ES2272499T3 - Almidon con alto contenido en amilosa reticulado para su utilizacion en formulaciones farmaceuticas de liberacion controlada y procedimientos para su preparacion. - Google Patents
Almidon con alto contenido en amilosa reticulado para su utilizacion en formulaciones farmaceuticas de liberacion controlada y procedimientos para su preparacion. Download PDFInfo
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Abstract
Pastilla de liberación controlada que comprende una mezcla comprimida de al menos dos polvos secos, incluyendo un polvo de al menos un agente farmacéutico y un polvo de un excipiente de liberación controlada, en la que dicho excipiente de liberación controlada comprende además un almidón reticulado con alto contenido en amilosa obtenible por: reticulación y modificación química de almidón con alto contenido en amilosa, gelatinización y secado para obtener un polvo de dicho excipiente de liberación controlada.
Description
Almidón con alto contenido en amilosa reticulado
para su utilización en formulaciones farmacéuticas de liberación
controlada y procedimientos para su preparación.
La presente invención se refiere a una nueva
forma de almidón reticulado con alto contenido en amilosa y a los
procedimientos para su preparación. Dicho almidón reticulado con
alto contenido en amilosa es útil como excipiente en una formulación
farmacéutica de liberación controlada cuando es comprimido junto con
un(os) agente(s)
farmacéutico(s) en una pastilla.
farmacéutico(s) en una pastilla.
Uno de los factores críticos que influyen en la
velocidad de absorción de un medicamento administrado como pastilla
o en otra forma de dosificación sólida es la velocidad de disolución
de la forma de dosificación en los fluidos del cuerpo de un humano o
animal.
Este factor es la base de las llamadas
preparaciones farmacéuticas de liberación controlada, liberación
extendida, liberación sostenida o de acción prolongada que están
diseñadas para producir una liberación uniforme y absorción lenta
del medicamento en un período de horas, días, semanas, meses o años.
Las ventajas de las formulaciones de liberación controlada son una
reducción en la frecuencia de administración del medicamento en
comparación con las formas de dosificación convencionales (lo que a
menudo resulta en una mejoría en el cumplimiento por parte del
paciente), permanencia del efecto terapéutico durante un período de
tiempo determinado y una disminución de la incidencia y/o intensidad
de los efectos secundarios no deseados del medicamento por la
eliminación de los picos en la concentración de plasma que ocurre a
menudo después de la administración de las formas de dosificación de
liberación inmediata.
Se han propuesto muchos sistemas que se han
desarrollado como matrices para la liberación de un medicamento. Por
ejemplo, materiales poliméricos tales como cloruro de polivinilo,
amidas de polietileno, etilcelulosa, silicona y poli (hidroximetil
metacrilato), han sido propuestos como vehículos para la liberación
lenta de medicamentos. Ver patente US nº 3.087.860 de Endicott
et al.; patente US nº 2.987.445 de Levesque et al.;
Salomon et al., Pharm. Acta Helv., 55,
174-182 (1980); Korsmeyer, Diffusion Controlled
Systems: Hydrogels, Capítulo 2, pp 15-37 en
Polymers for Controlled Drug Delivery, Ed. Tarcha, CRC Press,
Boca Raton, Florida USA (1991); Buri et al., Pharm. Acta
Helv. 55, 189-197 (1980).
Existe una necesidad sustancial de contar con
una composición de liberación controlada que pueda suministrar una
variedad de medicamentos, ya sean hidrofílicos o hidrofóbicos, de
manera uniforme y fiable. Además, esta composición debe ser flexible
para cumplir con todas las facetas requeridas en la preparación de
las pastillas, incluyendo, pero no estando limitada a la compresión
directa, dureza apropiada y resistencia a ser desmenuzada, y
compatibilidad con el(los) ingrediente(s)
activo(s) contenidos en la pastilla. También, la composición
debería ser fácil de sintetizar, biodegradable y no tóxica al
suministrar el medicamento.
Uno de los compuestos más ampliamente estudiados
para el uso de liberación controlada ha sido el almidón,
parcialmente porque es biodegradable y se metaboliza naturalmente
por el cuerpo humano [Kost et al., Biomaterials 11,
695-698 (1990)]. El almidón tiene muchos usos en
productos farmacéuticos. Puede actuar como un diluyente, relleno,
portador, ligante, desintegrante, recubrimiento, espesador y
recipiente de humedad. Ver la patente US nº 2.938.901 de Kerr et
al., que da a conocer el uso de almidón granular reticulado con
trimetafosfato de sodio como un polvo limpiador quirúrgico; la
patente US nº 3.034.911 de McKee et al., que da a conocer el
uso de almidón insoluble en agua fría e hinchable en agua fría como
desintegrante en forma granular intacta; la patente US nº 3.453.368
de Magid, que da a conocer el uso de almidones pregelatinizados,
modificados opcionalmente como ligantes para pastillas de ácido
ascórbico comprimidas; la patente US nº 3.490.742 de Nichols et
al., que da a conocer una amilosa no granular (al menos 50%)
obtenida del fraccionamiento del almidón de maíz para ser utilizado
como ligante desintegrador en pastillas de compresión directa y
granulación seca; la patente US nº 3.622.677 de Short et al.,
que da a conocer el uso de un almidón parcialmente soluble en agua
helada e hinchable en agua helada, derivado de un almidón granular
compacto, como ligante-desintegrante; la patente US
nº 4.072.535 de Short et al., que da a conocer un almidón
precompactado que tiene gránulos birrefringentes, gránulos no
refringentes y algunos agregados y fragmentos para ser usados como
ligantes-desintegrantes; la patente US nº 4.026.986
de Christen et al., que da a conocer el uso de éteres de
almidón solubles de agua (por ejemplo, éteres hidroxialquilos) que
contienen al menos un 50% de amilosa para ser usadas en la formación
de cáscaras de cápsulas; la patente US nº 4.308.251 de Dunn et
al., que da a conocer el uso de almidones de maíz, arroz o
patatas y modificados como un agente promotor de la erosión en
formulaciones de liberación controlada preparadas por granulación
húmeda; la patente US nº 4.551.177 de Trabiano et al., que da
a conocer el uso de una amilasa ácida y/o alfa convertida en
almidones como ligantes de pastillas; la patente US nº 4.904.476 de
Metha et al., que da a conocer el uso de glicolato de almidón
sódico como un desintegrante; la patente US 4.818.542 de DeLuca
et al., la cual describe el almidón como un polímero
biodegradable o bioerosionable para microesferas porosas
posiblemente cubiertas con un agente de reticulación para inhibir o
controlar la liberación de medicamentos; la patente US nº 4.888.178
de Rotini et al., que da a conocer el uso de almidón,
preferentemente almidón de maíz y glicolato de almidón sódico como
desintegrantes en la liberación inmediata de una formulación de
Naproxeno® de liberación programada que contiene gránulos de
liberación inmediata y controlada en forma de pastillas, cápsulas o
suspensión en un medio líquido apropiado; la patente US nº 5.004.614
de Staniforth et al., que da a conocer el uso de almidones
como rellenos farmacéuticos en dispositivos de liberación controlada
que contienen un agente activo y un agente de liberación y el uso de
almidón sódico carboximetilado de enlaces reticulados o no
reticulados para el
recubrimiento.
recubrimiento.
La patente US nº 4.369.308 de Trubiano et
al., da a conocer almidones modificados los cuales se hinchan
poco en agua fría y los cuales son adecuados para ser utilizados
como desintegrantes en pastillas comprimidas. Esto se logra por
reticulación y pregelatinizado en presencia de agua, de un almidón
granular insoluble en agua fría, secado del almidón con
reticulación, pregelatinizado si es necesario, y luego pulverizado
del almidón seco. Para estos almidones no se describen ni tampoco se
reivindican propiedades de liberación controlada.
Los almidones reticulados han sido previamente
evaluados como agentes de liberación continua. En Visavarungroj
et al., [Drug Development And Industrial Pharmacy ,
16(7), 1091-1108 (1990)] se da a
conocer la evaluación de diferentes tipos de almidones con
reticulación y almidones con reticulación pregelatinizados para ser
usados como matrices hidrofílicas. Se determinó que los almidones
con reticulación demostraron un pobre poder de hinchamiento y
viscosidad de suspensión en comparación con el almidón
pregelatinizado y almidón reticulado pregelatinizado. El estudio
concluye que los almidones de maíz cerosos modificados con
reticulación, ya sea pregelatinizados o no, en comparación con
almidones de maíz cerosos puramente pregelatinizados no son
adecuados para ser usados como una matriz hidrofílica en
formulaciones de liberación continua.
Nakano et al. [Chem. Pharm. Bull.,
35(10), 4346-4350, (1987)], dan a conocer el
uso de almidón modificado físicamente (almidón pregelatinizado) como
excipiente en pastillas de liberación continua. Este artículo no
menciona el rol específico de la amilosa presente en el almidón ni
menciona la amilosa.
Van Aerde et al. [Int. J. Pharm., 45,
145-152, (1988)] dan a conocer el uso de almidones
modificados obtenidos mediante secado en tambor o por
pregelatinización por extrusión, hidrólisis de partícula o
reticulación con trimetafosfato se sodio, como excipiente en
pastillas de liberación continua. Nuevamente, el artículo no
menciona el rol específico de la amilosa presente en el almidón ni
menciona la amilosa.
Herman et. al [Int. J. Pharm., 56,
51-63 & 65-70 (1989) y Int. J.
Pharm., 63, 201-205 (1990)] dan a conocer el uso de
almidones modificados térmicamente como matrices hidrofílicas para
el suministro oral controlado. Este artículo da a conocer que los
almidones modificados térmicamente que contienen una cantidad baja
de amilosa (25% o menor), tienen buenas propiedades de liberación
sostenida, al contrario de lo que se encuentra en los almidones con
alto contenido en amilosa, los cuales presentan propiedades pobres
de liberación controlada.
La patente US nº 3,490,742 a Nichols et
al. da a conocer un ligante-desintegrante que
comprende amilosa no granular. Este material se prepara ya sea por
fraccionamiento de almidón o mediante la disolución de almidón
granular con alto contenido en amilosa en agua a alta temperatura.
No se revelan propiedades de liberación controlada.
La patente US nº 5,108,758 a Alwood et
al. da a conocer una composición de liberación oral retardada
que comprende un compuesto activo y amilosa vidriosa. La composición
está particularmente bien adaptada para lograr la liberación
selectiva del compuesto activo al colon. La liberación controlada se
debe a un recubrimiento. La amilosa vidriosa es una de dos formas de
la amilosa predominantemente amorfa, la otra se encuentra en una
forma gomosa. Aquí, la amilosa vidriosa retarda la liberación del
compuesto activo de la composición en un ambiente acuoso pero
permite su liberación al estar expuesta a una enzima capaz de
degradar la amilosa. La amilosa usada en esta composición se aísla
de almidón de guisante de semilla lisa y se purifica mediante
precipitación de solución acuosa como un complejo con
n-butanol. El alcohol se retira de una suspensión
acuosa de ese complejo soplando con un gas inerte adecuado caliente.
Como se ha indicado, el mecanismo de liberación se basa en una
reacción enzimática. No hay liberación continua a través del
conducto gastrointestinal, pero sólo una liberación retardada en el
colon debido a la degradación del recubrimiento. Además, se revela
que la amilosa vidriosa debería no contener preferentemente grupos
hidroxilo en una forma de derivado.
La solicitud de patente europea nº
EP-A-499.648 a
Wai-Chiu et al. da a conocer un excipiente
para pastillas. Más particularmente, da a conocer un ligante y/o
carga de almidón útil para la preparación de pastillas, pellets,
cápsulas o gránulos. El excipiente de pastilla se prepara al romper
enzimáticamente las ramificaciones del almidón con una
\alpha-1,6-D-glucanohidrolasa
para resultar en al menos 20% en peso de "amilosa de cadena
corta". No se reivindican las propiedades de liberación
controlada para este excipiente. Más aún, el almidón (no modificado,
modificado o reticulado) debe ser tratado encimáticamente con una
\alpha-1,6-D-glucanohidrolasa
para romper sus ramificaciones y rendir la así llamada "amilosa de
cadena corta". De esta manera, el almidón con un alto contenido
de amilopectina es obviamente preferido y la amilosa es rechazada
como no adecuada porque es imposible romper las ramificaciones de
amilosa, ya que la amilosa no tiene ramificaciones. El papel de la
amilosa no sólo es ignorado, es considerado como algo negativo.
