ES2225961T3 - Proteina de union a antigeno multivalente y multiespecifica. - Google Patents
Proteina de union a antigeno multivalente y multiespecifica.Info
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Abstract
PROTEINA MULTIVALENTE UNIDA A ANTIGENO QUE COMPRENDE UN PRIMER POLIPEPTIDO QUE COMPRENDE, EN SERIE, TRES O MAS DOMINIOS VARIABLES DE UNA CADENA PESADA DE ANTICUERPOS Y UN SEGUNDO POLIPEPTIDO QUE COMPRENDE, EN SERIE, TRES O MAS DOMINIOS VARIABLES DE UN ANTICUERPO DE CADENA LIGERA, ESTANDO VINCULADOS LOS MENCIONADOS PRIMER Y SEGUNDO POLIPEPTIDOS POR ASOCIACION DE LOS DOMINIOS VARIABLES RESPECTIVOS DE CADENA PESADA Y CADENA LIGERA, FORMANDO CADA DOMINIO VARIABLE ASOCIADO UNA POSICION DE ENLACE DE ANTIGENO. SE DESCUBREN METODOS PARA SU PRODUCCION Y USOS DERIVADOS, EN PARTICULAR PARA APLICACIONES TERAPEUTICAS Y DE DIAGNOSTICO.
Description
Proteína de unión a antígeno multivalente y
multiespecífica.
La presente invención se refiere a proteínas de
unión a antígenos multivalentes y multiespecíficas, procedimientos
para su producción y usos de las mismas. En particular, la
invención se refiere a proteínas de unión que comprenden
polipéptidos que se asocian a formar multímeros multivalentes o
multiespecíficos.
Los anticuerpos son moléculas de proteínas que
tienen una estructura basada en una unidad que comprende cuatro
polipéptidos, dos cadenas pesadas idénticas y dos cadenas ligeras
idénticas, que están covalentemente unidas juntas mediante enlaces
disulfuro. Cada una de estas cadenas se pliega en dominios
discretos. Las regiones C-terminales de tanto las
cadenas pesadas como las ligeras se conservan en secuencia y se
llaman las regiones constantes, que comprenden uno o más llamados
dominios C. Las regiones N-terminal de las cadenas
pesadas y ligeras, también conocidas como dominios V, son variables
en secuencia y determinan la especificidad del anticuerpo. Las
regiones en los dominios variables de las cadenas ligeras y pesadas
(V_{L} y V_{H} respectivamente) responsable de la actividad de
la unión a antígenos se conocen como las regiones hipervariables o
determinantes de la complementariedad. Los anticuerpos naturales
tienen al menos dos sitios de unión a antígenos idénticos definidos
por la asociación de las regiones variables de las cadenas pesadas y
ligeras.
Se sabe que la digestión proteolítica de un
anticuerpo puede conducir a la producción de fragmentos de
anticuerpos. Tales fragmentos, o porciones, del anticuerpo entero
pueden exhibir actividad de unión a antígenos. Un ejemplo de un
fragmento de unión es un fragmento Fab que comprende una cadena
ligera asociada a los dominios V_{H} y C_{H1} de una cadena
pesada. El fragmento bivalente F(ab^{1})_{2}
comprende dos de tales fragmentos F_{ab} conectados juntos a
mediante la región bisagra, proporcionando dos sitios de unión a
antígenos. También se pueden obtener los fragmentos F_{v},
constituidos solamente por los dominios V de las cadenas pesadas y
ligeras asociadas una a otra. Estos fragmentos F_{v} son
monovalentes para unirse a antígenos. Los fragmentos más pequeños
tales como dominios V individuales (anticuerpos de dominios o dABs,
Ward y col., Nature, 341, 544 (1989) y CDR individuales
(Williams y col., Proc. Natl. Acad. Sci, Estados Unidos, 86,
5537 (1989)) también se ha mostrado que retienen las características
de unión del anticuerpo precursor aunque generalmente la mayoría de
los anticuerpos de origen natural necesitan tanto V_{H} como
V_{L} una para retener inmunorreactividad total.
También se han descrito los fragmentos de los
anticuerpos que comprenden dominios V_{H} y V_{L} asociados
juntos para tener actividad de unión a antígenos. El fragmento
F_{v} de la cadena individual (scFv) comprende un dominio V_{H}
unido a un dominio V_{L} mediante un engarce flexible de
polipéptidos de tal manera que los dominios se pueden asociar para
formar un sitio de unión a antígenos (véase, por ejemplo, el
documento EP-B-0281604, Enzon Labs
Inc).
Los sistemas de expresión microbianos para
producir fragmentos de anticuerpos activos se conocen en la
bibliografía. La producción de Fab en diversos huéspedes tales
como, por ejemplo, E. coli (Better y col., Science,
240, 104, (1988)), levadura (Horwitz y col., Proc. Natl.
Acad. Sci, Estados Unidos, 85, 8678 (1988)) y el hongo
filamentoso Trichoderma reesei (Nyyssönen y col,
Bio/Technology, 11, 591 (1993) se han descrito previamente.
También se sabe que las plantas se pueden usar como huéspedes para
la producción de fragmentos SCFv (Owen y col, Bio/Technology,
10, 790 (1992) así como anticuerpos enteros.
Una ventaja de usar fragmentos de anticuerpos en
lugar de anticuerpos enteros en diagnosis y terapia se encuentra en
su tamaño más pequeño. Son probablemente menos inmunogénicos que
los anticuerpos enteros y más capaces de penetrar tejido. Sin
embargo, una desventaja asociada al uso de fragmentos tales como los
fragmentos F_{ab}, F_{v}, y fragmentos de anticuerpos
S_{c}F_{v} descritos anteriormente, es que tienen solamente un
sitio de unión para unión a antígenos cuando se compara con los dos
o más sitios contenidos en el anticuerpo entero, evitando la unión
polivalente al antígeno y por lo tanto conduciendo a avidez
reducida.
En un intento de superar este problema, se ha
dirigido la atención para proporcionar proteínas multivalentes de
unión a antígenos, es decir a proteínas que tienen más de un sitio
de unión a los antígenos. Además, ha habido interés en la
producción de proteínas de unión a antígenos que tienen múltiples
especificidades capaces de unirse a diferentes determinantes
antigénicos y que contienen dominios de unión a antígenos derivados
de fuentes diferentes. Las proteínas de unión a antígenos que
tienen especificidades distintas de unión pueden ser útiles, por
ejemplo, en la dirección de células efectoras a células diana en
virtud de la unión específica de los diferentes dominios de unión. A
modo de ilustración, se puede usar una proteína de unión a
antígenos biespecífica que tiene especificidad tanto para células
tumorales como fármacos citotóxicos para dirigir específicamente
fármacos citotóxicos a células tumorales de una manera eficaz.
Evitando la necesidad de modificación química, se pueden evitar
respuestas inmunes adversas.
Hasta ahora, la aplicación potencial de proteínas
de unión a antígenos multivalentes y multiespecíficas se han
impedido por las dificultades en generar y purificar tales
moléculas.
Las proteínas de unión a antígenos recombinantes
que tienen dos sitios de unión se puede preparar mediante
procedimientos tales como reticulación química de residuos de
cisteína, bien a través de residuos de cisteína introducidos en el
extremo C del V_{H} de un F_{v} (Cumbre y col., J. Immunol.,
149, 120 (1992), a través de los residuos de cisteína
bisagras en F_{ab} para generar (Fab^{1})_{2} (Carter
y col., Bio/Tech., 10, 163 (1992)) o en el extremo C del
V_{L} de un scFv (Pack y Plückthun, Biochemistry, 31, 1579
(1992)). Como alternativa, se ha descrito la producción de
fragmentos de anticuerpos biespecíficos bivalentes basándose en la
inclusión de los fragmentos F_{ab} de las secuencias de
péptidos
C-terminales que promueven la dimerización. (Kostelny y col, J. Immunol., 148, 1547).
C-terminales que promueven la dimerización. (Kostelny y col, J. Immunol., 148, 1547).
Los fragmentos de anticuerpos bivalentes o
biespecíficos que comprenden un complejo de unión que contiene dos
cadenas de polipéptidos, una que comprende dos dominios variables
de cadenas pesadas (V_{H}) en serie y la otra que comprende dos
dominios variables de cadenas ligeras (V_{L}) en series se
describen en nuestra solicitud de patente europea en trámite Nº
95307332.7.
Los fragmentos de anticuerpos multivalentes y/o
multiespecíficos se describen en el documento WO 94/09131 (Scotgen
Limited). Las proteínas de unión específica que tienen dos regiones
de unión, contenían al menos en parte sobre las primera y segunda
cadenas de polipéptidos dichas cadenas adicionalmente incorporan
dominios de asociación capaces de unirse uno a cada otro produciendo
que las cadenas de polipéptidos a combinarse se describen en ese
documento. Se describe que la primera y segunda regiones de unión
preferiblemente son dominios de anticuerpos de unión a antígenos,
por ejemplo, comprendiendo las regiones V_{H} y V_{L}
contenidas en un fragmento Fab o en un fragmento Fv de una cadena,
o se puede derivar de exactamente una de las regiones V_{H} o
V_{L} regiones de un anticuerpo. Los dominios de asociación se
pueden derivar adecuadamente de un anticuerpo y pueden ser, entre
otras, regiones V_{H} y V_{L} de anticuerpos. Además se
describe que usando una combinación de dominios V_{H} / V_{L}
para lograr la asociación conduce a la creación de un dominio
F_{v} suplementario de manera que el anticuerpo producido puede
ser trivalente. Las representaciones esquemáticas de las
disposiciones sugeridas en el documento WO 94/09131 para producir
fragmentos trivalentes se muestran en la figura 1A.
