ES2368941T3 - Angiopep-1, compuestos relacionados y utilizaciones correspondientes. - Google Patents
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Abstract
Un portador, caracterizado por que la penetración al cerebro o transcitosis a través de la barrera hematoencefálica de dicho portador es mayor que la de aprotinina y transferrina, a) que comprende el péptido Angiopep-1 (TFFYGGCRGKRNNFKTEEY) o b) conformado por un fragmento de dicho péptido.
Description
Angiopep-1, compuestos
relacionados y utilizaciones correspondientes.
La presente invención se refiere a mejoras en el
campo de la distribución de fármacos. De manera más particular, la
invención se refiere a un método no invasivo y flexible y a un
portador para transportar un compuesto o fármaco a través de la
barrera hematoencefálica de un individuo.
En el desarrollo de una nueva terapia para
patologías cerebrales, la barrera hematoencefálica (BBB, por sus
siglas en inglés) se considera el principal obstáculo para el uso
potencial de fármacos para tratar trastornos del sistema nervioso
central (CNS, por sus siglas en inglés). El mercado global para
fármacos del CNS fue de \textdollar33 billones de dólares en 1998,
que fue aproximadamente la mitad del mercado global para fármacos
cardiovasculares, aunque en los Estados Unidos de América, casi el
doble de personas sufren trastornos del CNS como de enfermedades
cardiovasculares. La razón de este desequilibrio es que más del 98%
de todos los fármacos potenciales del CNS no cruzan la barrera
hematoencefálica. Además, más del 99% del desarrollo mundial de
fármacos del CNS se dedica únicamente al descubrimiento de fármacos
del CNS, y menos del 1% se dirige a la distribución de fármacos del
CNS. Esta relación puede justificar por qué actualmente no hay
tratamiento eficiente para las principales enfermedades neurológicas
tales como tumores cerebrales, Alzheimer y accidente
cerebrovascular.
El cerebro se protege contra sustancias
potencialmente tóxicas por la presencia de dos sistemas de barrera:
la barrera hematoencefálica (BBB) y la barrera
sanguínea-fluido cerebroespinal (BCSFB). La BBB se
considera que es la ruta principal para la captación de ligandos
séricos puesto que su área superficial es aproximadamente 5000 veces
mayor que la de la BCSFB. El endotelio cerebral, que constituye la
BBB, representa el principal obstáculo para el uso de fármacos
potenciales contra muchos trastornos del CNS. Como regla general,
sólo pueden pasar a través de la BBB, es decir, de la sangre al
cerebro, moléculas lipófilas menores de aproximadamente 500 Daltons.
Sin embargo, el tamaño de muchos fármacos que muestran resultados
prometedores en estudios de animales para tratar trastornos del CNS
es considerablemente mayor. De esta manera, los productos
terapéuticos de péptidos y proteínas en general se excluyen del
transporte de la sangre al cerebro debido a la permeabilidad
insignificante de la pared endotelial del capilar cerebral a estos
fármacos. Las células endoteliales capilares cerebrales (BCEC) están
cercanamente selladas por uniones herméticas, poseen pocas fenestras
y pocas vesículas endocíticas en comparación con los capilares de
otros órganos. Las BCEC están circundadas por matriz extracelular,
astrocitos, pericitos y células microgliales. La asociación cercana
de las células endoteliales con los procesos de bases de astrocitos
y la membrana base de capilares son importantes para el desarrollo y
mantenimiento de las propiedades de la BBB que permiten el control
hermético del intercambio sangre-cerebro.
A la fecha, no hay ningún planteamiento
eficiente de distribución de fármacos disponible para el cerebro.
Los métodos bajo investigación para la distribución de fármacos de
péptidos y proteínas al cerebro se pueden dividir en tres
estrategias principales. Primeramente, los procedimientos invasivos
incluyen la administración intraventricular directa de fármacos por
medio de cirugía, y la interrupción temporal de la BBB por medio de
la infusión intracarótida de soluciones hiperosmolares. Segundo, la
estrategia basada en la farmacología consiste en facilitar el paso a
través de la BBB al incrementar la solubilidad lipídica de péptidos
o proteínas. Tercero, las estrategias basadas en la fisiología sacan
provecho de los varios mecanismos portadores en la BBB, que se han
caracterizado en estos últimos años. En este planteamiento, se unen
fármacos a un vector de proteína que actúa como un vehículo de
distribución dirigido a receptores en la BBB. Este planteamiento es
altamente específico y presenta una alta eficiencia con una extrema
flexibilidad para indicaciones clínicas
\hbox{con objetivos ilimitados. En la presente invención se ha investigado este último planteamiento.}
Sería altamente deseable proporcionar una mejora
en el campo de la distribución de fármacos.
También sería altamente deseable proporcionar un
método no invasivo y flexible y un portador para transportar un
compuesto o fármaco a través de la BBB de un individuo.
Una finalidad de la presente invención es
proporcionar una mejora en el campo de la distribución de
fármacos.
Otra finalidad de la presente invención es
proporcionar un método no invasivo y flexible y un portador para
transportar un compuesto o fármaco a través de la barrera
hematoencefálica de un individuo.
De acuerdo a una modalidad de la invención, se
proporciona un portador como se reivindica en la reivindica-
ción 1.
ción 1.
El portador de la invención sirve para
transportar un agente unido a este a través de una barrera
hematoencefálica, donde el portador es capaz de cruzar la barrera
hematoencefálica después de la unión al agente y transportar de este
modo el agente a través de la barrera hematoencefálica.
En una modalidad preferida de la presente
invención, el transporte no afecta a la integridad de la barrera
hematoencefálica.
De acuerdo con la presente invención, el
portador comprende Angio-pep1 o consta de un
fragmento de este.
En una modalidad preferida de la presente
invención, el agente se selecciona del grupo conformado por un
fármaco, una medicina, una proteína, un péptido, una enzima, un
antibiótico, un agente anti-cáncer, una molécula
activa al nivel del sistema nervioso central, un agente de
radioformación de imágenes, un anticuerpo, una toxina celular, una
marca detectable y un compuesto
anti-angiogénico.
En una modalidad preferida de la presente
invención, el agente anti-cáncer es Paclitaxel.
En una modalidad preferida de la presente
invención, la marca detectable se selecciona del grupo conformado
por una marca radioactiva, una proteína fluorescente verde, una
proteína histag y \beta-galactosidasa.
En una modalidad preferida de la presente
invención, el agente tiene un peso molecular máximo de 160,000
Daltons.
