ES2288883T3 - Oligonucleotidos sinteticos utiles terapeuticamente. - Google Patents

Oligonucleotidos sinteticos utiles terapeuticamente. Download PDF

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Mario C. Filion
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Abstract

Una composición que comprende una secuencia aislada de nucleótidos fosfodiéster sintéticos 3''-OH, 5''-OH de la SEQ ID NO: 45:gggagg y que además comprende un vehículo farmacéuticamente aceptable.

Description

Oligonucleótidos sintéticos útiles terapéuticamente.
Campo de la invención
La presente invención se relaciona con una composición de oligonucleótidos para tratar el cáncer.
Antecedentes de la invención
El cáncer es una acumulación neta aberrante de células atípicas, que pueden resultar de un exceso de proliferación, una insuficiencia de muerte celular, o una combinación de las dos.
La proliferación es la culminación de una progresión de la célula durante el ciclo celular dando por resultado la división de una célula en dos células. Las 5 fases principales del ciclo celular son G_{0}, G_{1}, S, G_{2} y M. Durante la fase G_{0}, las células son inactivas. La mayoría de las células en el cuerpo, en cualquier momento, están en esta etapa. Durante la fase G_{1}, las células, que responden a las señales de división, producen el ARN y las proteínas necesarias para la síntesis del ADN. Durante la fase-S (SE, fase-S temprana; SM, fase-S media; y SL, fase-S tardía) las células replican su ADN. Durante la fase G_{2}, las proteínas se elaboran en la preparación para la división celular. Durante la fase (M) mitótica, la célula se divide en dos células hijas. Las alteraciones en la progresión del ciclo celular ocurre en todos los cánceres y puede resultar de la sobre expresión de los genes, la mutación de los genes reguladores, o abrogación del punto de inspección de daño del ADN (Hochhauser D. Anti-El cáncer Chemotherapeutic Agents 8:903, 1997).
Diferente de las células cancerosas, la mayoría de las células normales no pueden proliferar indefinidamente debido a un proceso llamado senectud celular. La senectud celular es una respuesta de muerte celular programada que conduce a la detención del crecimiento de células (Dimri et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92:20, 1995). La lesión del ADN, la exposición de células cancerosas del colon, pecho y ovarios en los inhibidores de toposiomerasa y exposición de células cancerosas nasofaríngeas al cisplatino se reportan para prevenir la proliferación de estas células por inducción de la senectud (Wang et al. El cáncer Res. 58:5019, 1998; Poele et al. Br. J. El cáncer 80:9, 1999).
Los oligonucleótidos sintéticos son secuencias polianiónicas que se internan en las células (Vlassov et al. Biochim. Biophys. Acta 1197:95, 1994). Se reporta que los oligonucleótidos sintéticos se unen selectivamente a los ácidos nucleicos (Wagner, R. Nature: 372:333, 1994), a las proteínas celulares específicas (Bates et al. J. Biol. Chem. 274:26369, 1999) y a las proteínas nucleares específicas, para inhibir la proliferación de células cancerosas (Scaggiante et al. Eur. J. Biochem. 252:207, 1998).
Las secuencias sintéticas de 27 bases que contienen guanina (G) y cantidades variables de timina (T) (oligonucleótido GTn), en donde n es \geq1 o \leq7 y en donde el número de bases es \geq20 (Scaggiante et al. Eur. J. Biochem. 252:207, 1998), se reportan para inhibir el crecimiento del líneas de células cancerosas por el enlace específico de la secuencia a una proteína nuclear de 45 kDa, mientras el GTn, en donde el número de bases es \leq20, se reporta que es inactivo contra las líneas de células cancerosas (Morassutti et al. Nucleosides y Nucleotides 18:1711, 1999). Se reportan dos oligonucleótidos GT-ricos sintéticos de 15 y 29 bases con modificaciones aminoalquil 3', para formar G-cuartetos que se unen a la nucleolina y para inhibir la proliferación de líneas de células cancerosas (Bates et al. J. Biol. Chem. 274:26369, 1999). La TTAGGG-fosforotioato sintética de 6 bases, que tiene una secuencia idéntica a aquella de la secuencia repetida del telómero de mamífero, se describe para inhibir la proliferación de células de linfoma de Burkitt in vitro e in vivo (Mata et al. Toxicol. Applied Pharmacol. 144:189, 1997). Sin embargo, se describe que la TTAGGG-fosfodiester sintética de 6 bases, no tiene actividad anti-telomerasa (US Patent No: 5, 643,890).
La muerte celular se lleva a cabo por mediadores-inmunes que promueven la apoptosis, y por inductores de apoptosis que directamente inician las rutas que conducen a la muerte celular (Muzio et al. Cell 85:817, 1996; Levine, A. Cell 88:323, 1997). La apoptosis es un proceso activo de muerte celular caracterizado por cambios morfológicos distintivos que incluye condensación de cromatina nuclear, contracción celular, desintegración nuclear, vesiculación de la membrana plasmática, y la formación de cuerpos apóptoticos unidos a la membrana (Wyllie et al. Int. Rev. Cytol. 68:251, 1980). Una característica típica molecular de la apoptosis es la degradación del ADN nuclear de las células en fragmentos de longitud oligonucleosomal como el resultado de la activación de las endonucleasas endógenas (Wyllie A. Nature 284:555, 1980).
Las caspasas (proteasas cisteina-aspartil-específicas) se han implicado como enzimas claves en la ejecución de la etapa tardía de la apoptosis. La familia caspasa consiste de al menos catorce proteasas aspartil cisteina relacionadas. Todas las caspasas contienen un motivo de sitio pentapéptido activo conservado QACXG (donde X es R, Q o G) (Cohen G. Biochim. Biophys. Acta 1366:139, 1997). Un número de caspasas se sintetizan como proenzimas inactivas que son activadas continuando con la división en los sitios de división específicos de la caspasa (Cohen G. Biochim. Biophys. Acta 1366:139, 1997) o como enzimas inactivas que requieren de la asociación con moléculas reguladoras para la activación (Stennicke et al. J. Biol. Chem. 274:8359, 1999).