El documento WO 93/11161 (Enzon Inc) describe
proteínas multivalentes de unión a antígenos que comprenden dos o
más moléculas de proteínas de una cadena, cada molécula de una
cadena que comprende el primer y segundo polipéptidos cada uno
comprendiendo la porción de unión de la región variable de una
cadena pesada y ligera de los anticuerpos estando unidos los
polipéptidos juntos mediante un engarce peptídico. Se describen los
trímeros y tetrámeros hipotéticos, que comprenden tres o cuatro
proteínas de unión a antígenos de una cadena según sea apropiado.
Las representaciones esquemáticas de las disposiciones trivalentes
sugeridas se muestran en la figura 1B.
El documento WO 91/19739 (Celltech Limited)
describe proteínas multivalentes de unión a antígenos que comprenden
un fragmento Fv unido a al menos un fragmento adicional Fv mediante
una estructura de conexión que enlaza los fragmentos juntos pero
que los mantiene espaciados separados de manera que se pueden unir
a los determinantes antigénicos adyacentes. Convenientemente la
estructura de conexión consiste en un polipéptido espaciador y una
unidad de enlace tal como un engarce de maleimida de reticulación o
una molécula que permite la unión no covalente. Las estructuras de
conexión particularmente preferidas que se describen están basadas
sobre secuencias de regiones de acoplamiento a anticuerpos y
bisagras.
Según la presente invención se proporciona una
proteína multivalente de unión a antígenos que comprende:
un primer polipéptido que comprende en serie,
tres o más dominios variables de una cadena pesada de anticuerpos;
y
un segundo polipéptido que comprende, en serie,
tres o más dominios variables de una cadena ligera de anticuerpos,
dichos primer y segundo polipéptidos estando unidos mediante la
asociación de los dominios variables de las cadenas pesadas y de
las cadena ligeras respectivas.
Como se ha usado en esta memoria descriptiva, el
término multivalente significa más de un sitio de unión a
antígenos.
Preferiblemente el primer polipéptido comprende
tres dominios variables de una cadena pesada del anticuerpos y el
segundo polipéptido comprende tres dominios variables de una cadena
ligera del anticuerpo, proporcionando una proteína trivalente.
Se apreciará que los polipéptidos pueden
comprender cadenas pesadas o ligeras, dominios variables, según sea
apropiado, o equivalentes funcionales de los mismos.
Los dominios variables de las cadenas pesadas y
ligeras respectivas se pueden enlazar adecuadamente sin que
intervenga ningún engarce. Sin embargo, según una realización
preferida, los dominios variables contenidos en los polipéptidos
individuales están unidos mediante engarces peptídicos.
Preferiblemente el engarce peptídico es flexible, que permiten que
los dominios variables se flexionen en relación uno a al otro de
manera que se puedan unir a determinantes antigénicos múltiples
simultáneamente. Se apreciará que la unión del engarce a los
dominios variables de las cadenas pesadas o ligeras individuales
será tal que no afecte la capacidad de unión del sitio de unión
formado por el par de dominios variables asociados.
Convenientemente el engarce peptídico comprende entre 16 y 19
residuos de aminoácidos. Un engarce peptídico preferido para los
dominios de las cadenas pesadas es
(Gly_{4}Ser)_{3}AlaGySerAla y para los dominios de las
cadenas ligeras (Gly_{4}Ser)_{3}Val.
Se apreciará que si dos o más de los pares de
dominios variables asociados (pares V_{H}/V_{L}) tienen la
misma especificidad antigénica, por ejemplo si se derivan del mismo
anticuerpo precursor o fragmento del mismo de diferentes
anticuerpos que se unen al mismo epítopo, entonces se producirá una
proteína de unión que se une a más de una molécula del mismo
tipo.
Según una realización, donde la proteína de unión
según la invención comprende tres sitios de unión a antígenos que
son capaces de unirse a diferentes epítopos entre sí, se produce
una proteína triespecífica trivalente.
En otra realización, donde la proteína de unión
según la invención comprende tres sitios de unión de pares de
dominios variables asociados, dos de dichos sitios se unen a los
mismos epítopos, se proporciona una proteína trivalente,
biespecífica. Cuando los tres sitios de unión tienen la misma
especificidad antigénica, se proporciona una proteína de unión
monoespecífica.
La invención también proporciona secuencias de
nucleótidos que codifican la proteína multivalente de unión a
anticuerpos según la invención y la clonación y los vectores de
expresión de contienen tales secuencias de nucleótidos.
La invención también proporciona células
huéspedes transformadas con vectores que contienen tales secuencias
de nucleótidos y procedimientos de producción de tales polipéptidos
mediante la expresión de las secuencias de nucleótidos en tales
huéspedes.
La invención además proporciona un procedimiento
para preparar una proteína multivalente de unión a antígenos como se
ha expuesto anteriormente comprende:
- (i)
- transformar uno o más huéspedes mediante la incorporación de genes que codifican dicho primer y segundo polipéptidos;
- (ii)
- expresar dichos genes en dicho huésped o huéspedes;
- (iii)
- permitir que dicho primer y segundo polipéptidos para combinar y para formar la proteína de unión a antígenos.
De una manera adecuada el huésped o huéspedes se
pueden seleccionar de bacterias procarióticas, tales como bacterias
Gram - negativas por ejemplo E. coli, y bacterias Gram -
positivas, por ejemplo B. subtilis o bacterias del ácido
láctico, eucariotas inferiores tales como levaduras, por ejemplo
pertenecientes al género Saccharomyces, Kluyveromyces o
Trichoderma, hongos tales como los pertenecientes a género
Aspergillus y Neurospora y eucariotas superiores,
tales como plantas, por ejemplo tabaco, y células de animales,
ejemplos de los cuales son células de mieloma y CHO, células C0S y
células de insectos. Un huésped particularmente preferido para uso
en conexión con la presente invención son las células C0S (riñón de
mono).
Las técnicas para sintetizar genes,
incorporándolos en huéspedes y expresando genes en huéspedes se
conocen bien en la técnica y los expertos en la técnica serían
capaces fácilmente de poner la invención en efecto usando el
conocimiento general común. Las proteínas según la invención se
pueden recuperar y purificar usando técnicas convencionales tales
como cromatografía de afinidad, cromatografía de intercambio iónico
o cromatografía de filtración sobre gel.
La actividad de las proteínas multivalentes de
unión según la invención se pueden medir convenientemente mediante
técnicas habituales conocidas en la técnica tales como ensayo
inmunosorbente unido a enzimas (ELISA), ensayo radioinmune (RIA) o
mediante el uso de biosensores.
Las proteínas multivalentes de unión a antígenos
de la presente invención se pueden usar adecuadamente en
diagnósticos o terapia por ejemplo en la dirección de una célula
tumoral con células asesinas y agente citotóxico. Otros usos para
los cuales las proteínas de unión multivalentes según la invención
son útiles incluyen aquellos usos para los que se usan comúnmente
anticuerpos o fragmentos de los mismos, incluyendo para
inmunoensayos y en purificación. Según una realización particular
preferida, complejos multienzimáticos se pueden ensamblar, en una
diana, por ejemplo una superficie celular. Como una ilustración,
proteínas de unión multivalentes según la invención se pueden usar
para dirigir enzimas que destruyen células tales como una oxidasa
(por ejemplo glucosaoxidasa) y peroxidasa (por ejemplo peroxidasa de
rábano rusticano) a una especie diana que es un componente
antigénico de la placa dental, tales como S. sanguis o S.
mutans. Los complejos que comprenden enzima, coenzima y
antígeno diana también se pueden ensamblar convenientemente.
De acuerdo con lo anterior, la invención también
proporciona composiciones que comprenden las proteínas multivalentes
de unión a antígenos según la invención, convenientemente en
combinación con un vehículo, diluyente o excipiente cosmética o
farmacéuticamente aceptable. También se proporcionan los
procedimientos de tratamientos que usan las proteínas de unión a
antígenos multivalentes según la invención.
Para uso en diagnosis o terapia, las proteínas
multivalentes de unión a antígenos según la invención se pueden
unir convenientemente a un agente apropiado diagnóstica o
terapéuticamente eficaz mediante procedimientos convencionales en
la técnica.
Una ventaja de usar las proteínas de unión a
antígenos multivalentes según la invención en proteínas de unión
multivalentes preparadas mediante técnicas existentes conocidas en
la técnica es que la asociación "autoensambladora" de los
dominios variables de las cadenas pesadas y ligeras respectivas para
formar sitios de unión multivalentes evita la necesidad de las
etapas de acoplamiento químico o la introducción de residuos de
unión para estabilizar las construcciones multivalentes, por lo
tanto minimizan el riesgo de provocar una respuesta inmune a dichas
moléculas cuando se usan en terapia las proteínas de unión
multivalentes resultantes.