En una modalidad preferida de la presente
invención, el transporte se efectúa por la transcitosis mediada por
receptores o transcitosis mediada por absorbentes.
En una modalidad preferida de la presente
invención, el agente sirve para el tratamiento de una enfermedad
neurológica.
En una modalidad preferida de la presente
invención, la enfermedad neurológica se selecciona del grupo
conformado por un tumor cerebral, una metástasis cerebral,
esquizofrenia, epilepsia, enfermedad de Alzheimer, enfermedad de
Parkinson, enfermedad de Huntington, accidente cerebrovascular y
disfunciones relacionadas con la barrera hematoencefálica.
En una modalidad preferida de la presente
invención, la disfunción relacionada con barrera hematoencefálica es
la obesidad.
En una modalidad preferida de la presente
invención, el transporte da como resultado la distribución del
agente al sistema nervioso central (CNS) de un individuo.
En una modalidad preferida de la presente
invención, el agente se puede liberar del portador después del
transporte a través de la barrera hematoencefálica.
En una modalidad preferida de la presente
invención, el agente se libera del portador después del transporte a
través de la barrera hematoencefálica.
De acuerdo con otra modalidad de la presente
invención, se proporciona un conjugado para su uso en el transporte
de un agente a través de una barrera hematoencefálica; dicho
conjugado comprende: (a) un portador de la invención; y (b) un
agente unido al portador, donde el conjugado es capaz de cruzar la
barrera hematoencefálica y transportar de este modo el agente a
través de la barrera hematoencefálica.
De acuerdo con otra modalidad de la presente
invención, se proporciona una composición farmacéutica para su uso
en el transporte de un agente a través de una barrera
hematoencefálica; dicha composición comprende un conjugado de
acuerdo con una modalidad de la presente invención en asociación con
un excipiente farmacéuticamente
aceptable.
aceptable.
De acuerdo con una modalidad de la presente
invención, se proporciona una composición farmacéutica para su uso
en el tratamiento de una enfermedad neurológica; dicha composición
comprende un conjugado de acuerdo con una modalidad de la presente
invención en asociación con un excipiente farmacéuticamente
aceptable.
De acuerdo con otra modalidad de la presente
invención, se proporciona una composición farmacéutica para su uso
en la distribución de un agente al CNS de un individuo; dicha
composición comprende un conjugado de acuerdo con una modalidad de
la presente invención en asociación con un excipiente
farmacéuticamente aceptable.
De acuerdo con otra modalidad de la presente
invención, se proporciona un uso de un portador de la invención para
su uso en el transporte de un agente unido a este a través de una
barrera hematoencefálica en la elaboración de un medicamento para
transportar el agente a través de la barrera hematoencefálica.
De acuerdo con otra modalidad de la presente
invención, se proporciona una composición farmacéutica para su uso
en el transporte de un agente a través de una barrera
hematoencefálica; dicha composición comprende un medicamento
elaborado como se define en una modalidad de la presente invención
en asociación con un excipiente farmacéuticamente aceptable.
De acuerdo con otra modalidad de la presente
invención, se proporciona un portador de la invención para su uso en
el transporte de un agente unido a este a través de una barrera
hematoencefálica en la elaboración de un medicamento para tratar una
enfermedad neurológica en un individuo.
De acuerdo con otra modalidad de la presente
invención, se proporciona una composición farmacéutica para su uso
en el tratamiento de una enfermedad neurológica que comprende un
medicamento elaborado como se define en una modalidad de la presente
invención en asociación con un excipiente farmacéuticamente
aceptable.
De acuerdo con otra modalidad de la presente
invención, se proporciona un portador para su uso en el transporte
de un agente unido a este a través de una barrera hematoencefálica
en la elaboración de un medicamento para tratar un trastorno del
sistema nervioso central en un individuo.
De acuerdo con otra modalidad de la presente
invención, se proporciona una composición farmacéutica para tratar
un trastorno del sistema nervioso central; dicha composición
comprende un medicamento elaborado como se define en una modalidad
de la presente invención en asociación con un excipiente
farmacéuticamente aceptable.
La presente invención también se refiere a un
conjugado o composición de la invención para su uso en el transporte
de un agente a través de la barrera hematoencefálica.
La presente invención también se refiere a un
conjugado o composición de la invención para su uso en el
tratamiento de una enfermedad neurológica en un paciente.
En un método preferido de la presente invención,
la composición farmacéutica se debe administrar al individuo de
forma intraarterial, intranasal, intraperitoneal, intravenosa,
intramuscular, subcutánea, transdérmica o per os.
El portador de conformidad con la reivindicación
1 es capaz de cruzar la barrera hematoencefálica y estar unido a o
conjugado a otro compuesto u agente y de este modo ser capaz de
transportar el otro compuesto u agente a través de la barrera
hematoencefálica. Por ejemplo, el portador puede unirse a receptores
presentes en células endoteliales cerebrales y de este modo ser
transportado a través de la barrera hematoencefálica por
transcitosis.
El conjugado de conformidad con la
reivindicación 3 se propone que signifique un conjugado de un
portador y otro compuesto o agente. La conjugación puede ser de
naturaleza química, tal como con un ligador, o de naturaleza
genética, por ejemplo por tecnología genética recombinante, tal como
en una proteína de fusión como por ejemplo una proteína
fluorescente verde, \beta-galactosidasa o proteína
Histag.
Los términos "tratamiento" y "que
trata" se propone que signifiquen obtener un efecto farmacológico
y/o fisiológico deseado, por ejemplo, inhibición de crecimiento de
células cancerosas, muerte de una célula cancerosa o mejora de una
enfermedad o condición neurológica. El efecto puede ser profiláctico
en términos de prevenir completa o parcialmente una enfermedad o
síntoma de esta y/o puede ser terapéutico en términos de una cura
parcial o completa para una enfermedad y/o efecto adverso atribuible
a la enfermedad.
El término "cáncer" se propone que
signifique cualquier neoplasia cuyo rasgo único es la pérdida de
controles normales que dan como resultado el crecimiento
incontrolado, carencia de diferenciación y capacidad para invadir
tejidos locales y metastizar. El cáncer puede desarrollarse en
cualquier tejido de cualquier órgano. De manera más específica, el
cáncer se propone que incluya cáncer del cerebro.
El término "que administra" y
"administración" se propone que signifique un modo de
distribución que incluye de forma intraarterial, intranasal,
intraperitoneal, intravenosa, intramuscular, subcutánea,
transdérmica o per os. La preferida es per os. Una
dosis diaria se puede dividir en una, dos o más dosis en una forma
adecuada que se administran una, dos o más veces a lo largo de un
periodo de tiempo.
