HRP20010113A2 - Process for purifying human papillomavirus virus-like particles - Google Patents

Process for purifying human papillomavirus virus-like particles Download PDF

Info

Publication number
HRP20010113A2
HRP20010113A2 HR20010113A HRP20010113A HRP20010113A2 HR P20010113 A2 HRP20010113 A2 HR P20010113A2 HR 20010113 A HR20010113 A HR 20010113A HR P20010113 A HRP20010113 A HR P20010113A HR P20010113 A2 HRP20010113 A2 HR P20010113A2
Authority
HR
Croatia
Prior art keywords
vlps
hpv
protein
vlp
hpv type
Prior art date
Application number
HR20010113A
Other languages
English (en)
Inventor
James C Cook
Original Assignee
Merck & Co Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Merck & Co Inc filed Critical Merck & Co Inc
Publication of HRP20010113A2 publication Critical patent/HRP20010113A2/hr

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • C12N7/02Recovery or purification
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5258Virus-like particles
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/20011Papillomaviridae
    • C12N2710/20023Virus like particles [VLP]
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/20011Papillomaviridae
    • C12N2710/20034Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/20011Papillomaviridae
    • C12N2710/20051Methods of production or purification of viral material

Description

Područje izuma
Predmetni izum odnosi se na postupak pripravljanja i pročišćavanja papiloma virus (HPV) virusu sličnih čestica (VLP), koje se mogu koristiti kao komponenta u vakcini.
Pozadina izuma
Zaraze papiloma virusom događaju se kod raznih životinja, uključujući ljude, ovce, pse, mačke, zečeve, majmune, zmije i krave. Papiloma virusi inficiraju epitelne stanice, općenito izazivajući benigne tumore epitela ili fibroepitela na mjestu infekcije. Papiloma virusi su infektivni agensi specifični za pojedine vrste; humani papiloma virus ne može inficirati druge životinje.
Papiloma virusi mogu se klasificirati u različite grupe, prema domaćinu kojeg inficiraju. Humani papiloma virusi (HPV) se nadalje dijele u više od 70 vrsta, na osnovu homologije DNA sekvence (za pregled vidjeti Papiloma virus i rak kod ljudi, H. Pfister (izd), CRC Press, Inc., 1990). Vrste papiloma virusa su čini se imunogeni specifično po vrsti, utoliko što neutralizirajući imunitet na infekciju na jednu vrstu papiloma virusa ne garantira imunitet protiv druge vrste papiloma virusa.
Papiloma virusi su mali (50-60 nm), bez ovojnice, ikozaedarski, DNA virusi koji enkodiraju do osam ranih i dva kasna gena. Otvoreni okviri čitanja (ORF) genoma virusa su označeni E1 do E7 i L1 i L2, gdje "E" (early) označava rani a "L" (late) kasni. L1 i L2 kodiraju virusne kapsidne proteine. Rani (E) geni su vezani za funkcije kao što su replikacija virusa i transformacija stanica.
L1 protein je glavni kapsidni protein i ima molekularnu težinu od 55-60kDa. L2 je manje važan kapsidni protein, koji ima predviđenu molekularnu težinu 55- 60 kDa, i naizgled molekularnu težinu od 75-100 kDa kako je određeno elektroforezom na poliakrilamidnom gelu. Imunološki podaci pokazuju daje veći dio L2 proteina interno u L1 proteinu. L2 proteini se dobro očuvaju u raznim papiloma virusima, naročito 10 osnovnih amino kiselina na C-terminusu. L1 ORF je dobro očuvan među raznim papiloma virusima.
Rekombinantni L1 protein je napravljen kod raznih domaćina, te pod pravim uvjetima se asemblira u virusu slične čestice (VLP), sam ili u kombinaciji s L2. VLPi su kandidati za komercijalne vakcine. Međutim, da bi bili korisni u ljudskoj vakcini, VLPi moraju biti visoko pročišćeni i oslobođeni kontaminacije iz stanice domaćina. U prošlosti, kontaminirajuće biomolekule su uklanjane protočnom ultrafiltracijom u diafiltrirajućem modu. Međutim, ova metoda rezultirala je proteolitičkom degradacijom HPV L1. Bilo bi poželjno imati takav postupak pročišćavanja LI proteina, koji daje ne-degradirani produkt visoke čistoće.
Sažetak izuma
Ovaj izum odnosi se na postupak pročišćavanja rekombinantnih papiloma virus (HPV) virusu sličnih čestica (VLP), koji se sastoji od sljedećih koraka: dovođenja u kontakt djelomično pročišćenog VLPa koji sadrži stanični lizat sa medijem hidroksiapatitom u koloni za kromatografiju, pod takvim uvjetima da se VLPi vezuju na hidroksiapatitni medij; i eluiranja vezanog VLPa s otopinom koju čine fosfatni anioni; te odvajanja eluiranih VLPa.
Postupak pročišćavanja može se koristiti s VLPima koji se sastoje uglavnom od L1 proteina, a može se korisititi i s VLPima koji sadrže L1 i L2 proteine.
Dodatno, može s koristiti kod himeričnih VLPa, tj. onih koji sadrže L1 protein i fuziju L2 proteina. Općenito, za korištenje u vakcini, VLPi koji sadrže samo L1 su pogodniji.
Postupak je primjenjiv na VLPe od praktično bilo koje vrste papiloma virusa. Poželjno je da se koristi ljudski papiloma virus (HPV). Poželjne vrste HPVa su one za koje je poznato da uzrokuju najteže bolesti i stanja, uključujući HPV tip 6a, HPV tip 6b, HPV tip 11, HPV tip 16, HPV tip 18, HPV tip 31, HPV tip 33 i HPV tip 45.