Una ventaja particular de las moléculas según la
presente invención es que se pueden purificar convenientemente
directamente del sobrenadante usando técnicas de purificación
convencionales. Ya que son autoensambladoras, no hay necesidad de
purificar las subunidades individuales antes de acoplarse según en
las técnicas existentes.
La presente invención se puede entender más
completamente con referencia a la siguiente descripción, cuando se
lee junto con los dibujos acompañantes.
Las figuras 1A y 1B muestran representaciones
esquemáticas de las disposiciones publicadas de los fragmentos
génicos de los dominios V de las cadenas pesadas y ligeras que se
han sugerido que producen fragmentos de anticuerpos triespecíficos
o trivalentes:
A) scFv1 - VLa + scFv2 - Vha (2 cadenas) | WO 94/09131 |
B) Fab1 - VLa + Fab - Vha (4 cadenas) | WO 94/09131 |
C) scFv1 - VLa - CLa + scFv1 - Vha - CHa (2 cadenas) | WO 94/09131 |
D) Fab1 - VLa - CLa + Fab2 - Vha - CHa (4 cadenas) | WO 94/09131 |
E) scFv1 + csFv2 + scFv3 (3 cadenas) | WO 93/11161 |
F) VH1 - VL2 + VH2 - VL3 + VH3 - VH1 (3 cadenas) | WO 93/11161 |
La figura 2A/B muestra la secuencia de
nucleótidos de la inserción EcoRI - HindIII de pGOSA.E2t que
contiene DNA que codifica guía de pelB - VH4715 - engarce - VL3418 y
DNA que codifica guía de pelB - VL3418 - engarce - VH4715 -
hidrófilo 2 diana (SEC ID Nº: 1).
La Figura 3
A) muestra la secuencia de nucleótidos de la
inserción HindIII - EcoRI del plásmido scFv. Lys con DNA que
codifica guía de pelB - VHLys - engarce - VLLys - engarce - VLLys
(SEC ID Nº: 2).
B) muestra la secuencia de nucleótidos de la
inserción HindIII - EcoRI del plásmido scFv.4715.2t con el DNA que
codifica guía de pelB - VH4715.2t (SEC ID Nº: 3).
La figura 4 muestra la secuencia de nucleótidos
de la secuencia guía genómica del anticuerpo
anti-NP (Jones y col, Nature, 321, 522). Las
secuencias de los exones se indican con cajas sombreadas. Los
sitios de restricción NcoI y PstI están en negrita y subrayados
(SEC ID Nº: 4).
La figura 5 proporciona una representación
esquemática del vector de expresión eucariótico pSV.51.
La figura 6 proporciona una visión general de las
construcciones de cabeza doble (A) y cabeza triple (B) de pUC19. Se
indican las posiciones de los nucleótidos y los sitios de
restricción usados para ensamblar construcciones de pUC de doble
cabeza y triple cabeza.
Figura
7
A) muestra el origen del VH - C - engarce y de
los fragmentos de VH - C - engarce.
B) proporciona una representación esquemática de
la construcción de los vectores pU.19 - cabeza triple.
La Figura 8
A) proporciona una representación esquemática de
la construcción de los vectores Euka.VH y Euka.VL.
B) proporciona una representación esquemática de
la construcción de los vectores de expresión pSV.VH.
C) proporciona una representación esquemática de
la construcción de los vectores de expresión pSV.VL.
La figura 9 muestra la expresión de las proteínas
de Golysan triespecíficas y un gel de SDS - PAGE que contiene
sobrenadante del cultivo total de COS. Los sobrenadantes brutos de
las células COS transfectados con vectores de expresión pSV se
separaron sobre geles SDS - PAGE. Las proteínas se transfirieron a
una membrana de nitrocelulosa y los VH3 y VL3 - 2t se detectaron
usando anticuerpos monoclonales específicos diana anti - VH y anti
- hidrófilo 2 respectivamente. (A = anti - Hydro - II, B = anti -
Hydro - II + anti - VH) Muestras: M) marcadores de pesos
moleculares bajos, 1) pSV.K + pSV.V,2) pSV.K + pSV.W,3) pSV.M +
pSV.V,4) pSV.M + pSV.W.
La figura 10 muestra los resultados de tres
ELISA. La actividad de unión a Lisozima, glucosaoxidasa y S.
sanguis se determinó en sobrenadantes de COS brutos midiendo
las actividades de unión biespecífica de 1) Lisozima -
glucosaoxidasa (= LYSOX), 2) glucosaoxidasa - S. sanguis (=
GOSA) y 3) Lisozima - S. sanguis (= LYSAN).
La figura 11 muestra los resultados de tres
ELISA. La actividad de unión a Lisozima y S. sanguis de
Golysan. A purificado. (A) y Golysan. B (B) se determinó midiendo
las actividades de unión biespecífica de 1) Lisozima -
glucosaoxidasa (= LYSOX), 2) glucosaoxidasa - S. sanguis (=
GOSA) y 3) Lisozima - S. sanguis (= LYSAN).
La figura 12 muestra la secuencia de nucleótidos
de la secuencia de la inserción EcoRI - HindIII de
pUR.4124 que contiene DNA (véase la SEC ID Nº: 23) que codifica
V_{L}Lys - engarce - V_{H}Lys.
La figura 13 muestra la secuencia de nucleótidos
de la inserción HindIII - EcoRI del plásmido Fv.3418
(véase la SEC ID Nº: 24) que contiene DNA que codifica guía de pelB
- V_{H}3418 y guía de pelB - V_{H}3418.
La figura 14 muestra la secuencia de nucleótidos
de la inserción HindIII - EcoRI del plásmido Fv.4715 -
myc (véase la SEC ID Nº: 25) que contiene DNA que codifica guía de
pelB - V_{H}4715 y guía de pelB - V_{H}4715 - Myc diana.
La figura 15 muestra la secuencia de nucleótidos
de la inserción HindIII - EcoRI del plásmido Fv.4715 -
myc que contiene DNA (véase la SEC ID Nº: 26) que codifica guía de
pelB - V_{H}4715 y guía de pelB - V_{H}4715 - Myc diana.
La figura 16a/b muestra la secuencia de
nucleótidos de la inserción HindIII - EcoRI de
pGOSA.E (véase la SEC ID Nº: 27) que contiene DNA que codifica guía
de pelB - V_{H}4715 - engarce - V_{L}3418 y guía de pelB -
V_{L}3418 -
\hbox{engarce -}V_{H}4715.
La figura 16c proporciona una visión general de
los oligonucleótidos y sus posiciones en pGOSA.E que se pueden usar
para reemplazar los fragmentos génicos de los dominios V.
La figura 17 muestra la construcción del plásmido
pGOSA.A.
La figura 18 muestra la construcción del plásmido
pGOSA.B.
La figura 19 muestra la construcción del plásmido
pGOSA.C.
La figura 20 muestra la construcción del plásmido
pGOSA.D.
La figura 21 muestra la construcción del plásmido
pGOSA.E.
La figura 22 muestra la fuente del fragmento PCR.
I BstEII/SacI.
La figura 23 muestra la fuente del fragmento PCR.
IV XhoI/EcoRI.
La figura 24 muestra la fuente del fragmento PCR.
V SalI/EcoRI.
La figura 25 muestra la fuente del fragmento PCR.
III NheI/SacI.
La figura 26 muestra la fuente del fragmento PCR.
II SfiI/EcoRI.
La tabla 1 muestra la secuencia de nucleótidos de
todos los oligonucleótidos usados en la construcción de las
construcciones de doble y triple cabeza.
La tabla 2 enumera todas las construcciones de la
expresión pSV descritas en esta memoria descriptiva.
Los siguientes ejemplos se proporcionan como
forma de ilustración solamente.
Experimental
general
Todas las etapas de clonación se realizaron en
E. coli JM109 o E. coli XL-1 azul. Los
cultivos se desarrollaron en medio 2xTY/Amp/Glucosa (16 g tristona,
10 g de extracto de levadura, 5 g de NaCl por litro de H_{2}O
suplementado con glucosa al 2% y 100 \mug/ml de ampicilina). Las
transformaciones se sembraron sobres placas de SOBAG (20 g de
triptona, 5 g de extracto de levadura, 15 g de agar, 0,5 g de NaCl
por litro de H_{2}O más MgCl_{2} 10 mM, glucosa al 2%, 100
\mug/ml de ampicilina). Los vectores de E. coli
bicistrónicos usados se derivan de pUC19. El vector de expresión de
COS pSV.51 (cepa LMBP nº 1829) se obtuvo de la colección de cultivos
LMBP (Laboratorio de Biología molecular de la Universidad de
Gent.). Células COS - 1 (ECACC Nº: 88031701; células de riñón de
mono verde africano) se obtuvieron a partir de la colección europea
de cultivos de células animales (abreviadamente en inglés ECACC).
Todos los reactivos de cultivos de tejidos eran de Gibco BRL (Life
Technologies, Paisley, Reino Unido).