El conjugado o composición de la invención puede
administrarse en una cantidad terapéuticamente efectiva.
El término "terapéuticamente efectivo" se
propone que signifique una cantidad de un compuesto suficiente para
mejorar sustancialmente algún síntoma asociado con una enfermedad o
condición médica. Por ejemplo, en el tratamiento de cáncer o una
condición mental por enfermedad neurológica o del CNS, un agente o
compuesto que disminuya, prevenga, retrase, suprima o detenga
cualquier síntoma de la enfermedad o condición será terapéuticamente
efectivo. Una cantidad terapéuticamente efectiva de un agente o
compuesto no se requiere que cure una enfermedad o condición sino
que proporcionará un tratamiento para una enfermedad o condición tal
que el comienzo de la enfermedad o condición se retrase, impida o
prevenga, o la enfermedad o síntomas de la condición se mejoren, o
el término de la enfermedad o condición se cambie o, por ejemplo,
sea menos severo o se acelere la recuperación en un individuo.
El portador y los conjugados
portador-agente de la presente invención se pueden
usar en combinación con cualquiera de los métodos convencionales de
tratamiento y/o terapia o se pueden usar de manera separada a partir
de métodos convencionales de tratamiento y/o terapia.
Cuando los conjugados de
portador-agente de esta invención se administran en
terapias de combinación con otros agentes, se pueden administrar de
manera secuencial o concurrente a un individuo. De manera
alternativa, las composiciones farmacéuticas de acuerdo con la
presente invención pueden comprender una combinación de un conjugado
de portador-agente de la presente invención en
asociación con un excipiente farmacéuticamente aceptable, como se
describe en la presente, y otro agente terapéutico profiláctico
conocido en la técnica.
Se entenderá que una "cantidad efectiva"
para cualquier individuo en particular dependerá de una variedad de
factores que incluyen la actividad del agente específico empleado,
la edad, peso corporal, salud general, sexo y/o dieta del individuo,
tiempo de administración, ruta de administración, velocidad de
excreción, combinación de fármacos y la gravedad de la enfermedad
particular que se someta a prevención o terapia.
Las sales de adición de ácido farmacéuticamente
aceptables se pueden preparar por métodos conocidos y usados en la
técnica.
Como se usa en la presente, "portador
farmacéuticamente aceptable" incluye cualquiera y todos los
solventes (tal como solución salina amortiguada con fosfato,
amortiguadores, agua, solución salina), medios de dispersión,
revestimientos, agentes antibacterianos y fungicidas, y agentes de
retraso isotónicos y de absorción. El uso de estos medios y agentes
para sustancias farmacéuticamente activas es bien conocido en la
técnica. Excepto en lo que se refiere a cualquier medio convencional
o agente que sea incompatible con el principio activo, se contempla
su uso en composiciones terapéuticas. También se pueden incorporar
en las composiciones principios activos complementarios.
Un fragmento de un péptido puede ser un
subconjunto de aminoácidos que constituyen la secuencia del péptido
completo. Un fragmento de portador es capaz de ser unido a o
conjugado a otro compuesto o agente y cruzar la barrera
hematoencefálica y de este modo ser capaz de transportar el otro
compuesto o agente a través de la barrera hematoencefálica.
El término "agente" se propone que
signifique sin distinción un fármaco o un compuesto tal como un
agente o compuesto terapéutico, un marcador, un trazador o un
compuesto de formación de imágenes.
El término "agente terapéutico" se propone
que signifique un agente y/o medicina y/o fármaco usado para tratar
los síntomas de una enfermedad, condición física o mental, lesión
o infección e incluye, antibióticos, agentes
anti-cáncer, agentes
anti-angiogénicos y moléculas activas al nivel del
sistema nervioso central. Se puede administrar por ejemplo
Paclitaxel de forma intravenosa para tratar cáncer cerebral.
El término "paciente" se propone que
signifique cualquiera que recibe un cierto tratamiento médico e
incluye que se someta a la administración de un conjugado de
portador-agente o compuesto para tratar, detectar,
trazar, marcar o formar en imágenes una condición, tal como un
tumor. De manera preferente, el paciente o individuo tratado es un
mamífero y de manera más preferente un humano.
La Figura 1 es una gráfica que muestra los
resultados de los experimentos de transcitosis de la aprotinina
(\bullet), p97 (\ding{117}) y ceruloplasmina (\sqbullet) a
través de células endoteliales capilares cerebrales bovinas
(BBCEC);
La Figura 2 es una gráfica que muestra los
resultados de los experimentos de transcitosis de aprotinina
(\bullet) y transferrina (\circ) a través de células
endoteliales capilares cerebrales bovinas (BBCEC);
La Figura 3 es una gráfica de barras que ilustra
que la aprotinina tiene una mayor capacidad de transcitosis que la
transferrina en un modelo de barrera hematoencefálica;
La Figura 4 es un análisis de
SDS-PAGE que ilustra que la integridad de la
aprotinina no se ve afectada por su transcitosis a través de las
monocapas de BBCEC;
La Figura 5 es una gráfica de la depuración de
[^{14}C]-sacarosa expresada como una función del
tiempo. La depuración de la sacarosa se midió en la presencia y en
la ausencia de aprotinina a 250 nM;
La Figura 6 es una gráfica que muestra los
resultados de una prueba de permeabilidad de sacarosa de células
endoteliales capilares cerebrales bovinas (BBCEC);
La Figura 7 es una gráfica de la depuración de
[^{14}C]-sacarosa expresada como una función del
tiempo que ilustra que la aprotinina no afecta la integridad de la
barrera hematoencefálica. La depuración de la sacarosa se midió en
la presencia y ausencia de aprotinina 5 \muM;
La Figura 8 es una gráfica de barras que ilustra
la acumulación de [^{125}I]-aprotinina en
capilares humanos y de rata;
La Figura 9 es una gráfica que ilustra un
transcurso del tiempo de la captación de aprotinina en capilares
humanos y de rata;
La Figura 10 es una gráfica de barras que
ilustra que el conjugado de aprotinina-biotina y la
aprotinina tienen la misma capacidad de transcitosis;
La Figura 11 es una gráfica de barras que
ilustra que la transcitosis de la aprotinina y el conjugado de
aprotinina-biotina es dependiente de la temperatura
y dependiente de la conformación;
Las Figuras 12A y 12B son conjuntos de gráficas
que ilustran el efecto de la temperatura y calentamiento en la
transcitosis de (A) aprotinina y (B) conjugado de
aprotinina-biotina en células BBCEC;
La Figura 13 es una gráfica de barras que
ilustra el incremento en la transcitosis de estreptavidina en la
presencia de conjugado de aprotinina-biotina;
La Figura 14 es una gráfica de barras que
ilustra la inhibición de la transcitosis de aprotinina por el
antagonista de LRP, proteína asociada al receptor (RAP);
La Figura 15 es una gráfica de barras que
ilustra la captación de aprotinina en un experimento de perfusión
cerebral in situ;
La Figura 16 ilustra una secuencia de aprotinina
sintética;
La Figura 17 ilustra una alineación de
secuencias entre aprotinina y tres proteínas humanas con un dominio
similar;
La Figura 18 es una gráfica de barras que
ilustra in situ la perfusión cerebral de transferrina,
aprotinina y Angio-pep1;
La Figura 19 es una gráfica que ilustra la
transcitosis de Angio-pep1 en comparación con la de
la aprotinina; y
La Figura 20 es una gráfica que ilustra la
transcitosis de Angio-pep1 a través del modelo de
barrera hematoencefálica in vitro.