Además de su papel en la apoptosis, las caspasas se involucran en la activación y proliferación de los linfocitos B y T, en la maduración de la citoquina durante la inflamación, en la diferenciación de las células madre durante la eritropoyesis y en el desarrollo de fibras de lentes (Fadeel et al. Leukemia 14:1514, 2000). Con respecto a los linfocitos B y T, la caspasa 3 se procesa durante la activación de los linfocitos B y de CD4 (+), CD8 (+), CD45RA (+) y CD45RO (+) subconjuntos de los linfocitos T (Alam et al. J. Exp. Med. 190:1879, 1999). Por otra parte, la estimulación de los linfocitos T por mitógenos y por la interleuquina-2 se asocia con la activación de la ruta de la caspasa y con la división de PARP (Wilheim et al. Eur. J. Immunol. 28:891, 1998). Con respecto a las citoquinas, la actividad de la caspasa 3 es necesaria para la liberación de IL-2 por los linfocitos T activados (Posmantur et al. Exp. Cell Res. 244:302, 1998) y para el proceso y maduración de la interleuquina-16 citoquina pro-inflamatoria (Zhang et al. J. Biol. Chem. 273:1144, 1998). Con respecto a la eritropoyesis, la activación de la caspasa se involucra en la regulación de la eritropoyesis y se ha mostrado que modula GATA-1, una proteína reguladora nuclear crucial para la maduración de los precursores eritroides (De Maria, et al. Nature 401:489, 1999).
La citólisis es la destrucción completa o parcial de una célula y se media por el sistema inmune. Los macrófagos y monocitos activados producen moléculas bioáctivas que incluyen, pero no limitan a las citoquinas. Las citoquinas, incluyen, pero no limitan a, interleuquina (IL)-1, IL-1 beta, IL-6, IL-10, IL-12, y TNF-alfa.
IL-1beta reduce la sensibilidad de la célula de la médula ósea a los fármacos citoreductivos, a la radiación y a la depuración de lacélula del tumor in vitro con fármacos en transplante de médula ósea autólogo (Dalmau et al. Bone Marrow Transplant. 12:551, 1993).
IL-6 induce la diferenciación de la célula B, estimula la secreción de IgG (Taga et al. J. Exp. Med. 166:967, 1987), induce la diferenciación de la célula T citotóxica (Lee et al. Vaccine 17:490, 1999), promueve la maduración del megacariocito (Ishibashi et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86:8953, 1989) y funcionan ambos como un factor anti-proliferativo (Mori et al. Biochem. Biophys. Res. Comm. 257:609, 1999; Alexandroff et al. Biochem. Soc. Trans. 25:270, 1997; Takizawa et al. Cancer Res. 53:18, 1993: Novick et al. Cytokine 4:6, 1992) y como un factor pro-proliferativo (Okamoto et al. Cancer Res. 57:141, 1997; Okamoto et al. Int. J. Cancer 72:149, 1997; Chiu et al. Clin. Cancer Res. 2:215, 1996; Lu et al. Clin. Cancer Res. 2: 1417, 1996) para las células cancerosas.
IL-10 mejora la efectividad de las vacunas en modelos de tumor murina (Kauffman et al. J. Immunother. 22: 489, 1999) y favorece la expresión de respuesta autoreactiva de la célula T anti-cáncer (Alleva et al. Immunobiol. 192:155, 1995).
IL-12, sola y en combinación con otras citoquinas, promueve la maduración de los leucocitos e induce la secreción del interferón-gama. Se describe que IL-12 tiene actividad anti-cáncer (Stine et al. Annals NY Academy of Science 795:420, 1996; Chen et al. Journal of Immunol. 159:351, 19977 que incluye, pero no limita a, la activación de linfocitos-T citolíticos específicos, activación de las células destructoras naturales (NK) e inducción de las proteínas anti-angiogénicas IP-10 y MiG.
TNF-alfa causa necrosis de los tumores sólidos (Porter et al. Trends in Biotech. 9:158, 1991), sensibiliza las células cancerosas a la apoptosis inducida por la irradiación gama (Kimura et al. Cancer Res. 59:1606, 1999) y protege las células precursor de la médula ósea de los efectos de agentes antineoplásticos (Dalmau et al. Bone Marrow Transplant. 12:551, 1993).
Sin embargo, la mayoría de las terapias anti-cáncer previas al oficio, están dirigidas a la inducción de la detención del ciclo celular, inhibición de la proliferación, inducción de la apoptosis o estimulación del sistema inmune, han probado ser menos que adecuadas para las aplicaciones clínicas. Muchas de estas terapias son ineficientes o tóxicas, tienen significantes efectos secundarios adversos, dan lugar al desarrollo de la resistencia de medicamentos o inmuno sensibilización, y se debilitan para el receptor.
Por consiguiente, existe una continua necesidad de composiciones novedosas y métodos que inducen la detención del ciclo celular en las células cancerosas, inhiben la proliferación de células cancerosas, activan las caspasas en las células cancerosas, inducen la apoptosis en las células cancerosas y estimulan la producción de la citoquina por las células del sistema inmune.
Resumen de la invención
La presente invención cumple a cabalidad esta necesidad proporcionando una composición y método que comprende un oligonucleótido sintético 3'-OH, 5'-OH de la SEQ ID NO: 45: gggagg y en donde la secuencia induce una respuesta seleccionada del grupo que consiste de la inducción de la detención del ciclo celular, la inhibición de proliferación, activación de caspasas y la inducción de apoptosis en las células cancerosas y la producción de citoquinas por las células del sistema inmune. Una composición que comprende la secuencia SEQ ID NO: 45 y un vehículo farmacéuticamente aceptable se administra a un animal, que incluye un humano, que tiene cáncer en una cantidad efectiva para tratar el cáncer en el animal. La inesperada y sorprendente habilidad de la secuencia para inducir la detención del ciclo celular, inhibe la proliferación, activa las caspasas e induce la apoptosis y en las células cancerosas y de estimular la producción de la citoquina por direccionamiento de las células del sistema inmune una necesidad no lograda experimentada durante un tiempo en los oficios médicos y proporciona un beneficio importante para los animales, incluyendo humanos.
Por consiguiente, un propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método efectivo para tratar una enfermedad en un animal, incluyendo un humano.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método efectivo para tratar el cáncer.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la senectud en las células.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la detención del ciclo celular en las células.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la detención del ciclo celular en las células cancerosas.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que inhibe la proliferación de células.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que inhibe la proliferación de células cancerosas.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas independientes de Fas.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas independientes de TNFR1.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas independientes de p53/p21.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas independientes de p21/waf-1/CIP.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas independientes de p15^{ink4B}.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas independientes de p16^{ink4}.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas independientes de la caspasa 3.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas independientes del receptor TGF-beta 1.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas independientes de la dependencia hormonal.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que induce la apoptosis en las células cancerosas independientes de la resistencia de medicamentos.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que activa las caspasas en las células.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que activa las caspasas en las células cancerosas.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método para tratar una enfermedad autoinmune.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método para tratar una enfermedad linfoproliferativa.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método para tratar una infección.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método para tratar una inflamación.
