）を溶解させ、７mlの２Ｎ Na0H溶液を滴下にて添加した。溶液を４時間、室温で撹拌し、濃縮して大部分のメタノールを除去した。残渣を２ＮのNaOH（５ml）中に溶解させ、エーテル（５ml）で洗浄した。水性層を10％のHCl 溶液で酸性化し、次に酢酸エチル（３×10ml）で抽出した。組合せられた酢酸エチル層を無水Na₂S0₄上で乾燥させ、蒸発させて固体として（＋）８’−メチレンＡＢＡ（21.3mg，97％）を得た。〔α〕Ｄ²⁴＋351.3゜（CHCl₃ 中ｃ＝2.3％），¹Ｈ NMR：δ7.756（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝16.1Hz，Ｈ−４），6.057（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝16.1Hz，Ｈ−５），6.0 27（dd，１Ｈ，Ｊ＝11.0，17.5Hz，Ｈ−８’），5.938（ｓ，１Ｈ，Ｈ−３’），5.70７（ｓ，１Ｈ，Ｈ−２），5.231（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝11.0Hz，Ｈ−10’，Ｈ −８に対するシス）、5.171（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝17.5Hz，Ｈ−10’，Ｈ−８に対するトランス）、2.508（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝17.3Hz，Ｈ−５’），2.424（ｄ，１Ｈ，Ｊ＝17.3Hz，Ｈ−５’），1.99５（ｓ，３Ｈ，Ｃ−６，Me），1.854（ｓ，３Ｈ，Ｃ−７’，Me），1.090（ｓ，３Ｈ，Ｃ−９’，Me）ppm。¹³Ｃ NMR：δ197.3， 170.9，163.2，151.5，140.8，135.7，129.2，127.3，118.2，117.8，78.5，47. 7，47.3，21.4，20.7，19.3ppm。 HRMS：C₁₆H₂₂O₄（Ｍ⁺）についての理論値 276 .1362，実際値 276.1354。（−）８’−メチレンアブシジン酸上述の通りの方法を用いた（−）メチルエステル（26mg）の加水分解は、固体として（−）８’−メチレンＡＢＡ（21.5mg，87％）を生成した。〔α〕Ｄ²⁴− 368.1゜（CHOl₃中ｃ＝2.3％）¹Ｈ及び¹³Ｃ NMRスペクトルは（＋）鏡像異性体のものと同一であった。新しい炭素含有基の添加は、レジオ選択的に進められ、ヒドロキシル基に対する新しいシス基を提供する。新しい類似体の構造及びアルキル化のレジオ化学は、グリニャール反応中トリジューテロメチルヨウ化マグネシウムを用いることによって作られた同位元素標識付けされた類似体を用いて証明された。従来の形質転換による側鎖の修飾後に得られた産物である、１つの原子に１対の原子が結合したジメチル対内の１つのジューテロメチル基を伴うＡＢＡを分割させ、我々の最近の論文(本書に参考として内含されているBalsevi ch et al Plant Physiol．1994 106；135-142)に記された手順に従って、（＋） −鏡像異性体を、培養されたコーン細胞による酸化に付した。ジューテロ化されたＡＢＡを細胞により、２つのジュウテリウム原子を含有するファゼイン酸へと転化させた。この結果は、新しいメチル基がヒドロキシル基と同じ側から添加されていることを確認するものである。この方法は、数多くの８’−置換されたＡＢＡ類似体の合成のために従うべきものであり、異なる化合物を得るべくグリニャール試薬のＲ₁基を変更することしか必要でない。全体的転化率は高い。例えば、８’−メチレンＡＢＡについて、我々の現行の合成方法を用いると、市販されている出発材料からの収量は 9.2 ％であり、段階の数は８である。側鎖内にアセチレン及びアルコール又はアルデヒドを有する類似体については、段階数は２つ又は３つだけ減り、全体的収量は増大することになる。ここでの特定的な例は、その光学的に純粋な形へと分割されるラセミ化合物のものであるが、当該方法は、キラル試薬を用いた光学的に活性な化合物の合成をも可能にする。８’−炭素置換器を伴うＡＢＡ類似体の生物活性８’−置換されたＡＢＡ類似体は、ＡＢＡについての広い検定範囲において活性である。新しい類似体は、天然ホルモンに類似の要領で、植物により認識されると思われる。これらの類似体の主要な特長は、分子に対する置換がＡＢＡ分子の重要な官能基を無傷の状態に残す、という点にある。このことにより、これらの類似体に見られる広範な活性の説明がつくかもしれない。これらの類似体について観察されるＡＢＡ効果の範囲の一例として、ＡＢＡについてのものと比較した８’−メチレンＡＢＡの（＋）−鏡像異性体についての検定結果を以下に記す：コーン細胞の成長阻害及びコーン細胞培地内のpH変化天然ＡＢＡは、成長阻害をひき起こす（Balsevich et al 1994,Plant Physiol ，106：135-142）。図１は、懸濁培養されたコーン細胞（Black Mexican Sweet 品種）を用いた成長阻害実験結果を示す。ｙ軸は、天然ＡＢＡ又は対応するｇ’ −メチレン誘導体のいずれかを添加してから４日目における初期重量の百分率として表わされた細胞成長（乾燥重量）を示している。濃度は、Ｘ軸上に示されている。各々の濃度における成長測定は、同一条件で３回行なわれ（Balsevich et al，1994，Plant Physiol，106：135-142 にある通り）、平均値及び標準偏差が示されている。成長の50％阻害に必要とされる濃度は、８’−メチレンＡＢＡ 0.33μＭ未満であり、天然ＡＢＡについては約10μＭであった。これは、これまであらゆるＡＢＡ類似体によって生じた成長阻害のうち最も強いものである。この検定では、40以上の化合物がテストされた。天然ＡＢＡは、培養されたコーン細胞の培地のpHにおけるシフトをひき起した（Balsevich et al 1994，Plant Physiol，106：135-142）。