Los cebadores de oligonucleótidos usados en las
reacciones de PCR se sintetizaron en un sintetizador de DNA 381A de
Applied Biosystems mediante el procedimiento de fosforamidita. Las
estructuras primarias de los cebadores de oligonucleótidos usados
en la construcción de las construcciones pSV triespecíficas (tabla
2) se muestran en la tabla 1. La mezcla de reacción usada para la
amplificación de fragmentos de DNA fueron Tris - HCl 10 mM, pH 8,3,
MgCl_{2} 2,5 mM, KCl 50 mM, gelatina al 0,01% (p/v), Tritón
X-100 al 0,1%, 400 mM de cada dNTP, 5,0 unidades de
Vent DNApolimerasa (New England Biolabs), 100 ng de DNA moldeado, y
500 ng de cada cebador (para reacciones de 100 \mul). Las
condiciones de reacción fueron: 94ºC durante 4 minutos, seguido de
33 ciclos cada uno de 1 minuto a 94ºC, 1 minuto a 55ºC, y 1 minuto a
72ºC.
El DNA de plásmidos se preparó usando el sistema
"preparación de DNA Qiagen P-100 y
P-500 Midi/Maxi". Los vectores e inserciones se
prepararon mediante digestión de 10 \mug (para preparación de
vectores) o 20 \mug (para preparación de inserciones) con las
endonucleasas de restricción especificadas en condiciones
apropiadas (tampones y temperaturas según se especifica por los
proveedores). Reacciones de sustitución de Klenow y desfosforilación
con la fosforilasa de intestino de ternera se realizaron según las
instrucciones de los fabricantes. Los DNA de los vectores e
inserciones de separaron mediante electroforesis en gel de agarosa
y se purificaron con membranas de DEAE NA45 (Schleicher y Schnell)
como han descrito Maniatis y col., (Molecular cloning: a Laboratory
manual, Cold Spring Harbour, N. Y. (1982)). Las ligaciones se
realizaron en volúmenes de 20 \mug que contenían Tris - HCl 30 mM,
pH 7,8, MgCl_{2} 10 mM, DTT 10 mM, ATP 1 mM, 300 - 400 ng de DNA
de vectores, 100 - 200 ng de DNA de inserción y 1 unidad Weiss de
ligasa de DNA de T_{4}. Después de la ligación durante 2 - 4
horas a temperatura ambiente, CaCl_{2} E. coli JM109
competente o azul XL-1 (Maniatis y col) se
transformaron usando 7,5 \mul de reacción de ligación. Las
mezclas de transformación se sembraron en placas SOBAG y se
desarrollaron durante una noche a 37ºC. Los clones corregidos se
identificaron mediante análisis de restricción y se verificaron
mediante secuenciación didesoxi automática (Applieed
Biosystems).
Después de la amplificación cada reacción se
comprobó por la presencia de una banda del tamaño apropiado mediante
electroforesis en gel de agarosa. Una o dos de mezclas de reacción
de PCR de 100 \mul de cada una de las reacciones de PCR,
conteniendo juntas aproximadamente 2 - 4 \mug de producto de DNA
se sometieron a extracción con fenol - cloroformo, la extracción
con cloroformo y precipitación con etanol. Los sedimentos de DNA se
lavaron dos vecescon 70% de etanol y se dejaron secar. A
continuación, los productos de PCR se digirieron durante una noche
(18 h) en 200 \mul de 1 x de tampón en exceso de la enzima de
restricción apropiada.
Células Cos - 1 se mantuvieron en medio de
cultivo DMEM con glutamina (2 mM), penicilina (100 U/ml),
estreptomicina (100 \mug/ml) que contenía F. C. S. al 10%. Para
ensayos de transfección transitoria 1 - 3 x 10^{5} células COS se
sembraron en discos de cultivos de tejidos de 3 cm de diámetro (2
ml). Las células se incubaron a 37ºC en un incubador con CO_{2}
hasta que las células fueron confluentes al 50 - 80% (durante una
noche). Para cada transfección se prepararon las siguientes
mezclas: A) 1 \mug de cada uno de los DNA especificados en 100
\mul de medio de suero reducido con
Opti-MEM-I, B) 1 \mul de
LipofectiAmina en 100 \mul de medio de suero reducido con
Opti-MEM-I. Las mezclas A y B se
combinaron (suavemente). Después de dejar que los complejos DNA -
liposomas se formen durante 30 - 45 minutos a temperatura ambiente,
0,8 ml de medio de suero reducido con
Opti-MEM-I se añadieron a cada tubo
que contenía complejo lípidos - DNA. Las células COS - 1 se lavaron
una vez con 2 ml de medio de suero reducido con
Opti-MEM-I y se cubrieron con la
solución de complejos diluidos. Las células COS - 1 se incubaron
durante 5 horas a 37ºC. Después de la incubación, se añadieron 2 ml
de medio de crecimiento. 20 horas después de la transfección el
medio se reemplazó con 2 ml de medio de crecimiento reciente que
contenía butirato de sodio 0,1 mM. Después de 48 horas de
incubación a 37ºC el sobrenadante se recogió y se ensayó para la
presencia de fragmentos de
anticuerpos.
anticuerpos.
Placas ELISA de 96 pocillos (placas HC Greiner)
se activaron durante una noche a 37ºC con 200 \mul/pocillo de una
dilución 1/10 de un cultivo durante una noche de células de
Streptococcus sanguis en tampón carbonato sódico 0,05 M pH
9,5 se usó para sensibilizar cada pocillo. Después de un lavado con
PBST, las placas sensibilizadas con antígeno se prebloqueron
durante 1 hora a 37ºC con 200 \mul/pocillo de tampón de bloqueo
(BSA al 1%, Tween al 0,15% en PBS). 50 \mul de sobrenadantes de
cultivo de COS (puros o diluidos con PBS) más 50 \mul de tampón
de bloqueo que contenía glucosaoxidasa (50 \mug/ml) se añadieron
a la placa sensibilizada por Streptococcus sanguis y se
incubó durante 2 horas a 37ºC. Después de 4 lavados con
PBS-T, se detectó la glucosaoxidasa unida mediante
la adición de 100 \mul de sustrato a cada pocillo (citrato sódico
70 mM, fosfato sódico 320 nm, 27 mg/ml de glucosa, 0,5 \mug/ml de
HRP, 100 \mug/ml de TMB). La reacción de color se detuvo después
de una hora mediante la adición de 35 \mul de HCl 2 M y se midió
la A450.
Placas ELISA de 96 pocillos (placas HC Greiner)
se activaron durante una noche a 37ºC con lisozima (50 \mug/ml en
tampón carbonato sódico 0,05 M pH 9,5; 200 \mul/pocillo). Después
de un lavado con PBST, las placas sensibilizadas con antígeno se
prebloqueron durante 1 hora a 37ºC con 200 \mul/pocillo de tampón
de bloqueo (BSA al 1%, Tween al 0,15% en PBS). 50 \mul de
sobrenadantes de cultivo de COS (puros o diluidos con PBS) más 50
\mul de tampón de bloqueo que contenía glucosaoxidasa (50
\mug/ml) se añadieron a la placa sensibilizada por
Streptococcus sanguis y se incubaron durante 2 horas a 37ºC.
Después de 4 lavados con PBS-T, se detectó la
glucosaoxidasa unida mediante la adición de 100 \mul de sustrato
a cada pocillo (citrato sódico 70 mM, fosfato sódico 320 nm, 27
mg/ml de glucosa, 0,5 \mug/ml de HRP, 100 \mug/ml de TMB). La
reacción de color se detuvo después de una hora mediante la adición
de 35 \mul de HCl 2 M y se midió la A450.
Placas ELISA de 96 pocillos (placas HC Greiner)
se activaron durante una noche a 37ºC con 200 \mul/pocillo de una
dilución 1/10 de un cultivo durante una noche de células de
Streptococcus sanguis en tampón carbonato sódico 0,05 M pH
9,5 y se usó para sensibilizar cada pocillo. Después de un lavado
con PBST, las placas sensibilizadas con antígeno se prebloqueron
durante 1 hora a 37ºC con 200 \mul/pocillo de tampón de bloqueo
(BSA al 1%, Tween al 0,15% en PBS). 50 \mul de sobrenadantes de
cultivo de COS (puros o diluidos con PBS) más 50 \mul de tampón
de bloqueo que contenía glucosaoxidasa (50 \mug/ml) se añadieron
a la placa sensibilizada por Streptococcus sanguis y se
incubó durante 2 horas a 37ºC. Después de 4 lavados con
PBS-T, 50 \mul de tampón de bloqueo que contenía
fosfata alcalina conjugada a lisozima (100 \mug/ml). La lisozima
no unida se retiró después de 4 lavados con PBS-T.
La lisozima unida se detectó mediante la adición de 100 \mul de
sustrato a cada pocillo (1 mg/ml de pNNP en dietanolamina 1 M,
MgCl_{2} 1mM). Después de una hora se midió la A450.
La construcción de los vectores de expresión pSV
COS consistió en tres fases:
1A): ensamblar 2 dominios variables de cadenas
pesadas en un vector de expresión de E. Coli basado en pUC
por lo tanto construyendo los módulos VH_{A} - VH_{B} y VL_{A}
- VL_{B} respectivamente.
1B) ensamblar de 3 dominios variables de cadenas
pesadas y 3 dominios variables de cadenas ligeras en un vector de
expresión de E. coli basado en pUC por lo tanto construyendo
los módulos VH_{A} - VH_{B} - VH_{C} y VL_{A} - VL_{B} -
VL_{C} respectivamente.
2) unir los VH_{A} - VH_{B},VH_{A} -
VH_{B} - VH_{C} y VL_{A} - VL_{B}, VL_{A} - VL_{B} -
VL_{C} a la secuencia guía anti - NP genómica en los vectores
"EUKA" intermedios para asegurar la secreción eficiente de
células COS.