La presente invención se refiere a un portador
para transportar un agente, medicina u otra molécula al cerebro y/o
sistema nervioso central (CNS, por sus siglas en inglés). Este
portador permite el paso del agente, medicina u otra molécula que se
une o acopla (conjuga) al portador y que es incapaz por sí misma de
cruzar la barrera hematoencefálica, que se transporta a través de la
barrera hematoencefálica. El conjugado del portador puede ser un
conjugado de portador-agente terapéutico. Estos
conjugados pueden estar en la forma de una composición, tal como una
composición farmacéutica, para su uso en el tratamiento de una
condición o enfermedad.
Este planteamiento es muy versátil puesto que
permite la conjugación de moléculas pequeñas así como grandes que
tienen objetivos terapéuticos muy diversos.
De acuerdo con la presente invención, un
portador para su uso en un método para transportar un agente a
través de la barrera hematoencefálica comprende administrar a un
individuo un agente que comprende un principio activo o un agente
farmacéuticamente unido a un portador de conformidad con la
reivindicación 1.
De acuerdo con la presente invención, el
compuesto se puede administrar de forma intraarterial, intranasal,
intraperitoneal, intravenosa, intramuscular, subcutánea,
transdérmica o per os al paciente. El agente es de manera
preferente un compuesto anti-angiogénico. El agente
puede tener un peso máximo de 160,000 Daltons. De manera preferente,
el agente es un marcador o un fármaco tal como un fármaco de
molécula pequeña, una proteína, un péptido o una enzima. El fármaco
se adapta de manera preferente para tratar una enfermedad
neurológica o un trastorno del sistema nervioso central de un
paciente. El fármaco puede ser un fármaco citotóxico y el marcador
puede ser una marca detectable tal como una marca radioactiva, una
proteína fluorescente verde, una proteína histag o
\beta-galactosidasa. El agente se distribuye de
manera preferente en el sistema nervioso central de un paciente.
De acuerdo con aún otra modalidad preferida de
la invención, los compuestos de la invención no alteran la
integridad de la barrera hematoencefálica del paciente.
El portador de la presente invención se puede
enlazar a o marcar con una marca detectable tal como un agente de
radioformación de imágenes, tal como los que emiten radiación, para
detección de una enfermedad o condición, por ejemplo por el uso de
un conjugado de agente de radioformación de
imágenes-anticuerpo-portador, en
donde el anticuerpo se une a un antígeno específico de la enfermedad
o condición. De manera alternativa, el portador de la presente
invención se puede enlazar a un agente terapéutico, para su uso en
el tratamiento de una enfermedad o condición, o se puede enlazar a o
marcar con mezclas de los mismos.
Un agente terapéutico de la presente invención
puede ser un fármaco, una medicina, un agente que emite radiación,
una toxina cerebral (por ejemplo, un agente quimioterapéutico) y/o
un fragmento biológicamente activo del mismo, y/o mezcla de los
mismos para permitir la aniquilación celular que puede ser un agente
para tratar, curar, aliviar, mejorar, disminuir o inhibir una
enfermedad o condición en un individuo tratado. Un agente
terapéutico puede ser un producto sintético o un producto de origen
fúngico, bacteriano u otro microorganismo, tal como micoplasma,
viral, etc., animal, tal como reptil o vegetal. Un agente
terapéutico y/o fragmento biológicamente activo del mismo puede ser
un agente enzimáticamente activo y/o fragmento del mismo, o puede
actuar al inhibir o bloquear una ruta celular importante y/o
esencial o al competir con un componente celular importante y/o
esencial que se presente de forma natural.
Los agentes de radioformación de imágenes que
emiten radiación (radiomarcas detectables) para el uso en la
presente invención se ejemplifican por indio-111,
tecnecio-99, o yodo-131 a baja
dosis.
Las marcas detectables o marcadores para el uso
en la presente invención pueden ser una radiomarca, una marca
fluorescente, una marca activa de resonancia magnética o nuclear,
una marca luminiscente, una marca de cromóforo, un isótopo que
emite positrones para scanner de PET, marca quimioluminiscente, o
una marca enzimática. Las marcas fluorescentes incluyen proteína
fluorescente verde (GFP), fluoresceína y rodamina. Las marcas
quimioluminiscentes incluyen luciferasa y
\beta-galactosidasa. Las marcas enzimáticas
incluyen peroxidasa y fosfatasa. Una histag también puede ser una
marca detectable.
Se contempla que un agente se pueda liberar del
portador después del transporte a través de la barrera
hematoencefálica, por ejemplo, por escisión o ruptura enzimática de
un enlace químico entre el portador y el agente. El agente de
liberación entonces funcionará a su capacidad propuesta en la
ausencia del portador.
La presente invención se entenderá más
fácilmente al hacer referencia a los siguientes ejemplos que se dan
para ilustrar la invención.