図２は、懸濁培養されたコーン細胞の培地のpHに対する、同じ濃度の天然ＡＢＡに比べた（＋）− ８’−メチレンＡＢＡの10μＭ溶液の効果を示している。８’−メチレン化合物は、ＡＢＡと同じ位大きいpHシフトをひき起こす。小麦実生内の蒸散ＡＢＡは、植物内の蒸散を調節することに関与する主要なシグナル分子である。（W．J．Davies T．A．Mansfield 1988。植物中のアブシジン酸及び干ばつ耐性 ISIAtlas of Science：Animal andPlant Science 0894-3761，p263-269)。図３は、小麦実生内の蒸散の減少に対する天然ＡＢＡ及び（＋）−８’−メチレンＡＢＡの効果を示している。125μＭの溶液を実生の根に塗布し、処置から３時間後に蒸散減少率を決定した。飽和した８’−側鎖を伴う類似体は、ビニル類似体ほど活性ではない。この活性差は図４に示されており、この図で、ＡＢＡのメチルエステル(214) 、８’−メチル(370)及び８−メチレンＡＢＡ(357)の（＋）−形により行なわれる蒸散率が比較されている。構造は以下の通りである。種子の発芽ＡＢＡは種子の発芽を阻害する（例えば、L．V．Gusta，B．Ewan．M．J．T Re aney及びS．R．Abrams 1992、コショウソウの発芽に対するアブシジン酸代謝産物の効果、Can J．Bot，70：1550-1555を参照のこと）。図５は、コショウソウの種子の発芽に対する（＋）−８’−メチレンＡＢＡ及び天然ＡＢＡの効果を示している。１μＭで、８’−メチレン類似体は、ＡＢＡよりもさらに強く、５μ Ｍでは、ＡＭＡ処置された種子が発芽し始めるのに対し、同じ濃度で類似体の浸染を受けた種子は発芽しない。実験条件は以下の通りである：すなわち、ペトリ皿の中で９cmの Whatman No．１ろ紙上に 100個の種子を置き、５mlの溶液で処理する。ＡＢＡ誘導性遺伝子発現図６は、２００μmol のＡＢＡ又は(＋)−８‘−メチレンＡＢＡを２４時間吸収させたトランスジェニックタバコ実生におけるβ−グルクロニダーゼ（ＧＵＳ）活性の誘導を示す。トランスジェニック実生は、ＧＵＳのコード配列と融合したArabidopsis thaliana（Wang et al.，1994，Plant Physiol．104:291-292）（この記載内容は、参照により本明細書中に含まれる）からのＡＢＡ−反応性ｃｏｒ６．６プロモーターを含有した。この構築物を含有するトランスジェニック植物のＡＢＡ−誘導性及びその他の特性は、これまでも記載されている（Wang e t al.，1995，Plant Mol．Biol.,28:605-617 ）（この記載内容は、参照により本明細書中に含まれる）。ｙ軸は、任意の単位のＧＵＳ特異的活性（Jefferson ，1987，Plant．Mol．Biol．Reporter 5:387-405 （この記載内容は、参照により本明細書中に含まれる）に記載されているのと同様に実施した抽出及び検定）を示す。結果は、３４の実生を含む試料に関する２回の検定の平均を示す。処理はいずれも、未処理対照に対して、ＧＵＳ活性を強度に誘導した。９‘−アリル置換基を有するＡＢＡ類似体（９’−エチレンＡＢＡ）の生物学的活性成長阻害９‘−エチレンＡＢＡ（Ｒ１＝アリール）の２つの異性体の成長阻害特性を、図７に示す。図１に記載されているのと同様に、検定を実行した。両異性体は、１０ｐmolで不活性で、１００μmol で比較可能な活性を示した。ＡＢＡよりは弱い阻害剤であるが、しかしそれらは強力な活性を保有した。蒸散図８に、（＋）形態のＡＢＡのメチルエステル及び９‘−エチレンＡＢＡにより引き起こされる蒸散の低減の結果を示す。両方の化合物に関して、同等の高活性が観察された。有用であるためには、ＡＢＡ類似体はホルモン作動薬として作用する能力を保持しなければならない。付加的炭素の立体障害は、ホルモン受容体タンパク質との結合を妨害しないに相違ない。有望なことに、ＡＢＡの受容体との結合及びヒドロキシラーゼとの結合は主にＡＢＡ分子の異なる構造的特徴に依っているという証拠がある。コムギ胚発芽を阻害する場合のＡＢＡの７‘、８’及び９‘メチル基の相対的重要性の比較は、７’メチル基の存在が絶対に不可欠であるがしかし他のものは重要性が低いことを示した（Walker-Simmons¹，et al.,1994）。これは、受容体結合に重要な分子の一部（７‘炭素）に影響を及ぼさずに基質結合部位（８’炭素）を変えるためのある程度の自由が存在し得ることを示唆する。８‘又は９’−炭素原子上にメトキシ又はアルキル基（Todoroki et al².,1994; Nakano et al³.,1995）を、あるいは８‘−炭素原子上にフッ素（Todoroki et a l⁴.,1995; Kim et al⁵.,1995）を保有するＡＢＡ類似体は強力なＡＢＡ作動薬であり、これはいくつかの場合のジェミナルジメチル基の修飾がＡＢＡ様物質としての分子の認識を妨げないことを示唆する。同様に、７’、８‘及び９’位置でのアルキル置換により、高ホルモン活性は一般に（＋）−ＡＢＡと同一の絶対立体化学を有する分子に関して保持されることが明らかにされた（Nakano et al³. ,1995）。これらの試験の途中で、Nakano et al³.,1995は、（＋）−８‘−メチルＡＢＡがＧＡ₃剌激性α−アミラーゼ活性の遮断に際して（＋）−ＡＢＡとほぼ同一の活性を有し、そしてレタス種子発芽阻害、ムラサキツユクサの気孔開口及びイネ実生葉の伸長において（＋）−ＡＢＡより高い活性を有することを示した。８’−メチルＡＢＡの高活性は、（同様の立体的嵩量の）メチレン類似体もＡＢＡ様物質として認識されるべきであることを示唆した。これは、８‘−メチル及び８’−メチレンＡＢＡの生物学的活性の比較が、それらは類似の分子であるけれども８‘メチレンＡＢＡだけが８’ヒドロキシラーゼを不可逆的に不活性化する能力を有するために、考慮さるべき対象であることを意味する。