ES2340862T3 - Derivados ciclopeptidicos con actividad anti-integrina. - Google Patents
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Abstract
Péptidos cíclicos que tienen la siguiente Fórmula I: (Fórmula I)c(R1-Arg-Gly-Asp-R2) en la que: c significa cíclico; R1 un aminoácido con fórmula general: -NX-CY(Z)-CO-; en la que X se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, alquilo C1-C6 lineal o ramificado, arilo C6-C10, bencilo, (CH2)n-COR, (CH2)n-NHR'', 4-COR-bencilo, 4-(CH2-NHR'')-bencilo; en la que n es un número entero de 1 a 5; Y se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, CHmFm''; en la que m + m'' = 3, en que m y m'' son números enteros de 0 a 3; Z se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, (CH2)n1-NHR'', 4-NHR''-(CH2)n1-bencilo, 4-COR-bencilo, en la que n1 es un número entero de 0 a 5; R se selecciona entre el grupo que está constituido por: W, OW, N[CH2-CO-NH-CH2-O-(CH2CH2O)n2-CH2-COOW]2, NH-CH2-O-(CH2CH2O)n2-CH2-COOW, NW-(CH2-CH2NH)n2-CH2-CH2NHW; en las que n2 es un número entero de 1 a 22; y W se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, alquilo C1-C3; R'' se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, CO-(CH2)n2-COOW, CO-CH2-O-(CH2CH2 O)n2-CH2-NHW, CO-CH2-O-(CH2CH2O)n2-CH2-COOW: en las que n2 tiene el significado que se ha reseñado anteriormente; y R2 se selecciona entre el grupo que está constituido por: D-Phe, D-4-terc-butil-Phe, D-4-CF3-Phe, D-4-acetilamina-Phe; sus mezclas racémicas, sus enantiómeros individuales, sus diastereoisómeros individuales y sus sales farmacéuticamente aceptables.
Description
Derivados ciclopeptídicos con actividad
anti-integrina.
Los objetos de la presente invención son
compuestos útiles como medicamentos, procedimientos para la
preparación de los mismos, composiciones farmacéuticas que los
contienen y usos de los mismos para la preparación de medicamentos
útiles para la terapia de enfermedades debidas a angiogénesis
anormal.
\vskip1.000000\baselineskip
En pacientes oncológicos, la quimioterapia es,
en muchos casos, la única opción de tratamiento contra un cáncer
diseminado. Una aproximación para mejorar la eficacia y reducir la
toxicidad de la terapia anticáncer es administrar fármacos que
tengan como diana los receptores implicados en la angiogénesis
tumoral.
En la adhesión entre una célula y otra y entre
células y la matriz extracelular están implicadas integrinas tanto
en el proceso de angiogénesis tumoral como en el proceso
metastático. En particular, los receptores de integrinas
\alpha_{\nu}\beta_{3} y \alpha_{\nu}\beta_{5} se
expresan fuertemente en las células endoteliales de los microvasos
de tumores humanos y en las propias células tumorales.
En la actualidad se reconoce generalmente que la
vascularización de tumores es una diana prometedora para terapia
anticáncer [H. Jin y J. Varner, Br. J. Cancer, 2004, 90(3):
561-5].
En los últimos años, numerosos estudios han
demostrado que derivados ciclopeptídicos que contienen la secuencia
Arg-Gly-Asp presentan alta afinidad
para receptores de integrina.
Se está estudiando la inhibición de la
progresión y la neoangiogénesis tumorales usando péptidos RGD
cíclicos y algunos estudios ya han mostrado resultados
prometedores.
Por ejemplo, se ha demostrado recientemente en
un carcinoma de colon inducido químicamente en ratas que el
comienzo tardío de tratamiento con péptidos bloqueadores de
integrina dio como resultado la inhibición de crecimiento tumoral y
la reducción de carga tumoral que parece que está mediada, al menos
en parte, por inhibición de neoangiogénesis (Haier J. y col., Clin
Exp Matastasis, 2002; 19 (8); 665-72). Por lo tanto,
la inhibición de receptor de integrina
\alpha_{\nu}\beta_{3} parece que es una buena estrategia
terapéutica contra el cáncer.
Además, estos péptidos RGD cíclicos también
pueden tener aplicaciones terapéuticas interesantes en enfermedades
cardiovasculares, osteoporosis e infecciones virales que utilizan
integrinas celulares en su penetración en las células diana (por
ejemplo VIH). Compuestos de este tipo son útiles para dirigir
fármacos de quimioterapia, particularmente fármacos anticáncer,
contra aquellas células que expresan niveles altos de receptores de
integrina. De esta manera, se consigue una respuesta terapéutica
eficaz con bajos efectos laterales inducidos por el agente de
quimioterapia.
Hauber R., y col., J. Am. Chem. Soc., 1996, 118,
7461 estudiaron la influencia de los cambios conformacionales de
pentapéptidos cíclicos que contienen RGD de fórmula
RGD-XX sobre el perfil de inhibición de estos
últimos sobre diversos tipos de receptores de integrina. Al variar
la naturaleza de los dos últimos restos aminoácido (es decir, XX)
los autores concluyeron que la naturaleza del último resto no tenía
influencia alguna sobre el perfil inhibidor del ciclo completo. Sin
embargo, no se reseñaron datos respecto a
\alpha_{\nu}\beta_{5}.
El documento DE19725368 describió derivados de
fórmula RGD-XX, aunque, como no se describieron en
esta patente datos biológicos respecto a derivados de este tipo,
este documento no da retrospectiva alguna sobre la influencia de
diversos restos en la posición 4 y/o la 5 de la estructura
cíclica.