Mateescu et al., [patente US nº
5.456.921] y Lenaerts et al., [J. Controlled Rel. 15,
39-46, (1991)] dan a conocer que la amilosa
entrecruzada es una herramienta muy eficiente para controlar el
suministro de medicamentos. La amilosa entrecruzada es producida por
la reacción de la amilosa con un agente de reticulación tal como la
epiclorhidrina en un medio alcalino. Se pueden obtener distintos
grados de reticulación al variar la proporción de epiclorhidrina
con respecto a la amilosa en la vasija de reacción. Las pastillas
producidas por compresión directa de una mezcla seca de amilosa
entrecruzada y un medicamento se hinchan en solución y muestran una
liberación controlada del medicamento. Dependiendo del grado de
reticulación de la matriz, se obtienen diferentes grados de
hinchamiento. Al aumentar los grados de reticulación de la amilosa
genera en primer lugar un aumento en el tiempo de liberación del
medicamento, seguido por una disminución del tiempo de liberación
del medicamento. El tiempo pico de liberación del medicamento se
observa a un valor de reticulación de 7,5. Un aumento mayor en el
grado de reticulación conduce a un aceleramiento de la liberación
del medicamento proveniente de la pastilla de amilosa entrecruzada
como consecuencia del proceso de erosión. Para grados de
reticulación iguales o mayores a 7,5, el aumento en el grado de
reticulación de la amilosa genera una disminución del tiempo de
liberación del medicamento. Con grados de reticulación por encima de
11, la matriz polimérica hinchada presenta desintegración in
vitro en un período de aproximadamente
90 minutos.
90 minutos.
Mateescu et al., [Solicitud de patente
internacional abierta al público WO 94/02121] y Dumoulin et
al., [Intern. Symp. Control. Rel. Bioact. Mater. 20,
306-307, (1993)] dan a conocer un sistema de
liberación de medicamentos controlado enzimáticamente basado en la
adición de \alpha-amilasa en la pastilla de
amilosa entrecruzada. La \alpha-amilasa es capaz
de hidrolizar los enlaces
\alpha-1,4-glucosídicos presentes
en la matriz semisintética entrecruzada de amilosa. El aumento de
\alpha-amilasa (de 5 a 25 EU) dentro de las
pastillas induce un descenso significativo en el tiempo de
liberación desde 24 a 6 horas. Así, la liberación de medicamento
está controlada por dos mecanismos secuenciales: a) hidratación e
hinchamiento de pastillas de amilosa entrecruzada seguido por b)
hidrólisis enzimática interna de la fase gel hidratada.
Cartilier et al. [Solicitud de patente
internacional abierta al público nº WO 94/21236] dan a conocer
polvos de amilosa entrecruzada que tiene un grado específico de
reticulación para uso como ligante y/o desintegrante de pastilla.
Las pastillas se preparan por compresión directa. La concentración
de amilosa entrecruzada en las pastillas es menor a 35% en peso. Se
prefieren los grados de reticulación de 6 a 30 y más particularmente
de 15 a 30 cuando se necesitan propiedades desintegrantes.
La patente US nº 5.830.884 a Kasica et
al. da a conocer almidones térmicamente inhibidos que son usados
en productos farmacéuticos como diluyentes, cargas, vehículos,
ligantes, desintegrantes, espesantes y recubrimientos. Se preparan
deshidratando el almidón a un estado anhidro o sustancialmente
anhidro y tratando por calor este almidón anhidro o sustancialmente
anhidro durante un periodo de tiempo y a una temperatura
suficientemente alta como para inhibir el almidón. Los almidones que
están sustancialmente inhibidos térmicamente resisten la
gelatinización y sólo imitan al almidón reticulado químicamente.
La patente US nº 5.879.707 a Cartilier et
al. da a conocer el uso de amilosa sustituida como matriz para
liberación continua de medicamentos. La matriz de liberación
continua está realizada en amilosa sustituida, preparada mediante la
reacción de amilosa en medio alcalino, con un sustituyente orgánico
que tiene una funcionalidad reactiva que reacciona con los grupos
hidroxi de la molécula de amilosa. Este sustituyente es
preferentemente un alcano o alcohol epoxi o halógeno. Sin embargo,
sólo se usa amilosa con sustitución lineal y se distingue de la
amilosa entrecruzada usada en la presente invención.
Dumoulin et al. [Solicitud de patente
internacional abierta al público WO 98/36992] dan a conocer un
proceso para la preparación de un excipiente de liberación lenta que
constituido principalmente por amilosa entrecruzada que tiene
propiedades de liberación controlada, para su uso en la preparación
de pastillas o pellets. Un almidón que contiene una alta cantidad de
amilosa (almidón con alto contenido en amilosa) se somete primero a
gelatinización. El almidón con alto contenido en amilosa
gelatinizado se entrecruza en medio alcalino con 1 a 5 gramos de
agente de reticulación por cada 100 gramos de almidón con alto
contenido en amilosa gelatinizado en base seca, creando un medio de
reacción que contiene un producto de reacción que consiste en una
suspensión de almidón reticulado con alto contenido en amilosa. El
medio de reacción obtenido es neutralizado, formando así
subproductos constituidos por sales, que se retiran del medio de
reacción. La suspensión de almidón reticulado con alto contenido en
amilosa es sometida a un tratamiento térmico a una temperatura de al
menos 60ºC y el producto del tratamiento térmico se seca para
obtener el excipiente de liberación lenta que contiene un número
apreciable de impurezas.
Lenaerts et al., [J. Controlled Release
53, 225-234 (1998)] ha demostrado que los almidones
con alto contenido en amilosa reticulados gelatinizados son
excipientes útiles para la formulación de formas de dosificación
sólida de liberación controlada para el suministro oral de los
medicamentos. Estos excipientes exhiben una falta de erosión, una
hinchazón limitada y el hecho de que un aumento en los grados de
reticulación resulta en un aumento en la capacidad de absorber agua,
mayor velocidad de liberación del medicamento e equilibrio de
hinchazón. Estos investigadores también pudieron demostrar que las
matrices de almidón con alto contenido en amilosa reticulado tienen
la variabilidad entre sujeto más baja entre los sistemas probados y
demostraron una total ausencia de verse afectada por la comida.
Lenaerts et al., pudieron concluir también que a medida que
aumentaba el grado de reticulación, el medicamento se liberaría más
rápido. Los autores concluyeron que para que los almidones con alto
contenido en amilosa reticulados gelatinizados poseyeran las
características necesarias para tener una liberación controlada de
los medicamentos incorporados, era necesario que la superficie de
los aglomerados de amilopectina estuviera recubierta por amilosa
químicamente enlazada a amilopectina por un procedimiento de
reticulación. Esta estructura es de hecho obtenida al gelatinizar
primero el almidón con alto contenido en amilosa para extraer la
amilosa de los gránulos y luego llevar a cabo la reacción química
para enlazar químicamente la amilosa a la superficie de los
aglomerados de amilopectina, tal como cuando se usa el procedimiento
descrito por Dumoulin et al., en el documento WO
98/35992.
Todas las referencias descritas anteriormente
que se relacionan con almidón con alto contenido en amilosa
reticulado enseñan que el material de amilosa de partida debe ser
gelatinizado antes de la reticulación. La integridad de los gránulos
de almidón en el estado seco es dependiente de los enlaces de
hidrogeno entre la amilopectina y la amilosa. Cuando una suspensión
acuosa de almidón es calentada a cierta temperatura, los enlaces de
hidrógeno entre la amilopectina y la amilosa se debilitan y los
gránulos se hinchan hasta que colapsan. Este proceso es conocido
como "gelatinización". Esta primera etapa en el procedimiento
permite la lixiviación de la amilosa de los gránulos de almidón
previo a la reacción con un reactivo de reticulación, el cual luego
crea una amilosa entrecruzada con propiedades de liberación
controlada. Más aún, se ha dicho que es necesario la gelatinización
de almidón con alto contenido en amilosa antes de la reticulación
para que se pueda preparar un producto que posea las propiedades
deseadas de liberación controlada. Ver Dumoulin et al.,
documento WO 98/35992.
El documento WO9943305 da a conocer un unidad de
dosificación farmacéutica oral de liberación lenta sólida en forma
de una pastilla que comprende un polvo seco de un agente
farmacéutico (hidrocloruro de pseudoefedrina, acetaminofeno,
diclofenac sódico), un polisacárido opcional o poliol, y una mezcla
de milopectina al 10-60%, amilosa reticulada de
manera covalente al 40-90% en la que la reticulación
se ha realizado con 0,1 a 30 g de agente de reticulación por 100 g
de almidón con alto contenido en amilosa. Los agentes de
reticulación se seleccionan de entre el grupo constituido por
epiclorhidrina, trimetafosfato sódico, anhídridos de ácidos
acéticos y carboxílicos di- o
tribásicos.
tribásicos.
La preparación del almidón con alto contenido en
amilosa reticulado comprende la mezcla con hidróxido de sodio,
manteniendo la temperatura a 50ºC para la gelatinización, la adición
de epiclorhidrina, la subsiguiente homogeneización y la
neutralización con ácido acético. El objetivo del documento
WO9943305 consiste en desarrollar formulaciones de liberación
sostenida comprimidas en forma de pastilla.
Ispas-Szabo et al
(Carbohydrate Research, 1999. 323, 163-178) da a
conocer la liberación controlada de agentes activos del almidón con
alto contenido en amilosa reticulado (CLHAS). Las propiedades de
control hacen referencia al hinchado de la pastilla, la reticulación
del CLHAS y el estado de cristalinidad. Para la preparación del
almidón con alto contenido en amilosa reticulado, el almidón con
alto contenido en amilosa fue tratado térmica y químicamente para su
gelatinización, fueron añadidas lentamente algunas cantidades de
epiclorhidrina bajo agitación continua, a continuación la mezcla se
neutralizó.
El documento GB 1576475 da a conocer un
procedimiento para la preparación de almidón reticulado con alto
contenido en amilosa que comprende las etapas siguientes:
- -
- gelatinizar el almidón,
- -
- tratar el almidón con un compuesto bifuncional de reticulación durante o tras la gelatinización, y
- -
- hacer reaccionar el almidón con un agente de esterificación monofuncional.
La patente US nº 3.904.601 da a conocer una
formulación de almidón con alto contenido en amilosa reticulado
inhibido, hidroxipropilado. Este tipo de almidón se utiliza en los
alimentos.
Ahora se ha encontrado sorprendentemente que el
almidón con alto contenido en amilosa puede ser sometido a
tratamiento químico (esto es, reticulación e hidroxipropilación) en
el estado granular usando concentraciones muy pequeñas de reactivos
químicos seguido por gelatinización y secado para dar como resultado
un excipiente de liberación controlada con propiedades de liberación
superiores a la de excipientes de almidones con alto contenido en
amilosa producidos por un proceso en el cual el almidón con alto
contenido en amilosa se somete a la gelatinización como primera
etapa, seguida por tratamiento químico y secado.
Los nuevos procesos, composiciones y actividad
de liberación controlada descritos en la presente memoria son
contraintuitivos con respecto a lo conocido generalmente por el
experto en la materia. El experto en la materia no esperaría que
someter almidón con alto contenido en amilosa a un tratamiento
químico (reticulación) previamente a la gelatinización resultara en
un producto con propiedades de liberación controlada. La
reticulación de almidón con alto contenido en amilosa previamente a
la gelatinización probablemente llevaría a un material que no
exhibiría propiedades de liberación controlada, que tendría un
perfil de liberación inmediata porque el almidón reticulado con alto
contenido en amilosa no podría soportar una matriz capaz de exhibir
propiedades de liberación controlada, demostrando diferencias
estructurales esenciales entre los dos productos reticulados. De
acuerdo a Lenaerts et al. (J. Controlled Rel., 1998), tales
diferencias estructurales llevarían a una incapacidad del material
para tener propiedades de liberación controlada. Jane et al.