我々の化学的試験の重要な判定基準は、類似体が連続的に短時間で、効率よく合成されて、生理学的活性の広範な試験に、そしてさらに８‘−位置での修飾に十分な量の物質を提供し得ることである。コショウソウ及びコムギにおける発芽阻害、トウモロコシ懸濁細胞の成長阻害、並びにコムギ実生における蒸散の低減を含めたいくつかの生物学的検定において、（＋）−８’−メチレンＡＢＡがＡＢＡより有効であることを我々は後述する。（＋）−８‘−メチルＡＢＡ（７）の合成臭化エチルマグネシウムを臭化ビニルマグネシウムに置換することにより、（ ±）メチル８‘−メチレンアブシシン酸塩に関するのと同様の手法を用いて、（ ±）メチル８‘−メチルアブシジン酸塩を合成した。キラルＨＰＬＣにより（± ）メチル８‘−メチルアブシシン酸塩の２つの鏡像異性体を分離し、そのエステルを（±）メチル８‘−メチレンアブシジン酸の場合と同一方法で対応する酸に加水分解した。酸及びエステルの両方のスペクトル特性は、過去に報告された特性（Nakano et al³.,1995 ）と一致した。トウモロコシ懸濁細胞からの（＋）−８‘−メチレンＡＢＡ［（＋）−４］の代謝体ブラックメキシカンスイートBlack Mexican Sweet トウモロコシ細胞１８ｇを、過去に記載された（Balsevich et al⁶.，1994）と同様に、滅菌培地５００mlを含有する１Ｌフラスコ中で継代培養した。翌日、エタノール０．５mlに溶解した（＋）８‘−メチレンＡＢＡ１３．５mgを培地に入れて、最終濃度を１００μMとした。培養を回転振盪器で室温で９０時間インキュベートし、この時点でＨＰＬＣは高濃度の代謝体を示した。培養期間終了時に、細胞を濾過して除去した。単離のために処理加工するまで、濾液を凍結した。 Supelco Amberlite XAD-2樹脂を用いたクロマトグラフィー法（Balsevich et al.,6,1994）により、代謝体を培養濾液から抽出した。樹脂から単離した粗製物質を分取ＴＬＣ（シリカゲル６０ＧＦ₂₅₄、２０cmｘ２０cmｘ１mm、溶離液としてトルエン−ＥｔＯＡｃ−ＨＯＡｃ２５：１５：２）により一部精製し、２つの異性体酸を得た。酸を別々にジアゾメタンと反応させて、次にＨＰＬＣによりさらに精製して、そのメチルエステルとして各代謝体約０．５mgを得た。スペクトルデータは、代謝体が２つの異性体エポキシドであることを示した。代謝体１：メチル８‘−メチレンオキシドＡＢＡ５／６のメチルエステル。ＦＴＩＲ（純）υ_max cm^-1：３４４６（Ｏ−Ｈ），１７１７（Ｃ＝Ｏ，エステル）、１６５４（Ｃ＝Ｏ，エノン）、ＨＲＥＩＭＳ：ｍ／ｚ３０７．１５７３での［Ｍ＋１］⁺（Ｃ₁₇Ｈ₂₃Ｏ₅ は３０７．１５４５を要する）； ¹Ｈ−ＮＭＲ：δ７．８９（ｄ，Ｊ＝１６．１Ｈｚ，１Ｈ−４），６．０１（ｄ，Ｊ＝１６．１Ｈｚ，ＩＨ−５），５．９９（ｄ，Ｊ＝１．２ｚ，１Ｈ−５），５．７６（ｓ，１Ｈ−２），３．６９（ｓ，３Ｈ、ＣＯ₂ＣＨ₃），３．２３（ｄｄ，Ｊ＝４．０，３．１Ｈｚ，１Ｈ− ８’），２．７７（ｓ，１Ｈ，ＯＨ），２．７４（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，１Ｈ−１０‘），２．６９（ｔ，Ｊ＝３．０Ｈｚ，１Ｈ−１０’），２．３４（ｓ，２Ｈ−５‘），１．９９（ｓ，５Ｈ−６，７’），０．９１（ｓ，３Ｈ−９‘）。代謝体２：８‘−メチレンオキシドＡＢＡ５／６のメチルエステル。ＦＴＩＲ（純）υ_max Cm^-1：３４４７（Ｏ−Ｈ），１７１７（Ｃ＝Ｏ，エステル）、１６５４（Ｃ＝Ｏ，エノン）、ＨＲＥＩＭＳ：ｍ／ｚ３０７．１５６０での［Ｍ＋１］⁺（Ｃ₁₇Ｈ₂₃Ｏ₅は３０７．１５４５を要する）；¹Ｈ−ＮＭＲ：δ７．８７（ｄ，Ｊ＝１６．１Ｈｚ，１Ｈ−４），６．０１（ｄ，Ｊ＝１６．１Ｈｚ，１Ｈ− ５），５．９９（ｄ，Ｊ＝１．２ｚ，１Ｈ−５），５．７６（ｓ，１Ｈ−２），３．６９（ｓ，３Ｈ、ＣＯ₂ＣＨ₃），３．２３（ｄｄ，Ｊ＝４．０，３．１Ｈｚ，１Ｈ−８’），２．７７（ｓ，１Ｈ，ＯＨ），２．７４（ｔ，Ｊ＝４．１Ｈｚ，１Ｈ−１０‘），２．６９（ｔ，Ｊ＝３．０Ｈｚ，１Ｈ−１０’），２．３４（ｓ，２Ｈ−５‘），１．９９（ｄ，Ｊ＝１．０Ｈｚ，３Ｈ−６／７’），１．９４（ｄ，Ｊ＝１．１Ｈｚ，３Ｈ−６／７’），１．０２（ｓ，３Ｈ−９‘）。トウモロコシ細胞培地からの（＋）−８−メチレンＡＢＡ、（＋）−８‘−メチルＡＢＡ及び（＋）−ＡＢＡの消耗の比較（＋）−ＡＢＡ、（＋）−８‘−メチレンＡＢＡ及び（＋）−８’−メチルＡＢＡのエタノール性ストック溶液を、トウモロコシ細胞０．２ｇ及び培地１０mlを含有するフラスコに付加し、最終濃度１００μ Mのホルモン又は類似体を得た。培地のアリコート（１００μｌ）を時々取り出して、前記（Balsevich et al⁶.，1994）と同様にＨＰＬＣによりＡＢＡ又はＡＢＡ類似体含量に関して分析した。各化合物をフラスコ中に植え付け、指示された時点で試料を２回取り出した。トウモロコシ細胞は、継代培養後１又は２日目に用いた。（＋）−８‘−メチレンＡＢＡ［（＋）−４］の生物学的定量トウモロコシ細胞の成長阻害及びｐＨの作用前述（Balsevich et al⁶.，1994）と同様に、４日間の最新重量の変化により、細胞成長を測定した。（＋）−ＡＢＡ及び（＋）−８‘−メチレンＡＢＡの付加に伴う培地のｐＨ変化も、Balsevichet al⁶.，（1994）により記載されと同様に測定した。コムギ実生における蒸散６〜１０日齢コムギ実生（Triticum aestivum L．cv Katepwa）の蒸散率を、過去に記載された（Rose et al⁷.，1996）（この記載内容は、参照により本明細書中に含まれる）のと同様に測定した。コムギ実生の蒸散率が５０％だけ低減される濃度を確定するために一連の濃度で類似体（水中の１％エタノール溶液として調製）の抗蒸散活性を測定した。蒸散率（μmol Ｈ₂Ｏ／cm²）を算出し、植物の初期蒸散率（典型的には０．