\vskip1.000000\baselineskip
La presente invención se refiere a derivados
ciclopeptídicos dotados de actividad anti-integrina,
y particularmente a péptidos cíclicos que contienen, además de una
secuencia de tres aminoácidos que es constante en todos los
compuestos que se describen en este documento, otros dos restos que
están constituidos por aminoácidos naturales o no naturales, que
pueden estar sustituidos sobre el nitrógeno o sobre el C\alpha con
un resto que está constituido por un grupo funcional o una cadena
terminal con un grupo funcional que, inesperadamente, potencia su
unión a integrinas \alpha_{\nu}\beta_{3} y
\alpha_{\nu}\beta_{5}. La presente invención también se
refiere a procedimientos para la preparación de dichos compuestos,
el uso de los mismos como medicamentos, particularmente como
inhibidores de receptor de integrina, con acción útil en el
tratamiento de enfermedades tales como retinopatía, insuficiencia
renal aguda, osteoporosis y metástasis y a composiciones
farmacéuticas que los contienen. Estos compuestos, cuando se marcan
adecuadamente, también son útiles como agentes de diagnóstico para
la detección de masas tumorales pequeñas y episodios de
oclusión
arterial.
arterial.
Los fármacos vehiculados por los ciclopéptidos
según la presente invención pertenecen a clases de agentes
citotóxicos tales como agentes alquilantes (ciclofosfamidas,
nitrosoureas), antimetabolitos (metotrexato,
5-fluoruracilo, arabinósido de citosina), productos
naturales (doxorubicina y análogos estructurales, actinomicina D,
bleomicina, alcaloides vinca, epipodofilotoxinas, y mitomicina
C).
Para una descripción exhaustiva del estado de la
técnica respecto a los compuestos receptores de integrinas
\alpha_{\nu}\beta_{3} y \alpha_{\nu}\beta_{5} y sus
aplicaciones, se remite al lector al documento WO 2004/011487, a
nombre del solicitante, al que también se hace referencia explícita
en conexión con los antecedentes científicos.
Sorprendentemente, las moléculas resultantes de
la presente invención demuestran afinidad para integrinas, que a
veces es considerablemente mayor que la que se observa para los
ciclopéptidos que pertenecen a la misma clase y que se describen en
la bibliografía [H. Kessler, y col., J. Med. Chem., 1999, 42,
3033-40].
Por lo tanto, esta invención proporciona
inhibidores de integrina del tipo \alpha_{\nu}\beta_{3} y
\alpha_{\nu}\beta_{5}, que son mucho más potentes que los
compuestos conocidos.
\vskip1.000000\baselineskip
Por lo tanto, el principal objeto de la presente
invención son compuestos de Fórmula I, como sigue:
(Fórmula
I)c(R_{1}-Arg-Gly-Asp-R_{2})
en la
que:
- -
- c significa cíclico;
- -
- R_{1} un aminoácido con fórmula general: -NX-CY(Z)-CO-; en la que
- -
- X se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, alquilo C_{1}-C_{6} lineal o ramificado, arilo C_{6}-C_{10}, bencilo, (CH_{2})_{n}-COR, (CH_{2})_{n}-NHR', 4-COR-bencilo, 4-(CH_{2}-NHR')-bencilo; en la que n es un número entero de 1 a 5;
- -
- Y se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, CH_{m}F_{m'}; en la que m + m' = 3, en que m y m' son números enteros de 0 a 3;
- -
- Z se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, (CH_{2})_{n1}-NHR', 4-NHR'-(CH_{2})_{n1}-bencilo, 4-COR-bencilo, en la que n_{1} es un número entero de 0 a 5;
- -
- R se selecciona entre el grupo que está constituido por: W, OW, N[CH_{2}-CO-NH-CH_{2}-O-(CH_{2}CH_{2}O)_{n2}-CH_{2}-COOW]_{2}, NH-CH_{2}-O-(CH_{2}CH_{2}O)_{n2}-CH_{2}-COOW, NW-(CH_{2}-CH_{2}NH)_{n2}-CH_{2}-CH_{2}NHW; en que n_{2} es un número entero de 1 a 22; y
- -
- W se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, alquilo C_{1}-C_{3};
- -
- R' se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, CO-(CH_{2})_{n2}-COOW, CO-CH_{2}-O- (CH_{2}CH_{2}O)_{n2}- CH_{2}-NHW, CO-CH_{2}-O-(CH_{2}CH_{2}O)_{n2}-CH_{2}-COOW: en las que n_{2} tiene el significado que se ha reseñado anteriormente; y
- -
- R_{2} se selecciona entre el grupo que está constituido por: D-Phe, D-4-terc-butil-Phe, D-4-CF_{3}-Phe, D-4-acetilamina-Phe;
sus mezclas racémicas, sus enantiómeros
individuales, sus diastereoisómeros individuales y sus sales
farmacéuticamente aceptables.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplos preferidos de compuestos de Fórmula (I)
son:
- c(Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp);
- c(Arg-Gly-Asp-D-Phe-Aad);
- c(Arg-Gly-Asp-D-Phe-N-Me-Amp);
- c[Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp-CO(CH_{2})_{2}COOH];
- c(Arg-Gly-Asp-D-Phe-N-Amb-Gly);
- c[Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp-(CO-CH_{2}-(O-CH_{2}-CH_{2})_{2}-O-CH_{2}-COOH)];
- c[Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp-(CO-CH_{2}-(OCH_{2}CH_{2})_{8}-OCH_{2}-COOH)]; y
- c[Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp(CO-CH_{2}-(OCH_{2}-CH_{2})_{3}OCH_{3})];
\vskip1.000000\baselineskip
Lo que se quiere dar a entender por sal
farmacéuticamente aceptable es cualquier sal que no dé origen a
efectos tóxicos o laterales.