Općenito, stanica domaćina se transformira s vektorom koji enkodira L1 ili L1 i L2 proteine, ili L1 i L2:fuzijski protein.
Onako kako je korišten u specifikaciji i zahtjevima, izraz "L2:fuzijski protein" znači daje DNA enkodiranje L2 proteina operativno povezano s drugim DNA enkodiranjem željenog proteina, a poželjno, s drugim proteinom iz HPVa, kao stoje E1, E2, E3, E4, E5, E6 ili E7. L2 dio fuzijskog proteina može biti pune duljine, ili može imati brisanja i/ili skraćenja. Primjeri se mogu naći u US privremenoj patentnoj prijavi S.N. 60/096, 638, (odvjetinički broj prijave 20276PV, koji je ovim inkorporiran u svojoj cijelosti) koja je ovdje podnesena.
Stanica domaćina može biti bilo koja stanica domaćina koja se lako izdvaja u kulturama, stoje poznato u struci, uključujući kvasac (Saccharomyces cerevisiae), stanice insekata, bakterija ili sisavaca. Stanice kvasca su naročito poželjne.
Vektor može također sadržavati druge elemente poznate u struci, kao što su elementi kontrole transkripcije i translacije i/ili marker geni. Ekspresirani L1, L1 i L2, ili L1 i L2:fuzijski proteini se spontano asembliraju u VLP. Stanice domaćina su lizirane na uobičajen način, a zatim se stanični lizat djelomično pročišćava.
Korak djelomičnog pročišćavanja može uključivati poznate korake pročišćavanja, i nije kritičan u ovom izumu. Na primjer, stanični lizat može biti izložen postupku mikrofiltriran]a i najmanje jednom koraku kromatografije, kao kod kromatografije s izmjenom kationa.
Nađeno je u skladu s ovim izumom, da korak kromatografije, koristeći hidroksipatit kao medij u koloni, praćen eluiranjem s puferskom otopinom fosfatnih aniona, uklanja velike količine kontaminanata iz djelomično pročišćenih staničnih lizata.
Specifično, nađeno je da su uklonjeni iz lizata veći dio kontaminirajućih biomolekula, uključujući DNA, lipide i proteine.
U skladu s ovim izumom, konačni pročišćeni VLP preparat je općenito najmanje 75% čistoće, poželjno najmanje 80% čistoće, i najpoželjnije najmanje 90% čistoće, mjereno koristeći SDS/PAGE test.
Gotovo bilo koji komercijalno raspoloživ hidroksipatitski materijal za kolonu može se koristiti u ovom izumu. Poželjno je koristiti keramički hidroksipatit s veličinom čestica od približno 20-50 μm i veličinom pora od približno 800 A. Jedan takav komercijalno raspoloživ hidroksipatit prodaje BioRad kao "Keramički hidroksipatit, tip II". Međutim, drugi su jednako djelotvorni.
U pripravi koraka kromatografije u postupku pročišćavanja, preporuča se da je punjenje kolone s puferom pH 6-8, a poželjno oko 7. Poželjan pufer je 50 mM MOPS [3-(N-morfolin)propansulfonska kiselina] s pH 7.0 i također s 1.25MNaCl.
Drugi sistemi pufera koji se također mogu koristiti su poznati u struci i uključuju:
MES [2-(N-morfolino)etansulfonska kiselina];
BIS-TRIS [bis-(2-hidroksietil)amino]tris-(hidroksimetil)metan];
ADA [N-2-acetamidoimino octena kiselina, mononatrijeva sol];
ACES [N-2-acetamido-2-aminoetansulfonska kiselina, mononatrijeva sol];
PIPES [piperazin-N,N'-bis(2-etan-sulfonska kiselina)];
MOPSO [(3-N-morfolino)-2-hidroksipropan-sulfonska kiselina];
BIS-TRIS PROFAN [1,3-bis[tris(hidroksimetil)metil-amino]propan];
BES [N,N-bis-(2-hidroksimetil)-2-amino-etansulfonska kiselina];
TES [N-tris-(hidroksimetil)metil-2-aminoetan sulfonska kiselina]; i
2-2([2-hidroksi-1,1-bis(hidroksimetil)etil)amino]etan sulfonska kiselina];
HEPES [N-2-hidroksietilpiperazin-N'-2-etan sulfonska kiselina];
DIPSO [3-(N,N-bis-(2-hidroksimetil)-amino)-2-hidroksi propansulfonska kiselina];
TAPSO [3-N-tris(hidroksimetil)metilamino]-2-hidroksi-propansulfonska];
TRIS [tris-(hidroksimetil)-aminoetan];
HEPPSO [N-(2-hidroksietil)-piperazin-N'-[2-hidroksi-propansulfonska kiselina];
POPSO [(piperazin-N,N'-bis-[2-hidrokspropansulfonska kiselina];
EPPS [N-[2-hidroksietil)-piperazin-N'-[3-propansulfonska kiselina i HEPPS];
TEA [trietanolamin];
TRICIN [N[tris-(hidroksimetil)metil]glicin];
BICIN [N,N-bis-(2-hidroksietil)-glicin];
TAPS [3-{[tris-(hidroksimetil)metil]amino}propan sulfonska kiselina];
imidazol;
HEPPS [N-2-hidroksietilpiperazin-N'-3-propan-sulfonska kiselina];
glicin amid, hidroklorid;
glicilglicin;
citrat;
acetat;
i sukcinatni puferi.
Djelomično pročišćeni VLP u puferiranoj otopini je doveden u kontakt s hidroksiapatitnim medijem pod uvjetima koji omogućavaju VLPu vezivanje na hidroksiapatit. Ovi uvjeti uključuju širok raspon temperatura; sobna temperatura je poželjna. Brzina protoka može znatno varirati, a preferirani opseg je 90 cm/satu.
Nakon vezivanja VLPa za hidroksiapatit, sljedeći je korak izdvajanje pročišćenog VLPa iz hidrokisapatita puferom za eluiranje. Poželjna otopina pufera za eluiranje sadrži fosfatni anion, kao stoje otopina natrij ili kalij fosfata. Poželjni molarni opsezi su od oko 0.05 M do oko l M, a najpoželjnije oko 0.2 M. pH pufera za eluiranje treba biti od oko pH 6-8, a najpoželjnije pH 7.