[Cereal Chemistry, 69(4), 405-409
(1992)] dan a conocer que la reticulación de almidón pregelatinizado
y disperso causa menos diferencias en la proporción de amilosa y
amilopectina solubles que la reticulación de almidón granular
nativo. Jane et al. informan de que no hay aumento en el
tamaño de la amilosa como resultado de la reticulación entre dos o
más moléculas de amilosa luego de que el almidón ha sido reticulado
en la forma granular y no mencionan propiedades de liberación
controlada de los almidones reticulados en la forma granular.
Adicionalmente, Mateescu et al. (patente US nº 5.456.921)
describen que la liberación controlada óptima se obtiene al haber
una relación de 7,5 gramos de agente de reticulación por 100 gramos
de almidón seco, en cambio en la presente invención el agente de
reticulación puede ser agregado en cantidades menores a 0,3 gramos
por 100 gramos de almidón seco. Esta cantidad baja de agente de
reticulación es preferida porque permite que el producto cumpla con
lo exigido por las monografías para almidones modificados de la US
Food and Drug Administration y el Codex de Productos Químicos para
Alimentos, así como la Directiva nº 95/2/EC del Consejo y del
Parlamento Europeo sobre aditivos para alimentos del 20 de Febrero
de 1995 que no incluye colorantes y saborizantes (Directiva
Miscelánea).
Miscelánea).
Sorprendentemente, se ha descubierto que se
puede preparar un nuevo excipiente para la liberación controlada
mediante las etapas siguientes:
Reticulación granular y modificación química
adicional (por ejemplo hidroxipropilación) de almidón con alto
contenido en amilosa;
Gelatinización térmica del almidón de la etapa
(1); y
Secado del almidón de la etapa (2) para resultar
en un polvo susceptible de ser usado como excipiente de liberación
controlada.
Las ventajas de este excipiente incluyen, pero
no está limitadas a: (1) sencillez en el procesamiento, (2) no uso
de solventes orgánicos en el proceso, (3) capacidad de obtener
productos de alta pureza que cumplen con las normas de la FDA y el
Codex de Productos Químicos para Alimentos, así como la Directiva nº
95/2/EC del Consejo y el Parlamento Europeo sobre aditivos para
alimentos del 20 de Febrero de 1995 que no incluye colorantes y
saborizantes (Directiva Miscelánea), (4) capacidad de producir
pastillas de compresión directa, (5) compatibilidad con medicamentos
hidrofílicas e hidrofóbicas, (6) compatibilidad con un amplio
intervalo de concentraciones y solubilidades de medicamentos, (7) la
seguridad de almidón reticulado con alto contenido en amilosa, (8)
características de solubilidad y producción robustas, (9) una
excelente reproducibilidad y (10) un escalamiento simple y
predecible.
Más particularmente, se ha descubierto que se
puede lograr la liberación controlada de un medicamento usando
almidón con alto contenido en amilosa sometido a la transformación
secuencial descrita anteriormente para producir un excipiente en
polvo. El uso de este almidón modificado como matriz para pastillas
produce un perfil de liberación notable y casi lineal y un tiempo de
liberación de entre 2 horas y 24 horas.
También se ha encontrado que este almidón
modificado puede ser usado para la producción de implantes para
liberación local sostenida de medicamentos con liberación in
vivo que se extiende a períodos de entre 1 y 3 días a entre 3 y
4 semanas.
De acuerdo con la invención, se proporciona una
formulación farmacéutica que comprende una pastilla de liberación
controlada, que comprende además una mezcla de compresión directa de
un polvo de almidón con alto contenido en amilosa reticulado y
modificado adicionalmente como el excipiente de liberación
controlada para el medicamento y por polvo de al menos un
medicamento. La matriz de liberación controlada está constituida
esencialmente por almidón con alto contenido en amilosa reticulado
que se obtiene entrecruzando almidón con alto contenido en amilosa
con un agente de reticulación adecuado. Adicionalmente, el almidón
con alto contenido en amilosa reticulado se modifica químicamente.
La secuencia de las dos reacciones (esto es, la reacción de
reticulación y la modificación química adicional) puede ser
efectuada alternativamente en el orden inverso o al mismo
tiempo.
El almidón con alto contenido en amilosa
reticulado puede ser obtenido con un intervalo preferido de agente
de reticulación de entre aproximadamente 0,005 a 0,3 gramos por 100
gramos de almidón seco.
Cuando el(los) medicamento(s)
farmacéuticos usados en este invento son poco solubles en agua, el
polvo de tales medicamentos puede representar hasta aproximadamente
70% a aproximadamente 90% del peso de la pastilla. Si el medicamento
farmacéutico usado es altamente soluble, no debería exceder de
aproximadamente 30% a aproximadamente 50% del peso de la
pastilla.
La pastilla de acuerdo con la invención también
puede ser del tipo de recubrimiento seco. En este caso, el núcleo de
la pastilla contiene la mayor parte del polvo de tal(es)
medicamento(s). La cáscara exterior estará principalmente
constituida por el excipiente de liberación controlada excepto si se
necesitan perfiles especiales de liberación (por ejemplo bifásica o
de doble pulso).
Así, de acuerdo con determinadas formas de
realización la invención definida ampliamente proporciona un
procedimiento para la preparación de un excipiente novedoso de
liberación controlada constituido principalmente por almidón
reticulado con alto contenido en amilosa para ser usado en la
preparación de pastillas. Este procedimiento comprende:
reticular almidón con alto contenido en amilosa
(preferentemente este almidón con alto contenido en amilosa contiene
al menos 70 p/p de amilosa), preferentemente con aproximadamente
0,005 a aproximadamente 0,3 gramos, más preferentemente con
aproximadamente 0,01 a aproximadamente 0,12 gramos, aún más
preferentemente con aproximadamente 0,04 a aproximadamente 0,1
gramos y más preferentemente con 0,075 gramos de agente de
reticulación por 100 gramos de almidón con alto contenido en
amilosa en base seca en un medio alcalino a una temperatura adecuada
(preferentemente desde aproximadamente 10ºC a aproximadamente 90ºC,
más preferentemente desde aproximadamente 20ºC a aproximadamente
80ºC, aún más preferentemente desde 20ºC a aproximadamente 60ºC y
más preferentemente aproximadamente 30ºC), durante un periodo de
tiempo de reacción adecuado (preferentemente desde aproximadamente 1
minuto a aproximadamente 24 horas, más preferentemente desde
aproximadamente 15 minutos hasta aproximadamente 4 horas, aún más
preferentemente desde aproximadamente 30 minutos hasta
aproximadamente 2 horas y más preferentemente aproximadamente de 60
minutos), formando así un medio de reacción que contiene un producto
de reacción constituido por una suspensión de almidón con alto
contenido en amilosa reticulado (preferentemente de una
concentración de aproximadamente 5% a aproximadamente 45%, más
preferentemente de aproximadamente 20% a aproximadamente 42%; aún
más preferentemente de aproximadamente 30% a aproximadamente 40% y
más preferentemente de aproximadamente 35%).
Sometiendo la suspensión de almidón con alto
contenido en amilosa reticulado de la etapa (a) a una modificación
química (por ejemplo hidroxipropilación con óxido de propileno,
preferentemente de aproximadamente 0,5% a 20%, más preferentemente
de aproximadamente 1% a 10%, aún más preferentemente de
aproximadamente 3% a 9%, y más preferentemente de aproximadamente 6%
de óxido de propileno), a una temperatura de aproximadamente 10ºC a
aproximadamente 90ºC, más preferentemente de aproximadamente 20ºC a
aproximadamente 80ºC, aún más preferentemente de 20ºC a
aproximadamente 50ºC y más preferentemente aproximadamente 40ºC,
durante un periodo de tiempo de aproximadamente 1 hora a
aproximadamente 72 horas, preferentemente de aproximadamente 2 horas
a aproximadamente 48 horas, más preferentemente de aproximadamente
10 horas a aproximadamente 40 horas y más preferentemente de
aproximadamente 29 horas;
Alternativamente, las etapas (a) y (b) se
efectúan en orden inverso o al mismo tiempo
neutralizando el medio de reacción obtenido en
la etapa (b) con un ácido (preferentemente un ácido inorgánico
diluido), lavando la suspensión formada y opcionalmente secando o
escurriendo el agua;
formando una suspensión a una concentración de
aproximadamente 2% p/p a aproximadamente 40% p/p, preferentemente de
aproximadamente 5% p/p a aproximadamente 35% p/p, más
preferentemente de aproximadamente 5% p/p a aproximadamente 25% p/p,
y más preferentemente de aproximadamente 9% p/p, ajustando el pH a
un valor deseado entre 3 y 12 (preferentemente de aproximadamente
6,0) y gelatinizando la suspensión a una temperatura de
aproximadamente 80ºC a aproximadamente 180ºC, preferentemente de
aproximadamente 120ºC a 170ºC, más preferentemente de
aproximadamente 140ºC a 165ºC y más preferentemente de
aproximadamente 160ºC, por aproximadamente 1 segundo a
aproximadamente 120 minutos, preferentemente de aproximadamente 30
segundos a aproximadamente 60 minutos, más preferentemente de
aproximadamente 1 minuto a aproximadamente 20 minutos y más
preferentemente de aproximadamente 8 minutos; y
secando el producto térmicamente tratado
obtenido en la etapa (d) para obtener el excipiente de liberación
controlada constituido principalmente por almidón con alto contenido
en amilosa reticulado y químicamente modificado en forma de un
polvo.
Figura 1: Perfiles de liberación bajo
condiciones estándar de disolución para las formulaciones
LP-1443 y Zydol SR 100®.
Figura 2: Perfiles de disolución in vitro
reales y proyectados para la formulación LP-1473.
El perfil in vitro se obtuvo bajo condiciones estándar de
disolución.
Figura 3: Perfil proyectado e in vitro
para Tramadol® HCl 200 mg.
Figura 4: Farmacocinética humana de pastillas
LP-1443 versus Tramal Long 100®.
Figura 5: Farmacocinética humana de pastillas
LP-1473 (con recubrimiento de película).
Figura 6: Efecto del pH del medio de disolución
sobre el perfil de disolución de la formulación
LP-1443.
Figura 7: Efecto del bacilo
\alpha-amilasa en medio de disolución sobre el
perfil de disolución de la formulación LP-1443.
Figura 8: Efecto de la fuerza iónica del medio
de disolución sobre el perfil de disolución de la formulación
LP-1443.
Figura 9: Efecto de la velocidad de agitación
sobre el perfil de disolución de la formulación
LP-1443.
Figura 10: Efecto del pH del medio de disolución
sobre el perfil de disolución de la formulación
LP-1473 (sin recubrimiento de película).
\newpage
Figura 11: Efecto del bacilo \alpha -amilasa
en medio de disolución sobre el perfil de disolución de la
formulación LP-1473 (sin recubrimiento de
película).
Figura 12: Efecto de la fuerza iónica del medio
de disolución sobre el perfil de disolución de la formulación
LP-1473 (sin recubrimiento de película).
Figura 13: Efecto de la velocidad de agitación
sobre el perfil de disolución de la formulación
LP-1473 (sin recubrimiento de película).
Figura 14: Propiedades
visco-elásticas cuasi-reversibles de
pastilla Cerestar.
Figura 15: Curvas de
stress-relajación obtenidas de la etapa de
aplicación de 1% de stress.
Figura 16: Microscopía electrónica de barrido
(SEM): superficie de la pastilla Cerestar secada tras ser hinchada
en agua.
Figura 17: Microscopía Electrónica de barrido
(SEM): suspensión liofilizada de sobrenadante que rodea a una
pastilla de Cerestar hinchada.
Figura 18: Microscopía electrónica de barrido
(SEM): pastillas Rougier con una hinchazón de equilibrio en agua a
37ºC.
Figura 19: Resultado de Cromatografía de
permeación por gel (GPC): % de carbohidrato en Amylogel 3003,
Contramid-Rouger 333, partidas de Cerestar 3808,
1903, 3825 como función de fracción.