２８〜０．３５ μmol Ｈ₂Ｏ／cm²）のパーセンテージとして示し、対照（１％エタノール）の作用に対して修正した。コショウソウ（cress）種子の発芽 Gusta等（1992）が記載したのと同様に、コショウソウ種子（cress）発芽阻害試験を実行したが、但し、実験は２５℃の代わりに２３℃で行い、アセトンの代わりにエタノールを用いて類似体を溶解した。検定溶液中のエタノールの最終濃度は、＜０．０５％であった。検定は各ペトリ皿中に１００個の種子を用いて実行し、３回実施した。発芽測定は、主根の成長を基礎にした。根が種子とほぼ同じ長さになったときに、種子は発芽したと考えられた。コムギ胚発芽軟質白色コムギ（Triticum aestivum L．cv．Clark's Cream）の穀粒を用いた。生物学的定量のために、いくつかの付着内胚乳及び付着し果皮を有する胚をかみそりの刃で穀粒から切り離した。最小量のＤＭＳＯに溶解して、０．１M 溶液を調製し、次に１０μM Ｍｅｓ，ｐＨ５．８で０．００１、０．１、１、１０及び１００μMに希釈することにより、類似体を調製した。各類似体濃度に関して、６回の反復発芽検定を、３０℃で１０個の胚の各々で実施した。胚を、溶液６ mlを含有するペトリ皿（１００ｘ１５mm）中でインキュベートした。発芽した胚の数を４日間毎日計数し、加重発芽指数を算出した（Walker-Simmons et al⁸.， 1992）（この記載内容は、参照により本明細書中に含まれる）。トランスジェニックタバコにおける遺伝子発現トランスジーンＰｃｏｒ６．６−ＧＵＳを含有するホモ接合体タバコ実生からの子葉のホモジネートのＧＵＳ特異的活性を、H．Wang et al⁹.，（1995）による記載と同様に、測定した。示した結果は、３４の実生からの子葉を含有する２回の試料の平均である。ＡＢＡの両鏡像異性体が同等に有効であるコムギ胚成長阻害試験では、４つの両鏡像異性体を（＋）−ＡＢＡと比較した。メチレン類似体の生物学的活性を前に報告された８−メチルＡＢＡ（Todoroki et al².，1994）と比較し得るよう、８−メチル同族体７を調製した。ＢＭＳ懸濁細胞培養における８−メチレンＡＢＡの代謝及び持続性培地からの（＋）−ＡＢＡ及び（＋）−８‘−メチレンＡＢＡ［（＋）−４］の消失の速度を比較して、代謝の相対速度の簡単な概算をおこなった。図１０から分かるように、５０％の（＋）−ＡＢＡが２４時間までに培地から消失していたが、一方（＋）−８’−メチレンＡＢＡは１００時間までにほぼ５０％が消費されただけであった。８‘−メチルＡＢＡ（７）は、メチレン誘導体と同様の速度で消費された。これらの実験は、８’−メチレンＡＢＡが天然ホルモンより持続性がかなり高いことを示す。（＋）−８‘−メチレンＡＢＡの安定性及び代謝経路を査定するために、（＋）−８‘−メチレンＡＢＡ（＋）−４の代謝中間体を単離し、ＡＢＡ代謝が過去に記載されている（Balsevich et al⁶., 1994）トウモロコシ懸濁培養を用いて同定した。（＋）−８−メチレンＡＢＡを細胞に摂取させて、２つの代謝中間体を培地から単離し、そしてそれらのメチルエステルとして精製した。質量スペクトル分析は、代謝中間体が各々、８’−メチレンＡＢＡのメチルエステルより以上に１個の酸素を含有することを示した。２つの代謝中間体の¹ＨＮＭＲは非常によく似ていて、各々３つのビニル性陽子に関する信号を失っており、そして各々３つの陽子信号を獲得し、化学シフトはエポキシド組成と一致する。２つの異性体エポキシドは二重結合の両面から酸化により生成されたと思われる。位相性酸様分子に環化できないエポキシド酸化生成物も活性であると考えられる。その生物学的活性を試験するのに十分な量のこれらのエポキシドを合成するためにさらなる研究が進行中である。ＢＭＳ懸濁細胞培養における（＋）−８‘−メチレンＡＢＡの生物学的活性トウモロコシ懸濁培養化細胞は、ＡＢＡ及びＡＢＡ類似体の生物学的活性及び代謝を比較するのに有用であった（Balsevich et al⁶.，1994; Ros e et al⁷.，1996）十分特性化された実験系である。（＋）−ＡＢＡは、４日間に亘ってトウモロコシ懸濁培養化細胞の成長を阻害する（ Balsevich et al.，1 994 ）。本試験では、（＋）−８‘−メチレンＡＢＡは全試験濃度で（＋）−ＡＢＡより強力な成長阻害活性を示した（図１）。誘導体の効力増大は、低濃度でより顕著であった。０．３３μM では、（＋）−ＡＢＡは対照に対して１７％だけ成長を阻害したが、一方（＋）−８’−メチレンＡＢＡは６４％低減を生じた。８‘−メチルＡＢＡにより引き起こされる阻害は、（＋）−ＡＢＡにより生じる阻害に匹敵した（図１１）。（＋）−メチレンＡＢＡは、（＋）−ＡＢＡ又は（＋）−８’−メチルＡＢＡより有意に強力であった。活性増強は、単なる立体嵩量以上の余分の炭素原子によるものに違いない。８‘−メチレン及び８’−メチル類似体は同様の速度で培地から消耗されるため、８‘−メチレンＡＢＡはいくつかの付加的特性を、おそらくは受容体に対するより高い親和性を有するにちがいない。天然ＡＢＡはトウモロコシ培地のｐＨの一過性上昇を引き起こし、ＡＢＡ付加後約６時間で最大に達する（Balsevich et al⁶.，199４）。図２は、懸濁培養化トウモロコシ細胞の培地のｐＨに及ぼす、同一濃度の天然ＡＢＡと比較した場合の、（＋）−８‘−メチレンＡＢＡの１０μM 溶液の作用を示す。ｐＨ変化の意味は明らかでないけれども、それは、ＡＢＡ作用の早期顕示であると思われ、ＰＡにより、並びに非天然ＡＢＡ（−）−異性体によりわずかだけ（ Balsevich e t al⁶.，1994）生じたのでない。この検定の実益は、それが付加化合物の固有のホルモン活性の相対的に迅速な試験であることである。８’−メチレン化合物は、ＡＢＡにより引き起こされるのに匹敵するｐＨのシフトを生じ、これはそれが同様の方法で作用することを示唆する。