ES2292187T3 - Aislamiento, propagacion y diferenciacion dirigida de celulas madre del sistema nervioso central de mamiferos. - Google Patents

Aislamiento, propagacion y diferenciacion dirigida de celulas madre del sistema nervioso central de mamiferos. Download PDF

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Abstract

LA PRESENTE INVENCION DESCRIBE UN PROCEDIMIENTO IN VITRO MEDIANTE EL CUAL UNA POBLACION HOMOGENEA DE CELULAS PRECURSORAS PLURIPOTENCIALES PROCEDENTES DEL NEUROEPITELIO EMBRIONICO DE MAMIFEROS (CELULAS MADRE SNC), SE PUEDE MULTIPLICAR HASTA 10 SUP,9 VECES EN CULTIVO, MANTENIENDO SIMULTANEAMENTE SU CAPACIDAD DE DIFERENCIARSE EN NEURONAS, OLIGODENDROCITOS Y ASTROCITOS. SE PRESENTAN CONDICIONES QUIMICAMENTE DEFINIDAS, QUE PERMITEN DERIVAR UN GRAN NUMERO DE NEURONAS, HASTA EL 50 % DE LAS CELULAS MULTIPLICADAS, A PARTIR DE LAS CELULAS MADRE. ADEMAS, SE HAN IDENTIFICADO CUATRO FACTORES - PDGF, CNTF, LIF Y T3 - QUE GENERAN, INDIVIDUALMENTE, UNA PROPORCION SIGNIFICATIVAMENTE MAYOR DE NEURONAS, ASTROCITOS U OLIGODENDROCITOS. DICHOS PROCEDIMIENTOS DEFINIDOS PERMITEN UNA PREPARACION A GRAN ESCALA DE CELULAS MADRE DEL SNC, NEURONAS, ASTROCITOS Y OLIGODENDROCITOS, BAJO CONDICIONES DEFINIDAS QUIMICAMENTE, CON EFICIENCIA Y CONTROL. LA PRESENTE INVENCION PRESENTA ASIMISMO CULTIVOS IN VITRO DE NEURONAS MADURAS, DIFERENCIADAS EN ESTADO TERMINAL, ESPECIFICAS DE ZONA, DERIVADAS DE CULTIVOS DE CELULAS MADRE SNC PLURIPOTENCIALES, Y TAMBIEN UN PROCEDIMIENTO IN VITRO MEDIANTE EL CUAL SE PUEDEN PRODUCIR NEURONAS DIFERENCIADAS.

Description

Aislamiento, propagación y diferenciación dirigida de células madre del sistema nervioso central de mamíferos.
Antecedentes de la invención 1. Campo de la invención
La presente invención se refiere a una tecnología en la que se aíslan células madre procedentes de cerebro embrionario y adulto, se propagan y se diferencian eficientemente en cultivo para generar grandes números de células nerviosas. Esta tecnología, por vez primera, permite generar grandes números de muchos tipos diferentes de neuronas que se encuentran en un cerebro normal y proporciona una nueva base para la terapia génica, la terapia de células, un nuevo rastreo de factores de crecimiento y un rastreo de fármacos para trastornos del sistema nervioso.
2. Descripción de la técnica relacionada
El cerebro está constituido por tipos de células nerviosas muy diversos que realizan interconexiones específicas y que, una vez destruidas, no regeneran a las células nerviosas (neuronas). Además, el cerebro está protegido por una barrera de sangre-cerebro (hematoencefálica) que bloquea eficazmente el flujo de grandes moléculas al cerebro, haciendo ineficaz la inyección periférica de potenciales fármacos para el factor de crecimiento. Así, un reto principal al que se enfrenta actualmente la industria biotecnológica consiste en encontrar un mecanismo eficaz para suministrar potenciales productos de terapia génica directamente al cerebro con el fin de tratar trastornos del sistema nervioso.
Además, para una enfermedad degenerativa tal como el Parkinson, el enfoque más amplio para recuperar una función neuronal perdida puede ser reemplazar las células dañadas por células sanas más que simplemente un producto génico sencillo. Así, el éxito actual y futuro de la terapia génica y la terapia de células depende del desarrollo de células adecuadas que (1) puedan portar una copia sana de un gen enfermizo (es decir, un gen normal), (2) puedan ser trasplantadas al cerebro y (3) puedan ser integradas en la red neuronal del hospedante. Este desarrollo requiere de manera ideal células de origen neuronal que (1) proliferen en cultivo hasta formar un gran número, (2) sean susceptibles a diversos métodos de transferencia de genes y (3) se integren y comporten como las células de un cerebro normal. Sin embargo, no ha habido este tipo de células para fines terapéuticos, ya que las neuronas no se dividen y, por lo tanto, no se pueden propagar en cultivo.
Como alternativas, diversas células transformadas de orígenes neurales y no neurales tales como glias, fibroblastos, e incluso células de la musculatura, que pueden proliferar en cultivo, se han utilizado como posibles vehículos para suministrar un gen de interés a las células del cerebro. Sin embargo, no se espera y no se puede esperar que células de este tipo proporcionen funciones neuronales. Otro enfoque alternativo ha sido obligar a una célula neural de origen desconocido a dividirse en cultivo modificando genéticamente alguna de sus propiedades, al tiempo que conserve algo de su capacidad de convertirse y funcionar como una neurona. A pesar de que algunas células "inmortalizadas" pueden exhibir determinadas características de una neurona, no está claro si estas células alteradas son ciertamente una alternativa viable para fines clínicos.
Un cerebro fetal en desarrollo contiene la totalidad de las células germinales para las células de un cerebro adulto, así como todos los programas necesarios para orquestarlos hacia la red final de neuronas. En las fases tempranas de desarrollo, el sistema nervioso está poblado por células germinales, de las que todas las otras células, principalmente neuronas, astrocitos y oligodendrocitos, se derivan durante las subsiguientes fases de desarrollo. Claramente, células germinales de este tipo, que son precursores del desarrollo normal del cerebro serían ideales para todas las terapias basadas en genes y basadas en células, si estas células germinales pudieran aislarse, propagarse y diferenciarse en tipos de células maduras.
La utilidad de las células primarias aisladas, tanto para la investigación básica como para la aplicación terapéutica depende del grado al que las células aisladas se asemejen a las del cerebro. Se desconoce cuántos tipos diferentes de células precursoras existen en el cerebro en desarrollo. Sin embargo, pueden existir varios tipos de células distintos:
un precursor a neuronas únicamente ("progenitor neuronal comprometido" o "neuroblasto"),
un precursor a oligodendrocitos solamente ("oligodendroblasto"),
un precursor a astrocitos solamente ("astroblasto"),
un precursor bipotencial que puede convertirse en neurona u oligodendrocito, neurona o astrocito y oligodendrocito o astrocito, y
un precursor multipotencial que conserva la capacidad de diferenciarse en uno cualquiera de los tres tipos de células.
El análisis del mapeo de destino y estudios de trasplante in vivo han demostrado que diferentes tipos neuronales y células no neuronales se pueden derivar de las mismas células precursoras^{1-5}. Análisis in vitro han sugerido también que células multipotenciales están presentes en el cerebro en desarrollo^{6,7}. Sin embargo, el análisis del linaje solo no identifica directamente las células multipotenciales; y tampoco define los mecanismos que pueden impulsarlas a diferentes destinos. Células precursoras procedentes del sistema nervioso central (SNC) se han expandido in vitro y se ha observado^{8-12} una diferenciación en neuronas y glia y, según se detalla más abajo, se han obtenido tipos de células acusadamente diferentes, incluso cuando las condiciones del cultivo utilizadas eran aparentemente las
mismas.
Debido a la actual falta de comprensión de la histogénesis durante el desarrollo del cerebro, muchos investigadores han utilizado diversos términos sueltos para describir las células que han estudiado, por ejemplo progenitor neuronal, precursor neural, precursor neuroepitelial, célula madre multipotencial, etc. Así, la naturaleza de las células descrita hasta la fecha en la bibliografía y las condiciones de cultivo para obtenerlas únicamente se puede comparar una con otra por su capacidad de diferenciación reseñada. El objeto completo del aislamiento, caracterización y uso de células madre procedentes del SNC ha sido recientemente revisado^{33, \ 34, \ 38}.
En resumen, hasta la fecha no se han encontrado condiciones, a pesar de muchos informes, de identificar, propagar y diferenciar con éxito células madre multipotenciales. Una recopilación útil de estudios que informan del cultivo de células precursoras del SNC se encuentra en la Tabla 3, pág. 172 de una revisión reciente^{34} y que se ofrece adicionalmente en lo que sigue.
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Vicario-Abejon, C., Johe, K., Hazel, T., Collazo, D. y McKay, R., Functions of basic fibroblast growth factor and neurotrophins in the differentiation of hippocampal neurons, Neuron 15, 105-114 (1995)^{12}.
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Células expandidas por Vicario-Abejon et al. son significativamente diferentes de las descritas en la presente invención, a pesar de que el tejido de partida (hipocampo embrionario), el mitógeno (factor de crecimiento fibroblastico básico, bFGF - siglas en inglés), y el medio basal(N2) son similares en ambos informes. Casi todas las células expandidas por Vicario-Abejon et al. fracasaron en diferenciarse en cualesquiera tipos de células, y murieron en ausencia de bFGF (tal como se establece en el documento, pág. 106). Esto también se refleja en la Fig. 3 del documento en el que el número de neuronas MAP2 positivas es excesivamente bajo (50-100 células de un número inicial de células de aproximadamente 80.000 por pocillo; es decir, bastante menos del 1% en todas las condiciones reseñadas). Así, diferencias en las condiciones del cultivo, sutiles como pueden ser, pueden proporcionar células con propiedades significativamente diferentes, y esto, de hecho, es consistente con la observación principal de la presente invención de que el entorno extracelular puede desplazar las propiedades de desarrollo de las células madre del SNC.
Vicario-Abejon et al. utilizaron las siguientes condiciones de cultivo que difieren de las descritas en la presente invención:
1. Utilizaron una disociación enzimática, tripsina al 0,1-0,25% + DNAasa I al 0,4% para la disociación inicial del tejido, así como para el subsiguiente pase. La presente invención, la disociación enzimática provoca efectivamente la proteolisis de receptores de FGF y determina que las células no respondan a bFGF y conduce a la diferenciación.
2. Utilizaron suero de bovino fetal al 10% para detener la actividad de tripsina y para cebar a las células desde 4 horas hasta durante una noche antes de cambiar a un medio exento de suero. En la presente invención, el suero, incluso a una concentración menor que 1%, desplaza las células madre a un destino astrocítico.
3. Las células se sembraron a una mucho mayor densidad de 45.000 células por cm^{2} y luego se hicieron crecer hasta confluencia antes del pase por tripsina y suero. En la presente invención, una alta densidad de células inhibe la proliferación y provoca una diferenciación espontánea, incluso en presencia de bFGF.
4. bFGF fue administrado sólo intermitentemente cada 2-3 días, y a 5 ng/ml, menor que la concentración óptima descrita en la presente invención. Esta condición conduce a una diferenciación parcial de las células y una subsiguiente heterogeneidad de los tipos de células en el cultivo.
5. El medio basal, consistente en componentes "N2", consistía en 5 ng/ml de insulina, menor que la concentración óptima descrita en la presente invención.
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Ray, J., Peterson, D., Schinstine, M. y Gage, F., Proliferation, differentiation, and long-term culture of primary hippocampal neurons. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90, 3602-36-06 (1993)^{10}. 
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Este estudio utilizó condiciones de cultivo que son muy similares a las descritas por Vicario-Abejon et al. -bFGF como el mitógeno primario, medio exento de suero e hipocampo E16 (edad embrionaria 16 días). Sin embargo, informa del aislamiento y la expansión de una población precursora (neuroblastos) bastante diferentes de las células de Vicario-Abejon et al. (no definido), así como las células madre multipotenciales descritas en la presente invención. Las células reseñadas tenían las siguientes propiedades que contrastaban acusadamente con las de células madre del SNC:
1. Las células expandidas bajo la condición reseñada son neuronas mitóticas con expresiones antigénicas de neurofilamento, nestina, enolasa específica para neuronas, galactocerebrósido y MAP2 (Tabla I, pág. 3604). Las células madre del SNC en expansión reseñadas en la presente invención expresan nestina solamente, son negativas para los an-
tígenos anteriores y, por lo tanto, son una población de células molecularmente distintas de las descritas por Ray et al.
2. El análisis ultraestructural de las células expandidas en cultivo "demostró su morfología neuronal histotípica". Las células madre del SNC en expansión exhibían una morfología no neuronal, completamente diferente.
3. Las "neuronas" mitóticas tenían un tiempo de duplicación de 4 días y podían ser pasadas y desarrolladas en forma de líneas de células continuas. Las células madre del SNC se duplican cada 20-24 horas y exhiben una regresión característica de la capacidad mitótica y de diferenciación a lo largo del tiempo, de modo que no pueden mantenerse indefinidamente como líneas de células estables.
4. El sistema de cultivo desarrollado por Ray et al. genera "cultivos de células neuronales casi puros". El sistema de cultivo en la presente invención genera células madre multipotenciales que pueden diferenciarse en los tres tipos de células principales del cerebro, es decir neuronas, oligodendrocitos y astrocitos.
Ray et al. utilizaron las siguientes condiciones de cultivo que difieren de los de la presente invención.
1. Los hipocampos embrionarios se trituraron mecánicamente sin el uso de una enzima; sin embargo, las células se extendieron en placas a aproximadamente 100.000 células por cm^{2}, óptimo para la supervivencia neuronal, pero una densidad de células casi 10 veces mayor que la óptima para la expansión de células madre del SNC.
2. bFGF fue administrado a razón de 20 ng/ml, intermitentemente, cada 3-4 días.
3. El medio "N2" basal contenía 5 \mug/ml de insulina, menor que el óptimo. El cambio de medio también se prolongó cada 3-4 días.
4. Las células se hicieron pasar utilizando tripsina.
En definitiva, incluso diferencias aparentemente pequeñas en las condiciones del cultivo pueden dar como resultado un aislamiento de tipos de células muy diferentes.
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Ray, J. y Gage, F.H., Spinal cord neuroblasts proliferate in response to basic fibroblast growth factor, J. Neurosci. 14, 3548-3564 (1994)^{39}. 
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Ray y Gage informan del aislamiento y la propagación de células "que ya han sido comprometidas a una vía neuronal son y expresan fenotipos neuronales (neuroblastos)" procedentes de la médula espinal utilizando bFGF. De nuevo, a pesar de que el mitógeno primario es bFGF, sus condiciones de cultivo son diferentes y obtenían células acusadamente diferentes de las células madre del SNC.
1. Se utilizó médula espinal E14-E16, una fase mucho más tardía de desarrollo que la óptima para las células madre.
2. El tejido se disoció enzimáticamente mediante papaína y DNasa.
3. La extensión inicial en placas se realizó en suero de bovino fetal al 10%.
4. Hubo un enriquecimiento preliminar de una población de células no adherentes.
5. Hubo un cambio de medio intermitente y un suplemento de bFGF cada 3-4 días.
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Gage, F.H., Coates, P.W., Palmer, T.D., Kuhn, H.G., Fisher, L.J., Suhonen, J.O., Peterson, D.A., Suhr, S.T. y Ray, J., Survival and differentiation of adult neuronal progenitor cells transplanted to the adult brain, Proc. Nat. Acad. Sci. USA 92, 11879-11883 (1995)^{35}. 
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Gage et al. informaron del aislamiento, la propagación y el trasplante de células procedentes del hipocampo adulto. Estas mezclas de células se mantuvieron en cultivo durante un año a través de múltiples pases. El 80% de ellas exhibían propiedades más bien inusuales tal como la co-expresión de antígenos gliales y neuronales, al tiempo que seguían siendo mitóticas. Estas propiedades no son exhibidas por las células madre aisladas de la zona subventricular estriada adulta.
De nuevo, utilizando bFGF como un mitógeno primario, los autores derivaron células acusadamente diferentes de las células madre del SNC reseñadas en la presente invención.
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Gritti, A. et al., Multipotential stem cells from the adult mouse brain proliferate and self-renew in response to basic fibroblast growth factor, J. Neurosci. 16, 1091-1100 (1996)^{40}. 
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Estos autores informan del aislamiento y la propagación de células madre multipotenciales procedentes de la zona subventricular del cerebro adulto utilizando bFGF. Una diferencia significativa en las condiciones de cultivo utilizadas por Gritti et al. es que las células se propagan en forma de esferas agregadas sin la fijación a la superficie de la placa. Las condiciones de cultivo desarrolladas por Gritti et al. requieren esta agregación de células para formar esferas, utilizando bFGF o factor de crecimiento epidérmico (EGF- siglas en inglés) como una etapa esencial para la propagación de células multipotenciales. Esta etapa de agregación sola distingue esencialmente al sistema de cultivo reseñado del de la presente invención. La agregación fomenta interacciones célula-célula indefinidas y da como resultado desplazamientos incontrolables de diferenciación/destino y, en su conjunto, una mucho menor expansión y diferenciación. Además, este sistema de cultivo y el resultado obtenido por Gritti et al. se limitan al cerebro adulto en donde se obtuvo un número extremadamente pequeño de células (10^{5} células por cerebro) y no han sido extendidas a diversas regiones del cerebro embrionario.
El proceso en la presente invención permite la propagación de células madre por todo el SNC en desarrollo así como el cuerpo estriado del cerebro adulto. También utiliza un cultivo adherente y evita activamente el contacto célula-célula y una alta densidad de células. Como resultado, permite una expansión mucho más eficaz de las células en un estado multipotencial no diferenciado y un control mucho más preciso y eficaz sobre la diferenciación de las células expandidas.
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Reynolds, B. y Weiss, S., Generation of neurons and astrocytes fron isolated cells of the adult mammalian central nervous system, Science 255, 1707-1710 (1992)^{15}. Reynolds, B., Tetzlaff, W. y Weiss, S., A multipotent EGF-responsive striatal embryonic progenitor cell produces neurons and astrocytes, J. Neurosci. 12, 4565-4574 (1992)^{9}. Vescovi, A.L., Reynolds, B.A., Fraser, D.D., y Weiss, S., bFGF regulates the proliferative fate of unipotent (neuronal) and bipotent (neuronal/astroglial) EGF-generated CNS progenitor cells, Neuron 11, 951-966 (1993)^{41}. 
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Estos tres estudios describen los cultivos en esfera originales de células precursoras neurales procedentes de cerebro adulto y embrionario utilizando EGF (factor de crecimiento epidérmico). Las células expandidas se diferencian en neuronas y astrocitos, pero no en oligodendrocitos y, así, se piensa que son una población bipotencial más que multipotencial. Otra propiedad diferenciadora de las células es que responden solamente a EGF y no a bFGF en particular, mientras que las células madre del SNC responden de modo similar tanto a EGF como bFGF. De nuevo, las condiciones del cultivo en esfera no son equiparables con las empleadas en la presente invención, ya que requieren una agregación de células en las que se espera que se produzcan muchas interacciones adicionales no defi-
nidas.
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Ahmed, S., Reynolds, B.A., y Weiss, S., BDNF enhances the differentiation but not the survival of CNS stem cell-derived neuronal precursors, J. Neurosci. 15, 5765-5778 (1995)^{42}. 
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Este documento informa de los efectos del factor de crecimiento derivado del cerebro (BDNF- siglas en inglés) sobre cultivos en esfera de células precursoras neurales embrionarias propagadas con EGF. No existe ningún refuerzo adicional del sistema de cultivo per se.
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Svendsen, c. N., Fawcett, J.W., Bentlage, C. y Dunnett, S.B., Increased survival of rat EGF-generated CNS precursor cells using B27 supplemented medium, Exp. Brain Res. 102, 407-414 (1995)^{36}. 
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Este estudio utiliza el cultivo en esfera con EGF según se describe antes para someter a ensayo un suplemento del medio comercialmente disponible, denominado "B27". El estudio informa simplemente que el uso de B27 refuerza la supervivencia de células (no la supervivencia neuronal) en un cultivo mixto que contiene neuronas, astrocitos y oligodendrocitos.
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Kilpatrick, T. J. y Bartlett, P. F., Cloning and growth of multipotential neural precursors: requirements for proliferation and differentiation. Neuron 10, 255-265 (1993)^{43}. 
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Los autores informan de la existencia de células precursoras multipotenciales en el telencéfalo de ratón E10 al cultivar células sencillas procedentes del cerebro en bFGF más suero. Los resultados se basaron en 700 células expandidas clonalmente durante 10 días, algunas de las cuales, cuando se diferencian en presencia de medio acondicionado con bFGF, suero y astrocitos, podían dar lugar a neuronas. No había una expansión en masa de las células.
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Kilpatrick, T.J. y Bartlett, P.F., Cloned multipotential precursors from the mouse cerebrum require FGF-2, whereas glial restricted precursors are stimulated with either FGF-2 or EGF, J. Neurosci. 15, 3653-3661 (1995)^{44}. 
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Los autores utilizan el sistema de cultivo clonal reseñado en la referencia^{43} antes descrita para someter a ensayo la eficacia mitogénica de bFGF y EGF sobre las células corticales procedentes de embriones E10 y E17. De nuevo, la condición de cultivo se aplica estrictamente a microcultivo en medio con contenido en suero para demostrar la existencia de diferentes células precursoras en el cerebro en desarrollo. No existe ninguna expansión en masa, cultivo a largo plazo ni protocolo de diferenciación sistémico.
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Baetge, E.E. Neural stem cells for CNS transplantation, Ann. N. Y. Acad. Sci. 695, 285 (1993)^{45}. 
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Este es un documento de revisión breve que resume diversos estudios dirigidos para aislar células precursoras y sus derivados en cultivo. Está de alguna manera anticuado y la mayoría de los estudios originales relevantes citados han sido comentados anteriormente.
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Bartlett, P.F. et al., Regulation of neural precursor differentiation in the embryonic and adult forebrain, Clin. Exp. Pharm. Physiol. 22, 559-562 (1995)^{46}. 
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Este es también un documento de revisión breve que resume mayoritariamente trabajos previos procedentes del laboratorio de los autores en relación con sus estudios de microcultivo en los que potenciales de diferenciación de determinados clones de precursores se someten a ensayo en presencia de medio acondicionado con FGF de carácter ácido (aFGF), bFGF, suero y/o astrictos.
Además, Sabate et al.^{32} informaron del cultivo de un progenitor neural humano con una capacidad de diferenciación indefinida. Davis y Temple^{6} demostraron la existencia de células madre multipotenciales en la corteza mediante el co-cultivo con células epiteliales durante un breve plazo (menos de 100 células en su totalidad).
Sin embargo, la diferenciación de las células no podía controlarse en ninguno de los informes reseñados que excluían el análisis de sus relaciones de linaje y los mecanismos que regulaban la elección del destino.
La presente invención proporciona un método para propagar eficazmente las células germinales no diferenciadas, es decir las células madre del sistema nervioso central (SNC), en cultivo y define condiciones para convertir eficazmente las células no diferenciadas en tipos de células maduras. Estas células no diferenciadas o "células madre del SNC" exhiben la capacidad multipotencial para diferenciarse en los tres tipos de células principales de un cerebro maduro - neuronas, astrocitos y oligodendrocitos. Además de ello, las mismas condiciones de cultivo permiten el aislamiento, la expansión y diferenciación de células multipotenciales equivalentes procedentes del cerebro adulto.