Figura 20: Resultado de Cromatografía de
permeación por gel (GPC): % de carbohidrato en Amylogel 3003,
Contramid-Rouger 333, partidas de Cerestar 3808,
1903, 3825 como función de log[g/M].
Figura 21: Liberación acumulativa in
vitro de Ciproflaxina HCl con 3 cargas diferentes de
implante.
Figura 22: Concentraciones de Ciproflaxacina en
suero.
Figura 23: Concentraciones de Ciproflaxacina en
músculo.
\vskip1.000000\baselineskip
El almidón es uno de los biopolímeros más
abundantes en la naturaleza. El almidón es básicamente un
carbohidrato compuesto de dos fracciones distintas: amilosa, que es
esencialmente un polímero lineal de unidades de glucopiranosa unidas
a través de enlaces \alpha-D-(1,4). El segundo
componente es la amilopectina, que es un polímero altamente
ramificado que está unido a las posiciones C-6
hidroxilo de ciertos fragmentos de glucosa en amilosa, via enlaces
\alpha-D-(1,6). La amilosa contiene
aproximadamente 4.000 unidades de glucosa. La amilopectina contiene
aproximadamente 100.000 unidades de glucosa.
La reticulación del almidón representa un método
poderoso para modificar el almidón. Habitualmente, los gránulos de
almidón se entrecruzan para aumentar la resistencia de la pasta al
calor o a la deformación. Tales almidones químicamente reticulados
proporcionan una textura suave deseable y poseen estabilidad de
viscosidad a través de operaciones de procesamiento y vida útil
normal. Según se ha indicado, de acuerdo con la invención, se ha
descubierto que la reticulación de almidón con alto contenido en
amilosa seguido de gelatinización es altamente deseable. Más
específicamente, se ha encontrado que al reticular almidón con alto
contenido en amilosa con modificaciones químicas adicionales (por
ejemplo hidroxipropilación) de modo previo a la gelatinización
resulta un excipiente novedoso que posee las propiedades deseadas de
liberación controlada.
La reticulación de almidón con alto contenido en
amilosa puede ser efectuado de acuerdo a procedimientos descritos en
la técnica. Por ejemplo, la reticulación de amilosa puede ser
llevado a cabo de la manera descrita en Mateescu [BIOCHEMIE, 60,
535-537, (1978)] haciendo reaccionar amilosa con
epiclorhidrina en medio alcalino. Del mismo modo, el almidón puede
también ser reticulado con un reactivo seleccionado de entre el
grupo constituido por epiclorhidrina, anhídrido adípico,
trimetafosfato de sodio y oxicloruro de fósforo u otros agentes de
reticulación, incluyendo pero no limitados a,
2,3-dibromopropanol, anhídridos lineales mixtos de
ácido acético o de ácidos carboxílicos di- o tribásicos, vinil
sulfona, diepóxidos, cloruro cianúrico,
hexahidro-1,3,5-trisacriloil-s-triazina,
hexametilen diisocianato,
toluen-2,4-diisocianato,
N,N-metilen bisacrilamida,
N,N'-bis(hidroximetil)etilenurea,
anhídridos mixtos de acidos carbónicos y carboxílicos, imidazolidos
de ácidos carbónicos y carboxílicos polibásicos, sales de imidazolio
de ácidos carboxílicos polibásicos y derivados de guanidina de
ácidos policarboxílicos.
Las condiciones de reacción empleadas variarán
con el tipo y cantidad del agente de reticulación usado, así como la
concentración de base, cantidad y tipo de almidón.
\newpage
Todos los almidones disponibles que contienen
más de 40% p/p de amilosa pueden ser usados, por ejemplo almidón de
guisante y guisante rugoso, almidón de alubia, almidones híbridos o
genéticamente modificados de tapioca o patata, o cualquier otro
almidón de raíz, tubérculo, o cereal. Preferentemente, el material
de partida usado es almidón con alto contenido en amilosa
conteniendo aproximadamente 70% p/p de amilosa. En los ejemplos 1 y
2 incluidos, se usa almidón con alto contenido en amilosa,
CIAmyloGel 03003 (Cerestar USA, Inc.). La reacción se lleva a cabo
normalmente en la presencia de una sal de sodio tal como sulfato de
sodio o cloruro de sodio y una base sódica. Estos reactivos se
dispersan en agua a una concentración de entre aproximadamente 35% a
42% base seca. La suspensión se calienta o se enfría para llegar a
una temperatura de aproximadamente 10ºC a aproximadamente 90ºC,
preferentemente de aproximadamente 20ºC a aproximadamente 80ºC, más
preferentemente de aproximadamente 20ºC a aproximadamente 40ºC y más
preferentemente de aproximadamente 30ºC. Para la presente
invención, es preferido usar para la etapa de reticulación
aproximadamente 0,005% a aproximadamente 0,3% p/p de reactivo de
reticulación, oxicloruro de fósforo en una cantidad de
aproximadamente 0,01% y 0,2% (p/p) o trimetafosfato de sodio (STMP)
en una cantidad de aproximadamente 0,05% y 0,3% (p/p). En el ejemplo
1 se usa una cantidad de 0,075% de oxicloruro de fósforo y en el
ejemplo 2 se usa una cantidad de 0,15% de trimetafosfato de
sodio.
La reacción de reticulación se lleva a cabo en
medio acuoso alcalino, a pH de 10 a 14 durante aproximadamente 0,2 a
40 horas (preferentemente de aproximadamente 15 minutos a
aproximadamente 4 horas, más preferentemente de aproximadamente 30
minutos a aproximadamente 2 horas y más preferentemente de
aproximadamente 60 minutos) a una temperatura de aproximadamente
15ºC a 90ºC. Se forma una mezcla de reacción que contiene una
suspensión de almidón reticulado de alta amilasa. La concentración
de la suspensión es de aproximadamente 5% a aproximadamente 45%,
más preferentemente de aproximadamente 20% a aproximadamente 42%, y
más preferentemente de aproximadamente 30% a aproximadamente
40%.
El almidón reticulado con alto contenido en
amilosa se modifica adicionalmente químicamente. Una modificación
preferida es la hidroxipropilación con óxido de propileno en una
concentración de aproximadamente 0,5% a aproximadamente 20%,
preferentemente de aproximadamente 1% a aproximadamente 10% en base
seca. La mezcla de reacción se mantiene a una temperatura de
aproximadamente 10ºC a aproximadamente 90ºC, preferentemente de
aproximadamente 20ºC a aproximadamente 80ºC, más preferentemente de
aproximadamente 20ºC a aproximadamente 50ºC y más preferentemente de
aproximadamente 40ºC durante un periodo de tiempo de aproximadamente
1 hora a aproximadamente 72 horas, preferentemente de
aproximadamente 2 horas a aproximadamente 48 horas, más
preferentemente de aproximadamente 10 horas a aproximadamente 40
horas y más preferentemente de aproximadamente 20 horas.
Alternativamente la reticulación y la modificación química puede ser
efectuada en el orden inverso o al mismo tiempo. La mezcla de
reacción se neutraliza con ácido acuoso diluido. Los ácidos
preferidos para la neutralización son ácido sulfúrico y ácido
clorhídrico.
La reacción de reticulación efectuada en medio
alcalino seguida por neutralización lleva a la formación de
subproductos que consisten principalmente en sales. Se pueden usar
numerosos métodos para remover las sales de la suspensión acuosa de
almidón con alto contenido en amilosa reticulado, incluyendo
filtración, centrifugación, decantación o lavado continuo Dorr
Clones.
De acuerdo con la presente invención, cualquiera
de estos métodos conocidos podría ser usado. La suspensión o torta
de almidón obtenida puede ser opcionalmente deshidratada o secada
para obtener una torta o polvo de almidón.
Los gránulos de almidón se mantienen unidos por
enlaces de hidrógeno que se dan entre moléculas de almidón. Cuando
una suspensión acuosa de almidón se calienta a cierta temperatura,
este enlace de hidrógeno se debilita y los gránulos se hinchan hasta
colapsar. Este proceso se llama gelatinización.
Se conocen numerosos métodos de gelatinización
en la técnica. Estos incluyen calentamiento directo o indirecto o
inyección de vapor de una suspensión acuosa de almidón, mediante
tratamiento químico de tales dispersiones usando una base fuerte o
una combinación de tratamiento mecánico y térmico.
De acuerdo con la invención, la gelatinización
de la suspensión de almidón se lleva a cabo preferentemente
diluyendo la suspensión de almidón, torta de almidón o polvo en agua
con el fin de formar una suspensión a una concentración de
aproximadamente 2% a 40% p/p. El pH de la suspensión de almidón
modificado se ajusta a una valor deseado de entre aproximadamente 3
a aproximadamente 12. En el caso actual es deseable un pH de
aproximadamente 6. La suspensión se calienta entonces a
aproximadamente 80ºC a aproximadamente 180ºC, preferentemente de
aproximadamente 120ºC a aproximadamente 170ºC, más preferentemente
de aproximadamente 140ºC a aproximadamente 165ºC y más
preferentemente de aproximadamente 160ºC, por inyección directa de
vapor. El método preferido de gelatinización es por cocción continua
a presión de la suspensión de almidón. La suspensión se mantiene a
esta temperatura por un período de tiempo de aproximadamente 1
segundo a aproximadamente 120 minutos, preferentemente de
aproximadamente 30 segundos a aproximadamente 60 minutos, más
preferentemente de aproximadamente 1 minuto a aproximadamente 20
minutos y más preferentemente de aproximadamente 2 a aproximadamente
10 minutos, a una temperatura de aproximadamente 80ºC a
aproximadamente 180ºC, preferentemente de aproximadamente 120ºC a
aproximadamente 170ºC, más preferentemente de aproximadamente 140ºC
a aproximadamente 165ºC, y más preferentemente de aproximadamente
160ºC. Este procedimiento puede ser efectuado en un sistema continuo
incluyendo una columna de almacenamiento (véase Ejemplo 1).
\newpage
El producto gelatinizado puede ser secado por
liofilización, por técnicas de secado por pulverización, usando una
boquilla de pulverización o disco de atomización, o una cámara
calentada. De acuerdo con la invención, el almidón con alto
contenido en amilosa reticulado es secado por pulverización usando
una torre de secado por pulverización equipada con una boquilla. La
temperatura de entrada se fija desde aproximadamente 60ºC hasta
aproximadamente 350ºC, preferentemente desde aproximadamente 150ºC
hasta aproximadamente 300ºC, más preferentemente desde
aproximadamente 200ºC hasta aproximadamente 270ºC, y más
preferentemente de aproximadamente 245ºC. La temperatura del aire
de salida se fija desde aproximadamente 40ºC hasta aproximadamente
210ºC, más preferentemente desde aproximadamente 60ºC hasta
aproximadamente 190ºC, más preferentemente desde aproximadamente
80ºC hasta aproximadamente 170ºC y más preferentemente de
aproximadamente 120ºC. El polvo obtenido es un excipiente de
liberación controlada cuyo polvo tiene las propiedades indicadas a
continuación:
\vskip1.000000\baselineskip
Propiedades | |
Contenido de Humedad | 2-15% |
Densidad aparente | 100-350 g/l |
Densidad comprimida | 150-600 g/l |
PH | 4-7 |
Valor pico del tamaño de partícula (Medidor de partículas por láser Sympatec) | 200-250 \mum |
\vskip1.000000\baselineskip
Los solicitantes han descubierto que el almidón
con alto contenido en amilosa reticulado y modificado de la presente
invención es útil como polímero portador para agentes farmacéuticos
de administración oral, en vista de la resistencia de las pastillas
a la degradación digestiva por amilasa y a las propiedades mejoradas
de disolución. Este almidón de alta amilasa reticulado confiere
propiedades deseables de liberación retardada a las pastillas para
administración oral que contienen agentes farmacéuticos.
Los solicitantes han descubierto además que las
pastillas implantadas subcutáneamente o intramuscularmente fueron
muy bien toleradas y altamente biocompatibles. Fueron totalmente
eliminadas por macrófagos en un período de 1 a 3 meses. Se demostró
que estas pastillas permiten la liberación controlada local de
medicamentos en períodos que van desde aproximadamente 1 día a
aproximadamente 3 días hasta 3 a 4 semanas.