Druge prednosti metoda iz ovog izuma uključuju:
(a) nema zahtjeva za posebnom opremom i tehnikama kromatografije;
(b) metoda je brza, ne zahtjeva izmjene pufera, i
(c) metoda daje odličan prinos HPV L1.
Sljedeći ne-ograničavajući Primjeri su prikazani da bolje ilustriraju ovaj izum.
PRIMJERI
PRIMJER 1
PRIPRAVA DJELOMIČNO PROČIŠĆENOG LIZATA
Stanice kvasca transformirane da ekspresiraju VLP su sakupljene i smrznute na -70°C. Otopina smrznutih stanica kvasca je ostavljena da se otopi oko 3 sata na sobnoj temperaturi a zatim približno 18 sati na 4°C. BENZOSANE® (Nycomed Pharma A/S, Kopenhagen, Danska) (2.8 x 105 jedinica/mL i 0.21 mg proteina/mL) je dodano u staničnu otopinu do završne koncentracije od 750 jedinica po gramu težine mokre stanice, a u jednom je ogledu reducirana na 335 jedinica po gramu težine mokre stanice. Stanice su miješane 15 minuta, zatim razorene s pomoću dva prolaska kroz sanitiziran APV Gaulin 30CD homogenizator pri tlaku komore od 14,500 do 16,000 psi, rezultirajući disrupcijom stanica od 95%. Preostali lizat je lagano miješan 18 sati na 4°C.
Pročišćavanje mikrofiltracijom. Stanični lizat je pročišćen unakrsnom protočnom mikrofiltracijom u modu dijafiltracije, kako je opisano. Lizat je prebačen u sterilnu posudu za procesiranje s usjekom radijusa i inča, i izlaznim vratima. Mikrofilter je s porama od 0.65 mikrona, filterska kazeta od šupljeg fibera od 5 kvadratnih stopa površine (A/G Technologies #CFP-6-D-8A, Needham, MA), smještenom u A/G Technologies FlexStand® Benchtop Pilot sustav šupljeg fibera. Ostatak je dijafiltriran s 3 volumena dijafiltracijskog pufera (dolje) da se dobije pročišćeni lizat. Dijafiltracijski pufer je 0.2 M (Na+) MOPS, pH 7.0 + 0.4 M NaCl.
Kromatografija pročišćenog lizata. Pročišćeni lizat je frakcioniran kromatografijom na koloni koristeći POROS® 50 HS jaku kation -izmjenjivačku smolu za kromatografiju (PerSeptive Biosystems, Framingham, MA) pakiranu u kromatografskoj koloni. Kolona je isprana s 0.5 N NaOH prije uporabe. Kolona je ujednačena s HPV difiltracijskim puferom [0.2M (Na+) MOPS, pH 7.0 + 0.4 M NaCl] na sobnoj temperaturi. Hladni (4°C) pročišćeni lizat je pumpan na kolonu brzinom od 125 mL/minuti i kolona je isprana s 8 kolonskih volumena HPV kolonskog pufera A na sobnoj temperaturi [0.05M (Na+) MOPS, pH 7.0 + 0.5 M NaCl] pri 125 mL/minuti s linearnim gradijentom od 100% HPV kolonski pufer A prema 100% kolonski pufer B [0.05M (Na+) MOPS, pH 7.0 + 1.5 M NaCl]. Ukupni linearni gradijent je bio 10 kolonskih volumena i sakupljen je u 10 jednakih volumenskih frakcija. Prateći gradijent, kolona je isprana s dva kolonska volumena na sobnoj temperaturi HPV kolonskog pufera B pri 125 mL/minuti, koji su sakupljeni u dvije dodatne frakcije. Frakcije su sakupljene u sterilnim 2-litarskim plastičnim bocama i ostavljene na 4°C. Frakcije sa posljednjim UV-absorbirajućim pikom (A280 nm i A230 nm) u gradijentu su sakupljeni, filtrirani koristeći MILLIPAK-200 potrošnu filtersku jedinicu (Millipore, Bedford, MA) i ostavljeni na 4°C.
PRIMJER 2
HIDROKSIPATITNA KROMATOGRAFIJA
Svi koraci su izvršeni na sobnoj temperaturi. Kolona za kromatografiju (13 mm ID x 36), pakirana s keramičkim hidroksipatitom, tip II (BioRad kat.#7320081, Hercules, ČA), je ranije ekvilibrirana u 50 mM MOPS, pH 7.0 + 1.25 M NaCl. Djelomično pročišćena otopina HPVa iz Primjera l je stavljena na kolonu pri linearnom protoku od 90 cm/sat. Nakon što je aplikacija uzorka dovršena, kolona je isprana s osam kolonskih volumena pred-ekvilibracijskog pufera dok optička gustoća kolonskog efluenta nije dostigla gotovo nulu. HPV vakcinski produkt je eluiran s linearnim gradijentom od 0% do 100% eluacijskog pufera (0.2M natrij fosfat, pH 7.0 + 1.25 M NaCl), također uz linearni protok od 90 cm/sat. Ukupni volumen gradijenta bio je četiri volumena kolone. Frakcije koje sadrže produkt vakcine su određene pomoću RIA i Bradford proteinskog testa. Koncentracija proteina u produktu bila je 100 mg/mL.
Testovi: Bradfordovi proteinski testovi su izvođeni koristeći Coomassie Plus testni reagens (Pierce, Rockford, IL) koristeći kravlji serumski albumin (BSA) kao standard. Lowry proteinski testovi su vršeni po postupku iz Lowry i dr. 195 U. Biol. Chem. 193:265-270, koristeći BSA kao kalibracijski standard. Antigen je testiran višeslojnim ELISA-testom koristeći monoklonalno antitijelo koje je prepoznalo konformacijski epitop VLPa. Mikrofilterske ploče su prekrivene poliklonskim jarećim anti-HPV VLP antitijelima. Standardni i testni uzorci su razrijeđeni s PBS-om, s 1% w/v BSA, 0.1% TWEEN-20, i 0.1% natrij azida, te su dodani u jažice gdje je uhvaćen antigen, antitijelima vezanim na pločice. Monoklonalno anti-HPV LI VLP antitijelo (Chemicon, Temecula, ČA) je dodano u jažice da veže antigen uhvaćen antitijelima vezanim na pločice. Monoklonalna anti-HPV LI VLP antitijela su detektirana pomoću konjugata peroksidaze iz hrena sa anti-mišjim IgG antitjelima. Zatim je dodan kromogeni supstrat za hren peroksidazu, 3,3',5,5'-tetrametilbenzedin (Pierce) i mjerena je apsorpcija na 450 nm koja je proporcionalna koncentraciji LI VLPa u uzorku.