Desde la descripción inicial, han aparecido informes adicionales. La investigación más reciente y el uso de células madre del SNC y progenitores neurales han sido revisados^{47-52} adicionalmente. Además, Reynolds y Weiss^{53} informaron que progenitores estriados embrionarios, generados en forma de esferas que utilizaban EGF, eran capaces de diferenciarse en los tres tipos de células que incluían oligodendrocitos, astrocitos y neuronas. La frecuencia de las células que responden a EGF quedaba limitada a solamente el 1% del cultivo primario inicial. La subclonación para establecer una autorrenovación era cuestionable, ya que se utilizaron hasta 500 células/pocillo para generar los "clones" secundarios. La diferenciación de las células se indujo incorporando suero al 1% en el medio. Sin embargo, a partir de los clones derivados de células sencillas no se presentaron datos que demostraran los tres tipos de células.
Weiss et al.^{54} informaron que las células madre del SNC multipotenciales podrían aislarse a partir de la médula espinal adulta y de los tercero y cuarto ventrículos utilizando una combinación de EGF y bFGF, pero no con uno cualquiera solo.
Svendsen et al.^{55} informaron que células precursoras neurales aisladas del cuerpo estriado del mesencéfalo de embriones de ratas de 16 días de edad (E16), cuando se injertaban en cerebros de rata adultos lesionados, no eran capaces de diferenciarse en neuronas. También informaron que las células del mesencéfalo generadas por EGF, pero no las células estriadas se diferenciaban en neuronas tirosina-hidroxilasa (TH)-positivas, si bien en un número muy bajo (0,002%). No existía ninguna caracterización de células in vitro para asegurar que el cultivo primario utilizado no contuviera neuronas post-mitóticas trasladadas desde el tejido, especialmente dado el hecho de que el resultado sólo se podía obtener con tejido E16, cuando la mayoría de las células TH ya habían nacido.
Schinstine e Iacovitti^{56} informaron que algunos de los astrocitos derivados de células precursoras neurales generadas por EGF expresaban antígenos neuronales tales como tau y MAP2. Qian et al.^{57} informaron que diferentes concentraciones de bFGF hacían proliferar células similares a las madre de corteza de ratón E10 con potenciales de diferenciación variables que oscilaban desde sólo neuronales a multipotenciales.
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Palmer et al.^{65} informaron que células madre del SNC multipotenciales podían aislarse del hipocampo de rata adulta. El 84% de las células que expandían, sin embargo, co-expresaban MAP2c y O4, marcadores neuronales y oligodendrogliales inmaduros. Únicamente el 0,2% eran MAP2ab positivas y menos del 0,01% eran positivas para otros marcadores neuronales tales como tau y neurofilamento 200. Propiedades de este tipo son bastante diferentes de las propiedades descritas en los Ejemplos en la presente solicitud.
Finley et al.^{66} informaron que la línea de células de carcinoma embrionario de ratón, P19, puede formar una polaridad neuronal y puede ser electrofisiológicamente activa cuando es inducida por ácido retinoico y suero. Strubing et al.^{67} informaron que las células madre embrionarias desarrolladas en medio que contenía suero podían diferenciarse en neuronas electrofisiológicamente activas in vitro. Okabe et al.^{68} también informaron de la diferenciación de algunas de las células madre embrionarias en neuronas in vitro.
Gritti et al.^{46} informaron que células madre multipotenciales podían aislarse a partir del subepéndimo de ratón adulto por parte de EGF y bFGF que, cuando se diferenciaban, podían ser electrofisiológicamente activas y expresar inmunorreactividades a GABA, glutamato y ChAT, pero no otras. Sin embargo, la frecuencia de este tipo de neuronas no se documentó y, así, es difícil determinar lo eficaz que era la maduración neuronal. Además de ello, estos fenotipos neuronales, derivados de células madre en división, no fueron directamente demostrados mediante marcaje con BrdU. Esto es particularmente relevante, ya que los cultivos agregados son extremadamente propensos a ser contaminados por parte de neuronas primarias procedentes del tejido, que los traslada durante varios pases. De hecho, Weiss et al.^{49} establecieron que solamente células GABA-positivas podían obtenerse a partir de sus cultivos. La mayoría de las células GABA-positivas pueden ser oligodendrocitos.
Feldman et al.^{69} reseñaron estudios electrofisiológicos de precursores neurales de rata generados por EGF. Encontraron que la mayoría, si no todas las células electrofisiológicamente activas son de hecho no neuronales, y que las células gliales contienen canales de Na sensibles a la tensión que evocan conductancias similares a potenciales de acción.
Resultados como estos ilustran que la identificación de células madre del SNC, que definen condiciones que definen establemente las propiedades de las células madre del SNC durante largo plazo y que controlan su diferenciación en tipos de células maduras, no son ni obvios ni predecibles para los expertos en esta técnica.
Sumario de la invención
La presente invención describe un cultivo in vitro de células madre del sistema nervioso central de un mamífero, un método para el cultivo in vitro de las células madre y un método para la diferenciación de las células madre.
En el cultivo in vitro de las células madre del sistema nervioso central de un mamífero, las células madre conservan la capacidad multipotencial de diferenciarse en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos. Las células madre se pueden derivar de tejido del sistema nervioso central de un ser humano, feto o adulto. Además de ello, el tejido del sistema nervioso central puede ser hipocampo, corteza cerebral, cuerpo estriado, septum, diencéfalo, mesencéfalo, cerebelo o médula espinal.
Además de ello, las células madre se pueden diferenciar en neuronas maduras que exhiben una polaridad axon-dendrita, terminales sinápticos y la localización de proteínas implicadas en la sinaptogénesis y la actividad sináptica, que incluyen receptores neurotransmisores, transportadores y enzimas de procesamiento. Además, las células madre conservan su capacidad de generar subtipos de neuronas con diferencias moleculares entre los subtipos.
En un método para el cultivo in vitro de las células madre, en el que las células madre conservan la capacidad multipotencial de diferenciarse en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos, en el que las células procedentes del sistema nervioso central:
a) se disocian mediante trituración mecánica;
b) se extienden en placas a la densidad inicial óptima de 1 x 10^{6} células (procedentes del hipocampo y septum) o de 1,5 x 10^{6} células (procedentes de otras regiones del SNC) por cada 10 cm de placa revestida con poli-ornitina y fibronectina;
c) se cultivan en la ausencia completa de suero;
d) son diariamente suministradas con un factor de crecimiento seleccionado del grupo que consiste en
i)
un factor de crecimiento fibroblástico básico (bFGF) a una concentración de al menos 10 ng/ml,
ii)
EGF a una concentración de al menos 10 ng/ml,
iii)
TGF-alfa a una concentración de al menos 10 mg/ml, y
iv)
FGF de carácter ácido (aFGF) a una concentración de al menos 10 ng/ml más 1 \mug/ml de heparina;
e) se reemplaza por medio reciente el 100% del medio de cultivo cada dos días;
f) se hace pasar cada 4 días después de la extensión en placa mediante tratamiento de las células cultivadas con solución salina y raspado de las células de la placa; y
g) se vuelven a extender en placas las células pasadas a razón de 0,5 x 10^{6} células por cada 10 cm de placa prerrevestida con poli-ornitina y fibronectina.
El método es aplicable a células madre derivadas del tejido del sistema nervioso central procedente de un ser humano, feto o adulto. De nuevo, el tejido del sistema nervioso central puede ser el hipocampo, la corteza cerebral, el cuerpo estriado, septum, diencéfalo, mesencéfalo, cerebelo o médula espinal.
El método de la invención para la expansión y el cultivo in vitro de células madre del sistema nervioso central de un mamífero, en el que las células madre conservan la capacidad multipotencial de diferenciarse en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos, comprende las etapas de
a) disociar células procedentes del tejido del sistema nervioso central mediante trituración mecánica en ausencia de cationes divalentes;
b) cultivar las células disociadas adheridas a una placa en un medio de cultivo exento de suero y químicamente definido;
c) extender en placas células disociadas a una densidad que no exceda de 20.000 células/cm^{2} y, en pases subsiguientes, volver a extender en placas las células cultivadas a una densidad que no exceda de 10.000 células/cm^{2}:
d) añadir diariamente a las células de cultivo un factor de crecimiento seleccionado del grupo que consiste en
i)
bFGF a una concentración de al menos 10 ng/ml,
ii)
EGF a una concentración de al menos 10 ng/ml,
iii)
TGF-alfa a una concentración de al menos 10 mg/ml, y
iv)
aFGF a una concentración de al menos 10 ng/ml más 1 \mug/ml de heparina;
e) reemplazar por medio reciente el medio de cultivo cada dos días;
f) hacer pasar las células cultivadas en el espacio de cuatro días después de la extensión en placa de modo que no excedan de una confluencia del 50%; y
g) hacer pasar las células cultivadas mediante tratamiento de las células cultivadas con solución salina exenta de cationes divalentes y raspar las células de la placa.
La solicitud describe también un método para la diferenciación de un cultivo in vitro de células madre del sistema nervioso central de un mamífero, en el que las células madre conservan la capacidad multipotencial de diferenciarse en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos, en donde las células procedentes del sistema nervioso central
a) se disocian mediante trituración mecánica;
b) se extienden en placas a la densidad inicial óptima de 1 x 10^{6} células (procedentes del hipocampo y septum) o de 1,5 x 10^{6} células (procedentes de otras regiones del SNC) por cada 10 cm de placa pre-revestida con poli-ornitina y fibronectina;
c) se cultivan en la ausencia completa de suero;
d) son diariamente suministradas con un factor de crecimiento seleccionado del grupo que consiste en
i)
un factor de crecimiento fibroblástico básico (bFGF) a una concentración de al menos 10 ng/ml,
ii)
EGF a una concentración de al menos 10 ng/ml,
iii)
TGF-alfa a una concentración de al menos 10 mg/ml, y
iv)
FGF de carácter ácido (aFGF) a una concentración de al menos 10 ng/ml más 1 \mug/ml de heparina;
e) se reemplaza por medio reciente el 100% del medio de cultivo cada dos días;
f) se hace pasar cada 4 días después de la extensión en placa mediante tratamiento de las células cultivadas con solución salina y raspado de las células de la placa;
g) se vuelven a extender en placa las células pasadas a 0,5 x 10^{6} células por cada 10 cm de placa prerrevestida con poli-ornitina y fibronectina; y
h) se retira el factor de crecimiento aclarando las células con solución salina o tratándolas con tripsina y, subsiguientemente, con un inhibidor de tripsina y luego se continúa cultivando las células en el medio exento de suero sin el factor de crecimiento.
Además, la diferenciación se puede dirigir específicamente añadiendo un segundo factor de crecimiento a las células cultivadas, ya sea antes o después de retirar el primer factor de crecimiento de las células cultivadas. El segundo o añadido factor de crecimiento puede ser factor de crecimiento derivado de plaquetas (PDGF - siglas en inglés), factor neurotrópico ciliar (CNTF - siglas en inglés), factor inhibidor de leucemia (LIF - siglas en inglés) u hormona tiroides, yodotironina (T3).
El método de la invención para la diferenciación de un cultivo in vitro de células madre del sistema nervioso central de un mamífero, en el que las células madre conservan la capacidad multipotencial de diferenciarse en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos, comprende las etapas de:
a) disociar células procedentes de tejido del sistema nervioso central mediante trituración mecánica en ausencia de cationes divalentes;
b) cultivar las células disociadas adheridas a una placa en un medio de cultivo exento de suero y químicamente definido;
c) extender en placas células disociadas a una densidad que no exceda de 20.000 células/cm^{2} y, en pases subsiguientes, volver a extender en placas las células cultivadas a una densidad que no exceda de 10.000 células/cm^{2}:
d) añadir diariamente a las células cultivadas un primer factor de crecimiento seleccionado del grupo que consiste en
i)
bFGF a una concentración de al menos 10 ng/ml,
ii)
EGF a una concentración de al menos 10 ng/ml,
iii)
TGF-alfa a una concentración de al menos 10 mg/ml, y
iv)
aFGF a una concentración de al menos 10 ng/ml más 1 \mug/ml de heparina;
e) reemplazar por medio reciente el medio de cultivo cada dos días;
f) hacer pasar las células cultivadas en el espacio de cuatro días después de la extensión en placa de modo que no exceda de una confluencia del 50%; y
g) hacer pasar las células cultivadas mediante tratamiento de las células cultivadas con solución salina exenta de cationes divalentes y raspar las células de la placa; y
h) separar el primer factor de crecimiento de las células cultivadas, en donde dicha separación da como resultado la diferenciación de las células cultivadas en neuronas, astrocitos y/u oligodendrocitos.
La presente solicitud describe también un cultivo in vitro de neuronas maduras específicas para la región y terminalmente diferenciadas, derivadas de cultivos de células madres del SNC multipotenciales de mamífero y un método de cultivo in vitro para la generación de las neuronas diferenciadas.
En el método para la generación in vitro de neuronas maduras específicas para la región y terminalmente diferenciadas, procedentes de cultivos de células madre del SNC multipotenciales de mamífero, las células madre del SNC multipotenciales procedentes de una región específica se cultivan en un medio de cultivo exento de suero y químicamente definido que contiene un factor de crecimiento; el medio es reemplazado por medio exento de factor de crecimiento; las células madre se recolectan mediante tripsinización; se extienden en placas a una densidad de entre 100.000 y 250.000 células por centímetro cuadrado; y se cultivan en un medio de cultivo exento de suero, exento de ácido glutámico y químicamente definido. La región específica del SNC de la que se derivan las células madre multipotenciales se selecciona del grupo que consiste en corteza, tubérculo olfatorio, retina, septum, eminencia gangliónica lateral, eminencia gangliónica media, amígdala, hipocampo, tálamo, hipotálamo, mesencéfalo ventral y dorsal, tronco cerebral, cerebelo y médula espinal.
Además, el medio de cultivo exento de suero y químicamente definido se puede seleccionar de N2 (DMEM/F12, glucosa, glutamina, bicarbonato de sodio, 25 \mug/ml de insulina, 100 \mug/ml de apotransferrina humana, 25 nM de progesterona, 100 \muM de putrescina, 30 nM de selenito de sodio, pH 7,2^{8}) o medio modificado con N2. El factor de crecimiento se puede seleccionar del grupo que consiste en bFGF, EGF, TGF-alfa y aFGF.
Además, el medio de cultivo exento de suero, exento de ácido glutámico y químicamente definido se puede suplementar con entre 10-100 ng/ml de factor neurotrópico derivado del cerebro. El método es aplicable a células madre del SNC multipotenciales derivadas del tejido del sistema nervioso central procedente de cualquier mamífero, incluida la rata y el ser humano.
La presente solicitud también describe cultivos in vitro de neuronas maduras específicas para la región y terminalmente diferenciadas, derivadas de cultivos de células madre del SNC multipotenciales de mamíferos procedentes de una región específica del SNC. La región específica de la que se derivan las células madre multipotenciales se selecciona del grupo consistente en corteza, tubérculo olfatorio, retina, septum, eminencia gangliónica lateral, eminencia gangliónica media, amígdala, hipocampo, tálamo, hipotálamo, mesencéfalo ventral y dorsal, tronco cerebral, cerebelo y médula espinal. De igual manera, el cultivo in vitro de neuronas diferenciadas específicas para la región se puede derivar de cualquier célula madre del SNC multipotencial de mamífero, incluida la rata y el ser humano.
Breve descripción de los dibujos
La figura 1A muestra la diferenciación controlada de células madre del SNC a alta densidad. Células precursoras, nestina-positivas, de rápida división fueron marcadas con BrdU durante las últimas 24 horas de la proliferación. Después, se inició la diferenciación mediante retirada de bFGF (día 0) y se continuó durante hasta 6 días. A los tiempos indicados las células se fijaron y tiñeron para BrdU y antígenos neuronales. Se muestran las relaciones de células doblemente teñidas para BrdU y cada antígeno neuronal con respecto a las células BrdU positivas totales (BrdU+). Hasta el 50% de células BrdU+ expresaba antígenos neuronales y su expresión era dependiente del tiempo. MAP2 positivo (MAP2+), círculo en negro; TuJ1 positivo (TuJ1+), rombo gris; neurofilamento L positivo (neurofilamento L+), cuadrado en blanco; neurofilamento M positivo (neurofilamento M+), triángulo en negro.
La figura 1B muestra las proporciones de neuronas MAP2+ (\bullet), oligodendrocitos GalC+ (+) y astrocitos GFAP+ (o) en clones diferenciados. Clones de diversos tamaños que oscilaban entre 39 células y 2800 células se diferenciaron durante 6 días y se analizaron para dos tipos de células por cada clon mediante inmunohistoquímica doble. En la Tabla I se da una lista parcial y la inmunotinción se muestra en la fig. 3. El número de neuronas aumentaba con el tamaño creciente del clon, constituyendo el 50% del clon.
La figura 1C muestra una comparación de las eficacias mitogénicas de factor de crecimiento epidérmico (EGF) y factor de crecimiento fibroblástico básico (bFGF). Células (densidad inicial de 1 x 10^{4} por placa) sutilmente disociadas del hipocampo (HI) E16, corteza (CTX) E14 y cuerpo estriado (ST), y capa subependimal de adulto (Adulto) se expandieron con EGF (20 ng/ml) o bFGF (10 ng/ml). Colonias que surgían después de 10 días de expansión se tiñeron para nestina, una proteína filamentosa intermedia característica de células precursoras del SNC^{13,14}. Se muestra el número relativo de colonias promediado de al menos 2 experimentos para cada región (bFGF = 1). Estaban presentes colonias veinticinco veces más nestina+ por placa cuando las células embrionarias se desarrollaban en bFGF (recuadro con puntos) que en EGF (recuadro con barras). A altas densidades (1 x 10^{6} y 2,5 x 10^{6}), la condición de bFGF dio células BrdU+/nestina+ 10 veces mayores que EGF. Los dos factores de crecimiento eran igualmente mitogénicos para las células adultas. Cuando se diferenciaban clones expandidos en EGF y bFGF, neuronas y oligodendrocitos se encontraron en cantidades similares; sin embargo, los clones expandidos en EGF dieron lugar a un número significativamente mayor de astrocitos GFAP+.
Las figuras 2A-D muestran un clon típico de células madre del SNC. Las células se marcaron mediante un círculo en la placa en el espacio de 24 horas de la extensión en placa antes de la primera mitosis y luego se expandieron durante hasta 10 días (fig. 2A). En la figura 2B se muestra una vista más ampliada de otro clon antes de la diferenciación, inmunoteñido con anticuerpo anti-nestina. Obsérvese la morfología radial homogénea de las células nestina-positivas, consistente con la morfología nestina-positiva en el neuroepitelio in vivo. La figura 2C muestra un clon hermano a un pequeño aumento, que ha sido diferenciado durante 6 días e inmunoteñido con un anticuerpo específico para neuronas, TuJ1. Obsérvese la presencia diseminada y no localizada de neuronas TuJ1-positivas por todo el clon. En la figura 2D se muestra una vista más ampliada de las mismas células. Las células TuJ1-positivas asumen una morfología neuronal típica. Son evidentes morfologías heterogéneas en las células TuJ1-negativas no neuronales.
Las figuras 3A-J muestran ejemplos de clones representativos de células del hipocampo embrionarias (3A, 3C, 3E, 3G, 3I) y células subependimales adultas (3B, 3D, 3F, 3H, 3J) doblemente teñidas con combinaciones de anticuerpos para revelar diferentes tipos de células dentro de clones individuales; anti-MAP2, neuronal; anti-GalC, oligodendrítico; anti-GFAP, astrocítico. Las dos inmunorreacciones se desarrollaron secuencialmente y se distinguieron utilizando dos cromógenos distintos a través de la reacción con fosfatasa alcalina (azul, indicada por flechas) frente a la reacción de peroxidasa de rábano picante (rojo, indicadas por cabezas de flecha).
Las células en las figuras 3A y 3B se tiñeron doblemente con anti-MAP2 (neuronal, flechas) y anti-GFAP (astrocítico, cabezas de flecha) y muestran que los clones expandidos con bFGF derivados de cerebro embrionario o adulto se diferencian tanto en neuronas como en astrocitos. (Los oligodendrocitos están sin teñir en esta tinción).
Las células en las figuras 3C y 3D se tiñeron doblemente con anti-GalC (oligodendrocítico, flechas) y anti-GFAP (astrocítico, cabezas de flecha) y muestran que clones expandidos con bFGF derivados de cerebro embrionario o adulto se diferencian tanto en oligodendrocitos como en astrocitos. (Las neuronas están sin teñir en esta tinción).
Las figuras 3E y 3F muestran clones diferenciados en presencia de factor de crecimiento derivado de plaquetas (PDGF). Las células se tiñeron doblemente con anti-MAP2 (neuronal, flechas) y anti-GFAP (astrocítico). La mayoría de las células eran MAP2+ y solamente unas pocas eran GFAP+.
Las figuras 3G y 3H muestran clones diferenciados en presencia de factor neurotrófico ciliar (CNTF). Las células se tiñeron doblemente con anti-MAP2 (neuronal) y anti-GFAP (astrocítico, cabezas de flecha). Todas las células eran intensamente GFAP+.
Las figuras 3I y 3J muestran clones diferenciados en presencia de la hormona tiroides, triyodotironina (T3). Las células se tiñeron doblemente con anti-GalC (oligodendrocítico, flechas) y anti-GFAP (astrocítico, cabezas de flecha). Aumentaron células GFAP+ y, en particular, GalC+. Disminuyeron células MAP2+ (Tabla IV).
La figura 4 muestra la diferenciación de células madre del SNC humano en neuronas en un cultivo de alta densidad. Células del SNC expandidas con bFGF a una elevada densidad se diferenciaron mediante la retirada de bFGF ("WD"). El número de neuronas que expresan proteína tau se determinó mediante inmunocitoquímica en cultivo durante la fase de expansión ("antes de WD") frente a después de la diferenciación ("después de WD"). El drástico aumento en las neuronas post-mitóticas solamente después de la retirada de bFGF indica que éstas fueron generadas a partir de las células madre en división.
Las figuras 5A-F muestran células madre humanas teñidas con antisuero anti-tau específico de seres humanos (Chemicon) que identifican neuronas. Células madre del SNC humano en proliferación en un cultivo de alta densidad no expresan la proteína tau, un marcador neuronal (figura 5A). Después de 6 días de diferenciación, sin embargo, muchas células con una morfología neuronal típica expresan un alto nivel de proteína tau (figura 5B). Con el fin de demostrar adicionalmente que estas neuronas se derivan de hecho de células madre en división, las células madre se marcaron con 10 \muM de bromodesoxiuridina (BrdU), un indicador de la mitosis, durante 24 horas justo antes de la retirada de bFGF. Estas células se diferenciaron luego durante 6 días, se tiñeron doblemente con antisuero anti-tau específico de seres humanos (FITC, verde) y anticuerpo anti-BrdU (rodamina, rojo). La figura 5C muestra una vista muy aumentada de las subsiguientes neuronas tau-positivas según se observa a través de fluorescencia FITC. La figura 5D muestra el mismo campo de visión que la figura 5D, pero observada a través de fluorescencia con rodamina para revelar núcleos BrdU-positivos. La mayoría de las neuronas tau-positivas son también positivas para BrdU, demostrando que se derivaron de células madre mitóticas antes de la retirada de bFGF.