Un modelo reproducible in vitro de
barrera hematoencefálica que muestra las características in
vivo se ha usado para ensayo de detección y para estudios
mecanísticos de transporte de fármacos al cerebro. Este modelo in
vitro eficiente de la barrera hematoencefálica se desarrolló por
la compañía CELLIAL^{MR} Technologies, fue de principal
importancia a la evaluación fiable de la capacidad de diferentes
portadores para alcanzar el cerebro. El modelo consiste de un
cocultivo de células endoteliales capilares cerebrales bovinas y
células gliales de rata. Presenta rasgos ultraestructurales
característicos del endotelio cerebral que incluyen uniones
herméticas, carencia de fenestración, carencia de canales
transendoteliales, baja permeabilidad para moléculas hidrófilas y
una alta resistencia eléctrica. Además, este modelo ha mostrado un
buen coeficiente de correlación entre análisis in vitro e
in vivo de la amplia variedad de moléculas probadas. A la
fecha, todos los datos obtenidos muestran que este modelo de BBB
imita cercanamente la situación in vivo al reproducir algunas
de las complejidades del ambiente celular que existen in
vivo, en tanto que retiene las ventajas experimentales asociadas
con el cultivo de tejido. De esta manera, muchos estudios han
validado este cocultivo celular como uno de los modelos más
reproducibles in vitro de la BBB.
El modelo in vitro de la BBB se
estableció al usar un cocultivo de BBCEC y astrocitos. Antes del
cultivo celular, se revistieron piezas de inserción de laca
(Millicell-PC 3.0 \muM; diámetro
30-mm) en el lado superior con colágeno de cola de
rata. Entonces se colocaron en microplacas de seis cavidades que
contienen los astrocitos y las BBCEC se revistieron en el lado
superior de los filtros en 2 mL de medio de cocultivo. Este medio de
BBCEC se cargó tres veces a la semana. Bajo estas condiciones, las
BBCEC diferenciadas formaron una monocapa confluente 7 días después.
Los experimentos se realizaron entre 5 y 7 días después de que se
alcanzara la confluencia. El coeficiente de permeabilidad para
sacarosa se midió para verificar la permeabilidad endotelial.
Los cultivos primarios de los astrocitos
mezclados se prepararon a partir de corteza cerebral de rata neonata
(Dehouck M.P., Meresse S., Delorme P., Fruchart J.C., Cecchelli, R.
An Easier, Reproductible, and Mass-Production Method
to Study the Blood-Brain Barrier In Vitro. J.
Neurochem, 54, 1798-1801, 1990). De forma breve,
después de remover las meninges, el tejido cerebral se forzó
suavemente a través de un tamiz de nylon de 82 \mum. Los
astrocitos se colocaron en microplacas de seis cavidades a una
concentración de 1.2 x 10^{5} células/mL en 2 mL de medio de
cultivo óptimo (DMEM) complementado con suero bovino fetal al 10%,
inactivado con calor. El medio se cambió dos veces por semana.
Se obtuvieron células endoteliales capilares
cerebrales bovinas (BBCED) de Cellial Technologies. Las células s
cultivaron en presencia del medio de DMEM complementado con suero de
caballo al 10% (v/v) y suero de ternera al 10%, inactivado con
calor, 2 mM de glutamina, 50 \mug/mL de gentamicina, y 1 ng/mL de
factor de crecimiento de fibroblastos básicos, agregado cada dos
días.
A fin de determinar un portador adecuado para la
presente invención, se realizaron pruebas comparativas usando el
modelo in vitro de la BBB. Como se ilustra en la Figura 1, se
realizaron experimentos de transcitosis de diferentes proteínas
(aprotinina (\bullet), p97 (\ding{117}) y ceruloplasmina
(\sqbullet)) a través de las células endoteliales capilares
cerebreales bovinas (BBCEC). Las Figuras 2 y 3 muestran los
resultados de los experimentos de transcitosis realizados con
aprotinina (\bullet) y transferina (\circ), usando el mismo
método que en los experimentos de la Figura 1. Se colocó una pieza
de inserción cubierta con BBCEC en una microplaca de seis cavidades
de 2 mL de Ringer-Hepes y se preincubó durante 2
horas a 37°C. Se adicionaron [^{125}I]-aprotinina,
[^{125}I]-p97,
[^{125}I]-ceruloplasmina o
[^{125}I]-transferrina (concentración final 250
mM) al lado superior del filtro cubierto con células. En varios
momentos, la pieza de inserción se transfirió a otra cavidad para
evitar una posible reendocitosis de las
[^{125}I]-proteínas por el lado abluminal de las
BBCEC. Al final del experimento, se valoraron las
[^{125}I]-proteínas en 500 \muL de la cámara
inferior de la cavidad por precipitación con TCA. Los resultados
indican que la aprotinina tiene una capacidad mayor de transcitosis
que la transferrina, p97 o ceruloplasmina en un modelo de barrera
hematoencefálica.
La aprotinina, p97 y
holo-transferrina bovina se yodaron con
procedimientos normales usando cuentas de yodo de Sigma^{MR}. La
holo-transferrina bovina se diluyó en amortiguador
de fosfato 0.1 M, pH 6.5 (PB). La p97 obtenida de Synapse
Technologies en citrato neutralizado a pH 7.0 se dializó contra esta
PB. Dos cuentas de yodo se usaron para cada proteína. Estas cuentas
se lavaron dos veces con 3 mL de PB en un papel Whatman^{MR} y se
redispersaron en 60 \muL de PB. Se adicionó ^{125}I (1 mCi) de
Amersham-Pharmacia biotech para la suspensión de las
cuentas durante 5 minutos a temperatura ambiente. La yodación para
cada proteína se inició con la adición de 100 \mug
(80-100 \muL). Después de una incubación de 10
minutos a temperatura ambiente, los sobrenadantes se aplicaron en
una columna de desalinación preempaquetada con 5 mL de dextrano
reticulado de Pierce y las ^{125}I-proteínas se
eluyeron con 10 mL de PBS. Las fracciones de 0.5 mL se recogieron y
se midió la radioactividad en 5 \muL de cada fracción. Se
mezclaron las fracciones que corresponden a las
^{125}I-proteínas y se dializaron contra
Ringer-Hepes, pH 7.4. La eficiencia de la
radiomarcación fue entre 0.6-1 x 10^{8} cpm/100
\mug de proteína.
De las Figuras 1-3, es claro que
la aprotinina tiene una capacidad de transcitosis que es bastante
superior a la de las otras proteínas probadas. Los datos de las
Figuras 1-3 se han resumido en la Tabla 1, donde se
ha hecho una comparación de las diferentes proteínas.
La Tabla 2 resume otro experimento donde se ha
hecho una comparación de diferentes proteínas adicionales.
En vista de las Tablas 1 y 2, se puede ver que
para aprotinina, se obtuvo un transporte transendotelial superior en
comparación con las otras proteínas probadas y que la alta
transcitosis de la aprotinina es de aproximadamente 10 a 50 veces
mayor que estas otras proteínas.