発芽阻害における８‘−メチレンＡＢＡの生物学的活性休眠コムギ穀粒からの胚の発芽の阻害休眠穀物粒から単離した胚は発芽阻害剤としての外因性ＡＢＡに対して高反応性を示し、休眠はＡＢＡの適用により元に戻される。天然（＋）−ＡＢＡ及びその鏡像異性体（−）−ＡＢＡはともに、コムギの切除胚に供給された場合、発芽を阻害するのに同等に有効である（Walker-Simmons et al⁸.，1992）。図１２に示すように、（＋）−８‘−メチレンＡＢＡは天然ＡＢＡより少なくとも１０倍は効力が高く、１．０μM （＋）−８’−メチレンＡＢＡは１０μM （＋）−ＡＢＡと等価の阻害結果を示した。我々は胚における類似体の代謝を測定しなかったが、ＡＢＡを上回る活性増大は、一部は持続性が長いことに依っているようである。これらの結果は、水和休眠穀粒胚のＡＢＡレベルの維持がその成長休止に関与するという推論を支持し、このことは長期持続性ＡＢＡ類似体、例えば８‘ −メチレンＡＢＡが種子休眠の誘導及び保持におけるＡＢＡの役割を調べるための有用な道具であることを示す。（−）−８‘−メチレンＡＢＡ（（＋）−８’−メチレンＡＢＡの鏡像）及び（＋）−８‘−メチルＡＢＡを含めた８’−ＡＢＡ類似体に関して、発芽阻害活性を査定した（図１３）。（−）−８‘−メチレンＡＢＡは、効力が（＋）−ＡＢＡと同様である。（＋）−８’−メチルＡＢＡ及び（＋）−８‘−メチレンＡＢＡはともに、（＋）−ＡＢＡより活性が高い。全濃度及び時点に亘って最も有効な化合物は、（＋）−８’−メチレンＡＢＡであった。コショウソウ種子発芽図５は、コショウソウ種子の発芽に及ぼす２つの濃度の（＋）−８‘−メチレンＡＢＡ及び天然ＡＢＡの作用を示す。１μM で、８ ’−メチレン類似体はＡＢＡより効力が大きく、５M では、ＡＢＡを供給された種子は発芽を開始したが、一方類似体阻害種子は依然として休眠中であった。要するに、（＋）−８’−メチレンＡＢＡ４は、単子葉植物及び双子葉植物の種子のより有効な発芽阻害剤である。種に対する種子発芽阻害において、類似体４はＡＢＡより活性が高いと予測されるが、この場合、ＡＢＡの８‘−ヒドロキシＡＢＡへのヒドロキシル化が分解の主経路である。コムギ実生の蒸散における８‘−メチレンＡＢＡの生物学的活性ＡＢＡは植物の蒸散調節に関与する鍵となる信号分子である。本検定ではエステルが酸と同様の活性を有し（データは示していない）、したがって無傷コムギ実生の蒸散に及ぼす天然ＡＢＡ、（＋）−８‘−メチレンＡＢＡ及び８’−メチルＡＢＡのメチルエステルの作用を適用後３時間目に比較した。最も活性の高い類似体は８‘−メチレン化合物で、これはコムギ実生の蒸散率を５０％に低減するのに（ＴＲ₅₀）５〜１０μM の濃度を要するが、ＡＢＡエステルは２５〜５０ M の濃度で５０％阻害を引き起こした。飽和８’−側鎖類似体は本検定では相対的に弱く、５０％有効用量は１００μMであった。この最終結果は、飽和８‘− メチル類似体が気孔開口検定ではＡＢＡよりわずかだけ弱い、ということを示したNakano etal³.，（1995）による報告結果とは非常に異なる。反応の差は、無傷コムギ実生における８’−メチルＡＢＡの摂取低減によると考えられる。ＡＢＡ誘導性遺伝子発現における８‘−メチレンＡＢＡの生物学的活性図１４及び１５は、（＋）−ＡＢＡ、（＋）−８‘−メチレンＡＢＡ又は（＋）−８−メチルＡＢＡを２４時間吸収させたトランスジェニックタバコ実生におけるＡＢＡ−反応性遺伝子発現の誘導を示す。トランスジェニック実生は、β−グルクロニダーゼのタンパク質コード配列と融合したArabidopsis thaliana（Wang et al.，１994）からのＡＢＡ−反応性ｃｏｒ６．６プロモーターを含有した。１００μM では、（＋）−８’−メチレンＡＢＡはＡＢＡよりわずかに弱い誘導物質であるが、類似体はＡＢＡ−反応性遺伝子発現の誘導に際しては非常に有効であった。８‘−メチルＡＢＡは、ＡＢＡより約３倍弱かった（図１５）。以下の新規の化合物において、ＡＢＡの８‘−炭素原子はアセチレンにより、又は付加的メチル基を保有するアセチレンにより置換されていた。本化合物の一般的形態を以下に示す：８‘−メチレンＡＢＡの場合と同様に、ＰＢＩ２５２から分子を調製した。新規の類似体の実験手法及びスペクトルデータを以下に示す。以下の実験では、トウモロコシ細胞の成長阻害に際して、８’−アセチレンＡＢＡをＡＢＡと比較した。図９に示したように、新規の化合物はＡＢＡより有効であった。したがって、それは超ＡＢＡとして作用する。８‘−アセチレンＡＢＡ及び８’−メチルアセチレンＡＢＡメチル８‘−アセチレンＡＢＡ −７８℃でドライＴＨＦ（４０ml）中のＰＢＩ２５２（５００mg）に、臭化エチニルマグネシウム（５当量、１９．１ml、ＴＨＭ中の０．５M 溶液）を付加した。溶液を−２０℃に暖めて、１６時間放置した。反応混合物を水性ＮＨ₄Ｃｌで急冷し、酢酸エチル（３ｘ３０ml）中に抽出した。併合有機抽出物を飽和ＮａＣｌ溶液で洗浄し、Ｎａ₂ ＳＯ₄上で乾燥し、濃縮して、フラッシュクロマトグラフィーで精製し、生成物３６０mgを得た。ＨＲＥＩＭＳ：ｍ／ｚでの［Ｍ⁺］２８９．１４１６（Ｃ₁₇ Ｈ₂₁Ｏ₄は２８９．１４４０を要する）；ＩＲ υ_max cm^-1：３２８６（ｗ，Ｏ−Ｈ），１７１６．６，１６６９．７（Ｃ＝Ｏ），¹Ｈ−ＮＭＲ：δ７．８６（ｄ，１Ｈ−４，Ｊ＝１６．１Ｈｚ），６．０２（ｔ，１Ｈ−３‘，Ｊ＝１．１Ｈｚ），５．９０（ｄ，１Ｈ−４，Ｊ＝１６．１Ｈｚ），５．７４（ｓ，１Ｈ −２），３．６８（ｓ，ＣＯ₂ＣＨ₃），２．６４（ｓ，１Ｈ，ＯＨ），２．６３（ｄｄ，１Ｈ−５’，Ｊ＝１５．９，０．９Ｈｚ），２．５０（ｄ，１Ｈ−５‘ ，Ｊ＝１６．８Ｈｚ），２．２７（ｓ，１Ｈ−ＨＣＣ），１．９８（ｄ，３Ｈ− ６又は３’，Ｊ＝１．１Ｈｚ），１．９５（ｄ，３Ｈ−６又は３‘，Ｊ＝１．４Ｈｚ），１．３１（ｓ，３Ｈ−９‘）。 Chiracel OD カラム（ヘキサン中１０％ＩＰＡ３ml/分，１回当たり２０mg で注入）を用いて、エステルを２つの鏡像異性体に分離した。保持時間２５．