Dinamički kapacitet kolone za vakcinski produkt bio je 2.9 mg po mL smole po Bradfordu, i 4.6 mg po mL smole po RIA. Izdvajanje kroz ovaj korak bilo je 90% po Bradford proteinskom testu ili 82% po RIA, kada je kolona napunjena sa 100% kapaciteta. Izdvajanje je palo na 63% po Bradfordu i 50% po RIA, kada je kolona napunjena sa 8% kapaciteta.
PRIMJER 3
Uklanjanje drugih biomolekula HPV L1 uzorak pripravljen kako je opisano u Primjerima 1 i 2 je testiran na nazočnost DNA, koristeći PCR test. Rezultati, prikazani u tabeli dolje, pokazuju daje ova metoda kromatografije visoko djelotvorana u uklanjaju kontaminirajućeg DNA iz krajnjeg produkta.
[image]
PRIMJER 4
Pročišćavanje himernog VLP
Pročišćavanje HPV tip 16 L1/L2mini/E2 himernog VLP
Konstrukcija modificiranog L2 gena
YP3 Vektor (minimalni L2)
Ovaj vektor zadržava kodne sekvence za amino-kraj 69 amino kiselina i karboksi kraj 84 amino kiselina (aa) HPV 16 L2 , koji je fuziran u okviru pomoću sintetskog poli-linkera koji unosi jedinstvene Not I, Sac I, i Xho I restrikcijske emzimske lokacije i rezultira insertiranjem jednog ostatka glutaminske kiseline i mutacijom serinskog ostatka u glutaminsku kiselinu.
PCR "primeri" ili početnice (Midland Certified Reagents) su dizajnirani da amplificiraju L2 sekvence od nativnog L2 gena sadržanog u vektoru pGallO HPV 16 LI + L2.
"Primeri" I (5' - CTT CCC CCC GGG C AC AAA ACA AAA TGC -3'; SEKV. ID. BR. 1) i C (5' - CTC GAG CTC GCG GCC GCC TGT ACC CGA CCC - 3'; SEKV. ID. BR. 2) amplificirani na 265 bp sekvencu koja kodira amino kraj 69 aa i 23 bp uzvodne netranslirane sekvence, koja uključuje Srna I restrikcijsku enzimsku lokaciju.
"Primeri" C modificira i ekstendira L2 amino kraj -kodirajuću regiju i dodaju Not l, Sac I i Xho I restrikcijske enzimske lokacije nizvodno od L2 kodiraj ućih sekvenci.
"Primeri" A (5' - GCG GCC GCG AGC TCG AGG GTT ATA TTC CTG CAA ATA CAA-3'; SEKV. ID. BR. 3), C i D (5' - CCC TCC AGA TCT CTA GGC AGC CAA AGA GAC ATC TG-3'; SEKV. ID. BR. 4) amplificiran na 285 bp sekvencu koja kodira karboksi kraj 84 aa L2 plus 6 bp koji je dodao Bgl II restrikcijsku enszmsku lokaciju. "Primer" A također je dodao 17 bp sekvencu s Not l, Sac I i Xho I lokacijama uzvodno od L2-kodirajuće sekvence.
Minimalna konstrukcija za L2 ekspresiju je asemblirana kroz komplementarne sekvence, dodane pomoću "primera" A i C. Izolirani DNA produkti I/C i A/D amplificirani gore navedenim reakcijama su oba korišteni u PCR reakciji koja je uključivala I i D oligose kao amplifikacijske "primere". Radi omogućavanja spajanja fragmenata kroz njihove 17 bp komplementarne sekvence, tri PCR ciklusa su izvedena na temperaturi vezivanja od 37°C, praćeno s 15 ciklusa na 57°C. Rezultirajući produkt amplifikacije bio je ligatiran tupim krajem u pcrScript (Stratagene, LaJolla) i transformiran u XL-1 plave MRF stanice (Stratagene, LaJolla). Pozitivni klonovi su identificirani PCR-om koristeći "primere" I i D, te potvrđeni restrikcijskom digest analizom. Konstrukcija je zatim verificirana automatskom analizom sekvence (Perkin Elmer, Inc., Foster City, ČA).
Plazmidska DNA iz odgovarajućeg izolata je zatim digestirana sa Sma I i Bgl II; fragment od približno 0.5 parova kilobaze (kb) je gel pročišćen i ligatiran s 15 kb Srna I i Bgl II pGALl 10 HPV16 LI vektorskim fragmentom. Kompetentne DH5 E. coli stanice (Gibco BRL, Rockville, MD) su transformirane u ligacijsku smjesu i transformanti odabrani na LB ampicilin pločama (Remel, Lenexa, KS). Klonovi su u početku pregledani PCR-om u kojem su korišteni uprimeri" D i I da amplificiraju dijelove L2; prikladni klonovi su zatim potvrđerni restrikcijskom digestivnom analizom. Klon kandidat YP3#1 je verificiran analizom sekvence, kako je gore navedeno.
YP3#1 je zatim korišten kao osnova za konstrukciju, u kojoj su insertirani geni koji kodiraju HPV16 E1, E2 ili E7 otvorene okvire čitanja.
Insercija HPV E protein-kodirajućih gena
Gen koji kodira HPV 16 E2 je dobiven PCR amplifikacijom HPV 16 pozitivnog kliničkog uzorka, koji je zatim direktno insertiran u u subklonski vektor pCRII (Stratagene, La Jolla, ČA) i sekvenca se verificira, kako je gore opisano. E2 gen je zatim modificiran na sljedeći način:
1) Okvirske Xho I, Nae I i Not I koje sadrže DNA sekvence su dodane na amino kraj E2. Dodatno, sekvence koje sadržavaju Not I, Nae I i Xho I su dodane na karboksil kraj E2 da olakšaju insertiranje unutar E2, na Not I i Xho I lokacijama.
2) DNA sekvence su izmjenjene PCR mutagenezom da kodiraju alanin ostatke, kodiraju na ostacima glutaminske kiseline 39 i izoleucina 73. Ovo je napravljeno radi inaktivacije E2 proteinske funkcije. Modificirani HPV16 E2 gen gore opisan, je digestiran s Not I i Xho I, te