De acuerdo con lo indicado, la invención
proporciona una unidad de dosificación sólida unitaria de liberación
controlada en forma de una pastilla. Una pastilla, como resultará
evidente para el experto en la materia, puede ser administrada por
varias rutas, por ejemplo ingerida oralmente, usada en la cavidad
oral, o usada como implante, etc. Una pastilla también puede
encontrarse en una variedad de formas, por ejemplo sin
recubrimiento, con recubrimiento seco, o recubierta por una
película, etc. Se puede encontrar una extensa exposición sobre
pastillas en obras de referencia tales como el libro The Theory and
Practice of Industrial Pharmacy por Lachaman et al., Tercera
Edición (Lea y Febiger, 1986). La unidad de dosificación sólida de
liberación controlada de la presente invención comprende una mezcla
de aproximadamente 0,01% a aproximadamente 80% en peso de una agente
farmacéutico y aproximadamente 20% a aproximadamente 99,99% en peso
del almidón con alto contenido en amilosa reticulado y químicamente
modificado que se describe anteriormente. El agente farmacéutico se
encuentra preferentemente en forma de un polvo seco.
Este agente farmacéutico es cualquier
medicamento que puede ser administrado oralmente. Preferentemente,
el agente farmacéutico es, pero no está limitado a, clorhidrato de
pseudoefedrina, acetaminofeno o diclofenaco sódico, verapamil,
glipicida, nifedipina, felodipina, betahistina, albuterol,
acrivastina, omeprazol, misoprostol, tramadol, oxibutinina,
trimebutina, ciprofloxacina, y sus sales. Además, el agente
farmacéutico puede ser un agente antifungicida, tal como
cetoconazol, o un agente analgésico tal como el ácido
acetilsalicílico, acetaminofeno, paracetamol, ibuprofeno,
ketoprofeno, indometacina, diflunisol, naproxeno, cetorolac,
diclofenaco, tolmetina, sulindac, fenacetina, piroxicam, ácido
mefamánico, dextrometorfan, otras medicamentos antiinflamatorios no
esteroidales que incluyen salicilatos, sales farmacéuticamente
aceptables de los mismos o mezclas de éstos.
La dosificación farmacéutica sólida unitaria de
liberación controlada puede incluir además un portador o vehículo
farmacéuticamente aceptables. Tales portadores o vehículos son
conocidos por el experto en la materia y se puede encontrar, por
ejemplo, en Remington’s Pharmaceutical Sciences, 18^{th} Ed.
(1990). Ejemplos de dichos portadores o vehículos incluyen lactosa,
almidón, fosfato dicálcico, sulfato de calcio, caolín, manitol y
azúcar en polvo. Adicionalmente, cuando se requiere, se pueden
incluir, ligantes adecuados, lubricantes, agentes desintegrantes y
agentes colorantes. Si se desea, se pueden incluir tinturas y
endulzantes o agentes saborizantes.
Los ligantes adecuados para el uso en
composiciones y dosis farmacéuticas incluyen, pero no se limitan a,
almidón de maíz, almidón de patatas, u otros almidones, gelatina,
gomas naturales y sintéticas tales como goma de xantan, acacia,
alginato sódico, ácido algínico, otros alginatos, goma tragacanto en
polvo, goma guar, celulosa y sus derivados (tal como etil celulosa,
acetato de celulosa, carboximetil celulosa cálcica, carboximetil
celulosa sódica), polivinil pirrolidona, metil celulosa, almidón
pregelatinizado, hidroxipropilmetil celulosa, (tal como, Nos. 2208,
2906, 2910), celulosa microcristalina, óxido de polietileno y
mezclas de los mismos.
Formas adecuadas de celulosa microcristalina
incluyen, por ejemplo, los materiales vendidos como
AVICEL-PH-101,
AVICEL-PH-103, AVICEL
RC-581 y
AVICEL-PH-105 (comercializado por
FMC Corporation, American Viscose Division, Avicel Sales, Marcus
Hook, PA, U.S.A.). Un ligante ejemplar disponible es una mezcla de
celulosa microcristalina y carboximetil celulosa sódica vendida como
AVICEL RC-581. Excipientes o aditivos adecuados
anhidros o de baja humedad incluyen
AVICEL-PH-103^{TM}, Almidón 1500
LM y CIPharm DC 93000.
Ejemplos de rellenos adecuados para el uso en
las composiciones y formas de dosificación farmacéuticas que se dan
a conocer en la presente memoria incluyen, pero no están limitados
a, talco, carbonato cálcico (tal como, gránulos o polvo), celulosa
microcristalina, celulosa en polvo, dextratos, caolín, manitol,
ácido silícico, sorbitol, almidón, almidón pregelatinizado, y
mezclas de los mismos. El ligante/relleno en las composiciones
farmacéuticas de la presente invención se encuentra típicamente
presente en aproximadamente 50 a aproximadamente 99% en peso de la
composición farmacéutica.
Los desintegrantes que pueden ser usados para
formar composiciones farmacéuticas y formas de dosificación de
acuerdo con la invención incluyen, pero no están limitados a,
agar-agar, ácido algínico, carbonato de calcio,
celulosa microcristalina, croscaramelosa sódica, crospovidona,
potasio de polacrilin, glicolato de almidón sódico, almidón de
patata o tapioca, almidón pregelatinizado, otros almidones, gredas,
otras alginas, otras celulosas, gomas o sus
mezclas.
mezclas.
Los lubricantes que pueden ser usados para
formar composiciones farmacéuticas y formas de dosificación de
acuerdo con la invención incluyen, pero no están limitadas a,
estearato cálcico, estearato de magnesio, aceites minerales, aceites
minerales ligeros, glicerina, sorbitol, manitol, polietilenglicol,
otros glicoles, ácido esteárico, lauril sulfato sódico, talco,
aceite vegetal hidrogenado (tal como aceite de cacahuete, aceite de
semilla de algodón, aceite de girasol, aceite de sésamo, aceite de
oliva, aceite de maíz y aceite de soja), estearato de zinc, oleato
etílico, laureato etílico, agar o mezclas de los mismos. Lubricantes
adicionales incluyen, por ejemplo, un gel de sílice siloide
(AEROSIL 200, fabricado por W.R. Grace Co. de Baltimore, MD), un
aerosol coagulado de sílice sintética (comercializado por Degussa
Co. de Plano, Texas), CAB-O-SIL (un
producto de dióxido de silicio pirogénico vendido por Cabot Co. de
Boston, Mass), o las mezclas de los mismos. Se puede agregar
opcionalmente un lubricante, típicamente en cantidades menores a
aproximadamente 1% en peso de la composición farmacéutica.
Una vez que el agente farmacéutico y el almidón
reticulado con alto contenido en amilosa modificado son mezclados,
generalmente por medios convencionales, incluyendo, pero no
limitados a, mezcla de polvo, granulación seca o húmeda, la mezcla
resultante se comprime para formar una pastilla. Preferentemente, la
presión utilizada para comprimir la mezcla es igual a o superior a
los 0.16 T/cm^{2}.
La presente invención se pondrá más claramente
de manifiesto haciendo referencia a los métodos de ensayo y ejemplos
siguientes proporcionados a título ilustrativo no limitativo sin
apartarse del alcance de la invención.
Los procedimientos siguientes se utilizaron como
métodos de prueba para evaluar las propiedades de los productos
preparados en los ejemplos.
Se coloca el almidón con alto contenido en
amilosa (30,0 kg) que contiene aproximadamente 70% p/p de amilosa
(CI AmyloGel 03003) en un reactor. A este reactor se agrega agua
(55,0 l) que contiene hidróxido de sodio (30,0 g) y sulfato de sodio
(2,40 kg). La suspensión resultante se calienta a una temperatura de
30ºC. Se agrega oxicloruro de fósforo (22,5 g) a la mezcla de
reacción que se hace reaccionar durante una hora.
La mezcla cruda de reacción de la Parte A se
transfiere a un reactor de hidroxipropilación. Se calienta la mezcla
de reacción a 40ºC durante 30 minutos y la reacción se purga con
nitrógeno. Después de una purga completa, se agrega óxido de
propileno (1,80 Kg). La mezcla de reacción se mantiene a 40ºC por 20
horas. La mezcla de reacción se neutraliza con H_{2}SO_{4} 0,1N
(1:2 v/v) a un pH de 5,5. La suspensión de almidón se lava en una
centrífuga de canasta a una velocidad de 1200 rpm. La torta de
almidón obtenida es resuspendida en 35 l de agua y centrifugada por
segunda vez. La torta de almidón resultante se seca en un secador
instantáneo a una temperatura de entrada de 160ºC y una temperatura
de salida de 60ºC.
La torta granular de almidón modificado se
diluye en agua desmineralizada para formar una suspensión a una
concentración de aproximadamente 8% calculada en base a sustancia
seca. La suspensión resultante tiene una densidad relativa de 1,032
kg/l comparada al agua. El pH de la suspensión de almidón modificado
se ajusta a 6,0. La suspensión se calienta a 160ºC mediante
inyección directa de vapor (Schlick modelo 825). La variación de
temperatura no es mayor a \pm 1ºC. La suspensión se mantiene en
una columna de retención durante un periodo de 4 minutos a una
temperatura de 160ºC y a una presión de aproximadamente 5,5 bar. La
presión se reduce entonces a la presión atmosférica al pasar por un
flash. La suspensión se mantiene entonces a 95ºC en un depósito de
retención.
El secado de la suspensión de la Parte C se
efectúa usando una torre de secado por pulverización Niro FSD 4
equipada con una boquilla de 0,8 mm y alimentación de 10 litros por
hora. La temperatura de entrada se fija a 300ºC y la temperatura de
salida a 120ºC. El polvo obtenido es un excipiente de liberación
controlada con las siguientes propiedades:
\vskip1.000000\baselineskip
Propiedades | |
Contenido de humedad | 4,5% |
Densidad aparente | 150 g/l |
Densidad comprimida | 210 g/l |
PH | 5,4 |
Valor pico del tamaño de partícula (Medidor de partículas por láser-Sympatec) | 50 \mum |
\vskip1.000000\baselineskip
La muestra de almidón obtenida a través de
(A)-(D) se denomina "Cerestar" de aquí en adelante.
Se introduce almidón con alto contenido en
amilosa (30,0 kg) que contiene aproximadamente 70% p/p de amilosa
(CI AmyloGel 03003) en un reactor. A este reactor se le agrega agua
(55.0 l) que contiene hidróxido de sodio (30.0 g) y sulfato de sodio
(2,40 Kg). La suspensión resultante se calienta a una temperatura de
30ºC. Se agrega trimetafosfato de sodio (45 g) a la mezcla de
reacción, que se deja reaccionar durante una hora.
La mezcla cruda de reacción de la parte A se
transfiere a un reactor de hidroxipropilación. La mezcla de reacción
se calienta a 40ºC durante un período de 30 minutos y la reacción se
purga con nitrógeno. Después de una purga completa, se agrega óxido
de propileno (1,80 Kg.). La mezcla de reacción se mantiene a 40ºC
durante 20 horas. La mezcla de reacción se neutraliza con 0,1 N
H_{2}SO_{4} (1:2 v/v) a un pH de 5,5. La suspensión de almidón
se lava con una centrífuga de canasta a una velocidad de 1200 rpm.
La torta de almidón resultante se resuspende en 35 l de agua y se
centrifuga por segunda vez. La torta de almidón resultante se seca
en un secador instantáneo a una temperatura de entrada de 160ºC y
una temperatura de salida de 60ºC.
La torta de almidón granular modificado se
diluye en agua desmineralizada para formar una suspensión con una
concentración de aproximadamente 8% calculada sobre base seca. La
suspensión resultante tiene una densidad relativa de 1,032 kg/l
comparada con el agua. El pH de la suspensión de almidón modificado
se ajusta a 6,0. La suspensión se calienta a 160ºC por inyección
directa de vapor (Schlick modelo 825). La variación de temperatura
no es mayor a \pm 1ºC. La suspensión se mantiene en una columna de
retención durante un periodo de 4 minutos a una temperatura de 160ºC
y a una presión de aproximadamente 5,5 bar. La presión se reduce
hasta llegar a la presión atmosférica pasando a través de un flash.