５分でのピーク［α］Ｄ²⁰＝（＋）３３９．５［ＭｅＯＨ中０．４３％］。保持時間３６．３分でのピーク［α］Ｄ²⁰＝（−）３４２．８［ＭｅＯＨ中０．３５％］。（＋）−８‘−アセチレンＡＢＡＭｅＯＨ１mlに溶解した上記の（−）−エステル（１０ｍｇ）の溶液に、２ M ＫＯＨ２mlを付加した。混合物を室温で４時間攪拌し、その時点でそれをＨ₂ Ｏ５mlで希釈し、ＣＨ₂Ｃｌ₂（３ｘ２０ml）で洗浄した。有機層を捨て、水性層を１M ＨＣｌで酸性にして、次にＣＨ₂Ｃｌ₂（３ｘ２０ｍｌ）で抽出した。併合有機抽出物を飽和ＮａＣｌ溶液で洗浄し、Ｎａ₂ＳＯ₄上で乾燥して、濃縮後、（＋）−８‘−アセチレンＡＢＡ７．９mg（収率８０％）を得た。ＩＲυ_max cm^-1：３５００−２５００（ｂｒ，Ｏ−Ｈ），１６８４（Ｃ＝Ｏ），¹ Ｈ−ＮＭＲ：δ７．８１（ｄ，１Ｈ−４，Ｊ＝１６．２Ｈｚ），６．０３（ｓ，１Ｈ−３‘），５．９５（ｄ，１Ｈ−４，Ｊ＝１６．１Ｈｚ），５．７７（ｓ，１Ｈ−２），２．８０（ｂｒ，ｓ，１Ｈ−ＯＨ），２．６３（ｄ，１Ｈ−５’ ，Ｊ＝１７．０Ｈｚ），２．５０（ｄ，１Ｈ−５‘，Ｊ＝１６．９Ｈｚ），２．２７（ｓ，１Ｈ−ＨＣＣ），２．０２（ｄ，３Ｈ−６又は３’，Ｊ＝０．７Ｈｚ），１．９５（ｄ，３Ｈ−６又は３‘，Ｊ＝１．Ｈｚ），１．３１（ｓ，３Ｈ− ９‘）．［α］Ｄ²⁵＝（＋）−３１６．８［ＭｅＯＨ中０．５１％］。同様の方法で（−）−８‘−アセチレンＡＢＡを製造し、（＋）−鏡像異性体と同一のスペクトルデータが得られ、以下の変化を示した：［α］Ｄ²⁰＝（− ）−２９６．９［ＭｅＯＨ中０．７８％］。メチル−８‘−メチルアセチレンＡＢＡ −７８℃でドライＴＨＦ（４０ｍｌ）中のＰＢＩ２５２（５００mg）に、臭化１−プロピニルマグネシウム（５当量、１９．１ml、ＴＨＭ中の０．５M 溶液）を付加した。溶液を−２０℃に暖めて、２時間放置した。反応混合物を水性ＮＨ₄Ｃｌで急冷し、酢酸エチル（３ｘ３０ml）中に抽出した。併合有機抽出物を飽和ＮａＣｌ溶液で洗浄し、Ｎａ₂ＳＯ₄上で乾燥し、濃縮した。粗製固体を得てるから再結晶化し、残りの母液を濃縮し、フラッシュクロマトグラフィー（ヘキサン中２５％酢酸エチル）で精製し、生成物４１５mg（収率７２％）を得た。ＨＲＥＩＭＳ：ｍ／ｚでの［Ｍ⁺ ］３０３．１６０９（Ｃ₁₈Ｈ₂₃Ｏ₄は３０３．１５９６を要する）；¹Ｈ−ＮＭＲ：δ７．８１（ｄ，１Ｈ−４，Ｊ＝１６．１Ｈｚ），５．９８（ｓ，１Ｈ−３‘），５．９０（ｄ，１Ｈ−４，Ｊ＝１６．１Ｈｚ），５．７２（ｓ，１Ｈ−２），３．６６（ｓ，ＣＯ₂ＣＨ₃），２．７３（ｓ，１Ｈ−ＯＨ），２．５５（ｄｄ，１Ｈ−５’，Ｊ＝１６．６，０．７Ｈｚ），２．４６（ｄ，１Ｈ−５‘，Ｊ＝１６．７Ｈｚ），１．９７（ｄ，３Ｈ−６又は３’，Ｊ＝１．０Ｈｚ），１．９２（ｄ，３Ｈ−６又は３‘，Ｊ＝１．３Ｈｚ），１．７５（ｓ，３Ｈ−ＣＨ₃ＣＣ），１．２４（ｓ，３Ｈ−９’）。 Chiracel OD カラム（ヘキサン中２０％ＩＰＡ３ｍｌ/ 分）を用いて、エステルを２つの鏡像異性体に分離した。保持時間１２．７分でのピーク［α］Ｄ²⁵ ＝（＋）３５０．８［ＣＨＣｌ₂中３．５４％］。保持時間１８．４分でのピーク［α］Ｄ²⁵＝（−）３６８．８［ＣＨＣｌ₂中３．３５％］。（＋）−８‘−メチルアセチレンＡＢＡＭｅＯＨ７mlに溶解した上記の（＋）−エステル（３５mg）の氷冷溶液に、２M ＫＯＨ７mlを付加した。混合物を室温で４時間攪拌し、その時点でそれをＨ₂Ｏ５mlで希釈し、ＣＨ₂Ｃｌ₂（３ｘ２０ml）で洗浄した。有機層を捨て、水性層を１M ＨＣｌで酸性にして、次にＣＨ₂Ｃｌ₂（３ｘ２０ml）で抽出した。併合有機抽出物を飽和ＮａＣｌ溶液で洗浄し、Ｎａ₂ＳＯ₄上で乾燥して、濃縮後、（＋）−８‘−メチルアセチレンＡＢＡ３０mgを得た。¹ Ｈ−ＮＭＲ：δ７．７８（ｄ，１Ｈ−４，Ｊ＝１６．２Ｈｚ），６．００（ｓ，１Ｈ−３‘），５．９５（ｄ，１Ｈ−４，Ｊ＝１６．１Ｈｚ），５．７４（ｓ，１Ｈ−２），２．８０（ｂｒ，ｓ，１Ｈ−ＯＨ），２．５６（ｄ，１Ｈ−５’ ，Ｊ＝１６．７Ｈｚ），２．４６（ｄ，１Ｈ−５‘，Ｊ＝１６．７Ｈｚ），２．０１（ｓ，３Ｈ−６又は３’），１．９２（ｄ，３Ｈ−６又は３‘，Ｊ＝０．９Ｈｚ），１．７４（ｓ，３Ｈ，ＣＣＣＨ₃），１．２４（ｓ，３Ｈ −９‘）．¹³ＣＮＭＲ：δ１９６．２４，１７０．６２，１６３．２５，１５１．２１，１３３．１８，１３０．１７，１２７．５２，１１８．３６，８１．５６，８０．５９，７８．２９，４７．９９，４４．３６，２３．５３，２１．２６，１９．２５，３．５６［α］Ｄ²⁵＝（＋）−３６４［ＭｅＯＨ中３．０％］。同様の方法で（−）−８‘−メチルアセチレンＡＢＡを製造し、（＋）−鏡像異性体と同一のスペクトルデータが得られ、以下の変化を示した：［α］Ｄ²⁰ ＝（−）−３８３．８［ＭｅＯＨ中２．８４％］。メチル８‘−メチレンＡＢＡの使用 canola種子発芽減圧下でＭｅＯＨに溶解した類似体の１０^-3M 溶液を蒸発させることにより、 canola 種子にメチル８‘−メチレンＡＢＡ（ＰＢＩ−３６５）を適用した。発芽制御に及ぼす作用を図１６に示す。移植したトウヒ実生の生存率を改良するためのメチル８‘−メチレンＡＢＡ（ＰＢＩ−３６５）ＡＢＡ類似体＃３６５で処理した室内装飾用トウヒ実生は、連続乾燥条件下で優れた乾燥回避能力を有した。この乾燥回避増強は、乾燥条件下での針状葉伝導率の低減及び実生水分平衡の改良に依った。この類似体の乾燥回避能力は、より高い処理濃度で増進した（図１７）。ＡＢＡ類似体＃３６５は、最適土壌水分条件下で春及び夏植物室内装飾用トウヒ実生の成長に負の作用を長期間及ぼさなかった（図１８）。ＡＢＡ類似体は、中等度及び重度の乾燥条件下では実生成長に決定的な作用を及ぼさなかったが、実生がほぼ致死的乾燥条件に曝された時に、成長に正の影響を及ぼした。類似体は、最適条件下で室内装飾用トウヒのガス交換能力を１〜３週間低減させ、高濃度では長期間のガス交換低減を生じた（図１９〜２１）。ＡＢＡ類似体は、養樹潅概システムによる適用を模倣した根−噴霧式水薬として適用された。