Se adicionó [^{125}I]-proteína
(0.5-105 \muCi/ensayo) a una concentración final
de 250 nM al lado superior de filtros con o sin células de BBCEC
colocadas en placas de 6 cavidades. En cada punto de evaluación, los
filtros se pusieron en la siguiente cavidad de las placas de 6
cavidades. Al final del experimento, se tomaron alícuotas en cada
cavidad y se sometieron a SDS-PAGE. Los geles
entonces se sometieron a detección por autorradiografía. Los
resultados, presentados en la Figura 4, indican que la integridad de
la aprotinina no se ve afectada por su transcitosis a través de las
monocapas de BBCEC.
Se realizó una prueba adicional para determinar
el efecto de la aprotinina a 250 mM en la integridad de la BBB al
medir la permeabilidad de [^{14}C]-sacarosa en el
modelo de BBB en monocapas de BBCEC cultivadas en filtros en
presencia de astrocitos. Para lograr esta prueba, se transfirieron
monocapas de células endoteliales cerebrales cultivadas en piezas de
inserción a placas de 6 cavidades que contienen 2 mL de
Ringer-Hepes por cavidad (compartimento basolateral)
durante dos horas a 37°C. La solución de
Ringer-Hepes se compuso de NaCl 150 mM, KCl 5.2 mM,
CaCl_{2} 2.2 mM, MgCl_{2} 0.2 mM, NaHCO_{3} 6 mM, Hepes 5 mM,
Hepes 2.8 mM, pH 7.4. En cada cámara apical, el medio de cultivo se
reemplazó por 1 mL de Ringer-Hepes que contenía la
[^{14}C]-sacarosa marcada. En diferentes momentos
se colocaron las piezas de inserción en otra cavidad. Se inhibió el
paso de [^{14}C]-sacarosa a 37°C, en filtros sin
células (\Box) o con filtros revestidos con células BBCEC en la
ausencia (\triangle) o presencia (\circ) de aprotinina 5 \muL
(Figura 6). Los resultados se grafican como la depuración de
sacarosa (\muL) como una función del tiempo (min). El coeficiente
de permeabilidad de sacarosa entonces se determinó. El coeficiente
de permeabilidad (Pe) se calculó como:
- 1)
- Depuración (\muL)= \frac{[C]A\ x\ VA}{[C]L}
en
donde:
[C]A = Concentración de trazador
abluminal
VA = Volumen de cámara abluminal
[C]L = Concentración de trazador
luminal.
- 2)
- 1/Pe = (1/PSt-1/PSf)/área de filtro (4.2 cm^{2}).
Al final de los experimentos, se midieron las
cantidades de los radiotrazadores en el compartimento basolateral en
un contador de centelleo líquido. El coeficiente de permeabilidad
(Pe) para sacarosa se calculó como se describe anteriormente
(Dehouck M.P., Jolliet-Riant, P., Brée, F.,
Fruchart, J.C., Cecchelli, R., Tillement, J.P., J. Neurochem.
58:1790-1797, 1992) usando filtros revestidos y no
revestidos con EC. Los resultados de los dos experimentos se
graficaron de manera separada en términos de la depuración de
[^{14}C]-sacarosa (\muL) como una función del
tiempo (min) (Figuras 5 y 6). En las Figuras 5 y 6, PSt representa
la permeabilidad por área superficial de un filtro del cocultivo y
PSf representa la permeabilidad de un filtro revestido con colágeno
y astrocitos colocados en placas en el lado del fondo del filtro B.
El coeficiente de permeabilidad (Pe) se calculó y se demostró que la
integridad de la BBB no se ve afectada por la aprotinina (ver Figura
6 para Pe calculado de la Figura 5, y Tabla 3 para Pe calculado de
la Figura 7).
Se midió la acumulación a 37°C durante 1 hora.
El medio de incubación contuvo aprotinina a una concentración final
de 100 nM en solución de Ringer/Hepes. La acumulación se detuvo por
la adición de solución de detención enfriada con hielo y filtración
al vacío a través de un filtro de 0.45 \muM. La unión no
específica de la aprotinina a la superficie de los capilares se
evaluó por la adición de la solución enfriada con hielo antes de
adicionar el medio de incubación. Este valor se sustrajo del valor
de acumulación para obtener el valor de acumulación real. Los
resultados de este experimento se muestran en la Figura 8.
Se midió la captación de aprotinina a 37°C para
un tiempo variable. El medio de incubación contuvo aprotinina a una
concentración final de 100 nM en solución de Ringer/Hepes. En cada
punto de evaluación, la acumulación se detuvo por adición de una
solución de detención enfriada con hielo y filtración al vacío a
través de un filtro de 0.45 \muM. En cada punto de evaluación, se
evalúo la unión específica de aprotinina en la superficie de los
capilares por la adición de la solución enfriada con hielo antes de
adicionar el medio de incubación. Los resultados de este experimento
se muestran en la Figura 9.
Se usó para la conjugación análogo de biotina
soluble en agua
Sulfo-NHS-LC-LC-Biotina
(Pierce). Este análogo reacciona con aminas primarias en la ausencia
de solvente orgánico y a un pH neutro. Se adicionó un exceso molar
de 12 veces de análogo de biotina a una solución de aprotinina de 10
mg/ml. La mezcla de análogo de biotina y aprotinina se incubó
durante 2 horas a 4°C. Para eliminar el reactivo de biotina sin
reaccionar, se realizó una diálisis durante la noche en un cartucho
de diálisis "slide-a-lyzer"
(Pierce) con un corte de 3500 Da. Entonces se realizó la
determinación de la incorporación de biotina con el tinte HABA
(ácido
2-(4'-hidroxiazobenceno)-benzoico)
que se une a avidina produciendo una absorción a 500 nm. Esa unión
se puede dispersar con biotina libre o con proteína biotinilada,
permitiendo la cuantificación de la incorporación de biotina. La
relación obtenida por esta conjugación fue de tres biotinas por cada
aprotinina.
La transcitosis de
[^{125}I]-aprotinina y
[^{125}I]-aprotinina-biotina se
evaluó a 37°C. Se adicionó [^{125}I]-proteína
(0.5-1.5 \muCi/ensayo) a una concentración final
de 250 nM al lado superior del filtro cubierto con células para la
medición de la transcitosis. Al final del experimento, se determinó
la transcitosis celular de [^{125}I]-proteína
directamente por precipitación de TCA. Los resultados de este
experimento se muestran en la Figura 10.