Con el fin de demostrar adicionalmente la multipotencialidad de células madre del SNC humano, éstas se cultivaron a una densidad clonal según se describe para las células de roedores. La figura 5E muestra un clon típico a un bajo aumento, que ha sido expandido a partir de una sola célula durante 20 días, ha sido subsiguientemente diferenciado durante 12 días y ha sido inmunoteñido con el anticuerpo anti-MAP2, específico para neuronas. Las neuronas son abundantes en el clon. La figura 5F muestra una vista a mayor aumento del clon en la figura 5E para indicar que las células MAP2-positivas tienen una morfología neuronal típica.
Las figuras 6A-D demuestran una diferenciación dirigida de células madre del SNC humano. Células madre del SNC humano, después de 16 días de expansión, se hicieron desarrollar clonalmente durante 20 días adicionales y luego se diferenciaron en presencia o ausencia de factores simples, PDGF (10 ng/ml), CNTF (10 ng/ml) o T3 (3 ng/ml). La figura 6A muestra un clon control no tratado, con aproximadamente 50% de neuronas MAP2-positivas (flechas) y 2-10% de astrocitos GFAP-positivos (cabezas de flecha). La figura 6B muestra un clon tratado con PDGF, en el que el 75% de las células son neuronas MAP2-positivas (flechas) y 2-10% son astrocitos GFAP-positivos (cabezas de flecha). La figura 6C muestra un clon tratado con CNTF, en el que el 85% son astrocitos GFAP-positivos (cabezas de flecha) y solamente el 9% son neuronas MAP2-positivas (flechas). La figura 6D muestra un clon tratado con T3 con un número incrementado de oligodendrocitos O4- y/o GalC-positivos (flechas) y de astrocitos GFAP-positivos (cabezas de flecha).
Las figuras 7A-7I muestran que un gran número de neuronas maduras con una polaridad axón-dendrítica y una actividad sináptica correctas pueden ser obtenidas de forma rutinaria a partir de células madre del SNC expandidas durante largo tiempo. Las células madre del hipocampo procedentes de embriones de rata E16 se expandieron en cultivos durante 16 días y a través de 4 pases. Justo antes del último pase, las células de rápida división se marcaron con 10 \muM de BrdU durante una noche, se les hizo el pasaje utilizando tripsina y se extendieron en placas sobre portaobjetos de cámara. Las células se mantuvieron durante 21 días para permitir una diferenciación constitutiva y una maduración de neuronas. Subsiguientemente, se analizaron mediante inmunocitoquímica el grado de maduración y los subtipos neuronales generados.
Fig. 7A: Neuronas teñidas con anticuerpo TuJ1 vistas a un bajo aumento (100x) para ilustrar que la producción de neuronas es eficaz.
Fig. 7B: Morfología típica de neuronas revelada por anticuerpos TuJ1 (400x).
Fig. 7C: Morfología típica de neuronas revelada por anticuerpos MAP2 (400x).
Fig. 7D: Neuronas teñidas con anticuerpo sinapsina. Solamente se tiñen neuronas maduras que contienen vesículas sinápticas.
Fig. 7E: Tinción con BrdU. Todas las células en el cultivo, neuronas y glía, están marcadas con BrdU.
Fig. 7F: Tinción doble con sinapsina y BrdU. Las células maduras sinapsina-positivas son también BrdU-positivas, demostrando que se derivan de células madre mitóticas en cultivo.
Fig. 7G: La tinción del anticuerpo anti-sinapsina en puntos marca los terminales de axón presinápticos específicamente en grandes neuronas maduras.
Fig. 7H: Las estructuras sinapsina-positivas están estrechamente aplicadas a procesos dendríticos revelados por la tinción con anticuerpo MAP2.
Fig. 7I: Las proteínas MAP2 y sinapsina están estrechamente asociadas pero no co-localizadas, sugiriendo una interacción presináptica-postsináptica.
La figura 8 muestra que neuronas derivadas de células madre expresan diversos receptores neurotransmisores y transportadores de los que se espera están implicados en la transmisión sináptica, según se detecta por RT-PCR. Células madre expandidas durante largo tiempo derivadas de la corteza de roedores E16 se diferenciaron durante 14 días y se recolectaron para preparar ARN. Las células madre no diferenciadas también se prepararon con el fin de comparar una inducción específica para la diferenciación. El ARN procedente de un cerebro entero de rata adulta se utilizó como control positivo. Se utilizaron cebadores específicos para familias de NMDA (D-aspartato de N-metilo) y AMPA (ácido \alpha-amino-3-hidroxi-5-metil-4-isoxazol-propiónico) de subtipos de receptor glutamato, así como para diversos transportadores GABA. Obsérvese especialmente la inducción específica de los receptores NMDA R1, AMPA R1 y AMPA R2 en células diferenciadas.
Las figuras 9A-F muestran ejemplos de neuronas típicas derivadas de células madre del hipocampo de embriones de rata que habían sido expandidas in vitro durante 16 días (aproximadamente 16 divisiones celulares a lo largo de 4 pases) y se habían diferenciado durante un total de 21 días. Las células madre del SNC mitótico se marcaron por impulsos con bromodesoxiuridina (BrdU) durante las últimas 24 horas antes de la diferenciación. Las neuronas resultantes se inmunotiñeron por tres veces con anticuerpos contra BrdU (fig. 9A), MAP2ab (fig. 9B) y sinapsina (fig. 9C). La vista compuesta de la célula teñida por tres veces se muestra en la fig. 9D. El marcaje con BrdU demuestra que la neurona diferenciada se derivaba de un precursor mitótico en el cultivo y que es una neurona terminalmente diferenciada, ya que conserva el nivel mitótico durante la fase de diferenciación prolongada. MAP2ab es una proteína específica de neuronas bien establecida, presente solamente en neuronas maduras y localizada la mayoría de las veces en dendritas. La sinapsina es una proteína de la vesícula sináptica bien establecida y, así, localiza terminales sinápticos en axones. Las neuronas marcadas por tres veces, tal como se muestra en la fig. 9D, establecieron que células madre del SNC mitóticas expandidas durante largo tiempo se diferenciaban terminalmente en neuronas maduras con una polarización subcelular adecuada que contenía estructuras dendríticas (post-sinápticas) y axonales (pre-sinápticas) distintas de las esperadas de neuronas totalmente funcionales. Otras proteínas de la vesícula sináptica también se localizan en el mismo modelo de terminales de axón en puntos aplicadas al soma y dendritas. Las fig. 9E y fig. 9F muestran otra célula madre del SNC del hipocampo derivada de una neurona madura doblemente teñida para la sinaptofisina y MAP2ab, respectivamente.
La figura 10 muestra un campo de neuronas procedentes de células madre del SNC del hipocampo vistas por microscopía de electrones de transmisión. Son evidentes la abundante presencia de sinapsis que contienen vesículas sinápticas y densidades post-sinaptícas.
Las figuras 11A-D muestran registros electrofisiológicos intracelulares procedentes de neuronas sencillas obtenidas de células madre del SNC del septum E15.5 de rata. Consistentes con esta morfología, estos registros demuestran que las redes neuronales derivadas de células madre del SNC son también electrofisiológicamente activas. Así, cuando se estimularon células individuales con un electrodo, estas células condujeron potenciales de acción (Fig. 11A), demostraron la presencia de diversos canales de iones sensibles a la tensión (fig. 11B) y provocaron potenciales excitatorios e inhibitorios post-sinápticos en respuesta a la aplicación al baño del neurotransmisor excitatorio, glutamato (figs. 11C y D). Estos ejemplos establecen sin duda alguna que las células madre del SNC dan lugar a tramas neuronales terminalmente diferenciadas y electrofisiológicamente funcionales.
Diversos fenotipos neuronales observados in vivo se obtienen a partir de los cultivos de células madre del SNC. Ejemplos de algunos de estos fenotipos neuronales se muestran en las figuras 12-18 y en la Tabla VII.
La figura 12 muestra la expresión de receptores de dopamina D1 y D2 procedentes de células madre del SNC aisladas de la eminencia gangliónica lateral y media de E15.5. ARNs totales se aislaron a partir de cultivos de células madre del SNC respectivos, diferenciados durante períodos variables (0-20 días). Se muestra el modelo de electroforesis del ADN, amplificado por RT-PCR (reacción en cadena de la polimerasa de transcripción inversa). Se muestran los resultados procedentes de cinco preparaciones de cultivo independientes, realizadas en paralelo en un solo gel. Los números por encima de las pistas indican los días de diferenciación. D1 = receptor de dopamina, D1; D2 = receptor de dopamina, D2.
Las figuras 13A-D muestran neuronas colinérgicas procedentes de células madre del SNC del septum. Células madre del SNC derivadas del septum E16 se diferenciaron durante 18-21 días. Las neuronas colinérgicas fueron confirmadas mediante histoquímica de acetilcolina esterasa (no mostrada), mediante inmunotinción para acetilcolina transferasa (fig. 13A) y para el transportador de acetilcolina (fig. 13C). En cada caso, células madre del SNC se incubaron con el marcador mitótico, BrdU (10 \muM), durante 24 horas justo antes de conmutar a la condición de diferenciación (figs. 13B y D).
Las figuras 14A-F muestran neuronas que contienen neuropéptidos obtenidas de células madre del SNC de la eminencia gangliónica lateral (cuerpo estriado) 15.5 de rata. Estas son unas neuronas neuropéptido Y-positiva (Fig. 14A), BrdU-positiva (fig. 14B), una neurona met-encefalina-positiva (fig. 14C), BrdU-positiva (fig. 14D) y una neurona leu-encefalina-positiva (fig. 14E), BrdU-positiva (fig. 14F).
Las figuras 15A-F muestran morfologías típicas de varios subtipos de neuronas derivados de células madre del SNC del mesencéfalo ventral E12.5 de rata. Las figuras 15A y B muestran una neurona TH-positiva y BrdU-positiva (fig. 15A - tinción con TH; fig. 15B - tinción con BrdU). Las figuras 15C y D muestran otra neurona TH-positiva y MAP2ab-positiva (fig. 15C - tinción con TH; fig. 15D - tinción con MAP2ab). La figura 15E muestra neuronas teñidas con anticuerpo anti-GABA. La figura 15F muestra neuronas teñidas mediante histoquímica con acetilcolina-esterasa.
Las figuras 16A-D muestran ejemplos de neuronas procedentes de células madre de la médula espinal. La figura 16A muestra una neurona acetilcolina esterasa-positiva derivada de las células madre del SNC de la médula espinal E13.5 de rata, que también es BrdU-positiva (fig. 16B). Se muestran neuronas colinérgicas mediante la tinción con acetilcolina-transferasa (fig. 16C) que son también BrdU-positivas (fig. 16D).
Las figuras 17A y B muestran neuronas GABAérgicas derivadas de células madre del SNC del hipocampo E15.5 de rata, que han sido teñidas doblemente para ácido glutámico descarboxilasa (fig. 17A) y GABA (fig. 17B). Las figuras 17C y D muestran una neurona calrretinina-positiva (fig. 17C), MAP2ab-positiva (fig. 17D) del hipocampo.
Las figuras 18A-F muestran neuronas derivadas de células madre del SNC del tálamo e hipotálamo E13.5 de rata. La figura 18A muestra neuronas talámicas teñidas para tau; la figura 18B muestra el mismo campo de visión teñido para BrdU. La figura 18C muestra una neurona hipotalámica teñida para tau; la figura 18D muestra el mismo campo de visión teñido para BrdU. Las figuras 18E y F muestran neuronas sinapsina-positivas de células madre del SNC del tálamo e hipotálamo, respectivamente.
Descripción detallada de la invención
En esta solicitud, se definen condiciones que permiten una expansión en masa de hasta 10^{9} veces en cultivo y la diferenciación controlada de células madre del SNC multipotenciales procedentes del cerebro embrionario y adulto de mamíferos. En ambos casos, clones derivados de células sencillas se diferencian en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos. La adición de factores sencillos puede desplazar drásticamente la proporción de tipos de células dentro de un clon.
El proceso para aislar, propagar y diferenciar las células madre del SNC se da a continuación en detalle. El proceso contiene cuatro etapas esenciales que deben seguirse en concierto para un aislamiento y diferenciación con éxito de las células madre del SNC. Las cuatro etapas esenciales son como sigue:
(1) La disociación inicial de células procedentes de tejido se realiza mediante trituración mecánica y no mediante digestión enzimática. Con el tejido adulto, es necesario digerir primero enzimáticamente el tejido y luego disociar las células del tejido mediante trituración mecánica.
Trituración significa agitación suave de conjuntos de células provocados por el movimiento fluido que se produce durante la acción de pipeteado repetitiva mediante la cual células individuales se vuelven sueltas y se disocian de células vecinas. La trituración se realiza en una solución salina exenta de cationes divalentes, cuya ausencia ayuda a romper las interacciones entre proteínas de adhesión a la célula sobre la superficie de la célula. Células madre de en rápida división en la zona ventricular son sólo débilmente adherentes, y la simple retirada de los cationes divalentes del medio y una suave agitación mediante pipeteado son suficientes para disociar el tejido en células la mayoría de ellas sencillas. A continuación, las células se cultivan en ausencia completa de suero. Incluso una breve exposición al suero afecta de manera perjudicial a la capacidad de diferenciación de las células madre, de modo que ya no son capaces de diferenciarse en neuronas y oligodendrocitos. El pre-revestimiento de las placas con poli-L-orinitina y fibronectina facilita la adhesión de las células a las placas.
(2) Las células madre del SNC exhiben una propiedad innata de diferenciarse espontáneamente, lo que refleja un mecanismo regulador que controla el ciclo celular en función de la concentración libre de factor de crecimiento, el mitógeno. Con el fin de suprimir la diferenciación de las células madre en otros tipos de células y de conservar una homogeneidad, el factor de crecimiento debe ser suministrado diariamente a una concentración de 10 ng/ml o superior. El factor de crecimiento se puede seleccionar de (1) factor de crecimiento fibroblástico básico (bFGF), (2) EGF, (3) TGF-alfa o (4) FGF de carácter ácido (aFGF). Si se selecciona el factor de crecimiento de fibroblastos de carácter ácido, también se debe suministrar heparina a una concentración de 1 \mug/ml.
(3) Incluso un suministro continuo de bFGF u otro factor de crecimiento seleccionado es insuficiente para inhibir la diferenciación, si se deja que el cultivo alcance una densidad crítica mayor que aproximadamente 50%. Lo más probablemente, esto se debe a factor o factores endógenos todavía no definidos secretados por las propias células en división que antagonizan la acción de bFGF. Así, con el fin de separar del cultivo factores de este tipo y de reducir la interacción célula-célula lo más posible, las células deben ser pasadas con frecuencia cada 4 días después de la extensión en placas, y debería realizarse una nueva extensión en placas a una baja densidad de aproximadamente 0,5 x 10^{6} por cada 10 cm de placa, es decir en el intervalo de 1 x 10^{2} a 1 x 10^{6} células por 10 cm de placa, pre-revestidas con poli-ornitina y fibronectina.
(4) El pase de las células por parte de tripsina da como resultado una separación proteolítica de un componente receptor de bFGF e inhabilita el efecto mitogénico de bFGF. La velocidad de renovación del receptor es lo suficientemente lenta durante el período en el que las células no son capaces de reconocer el mitógeno y activan la vía de diferenciación.
Con el fin de evitar este proceso, las células se tratan con solución salina tamponada de Hank (HBSS- siglas en inglés) para separar cationes divalentes en el cultivo que interrumpe las interacciones iónicas entre las cadherinas y las integrinas sobre la superficie de la célula y las proteínas de la matriz extracelular sobre la placa de cultivo, determinando que las células se redondeen. En este punto las células madre pueden ser raspadas de la placa con un raspador sin dañar las células.
Otras células en el cultivo se mantienen estrechamente ligadas a la placa y el raspado las elimina, permitiendo así una selección eficaz de células madre no diferenciadas que se dividen rápidamente.
La diferenciación de las células madre del SNC se consigue separando simplemente el mitógeno, bFGF u otro factor de crecimiento seleccionado, del medio. La especificación de los tipos de célula, es decir neuronas, oligodendrocitos y astrocitos, se produce constitutivamente. Con el fin de una diferenciación controlada eficaz, las células deben estar en un estado homogéneo que se puede conseguir siguiendo las etapas 1-4 anteriores.
Estos procesos proporcionan un sistema de cultivo para obtener con control y eficacia una población homogénea de las células madre del SNC que se pueden diferenciar en neuronas, oligodendrocitos y astrocitos. Lo destacado de las características de este sistema es:
(1) producción de un gran número de las células madre del SNC con el potencial de formar muchos subtipos neuronales diferentes, oligodendrocitos y astrocitos que se pueden trasplantar a un cerebro;
(2) diferenciación controlada in vitro bajo condiciones exentas de suero, que permite la investigación de nuevos factores de crecimiento y citoquinas;
(3) células que se dividen rápidamente accesibles a la manipulación genética para la introducción de genes extraños;
(4) generación de neuronas maduras in vitro, adecuadas para el rastreo genético y farmacológico; y
(5) derivación directa de células precursoras intermedias procedentes de las células madre para el enriquecimiento de una población sencilla de células.
El aislamiento de las células madre del SNC de la manera anteriormente descrita permite, además, una diferenciación dirigida de las células tratándolas con factores de crecimiento específicos. Una importancia práctica de esta diferenciación dirigida a la biotecnología es que un tipo de células sencillo se puede enriquecer in vitro. Así, una nueva aplicación de factores de crecimiento previamente descritos PDGF^{37} (factor de crecimiento derivado de plaquetas), CNTF (factor neurotrófico ciliar) y T3 (hormona tiroides, tri-yodotironina) sería dirigir las células madre del SNC para generar neuronas, astrocitos y oligodendrocitos, respectivamente.
Otra importancia práctica, especialmente para PDGF, es que las neuronas inducidas por PDGF parecen ser realmente progenitores neuronales que pueden proliferar adicionalmente y expandirse en cultivo por parte de PDGF. Estas células se diferencian solamente en neuronas o en neuronas y oligodendrocitos, y difieren de las células madre. El aislamiento de progenitores neuronales a partir del SNC de mamíferos por parte de PDGF no se ha descrito previamente.
Ejemplos 1. Aislamiento de células madre del SNC procedentes de cerebro de rata embrionario
El hipocampo embrionario de rata (día de gestación 16; el día de concepción es el día 1, Taconic Farm) se diseccionó en solución salina tamponada de Hank (HBSS) y se disoció mediante breve trituración mecánica en HBSS. Las células se recogieron mediante centrifugación y se resuspendieron en un medio exento de suero que contenía DMEM/F12, glucosa, glutamina, bicarbonato de sodio, 25 \mug/ml de insulina, 100 \mug/ml de apotransferrina humana, 25 nM de progesterona, 100 \muM de putrescina, 30 nM de selenito de sodio, pH 7,2^{8}, más 10 ng/ml de factor de crecimiento fibroblástico básico humano recombinante^{12} (bFGF; R&D Inc.).
1 x 10^{6} células se extendieron en placas por cada 10 cm de placa de cultivo de tejido de plástico pre-revestida con 15 \mug/ml de poli-L-ornitina y 1 \mug/ml de fibronectina de plasma bovino (Gibco). bFGF se añadió diariamente y el medio se cambió cada 2 días. Las células se hicieron pasar a una confluencia del 50% (4 días después de la extensión inicial en placa) al incubarlas brevemente en HBSS y rasparlas con un raspador de células.
Se encontraron células con una capacidad multipotencial por todo el neuroepitelio en desarrollo. Bajo condiciones de cultivo idénticas, se podían preparar células similares procedentes de otras regiones del SNC en desarrollo incluida la corteza cerebral, cuerpo estriado, septum, diencéfalo, mesencéfalo, cerebelo y médula espinal. De la corteza y del cuerpo estriado E14 y del hipocampo E16, aproximadamente el 70% de células sutilmente disociadas respondían a bFGF en el espacio de 2 días de la extensión en placa al sufrir una mitosis.
2. Propagación de células madre del SNC procedentes del cerebro de rata embrionario a) Expansión en masa
Células del hipocampo aisladas de cerebros de rata embrionarios se expandieron mediante la adición diaria de factor de crecimiento fibroblástico básico (bFGF) en medio exento de suero. El suministro contínuo de bFGF era importante para reprimir la diferenciación y para mantener una población homogénea de células que se dividían rápidamente y que expresaban nestina, una proteína filamentosa intermedia característica de células precursoras del SNC^{13,14}. Menos del 1% de las células expresaba el marcador astroglial GFAP o los marcadores oligodendrogliales, O4 y GalC.
Las células se hicieron pasar durante 4 días después de la extensión en placa, tiempo durante el cual el número de células aumentó rápidamente con un tiempo de duplicación de células medio de aproximadamente 24 horas. Las células pasadas se volvieron a extender en placa a razón de 0,5 x 10^{6} células por cada 10 cm de placa y se dejó que se propagaran adicionalmente. Las células se podían subcultivar hasta cinco veces de esta manera hasta un total de 20 días in vitro, tiempo durante el cual se podía esperar de manera ideal un rendimiento de 2^{20} células. Después de este período de tiempo, la tasa mitótica de las células disminuyó rápidamente y las células perdieron gradualmente su capacidad multipotencial, exhibiendo características gliales y siendo incapaces de diferenciarse en neuronas.
Grandes números de células procedentes de la corteza, el cuerpo estriado y el septum, aisladas de embriones de 12-18 días de gestación, podían también expandirse en cultivo en masa de la misma manera. El transcurso en el tiempo de la expansión era similar al de las células del hipocampo. La expansión continua estaba de nuevo limitada por la pérdida constitutiva de la multipotencialidad después de aproximadamente 20 días de la división de la célula. Así, esta regresión parece ser una propiedad característica de las células madre del SNC.
b) Expansión clonal
No está disponible ningún marcador antigénico sencillo que identifique de forma única células madre multipotenciales procedentes de otros precursores in vitro. La identidad de una población precursora solamente se puede confirmar mediante la capacidad de diferenciación de las células. Las condiciones definidas para el cultivo en masa en esta solicitud también permitían una expansión clonal en donde las células fueron extendidas en placas a una densidad extremadamente baja de células, de modo que las células sencillas estaban bien aisladas.
La capacidad de diferenciación de las células expandidas en el cultivo en masa se confirmó en cada pase extendiendo 200 células por cada 10 cm de placa y sometiéndolas a cultivo bajo condiciones como las descritas anteriormente. En el espacio de 24 horas de la extensión en placas, células sencillas bien aisladas fueron marcadas con un anillo de 3 mm (Nikon) en el fondo de la placa. La viabilidad inicial de las células sencillas marcadas era 5-10%, y cada placa proporcionaba típicamente 10-20 clones marcados. Solamente una sola célula residía en cada círculo. La subsiguiente población de células dentro de cada círculo son la progenie de esa célula sencilla. Clones se expandieron hasta durante 10 días (500-2000 células). El tiempo de duplicación medio era de aproximadamente 24 horas.