\global\parskip0.950000\baselineskip
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método para modular la activación de la célula T- o B-.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método para modular la maduración de la célula madre.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método para modular la eritropoyesis.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método para modular la transcripción de los factores en las células.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que potencia el efecto de otros agentes terapéuticos en las células.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que potencia el efecto de agentes quimioterapéuticos en las células cancerosas.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que potencia el efecto antineoplástico de la radiación.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que estimula la producción de la citoquina por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que estimula producción de IL-1beta por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que estimula la producción de IL-6 por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que estimula la producción de IL-10 por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que estimula la producción de IL-12 por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición y un método que estimula la producción de TNF-\alpha por las células del sistema inmune.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición que es simple de preparar.
Otro propósito de la presente invención es proporcionar una composición que es tóxica en forma mínima al receptor.
Estos y otros objetivos, características y ventajas de la presente invención serán aparentes después de una revisión de la siguiente descripción detallada de la modalidad revelada y las reivindicaciones anexas.
Breve descripción de las figuras
Fig. 1. Fluorescencia [Fluo-3-AM] de células humanas de leucemia T Jurkat incubadas con 0 \mug/ml y 100 \mug/ml de la base 6 GT SEQ ID NO: 25 (comparación).
Fig. 2. Activación de la Caspasa 3 en células humanas de leucemia T Jurkat incubadas sin 0 \mug/ml y 100 \mug/ml de GT SEQ ID NOs: 66, 67, 81, 82 y 83 medida citométricamente (A) y colorimétricamente (B) (comparación).
Fig. 3. Activación de la caspasa en células humanas de leucemia T Jurkat. (A) Activación de la Caspasa 3 en las células incubadas con 0 \mug/ml y 100 \mug/ml de la base 6 GT SEQ ID NO: 25; (B) activación (a) de la Caspasa 7 y contenido de PARP (b) en las células incubadas con 0 \mug/ml y 100 \mug/ml de la base 6 GT SEQ ID NO: 25. (comparación).
Descripción detallada de la invención
La presente invención proporciona una composición que comprende una 3'-OH, 5'OH secuencia sintética nucleótido fosfodiéster de la SEQ ID NO: 45: gggagg
en donde la secuencia induce una respuesta seleccionada del grupo que consiste de la inducción de la detención del ciclo celular, la inhibición de proliferación, activación de las caspasas y la inducción de la apoptosis en las células cancerosas y la producción de citoquinas por las células del sistema inmune. Una composición que comprende la secuencia SEQ ID NO: 45 y un vehículo farmacéuticamente aceptable se administra a un animal, incluyendo un humano, que tiene cáncer en una cantidad efectiva para tratar el cáncer en un animal, incluyendo un humano. La inesperada y sorprendente habilidad de la secuencia para inducir la detención del ciclo celular, inhibir la proliferación, inducir la apoptosis y activar las caspasas en las células cancerosas y estimular la producción de la citoquina por direccionamiento de las células del sistema inmune una necesidad no lograda experimentada durante un tiempo en los oficios médicos y proporciona un beneficio importante para los animales, incluyendo humanos.
Según se utiliza aquí la palabra "secuencia" se refiere a un oligonucleótido sintético 3'-OH, 5'-OH de 2 a 20 bases que comprende las bases A, C, G y T.
Según se utiliza aquí, las abreviaciones "GT", "AG" "CG", "GG", "AGT" y "CGT" se refieren a las secuencias que comprenden las bases sintetizadas designadas en cualquier orden.
Según se utiliza aquí, la palabra "respuesta" se refiere a la inducción de la detención del ciclo celular, inhibición de proliferación, activación de caspasas e inducción de apoptosis, en las células cancerosas y a la estimulación de la producción de la citoquina por las células del sistema inmune.
Según se utiliza aquí, las frases "tratamiento terapéutico" y "cantidad efectiva a" se refieren a una cantidad de una secuencia efectiva para inducir la detención del ciclo celular, inhibir la proliferación, activar las caspasas e inducir la apoptosis en las células cancerosas y estimular la producción de la citoquina por las células del sistema inmune.
Según se utiliza aquí, las frases "modelo de tumor en suspensión" y "modelos de tumor sólido" se refieren a carcinomas o sarcomas primarios o secundarios.
Según se utiliza aquí, la frase "quimioterapéutico" es cualquier agente aprobado por una agencia reguladora de un país o un estado gubernamental o enumerado en la Farmacopea U.S u otras farmacopeas usualmente reconocidas para tratar el cáncer en un animal, incluyendo un humano.
Según se utiliza aquí, la palabra "antineoplástico" se refiere a la prevención del desarrollo, maduración, proliferación o dispersión de las células cancerosas.
Según se utiliza aquí, la palabra "potencializar" se refiere a un grado de sinergismo que es mayor que la actividad del aditivo de cada agente.
Según se utiliza aquí, la palabra "sinergismo" se refiere a la acción coordinada de dos o más agentes. La administración de una cantidad efectiva de la secuencia SEQ ID NO:45 de la presente invención a un animal, incluyendo un humano, es un tratamiento terapéutico que previene, trata o elimina una enfermedad que incluye, pero no limita a, cáncer, artritis reumatoide, desórdenes linfo-proliferativo y asma. Los cánceres incluyen, pero no limitan a, célula carcinoma escamosa, fibrosarcoma, carcinoma sarcoido, melanoma, cáncer mamario, cáncer pulmonar, cáncer colorectal, cáncer renal, osteosarcoma, melanoma cutáneo, carcinoma de célula basal, cáncer pancreático, cáncer de vejiga, cáncer de cerebro, cáncer de ovarios, cáncer de próstata, leucemia, linfoma y metástasis derivados de estos.
La efectividad terapéutica de una secuencia se puede incrementar por métodos que incluyen, pero no limitan a, modificación química de la base, estructura de azúcar o fosfato, suplementar químicamente o amplificar biotecnológicamente las secuencias utilizando plásmidos bacterianos que contienen las secuencias apropiadas, formando complejos de las secuencias con vehículos biológicos o químicos o acoplando las secuencias a los ligandos o anticuerpos dirigidos al tipo de tejido o tipo de célula.