Sales de este tipo son bien conocidas para los
farmacólogos y expertos en tecnología farmacéutica.
Los compuestos de Fórmula I se pueden preparar
según el procedimiento que se describe a continuación en este
documento y se ejemplifica para los compuestos preferidos según la
invención. Este procedimiento constituye un objeto adicional de la
invención.
Los compuestos de Fórmula I se pueden preparar,
después de sintetizar los restos aminoácido no naturales, según
técnicas convencionales de síntesis de péptidos, según se describe
en los ejemplos de la parte experimental. La síntesis de péptidos
se puede realizar tanto en fase sólida como en disolución. Una vez
que se ha preparado el péptido lineal adecuadamente protegido, se
somete a ciclación.
Los compuestos que se describen en la presente
invención son inhibidores de integrina y por lo tanto son útiles
como medicamentos en el tratamiento del cáncer, como agentes de
diagnóstico por imagen y como vectores de fármacos que se dirigen a
dianas (G.C. Tucker 2003 Curr. Opin. Investig Drugs 4,
722-31), particularmente para el tratamiento de
tumores cuyas células sobreexpresan integrinas tanto de manera
natural como inducida, por ejemplo, como resultado de radioterapia;
en enfermedades inflamatorias, (por ejemplo, artritis reumatoide),
en las enfermedades que comportan angiogénesis anormal, tales como
tumores, retinopatía, enfermedades oculares, insuficiencia renal
aguda, osteoporosis y metástasis, enfermedades cardiovasculares
(infarto y ataque cardíaco), y restenosis después de angioplastia
transluminal percutánea coronaria (J. S. Kerr y col., Drug News
Perspect 2001, 14, 143 50). Los compuestos que se describen en este
documento también son útiles, cuando se marcan adecuadamente, como
agentes de diagnóstico, especialmente para la detección de masas
tumorales pequeñas y episodios de oclusión arterial. Diversos
antagonistas han sido marcados con (18)F, (111)In,
(99)Tc, (90)Y y muchos isótopos de yodo para vigilar
la angiogénesis inducida por tumores, puesto que en la migración de
células endoteliales para la formación de nuevos vasos hay
integrinas implicadas (R. H. Haubner y col., 2003 Q. J. Nucl. Med.
47 189-99). Se pueden usar péptidos radiomarcados de
alta afinidad como dianas para integrinas
\alpha_{\nu}\beta_{3} y con el fin de formar imágenes de las
áreas de daño vascular, puesto que la expresión de integrina
\alpha_{\nu}\beta_{3} aumenta en las células endoteliales
activadas y en las células vasculares de músculo de fibra lisa
después del daño vascular. Esta aproximación resuelve los
inconvenientes de los métodos de formación de imágenes mediante
resonancia magnética y tomografía axial computarizada tales como la
falta de ligandos relevantes biológicamente y agentes de contraste
sanguíneo para la formación de imágenes (F.G. Blankenberg y col.,
2002 Am. J. Cardiov. Drugs 2, 357-65).
Las composiciones farmacéuticas contienen al
menos un compuesto de Fórmula I como ingrediente activo en una
cantidad tal que produzca un efecto terapéutico significativo. Las
composiciones según la presente invención son enteramente
convencionales y se obtienen usando métodos que son práctica común
en la industria farmacéutica. Según la ruta de administración
seleccionada, las composiciones estarán en forma sólida o líquida,
adecuada para administración oral, parenteral, o intravenosa. Las
composiciones según la presente invención contienen, junto con el
ingrediente activo, al menos un vehículo o excipiente
farmacéuticamente aceptable. Pueden ser particularmente útiles los
adyuvantes de formulación, tales como, por ejemplo, agentes de
solubilización, agentes de dispersión, agentes de suspensión y
agentes de emulsión.
Los compuestos de Fórmula I también se pueden
usar en combinación con otros fármacos anticáncer o con otros
fármacos con actividad antiparasitaria o antiviral, tanto en formas
farmacéuticas por separado o en formas farmacéuticas únicas.
Los medicamentos que son objeto de la presente
invención también se usan en el tratamiento de enfermedades de
parásitos y de adenovirus. La entrada de agentes patógenos en las
células ocurre por medio de penetración directa de la membrana
plasmática, endocitosis mediada por clatrina, endocitosis caveolar,
pinocitosis o macropinocitosis. La macropinocitosis requiere la
implicación de integrinas (O. Meier y col., 2003, J. Gene Med. 5,
451-62). La actividad antiparasitaria se puede
ejercer entonces mediante inhibición de la adhesión mediada por
integrina y mediante abastecimiento de leucocitos guiados por los
receptores de quimioquina, por ejemplo, en el control de
inflamación inducida por Trypanosoma cruzi. Incidentalmente,
en la fase aguda de la enfermedad de Chagas, la inducción del
proceso inflamatorio es crucial para el control de Trypanosoma
cruzi en el tejido diana del equilibrio hospedador/parásito (J.
Lannes-Vieira, 2003, Mem. Inst. Oswaldo Cruz, 98,
299-304).