3. Diferenciación y análisis de células madre del SNC procedentes del cerebro de rata embrionario
El potencial de desarrollo de células expandidas se sometió a ensayo diferenciando directamente las células. La retirada de bFGF inició la diferenciación en el espacio de 24 horas. Para iniciar la diferenciación de células de alta densidad, células que se dividían rápidamente, que habían estado en cultivo durante 12 días y se hicieron pasar tres veces se incubaron durante al menos 24 horas con 10 \muM de BrdU (bromodesoxiuridina) antes del pase. 80-85% de las células incorporaban BrdU. Las células se recolectaron mediante raspado utilizando tripsina, seguido de inhibidor de tripsina de haba de soja en el medio exento de suero. Fueron extendidas en placas por duplicado a razón de 40.000 células/cm^{2} en portaobjetos de cámara de múltiples pocillos (LabTek) pre-revestidos con poli-L-ornitina y fibronectina, y se cultivaron en el medio exento de suero sin bFGF. A los tiempos indicados, las células se fijaron y tiñeron con diversos anticuerpos de acuerdo con un proceso estándar.
Las células inmunopositivas se recontaron bajo un aumento de 400x. Se hizo un recuento de al menos cinco campos con un número total de células mayor que 1000 por muestra. Los resultados mostrados (fig. 1A) son recuentos de células de la media de dos experimentos. Los reactivos de anticuerpos utilizados eran: antisuero anti-nestina; anti-MAP2 (clon HM-2, Sigma) y antisuero anti-tau (Sigma) monoclonales, anti-neurofilamentos L y M monoclonales (clones NR4 y NN18, Boehringer-Mannheim), anti-beta tubulina tipo III (TuJ1), anti-GFAP monoclonal (ICN), A2B5 (ATCC), O4 y anti-galactocerebrósido (GalC).
A lo largo de un período de 6 días se produjo un aumento progresivo en el número de células que expresaban varios antígenos específicos para neuronas bien establecidos, incluidos MAP2a, b y c, beta-tubulina tipo 3 (TuJ1), tau y neurofilamentos L, M y H (Fig. 1A). Hasta el 50% de las células expresaba los antígenos neuronales y exhibía una morfología neuronal compleja. Las células restantes expresaban GFAP, GalC/O4 o nestina. Mientras que neuronas y glia han sido observadas previamente en cultivo expandido, estos ejemplos son los primeros en establecer que la diferenciación de células precursoras proliferantes se puede iniciar en un instante preciso y que surgen rápidamente múltiples tipos de células. Estas condiciones permiten un análisis del linaje a gran escala in vitro.
Para determinar si la población precursora contiene progenitores comprometidos separados que dan lugar independientemente a neuronas y glia, células que se dividían rápidamente se extendieron en placas a una densidad clonal (200 células por cada 10 cm de placa) y células sencillas bien aisladas se marcaron con círculos de 3 mm de diámetro. El 5-10% de las células sencillas marcadas sobrevivió y proliferó con un tiempo de duplicación de 24 horas para generar clones. Después de diversos períodos de expansión (los tamaños de los clones oscilan entre 2^{4} y 2^{10} células), se inició la diferenciación de clones lavando las placas una vez con HBSS y cultivándolas en el mismo medio, pero en ausencia de bFGF (fig. 2).
Para la subclonación (datos no mostrados en la Tabla II), las placas clonales se lavaron y se dejaron brevemente en HBSS hasta que las células se redondeaban. Se recogieron clones de 500-2000 células en un volumen de 50 \mul con un pipeteador ajustable, al tiempo que se observaba a través de un microscopio. Cada clon se volvió a extender en placas en una placa de 10 cm y células sencillas se marcaron y cultivaron como antes.
Tipos de células dentro de los clones se analizaron durante los primeros seis días de diferenciación mediante doble tinción con combinaciones de anticuerpos específicos para el tipo de célula que reaccionan con células mutuamente exclusivas:
neuronas = MAP2+, tau+, TuJ1+, neurofilamento L+, o neurofilamento M+;
astrocitos = GFAP+; y
oligodendrocitos = O4+ o GalC+.
La doble tinción se realizó secuencialmente utilizando un kit comercial (Zymed) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. Para la tinción de oligodendrocitos, las células fijadas con paraformaldehído al 4% se tiñeron primeramente para los antígenos O4 o GalC de la superficie de la célula sin permeabilización. El primer anticuerpo se desarrolló con una reacción de fosfatasa alcalina (azul) y el segundo con una reacción de peroxidasa (roja) (Zymed).
Como en el cultivo de alta densidad, hacia los seis días, el 50% de las células en un clon expresaban antígenos neuronales incluidos MAP2, tau y beta-tubulina tipo III (Tabla I, figs. 3A y C). En la Tabla I, clones de células precursoras del hipocampo se expandieron, diferenciaron y analizaron como se describe arriba. Arriba se presenta una lista parcial de clones típicos. Se muestran el número total de células (tamaño del clon) y las células teñidas positivas para los antígenos específicos para el tipo de célula. Su proporción relativa se da en porcentaje entre paréntesis. Se cuantificó un total de 48 clones procedentes de 4 pases diferentes en 6 experimentos separados. La media total indica la composición media de cada uno de los tipos de células en los 48 clones.
La expresión del neurofilamento se demoró bajo estas condiciones. En promedio, el 8% de las células en un clon era GalC+ y tenía una morfología de oligodendrocito típica. Un 8% adicional expresaba GFAP y exhibía una morfología de astrocito característica. Las restantes células no estaban teñidas por ninguno de los anticuerpos específicos para los tipos de células diferenciadas, sino que reaccionaban con anticuerpos A2B5 y/o anti-nestina. Un máximo del 20% de las células murió durante la diferenciación. Se obtuvieron resultados idénticos independientemente de que los clones se obtuvieran a partir de células sutilmente disociadas sin ningún pase previo o partir de células después de 4 pases (26 días).
Células con una capacidad multipotencial se encontraban a lo largo de todo el neuroepitelio en desarrollo. Bajo condiciones de cultivo idénticas, células similares se podían preparar a partir de otras regiones del SNC en desarrollo, incluida la corteza cerebral, el cuerpo estriado, septum, diencéfalo, mesencéfalo, cerebelo y médula espinal. Cuando se expandían clonalmente, casi todos los clones contenían múltiples tipos de células definidos tanto por la morfología como por la expresión del antígeno con neuronas que constituían el 50% del clon.
Clones proliferantes de las células multipotenciales contenían una morfología uniforme y modelos de expresión de antígeno. A pesar de ello, la separación de morfologías neuronales y no neuronales se producía rápidamente en el espacio de 24 horas y solamente después de la retirada del mitógeno. Las neuronas tempranas estaban uniformemente distribuidas por todo el clon sin una polaridad o localización obvia sugiriendo la ausencia de progenitores neuronales comprometidos durante la expansión clonal. Además de ello, el número de neuronas aumentaba linealmente con el tamaño creciente del clon y constituía de forma reproducible el 50% del clon (fig. 1B).
Con el fin de determinar adicionalmente si los clones en expansión consistían en progenitores comprometidos proliferantes, se recogieron clones y se volvieron a extender de nuevo en placas. 10-15% de las células dieron lugar a clones de segunda generación. De nuevo, la totalidad de los subclones contenían neuronas, astrocitos, oligodendrocitos y células sin teñir (Tabla II). Más específicamente, en la Tabla II se muestran la composición del tipo de célula de subclones obtenidos de tres clones independientes, HI6, HI8, HI19. Se cuantificó un total de 84 subclones a partir de 13 clones parentales independientes en dos experimentos separados. Solamente se presenta una lista parcial. La media total indica la composición media de cada tipo de célula procedente de los 84 subclones. Ningún subclón consistía solamente en un tipo de célula. Estos datos indican que los precursores multipotenciales sufren divisiones simétricas para regenerar células hijas con una capacidad multipotencial.
4. Aislamiento, propagación, diferenciación y análisis de células madre del SNC procedentes del cerebro de rata adulta
La capa subependimal del cerebro de rata adulta contiene células mitóticas nestina-positivas que podían expandirse en cultivo agregado en presencia de factor de crecimiento epidermal (EGF), pero no bFGF^{15}. Algunas de las células en los agregados mostraban propiedades neuronales y astrocíticas. Para definir con mayor precisión su capacidad de desarrollo, la población mitótica (1% de 1 x 10^{5} células/cerebro) que revestía el ventrículo lateral del cuerpo estriado de rata adulta se expandió en presencia de bFGF y se comparó con los precursores embrionarios. Rodajas del cerebelo procedentes de 250 g de cerebros de rata adulta (10-20 por experimento) se prepararon y la región subependimal del cuerpo estriado que revestía los ventrículos laterales se cortaron bajo el microscopio en HBSS oxigenada. Las células se disociaron incubando tejidos desmenuzados a la temperatura ambiente durante 10 minutos con tripsina (1 mg/ml), hialuronidasa (0,7 mg/ml) y ácido quinurénico (0,2 mg/ml) en HBSS oxigenada. Estas células se lavaron una vez en HBSS con 0,7 mg/ml de ovomucoide y 0,2 mg/ml de ácido quinurénico, se resuspendieron y se trituraron mecánicamente en la misma solución. Las células disociadas se recuperaron por centrifugación y se cultivaron en el medio exento de suero más bFGF (10 ng/ml) según se describe para las células embrionarias.
La morfología y características de desarrollo de las células adultas nestina-positivas eran similares a las de las células embrionarias. Después de la retirada de bFGF, los clones marcados se diferenciaban en múltiples tipos de células que expresaban MAP2, TuJ1, GFAP y GalC (Fig. 3B y D). De manera notable, la misma alta proporción de neuronas se encontró en clones diferenciados de células adultas como en los clones embrionarios (Tabla III). Más específicamente, la Tabla III muestra la composición del tipo de células de clones diferenciados, derivados de células subependimales adultas. Se cuantificaron 23 clones de tres experimentos independientes.
5. Aislamiento, propagación, diferenciación y análisis de células madre del SNC de cerebros de rata embrionarios y adultos
Células sutilmente disociadas de diversas regiones de cerebro embrionario se cultivaron en presencia de EGF (20 ng/ml) o bFGF (10 ng/ml) bajo condiciones idénticas según se describe arriba. Células adultas sutilmente disociadas se prepararon como se describe arriba y se cultivaron bajo condiciones idénticas a las de las células embrionarias. El posible efecto de la densidad inicial de células sobre la respuesta mitogénica se sometió a ensayo variando la densidad inicial de células desde 1 x 10^{4} a 2,5 x 10^{6} por placa. A baja densidad, se midió la eficacia de la formación de la colonia; a alta densidad, se hizo un recuento de células mitóticas BrdU+/nestina+. Colonias expandidas con EGF y bFGF se diferenciaron también retirando los mitógenos y los tipos de células se analizaron como se describe arriba.
Bajo las condiciones de cultivo de estos ejemplos, EGF era un mitógeno con la misma eficacia que bFGF para células adultas (fig. 1C) y, cuando se diferenciaban los clones, éstos dieron lugar a los tres tipos de células. Clones embrionarios expandidos con EFG, con y sin pase, también se diferenciaban en los tres tipos de células. A diferencia de las células adultas, sin embargo, EGF era al menos 10 veces menos eficaz que bFGF como mitógeno para las células embrionarias de varias regiones diferentes, independientemente de la densidad inicial de células (fig. 1C). Así, con la excepción de los efectos proliferantes de EGF, estos datos revelan que las células multipotenciales procedentes de los SNCs embrionario y adulto son acusadamente similares. TGF\alpha (10 ng/ml) también era un mitógeno para las células multipotenciales y no se podía distinguir de EGF, mientras que aFGF (10 ng/ml) en presencia de heparina (1 \mug/ml) mimetizaba los efectos de bFGF.
6. Diferenciación dirigida de células madre del SNC procedentes del cerebro embrionario y adulto de ratas
El análisis clonal sugiere que los precursores multipotenciales no están comprometidos antes de la retirada del mitógeno y, así, señales extracelulares pueden regular la determinación del tipo de célula. Los autores de la invención sometieron a ensayo si la proporción de los tipos de células generados dentro de un clon podía ser influenciada por factores de crecimiento y citoquinas, ya sea durante la proliferación o la diferenciación.
La influencia de factores de crecimiento sobre la especificación del tipo de células se sometió a ensayo añadiendo éstas al cultivo dos días antes de la retirada de bFGF y durante 6 días de diferenciación. Diariamente se añadieron factores y el medio se cambió cada 2 días. Al término de los 6 días se analizaron los clones en cuanto a la composición del tipo de célula mediante doble tinción como se describe arriba. Las concentraciones finales de los factores eran 10 ng/ml de PDGF-AA, -AB o -BB, 10 ng/ml de CNTF y 3 ng/ml de T3.
En clones embrionarios, la proporción de neuronas aumentaba significativamente en presencia de PDGF (10 ng/ml, -AA, -AB o -BB) durante la diferenciación. Hasta el 80% de las células eran neuronales con la expresión de MAP2, tau, TuJ1 o NF-M, y un número menor de células se expresaba O4, GalC y GFAP (figs. 3E y F, Tabla IV). Más específicamente, la Tabla IV muestra la composición clonal media de cada tipo de célula obtenida cuando los clones se diferenciaban durante 6 días en ausencia (no tratado) o en presencia de diferentes factores. Se prepararon placas clonales de células después de 0-3 pases. El tamaño del clon oscilaba entre 17 y 5336 células. Los tipos de células diferenciados se analizaron como se describe arriba.
Las células que expresan los antígenos neuronales mostraban una morfología menos madura bajo estas condiciones. Cuando se trataban con factor neurotrófico ciliar (CNTF), los clones dieron lugar casi exclusivamente a astrocitos (figs. 3G y H, Tabla IV). De manera notable, menos del 1% de las células era MAP2-positivas en este estado. Las células tratadas con CNTF eran intensamente GFAP-positivas y todas mostraban una morfología plana astrocítica. LIF mostró efectos idénticos que CNTF.
La hormona tiroides, tri-yodotironina (T3), influía sobre la diferenciación de los precursores multipotenciales hacia un destino glial mixto (figs. 3I y J, Tabla IV). Astrocitos y oligodendrocitos aumentaron ambos 3 veces y había una acusada disminución en la proporción de neuronas. Como en el caso de los clones no tratados, células GalC- y O4-positivas mostraban morfologías de oligodendrocitos características. Los clones eran de un tamaño similar en todos los experimentos y el análisis numérico de células muertas mostró que la muerte selectiva de células no puede ser la responsable de los cambios en la proporción de tipos de células. Se obtuvieron resultados similares con células madre multipotenciales procedentes de la corteza y del cuerpo estriado embrionarios. Además, las células multipotenciales derivadas de la capa subependimal del cerebro adulto mostraron respuestas de diferenciación cuantitativamente similares a PDGF, CNTF y T3 (fig. 3, Tabla IV). Esto enfatiza la naturaleza general de estas vías.
Otros factores que fueron sometidos a ensayo durante este estudio y que no mostraron ningún efecto instructivo significativo en la determinación del tipo de célula eran: NGF, NT-3, BDNF, TGFb1, IL1b, IL2-11, G-CSF, M-CSF, GM-CSF, oncoestatina M, factor de células madre, eritropoyetina, interferón gamma, ácidos 9-cis y todos los -trans retinoicos, acetato de retinilo, dexametasona y corticosterona.
7. Aislamiento, expansión, diferenciación y análisis de células madre del SNC procedentes del cerebro fetal humano
Tejidos de diversas regiones de cerebros fetales humanos se obtuvieron de fetos de 45 a 114 días en períodos de gestación. Los tejidos se disociaron en HBSS mediante trituración mecánica según se describe arriba. Las células se recogieron por centrifugación, se resuspendieron, se extendieron en placas a razón de 1 x 10^{6} células por cada 10 cm de placa y se expandieron en un medio exento de suero más 10 ng/ml de bFGF bajo condiciones idénticas a las descritas para las células madre del SNC fetales de roedores de arriba.
Aproximadamente 25-50% de las células humanas, dependiendo de la edad y de la región, tenía una morfología de la célula madre del SNC y respondían a bFGF mediante una rápida división de la célula. Células madre del SNC humanas se expandieron en cultivo hasta durante 36 días. El tiempo de duplicación medio era de aproximadamente 48 horas, lo que contrasta con la contraparte de roedores con un tiempo de duplicación de 24 horas. Tras la retirada de bFGF, la diferenciación de células madre del SNC fetales humanas se produjo rápidamente y surgieron múltiples tipos de células. En cultivo de alta densidad, las células se diferenciaron durante hasta 13 días y los subsiguientes tipos de células presentes se analizaron mediante inmunocitoquímica según se describe para el cultivo de células de roedores. Antes de la diferenciación por la retirada de bFGF, en el cultivo están presentes pocas neuronas tau-positivas (fig. 4). En contraposición, después de la retirada del bFGF, hasta el 40% de las células del cerebro fetal humanas expandidas con bFGF en cultivo en masa eran neuronas inmunorreactivas con antisuero anti-tau específico para seres humanos. Una mayoría de las neuronas tau-positivas en cultivo podía marcarse con BrdU (bromodesoxiuridina), el indicador de la mitosis, en un espacio de 24 horas antes de la retirada de bFGF (figs. 5C y D). Este resultado demuestra que las condiciones de cultivo definidas para las células madre del SNC de roedores se aplica igualmente bien para la expansión y diferenciación eficaces de células madre del SNC humanas para generar grandes números de neuronas en cultivo.
Con el fin de analizar adicionalmente la multipotencialidad de las células madre del SNC fetales humanas en el cultivo en masa, células en división se extendieron en placas a una densidad clonal (100-200 células por cada 10 cm de placa) y se expandieron adicionalmente durante 20 días (tamaño del clon = 2^{10}). Subsiguientemente, se diferenciaron clones retirando bFGF y analizando los tipos de células inmunorreactivos para anticuerpos específicos para neuronas, astrocitos y oligodendrocitos. La mayoría de las células fetales humanas clonalmente expandidas se diferenciaban para dar origen a los tres tipos de células - neuronas, astrocitos y oligodendrocitos (figs. 5E y F). Al igual que con las células madre de roedores, neuronas MAP2-positivas constituían aproximadamente el 50% del clon (Tabla V). Las células restantes tenían una morfología glial grande alargada. Aproximadamente el 10% de las células expresaba antígeno astrocítico maduro, GFAP, y aproximadamente el 2% expresaba antígenos oligodendrocíticos O4 o galactocerebrósido (GalC) (Tabla V). Este análisis clonal demuestra, así, que el sistema de cultivo descrito en esta memoria permite un aislamiento, expansión en masa y diferenciación eficaces de células madre multipotenciales procedentes del SNC fetal humano.
8. Diferenciación dirigida de células madre del SNC procedentes del cerebro fetal humano
Además de la multipotencialidad y de las propiedades de auto-renovación de células madre del SNC, la capacidad de diferenciarse en un tipo de célula en respuesta a una señal extracelular es la propiedad definitoria clave de células madre del SNC de roedores según se demuestra arriba. Los tres factores extracelulares, PDGF, CNTF y T3, también dirigían la diferenciación de los clones de células del SNC humanas de una manera idéntica (Tabla V, figs. 6A-D). Así, en presencia de PDGF, células neuronales MAP2-positivas aumentaban hasta un 71% de un clon, significativamente mayor que el 46% en el cultivo control no tratado. En contraposición, en presencia de CNTF, disminuían las células MAP2-positivas y aumentaban drásticamente los astrocitos GFAP-positivos hasta un 85% de los clones. T3 aumentaba las células oligodendrogliales O4 o GalC-positivas, así como las células astrogliales GFAP-positivas, mientras que disminuían neuronas MAP2-positivas (Tabla V). Estos resultados demuestran las similitudes cuantitativamente entre las células madre del SNC de seres humanos y de roedores y la capacidad de aplicación universal del presente sistema de cultivo para una expansión y diferenciación eficaces de células madre del SNC de mamíferos.
9. Maduración, sinaptogénesis y diversidad de neuronas derivadas de células madre in vitro
La multipotencialidad de células madre del SNC y su diferenciación dirigida por parte de señales extracelulares definidas establece inequívocamente que las neuronas se derivan directamente de células madre. Así, el origen de la diversidad neuronal observada en el cerebro maduro parte de células madre del SNC. ¿Pueden las células madre del SNC expandidas en cultivo durante un largo plazo conservar la capacidad de madurar para formar una polaridad axonal-dendrítica, con el fin de interactúar con otras células y formar sinapsis? Con el fin de investigar el grado al que las neuronas derivadas de células madre del SNC pueden madurar in vitro bajo condiciones exentas de suero, se dejó que células madre derivadas del hipocampo de rata embrionario se diferenciaran durante hasta 21 días a alta densidad.
Subsiguientemente, las neuronas se tiñeron con diversos anticuerpos que reconocían proteínas específicas para axones o dendritas. Sinapsina, sinaptofisina, sinaptobrevina y sintaxina son proteínas que se encuentran en las vesículas sinápticas de neuronas maduras en los terminales del axón y están implicada en la exocitosis de neurotransmisores. Las cuatro proteínas estan muy co-localizadas en las neuronas derivadas de células madre, en un modelo en puntos, lo más probablemente delineando los terminales del axón. Los procesos que portan las proteínas de la vesícula sináptica eran delgados, muy elaborados, viajaban durante una larga distancia y decoraban el perímetro de neuronas vecinas (fig. 7G). Estas contenían proteínas específicas para axones tales como tau y neurofilamento y estaban desprovistas de proteínas específicas para dendritas tales como MAP2a y MAP2b (fig. 7H y 7I).
Estos resultados indican que, de manera similar a las neuronas generadas in vivo, neuronas derivadas de células madre exhiben una adecuada polaridad axón-dendrita y exhiben una actividad sináptica. Neuronas derivadas de células madre también expresaban receptores neurotransmisores principales, transportadores y enzimas de tratamiento importantes para las funciones del neurotransmisor. Estos incluian miembros de receptores glutamato, receptores GABA y receptores dopamina (fig. 8). Además, las células madre conservan su capacidad de generar subtipos de neuronas con diferencias moleculares entre los subtipos.
10. Generación in vitro de todos los subtipos neuronales encontrados en el cerebro maduro por diferenciación de las células madre del SNC
Entendiendo los programas moleculares que gobiernan la organización de la diversidad neuronal complejas en el cerebro adulto de mamíferos es un objetivo principal de la neurobiología del desarrollo. La mayoría de los dominios estructurales en el cerebro adulto y subpoblaciones de neuronas post-mitóticas que los comprenden se generan durante el desarrollo embrionario. Las propiedades del desarrollo de las células precursoras inmediatas que dan lugar a neuronas específicas, sin embargo, son ampliamente desconocidas. Tampoco son claras la fase precisa de diferenciación y el principio molecular general mediante el cual las neuronas adquieren sus fenotipos neurotransmisores.
Una línea emergente de evidencias es que desde las fases tempranas del desarrollo, el tubo neural y las vesículas del cerebro son diseñados por una expresión espacial y temporal de un cierto número de proteínas nucleares y segregadas^{58,59}. Esta evidencia es consistente con la hipótesis de que el neuroepitelio temprano está constituido por células precursoras predeterminadas y que la organización cortical madura, por ejemplo, deriva de una "proto-corteza"^{60}, temprana predeterminada.
La idea del neuroepitelio prederminado, sin embargo, está en contra con otras observaciones de estudios en representación en mapa de destino in vivo y de estudios de trasplante^{5,61-63}. Una conclusión principal de estos experimentos es que determinadas poblaciones de precursores son multipotenciales y/o ampliamente plásticas con respecto a los linajes neuronales frente a los gliales, así como los fenotipos neuronales tales como fenotipos neurotransmisores y el destino laminar o regional. Con el fin de reconciliar estos dos conjuntos de observaciones aparentemente contradictorias, deben abordarse varios asuntos principales. ¿Qué es la capacidad de diferenciación de la célula precursora que da directamente origen a neuronas terminalmente diferenciadas? ¿Qué información, si es que hay alguna, contiene la célula precursora con respecto al fenotipo específico de las neuronas?.