La suspensión se mantiene en un depósito de retención a 95ºC.
El secado de la suspensión de la Parte C se
efectúa usando una torre de secado por pulverización Niro FSD 4
equipada con una boquilla de 0,8 mm y alimentación de 10 litros por
hora. La temperatura de entrada se fija a 300ºC y la temperatura de
salida a 120ºC. El polvo obtenido es un excipiente de liberación
controlada con las siguientes propiedades:
\vskip1.000000\baselineskip
Propiedades | |
Contenido de Humedad | 5,2% |
Densidad aparente | 103 g/l |
Densidad comprimida | 155 g/l |
PH | 5,3 |
Valor pico del tamaño de partícula (Medidor de partículas por láser-Sympatec) | 70 \mum |
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepararon pastillas de Tramadol HCl de 100
mg en una forma de dosificación de matriz (Formulación
LP-1443) con almidón con alto contenido en amilosa
reticulado preparado como se describe en el Ejemplo 1. Los
componentes de la Formulación LP-1443 se muestran en
la Tabla 1. Las pastillas de la Formulación LP-1443
tienen un diámetro de 9,53 mm. La forma de una pastilla
LP-1443 es redonda y biconvexa. Para comparar, se
usó Tramal Long 100® (fabricado por Grünenthal, Alemania). Tramal
Long 100® contiene 100 mg de Tramadol HCl y está en forma de
dosificación de matriz con un diámetro de 10,15 mm. La forma de
Tramal Long 100® es redonda y biconvexa.
\vskip1.000000\baselineskip
Se prepararon pastillas de Tramadol HCl de 200
mg sin recubrimiento de película de acuerdo a la Tabla 2. Primero,
se mezcló el polvo de tramadol HCl, almidón con alto contenido en
amilosa reticulado, talco y SiO_{2} y se comprimió para formar el
núcleo de la pastilla. Después, se mezclaron tramadol HCl, almidón
con alto contenido en amilosa reticulado, goma xantan, talco y
SiO_{2} y se comprimieron para formar un recubrimiento seco por
fuera del núcleo de la pastilla. Se formó una pastilla bifásica que
contiene 170 mg de tramadol HCl. Esta pastilla es llamada
LP-1473 sin recubrimiento de película.
Las pastillas recubiertas de la formulación
LP-1473 del Ejemplo 4 fueron recubiertas
adicionalmente con una película que contiene 30 mg de tramadol HCl.
La película está constituida por un primer recubrimiento que
contiene 30 mg de tramadol HCl mezclada con 8 mg de Opadry Clear®
YS-3-7065. Este subrecubrimiento fue
a continuación cubierto con 13 mg de Opadry II®
Y-22-7719 blanco. Opadry Clear® y
Opadry II® son fabricados por Colorcon, Inc., West Point,
Pennsylvania.
\vskip1.000000\baselineskip
Se analizó la concentración de tramadol HCl
liberado en las vasijas de disolución directamente con
espectrofotometría de UV-Visible utilizando un
espectrofotómetro UV-Visible
HP-8453. Se analizaron las fracciones recolectadas
midiendo su absorbancia UV en el intervalo de 269 a 273 nm
utilizando un desplazamiento de 1 nm, contra una señal de referencia
medida en el intervalo de 380 a 384 nm utilizando un desplazamiento
de 1 nm. Se determinaron curvas de calibración en tampón estándar
U.S.P. a pH 1,2 y 7,5 en un intervalo de concentración de 0,0300
mg/mL a 0,800 mg/mL. Las curvas en ambos valores de pH fueron
idénticas, la curva determinada a pH 1,2 se utilizó para todos los
ensayos.
\vskip1.000000\baselineskip
Todos los ensayos se llevaron a cabo en una
estación de prueba de disolución Vankel BioDiss (U.S.P. tipo III).
Para llevar a cabo el ensayo bajo condiciones estándar de
disolución, el BioDiss fue configurado con cuatro filas de vasijas
de disolución. Las vasijas fueron llenadas cada una con 250,0 g de
medio de disolución. El medio de disolución fue tampón estándar
U.S.P a pH 1,2; tampón estándar U.S.P a pH 6,8 (50 mM); o tampón
estándar U.S.P a pH 7,5 (50 mM). La enzima utilizada fue el bacilo
\alpha-Amilosa de Sigma Chemicals. Se les insertó
a las celdas que contenían las pastillas una malla de 40 mesh para
las tapas inferiores y una malla de 20 mesh para las tapas
superiores. Para simular las condiciones in vivo, se llevaron
a cabo pruebas de disolución a 37ºC durante 24 horas tal como se
indica a continuación:
\newpage
Tiempo (Horas) | pH | Enzima (U.I./L.) | Agitación (descensos/min) |
00:030 | 1,2 | 0 | 15 |
00:30 | 6,8 | 4.500 | 15 |
04:00 | 7,5 | 0 | 15 |
19:00 | 7,5 | 0 | 5 |
Se tomó una muestra de cada medio de disolución
en puntos específicos de tiempo. Cada alícuota fue filtrada a través
de un filtro de 2 mm (Millex AP) antes de llevar a cabo el ensayo
utilizando un espectrofotómetro UV-Visible (ver
Ejemplo 6). Se obtuvieron los perfiles de disolución bajo
condiciones de disolución estándar del LP-1443,
Tramal Long 100® (también conocido como Zydol SR 100® en el Reino
UNido), LP-1473 (sin recubrimiento de película) y
LP-1473 (con recubrimiento de película).
La Figura 1 muestra el perfil de liberación
obtenido para una formulación de Tramadol HCl de 100 mg (código de
formulación LP-1443). La figura también contiene el
perfil del producto de referencia, Zydol SR 100®. Los datos muestran
que la formulación LP-1443 y las referencias tienen
perfiles de disolución comparables.
La Figura 2 muestra los perfiles de la
liberación real y objetivo obtenidos con la formulación
LP-1473 (sin recubrimiento de película) para el
componente de liberación lenta de tramadol HCl de 170 mg de la
formulación total de 200 mg.
La Figura 3 contiene el perfil de la disolución
in vitro de la formulación de 200 mg de tramadol HCl con
recubrimiento de película junto con el perfil de liberación objetivo
para la pastilla total de 200 mg de tramadol HCl.
Las curvas objetivo fueron computadas desde un
perfil objetivo farmacocinético, esto último estuvo definido por un
rápido acceso de acciones (concentraciones en exceso de 100 ng/mL en
menos de 1 hora), un máximo en los intervalos de concentración de
100 a 300 ng/mL a las 16 horas y decayendo lentamente con una
concentración de aproximadamente 100 ng/mL a las 24 horas.
La biodisponibilidad de Tramal Long 100®,
pastilla LP-1443 y pastilla LP-1473
(con película de cubierta) fue calculada bajo condiciones in
vivo en un estudio farmacocinético reticulado, de etiquita
abierta, dosis simple y al azar llevado a cabo en 14 voluntarios
humanos saludables.
Las curvas para las concentraciones de plasma de
tramadol, como indicadores del perfil de liberación de estas
pastillas se ilustran en las Figuras 4 y 5.
El perfil de liberación de las pastillas
LP-1443 que contienen 100 mg de tramadol fue
equivalente a Tramal Long 100®.
Para las pastillas LP-1473 (con
recubrimiento de película) que contienen 200 mg de tramadol, el
perfil de liberación sostenida objetivo se obtuvo con
concentraciones de plasma en un intervalo de 100 a 300 ng/mL desde
aproximadamente 30 min a aproximadamente 24 horas después de la
dosis.
La robustez se define como una dependencia
limitada del perfil de disolución de ingredientes activos al haber
cambios en las condiciones de prueba de producción o disolución.
Todas las pruebas para la robustez se llevaron a cabo en una
estación de prueba de disolución Vankel BioDiss (U.S.P. tipo III).
Para llevar a cabo la evaluación de robustez bajo condiciones de
disolución, se configuró el BioDiss con dos filas de vasijas de
disolución. Las vasijas fueron llenadas cada una con 250,0 g de
medio de disolución. El medio de disolución usado fue tampón
estándar U.S.P. a pH 1,2; tampón estándar U.S.P. a pH 6,8 (50 mM); o
tampón estándar U.S.P. a pH 7,5 (50 mM). La enzima utilizada fue
\alpha-Amilosa Bacillus de Sigma Chemicals.
Se les insertó a las celdas que contenían las pastillas una malla de
40 mesh para las tapas inferiores y una malla de 20 mesh para las
tapas superiores. Se llevaron a cabo pruebas de disolución a 37ºC
durante 24 horas. El método utilizado se describe a continuación
para cada una de las pruebas individuales.
\newpage
Pruebas: pH 1,2, pH 6,8, (sin enzima), y pH 7,5 | ||
Tiempo (Horas) | Medio de Disolución | Agitación (descensos/min) |
05:00 | pH 1,2 ó 6,8 ó 7,5 | 15 |
19:00 | 5 |
Pruebas: pH 6,8 + 4500 IU/L (o 18000 IU/L) | ||
Tiempo (Horas) | Enzima (IU/L) | Agitación (descensos/min) |
05:00 | 4.500 ó 18.000 | 15 |
19:00 | 5 |
Pruebas: agitación 5 o 15 descensos por minuto | ||
Tiempo (Horas) | Medio de Disolución | Agitación (descensos/min) |
05:00 | pH 6,8 sin enzima | 5 ó 15 |
19:00 | pH 6,8 sin enzima | 5 ó 15 |
Se tomó una muestra de cada medio de disolución
en puntos específicos de tiempo. Cada alícuota fue filtrada a través
de un filtro de 2 mm (Millex AP) antes de llevar a cabo el ensayo
utilizando un espectrofotómetro UV-Visible (ver
Ejemplo 6). Se obtuvieron los perfiles de disolución del
LP-1443 y LP-1473 (sin recubrimiento
de película) bajo varias condiciones de pH, agitación y de
enzimas.
La Figura 6 muestra que las variaciones en el pH
del medio no tienen un efecto significativo en el perfil de
liberación de la formulación LP-1443.
La Figura 7 muestra el efecto de la enzima en el
perfil de disolución. Mientras que los perfiles de liberación bajo
condiciones de disolución estándar y a pH 6,8 son comparables, la
velocidad de liberación aumenta marginalmente cuando se utiliza la
enzima a lo largo de la prueba. Este aumento parece ser dependiente
de la concentración de la enzima.
La Figura 8 muestra que las variaciones de los
medios de carga iónica de disolución no tienen efectos
significativos en el perfil de liberación de
LP-1443.
La Figura 9 muestra que la variación en la
velocidad de agitación durante la disolución no tiene efecto dentro
de los intervalos ensayados.
La Figura 10 muestra los perfiles de disolución
de la formulación LP-1473 (sin película de cubierta)
a diferentes valores de pH. Los perfiles de disolución a pH 1,2; pH
6,8 o pH 7,5 no fueron significativamente diferentes a los obtenidos
bajo condiciones estándar.
La Figura 11 muestra el efecto de la enzima en
los perfiles de disolución. Mientras que los perfiles de liberación
bajo condiciones de disolución estándar y a pH 6,8 son comparables,
la velocidad de liberación aumentó marginalmente y no
significativamente cuando la enzima fue utilizada a lo largo de la
prueba. Este aumento parece ser dependiente de la concentración de
la enzima.
La Figura 12 muestra que la variación de carga
iónica de los medios de disolución no tienen efectos significativos
en el perfil de liberación de la formulación LP-1473
(sin película de cubierta).
La Figura 13 muestra que la variación en la
velocidad de agitación durante la disolución no tiene efecto en la
formulación LP-1473 (sin película de cubierta)
dentro de los intervalos ensayados.