ligatiran sa na sličan način digestiranim YP3#1 vektorom. Transformanti, koji su sadržavali pravilno insertirane E2 sekvence, su odabrani PCR-om, te sekvenca verificirana.
Ista strategija je korištena za gene koji kodiraju HPV16 E l i HPV16 E7. Za El, glicin 482 je izmjenjen u aspartinsku kiselinu; za E7, cistein 24 i glutaminska kiselina 26 su obje promjenjene u glicin, radi inaktivacije proteinske funkcije. Rezultirajući konstrukti su zatim korišteni u transformaciji kvasca za ekspresijsku analizu.
PRIMJER 5
Identifikacija i rast kvasca koji ekspresira himeričke VLP
Plazmidna DNA YP3#1 i derivati gore opisani su korišteni radi transformacije Saccharomyces cervisiae (MATa, Ieu2-04, prbl::HIS3, mnn9::URA3, cir°) metodom sferoplasta (Hinnen i dr., 1978, Proc. Natl. Accad. Sci. USA 75:1929-1933). Transformirani sfereoplasti su stavljeni na selektivni medij (leucin minus) (Remel, Lenexa, KS). Klonovi su izolirani kroz dvije runde selekcije kolonije. Male tekuće kulture klonova kandidata su uzgojene do velike stanične gustoće na mediju s galaktozom. Sirovi ekstrakti su pripravljeni jakim mješanjem staklenim kuglicama, praćeno centrifugiranjem. Pročišćeni ekstrakti su analizirani na ekspresiju L1 i L2 komponente, a VLPi raznim metodama uključujući SDS PAGE, ELISA, imunoblotting, EIA, koristeći monoklonalna antitijela ili monospecifične poliklonalne antiserume koji prepoznaju L1 ili L2 ili amino ili karboksi kraj L2 ili L1 VLPa, ili E1, ili E2, ili E7, ili neki drugi protein ili peptid vezan na modificirani L2. Klonovi koji su ekspresirali L2 komponentu i formirali VLP, su odabrani za daljnju karakterizaciju. Jednolitarske ili 16-litarske kulture odabranih klonova su uzgajane u galaktozi, koja je sadržavala medij za pripravu himeričkih VLPa.
Peleti stanica su zamrznuti na -70°C. Smrznute stanice (mokra težina = 148g) su odmrznute i ponovno otopljene u 740 mL "breaking" pufera (200 mM MOPS, pH 7, l mM CaCl2) da se dobije približno 20% (w/v) smjese. Nukleaza BENZONASE® (Nycomed Pharma) je dodana u 750 jedinica/g mokre stanične težine. Stanična smjesa razbijena je pri tlaku od približno 19,000 psi u 5 koraka u Ml 10-Y mikrofluidizeru (Microfluidics Corp., Newton, MA). Stanični smjesa je sakupljena i držana na ledu za vrijeme lomljenja. Hematokrit test je pokazao > 80% loma.
Odstajali stanični lizat je pročišćen mikrofiltriranjem kroz kazetu sa šupljom teksturom, veličine pore 0.65 mikrona (A/G Technologies) koristeći aparat za mikrofiltraciju s tangencijalnim protokom u dijafiltracijskom modu. Lizat je dijafiltriran s tri volumena 0.25 M natrij citrata, 0.2 M MOPS, pH 7.0. Antigen je prošao kroz membranu i sakupljen je u Permeatu.
Dijafiltrirana 0.65 mm permeatska frakcija (3.9 L) je stavljena na 325 mL kolonu (l 1.2 cm ID x 3.3 cm) POROS® 50 HS smolu (Perspective Biosystems, Cambridge, MA), ekvilibriranu u 200 mM MOPS, pH 7, 250 mM natrij citrata. Kolona je isprana sa 8 volumena 50 mM MOPS, 0.5 M NaCl, 5 mM natrij fosfata, pH 7 i eluirana sa 10 volumenskim linearnim gradijentom od 0.5 do 1.5 M NaCl u istom puferu. Protočne i isprane frakcije su sakupljene na gomili, dok je l volumen frakcija sakupljen za vrijeme eluiranja. Kolonske frakcije su analizirane Western blot metodom i SDS-PAGE detekcijom s koloidnim Comassie. Frakcije koje su sadržavale uglavnom p55 protein su sakupljene.
50HS pool uzorka je analiziran na ukupne proteine BCA testom (Pierce). Na osnovu ukupnih proteina (168 mg), kolona keramičkog hidroksipatita (HA) tip II (Bio-Rad) je pretočena da se dobije l mL smole/2 mg proteina. Kolona je bila 2.6 cm ID x 15.7 cm. Kolona je ekvilibrirana u 50 mM MPPS, pH 7, 1.25 M NaCl, 5mM natrij fosfat. 50HS pool uzorka (770 mL) je filtrirana kroz 0.22 mm i aplicirana na HA kolonu pri brzini protoka od 113 cm/sat. Protok je sakupljan na gomili. HA kolona je isprana sa 5 volumena ekvilibracijskog pufera i eluirana s 8 volumenskim linearnim gradijentom, od 5 do 200 mM natrij fosfata, pH 7 u 1.25 M NaCl. Frakcije sakupljene za vrijeme eluiranja su analizirane Western blot metodom i SDS-PAGE s koloidalnom Coomassie detekcijom. Frakcije koje su pokazivale usporedivu čistoću i obogaćenje L1 proteinom su sakupljane. Sakupljene frakcije su filtrirane aseptički kroz 0.22 mm membranu i ostavljene na 4°C.
Ostaci iz ovog procesa i produkt su analizirani na HPV16 L1 koristeći specifičan EIA i na protein BCA testom. Konačni prinos pročišćenog produkta bio je 27 mg proteina sa specifičnom aktivnošću od 1.00 mg L1/mg proteina. Elektronski mikroskop je potvrdio nazočnost netaknutih VLP čestica, srednjeg promjera 32 nm. Za SDS-PAGE analizu čistoće, alikvota finalnog produkta je ukocentrirana TCA precipitacijom i analizirana metodom Western blot i SDS-PAGE sa koloidalnom Coomassie detekcijom. Kvantifikacija L1 napravljena je koristeći 2.5 mg punjenja, a kontaminanti kvasca su kvantificirani s 20.0 mg punjenja. Pokazano je denziometrijom daje L1 protein > 94% homogen. Ko-pročišćavanje L1 i L2minje dokazano specifičnom imunoblot analizom frakcija postupka.