3) insertar los guía - VH_{A} - VH_{B}, guía
- VH_{A} - VH_{B} - VH_{C} y guía - VL_{A} - VL_{B}, guía
- VL_{A} - VL_{B} - VL_{C} como fragmentos hacia abajo
XbaI/XbaI del promotor SV40 en el vector de expresión de COS
pSV.51.
Los vectores de expresión de E. coli se
derivan de pUC.19 que contienen un fragmento
HindII-EcoRI que en el caso del scFv.lys.myc
contiene una secuencia señal de pelB condensada al extremo 5' del
dominio V de cadenas pesadas que se une directamente al dominio V
de las cadenas ligeras correspondientes al anticuerpo mediante una
secuencia de conexión que codifica un péptido flexible
(Gly_{4}Ser)_{3} generando por lo tanto una molécula de
una cadena. En el vector de expresión de "doble cabeza" tanto
en los dominios V de cadenas pesadas como en las cadenas ligeras
del anticuerpo está precedido de un sitio de unión a ribosomas y de
una secuencia señal de pelB en el operón dicistrónico artificial
bajo el control de un promotor individual inducible. La expresión de
estas construcciones se dirige mediante el promotor lacZ inducible.
La secuencia de nucleótidos de las inserciones HindIII - EcoRI de
las construcciones scFv.lys-myc, scFv.4715.2t y
pGOSA.E2t usadas para la generación de los fragmentos de
anticuerpos triespecíficos se enumeran en las figuras 3 y 2
respectivamente.
La construcción pGOSA.E2t (figuras 2 y 6A) se
deriva de la construcción de expresión de E. coli pGOSA.E. La
construcción de pGOSA.E se ha descrito en detalle en la preparación
1 más adelante.
En contraste con pGOSA.E, pGOSA.E2t contiene una
diana de péptidos en el extremo C de la cadena ligera variable.
Usando los oligonucleótidos DBL3 y DBL.4 el fragmento génico VL4715
se amplificó usando scFv.4715.t como un molde. El fragmento de PCR
SalI/BamHI VH4715.2t y la diana hidrófilo-2 que
contiene el fragmento BamHI/EcoRI de scFv.4715.2t (figura 3B) se
usaron para reemplazar el fragmento SalI/EcoRI VH4715 en pGOSA.E
produciendo por lo tanto pGOSA.E2t.
El vector pGOSA.E2t y los oligonucleótidos en la
tabla 1 se ha diseñado para permitir que la mayoría de las
especificidades se clonen en la construcción pGOSA.E2t (figura 6A).
El dominio V_{H} hacia arriba se puede reemplazar mediante
cualquier fragmento génico de V_{H} PstI-BstEII
obtenido con oligonucleótidos PCR.51 y PCR.89. Los oligonucleótidos
DBL.1 y DBL.2 se diseñaron para introducir los sitios de
restricción SfiI y NheI en los fragmentos génicos V_{H} por lo
tanto permitiendo la clonación de los fragmentos génicos de V_{H}
en los sitios SfiI - NheI como el dominio de V_{H} hacia abajo.
Usando este planteamiento se construyeron las siguientes
combinaciones de VH_{A} - VH_{B}:
\hbox{VH4715 -}VH3418, VH4715 - VHlys, VH3418 - VHlys, VHlys - VH3418.
Todos los fragmentos génicos de V_{L} obtenidos
con los oligonucleótidos PCR.116 y PCR.90 se pueden clonar en la
posición del fragmento génico de V_{L} 3418 como un fragmento
SacI-XhoI. Sin embargo una complicación aquí es la
presencia de un sitio SacI interno en el fragmento génico 3418
V_{H}. Los oligonucleótidos DBL.3 y DBL.4 se diseñan para
permitir la clonación de los fragmentos génicos de V_{L} en la
posición del fragmento génico 4715 V_{L} como un fragmento SalI -
BamHI. Sin embargo una complicación aquí es la presencia de un
sitio BamHI interno en el fragmento génico hidrófilo 2 - diana.
Usando este planteamiento se construyeron las siguientes
combinaciones de VL_{A} - VL_{B}: VL3418 - VL4715.2t, VLlys -
VL4715.2t y VLlys - VL3418.2t.
La amplificación de los fragmentos VH - engarce
usando bien scFv (VH-engarce-VL) o
construcciones biespecíficas
(VH-engarce-VH) como molde con la
combinación de cebadores DBL.1/DBL.5 (figura 7A) produce uno de los
bloques de construcción para la construcción de los módulos
VH_{A} - VH_{B} - VH_{C}. El fragmento de PCR VH - engarce
DBL.1/DBL.5 se digiere con SfiI y se inserta en el sitio SfiI que
está presente entre la secuencia de engarce y el dominio de VH hacia
abajo en todas las construcciones biespecíficas (figura 7B)
produciendo por lo tanto un módulo
\hbox{VH _{A} -}VH_{B} - VH_{C}. Usando este planteamiento las siguientes combinaciones de VH_{A} - VH_{B} - VH_{C} se construyeron para esta catalogación: VH4715 - VHlys - VH3418 y VHlys - VH4715 VH3418.
Usando una construcción biespecífica (VL -
engarce - VL) como molde en una reacción de amplificación con la
combinación de cebadores DBL.3/DBL.6 (figura 7A) produce el bloque
de construcción VL - engarce para la construcción de los módulos
VL_{A} - VL_{B} - VL_{C}. El fragmento VL - engarce
DBL.3/DBL.6 se digiere con SalI y se inserta en el sitio SalI que
está presente entre la secuencia del engarce y el dominio de VL
hacia abajo en todas las construcciones biespecíficas (figura 7B)
por lo tanto produciendo un módulo VL_{A} - VL_{B} - VL_{C}.
Usando este planteamiento se construyeron las siguientes
combinaciones de VL_{A} - VL_{B} - VL_{C}: VLlys - VL4715 -
VL3418.2t y VL3418 - VLlys - VL4715-2t.
Una representación esquemática de las
construcciones triespecíficas se muestra en la figura 6B.
El poliengarce HindIII/EcoRI de pUC19 se
reemplazó con un poliengarce sintético EcoRI/HindIII "Euka".
Esto se logró mediante hibridación de ácidos nucleicos e inserción
de los oligonucleótidos sintéticos Euka.1 y Euka.2 (tabla 1) en el
vector pUC19 digerido con EcoRI/HindIII. El vector Euka.pUC
resultante contienen todos los sitios de restricción necesarios
para la subclonación de la secuencia guía y los dominios VH y VL.
Los fragmentos de la secuencia guía anti-NP genómica
NcoI/PstI se clonaron en el vector Euka.pUC digeridos con NcoI/PstI
(figura 8 A).
Los oligonucleótidos ML.1 y Ml.2 (tabla 1) se
usaron en una reacción de amplificación para introducir un sitio
SacI en el extremo 3' de la secuencia guía que permite la
construcción de las fusiones guía - VL. El fragmento de PCR de la
secuencia guía de NcoI/SacI se insertó en el vector Euka.pUC
digerido con NcoI/SacI produciendo la construcción Euka.VL (figura
8 A).
Los módulos VH_{A} - VH_{B} y VH_{A} -
VH_{B} - VH_{C} se eliminaron de los vectores de expresión pUC
como fragmentos PstI/Nhe y se insertaron en el vector Euka.VH
digerido con PstI/NheI (figura 8 B). Usando este planteamiento se
construyeron las siguientes combinaciones guía - VH_{A} - VH_{B}
y guía - VH_{A} - VH_{B} - VH_{C} - VH_{B} para esta
catalogación: Euka.B: guía - VH4715 - VH3418, Euka.D: guía - VH4715
- VHlys, Euka.G: guía - VH3418 - VHlys, Euka.K: guía - VH4715 -
VHlys - VH3418 y Euka.M: guía - VHlys - VH4715 - VH3418.
Los módulos VL_{A} - VL_{B} y VL_{A} -
VL_{B} - VL_{C} se eliminaron de los vectores de expresión como
fragmentos
\hbox{EcoRI -}Klenow/SacI y se insertaron en el vector Euka.VL tratado con NotI - Klenow/SacI (figura 8 C). Usando este planteamiento se construyeron las siguientes combinaciones guía - VL_{A} - VL_{B} y guía - VL_{A} - VL_{B} - VL_{C}: Euka.N: guía - VL3418 - VH4715.2t, Euka.P: guía - VHlys - VL4715.2t, Euka.S: guía - VHlys - VL3418.2t, Euka.V: guía - VLlys - VL4715 - VL3418.2t y Euka.W: guía - VL3418 - VLlys - VL4715.2t.
Todas las combinaciones guía - VH_{A} -
VH_{B}, guía - VH_{A} - VH_{B} - VH_{C}, guía - VL_{A} -
VL_{B} y guía - VL_{A} - VL_{B} - VL_{C}, se eliminaron de
los vectores "Euka" como fragmentos de XbaI/XbaI y se
subclonaron hacia abajo del promotor SV40 en pSV.51 (figura 5)
mediante la inserción en el sitio XbaI (figura 8 B y 8 C). Después
de la confirmación de la orientación correcta de las inserciones los
vectores de expresión pSV se usaron para transfectar células COS -
1 (véase el ejemplo 2). Los vectores de expresión pSV usados se
enumeran en la tabla 2.