Las composiciones que contienen la secuencia SEQ ID NO: 45 y un vehículo farmacéuticamente aceptable se preparan llevando uniforme e íntimamente en asociación la secuencia y el vehículo farmacéuticamente aceptable. Los vehículos farmacéuticamente aceptables incluyen vehículos líquidos, vehículos sólidos o ambos. Los vehículos líquidos son vehículos acuosos, vehículos no acuosos o ambos e incluyen, pero no limitan a, suspensiones acuosas, emulsiones en aceite, emulsiones agua en aceite, emulsiones agua-en-aceite-en-agua, emulsiones de sitio-específico, emulsiones de larga-duración, emulsiones pegajosas, microemulsiones y nanoemulsiones. Los vehículos sólidos son vehículos biológicos, vehículos químicos o ambos e incluyen, pero no limitan a, sistemas de vector viral, partículas, micropartículas, nanopartículas, microesferas, nanoesferas, minibombas, extractos de pared celular bacteriana y polímeros naturales o sintéticos biodegradables o no-biodegradables que permiten la liberación sostenida de las secuencias. Los métodos utilizados para acomplejar una secuencia a un vehículo sólido incluyen, pero no limitan a, adsorción directa a la superficie del vehículo sólido; acoplamiento covalente a la superficie del vehículo sólido, tanto directamente como vía una fracción de enlace; y el acoplamiento covalente al polímero utilizado para hacer el vehículo sólido. Opcionalmente, una secuencia se puede estabilizar por la adición de polímeros no-iónicos o iónicos tales como polioxietilensorbitan monooleatos (Tweens) o ácido hialurónico.
Los vehículos acuosos preferidos incluyen, pero no limitan a, agua, solución salina y soluciones reguladoras farmacéuticamente aceptables. Los vehículos no-acuosos preferidos incluyen, pero no limitan a, un aceite mineral y un aceite neutral y mezclas de estos. Opcionalmente, los excipientes pueden ser incluidos independientemente del vehículo farmacéuticamente aceptable utilizado para presentar la secuencia a las células que responden. Estos excipientes incluyen, pero no limitan a, antioxidantes, soluciones reguladoras, y bacteriostáticos, y pueden incluir agentes de suspensión y agentes de espesamiento.
Secuencia SEQ ID NO: 45 puede ser administrada sola, o en combinación con otras modalidades terapéuticas que incluyen, pero no limitan a, agentes quimioterapéuticos, inmunoagentes terapéuticos, agentes antimicrobianos, agentes antivirales o en combinación con terapia de radiación. Los agentes quimioterapéuticos incluyen, pero no limitan a, anti-metabolitos, lesiones del ADN, desestabilización de microtúbulos, estabilización del microtúbulos, despolimerización de la actina, inhibición del crecimiento, inhibición de la topoisomerasa, inhibición de la HMG-CoA, inhibición de la purina, inhibición de la pirimidina, inhibición de la metaloproteinasa, inhibición de CDK, inhibición de angiogénesis y diferenciación de los agentes de mejora.
Las rutas de administración incluyen, pero no limitan a, oral, tópica, subcutánea, transdérmica, subdérmica, intra-muscular, intra-peritoneal, intra-vesical, intra-articular, intra-arterial, intra-venosa, intra-dérmica, intra-craneal, intralesional, intra-tumoral, intra-ocular, intra-pulmonar, intra-espinal, intra-prostática, colocación dentro de las cavidades del cuerpo, inhalación nasal, inhalación pulmonar, impresión en la piel y electrocorporación.
Dependiendo de la ruta de administración, el volumen por dosis es preferiblemente cerca de 0.001 a 100 ml por dosis, más preferiblemente cerca de 0.01 a 50 ml por dosis y la mayoría preferiblemente cerca de 0.1 a 30 ml por dosis. Preferiblemente, la cantidad de la secuencia administrada por dosis es de aproximadamente 0.001 a 100 mg/kg, más preferiblemente de aproximadamente 0.01 a 10 mg/kg y la mayoría preferiblemente de aproximadamente 0.1 a 5 mg/kg. La secuencia SEQ ID NO: 45 o la secuencia plus un agente terapéutico se puede administrar en un tratamiento de dosis única, en tratamientos de dosis múltiples o en infusión continua en un horario y durante un periodo de tiempo apropiado a la enfermedad que se trata, la condición del receptor y la ruta de administración. Por otra parte, la secuencia se puede administrar antes, al mismo tiempo que, o después de la administración del agente terapéutico.
La secuencia SEQ ID NO: 45 en combinación con un agente quimioterapéutico se administra a un animal que tiene cáncer en una cantidad efectiva para potenciar el efecto anti-neoplástico del agente quimioterapéutico. Preferiblemente, la cantidad de agente terapéutico administrado por dosis es de aproximadamente 0.001 a 1000 mg/m^{2} o de aproximadamente 0.01 a 1000 mg/kg, más preferiblemente de aproximadamente 0.01 a 500 mg/m^{2} o de aproximadamente 0.01 a 500 mg/kg y la mayoría preferiblemente de aproximadamente 0.1 a 100 mg/m^{2} o de aproximadamente 0.1 a 100 mg/kg. La secuencia particular y el agente terapéutico particular administrado, la cantidad por dosis, el horario de dosis y la ruta de administración se debe decidir por el practicante utilizando métodos conocidos por aquellos de habilidad en el oficio y dependerá del tipo de cáncer, la severidad del cáncer, la localización del cáncer y otros factores clínicos tales como el tamaño, peso y condición física del receptor. Además, se pueden emplearensayos in vitro opcionalmente para ayudar a identificar los rangos óptimos para la administración de la secuencia y para la administración de la secuencia más el agente terapéutico.
Aunque no quiere ser unido por la siguiente hipótesis, se piensa que la secuencia SEQ ID NO: 45 de la presente invención pertenece a una nueva familia de estructuras y que no funciona como ARN antisentido, ADN, ADN que forma una triple hélice, inhibidor de la telomerasa, activador de la transcripción o inhibidor de la transcripción.
Los siguientes ejemplos además servirán para ilustrar la presente invención sin, al mismo tiempo, sin embargo, constituir ninguna limitación de estos.
Ejemplo 1 Preparación de la secuencias
Las secuencias fosfodiéster y fosforotioato se prepararon HUKABEL Scientific Ltd, (Montréal, Québec, Canada) utilizando el sistema de síntesis del ADN EXPEDITE^{TM} 8900 automatizado (PersSeptive Biosystems, Inc., Farminghan, MA) y Sigma-Genosys (Woodlands, TX) utilizando Abacus Segmented Synthesis Technology. A menos que se indique de otra manera, la secuencias utilizadas eran secuencias fosfodiéster. A menos que se indique de otra manera, inmediatamente previo al uso, la secuencias se dispersaron en agua desionizada esterilizada en autoclave o en una solución reguladora farmacéuticamente aceptable esterilizada en autoclave tal como, pero no limita a, solución salina.