Claims (9)

1. Postupak za pročišćavanje papiloma virus-sličnih čestica (VLP), naznačen time, da se sastoji od: (a) stavljanja u kontakt djelomično pročišćenog staničnog lizata koji sadrži VLP sa hidroksipatitnim medijem u koloni za kromatografiju, pod uvjetima takvim da se VLP-i vezuju na hidroksipatitni medij. (b) eluiranja vezanog VLP s otopinom fosfatnih aniona; i (c) izdvajanja eluiranih VLP.
2. Postupak prema Zahtjevom 1, naznačen time, da se VLPi sastoje uglavnom od L1 proteina.
3. Postupak prema Zahtjevu 1, naznačen time, da su VLPi humani papilomavirus (HPV) VLPi.
4. Postupak prema Zahtjevu 3, naznačen time, da su VLPi odabrani od skupine koju čine: HPV tip 6a, HPV tip 6b, HPV tip 11, HPV tip 16, HPV tip 18, HPV tip 31, HPV tip 33 i HPV tip 45.
5. Postupak prema Zahtjevu 4, naznačen time, da su eluirani VLPi najmanje 75% čistoće.
6. Postupak prema Zahtjevu 4, naznačen time, da su eluirani VLPi najmanje 90% čistoće.
7. Postupak prema Zahtjevu 1, naznačen time, da se VLPi sastoje od L1 proteina i L2:fuzijskog proteina.
8. Postupak prema Zahtjevu 7, naznačen time, da L2:fuzijski protein ima L2 dio koji je manji od pune duljine.
9. Postupak priprave pročišćenog humanog papilomavirusa VLP produkta, naznačen time, daje pogodan za korištenje u ljudskoj vakcini, koji se sastoji od: a) djelomičnog pročišćavanja staničnog lizata, gdje je stanični lizat od stanica kvasca, koje su transformirane tako da ekspresiranju HPV L1 VLP; (d) stavljanja u kontakt djelomično pročišćenog staničnog lizata koji sadrži VLP sa hidroksipatitnim medijem u koloni za kromatografiju, pod uvjetima takvim da se VLP-i vezuju na hidroksipatitni medij; c) eluiranja vezanih VLP sa otopinom fosfatnih aniona; i d) izdvajanja eluiranih VLP.
HR20010113A 1998-08-14 2001-02-14 Process for purifying human papillomavirus virus-like particles HRP20010113A2 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US9656898P 1998-08-14 1998-08-14
PCT/US1999/017930 WO2000009671A1 (en) 1998-08-14 1999-08-10 Process for purifying human papillomavirus virus-like particles