Para contestar a estas cuestiones, los autores de la invención han aislado con éxito del neuroepitelio temprano de rata células precursoras multipotenciales, células madre del SNC, y han examinado cuantitativamente su capacidad de diferenciación in vitro^{64} (véanse también los Ejemplos 1-3, 5 y 6). Bajo condiciones constitutivas sin influencia exógena, clones de células madre del SNC se diferenciaban en los tres tipos principales de células - neuronas, astrocitos y oligodendrocitos. En presencia de factores extracelulares sencillos, sin embargo, su elección de destino podía dirigirse hacia tipos de células sencillos. Además, células madre multipotenciales de este tipo eran con mucho la mayoría de poblaciones expandibles en cultivo, lo que sugiere que eran abundantes en el neuroepitelio. Estas propiedades se han compartido también por células madre del SNC procedentes del cerebro fetal humano. Así, estas son las propiedades definitorias de células madre del SNC de mamíferos que constituyen la mayor parte del SNC embrionario y son los precursores directos a las neuronas del cerebro adulto.
Entonces, ¿qué es la capacidad de desarrollo de células madre del SNC multipotenciales con respecto a fenotipos neuronales? En este Ejemplo, los autores de la invención examinaron el grado de información incorporada en las células madre del SNC aisladas para guiar una diferenciación terminal y una maduración de neuronas y para la generación de subpoblaciones específicas de neuronas. Los autores de la invención encontraron que a pesar de que las células madre del SNC están ampliamente distribuidas en grandes números por todo el neuroepitelio y son igualmente multipotenciales con respecto a los tres tipos principales de células, las células madre del SNC derivadas de una región distinta dan origen a fenotipos neuronales apropiados solamente para esa región. Concluyeron que la información que especifica los fenotipos neuronales específicos para la región está presente en el estado de célula madre multipotencial, que esta información es establemente heredada a través de muchas divisiones celulares in vitro y que, cuando se diferencia bajo condiciones constitutivas en ausencia de influencia externa, las células madre del SNC no son equivalentes y cada una da origen a conjuntos sólo restringidos de neuronas apropiados para la región de la que se originaban las células madre del SNC.
En los Ejemplos 1-3, 5 y 6, los autores de la invención limitaron la diferenciación de clones de células madre del SNC solamente al instante más temprano de la maduración en el que los tres fenotipos celulares, es decir neuronas, astrocitos y oligodendrocitos, podían ser tomados como muestras sin topar con la muerte significativa de la célula. Por lo tanto, la diferenciación neuronal estaba limitada solamente a las fases tempranas de diferenciación. Los autores de la invención decidieron examinar en que medida neuronas derivadas de células madre del SNC podían diferenciarse in vitro bajo condiciones constitutivas, es decir en medio exento de suero, mínimo definido en ausencia de factores exógenos.
La diferenciación neuronal abarca muchas fases distintas de la maduración celular. Una de las características iniciales que se esperan de una neurona funcional es la polarización de una neurona en distintos compartimientos, es decir soma, dendrita y axón. Los autores de la invención examinaron diversas condiciones de cultivo definidas para fomentar la diferenciación de clones de células madre del SNC multipotenciales en neuronas polarizadas. Bajo condiciones clonales encontraron que la supervivencia neuronal está también limitada para permitir la caracterización sistemática de fenotipos tardíos de diferenciación neuronal. De manera interesante, la adición de diversos factores neurotróficos comercialmente disponibles, que incluyen familias de NGF y FGF no podía superar esta barrera.
Sin embargo, al aumentar simplemente la densidad celular de células madre del SNC en diferenciación era suficiente para una supervivencia eficaz neuronal, y neuronas polarizadas con una morfología madura podían obtenerse de forma reproducible al cabo de 14-21 días en medio N2 en ausencia de glutamato y de cualesquiera otros factores exógenos. Aunque no es esencial, la suplementación ocasional del cultivo con factor neurotrófico derivado del cerebro (BDNF) facilitaba generalmente de manera adicional la supervivencia neuronal a largo plazo y, por lo tanto, se utilizaba en este Ejemplo.
Específicamente, células madre del SNC se aislaron y expandieron en condiciones definidas tal como se describe previamente antes en los Ejemplos 1-3, 5 y 6. Diferentes neuronas se derivaron aislando células madre del SNC de diferentes regiones del sistema nervioso central y de diferentes fases del desarrollo del SNC. Las condiciones de diferenciación para obtener todos los fenotipos neuronales eran idénticas y las diferentes neuronas se derivaban solamente de permitir la expresión de información inherente ya incorporada en las células madre del SNC expandidas.
Más específicamente, en el último ciclo mitótico, la diferenciación fue manifiestamente desencadenada por la retirada del mitógeno, por ejemplo bFGF, reemplazando el medio exento de mitógeno por medio de crecimiento. Al mismo tiempo, o algunos días más tarde sin ninguna consecuencia diferencial, las células se recolectaron mediante tripsinización y centrifugación de acuerdo con procesos convencionales. La tripsina fue inactivada añadiendo inhibidor de tripsina. El sedimento de células resultante se resuspendió en el mismo medio de crecimiento N2 sin bFGF ni ningún otro factor y se extendió en placas a una alta densidad de células, óptimamente a 125.000 células por centímetro cuadrado, sobre placas de cultivo de tejido pre-revestidas con poli-L-ornitina (15 \mug/ml) y fibronectina (1 \mug/ml) o laminina (1 \mug/ml). Dos a cuatro días más tarde, el medio N2 fue reemplazado por medio N2 sin ácido glutámico. La alta densidad de células era necesaria para una diferenciación neuronal eficaz, y la ausencia de ácido glutámico era necesaria para permitir una supervivencia a largo plazo de neuronas maduras.
Las neuronas se mantuvieron durante largos períodos (hasta 30 días) bajo estas condiciones, cambiando el medio cada 3-4 días. La suplementación del medio con 20 ng/ml de BDNF humano recombinante facilitó adicionalmente la supervivencia y maduración neuronales. Al cabo de 12-30 días de diferenciación, las células se fijaron con paraformaldehído al 4% y los fenotipos neuronales se identificaron mediante inmunocitoquímica frente a proteínas marcadoras.
Con el fin de demostrar directamente que las neuronas maduras y diversos subtipos de neuronas en cultivo se producían directamente a partir de las células madre del SNC mitóticas, las células madre del SNC procedentes de diversas regiones del cerebro embrionario (véase más abajo para los ejemplos), que habían sido expandidas in vitro durante largo tiempo (aproximadamente 16 días y 16 divisiones celulares a lo largo de 4 pases) fueron manifiestamente diferenciadas durante un total de 21 días tal como se describe arriba. Las células madre del SNC mitóticas se marcaron por impulsos con bromodesoxiuridina (BrdU) durante las últimas 24 a 48 horas antes de la diferenciación. Desde todas las regiones, hasta el 86% de neuronas MAP2ab-positivas también eran positivas para BrdU. Hacia las 24 horas del marcaje con BrdU, aproximadamente el 50%-75% de las neuronas, imnunopositivas para los antígenos específicos para diferentes subtipos neuronales, también eran positivas para BrdU. Antes de la etapa de diferenciación manifiesta, no se observaron neuronas que expresaran MAP2ab ni ningún otro antígeno específico para el subtipo en ninguno de los cultivos de células madre del SNC. Así, consistente con los ejemplos previos (Ejemplos 1-8) todas las neuronas y subtipos neuronales que se reseñan más abajo se produjeron exclusivamente a partir de células madre del SNC mitóticas y expandidas durante largo tiempo.
Las neuronas, así obtenidas, contenían una localización distinta de proteínas dendríticas tales como MAP2ab procedentes de proteínas axonales tales como tau, neurofilamentos y varias proteínas de la vesícula sináptica. En la fig. 9 se muestran neuronas típicas derivadas de células madre del hipocampo embrionario de rata. Las neuronas maduras fueron inmunoteñidas tres veces con anticuerpos contra BrdU (fig. 9A), MAP2ab (fig. 9B) y sinapsina (fig. 9C). En la fig. 9D se muestra la tinción combinada.
Las figuras 9E y F muestran otro ejemplo típico de neuronas derivadas de células madre del hipocampo teñidas dos veces para la sinaptofisina (fig. 9E), una proteína de la vesícula sináptica que marca terminales del axón, y MAP2ab (Fig. 9C) que marca el proceso dendrítico. Estos resultados de inmunotinción demuestran la polarización de neuronas en axones y dendritas y sugiere significativamente numerosas uniones sinápticas. Un examen adicional de estas morfologías mediante microscopía electrónica confirmó la abundante presencia de sinapsis que contenían vesículas sinápticas y densidades sinápticas (fig. 10).
Estas redes neuronales también eran electrofisiológicamente funcionales. Conducían potenciales de acción (fig. 11A), contenían diversos canales de iones sensibles a la tensión (fig. 11B) y transmitían potenciales excitatorios e inhibitorios post-sinápticos cuando eran provocados por aplicación en baño del neurotransmisor excitatorio, glutamato (figs. 11C y D). Así, estos resultados demuestran inequívocamente que la totalidad de la información necesaria y suficiente para formar neuronas maduras y sinaptogenésis a partir del estado mitótico está autocontenida y es estable dentro de las células madre del SNC expandidas durante largo tiempo.
Células madre del SNC expandidas durante largo tiempo, derivadas de varias regiones diferentes del neuroepitelio, dieron origen a distintas subpoblaciones de neuronas. Así, células madre del SNC se aislaron a partir de varias regiones diferentes del SNC embrionario de rata en los instantes en los que se sabía que se encontraban en el comienzo o a la mitad de la neurogénesis - corteza (CTX), septum (SEP), eminencia gangliónica lateral (LG - siglas en inglés), eminencia gangliónica media (MGE - siglas en inglés), hipocampo en el día de gestación embrionaria 15,5 (E 15,5), tálamo, hipotálamo E13.5, mesencéfalo ventral y dorsal E12.5 y médulas espinales E11.5-E13.5. A partir de cada una de estas regiones, cultivos casi homogéneos de células madre del SNC se podían expandir durante largo tiempo (típicamente durante 16 días con un tiempo de duplicación medio de 24 horas) de acuerdo con las condiciones de cultivo descritas previamente^{64}.
Las propiedades generales de las células madre del SNC en expansión tales como morfología, velocidad mitótica y características de diferenciación, no se podían distinguir entre diferentes regiones, incluido el hipocampo que ha sido descrito antes en detalle^{64}. En el análisis clonal, cada una de estas regiones contiene muchos clones de células madre del SNC con una capacidad multipotencial de diferenciarse en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos en proporciones relativas idénticas a los clones de células madre del hipocampo previamente detallados^{64}.
La cuestión precisa es entonces si sólo hay un tipo de célula madre que constituye todo el neuroepitelio y que la especificación regional y la diversidad neuronal se producen en etapas subsiguientes de desarrollo, o si las células madre del SNC en la etapa multipotencial contienen la información para fenotipos neuronales regionalmente distintos.
Las eminencias gangliónicas lateral y media son dos estructuras estrechamente adyacentes que se desarrollan en paralelo formando el cuerpo estriado y el globo pálido en el cerebro adulto. Receptores de dopamina, D1 y D2 se expresan en el cuerpo estriado, pero D2 solamente está presente en el pálido. La expresión de receptores D1 y D2 procedentes de células madre del SNC aisladas a partir de las eminencias gangliónicas lateral y media E16 fue examinada por RT-PCR (fig. 12). Antes de la diferenciación, las células madre del SNC procedentes de cualquier región no expresaban receptores de dopamina. Después de 9 días de diferenciación, los receptores D1 y D2 fueron expresados en células madre derivadas de la LGE, pero solamente el receptor D2 se expresaba en células procedentes de la MGE. Este modelo de diferenciación era estable a lo largo del transcurso de la diferenciación durante 21 días del examen (fig. 12).
Neuronas colinérgicas del septum han sido críticamente atribuidas al brote de la enfermedad de Alzheimer. Estas neuronas aparecen durante E15-E18 en ratas. Células madre del SNC derivadas del septum E16 se diferenciaron durante 18-21 días bajo las condiciones definidas según se describen anteriormente, y la presencia de neuronas colinérgicas fue confirmada mediante histoquímica de acetilcolina transferasa y mediante inmunotinción para la acetilcolina transferasa y para el transportador de acetilcolina vesicular. La figura 13 A muestra una neurona colinérgica derivada de células madre del SNC septal, inmunoteñida para la acetilcolina transferasa. La figura 13B muestra el mismo campo de visión que la fig. 13A, teñido para el marcador mitótico BrdU. Las figuras 13C y D muestran otro ejemplo de una neurona colinérgica teñida dos veces para el transportador vesicular de acetilcolina y BrdU, respectivamente.
La Tabla VII resume el número de neuronas MAP2ab-positivas por centímetro cuadrado y las proporciones de diferentes fenotipos neuronales con relación a las neuronas MAP2ab positivas totales derivadas de células madre del SNC de varias regiones y edades diferentes. Aproximadamente 4-5% de las neuronas MAP2-positivas eran colinérgicas. En contraposición, las células madre del SNC del hipocampo y cortical no dieron origen a neuronas colinérgicas.
Aproximadamente 0,4% de neuronas derivadas de células madre del SNC de las LGE y MGE también expresaban el transportador vesicular de acetilcolina, un marcador específico de neuronas colinérgicas (Tabla VII). Aproximadamente 2,8% a 10,7% de neuronas derivadas de las LGE y MGE contenían varios neuropéptidos diferentes, tales como neuropéptido Y, met-encefalina y leu-encefalina (fig. 14; Tabla VII). Las figuras 14A, C y D muestran neuronas derivadas de células madre del SNC de la LGE típicas teñidas para el neuropéptido Y, met-encefalina y leu-encefalina, respectivamente. Las figuras 14B, D y F muestran la inmunotinción para BrdU de los mismos campos que en las figs. 14A, C y E, respetivamente.
Cuando se diferenciaban células madre del SNC expandidas del mesencéfalo ventral E12.5, aproximadamente 2,6 \pm 0,3% de neuronas MAP2-positivas expresaban tirosina hidroxilasa, la enzima clave para la síntesis de dopamina y un marcador bien establecido de neuronas dopaminérgicas (Tabla VII). La figura 15A muestra una neurona TH-positiva derivada de células madre del SNC típica y la figura 15B muestra la correspondiente tinción con BrdU del mismo campo. Todas las células TH-positivas son neuronas como se muestra por la doble tinción para TH y MAP2ab (figs. 15C y D, respectivamente). La mayoría de las neuronas restantes eran positivas para el marcador de neurogas GABAérgicas, ácido glutámico descarboxilasa (GAF) asi como para la propia GABA (fig. 15E) y/o para acetilcolina esterasa (fig. 15F; Tabla VII) que se sabe es expresada en neuronas monoaminérgicas en este área.
En contraposición, células madre del SNC derivadas del mesencéfalo dorsal no generaban neuronas TH-positivas (Tabla VII). Casi todas las neuronas de este área (100,9 \pm 9,1%) expresaban acetilcolina esterasa (Tabla VII). Lo más probable es que sean neuronas monoaminérgicas, consistentes con el modelo in vivo. De manera significativa, no surgían neuronas TH-positivas procedentes de células madre del SNC derivadas de la corteza, septum, hipocampo, cuerpo estriado y médula espinal (Tabla VII). Así, en paralelo con el modelo de expresión in vivo conocido, la generación de neuronas TH-positivas era única para las células madre del SNC del mesencéfalo ventral in vitro.
Células madre del SNC procedentes de la zona cervical y médulas espinales torácicas E13.5 se expandieron y diferenciaron. 1,2 \pm 0,1% de neuronas MAP2-positivas eran colinérgicas que contenían transportador vesicular de acetilcolina (Tabla VII). Las neuronas colinérgicas que también expresan acetilcolina transferasa y son BrdU-positivas se muestran en las figuras 16C y D, respectivamente. 39,3 \pm 2,5% de las neuronas expresaba acetilcolina esterasa (Tabla VII), la mayoría de las cuales se espera que sean monoaminérgicas. Una neurona acetilcolinaesterasa-positiva y BrdU-positiva típica se muestra en las figuras 16A y B, respectivamente.
Neuronas derivadas de células madre del SNC del hipocampo y de la corteza E15.5 no expresaban tirosina hidroxilasa, acetilcolina esterasa, acetilcolina transferasa ni transportador vesicular de acetilcolina (Tabla VII). Esto es apropiado para la conocida ausencia de estos marcadores en el hipocampo in vivo. Aproximadamente el 30% de neuronas MAP2ab-positivas eran GABAérgicas, indicado por la expresión de GAD y GABA. Las figuras 17A y B muestran ejemplos típicos de la tinción GAD- y GABA-positiva, respectivamente, que se solapan por completo. En las figuras 17C y D, respectivamente, se muestra una neurona calretinina- y MAP2ab-positiva del hipocampo típica.
Neuronas maduras también se pueden derivar con una eficacia igual a partir del tálamo e hipotálamo E13.5. Estas neuronas contienen excepcionalmente largos procesos axonales. Una neurona talámica típica, teñida para la proteína axonal, tau, y BrdU se muestra en las figuras 18A y B, respectivamente. Una neurona hipotalámica típica teñida para tau y BrdU se muestra en las figuras 18C y D, respectivamente. La tinción con sinapsina de neuronas talámicas e hipotalámicas se muestra en las figuras 18E y F, respectivamente.
Los ejemplos dados anteriormente, se han seleccionado en base a poblaciones solamente bien establecidas in vivo en la bibliografía y también en base a marcadores bien definidos, comercialmente disponibles. En la Tabla VII se muestra un resumen de las proporciones de diferentes fenotipos neuronales procedentes de diversas células de madre del SNC regionales. Estos ejemplos son sólo una parte de la diversidad neuronal presente en cultivos derivados de células madre del SNC.
En resumen, estos resultados demuestran de forma concluyente que distintas subpoblaciones de neuronas se generan en cultivo a partir de células madre del SNC expandidas, y que los tipos de neuronas generadas quedan restringidos de una manera específica para la región que corresponde a aproximadamente a los modelos de expresión in vivo. La información que especifica el fenotipo neuronal está, por lo tanto, embutida en el estado de célula madre multipotencial. Además de ello, esta información especificativa es congénitamente estable a lo largo de muchas divisiones celulares y queda establecida durante el subsiguiente proceso de diferenciación. Estos resultados demuestran directamente que el neuroepitelio de mamíferos está, de hecho, dividido en un modelo en mosaico de diferentes tipos de células madre del SNC multipotenciales con información hereditaria restringida que especifica fenotipos neuronales en ausencia de cualesquiera otras interacciones. Así, todos los subtipos neuronales encontrados en el cerebro maduro de mamíferos pueden ser generados in vitro mediante una diferenciación apropiada de células madre del SNC.
Estas neuronas y las células madre del SNC capaces de diferenciarse en neuronas de este tipo proporciona el elemento clave para la terapia génica, la terapia celular y la identificación de nuevas moléculas terapéuticas (proteínas, péptidos, ADN, oligonucleótidos, compuestos orgánicos sintéticos y naturales) dirigidos a trastornos del sistema nervioso.
Importancia de la tecnología de células madre del SNC
El comportamiento de las células madre in vitro proporciona importantes conocimientos sobre el desarrollo del SNC. Una proliferación eficaz y una diferenciación controlada de las células precursoras permitía un análisis cuantitativo de su capacidad de desarrollo. Estas células exhiben propiedades que son esperadas de células madre: rápida proliferación, multipotencialidad y auto-regeneración. Además de ello, las células procedentes del cerebro adulto eran cuantitativamente equivalentes a las células embrionarias, indicando que las células madre persisten en el adulto.
Las células multipotenciales podían aislarse eficazmente a partir de muchas regiones del SNC en desarrollo, indicando que son abundantes por todo el neuroepitelio. Esto contrasta con la noción ampliamente mantenida de que las células madre son raras. La diferenciación de las células madre se puede dirigir eficazmente mediante factores extracelulares que se sabe están presentes durante el desarrollo del SNC^{16-23}. Esto sugiere que diferentes factores extracelulares pueden actuar sobre una sola clase de células madre para generar diferentes tipos de células. Un mecanismo instructivo similar también ha sido observado in vitro con células madre aisladas del sistema nervioso periférico^{24}.
Múltiples tipos de células aparecen rápidamente cuando las células madre se diferencian in vitro. En contraposición, neuronas, astrocitos y oligodendrocitos aparecen en distintos instantes in vivo. Claramente, mecanismos adicionales deben regular la elección del destino in vivo. La expresión temporal y espacial de factores extracelulares y sus receptores puede ser una parte del mecanismo.
Otro mecanismo de regulación de la elección del destino in vivo puede implicar etapas intermedias de diferenciación. La identificación de la célula precursora de oligodendrocitos bipotencial, O-2A, a partir del nervio óptico post-natal demostró directamente que durante el desarrollo se producen progenitores restringidos^{25,26}. Las células madre son distintas de las células O-2A. Sus orígenes, propiedades y capacidades de desarrollo difieren. Dando por hecho que las células madre se diferencian en oligodendrocitos, la vía de diferenciación puede implicar una fase intermedia obligatorio, un estado progenitor comprometido tal como la célula O-2A. Las respuestas similares de las dos células a T3 y CNTF^{27,28}, puede reflejar esta etapa común.
Existe también evidencia del análisis del linaje in vivo e in vitro en cuanto a la presencia de otras restricciones del linaje, incluidos precursores neuronales y de oligodendrocitos bipotenciales y progenitores neuronales comprometi-
dos^{6,7,29,30}. Estos también pueden surgir de la diferenciación de células madre. El ensayo clonal descrito en esta memoria permitirá definir cuantitativamente las contribuciones relativas de compromiso de linaje frente a factores instructivos y selectivos en estas células intermedias.
En resumen, la presente solicitud revela que:
(1) se puede hacer que la mayoría de las regiones del cerebro y de la médula espinal fetales puedan multiplicarse en cultivo bajo condiciones de cultivo completamente definidas para proporcionar hasta un incremento de 1.000.000.000 de veces en el número de células;
(2) el cultivo de células madre homogéneo puede ser excitado para diferenciarse bajo condiciones controladas con precisión, en las que hasta el 50% de las células se diferencian en neuronas, mientras que las células restantes se convierten en astrocitos y oligodendrocitos;
(3) muchos tipos diferentes de neuronas se generan en cultivo;
(4) se han identificado factores de crecimiento que dirigen eficazmente las células madre a diferenciarse en un sólo tipo de célula, es decir neurona, astrocito u oligodendrocito; y
(5) se han aislado y expandido células madre equivalentes a partir de la capa subependimal de adultos utilizando un proceso similar.
Estos resultados enumerados proporcionan las siguientes ventajas frente al estado actual de la técnica. En primer lugar, esta tecnología de células madre del SNC permite un cultivo a gran escala de células madre homogéneas en un estado no diferenciado. Cuanto más tiempo se puedan mantener las células en el estado de célula madre, tanto mayor será el rendimiento de neuronas que se pueden derivar del cultivo, permitiendo con ello una transferencia más eficaz de genes y una selección a gran escala de esas células que portan el gen de interés.