El almidón reticulado con alto contenido en
amilosa (CLHAS) fabricado de acuerdo al procedimiento indicado en el
Ejemplo 1 de la presente invención (Cerestar) es diferente del
almidón hecho de acuerdo al procedimiento descrito por Rougier
(Rougier) en Dumoulin et al., documento WO 98/35992. Cuando
se hinchan en agua, las pastillas Cerestar se hinchan
aproximadamente 20% de ancho y 79% de grosor, comparado con 29% y
72% respectivamente para la pastilla Rougier. Después de haber
tomado agua, la pastilla Cerestar tiene un aumento de peso de 2,55
veces el peso original de la pastilla Cerestar seca. Las pastillas
Rougier aumentan su peso 3,11 veces el peso de la pastilla Rougier
seca. El efecto de la temperatura en la hinchazón es menos
pronunciado en la pastilla Cerestar, esto es, el incremento de la
toma de agua es menor que en las pastillas Rougier.
Comparando los comportamientos de hinchazón de
las pastillas Cerestar y Rougier que tienen el mismo grosor, se
aprecia que las pastillas Cerestar demuestran un aumento más rápido
de dureza cuando se echan al agua (Figura 14). En intervalos
diferentes de tiempo, se aplicó una compresión de 1% a las pastillas
y sólo el pico de la carga se anotó. Después, se permitió que la
pastilla volviera al equilibrio en un estado no confinado. Se
llevaron a cabo los experimentos en un instrumento
Mach-1^{TM} con pastillas de 3 mm de grosor. Las
curvas de estrés-relajación (Figura 15) obtenidas de
la etapa de estrés de 1% indican que las pastillas Cerestar son
mucho más duras que las pastillas Rougier, esto es que las pastillas
Cerestar tienen una resistencia más pronunciada a la compresión de
estrés de 1%. Las pastillas Cerestar exhiben un pico de resistencia
de aproximadamente 1,5 veces mayor que el de las pastillas Rougier
(desde aproximadamente 15 g a 25 g de carga por 1% de
compresión).
La técnica de microscopía electrónica de barrido
(SEM) fue utilizada para examinar la morfología de las pastillas
Cerestar y Rougier y esto reveló una gran distinción entre las dos
pastillas. La Figura 16 muestra los micrográficos SEM de la
superficie de la pastilla hinchada con agua Cerestar liofilizada. La
Figura 17 muestra los micrográficos SEM de la suspensión de
sobrenadante liofilizado presente alrededor de la pastilla Cerestar
hinchada con agua. Para una comparación, la Figura 18 muestra el SEM
de las pastillas Rougier en equilibrio de hinchazón a 37ºC.
Se analizaron por cromatografía de gel de
permeación (GPC) cinco muestras de almidones: (1) almidón C Amylogel
03003 HA es el almidón de amilosa 70% que es el material de partida
para Cerestar, (2) Contramid Lot 333 que es el almidón HA reticulado
fabridado por el procedimiento Rougier, (3) almidón HA modificado
Cerestar lote 1903 (fabricado de acuerdo a lo descrito en el Ejemplo
1), (4) almidón HA modificado Cerestar lote 3825 (fabricado de
acuerdo a lo descrito en el Ejemplo 1), y (5) almidón HA modificado
Cerestar lote 3808 (fabricado de acuerdo a lo descrito en el
Ejemplo 1).
El análisis GPC se llevó a cabo de acuerdo a las
4 etapas siguientes:
Disolución de las muestras en 90% de DMSO (15
mg/ml, 3 días a 80ºC) y dilución de la solución con lubricante
(0,005 M Na_{2}CO_{3}) (2:1);
Fraccionamiento de las muestras en un sistema I
de columna (columnas-Sephacryl). Volumen de la
muestra: 1,6 ml;
Análisis de las fracciones en coloración de yodo
(640 nm y 525 nm) y carbohidrato total; y
Calibración del sistema de columna con una
molécula estándar ampliamente dispersa
(BDS-HES).
A continuación se incluyen los resultados GPC
para cada una de las cinco muestras:
Contiene aproximadamente 20% de partes de
moléculas de alto peso molecular, proporción de 640/525 nm entre 0,4
y 0,6 que corresponde a las estructuras de amilopectina. Las partes
de bajo peso molecular tienen su elución máxima en la fracción 90,
mientras la escala molecular aquí es de 300000 Dalton [g/M]. A
partir de la proporción 640/525 nm resulta evidente que hay
diferentes estructuras de ramificación, en el máximo la proporción
está entre 1,6 y 2, lo que corresponde a una estructura ramificada
de cadenas largas.
Este producto de almidón tiene una gran
dispersión con partes de diferente composición estructural. Una
proporción mayor de componentes de alto peso molecular contienen una
proporción de 640/525 nm de 1 (aproximadamente 50%). La parte de
bajo peso molecular contiene una mayor proporción de estructuras
diferentemente ramificadas en la que puede observarse una proporción
entre 1,2 y 1,6.
Este almidón HA modificado tiene una amplia
dispersión molecular, en la que la proporción de componentes de alto
peso molecular es relativamente pequeña, y la proporción 640/525
esta entre 1 y 1,6. La coloración de yodo indica estructuras
ramificadas con un a longitud mediana de segmentos.
Este almidón modificado también presenta una
amplia dispersión de pesos moleculares, en la que la proporción de
componentes de alto peso molecular es significativamente alta. La
coloración de yodo muestra características estructurales similares,
la proporción 640/525 nm está en la misma escala entre 1 y 1,6.
En este lote no se encuentran componentes de
alto peso molecular. La proporción de componentes de bajo peso
molecular es significativamente mayor que la de los lotes 1903 y
3825. Los valores encontrados para la proporción 640/525 son mucho
más uniformes en la escala de 1,5, lo cual indica estructuras
ramificadas iguales con longitudes de segmentos medianos.
La diferencia marcada entre el almidón HA
reticulado por el procedimiento Rougier (contramid
(Rougier)333) y los obtenidos por el procedimiento de acuerdo
con la presente invención (Lote 3808, 1903, 3825) se ilustran en las
Figuras 19 y 20. En el producto Rougier, se ha eluido una cantidad
significativa de amilosa junto con la amilopectina, lo que indica
que se crearon enlaces covalentes por el tratamiento químico. En los
productos Cerestar, el pico a altos pesos moleculares es pequeño, lo
que puede ser el resultado del rompimiento de la amilopectina en
pequeñas subunidades. La cantidad de amilosa enlazada a la
amilopectina es más pequeña que la de Rougier. Esto puede deberse
al hecho de que la reticulación tiene lugar preferentemente entre
las moléculas de amilosa más que entre la amilosa y la amilopectina
o bien a que el grado de reticulación es bajo (Cerestar utiliza
0,075% de fosfuro de oxicloruro mientras que Rougier utiliza 3,25%
de trimetafosfato sódico).
Se prepararon mezclas secas de almidón de
amilosa reticulado, Lubritab® (Penwest Pharmaceuticals Co.) y
Ciprofloxacina HCl con las siguientes composiciones:
Tipo A | Tipo B | Tipo C | |
(2,5% Ciproflaxacina HCl) | (5% Ciproflaxacina HCl) | (7,5% Ciproflaxacina HCl) | |
Almidón reticulado con | 97% | 94.5% | 92% |
alto contenido en amilosa | |||
Ciproflaxacina HCl | 2,5% | 5,0% | 7,5% |
Lubritab® | 0,5% | 0,5% | 0,5% |
Estas mezclas se comprimieron utilizando un
punzón redondo de 7,1 mm para obtener implantes de 5 mm de grosor en
forma de pastillas. El peso de cada una de las pastillas formadas
(Tipo A, o B, o C) es de 200 mg.
Se llevaron a cabo experimentos durante 21 días
con implantes de 2,5%, 5% y 7,5% de Ciprofloxacina HCl (Cipro) (Tipo
A, Tipo B, Tipo C respectivamente, como se describen en el Ejemplo
13), que estaban individualmente inmersos en 20 mL de tampón salino
de fosfato isotonico (PBS), pH 7,4. Las vasijas estancas se
mantuvieron a una temperatura de 37ºC en un baño de agitación. Los
implantes se transfirieron a 20 mL de PBS fresco cada 24 horas. Se
analizó la Ciprofloxacina HCl por espectrometría UV (277 nm).
Tal como se muestra en la Figura 21, la
liberación de Ciprofloxacina HCl se obtuvo durante los 21 días con
buena reproducibilidad. Sorprendentemente, las velocidades de
liberación iniciales de Ciprofloxacina HCl disminuyeron cuando se
aumentaba la carga de medicamento.
Se utilizaron dieciocho conejos blancos New
Zealand de 2 kg para evaluar la liberación sistémica y local del
antibiótico de Ciprofloxacina HCl desde los implantes. Los animales
fueron separados al azar en dos grupos (2,5% y 7,5% de
Ciprofloxacina HCl). La pata derecha delantera se preparó
asépticamente para cada conejo. Se cortó la piel y la fascia femoral
lateral para exponer la diafisis de fémur. Se le dieron a cada
conejo 30 mg de Ciprofloxacina HCl, en forma de implantes de almidón
reticulado con alto contenido en amilosa (ya sea tipo A o C, como se
describe en el Ejemplo 13). Los implantes se colocaron entre el
cuadriceps y el fémur y luego la fascia y la piel se suturaron. Se
monitoreó a los animales diariamente. Se practicó la eutanasia en
los días 3, 7, 14, 21 y 28 posteriores a la implantación. Se
coleccionaron los cuadriceps y fémur para el análisis de
Ciprofloxacina HCl y el examen histológico. Se tomaron muestras de
sangre en los días 0, 1, 2, 3, 5, 7, 10, 14, 21 y 28 en todos los
animales que quedaban para el análisis de Ciprofloxacina HCl por
HPLC.
Como forma implantable, la buena
biocompatibilidad del almidón reticulado con alto contenido en
amilosa para la implantación subcutánea ya había sido demostrada en
ratas (C. Désévaux, et al., Proceed. Int’l. Symp. Control.
Rel. Bioact. Mater. 26 (1999) 635-636). De la misma
manera, en este estudio de conejos, no se produjo ninguna reacción
adversa local o efectos para la salud. La inflamación posterior a la
muerte fue pequeña y limitada a los sitios de la implantación. Se
observaron heterófilos y macrófagos dentro y alrededor del implante
del almidón reticulado con alto contenido en amilosa
respectivamente.
Tal como se muestra en la Figura 22, el suero de
Ciprofloxacina HCl siempre se detectó a un nivel bajo hasta el día
21 limitando la posibilidad de efectos tóxicos. En la misma línea de
los datos in vitro, la liberación inicial fue más controlada
y reproducible con los implantes de Ciprofloxacina HCl tipo C.
Tal como se muestra en la Figura 23, se
encontraron niveles elevados de antibiótico en los músculos durante
un período de tiempo largo (21 días) con los implantes tipo C. En la
misma línea que los datos in vitro, las concentraciones
locales después de la implantación de los implantes A fueron menores
después de 14 días.
En conclusión, los implantes del tipo C pueden
ser utilizados de manera segura y eficiente para los tratamientos
locales o para la prevención de infección ósea, tal como por ejemplo
después de un trauma o después de un procedimiento quirúrgico.
Aunque resulta evidente que las formas de
realización de la invención descritas en la presente memoria son las
indicadas para alcanzar los objetivos establecidos anteriormente,
los expertos en la materia apreciarán que numerosas modificaciones y
otras formas de realización pueden introducirse en la misma, sin
apartarse del espíritu y del alcance de la invención tal como está
definido por las reivindicaciones adjuntas.
Se ha citado un número de referencias y su
exposición se incorpora a la presente memoria en su totalidad como
referencia.
Claims (28)
1. Pastilla de liberación controlada que
comprende una mezcla comprimida de al menos dos polvos secos,
incluyendo un polvo de al menos un agente farmacéutico y un polvo de
un excipiente de liberación controlada, en la que dicho excipiente
de liberación controlada comprende además un almidón reticulado con
alto contenido en amilosa obtenible por:
reticulación y modificación química de almidón
con alto contenido en amilosa,
gelatinización y
secado para obtener un polvo de dicho excipiente
de liberación controlada.
2. Pastilla según la reivindicación 1, en la
que dicha pastilla es para administración oral.