Publications (1)

Publication Number Publication Date
HRP20010113A2 true HRP20010113A2 (en) 2002-02-28

Family

ID=22257989

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HR20010113A HRP20010113A2 (en) 1998-08-14 2001-02-14 Process for purifying human papillomavirus virus-like particles

Country Status (24)

Country Link
US (1) US6602697B1 (hr)
EP (1) EP1105466B1 (hr)
JP (1) JP4440471B2 (hr)
KR (1) KR20010072470A (hr)
CN (1) CN1354787A (hr)
AT (1) ATE324436T1 (hr)
AU (1) AU760633B2 (hr)
BR (1) BR9913026A (hr)
CA (1) CA2339034C (hr)
CY (1) CY1105084T1 (hr)
CZ (1) CZ2001570A3 (hr)
DE (1) DE69931053T2 (hr)
DK (1) DK1105466T3 (hr)
EA (1) EA200100236A1 (hr)
ES (1) ES2262333T3 (hr)
HR (1) HRP20010113A2 (hr)
HU (1) HUP0103091A3 (hr)
IL (1) IL141130A0 (hr)
NZ (1) NZ509610A (hr)
PL (1) PL347472A1 (hr)
PT (1) PT1105466E (hr)
SI (1) SI1105466T1 (hr)
SK (1) SK2232001A3 (hr)
WO (1) WO2000009671A1 (hr)

Families Citing this family (36)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TR200101055T2 (tr) * 1998-10-16 2001-09-21 Smithkline Beecham Biologicals S.A. Adjuvan sistemler ve aşılar
JP2000262280A (ja) * 1999-03-18 2000-09-26 Asahi Optical Co Ltd ウィルスまたはウィルス性抗原の精製方法およびワクチンの製造方法
US6436402B1 (en) * 1999-10-15 2002-08-20 Merck & Co., Inc. Process for making human papillomavirus virus-like particles with improved properties
GB0206360D0 (en) * 2002-03-18 2002-05-01 Glaxosmithkline Biolog Sa Viral antigens
MY139500A (en) * 2003-11-12 2009-10-30 Merck Sharp & Dohme Optimized expression of hpv 58 l1 in yeast
SG150501A1 (en) * 2004-02-05 2009-03-30 Millipore Corp Porous adsorptive or chromatographic media
EP1730175B1 (en) * 2004-03-24 2010-04-28 Merck Sharp & Dohme Corp. Optimized expression of hpv 52 l1 in yeast
WO2006028214A1 (ja) 2004-09-10 2006-03-16 Asahi Glass Company, Limited 経口投与ワクチン
EP1736538A1 (en) * 2005-06-21 2006-12-27 Cytos Biotechnology AG Process for the preparative purification of virus-like-particles (VLPs)
WO2008027861A1 (en) * 2006-08-30 2008-03-06 Ge Healthcare Bio-Sciences Corp. System and method for characterizing membranes and membrane filtration devices
LT2601970T (lt) * 2006-09-29 2017-04-25 Takeda Vaccines, Inc. Vakcinos prieš noro virusą kompozicijos
AU2008217189B2 (en) * 2007-02-22 2013-06-13 Baxalta GmbH Method of purification of hydrophobic proteins
CA2683977C (en) * 2007-03-14 2017-04-25 Ligocyte Pharmaceuticals, Inc. A method of norovirus virus-like particle purification comprising ion exchange chromatography
US9428555B2 (en) 2007-04-29 2016-08-30 Beijing Wantai Biological Pharmacy Enterprise Co., Ltd. Truncated L1 protein of Human Papillomavirus type 16
US9364529B2 (en) 2007-04-29 2016-06-14 Beijing Wantai Biological Pharmacy Enterprise Co., Ltd. Truncated L1 protein of human papillomavirus type 18
DK2154149T3 (da) * 2007-05-29 2019-10-14 Univ Xiamen En trunkeret l1-protein af human papillomavirus 6
US9433922B2 (en) * 2007-08-14 2016-09-06 Emd Millipore Corporation Media for membrane ion exchange chromatography based on polymeric primary amines, sorption device containing that media, and chromatography scheme and purification method using the same
US20100266636A1 (en) * 2007-09-18 2010-10-21 Ligocyte Pharmaceuticals, Inc. Method of conferring a protective immune response to norovirus
KR20100083150A (ko) * 2007-09-18 2010-07-21 리고사이트 파머슈티컬즈 인코퍼레이티드 노로바이러스에 대한 보호면역반응을 제공하는 방법
EP2011573B1 (en) * 2007-11-05 2010-07-21 Agilent Technologies, Inc. Freezing a microfluidic chip
US20090130738A1 (en) * 2007-11-19 2009-05-21 Mikhail Kozlov Media for membrane ion exchange chromatography
CN102177233B (zh) * 2008-08-08 2015-04-15 莱戈赛特医药股份有限公司 用于增强交叉反应性的包含复合衣壳氨基酸序列的病毒样颗粒
WO2011088225A1 (en) * 2010-01-15 2011-07-21 Bio-Rad Laboratories, Inc. Surface neutralization of apatite
SG184833A1 (en) 2010-04-14 2012-11-29 Emd Millipore Corp Methods of producing high titer, high purity virus stocks and methods of use thereof
US8895707B2 (en) 2010-08-18 2014-11-25 Bio-Rad Laboratories, Inc. Elution of proteins from hydroxyapatite resins without resin deterioration
EP2670704B1 (en) 2011-02-02 2018-12-12 Bio-Rad Laboratories, Inc. Apatite surface neutralization with alkali solutions
CR20190540A (es) 2011-07-11 2022-04-04 Takeda Vaccines Inc FORMULACIONES PARENTERALES DE VACUNAS CONTRA LOS NOVOVIRUS (Divisional 2014-0069)
RU2642287C2 (ru) * 2011-12-01 2018-01-24 Юниверсити Оф Кейп Таун Химерная частица hpv
US9815695B2 (en) 2012-05-30 2017-11-14 Bio-Rad Laboratories, Inc. In situ restoration of apatite-based chromatography resins
JOP20130186B1 (ar) 2012-06-22 2021-08-17 Takeda Vaccines Montana Inc تنقية الجزيئات الشبيهة بالفيروسات
KR101559622B1 (ko) * 2012-07-30 2015-10-13 중앙대학교 산학협력단 인유두종바이러스 바이러스 유사입자의 고효율 정제방법
JP6479305B2 (ja) * 2013-07-12 2019-03-06 株式会社Umnファーマ ウイルス様粒子の精製方法
WO2015200299A2 (en) 2014-06-23 2015-12-30 Bio-Rad Laboratories, Inc. Apatite in-situ restoration
CN105392569B (zh) 2014-06-23 2019-08-20 生物辐射实验室股份有限公司 磷灰石预处理
CN105907729B (zh) * 2015-05-05 2019-08-16 广东东阳光药业有限公司 一种制备人乳头瘤病毒l1蛋白类病毒样颗粒的方法
CN108524929B (zh) * 2017-03-06 2019-05-07 广州瑞贝斯药业有限公司 一种狂犬病疫苗的生产方法