Se evalúo la acumulación de
[^{125}I]-aprotinina y
[^{125}I]-aprotinina-biotina a
37°C y 4°C, o a 37°C después de que las proteínas se hubieron
sometido a ebullición durante 10 minutos a 100°C. Se adicionó
[^{125}I]-proteína (0.5-1.5
\muCi/ensayo) a una concentración final de 250 nM al lado superior
del filtro cubierto con células para la medición de la transcitosis.
Al final del experimento, los filtros cubiertos con células se
cortaron y se determinó la acumulación celular de
[^{125}I]-proteína directamente por precipitación
de TCA. Los resultados de este experimento se muestran en la Figura
11.
Se evaluó la transcitosis de
[^{125}I]-aprotinina (Figura 12A) y
[^{125}I]-aprotinina-biotina
(Figura 12B) a 37°C y 4°C, o a 37°C después de que las proteínas se
hubieron sometido a ebullición durante 10 minutos a 100°C. Se
adicionó [^{125}I]-proteína
(0.5-1.5 \muCi/ensayo) a una concentración final
de 250 nM al lado superior del filtro cubierto con células para la
medición de la transcitosis. En cada punto de evaluación se movió el
filtro a la siguiente cavidad de la placa de 6 cavidades. Al final
del experimento, se valoró [^{125}I]-proteína en
el compartimento inferior de cada cavidad por precipitación de
TCA.
Se evaluó la transcitosis de
[^{125}I]-estreptavidina sola o en la presencia de
conjugado de aprotinina-biotina. Se adicionó
[^{125}I]-proteína (0.5-1.5
\muCi/ensayo) a una concentración final de 250 nM al lado superior
del filtro cubierto con células para la medición de la transcitosis.
En cada punto de evaluación, se movió el filtro a la siguiente
cavidad de la placa de 6 cavidades. Al final del experimento, se
valoró [^{125}I]-proteína en el compartimento
inferior de cada cavidad por precipitación de TCA. Los resultados de
este experimento se muestran en la Figura 13.
Se evaluó la transcitosis de proteína a 37°C. Se
adicionó [^{125}I]-proteína
(0.5-1.5 \muCi/ensayo) a una concentración final
de 250 nM al lado superior del filtro cubierto con células con o sin
RAP. Al final del experimento, se valoró
[^{125}I]-aprotinina en el compartimento inferior
de cada cavidad por precipitación de TCA. Los resultados de este
experimento se muestran en la Figura 14.
La captación de
[^{125}I]-aprotinina al lado luminal de los
capilares cerebrales de ratón se midió usando el método de perfusión
cerebral in situ adaptado al laboratorio para el estudio de
la captación de fármacos en cerebro de ratón (Dagenais et
al., 2000, J. Cereb. Blood Flow Metab.
20(2):381-386). De forma breve, la carótida
común derecha de ratones anestesiados con cetamina/xilazina (140/8
mg/kg i.p.), se expuso y ligó al nivel de la bifurcación de la
carótida común, rostral a la arteria occipital. La carótida común
entonces se cateterizó rostralmente con un catéter de polietileno
(0.30 mm de i.d. x 0.70 mm de o.d.), relleno de heparina (25 U/ml) y
se montó en una aguja de calibre de 26. La jeringa que contenía el
fluido de perfusión (10 nM de [^{125}I]-aprotinina
en amortiguador de Krebs/bicarbonato a un pH de 7.4, gasificada con
O_{2} a 95% y CO_{2} al 5%) se colocó en una bomba de infusión
(Harvard pump PHD 2000; Harvard Apparatus) y se conectó al catéter.
Inmediatamente antes de la perfusión, se detuvo el corazón al cortar
los ventrículos para eliminar la contribución del flujo sanguíneo
contralateral. El cerebro se perfundió durante 10 minutos a una
velocidad de flujo de 2.5 ml/min. Después de 10 minutos de
perfusión, el cerebro se perfundió adicionalmente durante 30
segundos con solución de Ringer/Hepes (NaCl 150 mM, KCl 5.2 mM,
CaCl_{2} 2.2 mM, MgCl_{2} 0.2 mM, NaHCO_{3} 6 mM, Hepes 5 mM,
glucosa 2.8 mM, pH 7.4), para lavar el exceso de
[^{125}I]-aprotinina. Entonces se decapitaron los
ratones para terminar la perfusión y se aisló el hemisferio derecho
en hielo antes de que se sometiera a agotamiento capilar (Triguero
et al., 1990, J Neurochem. 54(6):
1882-8). Las alícuotas de los homogenados,
sobrenadantes, sedimentos y perfundidos se tomaron para medir sus
contenidos en [^{125}I]-aprotinina por
precipitación con TCA y para evaluar el volumen aparente de
distribución.
De forma breve, se llevaron a cabo cálculos como
se describe previamente por Smith (1996, Pharm. Biotechnol.
8:285-307). La captación de aprotinina se expresó
como volumen de distribución (V_{d}) a partir de la siguiente
ecuación:
Vd=Q*_{br}/C*_{pf}
donde Q*_{br} es la cantidad
calculada de [^{125}I]-aprotinina por gramo de
hemisferio cerebral derecho y C*_{pf} es la concentración de
trazador marcado medido en el
perfundido.
Los resultados de este experimento, mostrados en
la Figura 15, indican que hay mayor captación cerebral para la
aprotinina que para la transferrina y que la conjugación con biotina
no modifica la captación cerebral de aprotinina.
En vista de los resultados obtenidos para las
pruebas mencionadas con anterioridad, la aprotinina es un portador
prometedor para transportar un agente o compuesto a través de la BBB
puesto que tiene una transcitosis superior a través de manocapas de
BBCEC a la de otras proteínas y no altera la integridad de la
barrera hematoencefálica. Además, la aprotinina no se degrada
durante la transcitosis ni la conjugación de aprotinina a biotina
afecta su transcitosis. Además, la aprotinina es un portador
versátil y flexible puesto que muchas moléculas tal como moléculas
pequeñas de fármaco, proteínas, péptidos y enzimas se pueden unir
fácilmente a las proteínas de aprotinina para promover su paso a
través de la BBB. Estas moléculas se pueden unir de manera
concebible a la aprotinina mediante un conectar.
También se ha determinado que el volumen de
distribución cerebral de aprotinina es mayor que el de la
transferrina. Adicionalmente se ha determinado que la transcitosis
es sensible a la temperatura y dependiente de la conformación, lo
que implica que un receptor de la familia de LDL-R,
probablemente LRP participa en la transcitosis de la aprotinina.