Este ejemplo describe la producción de tres tipos
de actividad de unión biespecífica mediante células COS - 1
transfectadas con plásmidos de expresión que codifican los
fragmentos génicos VH_{A} - VH_{B} - VH_{C} y VL_{A} -
VL_{B} - VL_{C}.
Los sobrenadantes de las células COS - 1
transfectadas con combinaciones de pSV - VH_{A} - VH_{B} -
VH_{C} y plásmidos de pSV - VL_{A} - VL_{B} - VL_{C} se
separaron sobre SDS - PAGE al 10% y se transfectaron en
nitrocelulosa. Las transferencias de Western se seleccionaron con
anticuerpos monoclonales que reconocían una secuencia de péptidos
en el marco conservado 4 de los dominios VH (región codificada por
PCR.89: conservada n todos los dominios VH usados, {reactivo
interno}) y/o un específico monoclonal para la diana hidrófila - 2.
Como se muestra en la figura 9 todos los sobrenadantes contenían
productos con el peso molecular esperado de los fragmentos VH_{A}
- VH_{B} - VH_{C} y VL_{A} - VL_{B} - VL_{C}, indicando
que las células COS se transfectaron con éxito y estaban
secretando los fragmentos de anticuerpos producidos en el medio de
cultivo a niveles detectables.
Los sobrenadantes de las células COS - 1
transfectadas con plásmidos de expresión pSV individuales y las
combinaciones de los plásmidos de expresión pSV se ensayaron para
la producción de actividad de unión bifuncional usando el formato
ELISA:
* Los sobrenadantes de células COS - 1
transfectadas con los controles positivos biespecíficos
"LYSAN"
\hbox{(pSV.D +}pSV.P), "LYSOX" (pSV.G + pSV.S) y "GOSA" (pSV.B + pSV.N) solamente produjeron actividad biespecífica de LISAN, LYSOX y GOSA respectivamente (figura 10). No se detectó ninguna reactividad cruzada significativa.
* Los sobrenadantes de células COS - 1
transfectadas con solamente un vector que codifica bien uno de los
fragmentos VH_{A} - VH_{B} - VH_{C} (pSV.K y pSV.M), o uno de
los fragmentos VL_{A} - VL_{B} - VL_{C}, (pSV.V y pSV.W) no
mostraron ninguna actividad de unión biespecífica, indicando que no
se produce ninguna unión de fondo o una actividad de unión
específica.
* Todos los sobrenadantes ensayados de las
células COS - 1 transfectadas con un vector de expresión que
codifica uno de los fragmentos VH_{A} - VH_{B} - VH_{C} (pSV.K
y pSV.M) y un vector de expresión que codifica uno de los
fragmentos VL_{A} - VL_{B} - VL_{C}, (pSV.V y pSV.W) mostraron
niveles significativos de las tres actividades de unión bifuncional
LYSOX, GOSA y LYSAN.
Estos resultados muestran que las células COS
transfectadas con los vectores de expresión que codifican VH_{A} -
VH_{B} - VH_{C} y los vectores de expresión que codifican los
fragmentos VH_{A} - VH_{B} - VH_{C} producen y secretan
moléculas que contienen tres actividades de unión. En este ejemplo
las tres actividades son: unión a la glucosaoxidasa, unión a S.
sanguis y unión a lisozima. Además, los resultados ilustrados
en la figura 10 muestran claramente que al menos dos de estas
actividades de unión están presentes en un complejo molecular
autoensamblador. En este ejemplo aquellas combinaciones son: GOSA
(glucosaoxidasa + S. sanguis), LYSOX (lisozima +
glucosaoxidasa) y LYSAN
\hbox{(lisozima +}S. sanguis).
Este ejemplo describe experimentos que muestran
que los tres tipos de actividad de unión biespecífica que se
producen mediante células COS - 1 transfectadas con plásmidos de
expresión que codifican los correspondientes fragmentos de genes
VH_{A} - VH_{B} - VH_{C} y VL_{A} - VL_{B} - VL_{C}
están presentes en un complejo molecular autoensamblador.
Golysan. A (VHlys - VH4715 - VH3418 + VLlys -
VL4715 - VL3418.2t) y Golysan. B (VHlys - VH4715 - VH3418 + VL3418 -
VLlys - VL4715.2t) se purificó mediante cromatografía de afinidad.
100 ml de sobrenadante de células COS - 1 transfectadas con
plásmidos de expresión pSV.M/pSV.V (Golysan.A) o pSV.M/pSV.W
(Golysan.B) se cargaron en una columna de Lisozima - Sefarosa (CNBr
- Sepharose, Pharmacia; la columna se preparó según las
instrucciones del fabricante). Después de lavados extensivos con
PBS los fragmentos de los anticuerpos de Golysan unidos se
eluyeron en tampón glicina 0,1 M a pH 2,2. Las fracciones se
neutralizaron con Tris y se ensayaron para la presencia de actividad
de unión triespecífica.
Como se muestra en la figura 11 no se detectó
actividad de unión biespecífica en el paso a través de la columna.
Las tres actividades de unión biespecífica (GOSA, LYSOX y LYSAN) se
extrajeron del sobrenadante de COS - 1 pasando sobre la matriz de
afinidad de lisozima. Después de elución ácida las tres actividades
de unión biespecíficas (GOSA, LYSOX y LYSAN) se recuperaron de la
columna. Ya que tanto Golysan.A como B se purificaron por afinidad
basándose en la capacidad de unión a lisozima, el hallazgo de que
estas moléculas también se unen a S. sanguis y a la
glucosaoxidasa muestra que las tres actividades de unión están
presentes en un complejo molecular autoensamblador.
Preparación
1
En los vectores de expresión pGOSA, los
fragmentos de DNA que codifican tanto el V_{H} como el V_{L} del
anticuerpo están precedidos por un sitio de unión a ribosomas y una
secuencia de DNA que codifica la secuencia señal pelB en u operón
dicistrónico artificial bajo el control de un solo promotor
inducible. La expresión de estas construcciones se dirige por el
promotor lacZ inducible. La secuencia de nucleótidos de las
inserciones HindIII - EcoRI de los plásmidos pUR.4124
(SEC ID Nº: 23), Fv.3418 (SEC ID Nº: 24),
Fv.4715-myc (SEC ID Nº: 25) y
scFv.4715-myc (SEC ID Nº:26) construcciones usadas
para la generación de fragmentos de anticuerpos biespecíficos se
proporcionan en las figuras 12 - 15, respectivamente. Además, un
cultivo de células de E. coli que contiene el plásmido
scFv.4715-myc y un cultivo de células de E.
coli que contiene el plásmido Fv.3418 se depositó bajo el
tratado de Budapest en la colección nacional de cultivos tipo
(Central Public Health Laboratory) en Londres (Reino Unido) con
números de depósito NCTC 12916 y NCTC 12915, respectivamente.
De acuerdo con la regla 28 (4) EPC, o una
disposición similar para un estado que no es un estado con contrato
de la EPC, se requiere que una muestra de tal depósito, cuando se
requiera, solamente se someterá a un experto.
La construcción de pGOSA.E (véase la figura 16
para la inserción HindIII - EcoRI de pUC19) implicó
varias etapas de clonación. Los sitios de restricción apropiados en
los diversos dominios se introdujeron mediante mutagénesis dirigida
por PCR usando los oligonucleótidos enumerados en la tabla 1 más
adelante.
La construcción de pGOSA.E implicó diversas
etapas de clonación que produjeron 4 construcciones intermedias
pGOSA.A a pGOSA.D (véanse las figuras 17 - 21). El vector de
expresión final pGOSA.E y los oligonucleótidos en la tabla 1 se han
diseñado para permitir que la mayoría de las especificidades se
clonen en la construcción final pGOSA.E (figura 16c). El dominio
V_{H} hacia arriba se puede reemplazar por cualquier fragmento
génico de V_{H} PstI - BstEII obtenido con los
oligonucleótidos PCR.51 y PCR.89 (véase la tabla 1). Los
oligonucleótidos DBL.1 y DBL.2 (véase la tabla 1) se diseñaron para
introducir los sitios de restricción SfiI y NheI en
los fragmentos génicos V_{H} permitiendo así la clonación de
aquellos fragmentos génicos de V_{H} en los sitios SfiI -
NheI en el dominio de V_{H} hacia abajo. Todos los
fragmentos génicos V_{H} obtenidos con los oligonucleótidos
PCR.116 y PCR.90 (véase la tabla 1) se pueden clonar en la posición
del fragmento génico V_{L}.3418 en forma de un fragmento
SacI - XhoI. Sin embargo aquí una complicación es la
presencia de un sitio interno SacI en el fragmento génico
V_{H}.3418. Los oligonucleótidos DBL.3 y DBL.9 (véase la tabla 1)
se diseñan para permitir la clonación de los fragmentos génicos
V_{L}.4715 en forma de un fragmento SalI -
NotI.