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS6078999A (ja) * 1983-10-05 1985-05-04 Chemo Sero Therapeut Res Inst HBs抗原の精製方法
SE9000650L (sv) 1989-02-28 1990-08-29 Asahi Optical Co Ltd Separation av celler eller virus
CA2189882C (en) 1994-05-16 2005-09-20 Kathrin U. Jansen Papillomavirus vaccines
JPH10506014A (ja) * 1994-09-22 1998-06-16 メルク エンド カンパニー インコーポレーテッド ヒトパピローマウイルス6a型をコードするDNA
AR004464A1 (es) * 1994-11-14 1998-12-16 Merck Sharp & Dohme Un metodo para producir una proteina de capside de papilomavirus
IL117459A (en) * 1995-03-22 2005-11-20 Merck & Co Inc Dna encoding human papillomavirus type 18
IL117591A0 (en) * 1995-03-30 1996-07-23 Merck & Co Inc Synthetic DNA encoding human papillomavirus type 11 L1 protein
WO1997008298A1 (en) * 1995-08-30 1997-03-06 Genzyme Corporation Chromatographic purification of adenovirus and aav

Also Published As

Publication number Publication date
AU5469899A (en) 2000-03-06
CZ2001570A3 (cs) 2001-09-12
DK1105466T3 (da) 2006-08-14
AU760633B2 (en) 2003-05-22
SK2232001A3 (en) 2001-08-06
CA2339034C (en) 2010-10-12
DE69931053D1 (de) 2006-06-01
JP2003520188A (ja) 2003-07-02
PT1105466E (pt) 2006-07-31
IL141130A0 (en) 2002-02-10
CN1354787A (zh) 2002-06-19
JP4440471B2 (ja) 2010-03-24
ES2262333T3 (es) 2006-11-16
EP1105466B1 (en) 2006-04-26
HUP0103091A3 (en) 2002-03-28
KR20010072470A (ko) 2001-07-31
BR9913026A (pt) 2001-09-25
CA2339034A1 (en) 2000-02-24
NZ509610A (en) 2002-10-25
DE69931053T2 (de) 2006-11-23
SI1105466T1 (sl) 2006-08-31
PL347472A1 (en) 2002-04-08
CY1105084T1 (el) 2009-11-04
EP1105466A4 (en) 2002-05-15
WO2000009671A1 (en) 2000-02-24
HUP0103091A2 (hu) 2001-12-28
US6602697B1 (en) 2003-08-05
EA200100236A1 (ru) 2001-08-27
ATE324436T1 (de) 2006-05-15
EP1105466A1 (en) 2001-06-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HRP20010113A2 (en) Process for purifying human papillomavirus virus-like particles
Cook et al. Purification of virus-like particles of recombinant human papillomavirus type 11 major capsid protein L1 from Saccharomyces cerevisiae
KR101576219B1 (ko) 바이러스 유사 입자 정제
Kim et al. One-step chromatographic purification of human papillomavirus type 16 L1 protein from Saccharomyces cerevisiae
Li et al. Characterization of self-assembled virus-like particles of human polyomavirus BK generated by recombinant baculoviruses
JPS61158795A (ja) アデノウイルスプロモ−タ−の制御下で所定のポリペプチドをコ−ドしているヌクレオチド配列を含む組換えdna
Sviben et al. Recovery of infective virus particles in ion-exchange and hydrophobic interaction monolith chromatography is influenced by particle charge and total-to-infective particle ratio
Lin et al. Development of EV71 virus-like particle purification processes
GB2604692A (en) Method for preparing recombinant subunit vaccine against novel coronavirus
JPS63500662A (ja) 乳頭腫ウイルスの特徴を示すポリペプチドを含む組成物
SUN et al. Sequences required for the nuclear targeting and accumulation of human papillomavirus type 6B L2 protein
Wetzel et al. Bioprocess optimization for purification of chimeric VLP displaying BVDV E2 antigens produced in yeast Hansenula polymorpha
US20080044378A1 (en) Methods and Compositions for Protein Production Using Adenoviral Vectors
US6991795B1 (en) Protein delivery system using human papillomavirus virus-like particles
CA2339324C (en) Protein delivery system using human papillomavirus virus-like particles
Gerstweiler et al. Virus‐like particle preparation is improved by control over capsomere‐DNA interactions during chromatographic purification
Christensen et al. Identification and characterization of a DNA binding domain on the adenovirus IVa2 protein
Swartz et al. Binding of Coxsackievirus A21 procapsids to immobilized glutathione depends on cell culture conditions during infection
US5077213A (en) Recombinant vaccinia virus
KR20230118619A (ko) 아데노바이러스의 정제 방법
JPH02475A (ja) Vero細胞、酵母細胞又はl細胞からの組換えエプスタイン−バールウイルス抗原の精製
JP4268384B2 (ja) 日本脳炎ウイルス抗原及びその製造方法
MXPA01001647A (en) Process for purifying human papillomavirus virus-like particles
WO2015128788A1 (en) Purification of papillomavirus l2 protein
Wong Purification of the Bovine Papillomavirus Type 1 L1 Capside Protein from Escherichia Coli

Legal Events

Date Code Title Description
A1OB Publication of a patent application
OBST Application withdrawn