De esta manera, la aprotinina es un portador
efectivo y eficiente para distribuir un agente en el cerebro a
través de la barrera hematoencefálica.
Una comparación de secuencias se hizo en la
secuencia N-terminal de aprotinina
(MRPDFCLEPPYTGPCVARIIR) (Figura 16) (SEQ ID NO:2) usando el programa
BLAST^{MR} en el sitio Web National Center for Biotechnology
Information (NCBI). Esta comparación de secuencias dio como
resultado cuatro secuencias que se identifican. Ninguna de estas
secuencias identificadas correspondió a una proteína humana.
La secuencia C-terminal de
aprotinina (GLCQTFVYGGCRAKRNNFKSAE) (Figura 16) (SEQ ID NO:3)
también se comparó en el sitio Web NCBI. Esta comparación de
secuencias dio como resultado 27 secuencias que se identifican con
algunas proteínas correspondientes a proteínas humanas. Las
proteínas con la mayor puntuación entonces se alinearon con la
secuencia de la aprotinina (Figura 17). De esta alineación, se
generó el siguiente péptido Angio-pep1:
TFFYGGCRGKRNNFKTEEY (carga neta +2) (SEQ ID NO:4).
El volumen de distribución cerebral aparente se
midió para [^{125}I]-transferrina,
[^{125}I]-aprotinina y
[^{125}I]-Angio-pep1. Los cerebros
de ratón se perfundieron durante 10 minutos. Se realizó el
agotamiento de capilares cerebrales para valorar el volumen aparente
de distribución en la parénquima cerebral. Los resultados de este
experimento se 1 muestran en la Figura 18.
La transcitosis de Angio-pep1 se
comparó con la de aprotinina. El transporte de
[^{125}I]-Angio-pep1 y
[^{125}I]-aprotinina a partir del lado apical a
basolateral de las monocapas de células endoteliales se midió como
se describe anteriormente. La concentración final usada para
Angiopep1 y aprotinina para este experimento fue de 2.5 \muM. Los
resultados de este experimento se muestran en la Figura 19.
Se evaluó el transporte de
Angio-pep1 desde el lado apical a basolateral de las
piezas de inserción cubiertas con o sin monocapas de células
endoteliales. Los resultados se expresan como la depuración de
Angio-pep1 como una función del tiempo. Las
pendientes corresponden a la permeabilidad del péptido a través del
filtro solo (Psf) y a la permeabilidad total de las monocapas de
células endoteliales (Pst). El coeficiente de permeabilidad (Pe)
para Angio-pep1 fue de 1.2 x 10^{-3} cm/min. Los
resultados de este experimento se muestran en la Figura 20.
Los coeficientes de permeabilidad para
Angio-pep1, aprotinina, leptina y transferrina se
determinaron usando el modelo in vitro de barrera
hematoencefálica. El coeficiente de permeabilidad (Pe) se calculó
como se describe anteriormente. La comparación de los coeficientes
de permeabilidad se muestra en la Tabla 4.
Los experimentos anteriores indican que la
penetración al cerebro para Angio-pep1 es mayor que
la de aprotinina y transferrina. Los experimentos también indican
que la transcitosis de Angio-pep1 medida usando el
modelo in vitro de barrera hematoencefálica es mayor que la
de las otras proteínas incluyendo aprotinina, leptina y
transferrina.
Claims (17)
1. Un portador, caracterizado por que la
penetración al cerebro o transcitosis a través de la barrera
hematoencefálica de dicho portador es mayor que la de aprotinina y
transferrina,
- a)
- que comprende el péptido Angiopep-1 (TFFYGGCRGKRNNFKTEEY) o
- b)
- conformado por un fragmento de dicho péptido.
2. El portador de conformidad con la
reivindicación 1, caracterizado por que el portador es
Angiopep-1.
3. Un conjugado caracterizado por que
comprende:
- (a)
- un portador de acuerdo con las reivindicaciones 1-2, y
- (b)
- un agente unido al portador, en donde el conjugado es capaz de cruzar la barrera hematoencefálica.
4. El conjugado de conformidad con la
reivindicación 3, caracterizado por que el agente tiene un
peso molecular máximo de 160,000 Daltons.
5. El conjugado de conformidad con la
reivindicación 4, caracterizado por que el agente es un
fármaco de molécula pequeña que tiene un peso molecular de 1000
g/mol o menos.
6. El conjugado de conformidad con la
reivindicación 3, caracterizado por que el agente se
selecciona del grupo conformado por un fármaco de molécula pequeña,
una proteína, un péptido, una marca detectable y un compuesto
antiangiogénico.
7. El conjugado de conformidad con la
reivindicación 3, caracterizado por que el agente es un
agente terapéutico.
8. El conjugado de conformidad con la
reivindicación 6, caracterizado por que el agente es un
agente anticancerígeno.
9. El conjugado de conformidad con la
reivindicación 8, caracterizado por que el agente
anticancerígeno es paclitaxel.
10. El conjugado de conformidad con la
reivindicación 6, caracterizado por que el agente es un
anticuerpo.
11. El conjugado de conformidad con las
reivindicaciones 3-10, caracterizado por que
el transporte de dicho conjugado a través de la barrera
hematoencefálica no afecta la integridad de la barrera
hematoencefálica.
12. Una composición farmacéutica
caracterizada por que comprende un conjugado de acuerdo con
las reivindicaciones 3-11, y un excipiente
farmacéuticamente aceptable.
13. La composición farmacéutica de conformidad
con la reivindicación 12, caracterizada por que la
composición se puede administrar de forma intraarterial, intranasal,
intraperitoneal, intravenosa, intramuscular, subcutánea,
transdérmica o per os.
14. Un conjugado o composición de conformidad
con las reivindicaciones 3-13 útil para tratar una
enfermedad neurológica.
15. El conjugado o composición para su uso de
conformidad con la reivindicación 14, caracterizado por que
la enfermedad neurológica se selecciona del grupo conformado por un
tumor cerebral, una metástasis cerebral, esquizofrenia, epilepsia,
enfermedad de Alzheimer, enfermedad de Parkinson, enfermedad de
Huntington, accidente cerebrovascular y disfunción relacionada con
la barrera hematoencefálica.
16. El conjugado o composición para su uso de
conformidad con la reivindicación 14, caracterizado por que
la enfermedad neurológica es un tumor cerebral o metástasis
cerebral.
17. El conjugado o composición para su uso de
conformidad con las reivindicaciones 14-16,
caracterizado por que el agente es paclitaxel.
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