Ejemplo 2 Células y reactivos
Todas las líneas celulares se obtuvieron a partir de American Type Culture Collection (ATCC, Rockville, MD) y se cultivaron en el medio recomendado por la ATCC. La tabla 1 muestra las líneas celulares, sus orígenes y sus propiedades.
TABLA 1
1
2
Las células se sembraron en microplacas de fondo plano de 6 (1 ml/pozo), 24 (0.5 ml/pozo) o 96 (0.1 ml/pozo) pozos y se mantuvieron a 37ºC en una atmósfera al 5% de CO_{2}. A menos que se indique de otra manera, 2.5 X 10^{5} células/ml se incubaron con 0 \mug/ml (control) y 100 \mug/ml (tratado) de secuencias de 2 a 45 base que contienen A, C, G y T por 48 h.
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Ejemplo 3 Medición de la proliferación celular
La proliferación celular se midió utilizando reducción de dimetiltiazol-difeniltetrazolio (MTT) (Mosman et al. J. Immunol. Methods 65:55, 1983). MTT se midió a una longitud de onda de 570 nm utilizando un lector espectrofotométrico multiplaca (ELX800, Bio-TEK Instruments Inc., Winooski, VT).
Ejemplo 4
Las células T Jurkat se incubaron con secuencias de 6 bases GT, AG, CG, GG, AGT y CGT (Tabla2).
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TABLA 2
3
4
5
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Como se muestra en la Tabla 2, las secuencias GT de 6 bases inhiben la proliferación de la célula T Jurkat. GT SEQ ID NO: 25 inhibió el 60% de la proliferación y AGT SEQ ID NO: 49 inhibió el 45% de la proliferación. La comparación de la potencia relativa de GT SEQ ID NO: 25 y AGT SEQ ID NO: 49 utilizando el Software PHARMIPCS-4 (Microcomputer Specialists, Philadelphia, PA) mostró que la potencia de GT SEQ ID NO: 25 es 3.4 veces más que la de AGT SEQ ID NO: 49. Se reporta que AGT SEQ ID NO: 49-fosforotioato inhibe la actividad de la telomerasa e induce la apoptosis en células del linfoma Burkitt (Mata et al. Toxicol. Appl. Pharmacol. 144:189, 1997).
Para determinar la actividad de la telomerasa, extractos de 2 x 10^{5} células T Jurkat se ensayaron utilizando el protocolo de la amplificación de la repetición PCR-telomérico (TRAP) (Roche, Laval, Quebec, Canada). A concentraciones entre 1 y 100 \mug/ml, GT SEQ ID NO: 25-fosfodiéster mostró entre 0 y 10% de anti-actividad de la telomerasa, mientras AGT SEQ ID NO: 49- fosforotioato mostró entre 30 y 75% de anti-actividad de la telomerasa. Ninguna GT SEQ ID NO: 25-fosforotioato ni GT SEQ ID NO: 49-fosfodiéster mostró algo de actividad anti-telomerasa.
Ejemplo 5
(Comparación)
Inhibición de la proliferación celular por las secuencias fosfodiéster y fosforotioato
La modificación de las secuencias naturales fosfodiéster por sustitución de un átomo de azufre por un átomo de oxígeno no-enlazado en uno o más de los grupos fosfato se ha reportado que incrementa la estabilidad de las secuencias de oligonucleótidos a endonucleasas en fluidos y células biológicos (Crooke et al. Anticancer Drugs 6:609, 1991).
Las células humanas T de leucemia Jurkat (Tabla 3), células humanas de cáncer de próstata LNCaP (5 x 10^{5} células/ml) (Tabla 4) y células humanas de cáncer de pecho MCF-7 (5x10^{5} células/ml) (Tabla 5) se incubaron con las secuencias GT de 6 bases, que tienen ya sea oxígeno (fosfodiéster) o azufre (fosforotioato) como un átomo no-enlazado en el grupo fosfato.
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TABLA 3
6
7
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TABLA 4
8
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TABLA 5
9
Como se muestra en las Tablas 3, 4 y 5, las GT-secuencias de 6 bases fosfodiéster inhibieron la proliferación celular de T Jurkat, LNCaP y MCF-7, más efectivamente que las secuencias GT-fosforotioato de 6 bases.
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Ejemplo 6
(Comparación)
Inhibición de la proliferación celular mezclando las secuencias fosfodiéster y fosforotioato
Las células humanas T de leucemia Jurkat (Tabla16) y células humanas de cáncer de pecho MCF-7 (5 x 10^{5} células/ml) (Tabla17) se incubaron con la GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases, en donde ya sea oxígeno (fosfodiéster) o azufre (fosforotioato) fueron el átomo no-enlazado en el grupo fosfato.
TABLA 6
10
TABLA 7
11
12
Como se muestra en las Tablas, 6 y 7, la sustitución de un átomo de azufre por un átomo de oxígeno no-enlazado en uno o más grupos fosfato de la GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases resultan en una significante dismunición en la inhibición de la proliferación celular de Jurkat T y MCF-7.
Ejemplo 7
(Comparación)
Inducción de detención del ciclo celular
La etapa del ciclo celular se determinó utilizando un kit comercial CYCLETEST^{TM} PLUS ADN (Becton Dickinson). Brevemente, los núcleos de las células se obtuvieron disolviendo la membrana celular en un detergente no iónico, eliminando el citoesqueleto celular y las proteínas nucleares con tripsina, digiriendo el ARN celular con RNasa y la estabilización de la cromatina nuclear con espermina. Se adicionó yoduro de propidio a los núcleos celulares y su fluorescencia se analizó en un citómetro de flujo equipado con capacidad de discriminación doble electrónica (FACSCalibur, Becton Dickinson, San Jose, CA). La acumulación de las células en las fases G_{0}/G_{1}, temprana S (SE), media S (SM), tardía S (SL) o G_{2}/M del ciclo celular se analizó utilizando el software MODFIT LT (Verity Software House Inc., Topsham, MA).
El crecimiento exponencial de las células humanas T de leucemia Jurkat (Tabla 8) y células humanas cancerosas de pecho MCF-7 (5 X 10^{5} células/ml) (Tabla 9) se incubaron por 24 h con secuencias de 2, 6, 15, 18, 27 y 45 bases que contienen A, C, G y T. Las células se recolectaron y centrifugaron y se determinó la etapa ciclo celular.