En segundo lugar, este sistema de cultivo permite una diferenciación controlada de las células madre, en donde el 50% de las células expandidas se convierte ahora en neuronas. Esta eficaz diferenciación, combinada con una eficaz proliferación, proporciona rutinariamente más de 100 millones de neuronas a partir de la neocorteza de un cerebro fetal de rata en un período de dos semanas.
En tercer lugar, la diferenciación de las células madre en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos se produce constitutivamente, en donde los tres tipos de células continúan madurando en cultivo, lo más probablemente debido a interacciones de nutrición unos con otros, tal como durante el desarrollo normal del cerebro. Surgen muchos tipos diferentes de neuronas, que responden a muchos factores de crecimiento y que contienen neurotransmisores y sus receptores. Así, una parte importante del desarrollo del cerebro puede ser recapitulada en un entorno manipulable, destacando con ello el potencial de extraer y someter a ensayo nuevos factores neurotrópicos normalmente secretados por estas células.
Finalmente, estos resultados permiten el establecimiento de condiciones mediante las cuales neuronas inmaduras en división se pueden derivar directamente de las células madre y se pueden expandir adicionalmente para permitir un aislamiento a gran escala de tipos específicos de neuronas en cultivo.
Aplicaciones comerciales potenciales
La tecnología de células madre de la presente invención se puede desarrollar para la aplicación directa a muchos aspectos diferentes del descubrimiento de terapia y de fármacos para trastornos del sistema nervioso. En lo que sigue se esbozan cuatro ejemplos para aplicaciones comerciales potenciales, es decir la terapia génica para la enfermedad de Parkinson, la terapia celular, la investigación de nuevos factores de crecimiento y ensayos para el rastreo de fárma-
cos.
Las células madre del SNC cumplen de sobra los criterios técnicos como vehículos para las terapias génicas y las terapias celulares en general. Las células madre se pueden expandir rápidamente bajo condiciones controladas con precisión y reproducibles. Además, estas células son fácilmente accesibles a todos los protocolos de transferencia de genes estándares tales como a través de tratamiento con retrovirus, adenovirus, liposomas y fosfato de calcio, así como subsiguientes protocolos de selección y expansión. Las células madre expandidas se diferencian eficazmente en neuronas en masa.
Además, debe enfatizarse que dos propiedades adicionales de las células madre las hacen únicas como la base fundamental del desarrollo terapéutico dirigido al sistema nervioso en seres humanos. En primer lugar, una vez que las células madre son obligadas a diferenciarse en tipos de células maduras, la totalidad de las interacciones moleculares se encuentran dispuestas en el sistema de cultivo para generar, madurar y sobrevivir una diversidad de diferentes tipos de células y subtipos neuronales. Estas interacciones recapitulan una parte importante del proceso natural de desarrollo del cerebro. Por lo tanto, las células madre, en calidad de vehículos de la terapia génica y de la terapia celular, no sólo reestablecen un gen o factor potencial sencillo a suministrar, sino también toda la infraestructura para la regeneración del nervio.
En segundo lugar, las células madre en cultivo se expanden a partir de los precursores germinales multipotenciales del desarrollo normal del cerebro. Por lo tanto, estas células madre conservan la capacidad de convertirse no solamente en tres tipos de células diferentes, sino también en muchos diferentes tipos de neuronas en función de los entornos medioambientales a los que están expuestos. Esta amplia plasticidad, que es la propiedad inherente de las células madre, sugiere de manera precisa que, una vez trasplantadas, las células pueden conservar la capacidad de conformarse en muchas regiones diferentes del cerebro del hospedante y de diferenciarse en neuronas específicas para esa región particular del hospedante. Estas propiedades intrínsecas de las células madre primarias son bastante diferentes de las líneas celulares tumorigénicas existentes, en las que una cierta diferenciación neuronal puede ser inducida bajo condiciones artificiales. Por lo tanto, con estas propiedades únicas, células madre del SNC humano expandible contienen un importante potencial comercial por sí mismas, con un pequeño desarrollo adicional.
1. Terapia génica para la enfermedad de Parkinson
La enfermedad de Parkinson resulta principalmente de la degeneración de neuronas liberadoras de dopamina en la sustancia negra del cerebro y el agotamiento resultante del neurotransmisor de dopamina en el cuerpo estriado. La causa de esta degeneración es desconocida, pero los síntomas de degenaración motrices de la enfermedad pueden aliviarse administrando periféricamente el precursor de dopamina, L-dopa, en el brote temprano de la enfermedad. A medida que la enfermedad continúa empeorando, L-dopa ya no es eficaz y, actualmente, no hay disponible ningún tratamiento adicional. Un tratamiento prometedor que se está desarrollando consiste en trasplantar neuronas de la sustancia negra ricas en dopamina procedentes del cerebro del feto en el cuerpo estriado del cerebro del paciente. Resultados obtenidos de diversos centros clínicos se muestran extremadamente optimistas. Sin embargo, se estima que se necesitan hasta 10 cerebros fetales con el fin de obtener células suficientes para una operación de trasplante. Este requisito hace inviable la amplia aplicación del trasplante de neuronas primarias como realidad terapéutica. Este es exactamente el tipo de problema resuelto por la tecnología de células madre del SNC de la presente solicitud, en la que un pequeño número de células puede ser expandido en cultivo hasta 1.000.000.000 de veces.
Se reconoce ahora ampliamente que el trasplante de células productoras de dopamina es la terapia más prometedora de la enfermedad de Parkinson grave y que para una terapia eficaz es esencial una población estable de células o una línea de células tratada genéticamente para producir dopamina. Tirosina hidroxilasa (TH) es la enzima clave para la síntesis de dopamina. Se pueden producir células madre del SNC humanas derivadas de ganglios basales fetales que expresen el gen tirosina hidroxilasa (TH). Estas células se pueden expandir, diferenciar y trasplantar en el cuerpo estriado del paciente. Dado que las células se derivan originalmente del cuerpo estriado primordial, tendrán la mejor opción de integrarse en esta región del cerebro. La producción de células de este tipo y su trasplante con éxito en modelos de animales dará como resultado la aplicación más prometedora de la terapia génica hasta la fecha.
2. Terapia celular
En la mayoría de las enfermedades neurológicas, a diferencia de la enfermedad de Parkinson, la causa de los síntomas no puede ser atribuida a un sólo factor. Esta condición hace ineficaz el enfoque terapéutico de introducir un único gen mediante terapia génica. Más bien, se requerirá la sustitución del complejo neuronal del hospedante por células sanas. Dado que las células madre del SNC son las células germinales naturales del cerebro en desarrollo, la capacidad de convertirse en células del cerebro maduro, las células madre procedentes de la médula espinal y diferentes regiones del cerebro se pueden utilizar directamente para repoblar nervios degenerados en diversas neuropatías.
Se están desarrollando varias líneas de células madre específicas que sobreexpresan diversos factores de crecimiento, que están actualmente en ensayos clínicos. Esta aplicación combina la plasticidad única de las células madre y la terapia génica mediada por el factor de crecimiento para proporcionar no solamente el beneficio del suministro dirigido de la proteína, sino también una regeneración neuronal amplia en zonas específicas.
Ejemplos primarios de factores de crecimiento actualmente en ensayos clínicos o bajo desarrollo completo por diversas compañías se listan más abajo en la Tabla VI^{31}. Hasta la fecha, ensayos de factores de crecimiento han quedado limitados a dirigir la inyección periférica de grandes dosis, lo que conlleva riesgos importantes de efectos secundarios, ya que la mayoría de los factores de crecimiento afectan a muchas poblaciones diferentes de neuronas y de tejidos no neurales y con una semivida corta. Estos problemas se pueden superar generando a partir de células madre del SNC varias poblaciones de células o líneas de células que expresen establemente estos factores de crecimiento y que demuestren su capacidad de diferenciarse en neuronas y de segregar los factores de crecimiento en regiones periféricas y centrales específicas.
3. Investigación de nuevos factores de crecimiento
Uno de los principios centrales de la neurobiología moderna es que cada una de las neuronas de mayor proyección, si no todas la neuronas, requieren señales específicas (factores tróficos) para alcanzar sus células diana y sobrevivir. Las neuropatías en muchas enfermedades pueden ser provocadas por o pueden implicar una carencia de factores de crecimiento de este tipo. Estos factores de crecimiento representan la siguiente generación de fármacos preventivos y terapéuticos para trastornos del sistema nervioso y, por lo tanto, el enorme capital invertido en la investigación de nuevos factores de crecimiento por parte de la industria biotecnológica.
Implícito en la observación de que una diversidad de neuronas maduras pueden ser producidas a partir del cultivo de células madre del SNC es que diversos factores de crecimiento son segregados por las células en fase de diferenciación para la determinación de tipos de célula, maduración y el soporte continuado de su supervivencia y que las células contienen la maquinaria receptora necesaria para responder a esos factores de crecimiento y, probablemente, a otros. La mayoría de los factores de crecimiento actualmente conocidos en el sistema nervioso se descubrieron por sus efectos sobre los nervios periféricos y, lo más probablemente, representan una fracción muy pequeña de factores de crecimiento existentes en el cerebro.
La investigación de factores de crecimiento del cerebro ha sido difícil, principalmente debido a que tipos de células neuronales particulares son difíciles de aislar del cerebro y de mantenerlos en condiciones de cultivo definidas. La diferenciación de las células madre en neuronas supera este problema y abre nuevos ensayos para rastrear factores de crecimiento potenciales.
4. Ensayos del rastreo de fármacos
Dado que se están identificando cada vez más receptores neurotransmisores y proteínas transductoras de señales a partir del cerebro, está resultando claro que el dogma de un neurotransmisor que activa un receptor es una suprasimplificación. La mayoría de los complejos receptores de neuronas están constituidos por subunidades de proteínas codificadas por varios genes, y cada gen sintetiza muchas variaciones diferentes de la proteína. Estas variaciones resultan en una amplia gama de posibles combinaciones de receptores y no un solo receptor, que pueden interactuar con un neurotransmisor. Por consiguiente, se puede producir una gama de salida de señales por parte de una sola acción de neurotransmisor. La señal específica efectuada por un neurotransmisor en una neurona depende entonces de qué complejo receptor es producido por la célula. Así, la diversidad celular debe ir paralela con la diversidad molecular y constituir un elemento estructural principal en el que se basa la complejidad de la función del cerebro.
El descubrimiento de fármacos por parte de la farmacología tradicional ha sido realizado sin el conocimiento de una complejidad de este tipo utilizando un homogeneizado de cerebro completo y animales, y la mayoría de los análogos producidos de neurotransmisores con amplias acciones y efectos secundarios. La siguiente generación de fármacos farmacéuticos, con el propósito de modificar funciones específicas del cerebro, se puede obtener rastreando potenciales químicos contra neuronas que exhiben un perfil específico de neurotransmisores, complejos receptores y canales de iones.
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Células madre del SNC, expandidas y diferenciadas en neuronas en cultivo expresan varios neurotransmisores y complejos de receptores. Se pueden desarrollar muchas líneas de células derivadas de células madre y progenitores neuronales de diferentes regiones del cerebro que, cuando se diferencian en neuronas maduras, exhibirían un perfil único de complejos de neurotransmisor y receptor. Líneas de células neuronales de este tipo serían herramientas valiosas para diseñar y rastrear fármacos potenciales.
En resumen, la tecnología de células madre del SNC de esta solicitud ofrece amplios e importantes potenciales para tratar trastornos del sistema nervioso.
A lo largo de esta solicitud se han citado los siguientes artículos científicos.
1. Turner, D.L. y Cepko, C.L., Nature 328, 131-136 (1987).
2. Gray, G., Glover, J., Majors, J. y Sanes, J., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85, 7356-7360 (1988).
3. Wetts, R. y Fraser, S., Science 239 1142-1145 (1988).
4. McConnell, S., Curr. Opin. Neurobiol. 2, 23-27 (1992).
5. Walsh, C. y Cepko, C.L. Nature 362, 632-635 (1993).
6. Davis, A.A. y Temple, S., Nature 372, 263-266 (1994).
7. Williams, B. y Price, J., Neuron 14, 1181-1188 (1995).
8. Cattaneo, E. y McKay, R.D.G., Nature 347, 762-765 (1990).
9. Reynolds, B., Tetzlaff, W. y Weiss, S., J. Neurosci. 12, 4565-4574 (1992).
10. Ray, J., Peterson, D., Schinstine, M. y Gage, F., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90, 3602-3606 (1993).
11. Ghosh, A. y Greenberg, M., Neuron 15, 89-103 (1995).
12. Vicario-Abejon, C., Johe, K., Hazel, T., Collazo, D. y McKay, R., Neuron 15, 105-114 (1995).
13. Frederiksen, K. y McKay, R.D.G., J. Neurosci. 8, 1144-1151 (1988).
14. Lendahl, U., Zimmermann, L.B. y McKay, R.D.G., Cell 60, 585-595 (1990).
15. Reynolds, B. y Weiss, S., Science 255, 1707-1710 (1992).
16. Ip, N. et al., Neuron 10, 89-102 (1993).
17. Davis, S. et al., Science 260, 1805-1808 (1993).
18. Ware, C. et al., Development 121, 1283-1299 (1995).
19. Yeh, H.-J., Ruit, K. G., Wang, Y-X., Parks, W.C., Snider, W. D. y Deuel, T.F., Cell 64, 209-216 (1991).
20. Yeh, H.-J., Silos-Santiago, I., Wang, Y.-X., George, R.J., Snider, W.D. y Deuel, T.F., Proc. Natl. Acad. Sci., U.S.A. 90, 1952-1956 (1993).
21. Orr-Urtregger, A., Bedford, M.T., Do, M.S., Eisenbach, L. y Lonai, P., Development 115, 289-303 (1992).
22. Reddy, U.R. y Pleasure, D., J. Neurosci. Res. 31, 670-677 (1992).
23. Barres, B. y Raff, M., Neuron 12, 935-942 (1994).
24. Shah, N.M., Marchionni, M.A., Isaacs, I., Stroobant, P. y Anderson, D.J., Cell 77, 349-360 (1994).
25. Raff, M., Miller, R. y Noble, M., Nature 303, 390-396 (1983).
26. Raff, M., Science 243, 1450-1455 (1989).
27. Barres, B., Lazar, M. y Raff, M., Development 120, 1097-1108 (1994).
28. Hughes, S., Lillien, L., Raff, M., Rohrer, H. y Sendtner, M., Nature 335, 70-73 (1988).
29. Luskin, M., Parnavelas, J. y Barfield, J., J. Neurosci. 13, 1730-1750 (1993).
30. Luskin, M., FASEB J. 8, 722-730 (1994).
31. Schatzle, H.M., Trends in Neuroscience 18, 463-464 (1995).
32. Sabate, O., Horellou, P., Vigne, E., Colin, P., Perricaudet, M., Buc-Caron, M.-H y Mallet, J., Nature Genetics 9, 256-260 (1995).
33. Svendsen, C.N. y Rosser, A.E., Trends in Neuroscience 18, 465-466 (1995).
34. Gage, F.H., Ray, J. y Fisher, L.J., Annu. Rev. Neurosci. 18, 159-192 (1995).
35. Gage, F.H., Coates, P.W., Palmer, T.D., Kuhn, H.G., Fisher, L.J., Shonen, J.O., Peterson, D.A., Suhr, S.T. y Ray, J., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92, 11879-11883 (1995).
36. Svendsen, C. N., Fawcett, J.W., Bentlage, C. y Dunnett, S.B., Exp. Brain. Res. 102, 407-414 (1995).
37. Hermanson, M., Olsson, T., Westermark, B. y Funa K., Exp. Brain Res. 102, 415-422 (1995).
38. Kilpatrick, T.J., Richards, L.J. y Bartlett, P.F., Mol. Cell. Neurosci. 6, 2-15 (1995).
39. Ray, J. y Gage, F.H., J. Neurosci. 14, 3548-3564 (1994).
40. Gritti, A. et al., J. Neurosci. 16, 1091-1100 (1996).
41. Vescovi, A.L., Reynolds, B.A., Fraser, D.D. y Weiss, S., Neuron 11, 951-966 (1993).
42. Ahmed, S., Reynolds, B.A. y Weiss, S., J. Neurosci. 15, 5765-5778 (1995).10.11.
43. Kilpatrick, T.J. y Bartlett, P.F., Neuron 10, 255-265 (1993).
44. Kilpatrick, T.J. y Bartlett, P.F., J. Neurosci. 15, 3653-3661 (1995).
45. Baetge, E.E. Ann. N.Y. Acad. Sci. 695, 285 (1993).
46. Bartlett, P.F. et al., Clin. Exp. Pharm. Physiol. 22, 559-562 (1995).
47. Temple, S. y Qian, X., Curr. Opin. Neurobiol. 6, 11-17 (1996).
48. Brustle, O. y McKay, R.D.G., Curr. Opin. Neurobiol. 6, 688-695 (1996).
49. Weiss, S., Reynolds, B.A., Vescovi, A.L. Morshead, C., Craig, C.G., van der Kooy, D., Trends Neurosci. 19, 387-393 (1996).
50. Stemple, D.L. y Mahanthappa, N.K., Neuron 18, 1-4 (1997).
51. Morrison, S.J., Shah, N.M. y Anderson, D.J., Cell 88, 287-298 (1997).
52. McKay, R., Science 276, 66-71 (1997).
53. Reynolds, B.A. y Weiss, S., Dev. Biol. 175, 1-13 (1996).
54. Weiss, S., Dunne, C., Hewson, J., Wohl, C., Wheatley, M., Peterson, A.C. y Reynolds, B.A., J. Neurosci. 16, 7599-7609 (1996).
55. Svendsen, C.N., Clarke, D.J., Rosser, A.E. y Dunnett, S.B., Exp. Neurol. 137, 376-388 (1996).
56. Schinstine, M. e Iacovitti, L., Exp. Neurol. 141, 67-78 (1996).
57. Qian, X., Davis, A.A., Goderie, S.K. y Temple, S., Neuron 18, 81-93 (1997).
58. Lumsden, A. y Krumlauf, R., Science 274, 1109-1115 (1996).
59. McConnell, S.K., Neuron 15, 761-768 (1995).
60. Rakic, P., Proc. Natl. Acad. Sci, USA 92, 11323-11327 (1995).
61. Schlaggar, B.L. y O'Leary, D.D.M., Science 252, 1556-1560 (1991).
62. Brustle, O., Maskos, U. y McKay, R.D.G., Neuron 15, 1275-1285 (1995).
63. Vicario-Abejon, C., Cunningham, M.G. y McKay, R.D., J. Nerosci. 15, 6351-6353 (1995).
64. Johe, K.K., Hazel, T.G., Muller, T., Dugich-Djordjevic, M.M. y McKay, R.D.G., Genes Dev. 10, 31129-31140 (1996).
65. Palmer, T.D., Takahashi, J. y Gage, F.H., Mol. Cell. Neurosci. 8, 389-404 (1997).
66. Finley, M.F.A., Kulkarni, N. y Huettner, J.E., J. Neurosci. 16, 1056-1065 (1996).
67. Strubing, C., Ahnert-Hilger, G., Shan, J., Wiedenmann, B., Hescheler, J. y Wobus, A.M., Mech. Dev. 53, 275-287 (1995).
68. Okabe, S., Forsberg-Nilsson, K., Spiro, A.C., Segal, M. y McKay, R.D., Mech. Dev. 59, 89 (1996).
69. Feldman, D.H., Thinschmidt, J.S., Peel, A.L., Papke, R.L. y Reier, P.J., Exp. Neurology 140, 206-217 (1996).
Mientras que la invención ha sido descrita en relación con lo que actualmente se considera son las realizaciones más prácticas y preferidas, ha de entenderse que la invención no está limitada a las realizaciones descritas.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA I Composición del tipo de célula de clones diferenciados
Clones de células precursoras del hipocampo embrionario
1 
\newpage
TABLA II Composición del tipo de célula de clones diferenciados
Subclones procedentes de clones de células precursoras del hipocampo embronario
2 
\newpage
TABLA III Composición del tipo de célula de clones diferenciados
Clones de células subependimales de adulto
3
TABLA IV Efecto de factores extracelulares sobre la determinación del tipo de célula
4 
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA V Diferenciación dirigida de células madre del SNC humano expandidas con bFGF
5
TABLA VI Factores neurotrópicos y enfermedades
6
7
Leyendas de la Tabla VII
^{1} Los números para los diferentes fenotipos nuronales se dan como el porcentaje de neuronas MAP2ab-positivas por centímetro cuadrado para cada región. MAP2ab, proteína a y b asociada a microtúbulos; TH, tirosina hidroxilasa; AchE, aceticolina esterasa; VAT, transportador de acetilcolina vesicular; ChAT, colina acetil transferasa; GAD, ácido glutámico descarboxilasa; NPY, neuropéptido Y; L-Enk, leu- encefalina; M-Enk, met-encefalina.
^{2} Regiones de las que se derivaron células madre del SNC. SEPT, septum 15.5; LGE, eminencia gangliónica lateral E15.5; MGE, eminencia gangliónica media 15.5; HI, hipocampo E15.5; VM, mesencéfalo ventral E12.5; DM, mesencéfalo dorsal E12.5; SPC, médula espinal E13.5.
^{3} Se muestra el número medio de células MAP2ab-positivas por centímetro cuadrado. Los números iniciales de células extendidas en placa para todas las regiones era de 125.000 células por centímetro cuadrado \pm error medio estándar.

Claims (12)

  1. \global\parskip0.970000\baselineskip
    1. Un método para la expansión y cultivo in vitro de células madre del sistema nervioso central de un mamífero, en el que las células madre conservan la capacidad multipotencial de diferenciarse en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos, que comprende las etapas de:
    a) disociar células procedentes de tejido del sistema nervioso central mediante trituración mecánica en ausencia de cationes divalentes;
    b) cultivar las células disociadas adheridas a una placa en un medio de cultivo exento de suero;
    c) extender en placas células disociadas a una densidad que no exceda de 20.000 células/cm^{2} y, en pasos subsiguientes, volver a extender en placas las células cultivadas a una densidad que no exceda de 10.000 células/cm^{2};
    d) añadir diariamente a las células de cultivo un factor de crecimiento seleccionado del grupo que consiste en
    i)
    bFGF a una concentración de al menos 10 ng/ml,
    ii)
    EGF a una concentración de al menos 10 ng/ml,
    iii)
    TGF-alfa a una concentración de al menos 10 mg/ml, y
    iv)
    aFGF a una concentración de al menos 10 ng/ml más 1 \mug/ml de heparina;
    e) hacer pasar las células cultivadas en el espacio de cuatro días después de la extensión en placa, de modo que no exceda de una confluencia del 50%; y
    f) hacer pasar las células cultivadas tratando las células cultivadas con solución salina.
  2. 2. Un cultivo de adhesión in vitro de células madre del sistema nervioso central de un mamífero, en donde el cultivo se puede obtener por el método de la reivindicación 1, y en donde las células madre
    a) expresan nestina;
    b) conservan la capacidad multipotencial de diferenciarse en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos; y
    c) se diferencian tras la retirada de mitógeno.