Los siguientes ejemplos ilustran adicionalmente
la invención.
\newpage
Las abreviaturas que se usan son:
- Aad
- (ácido aminoadípico);
- Amb
- (aminometilbencilo);
- Amp
- (aminometilfenilalanina);
- Boc
- (terc-butoxicarbonilo);
- CSA
- (ácido canfosulfónico);
- CTH
- (hidrogenación por transferencia catalítica);
- DBU
- (1,8-diazabiciclo[5.4.0]undec-7-eno);
- DCC
- (diciclohexilcarbodiimida);
- DCM
- (diclorometano);
- DEAD
- (acetilenodicarboxilato de dietilo);
- DIEA
- (diisopropiletilamina);
- DMF
- (dimetilformamida);
- EMEM
- (medio esencial mínimo de Eagle con sal de Earle);
- Fm
- (fluorenilmetilo);
- Fmoc
- (9-fluorenilmetil-oxicarbonilo);
- HOBT
- (hidroxibenzotriazol);
- NMP
- (N-metil-pirrolidona);
- oNBS
- (2-nitrobencenosulfonato)
- PBS
- (solución salina tamponada de fosfato)
- Pht
- (ftaloilo);
- Pmc
- (pentametilcroman-6-sulfonilo);
- SDS
- (dodecilsulfato de sodio);
- TBTU
- (tetrafluorborato-O-benzotriazol-1-il-tetrametiluronio);
- TEA
- (trietilamina);
- Teg
- (trietilenglicol monometil éter); y
- TFA
- (ácido trifluoracético);
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
1
Se suspendieron 1,587 mmol de
Fmoc-Gly-Res (Res = Sasrin Resin®,
Bachem) con agitación en 75 ml de DMF durante 30 minutos, al cabo
de los cuales se añadieron 18 ml de piperidina, continuando la
agitación durante 30 minutos más. La resina, filtrada y lavada con
DMF, se suspendió en 50 ml de NMP
(N-metil-pirrolidona) durante 15
minutos, al cabo de los cuales se añadieron
Fmoc-Arg(Pmc)-OH, HOBT, TBTU
y DIEA (3,174 mmol de cada uno); después de 2 horas de agitación,
se filtró la suspensión y se lavó con DMF. Después de la
desprotección con piperidina, se repitió la condensación con los
otros aminoácidos en sucesión, operando cada vez como se describe
anteriormente, es decir:
Fmoc-Amp(Cbz)-OH,
Fmoc-D-Phe-OH, y
Fmoc-Asp(OtBu)-OH. Después de
la última desprotección del Fmoc N-terminal, se
libera el pentapéptido lineal de la resina con 45 ml de TFA al 1% en
DCM. Se disuelve en aproximadamente 1 l de CH_{3}CN, y se añaden
4,761 mmol de HOBT y TBTU, y 10 ml de DIEA; la disolución se deja
con agitación durante 30 minutos, se evapora el disolvente hasta
que quede un volumen pequeño y se completa la precipitación del
producto con agua.
El producto bruto filtrado se disolvió en
tioanisol (50 eq) y TFA (270 eq) y se dejó con agitación toda la
noche a temperatura ambiente.
La mezcla de reacción se llevó a sequedad y se
recogió el residuo con la mínima cantidad de TFA y se reprecipitó
con exceso de éter etílico. Finalmente, se purificó el producto
bruto mediante RP-HPLC [Columna: Alltima
C-18, Alltech; fase móvil: CH_{3}CN al 17% en
agua + 0,1% de TFA].
HPLC analítica: columna: Purosphere STAR, Merck;
fase móvil: CH_{3}CN al 15% en agua + 0,1% de TFA); Rt = 12,15
min.
Masa molecular = 652.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
2
Se trataron 0,69 mmol de
Fmoc-Gly-Res exactamente como se
describe en el ejemplo 1, con la diferencia de que en este caso,
los aminoácidos tercero y cuarto se añadieron en forma de dipéptido
Fmoc-D-Phe-Aad(OBzI)-OH.
Después de la desprotección del benciléster por medio de CTH, y
purificación de producto bruto con RP-HPLC
preparatoria (fase móvil: CH_{3}CN al 55% en agua + TFA al 1%; Rt
= 17,29 minutos), se obtuvieron 187 mg de péptido desprotegido
puro. Se disolvió en TFA y, después de 1 hora a temperatura
ambiente, la disolución se llevó a sequedad. El residuo se
redisolvió en la cantidad mínima de TFA y se precipitó con exceso de
éter etílico. Se repitió la operación hasta que se obtuvo el
producto final limpio.
RP-HPLC analítica (CH_{3}CN al
17% en agua + 0,1% de TFA); Rt = 12,52 min.
Masa molecular = 619.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
3
A una suspensión de
Fmoc-Phe(4Pht-N-CH_{2})-COOH
en tolueno anhidro, que se había llevado a reflujo, se añadieron 2
eq de CSA y 20 eq de paraformaldehído divididos en 4 porciones a
intervalos de 15 minutos. La mezcla se dejó enfriar, se diluyó con
120 ml de tolueno y se lavó con NaHCO_{3} al 5% y agua. Después de
evaporación del disolvente, el residuo se disolvió en 15 ml de
CHCl_{3} + 15 ml de TFA + 700 \mul de Et_{3}SiH; se dejó la
mezcla con agitación en la oscuridad durante 42 horas. Después de
evaporación del disolvente, se purificó el residuo mediante
filtración sobre gel de sílice. Rendimiento global: 90%.