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TABLA 8
13
14
Como se muestra en la Tabla 8, en las secuencias GT de 2, 6 y 27 bases de la células T Jurkat, produjeron la detención en la fase SE del ciclo celular, las secuencias BCG A-1 CG y AGT de 6 bases, GT 18 bases y 45 bases indujeron la detención en la fase SM del ciclo celular y una secuencia AG de 6 bases indujo la detención en la fase G_{0}/G_{1} del ciclo celular.
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TABLA 9
15
16
Como se muestra en la Tabla 29, en las células MCF-7, las secuencias GT de 2 y 6 bases indujeron la detención en la fase SE del ciclo celular, una secuencia AGT de 6 bases y una secuencia GT de 18 bases indujeron la detención en la fase SM del ciclo celular.
Ejemplo 8
(Comparación)
Inducción de la detención del ciclo celular por GT SEQ ID NO.- 25, AC SEQ ID NO: 79 y GT SEQ ID NO: 25 + AC SEQ ID NO: 79
Las células T de leucemia de la célula humana Jurkat (1 X 10^{6} células/ml) se incubaron por 24 h con GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases, AC SEQ ID NO: 79 de 6 bases complementarias y GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases + AC SEQ ID NO: 79 de 6 bases. La GT SEQ ID NO: 25 y la AC SEQ ID NO: 79 se hibridizaron mezclando los oligonucleótidos (1:1) y calentando por 10 minutos a 65ºC. Como controles, GT SEQ ID NO: 25 y AC SEQ ID NO: 79 se calentaron por 10 minutos a 65ºC (Tabla 30).
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TABLA 10
17
Como se muestra en la Tabla 30, la GT SEQ ID NO: 25 de 6 bases indujo la detención en el final de la fase SE del ciclo celular, mientras la AC SEQ ID NO: 79 de 6 bases complementaria no tiene efecto en el ciclo celular. La hibridación de GT SEQ ID NO: 25 y AC SEQ ID NO: 79 neutralizada GT SEQ ID NO: 25 indujeron la detención del ciclo celular. Estos datos demostraron que es efectiva, las secuencias de la presente invención deben ser monocatenarias.
Ejemplo 9 Inducción de apoptosis
La redistribución de la fosfatidilserina de la membrana del plasma y la liberación de la proteína matriz celular (NuMA) son características de las células que experimentan apoptosis (Martin et al. J. Exp. Med., 182:1545, 1995; Miller et al. Biotechniques, 15: 1042, 1993).
La redistribución de la fosfatidilserina en la membrana del plasma durante la apoptosis se midió por citometría de flujo utilizando FITC-conjugada anexina V (BD Pharmingen, San Diego, CA). La liberación de NuMA en el sobrenadante se determinó utilizando un kit de ELISA comercial (Oncogen/Calbiochem, Cambridge, MA).
Las células humanas T de leucemia Jurkat se incubaron con 50 \muM de secuencias GT de 3, 4, 5, 6 y 7 bases, una secuencia ACGT de 5 bases, secuencias AG, GG, AGT y CGT de 6 bases y una secuencia GG de 7 bases. La Tabla 31 muestra el % de células en la apoptosis (positivo para la tinción de fosfatidil-serina/anexina V (PS/A-V)) y % de NuMA liberado de las células.
TABLA 11
18
Como se muestra en la Tabla 31, las secuencias GT, AG, CG y AGT de 3, 4, 5, y 6 bases indujeron la apoptosis de las células T Jurkat. Las secuencias ACGT de cinco bases y CGT y GG de 6 bases no indujeron la apoptosis de las células T Jurkat.
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Ejemplo 10
(Comparación)
Incremento en calcio intracelular (Ca2+)_{f}
El incremento en calcio intracelular (Ca2+)_{i} se reporta para ser asociados con la inducción de la apoptosis (Lam et al. Mol. Endocrinol. 7:686, 1993). (Ca2+)i se siguió utilizando la sonda fluorescente Fluo-3-AM (Cell Permaant, Molecular Probes, Inc., Eugene, OR). Un incremento en la fluorescencia Fluo-3-AM es indicativo de un incremento en (Ca2+)i.
Las células humanas T de leucemia Jurkat se incubaron por 24 h con GT SEQ. NO:25 de 6 bases. Las células se recolectaron por centrifugación, se suspendieron en PBS que contiene 1% de FBS y se cargó con 10 \muM Fluo-3-AM por 1 h a 37ºC. La fluorescencia celular se midió a 488 nm de excitación y 530 nm de emisión (detector FL1). Los datos se analizaron en un FACSCALIBUR utilizando el programa CellQUEST (Becton Dickinson).
Como se muestra en la Figura 1, la incubación de las células T Jurkat con GT SEQ ID NO:25 de 6 bases causó un incremento del 88% en la fluorescencia celular, indicativo de un incremento en (Ca2+)i.
Ejemplo 11 Inducción de la producción de la citoquina
A menos que se indique de otra manera, 1 x 10^{6} células se incubaron con 100 \mug/ml de cada una de las secuencias probadas por 48 h a 37ºC en 5% de CO_{2}. La producción de citoquinas IL-6, IL-10, IL-12, IL-1beta y TNF-alfa se determinó en pg/ml en 100 \mul del sobrenadante del cultivo utilizando el apropiado ELISA comercial (BioSource, Camarillo CA). El IL-12 ELISA mide ambos el complejo IL-12 p70 y la subunidad p40 libre. Los resultados se expresaron como las "veces" (x) de incremento en la producción de la citoquina por las células tratadas comparadas con las células control.
Las células humanas de leucemia aguda monocítica THP-1 se incubaron con secuencias GT 2, 3, 6, 9, 12, 14, 15 y 18 de bases y se determinó la producción de la citoquina IL-6 (Tabla 35).
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TABLA 12
19
Como se muestra en la Tabla 35, las secuencias GT de 2, 3, 6, 9, 12, 14, 15 y 18 bases incrementaron la producción de la célula THP-1 de la citoquina IL-6.
Las células humanas de leucemia aguda monocítica THP-1 se incubaron con las secuencias GT, AG, CG, GG, AGT y CGT de 6 bases y se determinó la producción de las citoquinas IL-12 e IL-6 (Tabla 13).