  3. 3. Un método para la diferenciación de un cultivo in vitro de células madre del sistema nervioso central de un mamífero, en el que las células madre conservan la capacidad multipotencial de diferenciarse en neuronas, astrocitos y oligodendrocitos, que comprende las etapas de:
    a) disociar células procedentes de tejido del sistema nervioso central mediante trituración mecánica en ausencia de cationes divalentes;
    b) cultivar las células disociadas adheridas a una placa en un medio de cultivo exento de suero;
    c) extender en placas células disociadas a una densidad que no exceda de 20.000 células/cm^{2} y, en pasos subsiguientes, volver a extender en placas las células cultivadas a una densidad que no exceda de 10.000 células/cm^{2};
    d) añadir diariamente a las células cultivadas un primer factor de crecimiento seleccionado del grupo que consiste en
    i)
    bFGF a una concentración de al menos 10 ng/ml,
    ii)
    EGF a una concentración de al menos 10 ng/ml,
    iii)
    TGF-alfa a una concentración de al menos 10 mg/ml, y
    iv)
    aFGF a una concentración de al menos 10 ng/ml más 1 \mug/ml de heparina;
    e) se hacen pasar las células cultivadas en el espacio de cuatro días después de la extensión en placa, de modo que no exceda de una confluencia del 50%;
    f) se hacen pasar las células cultivadas tratando las células cultivadas con solución salina; y
    g) separar el primer factor de crecimiento de las células cultivadas, en donde dicha separación da como resultado la diferenciación de las células cultivadas en neuronas, astrocitos y/u oligodendrocitos.
  4. 4. El método de la reivindicación 1 o la reivindicación 3, en el que en la etapa (b), el medio de cultivo se define químicamente, el medio de cultivo se reemplaza por medio reciente cada dos días y en el que en la etapa (f) la solución salina está exenta de cationes divalentes y las células se raspan de la placa.
  5. 5. El método o cultivo in vitro de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, en el que la células madre se derivan de tejido del sistema nervioso central de un ser humano.
  6. 6. El método o cultivo in vitro de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, en el que las células madre se derivan del tejido del sistema nervioso central de un feto no humano.
  7. 7. El método o cultivo in vitro de la reivindicación 5, en el que las células madre se derivan de tejido del sistema nervioso central de un adulto.
  8. 8. El método o cultivo in vitro de las reivindicaciones 5, 6 ó 7, en el que las células madre se derivan de tejido del sistema nervioso central seleccionado del grupo que consiste en hipocampo, corteza cerebral, cuerpo estriado, septum, diencéfalo, mesencéfalo, cerebelo y médula espinal.
  9. 9. El cultivo in vitro de la reivindicación 2, en el que las células madre se diferencian en neuronas maduras que exhiben:
    a) una polaridad axón-dendrita,
    b) terminales sinápticos, y
    c) localización de proteínas implicadas en la sinaptogénesis y la actividad sináptica, que incluyen
    i)
    receptores de neurotransmisores,
    ii)
    transportadores, y
    iii)
    enzimas de procesamiento.
  10. 10. El cultivo in vitro de la reivindicación 2, en el que las células madre conservan su capacidad de generar subtipos de neuronas con diferencias moleculares entre los subtipos.
  11. 11. El método de la reivindicación 3, que comprende, además, añadir un segundo factor de crecimiento a las células cultivadas después de separar el primer factor de crecimiento de las células cultivadas, en el que el segundo factor de crecimiento es diferente del primer factor de crecimiento.
  12. 12. El método de la reivindicación 11, en el que el segundo factor de crecimiento se selecciona del grupo que consiste en factor de crecimiento derivado de plaquetas (PDGF), factor neurotrópico ciliar (CNTF), factor inhibidor de leucemia (LIF) y hormona tiroides, yodotironina (T3).
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Families Citing this family (275)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7037721B1 (en) * 1990-01-29 2006-05-02 Hy-Gene Biomedical, Inc. Protein-free defined media for the growth of normal human keratinocytes
US7361505B1 (en) 1991-07-08 2008-04-22 Neurospheres Holdings Ltd. Multipotent neural stem cell compositions
US6497872B1 (en) * 1991-07-08 2002-12-24 Neurospheres Holdings Ltd. Neural transplantation using proliferated multipotent neural stem cells and their progeny
US7166277B1 (en) 1991-07-08 2007-01-23 Neurospheres Holdings Ltd. Remyelination of neurons using multipotent neural stem cell progeny
US6399369B1 (en) 1991-07-08 2002-06-04 Neurospheres Holdings Ltd. Multipotent neural stem cell cDNA libraries
US5910161A (en) * 1994-09-20 1999-06-08 Fujita; Makoto Refrigerating apparatus
US7544511B2 (en) 1996-09-25 2009-06-09 Neuralstem Biopharmaceuticals Ltd. Stable neural stem cell line methods
US6787355B1 (en) 1996-08-26 2004-09-07 Mcgill University Multipotent neural stem cells from peripheral tissues and uses thereof
US6969608B1 (en) 1996-08-26 2005-11-29 Mcgill University Pharmaceuticals containing multipotential precursor cells from tissues containing sensory receptors
WO1998030678A1 (en) * 1997-01-07 1998-07-16 Steindler Dennis A Isolated mammalian neural stem cells, methods of making such cells, and methods of using such cells
US6245564B1 (en) 1997-01-23 2001-06-12 Cornell Research Foundation, Inc. Method for separating cells
US6361996B1 (en) * 1997-05-07 2002-03-26 University Of Utah Research Foundation Neuroepithelial stem cells and glial-restricted intermediate precursors
AU7963998A (en) 1997-06-13 1998-12-30 University Technology Corporation Transplantation of immortalized dopamine cells to improve neurological deficits
US6235527B1 (en) * 1997-11-29 2001-05-22 University Of Utah Research Foundation Lineage restricted glial precursors from the central nervous system
WO2000068359A1 (en) * 1999-05-07 2000-11-16 University Of Utah Research Foundation Lineage-restricted precursor cells isolated from mouse neural tube and mouse embryonic stem cells
US6734015B1 (en) * 1997-07-04 2004-05-11 University Of Utah Research Foundation Isolation of lineage-restricted neuronal precursors
US20020016002A1 (en) * 2000-01-24 2002-02-07 Jean Toma Multipotent neural stem cells from peripheral tissues and uses thereof
US20020123143A1 (en) * 1997-08-22 2002-09-05 Jean Toma Multipotent stem cells from peripheral tissues and uses thereof
US5968829A (en) * 1997-09-05 1999-10-19 Cytotherapeutics, Inc. Human CNS neural stem cells
US6126955A (en) * 1998-04-16 2000-10-03 University Of Utah Research Foundation Apo-transferrin as a potent inhibitor of bacterial adhesion to biomaterials
US6027744A (en) * 1998-04-24 2000-02-22 University Of Massachusetts Medical Center Guided development and support of hydrogel-cell compositions
US6171610B1 (en) * 1998-04-24 2001-01-09 University Of Massachusetts Guided development and support of hydrogel-cell compositions
US20080206206A1 (en) 1998-05-07 2008-08-28 University Of South Florida Bone marrow-derived neuronal cells
ES2246085T3 (es) * 1998-05-07 2006-02-01 University Of South Florida Celulas de medula osea como fuente de neuronas util para reparar la medula espinal y el cerebro.
SE9802264D0 (sv) * 1998-06-25 1998-06-25 Neuronova Ab A method of isolating cells
US6541247B1 (en) * 1998-06-25 2003-04-01 Neuronova Ab Method of isolating ependymal neural stem cells
US6800790B2 (en) * 1998-07-24 2004-10-05 Carnegie Institution Of Washington Method for maintenance and propagation of germline stem cells using members of the TFG-β family of growth factors
US5958767A (en) * 1998-08-14 1999-09-28 The Children's Medical Center Corp. Engraftable human neural stem cells
US20020115213A1 (en) * 1998-08-14 2002-08-22 Northeastern Ohio Universities Of Medicine Engraftable neural progenitor & stem cells for brain tumor therapy
US7186409B2 (en) 1998-08-14 2007-03-06 The Children's Medical Center Corporation Neural stem cells and use thereof for brain tumor therapy
JP4709382B2 (ja) * 1998-09-22 2011-06-22 ニューラルステム バイオファーマシューティカルズ、リミテッド 安定な神経幹細胞系
WO2000020560A1 (en) * 1998-10-07 2000-04-13 The Children's Hospital Medical Center Corp. Engraftable neural progenitor and stem cells for brain tumor therapy
US8263402B1 (en) 1998-10-19 2012-09-11 Cornell Research Foundation, Inc. Method for isolating and purifying oligodendrocytes and oligodendrocyte progenitor cells
US20020168766A1 (en) * 2000-01-11 2002-11-14 Gold Joseph D. Genetically altered human pluripotent stem cells
US7410798B2 (en) * 2001-01-10 2008-08-12 Geron Corporation Culture system for rapid expansion of human embryonic stem cells
US6667176B1 (en) 2000-01-11 2003-12-23 Geron Corporation cDNA libraries reflecting gene expression during growth and differentiation of human pluripotent stem cells
SE9900134D0 (sv) * 1999-01-15 1999-01-15 A & Science Invest Ab A method for introducing substances into cells, and use of said method
US7041507B1 (en) 1999-01-20 2006-05-09 Cedars-Sinai Medical Center Transdiffentiation of transfected epidermal basal cells into neural progenitor cells, neuronal cells and/or glial cells
US6087168A (en) * 1999-01-20 2000-07-11 Cedars Sinai Medical Center Conversion of non-neuronal cells into neurons: transdifferentiation of epidermal cells
WO2000047718A1 (en) * 1999-02-11 2000-08-17 The Salk Institute For Biological Studies Isolation of stem cells and methods of use thereof
EP1144671B1 (en) * 1999-02-12 2007-11-07 StemCells, Inc. Enriched central nervous system cell populations
US7105150B2 (en) * 1999-02-12 2006-09-12 Stemcells California, Inc. In vivo screening methods using enriched neural stem cells
US6468794B1 (en) 1999-02-12 2002-10-22 Stemcells, Inc. Enriched central nervous system stem cell and progenitor cell populations, and methods for identifying, isolating and enriching for such populations
US7037719B1 (en) 1999-02-12 2006-05-02 Stemcells California, Inc. Enriched central nervous system stem cell and progenitor cell populations, and methods for identifying, isolating and enriching for such populations
US7217565B2 (en) * 1999-02-12 2007-05-15 Stemcells California, Inc. Enriched central nervous system stem cell and progenitor cell populations, and methods for identifying, isolating and enriching for such populations
US6238922B1 (en) * 1999-02-26 2001-05-29 Stemcells, Inc. Use of collagenase in the preparation of neural stem cell cultures
GB9907243D0 (en) * 1999-03-29 1999-05-26 Reneuron Ltd Therapy
US7119064B2 (en) * 1999-08-17 2006-10-10 Board Of Regents, The University Of Texas System Use of colostrinin, constituent peptides thereof, and analogs thereof as modulators of intracellular signaling molecules
US6852685B1 (en) * 1999-08-17 2005-02-08 Board Of Regents, The University Of Texas System Use of colostrinin, constituent peptides thereof, and analogs thereof to promote neuronal cell differentiation
AU7061700A (en) * 1999-08-17 2001-03-13 University Of Texas System, The Use of colostrinin, constituent peptides thereof, and analogs thereof as oxidative stress regulators
US6903068B1 (en) 1999-08-17 2005-06-07 Board Of Regents, The University Of Texas System Use of colostrinin, constituent peptides thereof, and analogs thereof for inducing cytokines
US6749850B1 (en) 1999-08-18 2004-06-15 The General Hospital Corporation Methods, compositions and kits for promoting recovery from damage to the central nervous system
US20050118143A1 (en) * 1999-10-01 2005-06-02 Steindler Dennis A. Isolated mammalian neural stem cells, methods of making such cells, and methods of using such cells
ES2208024B1 (es) * 1999-10-14 2005-10-01 Universidad Miguel Hernandez Un metodo para obtener in vitro celulas madre de individuos mamiferos adultos.
US6878543B1 (en) * 1999-10-25 2005-04-12 Nsgene Sa Cultures of GFAP+ nestin+ cells that differentiate to neurons
WO2001042421A2 (en) * 1999-12-07 2001-06-14 Monash University Long-term cell culture compositions and genetically modified animals derived therefrom
AUPQ463799A0 (en) * 1999-12-14 2000-01-13 Novio Phenolic Foam Pty Ltd Fire resistant compositions
AU2913801A (en) * 1999-12-23 2001-07-03 Cornell Research Foundation Inc. A method for isolating and purifying multipotential neural progenitor cells and multipotential neural progenitor cells
US7560275B2 (en) * 1999-12-30 2009-07-14 Vbi Technologies, L.L.C. Compositions and methods for generating skin
US7575921B2 (en) * 1999-12-30 2009-08-18 Vbi Technologies, L.L.C. Spore-like cells and uses thereof
US20050042749A1 (en) * 2001-05-16 2005-02-24 Carpenter Melissa K. Dopaminergic neurons and proliferation-competent precursor cells for treating Parkinson's disease
US7455983B2 (en) * 2000-01-11 2008-11-25 Geron Corporation Medium for growing human embryonic stem cells
WO2001053503A1 (en) * 2000-01-18 2001-07-26 Cornell Research Foundation, Inc. Neural progenitor cells from hippocampal tissue and a method for isolating and purifying them
US6395546B1 (en) * 2000-02-01 2002-05-28 Neurogeneration, Inc. Generation of dopaminergic neurons from human nervous system stem cells
DE60142553D1 (de) * 2000-02-11 2010-08-26 Children S Hospital Of Orange Isolierung und transplantation von retinalen stammzellen
JP4800544B2 (ja) * 2000-03-15 2011-10-26 チルドレンズ メディカル センター コーポレーション 腫瘍治療用の全身性遺伝子送達運搬体
US6673606B1 (en) 2000-04-12 2004-01-06 The Children's Hospital Of Philadelphia Therapeutic uses for mesenchymal stromal cells
US7037493B2 (en) 2000-05-01 2006-05-02 Cornell Research Foundation, Inc. Method of inducing neuronal production in the brain and spinal cord
US6828145B2 (en) 2000-05-10 2004-12-07 Cedars-Sinai Medical Center Method for the isolation of stem cells by immuno-labeling with HLA/MHC gene product marker
US8273570B2 (en) * 2000-05-16 2012-09-25 Riken Process of inducing differentiation of embryonic cell to cell expressing neural surface marker using OP9 or PA6 cells
JP4458222B2 (ja) * 2000-05-16 2010-04-28 独立行政法人理化学研究所 胚性幹細胞の外胚葉系細胞への新規な分化誘導法及びその用途
US7250294B2 (en) * 2000-05-17 2007-07-31 Geron Corporation Screening small molecule drugs using neural cells differentiated from human embryonic stem cells
WO2001088104A2 (en) * 2000-05-17 2001-11-22 Geron Corporation Neural progenitor cell populations
EP1353549A2 (en) * 2000-06-01 2003-10-22 PHARMACIA & UPJOHN COMPANY Mice heterozygous for wfs1 gene as mouse models for depression
US6897061B1 (en) * 2000-06-16 2005-05-24 Spinal Cord Society Transdifferentiation of glial cells
US7146217B2 (en) * 2000-07-13 2006-12-05 Northstar Neuroscience, Inc. Methods and apparatus for effectuating a change in a neural-function of a patient
US20030125786A1 (en) * 2000-07-13 2003-07-03 Gliner Bradford Evan Methods and apparatus for effectuating a lasting change in a neural-function of a patient
US7672730B2 (en) * 2001-03-08 2010-03-02 Advanced Neuromodulation Systems, Inc. Methods and apparatus for effectuating a lasting change in a neural-function of a patient
US7010351B2 (en) * 2000-07-13 2006-03-07 Northstar Neuroscience, Inc. Methods and apparatus for effectuating a lasting change in a neural-function of a patient
US7024247B2 (en) * 2001-10-15 2006-04-04 Northstar Neuroscience, Inc. Systems and methods for reducing the likelihood of inducing collateral neural activity during neural stimulation threshold test procedures
US7831305B2 (en) * 2001-10-15 2010-11-09 Advanced Neuromodulation Systems, Inc. Neural stimulation system and method responsive to collateral neural activity
US7756584B2 (en) * 2000-07-13 2010-07-13 Advanced Neuromodulation Systems, Inc. Methods and apparatus for effectuating a lasting change in a neural-function of a patient
US7305268B2 (en) 2000-07-13 2007-12-04 Northstar Neurscience, Inc. Systems and methods for automatically optimizing stimulus parameters and electrode configurations for neuro-stimulators
JP4031901B2 (ja) * 2000-07-19 2008-01-09 株式会社東芝 固体撮像装置
US7045353B2 (en) 2000-08-01 2006-05-16 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Directed differentiation of human embryonic cells
WO2003050502A2 (en) * 2001-12-07 2003-06-19 Regents Of The University Of Michigan Prospective identification and characterization of breast cancer stem cells
US8044259B2 (en) 2000-08-03 2011-10-25 The Regents Of The University Of Michigan Determining the capability of a test compound to affect solid tumor stem cells
US6984522B2 (en) 2000-08-03 2006-01-10 Regents Of The University Of Michigan Isolation and use of solid tumor stem cells
AUPR095200A0 (en) * 2000-10-24 2000-11-16 Bresagen Limited Cell production
WO2002057428A1 (en) * 2000-10-30 2002-07-25 University Of Massachusetts Isolation of spore-like cells from tissues exposed to extreme conditions
US20020192194A1 (en) * 2000-12-05 2002-12-19 Mcgrogan Michael Production and use of dopaminergic cells to treat dopaminergic deficiencies
EP1366148A2 (en) * 2001-01-24 2003-12-03 THE GOVERNMENT OF THE UNITED STATES OF AMERICA, represented by THE DEPARTMENT OF HEALTH & HUMAN SERVICES Differentiation of stem cells to pancreatic endocrine cells
US7299096B2 (en) * 2001-03-08 2007-11-20 Northstar Neuroscience, Inc. System and method for treating Parkinson's Disease and other movement disorders
WO2002072762A2 (en) * 2001-03-08 2002-09-19 Advanced Cell Technology, Inc. Use of rna interference for the creation of lineage specific es and other undifferentiated cells and production of differentiated cells in vitro by co-culture
FR2821947B1 (fr) * 2001-03-12 2003-05-16 Canon Kk Procede et dispositif de validation de parametres definissant une image
US6506576B2 (en) 2001-03-14 2003-01-14 Board Of Trustees Of The University Of Arkansas Serum-and steroid-free culture media for cerebellar granule neurons
US7838292B1 (en) 2001-03-29 2010-11-23 University Of Louisville Research Foundation, Inc. Methods for obtaining adult human olfactory progenitor cells
WO2002083877A1 (en) * 2001-04-11 2002-10-24 Stem Cell Therapeutics Inc. Production of tyrosine hydroxylase positive neurons
KR100449141B1 (ko) * 2001-04-19 2004-09-21 (주)라이프코드 간엽 간세포를 신경세포로 분화시키는 방법
WO2002086073A2 (en) * 2001-04-20 2002-10-31 Memorial Sloan-Kettering Cancer Center Generation of differentiated tissue from nuclear transfer embryonic stem cells and methods of use
EP1385938A1 (en) * 2001-04-23 2004-02-04 Nsgene A/S Method and culture medium for producing neural cells expressing tyrosine hydroxylase
US7943376B2 (en) * 2001-04-27 2011-05-17 Stem Cell Therapuetics Inc. Platelet derived growth factor (PDGF)-derived neurospheres define a novel class of progenitor cells
WO2002087662A1 (en) * 2001-04-27 2002-11-07 Nexell Therapeutics Inc. Cell processing and fluid transfer apparatus and method of use
AU2007251905B2 (en) * 2001-04-27 2012-04-26 Stem Cell Therapeutics Inc. Neural progenitor cells
US20030211605A1 (en) * 2001-05-01 2003-11-13 Lee Sang-Hun Derivation of midbrain dopaminergic neurons from embryonic stem cells
WO2002099087A2 (de) * 2001-06-05 2002-12-12 Thomas Rohrmeier Zellpopulationen zur auffindung neuronaler targets und potentieller wirkstoffe
AU2002315337A1 (en) * 2001-06-18 2003-01-02 Psychiatric Genomics, Inc. Method for neural stem cell differentiation using valproate
AU2002315336A1 (en) * 2001-06-18 2003-01-02 Psychiatric Genomics, Inc. Method for neural stem cell differentiation using 5ht-1a agonists
CA2364095C (en) * 2001-07-20 2011-07-12 Neurostasis, Inc Production of radial glial cells
AU2002324645C1 (en) * 2001-08-08 2008-11-06 Levesque Biosciences, Inc. Compositions and methods for isolation, propagation, and differentiation of human stem cells and uses thereof
US7150989B2 (en) 2001-08-10 2006-12-19 Cornell Research Foundation, Inc. Telomerase immortalized neural progenitor cells
US20040092013A1 (en) * 2001-08-14 2004-05-13 Snyder Evan Y. Method of treating alzheimer's disease with cell therapy
JP3993560B2 (ja) * 2001-08-30 2007-10-17 ステム セル セラピューティクス インコーポレイテッド 神経幹細胞の分化およびその治療用途
AU2002325711C1 (en) * 2001-09-14 2008-05-29 Stem Cell Therapeutics Inc. Prolactin induced increase in neutral stem cell numbers and therapeutical use thereof
US20030134415A1 (en) * 2001-09-19 2003-07-17 Gruenberg Micheal L. Th1 cell adoptive immunotherapy
US20030134341A1 (en) * 2001-09-19 2003-07-17 Medcell Biologics, Llc. Th1 cell adoptive immunotherapy
WO2003024312A2 (en) * 2001-09-17 2003-03-27 Valeocyte Therapies Llc Cell therapy system
EP1430113A2 (en) * 2001-09-18 2004-06-23 Stem Cell Therapeutics Inc. Effect of growth hormone and igf-1 on neural stem cells and therapeutic application
WO2003026738A1 (en) * 2001-09-28 2003-04-03 Northstar Neuroscience, Inc. Methods and apparatus for electrically stimulating cells implanted in the nervous system
US20030119080A1 (en) * 2001-10-15 2003-06-26 Mangano Joseph A. Strategies for the identification and isolation of cancer stem cells and non-cancerous stem cells
US7129034B2 (en) * 2001-10-25 2006-10-31 Cedars-Sinai Medical Center Differentiation of whole bone marrow