El péptido lineal se sintetizó en fase sólida
según se describe en el ejemplo 1, insertando
Fmoc-N-Me-Phe-(4Pht-N-CH_{2})-COOH
como el tercer aminoácido, preparado como se ha descrito
anteriormente. En este caso las desprotecciones del terminal
N-Fmoc sobre la resina se llevaron a cabo con
disolución de diisopropilamina (300 eq) al 30% en DMF (debido a la
presencia de ftalimida). Después de la ciclación, se disolvieron 500
mg de péptido calentando en 10 ml de EtOH absoluto, a los que se
añadieron 0,9 ml de una disolución de
NH_{2}-NH_{2}\cdotH_{2}O 1M en etanol.
Después de calentar a reflujo durante 2 horas, se evaporó el
disolvente y se recogió el residuo con 10 ml de DCM + 10 ml de
disolución de Na_{2}CO_{3} con un batido vigoroso. Después de
evaporación de la fase orgánica, se purificó el residuo bruto
mediante RP-HPLC preparatoria (fase móvil:
CH_{3}CN al 17% en agua + TFA al 0,1%.
RP-HPLC analítica (CH_{3}CN al
16% en agua + TFA al 0,1%); Rt = 11,7 min.
Masa molecular = 665.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
4
Se disolvieron 120 mg de ciclopéptido
c[Arg(Pmc)-Gly-Asp(OtBu)-D-Phe-Amp]\cdotTFA
(preparado según se describe en el ejemplo 1) en 3,6 ml de una
mezcla de DCM-DMF 2:1, junto con una cantidad
estequiométrica de TEA y anhídrido succínico. Después de 1 hora se
diluyó la mezcla de reacción con 30 ml de DCM y se lavó con agua. La
fase orgánica, seca y concentrada, produjo un residuo de 100 mg de
hemisuccinato. Este producto se desprotegió completamente con TFA y
se sometió entonces a una primera purificación, según ya se ha
descrito en los ejemplos anteriores. Se purificó adicionalmente
entonces mediante RP-HPLC preparatoria (CH_{3}CN
al 20% en agua + TFA al 0,1%).
RP-HPLC analítica (CH_{3}CN al
20% en agua + TFA al 0,1%), Rt = 14,66 min.
Masa molecular = 751.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
5
A una disolución de 1,22 mmol de
p-xilenodiamina monoprotegida con Boc en 6 ml de THF
se añadieron 1,83 mmol de TEA y, gota a gota, una disolución de
1,22 mmol de bromoacetato de bencilo en 2 ml de THF. La mezcla se
dejó con agitación toda la noche, después de lo cual se evaporó el
disolvente y se purificó el residuo en una columna de cromatografía
rápida (CHCl_{3}-EtOAc, 9:1). Se obtuvieron 0,69
mmol de éster bencílico de
N-(4-Boc-NH-CH_{2}-bencil)-glicina.
Se disolvieron 250 mg de
Fmoc-D-Phe-OH en 27
ml de DCM y se añadieron 40 \mul de difosgeno y 230 \mul de
sim-colidina; después de 15 minutos, se añadieron
190 mg de éster previamente preparado, disueltos en 3 ml de DCM.
Después de 3 horas, se añadieron a la mezcla de reacción 80 \mul
de N-Me-piperazina y se agitó
durante 10 minutos, al cabo de los cuales se diluyó la mezcla con 10
ml de DCM y se hizo extracción con agua, HCl 0,5N, agua,
NaHCO_{3} al 5% y agua. Después de evaporación del disolvente, se
purificó el residuo mediante cromatografía rápida en gel de sílice
(DCM-EtOAc, 9:1). Rendimiento: 80%.
A 100 mg del producto así obtenido, disueltos en
6 ml de MeOH, se añadieron 76 \mul de AcOH y 42 mg de
HCOONH_{4}, y se enfrió la mezcla a 0ºC, y se añadieron 50 mg de
Pd/C al 10%. Después de 30 minutos, se filtró la mezcla de reacción
sobre celita. El filtrado se llevó a sequedad y se purificó en una
columna de cromatografía rápida (CHCl_{3}-MeOH,
9:1). Rendimiento 90%.
Se disolvieron 190 mg del producto así obtenido
en 1,2 ml de TFA y se llevaron a sequedad (desprotección de Boc);
el residuo se redisolvió en 9 ml de Na_{2}CO_{3} al 10% + 6 ml
de dioxano, se enfrió a 0ºC y se añadió gota a gota una disolución
de 120 \mul de cloruro de benciloxicarbonilo diluido con 3 ml de
dioxano. Después de 1 hora de agitación a temperatura ambiente, se
llevó a cabo evaporación al vacío hasta tener un volumen pequeño,
después de lo cual se diluyó la mezcla con agua, se redujo el pH a 1
con HCl y se hizo extracción con EtOAc. Después de evaporación del
disolvente, se purificó el residuo mediante filtración sobre gel de
sílice, y lavado con CHCl_{3}-MeOH (8:2).
Rendimiento de dipéptido puro: 82%.
Se trataron 0,69 mmol de
Fmoc-Gly-Res según se describe en el
ejemplo 1. Después de Arg, se añadió en secuencia el dipéptido
previamente preparado
Fmoc-D-Phe-N(4-Cbz-NH-CH_{2}-bencil)-Gly.
El producto bruto se disolvió en tioanisol y TFA y se dejó con
agitación a temperatura ambiente durante 4,5 horas. La primera
purificación se hizo según se describe en los otros ejemplo,
mientras que la purificación final se hizo con HPLC preparatoria
(fase móvil: CH_{3}CN al 16% en agua + TFA al 0,1%).