TABLA 13
20
Como se muestra en la Tabla 13, las secuencias GT, AG, CG, GG, AGT y CGT de 6 bases incrementaron la producción de la célula THP-1 de las citoquinas IL-12 e IL-6.
La Tabla 14 resume la inducción de la síntesis de IL-12 e IL-6 por secuencias de 6 bases.
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TABLA 14
21
BCG derivado de las secuencias A-3 (SEQ ID NO: 73), A-4 (SEQ ID NO:74), A-6 (SEQ ID NO:75), A-7 (SEQ ID NO:76), M3 (SEQ ID NO:77) y Alfa 1 (SEQ ID NO:78) se reportan para activar las células NK in vivo (Kataoka et al. Jpn. J. Cancer Res. 83:244, 1992). Las células humanas de leucemia aguda monocítica THP-1 se incubaron con las secuencias BCG-derivadas de 45 bases y se determinó la producción de las citoquinas IL-12 y IL-6 (Tabla 15).
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TABLA 15 (comparación)
22
Como se muestra en la Tabla 15, las secuencias derivadas BCG de 45 bases en forma mínima incrementaron la producción de la célula THP-1 de IL-12 y IL-6.
Ejemplo 12
(Comparación)
Inducción de la producción IL-1 2 por las secuencias fosfodiéster y fosforototioato
Las células humanas de leucemia aguda monocítica THP-1 se incubaron con secuencias GT de 6 bases, que tienen ya sea un oxígeno (fosfodiéster) o un azufre (fosforotioato) como el átomo no-enlazado en los grupos fosfato y se determinó la producción de la citoquina IL-12 (Tabla 16).
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TABLA 16
23
24
Como se muestra en la Tabla 16, la sustitución de un átomo de azufre (fosforotioato) por un átomo de oxígeno no-enlazado (fosfodiéster) en los grupos fosfato resultó en una dismunición significante en la producción de la célula THP-1 de IL-12.
Las células humanas de leucemia aguda monocítica THP-1 se incubaron con la SEQ ID NO:25 GT de 6 bases, que tienen ya sea un oxígeno (fosfodiéster) o un azufre (fosforotioato) como el átomo no-enlazado en los grupos fosfato y se determinó la producción de la citoquina IL-12 (Tabla 17).
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TABLA 17
25
Como se muestra en la Tabla 17 la sustitución de un átomo de azufre (fosforotioato) por un átomo de oxígeno no-enlazado (fosfodiéster) en la SEQ ID NO:25 GT de 6 bases resultó en una significante dismunición en la producción de la célula THP-1 de IL-12.
Ejemplo 3 Estimulación de la síntesis de la citoquina en células humanas mononucleares de sangre periférica
Las células mononucleares de sangre periférica (a partir de ahora, "PBMCs") se aislaron de 7 humanos saludables por Ficoll-Hypaque (Amersham Pharmacia Biotech, Baie d'Urfée, Québec, Canada) por centrifugación con gradiente de densidad de sangre total. De PBMCs se incubaron con las secuencias GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases y se determinó la producción de las citoquinas IL- beta, IL-6, IL-10 y IL-12.
TABLA 18
26
27
Como se muestra en la Tabla 18 las secuencias GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases incrementaron la producción de la célula humana PBMC de las citoquinas IL-1beta, IL-6, IL-10 y IL-12.
Ejemplo 14 Síntesis de la citoquina por células mononucleares de sangre periférica de chimpancé
PBMCs se aislaron de 4 chimpancés saludables como en el Ejemplo 35. Las PBMCs de Chimpancé se incubaron con las secuencias GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases y se determinó la producción de las citoquinas IL-10, IL-12 y TNF-alfa (Tabla 19).
TABLA 19
28
29
Como se muestra en la Tabla 19 las secuencias GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases incrementaron la producción de células de chimpancé PBMC de las citoquinas IL-10 y IL-12 y TNF-alfa.
Ejemplo 15 Síntesis de la citoquina por células mononucleares de sangre periférica mono rhesus
Las PBMCs se aislaron de 4 monos rhesuss saludables como en el Ejemplo 35. Las PBMCs se incubaron con las secuencias GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases y se determinó la producción de las citoquinas IL-6, IL-12 y TNF-alfa (Tabla 42).
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TABLA 20
30
31
Como se muestra en la Tabla 20, las secuencias GT, AGT, CGT, AG, CG y GG de 6 bases incrementaron la producción de las células PBMC del mono rhesus de las citoquinas IL-10, IL-12 y TNF-alfa.
Ejemplo 16
(Comparación)
Efecto de la SEQ ID NO:2 5 GT de 6 bases de SEQ ID NO:2 5 GT de 6 bases + 5-fluorouracil y de SEQ ID NO:2 5 GT de 6 bases + tamoxifen en tumores humanos de pecho MCF-7
Las células humanas cancerosas de pecho MCF-7 se implantan vía subcutánea como xenoinjertos, en ratones BALB/c desnudos hembras. Los ratones se dividieron en 6 grupos de 10 ratones. En el día 0, los ratones del grupo 1 recibieron solución salina, los ratones del grupo 2 recibieron la SEQ ID NO:25 GT de 6 bases, los ratones del grupo 3 recibieron el 5-fluorouracil, los ratones del grupo 4 recibieron tamoxifen, los ratones del grupo 5 recibieron la SEQ ID NO:25 GT de 6 bases + 5-fluorouracil y los ratones del grupo 6 recibieron la SEQ ID NO:25GT de 6 bases + tamoxifen. Después de 4 semanas del tratamiento, los ratones se sacrificaron y se determina la masa tumoral. Los ratones del grupo 1 tienen la mayoría de masa tumoral, los ratones de los grupos 2, 3 y 4 tienen menos masa tumoral que los ratones del grupo 1 y los ratones de los grupos 5 y 6 tienen menos masa tumoral que los ratones de los grupos 1, 2, 3 y 4.
Ejemplo 17 Efecto de las secuencias GT de 3 y 6 bases y la secuencia BCG A-3 de 45 bases en tumores humanos de cáncer de próstata LNCaP
Las células humanas de cáncer de próstata LNCaP se implantan vía subcutánea, como xenoinjertos, en ratones nu/nu desnudos machos. Los ratones se dividieron en 5 grupos de 10 ratones. En el día 0, los ratones del grupo 1 recibieron solución salina, los ratones del grupo 2 recibieron SEQ ID NO:8 de 3 bases, los ratones del grupo 3 recibieron la SEQ ID NO:25 GT de 6 bases, los ratones del grupo 4 recibieron la SEQ ID N0:45 AG de 6 bases y los ratones del grupo 5 recibieron la SEQ ID N0:69 BCG A-3 de 45 bases. Después de 4 semanas de tratamiento, los ratones se sacrificaron y se determinó la masa tumoral. Los ratones del grupo 1 tienen la mayoría de masa tumoral, los ratones del grupo 5 tienen menos masa tumoral que los ratones del grupo 1 y los ratones de los grupos 2, 3 y 4 tienen menos masa tumoral que los ratones del grupo 1 y 5.