JP2005514926A (ja) * 2002-01-14 2005-05-26 ザ・ボード・オブ・トラスティーズ・オブ・ザ・ユニバーシティ・オブ・イリノイ 新規ほ乳類多分化能幹細胞および組成物、その調製方法および投与方法
WO2003066839A1 (en) * 2002-02-05 2003-08-14 Rappaport Family Institute For Research In The Medical Sciences Lineage committed stem cells selected for telomerase promoter activity
AU2003210959A1 (en) * 2002-02-12 2003-09-04 Cornell Research Foundation, Inc. Identification and high-yield isolation of human pancreatic islet progenitor and stem cells
US7576065B2 (en) * 2002-02-15 2009-08-18 Cornell Research Foundation, Inc. Enhancing neurotrophin-induced neurogenesis by endogenous neural progenitor cells by concurrent overexpression of brain derived neurotrophic factor and an inhibitor of a pro-gliogenic bone morphogenetic protein
US20030175272A1 (en) * 2002-03-07 2003-09-18 Medcell Biologics, Inc. Re-activated T-cells for adoptive immunotherapy
US7221981B2 (en) * 2002-03-28 2007-05-22 Northstar Neuroscience, Inc. Electrode geometries for efficient neural stimulation
US20050101014A1 (en) * 2002-07-11 2005-05-12 Keirstead Hans S. Oligodendrocytes derived from human embryonic stem cells for remyelination and treatment of spinal cord injury
US7285415B2 (en) 2002-07-11 2007-10-23 The Regents Of The University Of California Oligodendrocytes derived from human embryonic stem cells for remyelination and treatment of spinal cord injury
AU2003249227A1 (en) * 2002-07-12 2004-02-02 University Of Washington Methods and systems for extended in vitro culture of neuronal cells
US20040224302A1 (en) * 2002-07-16 2004-11-11 Thomas Jessel Systems and methods for screening for modulators of neural differentiation
US7632679B2 (en) * 2002-07-16 2009-12-15 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Systems and methods for screening for modulators of neural differentiation
US7390659B2 (en) * 2002-07-16 2008-06-24 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Methods for inducing differentiation of embryonic stem cells and uses thereof
CA2492442A1 (en) * 2002-07-31 2004-02-05 Stem Cell Therapeutics Inc. Method of enhancing neural stem cell proliferation, differentiation, and survival using pituitary adenylate cyclase activating polypeptide (pacap)
EP1534068A4 (en) * 2002-08-08 2006-08-23 Univ Georgia Res Found COMPOSITIONS AND METHODS FOR NEURONAL DIFFERENTIATION OF HUMAN EMBRYONIC STEM CELLS
US7381561B2 (en) * 2002-08-27 2008-06-03 Stemcells California, Inc. Enriched central nervous system stem cell and progenitor cell populations, and methods for identifying, isolating and enriching for such populations
US20040077985A1 (en) * 2002-09-03 2004-04-22 Donnie Rudd Method of replenishing cells damaged by treatment for cancer
US20040044300A1 (en) * 2002-09-03 2004-03-04 Donnie Rudd Method of replenishing cells damaged by treatment for cancer
US20040042997A1 (en) * 2002-09-03 2004-03-04 Donnie Rudd Method of regenerating human tissue
US20040076620A1 (en) * 2002-09-03 2004-04-22 Donnie Rudd Method of repairing primate mammalian tissue
US20040043009A1 (en) * 2002-09-03 2004-03-04 Donnie Rudd Method of repairing primate mammalian tissue
US20040076605A1 (en) * 2002-09-03 2004-04-22 Donnie Rudd Method of regenerating human tissue
KR100495532B1 (ko) * 2002-09-18 2005-06-14 에프씨비파미셀 주식회사 간엽 간세포를 신경세포로 분화 및 증식시키는 방법
US7445931B2 (en) * 2002-09-25 2008-11-04 Bresagen, Inc. Compositions and methods for enrichment of neural stem cells using ceramide analogs
US20050075679A1 (en) * 2002-09-30 2005-04-07 Gliner Bradford E. Methods and apparatuses for treating neurological disorders by electrically stimulating cells implanted in the nervous system
EP1567551A4 (en) * 2002-10-22 2008-03-12 Univ Texas COLOSTRININ AND PEPTIDES THEREOF AS MODULATORS OF INTRA-CELLULAR SIGNAL MOLECULES AND APOPTOSIS INHIBITORS
US20040147020A1 (en) * 2002-11-01 2004-07-29 The Regents Of The University Of Colorado, A Body Corporate Dopamine neurons from human embryonic stem cells
US7236830B2 (en) * 2002-12-10 2007-06-26 Northstar Neuroscience, Inc. Systems and methods for enhancing or optimizing neural stimulation therapy for treating symptoms of Parkinson's disease and/or other movement disorders
US20050075680A1 (en) * 2003-04-18 2005-04-07 Lowry David Warren Methods and systems for intracranial neurostimulation and/or sensing
US7302298B2 (en) * 2002-11-27 2007-11-27 Northstar Neuroscience, Inc Methods and systems employing intracranial electrodes for neurostimulation and/or electroencephalography
US6959215B2 (en) * 2002-12-09 2005-10-25 Northstar Neuroscience, Inc. Methods for treating essential tremor
WO2004052449A1 (en) * 2002-12-09 2004-06-24 Northstar Neuroscience, Inc. Methods for treating neurological language disorders
WO2004053071A2 (en) * 2002-12-09 2004-06-24 Judith Kelleher-Andersson Method for discovering neurogenic agents
US8293488B2 (en) 2002-12-09 2012-10-23 Neuralstem, Inc. Method for screening neurogenic agents
WO2004076624A2 (en) * 2002-12-18 2004-09-10 Bresagen, Inc. Compositions and methods for neural cell production and stabilization
EP1594527A2 (en) * 2003-02-04 2005-11-16 Ludwig Institute For Cancer Research Vegf-b and pdgf modulation of stem cells
US20040258673A1 (en) * 2003-04-03 2004-12-23 Hirose Thomas Gordon Elective collection and banking of autologous peripheral blood stem cells
JPWO2004091663A1 (ja) * 2003-04-18 2006-07-06 協和醗酵工業株式会社 神経再生薬
US7459152B2 (en) * 2003-04-23 2008-12-02 Rush University Medical Center Erythropoietin administration to improve graft survival
IL155783A (en) 2003-05-05 2010-11-30 Technion Res & Dev Foundation Multicellular systems of multi-potential embryonic human stem cells and cancer cells and their use
CA2524883C (en) 2003-05-16 2014-07-22 Universite Laval Potassium-chloride cotransporter kcc2 modulation for treatment of pain
CA2528115A1 (en) * 2003-06-03 2004-12-16 Nancy L. Parenteau Selection and propagation of progenitor cells
US20060019256A1 (en) * 2003-06-09 2006-01-26 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for treating and diagnosing cancer
AR046076A1 (es) * 2003-07-18 2005-11-23 Otsuka Pharma Co Ltd Procedimiento para obtener una poblacion homogenea de celulas precursoras de oligodendrocitos y poblacion obtenida
US20070111932A1 (en) * 2003-07-31 2007-05-17 Stem Cell Therapeutics Inc. Method of enhancing and/or inducing neuronal migration using erythropoietin
AU2004261290A1 (en) * 2003-08-01 2005-02-10 Northstar Neuroscience, Inc. Apparatus and methods for applying neural stimulation to a patient
JP2007519393A (ja) * 2003-08-05 2007-07-19 ユニバーシティー オブ フロリダ リサーチ ファンデーション， インク． 神経系細胞アッセイ
WO2005033297A1 (en) * 2003-09-19 2005-04-14 The Rockefeller University Compositions, methods and kits relating to reprogramming adult differentiated cells and production of embryonic stem cell-like cells
JP4676442B2 (ja) * 2003-12-02 2011-04-27 セラヴィー バイオサイエンシズ エルエルシー 神経前駆細胞を増殖させるための組成物および方法
US20070269412A1 (en) * 2003-12-02 2007-11-22 Celavie Biosciences, Llc Pluripotent cells
AU2005209169B2 (en) 2004-01-16 2010-12-16 Carnegie Mellon University Cellular labeling for nuclear magnetic resonance techniques
CA2554779A1 (en) * 2004-02-03 2005-08-18 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for characterizing, regulating, diagnosing, and treating cancer
ATE556716T1 (de) * 2004-02-13 2012-05-15 Stem Cell Therapeutics Corp Verwendung des luteinisierenden hormons (lh) und von choriongonadotrophin (hcg) für die proliferation von neuralen stammzellen und neurogenese
WO2005079250A2 (en) * 2004-02-13 2005-09-01 Cornell Research Foundation, Inc. Purines are self-renewal signals for neural stem cells, and purine receptor antagonists promote neuronal and glial differentiation therefrom
WO2005089420A2 (en) * 2004-03-16 2005-09-29 Theradigm, Inc. Expansion of neural stem cells with lif
NL1026137C2 (nl) * 2004-05-07 2005-11-08 Vanderlande Ind Nederland Inrichting voor het sorteren van producten.
ES2557772T3 (es) 2004-06-09 2016-01-28 The University Court Of The University Of Edinburgh Células madre neuronales
KR100563297B1 (ko) * 2004-06-16 2006-03-27 시 명 김 골프공 이송장치
US7456019B2 (en) 2004-06-30 2008-11-25 Regenetech, Inc. Three-dimensional cell to tissue development process
US20060228795A1 (en) * 2004-06-30 2006-10-12 Parker Clayton R Apparatus for enhancing proliferation of cells in a small-scale cell culturing container
US20080044890A1 (en) * 2004-06-30 2008-02-21 Parker Clayton R Interchangable sleeve for enhancing proliferation of cells in a rotating bioreactor
AU2005275209B2 (en) 2004-07-15 2010-06-24 Advanced Neuromodulation Systems, Inc. Systems and methods for enhancing or affecting neural stimulation efficiency and/or efficacy
US20070280989A1 (en) * 2004-09-21 2007-12-06 Nvr Labs Ltd Compositions and Methods for Stem Cell Expansion and Differentiation
US7565200B2 (en) * 2004-11-12 2009-07-21 Advanced Neuromodulation Systems, Inc. Systems and methods for selecting stimulation sites and applying treatment, including treatment of symptoms of Parkinson's disease, other movement disorders, and/or drug side effects
US20060106430A1 (en) * 2004-11-12 2006-05-18 Brad Fowler Electrode configurations for reducing invasiveness and/or enhancing neural stimulation efficacy, and associated methods
WO2006055685A2 (en) 2004-11-17 2006-05-26 Neuralstem, Inc. Transplantation of human neural cells for treatment of neurodegenerative conditions
US20090010873A1 (en) * 2004-11-29 2009-01-08 Yeda Research And Development Co. Ltd. Methods of Cell Therapy, Neurogenesis and Oligodendrogenesis
AU2005312302A1 (en) * 2004-12-01 2006-06-08 Stem Cell Therapeutics Corp. Platelet-derived growth factor-responsive neural precursor cells and progeny thereof
US20060252073A1 (en) * 2005-04-18 2006-11-09 Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for the treatment of cancer
WO2006116717A2 (en) * 2005-04-28 2006-11-02 The Board Of Regents Of The University Of Texas System Autologous somatic cells from peripheral blood and uses thereof
WO2006138275A2 (en) * 2005-06-13 2006-12-28 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for treating and diagnosing cancer
WO2006135886A2 (en) * 2005-06-13 2006-12-21 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for treating and diagnosing cancer
AU2006269231A1 (en) * 2005-07-08 2007-01-18 Braincells, Inc. Methods for identifying agents and conditions that modulate neurogenesis
US20070054397A1 (en) * 2005-08-26 2007-03-08 Harald Ott Adult cardiac uncommitted progenitor cells
WO2007036033A1 (en) 2005-09-27 2007-04-05 Stem Cell Therapeutics Corp. Oligodendrocyte precursor cell proliferation regulated by prolactin
US7729773B2 (en) 2005-10-19 2010-06-01 Advanced Neuromodualation Systems, Inc. Neural stimulation and optical monitoring systems and methods
US20070088403A1 (en) * 2005-10-19 2007-04-19 Allen Wyler Methods and systems for establishing parameters for neural stimulation
US8929991B2 (en) 2005-10-19 2015-01-06 Advanced Neuromodulation Systems, Inc. Methods for establishing parameters for neural stimulation, including via performance of working memory tasks, and associated kits
US7723477B2 (en) * 2005-10-31 2010-05-25 Oncomed Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods for inhibiting Wnt-dependent solid tumor cell growth
DK2500360T3 (en) 2005-10-31 2015-10-26 Oncomed Pharm Inc Compositions and methods for the diagnosis and treatment of cancer
EP1945754B1 (en) 2005-10-31 2014-07-23 The Regents Of The University Of Michigan Compositions and methods for treating and diagnosing cancer
KR20080103108A (ko) * 2006-03-17 2008-11-26 스템 셀 테라퓨틱스 코포레이션 신경 장애 치료를 위한 ｌｈ 또는 ｈｃｇ 및 ｅｐｏ의 투여방법
JP2009533061A (ja) * 2006-04-14 2009-09-17 セルセンス， インコーポレイテッド 細胞の標識を評価する方法
US8263043B2 (en) * 2006-04-14 2012-09-11 Carnegie Mellon University Cellular labeling and quantification for nuclear magnetic resonance techniques
EP2032691A2 (en) 2006-06-15 2009-03-11 Neostem, Inc Processing procedure for peripheral blood stem cells
US20080003676A1 (en) * 2006-06-26 2008-01-03 Millipore Corporation Growth of embryonic stem cells
AU2007285057B2 (en) 2006-08-15 2013-08-01 Agency For Science, Technology And Research Mesenchymal stem cell conditioned medium
US20100068187A1 (en) * 2006-08-31 2010-03-18 Roisen Fred J Transcription factors for differentiation of adult human olfactory progenitor cells
EP2106439B1 (en) 2007-01-24 2014-11-12 The Regents of the University of Michigan Compositions and methods for treating and diagnosing pancreatic cancer
US20080249591A1 (en) * 2007-04-06 2008-10-09 Northstar Neuroscience, Inc. Controllers for implantable medical devices, and associated methods
WO2008127974A1 (en) * 2007-04-13 2008-10-23 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Stem cell-based culture system for drug development
WO2008134406A1 (en) * 2007-04-25 2008-11-06 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Ischemia-induced neovascularization is enhanced by hcns-sc transplantation
US8574567B2 (en) * 2007-05-03 2013-11-05 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Multipotent stem cells and uses thereof
WO2008137115A1 (en) 2007-05-03 2008-11-13 The Brigham And Women's Hospital, Inc. Multipotent stem cells and uses thereof
EP2167108A4 (en) * 2007-06-06 2011-01-19 Hospital For Sick Children SKIN PRE-CELLARS AND THEIR USES
US8227610B2 (en) * 2007-07-10 2012-07-24 Carnegie Mellon University Compositions and methods for producing cellular labels for nuclear magnetic resonance techniques
US20090136461A1 (en) * 2007-11-28 2009-05-28 Moon Suk Kim Neuronal differentiation method of adult stem cells using small molecules
JP5703028B2 (ja) 2008-01-30 2015-04-15 アステリアス バイオセラピューティクス インコーポレイテッド 幹細胞由来オリゴデンドロサイト前駆細胞を培養するための合成表面
SG188918A1 (es) 2008-03-17 2013-04-30 Agency Science Tech & Res
US20110212062A1 (en) * 2008-03-27 2011-09-01 Neostem, Inc. Compositions and methods using stem cells in cutaneous wound healing
JP5751708B2 (ja) * 2008-05-02 2015-07-22 セルセンス， インコーポレイテッド 核磁気共鳴技法および他の用途のためのエマルジョンを生成するための組成物ならびに方法
EP2300023A2 (en) * 2008-05-16 2011-03-30 Genelux Corporation Microorganisms for preventing and treating neoplasms accompanying cellular therapy
US8669048B2 (en) * 2008-06-24 2014-03-11 Parkinson's Institute Pluripotent cell lines and methods of use thereof
CN105079805A (zh) 2008-09-26 2015-11-25 昂考梅德药品有限公司 卷曲蛋白结合药剂及其应用
US8748177B2 (en) 2008-09-30 2014-06-10 The Hospital For Sick Children Compositions for proliferation of cells and related methods
US8969081B2 (en) * 2008-12-10 2015-03-03 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Caudal motor neuron derived from embryonic stem cells under conditions essentially free of any retinoid
WO2010075500A1 (en) 2008-12-23 2010-07-01 Stemcells California, Inc Target populations of oligodendrocyte precursor cells and methods of making and using same
US20100209399A1 (en) * 2009-02-13 2010-08-19 Celavie Biosciences, Llc Brain-derived stem cells for repair of musculoskeletal system in vertebrate subjects
ES2690199T3 (es) 2009-07-21 2018-11-19 Abt Holding Company Uso de células madre para reducir la extravasación de leucocitos
JP6243119B2 (ja) 2009-07-21 2017-12-06 エイビーティー ホールディング カンパニー 白血球溢出を低下させる幹細胞の使用
US8551775B2 (en) 2009-11-12 2013-10-08 Vbi Technologies, L.L.C. Subpopulations of spore-like cells and uses thereof
TWI535445B (zh) 2010-01-12 2016-06-01 安可美德藥物股份有限公司 Ｗｎｔ拮抗劑及治療和篩選方法
SG183497A1 (en) 2010-02-25 2012-09-27 Abt Holding Co Modulation of macrophage activation
KR20130043102A (ko) 2010-04-01 2013-04-29 온코메드 파마슈티칼스, 인크. 프리즐드-결합 작용제 및 그의 용도
MX341316B (es) 2010-07-28 2016-08-15 Neuralstem Inc * Poblacion de celulas madre neurales para tratar y/o revertir enfermedades y/o trastornos neurodegenerativos.
WO2012048298A2 (en) 2010-10-08 2012-04-12 Caridianbct, Inc. Methods and systems of growing and harvesting cells in a hollow fiber bioreactor system with control conditions
CA2815426A1 (en) 2010-10-25 2012-05-10 The Children's Hospital Of Philadelphia Compositions and methods for the generation of platelets and methods of use thereof
WO2012106281A2 (en) 2011-01-31 2012-08-09 The General Hospital Corporation Multimodal trail molecules and uses in cellular therapies
AU2012250794B2 (en) 2011-05-03 2015-11-05 Immunovative Therapies, Ltd. Methods for handling biological drugs containing living cells
SG10201604543PA (en) 2011-06-06 2016-07-28 ReGenesys BVBA Expansion of stem cells in hollow fiber bioreactors
US8450107B1 (en) 2011-11-30 2013-05-28 The Broad Institute Inc. Nucleotide-specific recognition sequences for designer TAL effectors
KR20140144680A (ko) 2012-02-17 2014-12-19 더 셰펜스 아이 리써치 인스티튜트 인간의 망막 전구세포의 표현형 프로필
GB201302468D0 (en) 2013-02-12 2013-03-27 Reneuron Ltd Stem cell product
CN104321062B (zh) 2012-04-03 2018-09-25 兰诺龙有限公司 干细胞微粒
AU2013291761B2 (en) 2012-07-19 2018-03-15 Reneuron Limited Stem cell microparticles
US9605074B2 (en) 2012-08-30 2017-03-28 The General Hospital Corporation Multifunctional nanobodies for treating cancer
EP2911691B1 (en) 2012-10-23 2018-10-10 OncoMed Pharmaceuticals, Inc. Methods of treating neuroendocrine tumors using wnt pathway-binding agents
EP2950885B1 (en) 2013-02-04 2018-11-21 Oncomed Pharmaceuticals, Inc. Methods and monitoring of treatment with a wnt pathway inhibitor
WO2014125277A1 (en) 2013-02-12 2014-08-21 Reneuron Limited Method of producing microparticles
US9168300B2 (en) 2013-03-14 2015-10-27 Oncomed Pharmaceuticals, Inc. MET-binding agents and uses thereof
EP2970877B1 (en) 2013-03-15 2018-07-25 Wake Forest University Health Sciences Neural progenitor cell differentiation
AU2014250761B2 (en) 2013-04-12 2019-02-28 Robert J. Deans Improving organs for transplantation
AU2014266935B2 (en) 2013-04-30 2020-06-11 Katholieke Universiteit Leuven Cell therapy for myelodysplastic syndromes
GB201317887D0 (en) 2013-10-09 2013-11-20 Reneuron Ltd Product
GB201317889D0 (en) 2013-10-09 2013-11-20 Reneuron Ltd Product and use
US8916339B1 (en) 2013-10-31 2014-12-23 Vivex Biomedical, Inc. Spinal cord tissue dehydrated and micronized
CN105793411B (zh) 2013-11-16 2018-04-17 泰尔茂比司特公司 生物反应器中的细胞扩增
WO2015148704A1 (en) 2014-03-25 2015-10-01 Terumo Bct, Inc. Passive replacement of media
WO2016049421A1 (en) 2014-09-26 2016-03-31 Terumo Bct, Inc. Scheduled feed
US9750769B2 (en) 2014-10-20 2017-09-05 Neuralstem, Inc. Stable neural stem cells comprising an exogenous polynucleotide coding for a growth factor and methods of use thereof
US9402869B1 (en) 2015-03-27 2016-08-02 Vivex Biomedical, Inc. Treated neural tissue composition
US20180112006A1 (en) 2015-04-17 2018-04-26 The General Hospital Corporation Agents, systems and methods for treating cancer
US11827904B2 (en) 2015-04-29 2023-11-28 Fred Hutchinson Cancer Center Modified stem cells and uses thereof
WO2017004592A1 (en) 2015-07-02 2017-01-05 Terumo Bct, Inc. Cell growth with mechanical stimuli
WO2017147212A1 (en) 2016-02-22 2017-08-31 The Regents Of The University Of California Compositions and methods for imaging cell populations
EP3464565A4 (en) 2016-05-25 2020-01-01 Terumo BCT, Inc. CELL EXPANSION
US11685883B2 (en) 2016-06-07 2023-06-27 Terumo Bct, Inc. Methods and systems for coating a cell growth surface
US11104874B2 (en) 2016-06-07 2021-08-31 Terumo Bct, Inc. Coating a bioreactor
EP3656841A1 (en) 2017-03-31 2020-05-27 Terumo BCT, Inc. Cell expansion
US11624046B2 (en) 2017-03-31 2023-04-11 Terumo Bct, Inc. Cell expansion
WO2021007180A1 (en) 2019-07-05 2021-01-14 Case Western Reserve University Priming media and methods for stem cell culture and therapy
GB201919021D0 (en) 2019-12-20 2020-02-05 Reneuron Ltd Nucleic acid constructs for delivering polynucleotides into exosomes
CN112226411A (zh) * 2020-10-16 2021-01-15 武汉睿健医药科技有限公司 一种化学培养体系及其应用
GB202114441D0 (en) 2021-10-08 2021-11-24 Reneuron Ltd Proteins and extracellular vesicles
CN113881634A (zh) * 2021-10-18 2022-01-04 中山大学中山眼科中心 一种原代成年灵长类动物海马神经干细胞团的培养方法

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NZ226750A (en) * 1987-10-29 1990-09-26 Amrad Corp Ltd Immortalisation of neural precursor cells by introducing a retrovirus vector containing a myc-oncogene
US5851832A (en) * 1991-07-08 1998-12-22 Neurospheres, Ltd. In vitro growth and proliferation of multipotent neural stem cells and their progeny
US5589376A (en) * 1992-07-27 1996-12-31 California Institute Of Technology Mammalian neural crest stem cells
JPH08500245A (ja) * 1992-07-27 1996-01-16 カリフォルニア インスティテュート オブ テクノロジー 哺乳動物の多能性神経幹細胞
EP1298202B1 (en) * 1992-10-28 2010-10-06 NeuroSpheres Holdings Ltd. Biological factors and neural stem cells
DK0783693T3 (da) * 1994-09-23 2002-01-14 Neurospheres Holdings Ltd In vitro-modeller for CNS-funktion og -dysfunktion

Also Published As

Publication number Publication date
CA2257068C (en) 2013-04-30
US6040180A (en) 2000-03-21
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CA2257068A1 (en) 1997-11-27
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EP0915968B2 (en) 2014-10-22
ES2292187T5 (es) 2015-02-10
EP0915968A1 (en) 1999-05-19

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