RP-HPLC analítica (CH_{3}CN al
15% en agua + TFA al 0,1%), Rt = 7,67 min.
Masa molecular = 652.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
6
A una disolución de 200 mg de
c(Arg(Pmc)-Gly-Asp(OtBu)-D-Phe-Amp]\cdotTFA
(obtenida según se describe en el ejemplo 1) en 4 ml de una mezcla
de DCM-DMF 3:1 se añadió un exceso sustancial de
diácido glicólico. Se añadieron a la misma disolución DIEA (3 eq) y
DCC (2 eq). La mezcla se dejó con agitación toda la noche, después
de lo cual se diluyó con DCM y se lavó con agua. El producto bruto
se recuperó evaporando la fase orgánica y se purificó mediante
cromatografía rápida (fase móvil: CHCl_{3}-MeOH
7:3 + AcOH al 1%); se agruparon las fracciones que contenían el
producto, se lavaron con agua, se deshidrataron y se llevaron a
sequedad, y produjeron un residuo de 157 mg de producto puro. Éste
se trató con TFA durante 1,5 horas y se limpió según se describe en
los otros ejemplos, después de lo cual se hizo la purificación final
mediante HPLC preparatoria (fase móvil: CH_{3}CN al 22% en agua +
TFA al 0,1%).
RP-HPLC analítica (CH_{3}CN al
23% en agua + TFA al 0,1%); Rt = 10 min.
Masa molecular = 855.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
7
Se disolvieron 150 mg del péptido que se
describe en el ejemplo 1 y 110 mg de PEG 600-COOFm
(1 eq) + HOAT (1,5 eq) + DIEA (2 eq) en 6 ml de una mezcla de
DCM-DMF (2:1) y se enfrió la disolución a 0ºC; se
añadieron 1,5 eq de DCC y la mezcla se dejó con agitación toda la
noche. Después de evaporación del disolvente, se purificó el
residuo en una columna de cromatografía rápida (etapa I:
CHCl_{3}-MeOH, 96:4; etapa II:
CHCl_{3}-MeOH, 90:10. Para la desprotección del
éster de fluorenilmetilo, se disolvieron 36 mg del éster en 1,8 ml
de CHCl_{3}, se añadieron 43 \mul (20 eq) de piperidina y se
dejó durante 1 noche a temperatura ambiente. Después de evaporación
del disolvente, se purificó el residuo bruto mediante HPLC
preparatoria (CH_{3}CN al 46% en agua + TFA al 0,1%). El producto
puro así obtenido se disolvió en TFA y se dejó durante 2 horas a
temperatura ambiente. Después de reducción a un volumen pequeño, el
producto totalmente desprotegido se precipitó con éter etílico en
exceso.
RP-HPLC analítica (CH_{3}CN al
26% en agua + TFA al 0,1%); Rt = 7,89-15,83 min.
Masa molecular = 1119.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
8
Se sintetizó este péptido en fase sólida según
se describe en el ejemplo 1, insertando
Fmoc-Amp(CO-CH_{2}-Teg)-OH
como tercer aminoácido, que se preparó como sigue:
- Se disolvieron 570 mg de CH_{3}O(CH_{2}CH_{2}O)_{3}-CH_{2}-COOH, 473 mg de 2,3,4,5-pentafluorfenol (Pfp) y 207 \mul de piridina con 11,4 ml de DCM. A la disolución, enfriada hasta 0ºC, se añadieron 637 mg de DCC y se dejó la mezcla de reacción con agitación durante 1,5 h. Después de filtración y lavado del filtrado con agua, HCl 1N, agua, NaHCO_{3} al 5% y agua, la disolución orgánica se llevó a sequedad, dando 984 mg del éster bruto.
A una suspensión de 500 mg de sal de TFA y
Fmoc-aminometilfenilalanina en 15 ml de DCM, se
añadieron 260 \mul de TEA seguidos de 800 mg de éster activado y
se dejó la mezcla con agitación durante 3 horas. Se purificó el
producto bruto mediante cromatografía rápida, produciendo el bloque
de síntesis puro.
El péptido cíclico final se purificó como
habitualmente y se aisló mediante HPLC preparatoria (CH_{3}CN al
27% en agua + TFA al 1%), Rt = 12,7 min.
Masa molecular = 855.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
9
Se diluyó el receptor de
\alpha_{\nu}\beta_{3} purificado (Chemicon, cat CC1020) en
tampón (Tris 20 mM, pH 7,4, NaCl 150 mM, CaCl_{2} 2 mM,
MgCl_{2} 1 mM, MnCl_{2} 1 mM) a una concentración de 0,5
\mug/ml. Se añadieron partes alícuotas de 100 \mul a placas de
96 pocillos y se incubaron toda la noche a +4ºC. Se lavaron las
placas una vez con tampón (Tris 50 mM, pH 7,4, NaCl 100 mM,
CaCl_{2} 2 mM, MgCl_{2} 1 mM, MnCl2 1 mM, albúmina de suero
bovino al 1%) y se incubaron entonces durante otras 2 horas a
temperatura ambiente. Se lavaron las placas dos veces con el mismo
tampón y se incubaron durante 3 horas a temperatura ambiente con el
ligando radiactivo [^{125}I] equistatina (Amersham Pharmacia
Biotech) 0,05 nM en presencia de ligandos de competencia. Al final
de incubación, se lavaron los pocillos, y se determinó la
radiactividad usando un contador de radiación gamma (Packard). Se
determinó la unión no específica del ligando en presencia de exceso
de equistatina fría (1 \muM).