3. Pastilla según la reivindicación 1, en la
que dicha pastilla es un implante.
4. Pastilla según la reivindicación 1, en la
que dicho excipiente de liberación controlada comprende almidón
reticulado con alto contenido en amilosa preparado mediante
reticulación de dicho almidón con alto contenido en amilosa y por
una modificación química seleccionada de entre el grupo constituido
por esterificación y eterificación.
5. Pastilla según la reivindicación 4, en la
que dicha modificación química es la hidroxipropilación.
6. Pastilla según la reivindicación 5, en la
que dicho almidón reticulado con alto contenido en amilosa se
hidroxipropila con óxido de propileno.
7. Pastilla según la reivindicación 1, en la
que dicho almidón reticulado con alto contenido en amilosa se
reticula con un reactivo seleccionado de entre el grupo constituido
por epiclorhidrina, anhídrido de ácido adípico, trimetafosfato de
sodio y oxicloruro de fósforo.
8. Pastilla según la reivindicación 1, en la
que dicho almidón reticulado con alto contenido en amilosa se
gelatiniza a una temperatura desde aproximadamente 80ºC hasta
aproximadamente 180ºC.
9. Pastilla según la reivindicación 1, en la
que dicha mezcla de polvos secos comprende un lubricante y un
relleno.
10. Pastilla según la reivindicación 9, en la
que dicho lubricante es el estearato de magnesio.
11. Pastilla según la reivindicación 10, en la
que dicho relleno es la lactosa.
12. Pastilla según la reivindicación 1, en la
que dicho agente farmacéutico es clorhidrato de pseudoefedrina,
acetaminofeno, diclofenaco sódico, verapamil, glipicida, nifedipina,
felodipina, betahistina, albuterol, acrivastina, omeprazol,
misoprostol, tramadol, ciprofloxacina, oxibutinina, trimebutina,
tramadol, ketoconazol, ácido acetilsalicílico, paracetamol,
ibuprofeno, ketoprofeno, indometacina, diflunisol, naproxeno,
cetorolac, diclofenaco, tolmetina, sulindac, fenacetina, piroxicam,
ácido mefamanico, dextrometorfan, salicilatos, sales
farmacéuticamente aceptables de los mismos o mezclas de los
mismos
13. Procedimiento para la preparación de un
excipiente de liberación controlada, comprendiendo dicho
procedimiento las etapas siguientes:
- a)
- reticulación granular y además modificación química del almidón con alto contenido en amilosa;
- b)
- gelatinización térmica del almidón de la etapa b); y
- c)
- secado del almidón de la etapa b) para proporcionar un polvo que puede ser utilizado como excipiente de liberación controlada.
14. Procedimiento para la preparación en medio
acuoso de un excipiente de liberación controlada constituido
principalmente por almidón reticulado con alto contenido en amilosa
para su utilización en la preparación de pastillas, comprendiendo
dicho procedimiento las etapas siguientes:
reticular almidón con alto contenido en amilosa
formando así un medio de reacción que contiene un producto de
reacción constituido por una suspensión de almidón reticulado con
alto contenido en amilosa;
someter la suspensión de almidón con alto
contenido en amilosa reticulado de la etapa (a) a una modificación
química a una temperatura de aproximadamente 10ºC a aproximadamente
90ºC, durante aproximadamente 1 hora a aproximadamente 72 horas;
neutralizar dicho medio de reacción obtenido en
la etapa (b) con un ácido, lavando la suspensión formada y
opcionalmente escurriendo el agua para formar una torta o polvo seco
de almidón;
diluir dicha suspensión o resuspender dicha
torta de almidón o dicho polvo seco de la etapa (c) con agua para
formar una suspensión a una concentración de aproximadamente 2% a
aproximadamente 40% p/p, ajustando el pH a un valor deseado entre
aproximadamente 3 y aproximadamente 12 y gelatinizando la suspensión
a una temperatura de aproximadamente 80ºC a aproximadamente 180ºC,
durante aproximadamente 1 segundo a aproximadamente 120 minutos;
y
secar el producto térmicamente tratado obtenido
en la etapa (d) para obtener dicho excipiente de liberación
controlada constituido principalmente por almidón con alto contenido
en amilosa reticulado y químicamente modificado en forma de un
polvo.
15. Procedimiento según la reivindicación 14,
que comprende las etapas siguientes:
reticular almidón con alto contenido en amilosa
que contiene al menos 70% p/p de amilosa con aproximadamente 0,005 a
aproximadamente 0,3 gramos de agente de reticulación por 100 gramos
de almidón con alto contenido en amilosa en base seca en un medio
acuoso a una temperatura desde aproximadamente 10ºC a
aproximadamente 90ºC formando así un medio de reacción que contiene
un producto de reacción constituido por una suspensión de almidón
con alto contenido en amilosa reticulado;
someter dicha suspensión de almidón con alto
contenido en amilosa reticulado de la etapa (a) a hidroxipropilación
con óxido de propileno, a una temperatura desde aproximadamente 10ºC
a aproximadamente 90ºC, durante aproximadamente 1 hora a
aproximadamente 72 horas, para dar un medio de reacción que contiene
una suspensión de almidón con alto contenido en amilosa reticulado
hidroxipropilado;
neutralizar dicho medio de reacción obtenido en
la etapa (b) con un ácido acuoso diluido, lavando la suspensión
formada y opcionalmente escurriendo el agua para obtener una torta o
un polvo seco de almidón;
diluir dicha suspensión o resuspender dicha
torta de almidón o el polvo seco de la etapa (c) con agua para
formar una suspensión a una concentración de aproximadamente 2% a
aproximadamente 40% p/p, ajustando el pH a aproximadamente 4,0 a
aproximadamente 9,0 y gelatinizando la suspensión a una temperatura
de aproximadamente 80ºC a aproximadamente 180ºC, durante
aproximadamente 1 segundo a aproximadamente 120 minutos; y
secar dicho producto térmicamente tratado
obtenido en la etapa (d) para obtener dicho excipiente de liberación
controlada constituido principalmente por almidón con alto contenido
en amilosa reticulado hidroxipropilado en forma de un polvo.
16. Procedimiento para la preparación en medio
acuoso de un excipiente de liberación controlada constituido
principalmente por almidón reticulado con alto contenido en amilosa
para su utilización en la preparación de pastillas, comprendiendo
dicho procedimiento las etapas siguientes:
someter un almidón con alto contenido en amilosa
a una modificación química a una temperatura de aproximadamente 10ºC
a aproximadamente 90ºC, durante aproximadamente 1 hora a
aproximadamente 72 horas, para formar así un medio de reacción que
contiene una suspensión de almidón con alto contenido en amilosa
modificado químicamente;
reticular dicho almidón con alto contenido en
amilosa químicamente modificado en dicha suspensión obtenida en la
etapa (a);
neutralizar el medio de reacción obtenido en la
etapa (b) con un ácido, lavando la suspensión formada y escurriendo
el agua opcionalmente para obtener una torta de almidón o secando
para formar un polvo seco.;
diluir dicha suspensión o resuspender dicha
torta de almidón o dicho polvo seco de la etapa (c) con agua para
formar una suspensión a una concentración de aproximadamente 2% a
aproximadamente 40% p/p, ajustando el pH a un valor deseado entre
aproximadamente 3 y aproximadamente 12 y gelatinizando la suspensión
a una temperatura de aproximadamente 80ºC durante aproximadamente
180ºC, por aproximadamente 1 segundo a aproximadamente 120
minutos;
secar el producto térmicamente tratado obtenido
en la etapa (d) para obtener dicho excipiente de liberación
controlada constituido principalmente por almidón con alto contenido
en amilosa reticulado y modificado químicamente en forma de un
polvo.
17. Procedimiento según las reivindicaciones 14
ó 16, en el que las etapas (a) y (b) son efectuadas al mismo
tiempo.
\newpage
18. Procedimiento según la reivindicación 16,
que comprende las etapas siguientes:
someter un almidón con alto contenido en amilosa
que contiene al menos 70% p/p de amilosa a hidroxipropilación con
óxido de propileno a una temperatura de aproximadamente 10ºC a
aproximadamente 90ºC, durante aproximadamente 1 hora a
aproximadamente 72 horas, para dar un medio de reacción que contiene
un producto de reacción constituido principalmente por una
suspensión de almidón con alto contenido en amilosa
hidroxipropilado;
reticular dicha suspensión de almidón con alto
contenido en amilosa hidroxipropilado con aproximadamente 0,005 a
aproximadamente 0,3 gramos de reactivo de reticulación por 100
gramos de almidón con alto contenido en amilosa en base seca en un
medio acuoso a una temperatura de aproximadamente 10ºC a
aproximadamente 90ºC formando así un medio de reacción que contiene
una suspensión de almidón con alto contenido en amilosa reticulado
hidroxipropilado;
neutralizar dicho medio de reacción obtenido en
la etapa (b) con un ácido acuoso diluido, lavando la suspensión
formada y opcionalmente escurriendo el agua para obtener una torta
de almidón o un polvo seco;
diluir dicha suspensión o resuspender dicha
torta de almidón o dicho polvo seco de la etapa (c) con agua para
formar una suspensión a una concentración de aproximadamente 2% a
aproximadamente 40% p/p, ajustando el pH a aproximadamente 4,0 y
aproximadamente 9,0 y gelatinizando dicha suspensión formada en la
etapa actual a una temperatura de aproximadamente 80ºC a
aproximadamente 180ºC, durante aproximadamente 1 segundo a
aproximadamente 120 minutos;
secar dicho producto térmicamente tratado
obtenido en la etapa (d) para obtener dicho excipiente de liberación
controlada constituido principalmente por almidón con alto contenido
en amilosa reticulado hidroxipropilado en forma de un polvo.
19. Procedimiento según las reivindicaciones 15
ó 16, en el que en la etapa (a) dicho reactivo de reticulación es
oxicloruro de fósforo en una cantidad de entre aproximadamente 0,01
y aproximadamente 0,2 gramos por 100 gramos de almidón en base seca
o trimetafosfato de sodio en una cantidad de entre aproximadamente
0,05 y 0,3 gramos por 100 gramos de almidón en base seca.
20. Procedimiento según las reivindicaciones 15
ó 16, en el que en la etapa (d) se efectúa en medio alcalino
acuoso.
21. Procedimiento según la reivindicación 19,
en el que en la etapa (d), dicha reticulación se efectúa a un pH de
aproximadamente 10 a aproximadamente 14 y a una temperatura de
aproximadamente 15ºC a aproximadamente 90ºC durante aproximadamente
0,2 horas a aproximadamente 40 horas.
22. Procedimiento según las reivindicaciones 15
ó 16, en el que en la etapa (a), dicha hidroxipropilación se efectúa
con hasta 10% de óxido de propileno a una temperatura de
aproximadamente 40ºC a aproximadamente 80ºC durante aproximadamente
10 horas a aproximadamente 72 horas.
23. Procedimiento según las reivindicaciones 15
ó 16, en el que en la etapa (c), dicha neutralización de dicho medio
de reacción se efectúa con ácido sulfúrico o ácido clorhídrico
diluido.
24. Procedimiento según las reivindicaciones 15
ó 16, en el que en la etapa (d), dicha gelatinización se efectúa por
inyección directa de vapor en una suspensión acuosa de dicho almidón
reticulado con alto contenido en amilosa.
25. Procedimiento según las reivindicaciones 15
ó 16, en el que en la etapa (d), dicho pH se ajusta a 6,0 y dicha
temperatura se mantiene entre 80ºC y 180ºC durante 2 a 10
minutos.
26. Procedimiento según las reivindicaciones 15
ó 16, en el que en la etapa (e), dicho secado se efectúa por secado
por rociado.
27. Procedimiento según la reivindicación 26,
en el que en la etapa (e), la temperatura de entrada es de 60ºC a
350ºC, y la temperatura de salida es de 40ºC a 210ºC.
28. Almidón con alto contenido en amilosa
reticulado obtenible por las etapas que comprenden:
reticulación y modificación química de almidón
con alto contenido en amilosa,
gelatinización; y
secado para obtener un polvo de dicho almidón
reticulado con alto contenido en amilosa.
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