無傷根−土壌結成塊を有する実生を容器に入れ、ＡＢＡ類似体処理液を表面水薬として適用した。処理実生を、処理液流が結成塊に再吸収されるような大型容器に２日間入れておいた。これにより処理成分がすべて根の結成塊部分に取り込まれ、実生に確実に利用された。試験中、根−土壌結成塊は無傷に保ち、ＡＢＡ類似体処理が根系に密着して保持された。この試験計画に関しては、ＡＢＡ類似体＃３６５を１０^-4、１０^-3.5及び１０^-3 M の濃度で適用した。類似体をアセトン溶液（＠１％）中に溶解してＡＢＡ類似体処理液を調製した。さらに、アセトン＠１％のみの対照処理もおこなった。類似体処理は、実験測定の開始２日前に１回適用した。各実生は、約２０mlの類似体又は対照溶液を摂取した。各濃度でＡＢＡ類似体で処理した実生に関して、ガス交換パラメーター（正味光合成（Ｐ_n）、針状葉伝導率（ｇ_wv）、水使用効率−報告せず）を測定した（ｎ＝８）。ＡＢＡ類似体適用後、各処理からの実生（ｎ＝７５）をピートーバーミキュライト成長培地中に鉢植えにし、制御環境育成室（空気温度２４±３℃ 、相対湿度４０±１０％、５００μmol/m²/sで明期２０時間）に入れた。測定間の最初の２０日間に９回、ガス交換パラメーターを査定した。その後、測定期間の２０日目から５２日目まで、５回、定期的にガス交換を査定した。処理適用直後に、実生（ｎ＝７５）を８〜１５日間の急速乾燥に曝した。ＡＢＡ類似体適用中は、飽和するまで実生に注水した。２４〜４８時間後、ＡＢＡ類似体溶液が実生の根結成塊に吸収されると、根系にプラスチック袋を被せて、暗室に起き、新芽系を上記の制御環境条件に曝した。新芽蒸散により、実生は乾燥させられた。各処理からの実生（ｎ＝８）のガス交換パラメーター（Ｐ_n，及びｇ_wv）を、各昼光期間中に測定した。各ガス交換測定時に、Ψを確定するために、実生を加圧室を用いて測定した。ガス交換パラメータ−及び実生水分平衡の変化を期間中測定した。実生は、全処理で、処理集団が＜−４．０Mpa の平均Ψを有するか又はＰｎが負の値になるまで、乾燥に曝された。ＡＢＡ類似体が死に至る可能性のある土壌乾燥に対して実生にいかなる影響を及ぼしたかを調べるために、試験を実行した。ＡＢＡ類似体は、限定された土壌水分利用可能性下での実生において、水分使用を制限し、有害な生理学的条件を遅延させる、という仮説が得られた。ＡＢＡ類似体は、実生が潜在的致死性乾燥ストレスを回避して生存し、正常な形態的発達を示すことができるようにする。処理適用直後、実生（ｎ＝７５）を急速乾燥させた。乾燥中、Ψを確定するために、加圧室を用いて実生を測定した。対照処理が＜−４．０Mpa の平均Ψを示した時点で、全処理の実生（ｎ＝２５）に対して乾燥を終了した。

【手続補正書】【提出日】１９９８年７月２日（１９９８．７．２）【補正内容】請求の範囲１．次の構造式（Ｉ）：（式中、Ｒ₁の一方はアルケニル、アルキニル、アリール又はシクロアルケニルであり、そしてＲ₁の他方はメチルであり、ここでＣ４〜Ｃ５位の結合が二重結合である場合は該結合はトランスであり、そしてＣ２〜Ｃ３の結合はシス又はトランスであり、そしてＲ₂はCH₂OH，CHO，COOH又はCOO−アルキルであり、ここでシクロヘキサノン環の二重結合は還元されていてもよい）により表わされる化合物。２．次の構造式（Ｉａ）：（式中、Ｒ₁はアルケニル、アルキニル、アリール又はシクロアルケニルであり、ここでＣ４〜Ｃ５位の結合が二重結合である場合は該結合はトランスであり、そしてＣ２〜Ｃ３の結合はシス又はトランスであり、そしてＲ₂はCH₂OH，CHO ，COOH又は COO−アルキルであり、ここでシクロヘキサノン環の二重結合は還元されていてもよい）により表わされる化合物。３．式（Ｉａ）において、Ｒ₁がCH₂CH＝CH₂，CH＝CH₂，Ｃ≡CH及びCH₂C≡CHから成る群から選択される、請求項２に記載の化合物。４．次の構造式（Ｉｂ）：（式中、Ｒ₁はアルケニル、アルキニル、アリール又はシクロアルケニルであり、ここでＣ４〜Ｃ５位の結合が二重結合である場合は該結合はトランスであり、そしてＣ２〜Ｃ３の結合はシス又はトランスであり、そしてＲ₂はCH₂OH，CHO ，COOH又は COO−アルキルであり、ここでシクロヘキサノン環の二重結合は還元されていてもよい）により表わされる化合物。５．式（Ｉｂ）において、Ｒ₁がCH₂CH＝CH₂，CH＝CH₂，Ｃ≡CH及びCH₂C≡CHから成る群から選択される、請求項４に記載の化合物。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)，ＵＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者バルセビッチ，ジョンジェイ. カナダ国，サスカチュワンエス７エイチ３エー２，サスカトゥーン，レイククレセント 304 (72)発明者カルター，エイドリアンジェイ. カナダ国，サスカチュワンエス７エヌ３ジェイ８，サスカトゥーン，サイト 509，ボックス３，ルーラルロード＃５ (72)発明者レイ，ボーカナダ国，オンタリオエム３ジェイ２ゼット３，ノースヨーク，マーレイロスパークウェイ 500，アパートメント 717 (72)発明者ローズ，パトリシアエー. カナダ国，サスカチュワンエス７エヌ０エル５，サスカトゥーン，サスカチェワンクレセントイースト３―906

Claims