Se diluyó el receptor de
\alpha_{\nu}\beta_{5} purificado (Chemicon, cat DCC1020) en
tampón (Tris 20 mM, pH 7,4, NaCl 150 mM, CaCl_{2} 2 mM,
MgCl_{2} 1 mM, MnCl_{2} 1 mM) a una concentración de 1
\mug/ml. Se añadieron partes alícuotas de 100 \mul a placas de
96 pocillos y se incubaron toda la noche a +4ºC. Se lavaron las
placas una vez con tampón (Tris 50 mM, pH 7,4, NaCl 100 mM,
CaCl_{2} 2 mM, MgCl_{2} 1 mM, MnCl_{2} 1 mM, albúmina de
suero bovino al 1%) y se incubaron entonces durante otras 2 horas a
temperatura ambiente. Se lavaron las placas dos veces con el mismo
tampón y se incubaron durante 3 horas a temperatura ambiente con el
ligando radiactivo [^{125}I] equistatina (Amersham Pharmacia
Biotech) 0,15 nM en presencia de ligandos de competencia. Al final
de incubación, se lavaron los pocillos, y se determinó la
radiactividad usando un contador de radiación gamma (Packard). Se
determinó la unión no específica del ligando en presencia de exceso
de equistatina fría (1 \muM).
La afinidad de los productos para receptores de
vitronectina se expresó como índice IC_{50} \pmSD, es decir,
como la concentración capaz de inhibir 50% de la unión específica
receptor- radioligando. El parámetro IC_{50} se elaboró usando el
programa de ordenador "ALLFIT"
Todos los péptidos RGD examinados mostraron
afinidad significativa para receptores de integrina
\alpha_{\nu}\beta_{3} y \alpha_{\nu}\beta_{5} con
un índice IC_{50} del orden de nanomoles. En particular, el más
activo en la inhibición de la unión de equistatina a integrinas
\alpha_{\nu}\beta_{3} fue ST2581 (IC_{50} = 1,7 nM)
seguido por los productos ST 2661 y ST2700 (IC_{50} = 4 y 7 nM)
mientras que el más activo para receptores de integrina
\alpha_{\nu}\beta_{5} fue el producto ST2650 (IC_{50} =
0,17 nM) seguido por las moléculas ST2661 y ST2700 (IC_{50} =
0,35 y 0,99 nM, respectivamente).
Aunque la función principal de las integrinas es
mediar la adhesión celular a proteínas ECM en espacios celulares y
membranas basales también transducen señales intracelulares que
fomentan la migración, así como la supervivencia, celular. Las
integrinas no tienen actividad enzimática intrínseca pero activan
los sistemas de transducción de señales mediante
co-agrupación con quinasas y proteínas adaptadoras
en complejos de adición focal después de su asociación con
proteínas polivalentes de la matriz extracelular (ECM). Por ejemplo,
la ligación de integrina suprime apoptosis activando los supresores
de apoptosis e inhibiendo la activación de caspasa. La integrina
también estimula la migración celular activando las GTPasas Rho y
Rac (guanosina trifosfatasas) y anclando filamentos de actina a la
membrana. Estas proteínas de adhesión fomentan la entrada en el
ciclo celular estimulando la expresión de ciclinas. Por lo tanto,
la ligación de integrina soporta cascadas de transducción de señales
que fomentan proliferación, supervivencia y migración de células.
En contraposición, la inhibición de la interacción del ligando con
la integrina celular, inhibe la migración y la proliferación de las
células e induce apoptosis (Jin H. y Varner J. 2004 Br. J. Cancer
90, 561-565).
Se hicieron crecer células de carcinoma ovárico
humano A2780 y de carcinoma de próstata PC3 en RPMI 1640 que
contenía 10% de suero bovino fetal y 50 \mug/ml de sulfato de
gentamicina. Se hizo crecer carcinoma renal humano A498 en ENEM que
contenía 10% de suero bovino fetal y 50 \mug/ml de sulfato de
gentamicina. Todas las células se mantuvieron en una incubadora a
37ºC saturada de humedad y con una atmósfera de 95% de aire y 5% de
CO_{2}.
La línea celular A2780 expresa niveles altos de
integrinas \alpha_{\nu}\beta_{5}, A498 niveles altos de
integrinas \alpha_{\nu}\beta_{3}, y PC3 niveles bajos de
ambas integrinas.
Para comprobar el efecto del fármaco sobre la
adhesión celular, se incubó la densidad celular apropiada
(40000-50000 células por pocillo) para cada línea
de célula tumoral con diferentes concentraciones de los compuestos
en placas de cultivo tisular de 96 pocillos revestidas con
vitronectina (5 \mu/ml) y se dejó que se unieran durante 3 horas.
Al cabo de este tiempo, se lavaron las células una vez con PBS que
contenía Ca^{2+} y Mg^{2+}. Las células tumorales se fijaron
con paraformaldehído al 4% durante 10 minutos a temperatura ambiente
y se tiñeron con azul de toluidina al 1% durante 10 minutos a
temperatura ambiente. Se lavaron las células tumorales con agua
bidestilada, se secaron y se solubilizaron con SDS al 1%. Se
determinó el número de células adheridas con un lector de
microplacas (Victor2, EG&G Wallac) a 600 nm.