Este plásmido se deriva tanto de la construcción
Fv.4715.myc (SEC ID Nº: 25) como de la construcción
scFv.4715-myc (SEC ID Nº. 26). Un sitio de
restricción SfiI se introdujo entre las secuencia de DNA que
codifica el engarce (Gly_{4}Ser)_{3} y el fragmento
génico que codifica el V_{L} de la construcción
scFv.4715-myc (véase la figura 17). Esto se lleva a
cabo reemplazando el fragmento BstEII - SacI de la
última construcción mediante el fragmento PCR-I
BstEII/SacI (figura 22) que contiene un sitio
SifI entre el DNA que codifica el engarce
(Gly_{4}Ser)_{3} y el fragmento génico V_{L}.4715. La
introducción del sitio SfiI también introdujo 4 aminoácidos
adicionales (AlaGlySerAla) entre el engarce
\hbox{(Gly _{4} Ser) _{3} }y V_{L}.4715 dando como resultado un engarce (Gly_{4}Ser)_{3}AlaGlySerAla (engarce A). Los oligonucleótidos usados para producir PCR-I (DBL.5 y DBL.7, véase la tabla 1) se diseñaron para igualar la secuencia de la región del marco conservado - 3 de V_{H}.4715 y para cebar en la unión del DNA que codifica el engarce (Gly_{4}Ser)_{3} y el fragmento génico V_{L}.4715, respectivamente. Así pues pGOSA.A se puede indicar como:
pelB-
V_{H}4715-engarceA-(SfiI)-V_{L}.4715-myc.
Este plásmido se deriva del plásmido Fv.3418
(véase la figura 18). El fragmento XhoI-EcoI del
plásmido Fv.3418 que comprende el extremo 3' del DNA que codifica
el marco conservado - 4 del V_{L} que incluye el codón de parada
se retiró y se reemplazó por el fragmento PCR-IV
HhoI/EcoRI (figura 23). Los oligonucleótidos usados
para producir PCR-IV (DBL.8 y DBL.6, véase la tabla
1) se diseñaron para igualar la secuencia en la unión del V_{L} y
el engarce (Gly_{4}Ser)_{3} perfectamente (DBL.8); y
para permitir cebar en la unión del engarce
(Gly_{4}Ser)_{3} y el V_{H} en pUR.4124 (DBL.6). DBL.6
eliminó el sitio PstI en el V_{H} (mutación silenciosa) e
introdujo un sitio de restricción SalI en la unión del
engarce (Gly_{4}Ser)_{3} y el V_{H}, por lo tanto
reemplazando la última Ser del engarce por un residuo Val dando
como resultado un engarce (Gly_{4}Ser)_{2}Gly_{4}Val
(engarce V). Así pues pGOSA.B se puede indicar como:
pelB-
V_{H}.3418 +
pelB-V_{L}3418-engarceV-
(SalI-EcoRI).
Este plásmido contiene DNA que codifica
V_{H}.4715 unido mediante el engarce
(Gly_{4}Ser)_{3}AlaGlySerAla a V_{H}.3418 (véase la
figura 19), así pues:
pel-
V_{H}4715-engarceA-
V_{H}3418.
Esta construcción se obtuvo reemplazando el
fragmento SfiI/EcoRI de pGOSA.A que codifica
V_{L}.4715 por el fragmento PCR-II
SfiI/EcoRI que contiene el gen V_{H}.3418. Los
oligonucleótidos usados para producir PCR-II (DBL.1
y DBL.2, véase la tabla 1) se hibridizan en la región del marco
conservado - 1 y marco conservado - 4 del gen que codifica
V_{H}.3418, respectivamente. DBL.1 se diseñó para eliminar el
sitio de restricción PstI (mutación silenciosa) y para
introducir un sitio de restricción SfiI hacia arriba del gen
V_{H}. DBL.2 destruye el sitio de restricción BstEII en la
región del marco conservado - 4 e introduce un sitio de restricción
NheI hacia abajo del codón de parada.
Este plásmido contiene un operón dicistrónico que
comprende el gen V_{H}.3418 y DNA que codifica V_{L}.3418 unido
mediante el engarce (Gly_{4}Ser)_{2}Gly_{4}Val a
V_{L}.4715 (véase la figura 20), así pues:
pelB-
V_{H}.3418 +
pelB-V_{L}3418-engarceV-
V_{L}4715.
Esta construcción se obtuvo digiriendo el
plásmido pGOSA.B con SalI/EcoRI e insertando el
fragmento
\hbox{PCR-V}SalI/EcoRI (figura 24) que contiene el gen V_{L}.4715. Los oligonucleótidos usados para obtener PCR-V (DBL.3 y DBL.9, véase la tabla 1) se diseñaron para igualar la secuencia de las regiones del marco conservado - 1 y del marco conservado - 4 del gen V_{L}.4715, respectivamente. El DBL.3 eliminó el sitio SacI de la región del marco
\hbox{conservado - 1}(mutación silenciosa) e introdujo un sitio de restricción SalI hacia arriba del gen V_{L}.4715. El DBL.9 destruyó el sitio de restricción XhoI en la región del marco conservado - 4 del gen V_{L}.4715 (mutación silenciosa) e introdujo un sitio de restricción NotI y un EcoI hacia abajo del codón de parada.
Este plásmido contiene un operón dicistrónico que
comprende DNA que codifica V_{L}.4715 unido mediante el engarce
(Gly_{4}Ser)_{3}AlaGlySerAla a V_{H}.3418 unido
mediante el engarce (Gly_{4}Ser)_{2}Gly_{4}Val a
V_{L}.4715 (véase la figura 21), así:
pelB-
V_{H}4715-engarceA-V_{L}3418 +
pelB-V_{L}3418-engarceV-
V_{L}4715.
Ambas unidades translacionales están precedidas
por un sitio de unión a ribosomas y DNA que codifica una secuencia
guía pelB. Este plásmido se obtuvo mediante una ligación de tres
puntos mezclando el vector resultante de pGOSA.D después de la
eliminación de la inserción PstI-SacI que codifica
V_{H}.3418 con la inserción PstI-NheI pGOSA.C que
contiene V_{H}.4715 unido a V_{H}.3418 y el fragmento
PCR-III NheISacI (véase la figura 25).
El vector restante PstI-SacI pGOSA.D contiene el
extremo 5' de la región del marco conservado - 1 de V_{L}.3418
hasta el sitio de restricción PstI y V_{L}.3418 unido
mediante el engarce (Gly_{4}Ser)_{2}Gly_{4}Val a
V_{L}.4715 comenzando a partir del sitio de restricción
SacI en V_{L}.3418. La inserción PstI-NheI
pGOSA.C contiene V_{H}.4715 unido mediante el engarce
\hbox{(Gly _{4} Ser) _{3} }AlaGlySerAla a V_{H}.3418, comenzando a partir del sitio de restricción PstI en la región del marco conservado - 1 en V_{H}.4715. El fragmento NheI-SacI PCR - III proporciona el sitio de unión a ribosomas y el DNA que codifica la secuencia guía pelB para la construcción V_{L}.3418-(Gly_{4}Ser)_{2}Gly_{4}Val- V_{L}.4715. Los oligonucleótidos DBL.10 y PCR.116 (véase la tabla 1) usados para generar PCR-III se diseñaron para igualar la secuencia hacia arriba del sitio de unión a ribosomas de V_{L}.4715 en Fv.4715 e introducir un sitio de restricción NheI (DBL.10), e igualar la región del marco conservado - 4 de V_{L}.3418 (PCR.116).
(1) INFORMACIÓN GENERAL:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- SOLICITANTE:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: UNILEVER PLC
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CALLE: Blackfriars
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CIUDAD: Londres
\vskip0.500000\baselineskip
- (E)
- PAÍS: Reino Unido
\vskip0.500000\baselineskip
- (F)
- CÓDIGO POSTAL (ZIP): EC4P 4BQ
\vskip0.500000\baselineskip
- (G)
- TELÉFONO: (01234) 222644
\vskip0.500000\baselineskip
- (H)
- FAX: (1234) 222633
\vskip0.500000\baselineskip
- (I)
- TELEX: 82229 UNILAB G
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TÍTULO DE LA INVENCIÓN: Proteína multivalente y multiespecífica de unión a antígenos
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- NÚMERO DE SECUENCIAS: 27
\vskip0.800000\baselineskip
- (iv)
- FORMA LEGIBLE DE ORDENADOR:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TIPO DE MEDIO: disquete
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- ORDENADOR: PC compatible de IBM
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- SOFTWARE:
\vskip0.500000\baselineskip
- PatentIn REL. nº 1.0, versión nº 1.25 (EPO) (SEC ID Nº: 1 a 18)
\vskip0.500000\baselineskip
- PatentIn REL. nº 1.0, versión nº 1.30 (EPO) (SEC ID Nº: 19 a 27).