【特許請求の範囲】１．次の構造式（Ｉ）〔式中、Ｒ₁のうちの１方がアルケニル、アルキニル、アリール、シクロアルケニル、重水素含有残基を含むその他のさらに置換された炭素鎖、及びヘテロ原子及びハロゲンを伴う炭素含有置換基であり、もう１方がメチルであり、さらに５成員炭素側鎖がＣ３にメチル基を含み、示されている通りＣ５が環に付着しており、Ｃ４〜Ｃ５位置にトランス２重結合又はこの位置で３重結合そしてＣ２〜Ｃ３位置にシス又はトランスのいずれかの２重結合が含まれており、そしてＲ₂ はCH₂OH，CHO，COOH，COOアルキル又はその誘導体であり、シクロヘキサノン環２重結合は還元されてもよい〕により表わされる化合物、又はその誘導体。２．次の構造式（Ｉａ）：〔式中、Ｒ₁がアルケニル、アルキニル、アリール、シクロアルケニル、重水素含有残基を含むその他のさらに置換された炭素鎖、及びヘテロ原子及びハロゲンを伴う炭素含有置換基であり、さらに５成員炭素側鎖がＣ３にメチル基を含み、示されている通りＣ５が環に付着しており、Ｃ４〜Ｃ５位置にトランス２重結合又はこの位置で３重結合、Ｃ２〜Ｃ３位置にシス又はトランスのいずれかの２重結合が含まれており、そしてＲ₂はCH₂OH，CHO，COOH，COOアルキル又はその誘導体であり、シクロヘキサノン環２重結合を還元することもできる〕により表わされる化合物、又はその誘導体。３．構造式Ｉａで、Ｒ₁がCH₂CH=CH₂，CH=CH₂，CCH及びCH₂CCHから成る群の中から選択される、請求項２に記載の化合物。４．次の構造式（Ｉｂ）：〔式中、Ｒ₁がアルケニル、アルキニル、アリール、シクロアルケニル、重水素含有残基を含むその他のさらに置換された炭素鎖、及びヘテロ原子及びハロゲンを伴う炭素含有置換基であり；さらに５成員炭素側鎖がＣ３にメチル基を含み、示されている通り環にＣ５が付着させられ、Ｃ４〜Ｃ５位置にトランス２重結合又はこの位置で３重結合そしてＣ２〜Ｃ３位置にシス又はトランスのいずれかの２重結合を含むことができ、そしてＲ₂はCH₂OH，CHO，COOH，COO アルキル又はその誘導体であり、シクロヘキサノン環２重結合を還元することもできる〕で示される化合物、又はその誘導体。５．構造式Ｉｂで、Ｒ₁がCH₂CH＝CH₂，CH＝CH₂，Ｃ≡CH及びCH₂CCHから成るグループの中から選択される、請求項４に記載の化合物。６．次の構造式：を有する、請求項２に記載の化合物。７．次の構造式：を有する、請求項２に記載の化合物。８．次の構造式：を有する、請求項２に記載の化合物。９．次の構造式：を有する、請求項２に記載の化合物。 10．次の構造式：を有する、請求項３に記載の化合物。 11．次の構造式（Ｉａ）：〔式中、Ｒ₁は、アルケニル、アルキニル、アリール、シクロアルケニル、重水素含有残基を含むその他のさらに置換された炭素鎖、及びヘテロ原子及びハロゲンを伴う炭素含有置換基であり、さらに５成員炭素側鎖がＣ３にメチル基を含み、示されている通りＣ５が環に付着しており、Ｃ４〜Ｃ５位置にトランス２重結合又はこの位置で３重結合そしてＣ２〜Ｃ３位置にシス又はトランスのいずれかの２重結合が含まれており、そしてＲ₂はCH₂OH，CHO，COOH，COO アルキル又はその誘導体であり、シクロヘキサノン環２重結合を還元することもできる〕で示される化合物の製造方法であって、（ａ）不飽和基の接合体添加を行なうため、ＸがCl，Br又はＩである式R₁MgX のグリニャール試薬の存在下で、３−メチルペント−２−エン−４−イン−１− オール又はそのヒドロキシル保護誘導体のジアニオンと、２，６−ジメチルシクロヘキサ−２，５−ジエン−１，４−ジオン又はその誘導体を反応させる段階；そして必要な場合には、（ｂ）Ｃ４〜Ｃ５３重結合をトランス重結合へと還元し、Ｃ１ヒドロキシルを酸化してその機能的誘導体を形成する段階、及び（ｃ）非キラル出発物質が利用される場合、HPLCにより（＋）及び（−）異性体を分離する段階及び、（ｄ）選択的オゾン分解法により８’位置をさらに修飾し、その後形成された８’−メチレンＡＢＡのアレヒドに対しWittigタイプの反応を行なう段階、を含んで成る方法。 12．次の構造式（Ｉｂ）：〔式中、Ｒ₁がアルケニル、アルキニル、アリール、シクロアルケニル、重水素含有残基を含むその他のさらに置換された炭素鎖、及びヘテロ原子及びハロゲンを伴う炭素含有置換基であり、さらに５成員炭素側鎖がＣ３にメチル基を含み、示されている通りＣ５が環に付着しており、Ｃ４〜Ｃ５位置にトランス２重結合又はこの位置で３重結合そしてＣ２〜Ｃ３位置にシス又はトランスのいずれかの２重結合が含まれており、そしてＲ₂はCH₂OH，CHO，COOH，COOアルキル又はその誘導体であり、シクロヘキサノン環２重結合を還元することもできる〕で表わされる化合物、又はその誘導体の製造方法であって、（ａ）２，６−ジメチル−４，４−エチレンジオキシシクロヘキ−２−セノンとＲ₁−Ｉを反応させ；（ｂ）このように形成された生成物を、３−メチル−ペント−２−エン−４− イン−１−オールのジアニオンと反応させる段階、そして必要な場合には、（ｃ）Ｃ４〜Ｃ５の３重結合を２重結合へと還元し、Ｃ１アルコールを酸化してその官能的誘導体を形成する段階；及び（ｄ）８’−Ｒ₁エステルと９’−Ｒ₁エステルとをHPLCにより分離する段階；を含んで成る方法。 13．段階（ａ）で、出発物質としてジオンが用いられる、請求項11又は12に記載の方法。 14．段階（ａ）で、ジオンのＣ４−ケタールが出発物質として用いられる請求項11又は12に記載の方法。 15．段階（ａ）で、適当な触媒が含まれている、請求項11に記載の方法。 16．触媒がヨウ化銅である、請求項15に記載の方法。 17．Ｒ₁が、CH₂CH＝CH₂，CH＝CH₂，Ｃ≡CH及びCH₂CCHから成る群から選択される、請求項11〜16のいずれか１項に記載の方法。 18．天然ＡＢＡの影響を受けていることがわかっている植物内の生物学的プロセスに影響を及ぼす用途のための、請求項１〜10のいずれか１項に記載の化合物の利用。 19．植物の種子の発芽の制御のための請求項１〜10のいずれか１項に記載の化合物の利用。 20．植物内の抗蒸散活性を増強させるための、請求項１〜10のいずれか１項に記載の化合物の利用。 21．植物内のＡＢＡ誘発性遺伝子発現を増強するための、請求項１〜10のいずれか１項に記載の化合物の利用。 22．植物の実生の中の移植ショックを低減させるための、請求項１〜10のいずれか１項に記載の化合物の利用。 23．植物がトウヒ実生であり、化合物は有機溶剤中10^-3〜10^-4Ｍの濃度で根部スプレーとして塗布される、請求項22に記載の利用。