Se evaluó el índice IC_{50} como parámetro
para medir el efecto de inhibición de las moléculas sobre la
adhesión de células tumorales a vitronectina usando el programa de
ordenador "ALLFIT". Los resultados obtenidos con los
compuestos probados según la invención se presentan en la Tabla
2.
Claims (15)
1. Péptidos cíclicos que tienen la siguiente
Fórmula I:
(Fórmula
I)c(R_{1}-Arg-Gly-Asp-R_{2})
en la
que:
- c significa cíclico;
- R_{1} un aminoácido con fórmula general: -NX-CY(Z)-CO-; en la que
- X se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, alquilo C_{1}-C_{6} lineal o ramificado, arilo C_{6}-C_{10}, bencilo, (CH_{2})_{n}-COR, (CH_{2})_{n}-NHR', 4-COR-bencilo, 4-(CH_{2}-NHR')-bencilo; en la que n es un número entero de 1 a 5;
- Y se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, CH_{m}F_{m'}; en la que m + m' = 3, en que m y m' son números enteros de 0 a 3;
- Z se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, (CH_{2})_{n1}-NHR', 4-NHR'-(CH_{2})_{n1}-bencilo, 4-COR-bencilo, en la que n_{1} es un número entero de 0 a 5;
- R se selecciona entre el grupo que está constituido por: W, OW, N[CH_{2}-CO-NH-CH_{2}-O-(CH_{2}CH_{2}O)_{n2}-CH_{2}-COOW]_{2}, NH-CH_{2}-O-(CH_{2}CH_{2}O)_{n2}-CH_{2}-COOW, NW-(CH_{2}-CH_{2}NH)_{n2}-CH_{2}-CH_{2}NHW; en las que n_{2} es un número entero de 1 a 22; y
- W se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, alquilo C_{1}-C_{3};
- R' se selecciona entre el grupo que está constituido por: H, CO-(CH_{2})_{n2}-COOW, CO-CH_{2}-O-(CH_{2}CH_{2} O)_{n2}-CH_{2}-NHW, CO-CH_{2}-O-(CH_{2}CH_{2}O)_{n2}-CH_{2}-COOW: en las que n_{2} tiene el significado que se ha reseñado anteriormente; y
- R_{2} se selecciona entre el grupo que está constituido por: D-Phe, D-4-terc-butil-Phe, D-4-CF_{3}-Phe, D-4-acetilamina-Phe;
- sus mezclas racémicas, sus enantiómeros individuales, sus diastereoisómeros individuales y sus sales farmacéuticamente aceptables.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Un compuesto según la reivindicación 1
seleccionado entre el grupo que está constituido por:
- c(Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp);
- c(Arg-Gly-Asp-D-Phe-N-Me-Amp);
- c[Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp-CO(CH_{2})_{2}COOH];
- c(Arg-Gly-Asp-D-Phe-N-Amb-Gly);
- c[Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp-(CO-CH_{2}-(O-CH_{2}-CH_{2})_{2}-O-CH_{2}-COOH)];
- c[Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp-(CO-CH_{2}-(OCH_{2}CH_{2})_{8}-OCH_{2}-COOH)].
\vskip1.000000\baselineskip
3. Un compuesto de fórmula:
- c[Arg-Gly-Asp-D-Phe-Amp(CO-CH_{2}-(OCH_{2}-CH_{2})_{3}OCH_{3})];
- c(Arg-Gly-Asp-D-Phe-Aad).
\vskip1.000000\baselineskip
4. Procedimiento para la preparación de los
compuestos según las reivindicaciones 1-3 que
comprende la síntesis del péptido lineal y su posterior
ciclación.
5. Procedimiento según la reivindicación 4, en
el que la síntesis del péptido se realiza en fase sólida o en
disolución.
6. Uso del compuesto según las reivindicaciones
1-3 para la preparación de medicamentos.
7. Composiciones farmacéuticas que contienen al
menos un compuesto según la reivindicación 1 ó 2 ó 3 en mezclas con
al menos un excipiente o vehículo farmacéuticamente aceptable.
8. Composiciones según la reivindicación 7, que
contienen adicionalmente un fármaco que está selecciono entre el
grupo que está constituido por agentes anticáncer, antiparasitarios
o antivirales, bien en formas de dosificación separada o única.
9. Uso de compuestos según las reivindicaciones
1-3 para la preparación de un medicamento con
actividad inhibidora de receptor de integrina.
10. Uso según la reivindicación 9, en el que
dicho medicamento es útil para el tratamiento de enfermedades que
se derivan de angiogénesis anormal.
11. Uso según la reivindicación 10, en el que
dicha enfermedad se selecciona entre el grupo que está constituido
por tumores que sobreexpresan integrinas, tanto natural como
inducida, formas inflamatorias (por ejemplo artritis reumatoide),
enfermedades oculares, retinopatía, insuficiencia renal aguda,
osteoporosis y metástasis, enfermedades cardiovasculares (infarto y
lesión cardíaca).
12. Uso de compuestos según las reivindicaciones
1-3 para la preparación de un medicamento con
actividad antiparasitaria por medio de inhibición de integrina.
13. Composición que contiene un derivado
radiomarcado de un compuesto según una de las reivindicaciones 1 ó
2, ó 3.
14. Uso de un derivado radiomarcado de un
compuesto según una de las reivindicaciones 1 ó 2, ó 3 para la
preparación de un agente de diagnóstico.
15. Uso según la reivindicación 14, en el que se
usa dicho agente de diagnóstico para la detección de masas
tumorales pequeñas o episodios de oclusión arterial.
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