Ejemplo 18 Efecto de las secuencias de 3, 6, 8 y 27 bases en linfomas T EL-4 murina
Las células T EL-4 murina del linfoma se implantan en ratones C57/BL6. Los ratones se dividieron en 6 grupos de 10 ratones. En el día 0, los ratones del grupo 1 recibieron la solución salina, los ratones del grupo 2 recibieron la SEQ ID NO:8 GT de 3 bases, los ratones del grupo 3 recibieron la SEQ ID NO:25 de 6 bases, los ratones del grupo 4 recibieron la SEQ ID NO:45 AG de 6 bases, los ratones del grupo 5 recibieron la SEQ ID NO:18 GT de 18 bases y los ratones del grupo 6 recibieron la SEQ ID NO:1 GT de 27 bases. Después de 4 semanas del tratamiento, los ratones se sacrificaron y se determina la masa tumoral. Los ratones del grupo 1 tienen la mayoría masa tumoral, los grupos 2, 3, 4, 5 y 6 de ratones tienen menos masa tumoral que los ratones del grupo 1.
Ejemplo 19
Las líneas de células humanas de cáncer de colon se mantuvieron como cultivos celulares adherentes. Las células en fase de crecimiento exponencial se tratan con las secuencias GT, GA, GC o GG de 2-20 bases en el rango de dosis de 0 \mug/ml a 100 \mul/ml por 24-72 horas. La inhibición de proliferación celular se mide por la reducción de MTT, la detención del ciclo celular por citometría de flujo y la apoptosis por el enlace anexina-V o la liberación de NuMA. Las secuencias GT, GA, GC o GG inhiben la proliferación, inducen la detención del ciclo celular e inducen la apoptosis en las líneas de células cancerosas del colon.
Los ratones SCID que llevan líneas de células humanas de cáncer colorectal subcutáneas se tratan con solución salina o con las secuencias GT, GA, GC o GG de 2-20 bases, que tienen actividad anti-cáncer contra las líneas de células humanas de cáncer colorectal in vitro. Los ratones tratados con las secuencias GT, GA, GC o GG de 2-20 bases, que tienen actividad anti-cáncer contra las líneas de células humanas de cáncer colorectal in vitro, mostraron una reducción significante en la masa tumoral comparada con los ratones tratados con solución salina.
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Referencias citadas en la descripción Esta lista de referencias citadas por el aspirante es únicamente para conveniencia del lector. No forma parte del documento de la Patente Europea. Aún cuando se ha tomado gran cuidado en recopilar las referencias, los errores u omisiones no se pueden excluir y la EPO desconoce toda responsabilidad en este respeto. Documentos de Patentes citados en la descripción
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<170> PatentIn version 3.0
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6
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 64
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 64
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tgggtgg
\hfill
7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 65
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 65
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggtggt
\hfill
7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 66
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 66
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gtgtgtgtgt gtgtgtgtgt gtgtgtg
\hfill
27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 67
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 67
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggtgggtgg gtgggtgggt gggtggg
\hfill
27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 68
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 68
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggggtgggg gtgggggtgg gggtggg
\hfill
27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 69
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 69
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggggggtgg gggggtgggg gggtggg
\hfill
27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 70
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 70
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tgtgtg
\hfill
6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 71
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 71
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gtgtgt
\hfill
6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 72
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 72
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
tttgtt
\hfill
6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 73
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 73
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ggtggg
\hfill
6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 74
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 74
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gggtgg
\hfill
6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 75
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 75
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttgttt
\hfill
6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 76
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 76
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gccgagaagg tgcgcaacct gccggctggc cacggactga acgct
\hfill
45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 77
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 77
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
acgccgacgt cgtctgtggt ggggtgtcta ccgccaacgc gacgg
\hfill
45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 78
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 78
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cgactacaac ggctgggata tcaacacccc ggcgttcgag tggta
\hfill
45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 79
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 79
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ccaccc
\hfill
6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 80
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 80
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
cggta
\hfill
5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 81
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
gtgtgtttgg t
\hfill
11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 82
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 82
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ggttttgttt g
\hfill
11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 83
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Oligonucleótido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 83
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
ttgttttttt tg
\hfill
12
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 84
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Péptido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 84
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Tyr Val Ala Asp}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 85
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Péptido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 85
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Asp Glu Val Asp}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 86
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Péptido Sintético
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> SITE
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (4)..(4)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> X = cualquier Aminoácido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 86
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Ile Leu Glu Xaa Cys}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 87
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Péptido Sintético
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 87
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Ile Glu Gly Asp}

Claims (7)

1. Una composición que comprende una secuencia aislada de nucleótidos fosfodiéster sintéticos 3'-OH, 5'-OH de la SEQ ID NO: 45:gggagg y que además comprende un vehículo farmacéuticamente aceptable.
2. La composición de la reivindicación 1, que además comprende un agente quimioterapéutico.
3. La composición de las reivindicaciones 1 o 2, en donde el agente quimioterapéutico se selecciona del grupo que consiste de un antimetabolito, un agente alquilante y un antagonista hormonal.
4. El uso de la composición de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 en la preparación de un medicamento para inducir una respuesta seleccionada del grupo que consiste de la inducción de la detención del ciclo celular, la inhibición de la proliferación, la activación de las caspasas y la inducción de la apoptosis en células cancerosas, y la producción de citoquinas por las células del sistema inmune, en donde las citoquinas se seleccionan del grupo que consiste de IL-1-beta, IL-6, IL-10, IL-12, y TNF-alfa.
5. Uso de la composición de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3 en la preparación de un medicamento para tratar el cáncer.
6. El uso de cualquiera de las reivindicaciones 4 a 5, en donde el cáncer se selecciona del grupo que consiste de un carcinoma primario, un carcinoma secundario, un sarcoma primario y un sarcoma secundario.
7. El uso de la reivindicación 6, en donde el cáncer se selecciona del grupo que consiste de leucemia, linfoma, cáncer de pecho, de próstata, colorectal, ovarios y de hueso.
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