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 1:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 1745 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 1:
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 2:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 894 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 2:
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 3:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 930 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 3:
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 4:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 156 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 4:
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 5:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 22 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 5:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipAGGTSMAMCT GCAGSAGTCW GG
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 6:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 32 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 6:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTGAGGAGACG GTGACCGTGG TCCCTTGGCC CC
\hfill32
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 7:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 24 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 7:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGACATTGAGC TCACCCAGTC TCCA
\hfill24
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 8:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 22 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 8:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGTTAGATCTC GAGCTTGGTC CC
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 9:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 45 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 9:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCAGGATCCGG CCGGTTCGGC CCAGGTCCAG CTGCAACAGT CAGGA
\hfill45
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 10:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 53 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 10:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCTACATGAAT TCGCTAGCTT ATTATGAGGA GACGGTGACG GTGGTCCCTT GGC
\hfill53
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 11:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 39 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 11:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipATTGGAGTCG ACATCGAACT CACTCAGTCT CCATTCTCC
\hfill39
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 12:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 36 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 12:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCGAATTCGGA TCCCCGTTTG ATTTCGAGCT TGGTCC
\hfill36
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 13:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 45 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 13:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGAGCGCGAGC TCGGCCGAAC CGGCCGATCC GCCACCGCCA GAGCC
\hfill45
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 14:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 36 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 14:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipATTGTCGAAT TCGTCGACTC CGCCACCGCC AGAGCC
\hfill36
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 15:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 57 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 15:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipAGCTTCTAGA CCACCATGGA AAACTGCAGA GCTCAAAAGC TAGCGCGGCG GCTCTAG
\hfill57
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 16:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 57 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 16:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipAATTCTAGAG CGGCCGCGCT AGCTTTTGAG CTCTGCAGTT TTCCATGGTG GTCTAGA
\hfill57
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 17:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 40 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 17:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipACGGGTGAGC TCGATGTCGG AGTGGACACC TGTGGAGAGA
\hfill40
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 18:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 24 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: DNA (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 18:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipGGAAACAGCT ATGACCATGA TTAC
\hfill24
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 19:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 25 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: otro ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESCRIPCIÓN:
\hskip0,5cm
/desc = "DNA sintético"
\vskip0.800000\baselineskip
- (vii)
- FUENTE INMEDIATA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CLON: cebador DBL.7
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 19:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipCACCATCTCC AGAGACAATG GCAAG
\hfill25
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 20:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 23 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: otro ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESCRIPCIÓN:
\hskip0,5cm
/desc = "DNA sintético"
\vskip0.800000\baselineskip
- (vii)
- FUENTE INMEDIATA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CLON: cebador DBL.8
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 20:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipACCAAGCTCG AGATCAAAC GGG
\hfill23
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 21:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i) CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 50 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: otro ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESCRIPCIÓN:
\hskip0,5cm
/desc = "DNA sintético"
\vskip0.800000\baselineskip
- (vii)
- FUENTE INMEDIATA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CLON: cebador DBL.9
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 21:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTGAAGTGAAT TCGCGGCCGC TTAATTACCGT TTGATTTCGA GCTTGGTCCC
\hfill50
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 22:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 36 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: otro ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESCRIPCIÓN:
\hskip0,5cm
/desc = "DNA sintético"
\vskip0.800000\baselineskip
- (vii)
- FUENTE INMEDIATA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CLON: cebador DBL.10
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 22:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipTAATAAGCTA GCGGAGCTGC ATGCAAATTC TATTTC
\hfill36
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 23:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 737 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: otro ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESCRIPCIÓN:
\hskip0,5cm
/desc = "dominios de cDNA con engarce (s) sintético (s)"
\vskip0.800000\baselineskip
- (vii)
- FUENTE INMEDIATA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CLON: inserción EcoRI-HindIII de pUR4124
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 11 . . 730
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VLlys-GS-VHlys"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 11 . . 334
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VLlys"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_RNA
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 335 . . 379
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "engarce (Gly4Ser) 3"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 380 . . 727
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VHlys"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 23:
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 24:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 920 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: otro ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESCRIPCIÓN:
\hskip0,5cm
/desc = "dominios de cDNA con engarce (s) sintético (s)"
\vskip0.800000\baselineskip
- (vii)
- FUENTE INMEDIATA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CLON: inserción HindIII - EcoRI Fv.3418
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 36 . . 443
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pelB-VH3418"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: sig_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 36 . . 101
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pectatoliasa"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 102 . . 440
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VH3418"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 495 . . 884
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pelP-VL4318"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: sig_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 495 . . 560
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pectatoliasa"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 561 . . 881
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VL3418"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 24:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 25:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 999 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: otro ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESCRIPCIÓN:
\hskip0,5cm
/desc = "dominios de cDNA con engarce (s) sintético (s)"
\vskip0.800000\baselineskip
- (vii)
- FUENTE INMEDIATA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CLON: inserción HindIII - EcoRI de Fv.4715-myc
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 40 . . 468
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pelB-VH4715"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: sig_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 40 . . 105
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pectatoliasa"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 106 . . 465
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VH4715"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 520 . . 963
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pelP-VL4715-myc"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: sig_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 520 . . 585
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pectatoliasa"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 586 . . 927
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VL4715"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_RNA
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 928 . . 960
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "myc_tag"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 25:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 26:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 924 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: otro ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESCRIPCIÓN:
\hskip0,5cm
/desc = "dominios de cDNA con engarce (s) sintético (s)"
\vskip0.800000\baselineskip
- (vii)
- FUENTE INMEDIATA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CLON: inserción HindIII - EcoRI de scFv.4715-myc
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: sig_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 40 . . 105
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pectatolisasa"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 106 . . 465
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VH4715"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_RNA
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 466 . . 510
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "(Gly4Ser)3-engarce"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 511 . . 852
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VL4715"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_RNA
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 853 . . 885
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "myc - diana"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 40 . . 888
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pelB-VH4715-(Gly4Ser)3-VL4715-myc"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 26:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN DE LA SEC ID Nº: 27:
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 1706 pares de bases.
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- Tipo: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE HEBRA: doble
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: lineal
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: otro ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DESCRIPCIÓN:
\hskip0,5cm
/desc = "dominios de cDNA con engarce (s) sintético (s)"
\vskip0.800000\baselineskip
- (vii)
- FUENTE INMEDIATA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CLON: inserción HindIII - EcoRI de pGOSA.E
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 40 . . 864
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA
INFORMACIÓN:
\hskip0,2cm
/producto = "pelB-VH4715-LiA-VH3418"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: sig_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 40 . . 105
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pectatoliasa"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 106 . . 465
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VH4715"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_RNA
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 466 . . 522
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA
INFORMACIÓN:
\hskip0,2cm
/producto = "engarceA-(Gly4Ser)3AlaGlySerAla"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 523 . . 861
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VH3418"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 913 . . 1689
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA
INFORMACIÓN:
\hskip0,2cm
/producto = "pelB-VH3418-LiV-VL4715"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: sig_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 913 . . 978
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "pectatoliasa"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 979 . . 1299
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VL3418"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: misc_RNA
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 1300 . . 1344
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA
INFORMACIÓN:
\hskip0,2cm
/producto = "engarce V (Gly4Ser)2Gly4Val"
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE/CLAVE: mat_péptido
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- LOCALIZACIÓN: 1345 . . 1686
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- OTRA INFORMACIÓN: /producto = "VL4715"
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA: SEC ID Nº: 27:
Claims (14)
1. Una proteína multivalente de unión a antígenos
que comprende:
- un primer polipéptido que comprende, en serie, tres o más dominios variables de una cadena pesada del anticuerpo; y
- un segundo polipéptido que comprende, en serie, tres o más dominios variables de una cadena ligera del anticuerpo,
- dicho primer y segundo polipéptidos estando unidos por asociación de los dominios variables de la cadena pesada y de la cadena ligera respectiva, cada par de dominios variables asociados formando un sitio de unión a antígenos.
2. Una proteína según la reivindicación 1 que
comprende una proteína trivalente de unión a antígenos.
3. Una proteína según la reivindicación 1 o
reivindicación 2 en la que los dominios variables de la cadena
pesada del anticuerpo de dicho primer polipéptido están unidos por
un engarce peptídico y los dominios variables de la cadena ligera
del anticuerpo de dicho segundo polipéptido están unidos por un
engarce peptídico.
4. Una proteína según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3 en la que los sitios de unión al par de
dominios variables asociados son capaces de unirse a epítopos
diferentes entre sí.
5. Una proteína según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3 en la que los sitios de unión al par de
dominios variables asociados son capaces de unirse al mismo epítopo
según el otro.
6. La secuencia de nucleótidos que codifica los
polipéptidos de la proteína de unión a antígenos multivalente de
una cualquiera de las reivindicaciones anteriores.
7. Las secuencias de nucleótidos según la
reivindicación 6 contenidas en uno o más vectores de expresión.
8. Una célula huésped transformada con un vector
según la reivindicación 7, y capaz de la expresión de las
secuencias de nucleótidos para producir los polipéptidos de la
proteína multivalente de unión a antígenos.
9. Una célula huésped según la reivindicación 8
en la que los polipéptidos sobre la expresión se asocian para
formar la proteína multivalente de unión a antígenos.
10. Un procedimiento para preparar una proteína
multivalente de unión a antígenos según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 5 que comprende:
- (i)
- transformar uno o más huéspedes mediante la incorporación de genes que codifican dichos primer y segundo polipéptidos;
- (ii)
- expresar dichos genes y dicho huésped o huéspedes; y
- (iii)
- permitir que dichos primer y segundo polipéptidos se asocien para formar la proteína.
11. Una proteína según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 5 para uso en medicina.
12. Una composición de diagnóstico o terapéutica
que comprende una proteína según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 5.
13. Uso de una composición según la
reivindicación 12 en la preparación de un agente para uso en
diagnosis o terapia.
14. Uso de una proteína según una cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 5 en un procedimiento de inmunoensayo o
para purificación.
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